CN107974441B - 内切葡聚糖酶、其编码基因cel5A-h37及其应用 - Google Patents

内切葡聚糖酶、其编码基因cel5A-h37及其应用 Download PDF

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    • C12P19/14Preparation of compounds containing saccharide radicals produced by the action of a carbohydrase (EC 3.2.x), e.g. by alpha-amylase, e.g. by cellulase, hemicellulase
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
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    • C12Y302/01Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
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Abstract

本发明涉及基因工程领域,具体涉及一种新型内切葡聚糖酶、其编码基因cel5A‑h37及其应用。一种编码所述内切葡聚糖酶的基因cel5A‑h37,其核苷酸序列如SEQ ID No.1所示。生物信息学分析表明,该基因编码的内切葡聚糖酶属于糖苷水解酶第5家族。发明人通过设计引物成功将其克隆,并在原核表达系统中成功表达,经诱导超声纯化所得的重组内切葡聚糖酶的最适作用pH为6.0,最适温度为40°C,在40°C能保持较稳定的酶活性。该酶在pH5.0‑8.0下具有较强的耐受性,能保持80%以上的酶活性。该重组内切葡聚糖酶具有较大的研究和工业应用潜力。

Description

内切葡聚糖酶、其编码基因cel5A-h37及其应用
技术领域
本发明涉及基因工程领域,具体涉及一种新型内切葡聚糖酶、其编码基因cel5A-h37及其应用。
背景技术
纤维素作为植物细胞壁的主要组成成分,是目前自然界中最丰富的可再生资源,然而其顽固的结构限制了它的利用。纤维素降解成葡萄糖的过程需要内切葡聚糖酶(Endoglucanase,EC3.2.1.4)、外切葡聚糖酶(exoglucanase,E.C.3.2.1.91)和β-葡萄糖苷酶(β-glucosidase,E.C.3.2.1.21)三种纤维素酶的系统同作用。其中,内切葡聚糖酶是纤维素酶系最主要的成分,它主要作用于纤维素的非结晶区,随机水解纤维素链中的β-1,4糖苷键,切断纤维素长链,转化为大量不同聚合度的短链,降低纤维素的聚合度,在降解过程中发挥关键的作用。因此,它的生产利用对于纤维素的降解效率至关重要。目前,该酶已经广泛应用于造纸、纺织、食品、生物燃料、动物饲养等行业中。这些产业上的应用需要生产成本低,具有不同的最适pH和温度,以及较好稳定性的内切葡聚糖酶。过去几十年,大量的研究集中在如何减少真菌生产纤维素酶的成本,主要包括菌的随机诱变、工业优化、外源蛋白添加等方法。然而,由于缺乏对复杂酶系和产酶菌的充分了解,这一进程相当缓慢。因此,寻找大量新型的内切葡聚糖酶尤为重要。
随着组学的出现,一些产木质纤维素酶的微生物基因组测序陆续完成,为进一步的研究提供了清晰的遗传背景,越来越多的纤维素酶基因核苷酸序列得以确定,并在大肠杆菌和酵母中得到了表达,有效地补充了传统的酶系统。而转录组测序能够提供基因cDNA序列和基因的表达水平,能够真实反映蛋白在体内的表达情况,因此,从环境微生物转录组信息中发掘内切葡聚糖酶基因是比较新颖,同时也是行之有效的研究方向。
发明内容
本发明提供一种新型的内切葡聚糖酶基因cel5-h37,其原核表达后重组酶Cel5-H37为嗜中温酶,40℃下能保持稳定的酶活性;最适反应pH为6.0,最适反应温度为40℃;在pH5.0-8.0下耐受性较强,能保持80%以上酶活性。
本发明解决其技术问题所采用的技术方案是:
一种内切葡聚糖酶,其氨基酸序列如SEQ ID No.2所示。
一种编码所述内切葡聚糖酶的内切葡聚糖酶基因cel5A-h37,其核苷酸序列如SEQID No.1所示。本发明内切葡聚糖酶基因cel5A-h37来自湖羊瘤胃微生物转录组数据。
一种包含所述内切葡聚糖酶基因cel5A-h37的重组载体。
一种包含所述木聚糖酶基因cel5A-h37的重组菌。
一种制备内切葡聚糖酶的方法,是发酵培养所述的重组菌,得到内切葡聚糖酶。
扩增所述内切葡聚糖酶基因cel5A-h37采用的特异性引物,其特征在于所述的特异性引物为:H37-F:5’ACAGCAAATGGGTCGCGGATCCATGTACAAATCAAAGGGTATCAAGCG 3’,其核苷酸序列如SEQ ID No.3所示;H37-R:5’CTTGTCGACGGAGCTCGAATTCTTAAGCGTTAGGGAGTTCTCCTG3’,其核苷酸序列如SEQ ID No.4所示。
本发明所述内切葡聚糖酶基因cel5A-h37的获取方法如下:
a、cel5A-h37内切葡聚糖酶基因的克隆及重组质粒pET-28a/cel5A-h37的构建;
b、重组质粒pET-28a/cel5A-h37在大肠杆菌BL21(DE3)中的表达;
c、重组蛋白的诱导、纯化及酶学特性分析;
作为优选,步骤a cel5A-h37内切葡聚糖酶基因的克隆及重组质粒pET-28a/cel5A-h37的构建过程具体如下:
①PCR扩增内切葡聚糖酶编码基因cel5A-h37;
②反向PCR扩增制备线性化pET-28a质粒;
③同源重组法构建重组质粒pET-28a/cel5A-h37转化至大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞。
本发明所述的内切葡聚糖酶在碱性环境下的纤维素降解方面的应用,如碱性洗涤剂、纺织业等工业生产。所述的强碱性环境是pH大于7.0。进一步的,所述的强碱性环境是pH7.0-8.0。
本发明具有下列优点和积极效果:
1.本发明中所克隆的基因来自湖羊瘤胃微生物转录组数据,保证基因的新颖性。
2.本发明中选用原核表达系统,具有遗传背景清楚、操作简便和生产周期短等优点。
3.本发明中PCR扩增目的片段时采取的是自行设计的特异性引物,可以有效保证扩增效率和产物特异性。
4.本发明的内切葡聚糖酶在pH5.0-8.0之间具有较强的pH耐受性,能保持80%以上酶活性。在pH9.0-10.0下能保持40%以上酶活性。因此可以用于中碱性环境下的纤维素工业降解,如在洗涤剂、纺织等工业,相比传统酸性内切葡聚糖酶处理的纺织品会产生退色现象,本发明中内切葡聚糖酶可以在碱性环境中进行处理,避免此现象发生。
附图说明
图1是cel5A-h37内切葡聚糖酶基因的克隆及表达策略;
图2是克隆cel5A-h37PCR产物;
图3是重组蛋白Cel5A-H37的SDS-PAGE分析图;
图4是pH对Cel5A-H37酶活性的影响;
图5是Cel5A-H37酶的pH稳定性;
图6是温度对Cel5A-H37酶活性的影响;
图7是Cel5A-H37酶的热稳定性。
具体实施方式
下面通过具体实施例,对本发明的技术方案作进一步的具体说明。应当理解,本发明的实施并不局限于下面的实施例,对本发明所做的任何形式上的变通和/或改变都将落入本发明保护范围。
在本发明中,若非特指,所有的份、百分比均为重量单位,所采用的设备和原料等均可从市场购得或是本领域常用的。下述实施例中的方法,如无特别说明,均为本领域的常规方法。
实施例:
一、湖羊瘤胃内容物总RNA提取
取-80℃冷冻保存的瘤胃内容物样品提取总RNA(以下裂解液RL、吸附柱RA、去蛋白液RE、漂洗液RW、RNase Free Water均购自艾德莱生物科技有限公司)在液氮中迅速研磨成粉末,每50~100mg样品加1ml的裂解液RL后匀浆,剧烈震荡混匀以裂解细胞。15-30℃下孵育5分钟使核蛋白体完全分解。12000rpm,4℃离心10min移除不溶物。将上清转移至一个干净的离心管,每1ml裂解液RL加入0.2ml氯仿,剧烈振荡15s,12000rpm,4℃离心10min。取上层无色水相转移至新管中,加入水相体积一半的无水乙醇,混匀后加入吸附柱RA中,室温下12000rpm离心45s,弃上清。加入500μl去蛋白液RE,室温下12000rpm离心45s,弃上清。加入500μl漂洗液RW,室温下12000rpm离心45s,弃上清。再次加入500μl漂洗液RW,室温下12000rpm离心45s,弃上清。室温下13000rpm离心2min尽量除去漂洗液。将吸附柱RA放入RNase free离心管中,在吸附膜中间部位加50-80μl RNase Free Water,室温放置2min,12000rpm离心1min,得到总RNA,-80℃保存。
二、cel5A-h37基因的克隆
cel5A-h37内切葡聚糖酶基因的克隆及表达策略见图1。
(1)以瘤胃内容物总RNA为模板,利用逆转录合成第一链cDNA(以下RandomPrimer、RNase Free Water、5×RT Buffer、dNTP Mixture、RNase Inhibitor、ReverTraAce均购自东洋坊生物科技有限公司)
①在微量离心管中配制下列混合液:
65℃孵育5min使RNA热变性,立即置于冰上。
②配制下列逆转录反应混合液:
③陆续将反应液于30℃孵育10min;42℃孵育20min;99℃孵育5min;4℃孵育5min,然后瞬时离心得到cDNA第一链。
(2)cel5A-h37基因扩增
①设计含有pet28a部分载体同源序列的引物和载体反向PCR扩增引物:
H37-F:5’ACAGCAAATGGGTCGCGGATCCATGTACAAATCAAAGGGTATCAAGCG 3’,核苷酸序列如SEQ ID No.3所示,
H37-R:5’CTTGTCGACGGAGCTCGAATTCTTAAGCGTTAGGGAGTTCTCCTG 3’,核苷酸序列如SEQ ID No.4所示。
②以合成的cDNA为模板PCR扩增cel5A-h37基因,扩增体系如下(其中2×Hide-Fidelity Master Mix购自北京擎科新业生物技术有限公司):
涡旋振荡混匀,稍离心后放入PCR仪中。cel5A-h37基因的扩增条件如下:
PCR结果见图2,扩增得到2196bp的条带。
三、重组质粒pET-28a/cel5A-h37的构建
(1)线性化pET-28a载体制备
PCR反向扩增pET-28a载体质粒,制备线性化载体。体系如下:
涡旋振荡混匀,稍离心后放入PCR仪中。线性化pET-28a载体的扩增条件如下:
(2)目的基因与pET-28a载体连接
利用同源重组的原理,通过SoSoo重组克隆试剂盒(购自北京擎科新业生物技术有限公司)快速将目的基因定向克隆到线性化pET-28a载体中。反应体系如下:
10μl体系,目的基因与表达载体摩尔比为5:1,50℃反应30min。
四、重组质粒在大肠杆菌中的表达
热激转化取10μl连接产物与大肠杆菌感受态BL21(DE3)小心混匀,冰浴30min;42℃水浴热激50s,立即取出冰浴2min;加入500μl 37℃预热的SOC溶液,150rpm恒温培养1h;吸取转化后的菌液,涂布于含卡那霉素的LB筛选培养基中,37℃恒温培养12-16h;挑取菌斑进行PCR鉴定,确认为阳性的克隆子转接到含卡那霉素的LB液体培养基中扩大培养。
五、阳性菌株的诱导、纯化及酶学特性分析
(1)阳性菌株的诱导
①吸取10μl阳性菌液转接至5mL含卡那霉素(50μg/mL)的LB液体培养基中,37℃,220rpm培养12-16h;
②将5mL菌液转接至200mL LB液体培养基中,37℃,220rpm继续培养至OD=0.5-1.0(大约3-4小时);
③加入2ml IPTG(终浓度1mmol/L),20℃,150rpm低温诱导培养6h;
④将诱导表达的菌液转移至50mL离心管中,12000rpm,4℃离心15min,弃掉上清,加入30mL PBS缓冲液(pH7.4)充分重悬菌体;
⑤放入至盛有冰块的烧杯中,超声波反复破碎3次(每次超声15min,工作时间3s,间歇时间5s,6号变幅杆,破碎功率195W);
⑥破碎菌液12000rpm,4℃离心15min,所得上清为粗蛋白液(CP),立即使用或4℃保存。
(2)目的蛋白亲和层析
取30mL上步所获得的粗蛋白液,加入Ni-NTA树脂填料2mL,充分混匀后,将混合液转移到层析柱子,反复上柱收集穿透液(flow-through),记为FT。
待混合蛋白样液液面接近Ni-NTA树脂填料时,用40倍柱床体积(40mL)的Washingbuffer 1(含20mmol/L咪唑)洗涤柱子,除去杂蛋白,用1.5mL离心管收集清洗液,记为W1。
用1倍柱床体积(1mL)的washing buffer 2(含50mmol/L咪唑)洗涤柱子2次,用1.5mL离心管收集清洗液,记为W2,W3。
用1倍柱床体积(1mL)的Elution buffer(含250mmol/L咪唑)洗脱目的蛋白,洗脱4次,用1.5mL离心管收集洗脱液,记为E1、E2、E3、E4。
将纯化产物进行SDS-PAGE分析(图3),结果显示:重组酶Cel5A-H37的蛋白大小量为84kDa左右。
(3)酶学特性分析
内切葡聚糖酶活力单位定义:每分钟产生1μmol还原糖的酶量为1个活力单位(U),计算公式:
A:产生还原糖的浓度(μmol/mL)
K:纯酶稀释倍数
T:酶解反应时间(min)
C:纯酶蛋白浓度(mg/mL)
pH对酶活性的影响
最适pH:分别采用pH 3.0-10.0的缓冲液(其中pH3.0-8.0采用McIlvaine‘s缓冲液,pH8.0-9.0采用Tris-HCl缓冲液,pH9.0-10.0采用Glycine-NaOH缓冲液)配置1%羧甲基纤维素钠(CMC)反应底物,取450μl底物于50℃预热5min,加入50μl酶液,在50℃条件下反应10min,加入500μl DNS溶液,采用DNS法分别测定相对活性。结果显示(图4):重组酶Cel5A-H37的最适pH为6.0。
pH稳定性:将内切葡聚糖酶分别在pH 3.0-10.0、37℃条件下孵育30min,然后在最适条件下检测酶活。以未处理的内切葡聚糖酶在最适条件下的酶活为对照,计算残余内切葡聚糖酶的相对活性。结果显示(图5):重组酶Cel5A-H37在pH5.0-8.0之间具有较强的pH耐受性,能保持80%以上酶活性。
温度对酶活的影响
最适温度:用pH6.0缓冲液配制1%CMC底物,采用DNS法分别测定内切葡聚糖酶在30℃-70℃时的酶活,计算相对活性。结果显示(图6):重组酶Cel5A-H37的最适反应温度为40℃。
热稳定性:将内切葡聚糖酶分别置于40、50和60℃条件下分别孵育50min,每隔10min取样在最适条件下测定酶活。以未处理的内切葡聚糖酶在最适条件下的酶活为对照,计算残余内切葡聚糖酶的相对活性。结果显示(图7):重组酶Cel5A-H37为嗜中温酶,在40℃时能保持较高活性,但温度高于50℃时,酶活性迅速降低。
结论:根据上述实验结论,证明本发明的内切葡聚糖酶具有较广的pH耐受性(pH5.0-8.0范围内,能保持80%以上酶活性,在pH9.0-10.0下,能保持40%以上酶活性),有较大的工业化生产和应用潜力,可应用于中碱性环境下的纤维素降解,如碱性洗涤剂、纺织业等工业生产。
以上所述的实施例是本发明挖掘基因和体外制备内切葡聚糖酶方法的较佳方案,并非对本发明作任何形式上的限制,在不超出权利要求所记载的技术方案的前提下还有其它的变体及改型。
序列表
<110> 浙江大学
<120> 内切葡聚糖酶、其编码基因cel5A-h37及其应用
<130> ZJDX-WJK004
<160> 4
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 2196
<212> DNA
<213> 内切葡聚糖酶基因cel5A-h37(endoglucanase)
<400> 1
atgtacaaat caaagggtat caagcgtatc ataagtgttt cctcagcact tgtatgtatg 60
atgtcggcaa tgagtttctc acccgttgct atcgaatcag atgcagctgc acttaccgct 120
tttgagatta ccgaagatat gaagataggc tggaactacg gtaactcgct tgatgcaaca 180
acaggaacat ctcatgcagg tcttgaaact gaaacagctt ggggcaaccc gaaagctact 240
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tattcacctt acagctttgc aatgcaggta gcggattcaa acggaaacct cattgaccac 840
agtacttaca ctgaggctta ttcaagtgaa ctccatacaa tcctcgacaa tatccgcaag 900
acttttgtag caaaggacat tcccgtagtt atcggtgagt tcagtgcgtc caactacaac 960
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ctctttgcaa gaacaaacgg tgttactact ataacaaata tcgctatcat cggcggttca 1560
gaagtaatcg aacagcctac cgaggaggac aagactgtta aatatgacct cgacctctca 1620
aaggctgaca gaaacggtac tctcgtactc actttcactt caaaggcagg cggtactgca 1680
aacggctgtg taggctttat gaacggtgct gactgggaaa tgattcagtg ggaaggaaag 1740
tacggttctg acggagttct tactgttgaa gttcctatga gtgacattcc tgaatctgta 1800
aagtctgctc aggcacaggt atggtggagt gacaatgaag tttctgattt cagctatgag 1860
gtaaagagca gtgctgttac tactgaaact actgcaacta ctaaaaatga agaaactacc 1920
actgctacaa ctactgccga acctgcaagc gaacagacag atattgtata cggtgatgca 1980
aacggtgacg gagaagtaaa tattgctgat gctgtactta tactccaatc tattgcaaat 2040
cccgactctt ataagattga tgatgcaaac aagaagtctg ctgacgttgc aggcaacggt 2100
gacggtataa ccacactcga tgcacttgca atacagatgc ttgaagcaaa agtcatctca 2160
tctctccctg ttgcaggaga actccctaac gcttga 2196
<210> 2
<211> 731
<212> PRT
<213> 内切葡聚糖酶(endoglucanase)
<400> 2
Met Tyr Lys Ser Lys Gly Ile Lys Arg Ile Ile Ser Val Ser Ser Ala
1 5 10 15
Leu Val Cys Met Met Ser Ala Met Ser Phe Ser Pro Val Ala Ile Glu
20 25 30
Ser Asp Ala Ala Ala Leu Thr Ala Phe Glu Ile Thr Glu Asp Met Lys
35 40 45
Ile Gly Trp Asn Tyr Gly Asn Ser Leu Asp Ala Thr Thr Gly Thr Ser
50 55 60
His Ala Gly Leu Glu Thr Glu Thr Ala Trp Gly Asn Pro Lys Ala Thr
65 70 75 80
Gln Glu Met Val Asp Ala Leu Lys Ala Lys Gly Phe Asn Thr Ile Arg
85 90 95
Ile Pro Thr Thr Trp Phe Gln His Leu Asp Glu Asn Asn Lys Ile Asp
100 105 110
Ala Glu Trp Met Ala Arg Val His Glu Val Val Asp Tyr Ala Ile Lys
115 120 125
Asp Asp Met Tyr Val Ile Leu Asn Val His His Glu Asn Trp Val Asn
130 135 140
Arg Ala Asp Leu Gly Thr Ala Tyr Asp Glu Met Lys Glu Lys Leu Leu
145 150 155 160
Ala Ile Trp Asp Gln Ile Ala Asp Glu Phe Lys Asp Tyr Asp Gln His
165 170 175
Leu Val Phe Glu Cys Met Asn Glu Pro Arg Ala Ala Gly Thr Asp His
180 185 190
Glu Trp Trp Gly Pro Thr Lys Asp Glu Val Asp Thr Ile Asn Lys Leu
195 200 205
Asn Ala Asp Phe Val Asn Leu Ile Arg Ser Lys Asp Ser Lys Tyr Ser
210 215 220
Glu Glu Arg Leu Leu Met Ile Pro Gly Tyr Cys Ala Ser Ser Asp Leu
225 230 235 240
Ser Met Met Gln Thr Val Glu Val Pro Asp Asp Pro Tyr Val Ala Val
245 250 255
Ser Val His Ala Tyr Ser Pro Tyr Ser Phe Ala Met Gln Val Ala Asp
260 265 270
Ser Asn Gly Asn Leu Ile Asp His Ser Thr Tyr Thr Glu Ala Tyr Ser
275 280 285
Ser Glu Leu His Thr Ile Leu Asp Asn Ile Arg Lys Thr Phe Val Ala
290 295 300
Lys Asp Ile Pro Val Val Ile Gly Glu Phe Ser Ala Ser Asn Tyr Asn
305 310 315 320
Asn Thr Glu Ala Arg Cys Glu Trp Ala Thr Gln Phe Ile Thr Glu Thr
325 330 335
Lys Gln Tyr Gly Ile Pro Cys Val Leu Trp Asp Asn Asp Ala Arg Gly
340 345 350
Asn Thr Asp Lys Ser Glu Cys His Asp Tyr Leu Asn Arg Asp Thr Leu
355 360 365
Glu Trp Tyr Glu Asp Ser Gly Glu Val Ile Asp Thr Met Met Lys Val
370 375 380
Leu Ala Asp Asp Ser Val Ala Trp Gly Ser Leu Lys Gln Gly Ile Gln
385 390 395 400
Tyr Asn His Glu Asp Ile Ser Lys Gly Lys Ser Ile Leu Ser Thr Lys
405 410 415
Thr Ser Leu Asp Ala Ser Val Glu Gly Gly Asn Cys Thr Pro Gly Leu
420 425 430
Asn Ala Thr Trp Ala Asp Leu Glu Gly Gly Asp Val Ala Val Gln Phe
435 440 445
Thr Gly Asp Val Pro Ile Val Ala Val Cys Asp Gly Asn Trp Lys Gly
450 455 460
Trp Thr Glu Ile Gln Ala Tyr Asp Val Asp Glu Lys Asn Gly Ile Ala
465 470 475 480
Tyr Tyr Ser Ala Lys Thr Ile Ser Ala Ala Trp Ser Gly Asp Thr Ser
485 490 495
Glu Ile Glu His Leu Phe Ala Arg Thr Asn Gly Val Thr Thr Ile Thr
500 505 510
Asn Ile Ala Ile Ile Gly Gly Ser Glu Val Ile Glu Gln Pro Thr Glu
515 520 525
Glu Asp Lys Thr Val Lys Tyr Asp Leu Asp Leu Ser Lys Ala Asp Arg
530 535 540
Asn Gly Thr Leu Val Leu Thr Phe Thr Ser Lys Ala Gly Gly Thr Ala
545 550 555 560
Asn Gly Cys Val Gly Phe Met Asn Gly Ala Asp Trp Glu Met Ile Gln
565 570 575
Trp Glu Gly Lys Tyr Gly Ser Asp Gly Val Leu Thr Val Glu Val Pro
580 585 590
Met Ser Asp Ile Pro Glu Ser Val Lys Ser Ala Gln Ala Gln Val Trp
595 600 605
Trp Ser Asp Asn Glu Val Ser Asp Phe Ser Tyr Glu Val Lys Ser Ser
610 615 620
Ala Val Thr Thr Glu Thr Thr Ala Thr Thr Lys Asn Glu Glu Thr Thr
625 630 635 640
Thr Ala Thr Thr Thr Ala Glu Pro Ala Ser Glu Gln Thr Asp Ile Val
645 650 655
Tyr Gly Asp Ala Asn Gly Asp Gly Glu Val Asn Ile Ala Asp Ala Val
660 665 670
Leu Ile Leu Gln Ser Ile Ala Asn Pro Asp Ser Tyr Lys Ile Asp Asp
675 680 685
Ala Asn Lys Lys Ser Ala Asp Val Ala Gly Asn Gly Asp Gly Ile Thr
690 695 700
Thr Leu Asp Ala Leu Ala Ile Gln Met Leu Glu Ala Lys Val Ile Ser
705 710 715 720
Ser Leu Pro Val Ala Gly Glu Leu Pro Asn Ala
725 730
<210> 3
<211> 48
<212> DNA
<213> 人工序列(H37-F)
<400> 3
acagcaaatg ggtcgcggat ccatgtacaa atcaaagggt atcaagcg 48
<210> 4
<211> 45
<212> DNA
<213> 人工序列(H37-R)
<400> 4
cttgtcgacg gagctcgaat tcttaagcgt tagggagttc tcctg 45

Claims (9)

1.一种内切葡聚糖酶,其特征在于:其氨基酸序列如SEQ ID No. 2所示。
2.一种编码权利要求1所述内切葡聚糖酶的内切葡聚糖酶基因cel5A-h37,其特征在于:其核苷酸序列如SEQ ID No.1所示。
3.一种包含权利要求2所述内切葡聚糖酶基因cel5A-h37的重组载体。
4.一种包含权利要求2所述内切葡聚糖酶基因cel5A-h37的重组菌。
5.一种制备内切葡聚糖酶的方法,是发酵培养权利要求4所述的重组菌,得到内切葡聚糖酶。
6.扩增权利要求2所述内切葡聚糖酶基因cel5A-h37采用的特异性引物,其特征在于所述的特异性引物为:
H37-F:5’ ACAGCAAATGGGTCGCGGATCCATGTACAAATCAAAGGGTATCAAGCG 3’ ,其核苷酸序列如SEQ ID No.3所示,
H37-R: 5’ CTTGTCGACGGAGCTCGAATTCTTAAGCGTTAGGGAGTTCTCCTG 3’ 其核苷酸序列如SEQ ID No.4所示。
7.一种权利要求1所述的内切葡聚糖酶在pH 5.0-8.0环境下的纤维素降解方面的应用。
8.根据权利要求7所述的应用,其特征在于:所述的环境是pH 7.0-8.0。
9.一种权利要求1所述的内切葡聚糖酶在pH 9.0-10.0环境下的纤维素降解方面的应用。
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