CN107858445B - 一种筛选具有不同生育时期和株高的大豆品种的方法及其专用试剂盒 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种筛选具有不同生育时期和/或株高的大豆品种的方法及其专用试剂盒。本发明所提供的方法包括如下步骤：检测待测大豆品种的基因组DNA中在多态性位点组合的基因型，根据检测结果判断待测大豆品种的生育时期长短和/或株高高低；多态性位点组合由G‑796A SNP、G‑770C SNP、T‑307G SNP、InDel‑242和A353G SNP组成。实验证明，利用本发明提供的方法筛选不同生育时期和/或株高的大豆品种，操作简单且准确率高；通过检测大豆品种的基因组DNA即可预测大豆品种的生育时期和/或株高，具有重要的应用价值。
Description
技术领域
本发明属于植物育种领域，具体涉及一种筛选具有不同生育时期和/或株高的大豆品种的方法及其专用试剂盒。
背景技术
大豆是研究光周期现象的重要模式植物，许多光周期现象的发现均是以大豆为实验材料。研究表明大豆在全生育期(出苗至成熟)都具有较强的感光性。大豆是短日植物且具有短日诱导累积效应，光照不仅影响大豆的开花时间还影响大豆的品质和其它的农艺性状。随着分子生物技术的发展，重要基因的功能不断被揭示，如何将优异基因用于大豆新品种的选育，成为分子生物学家、遗传学家和大豆育种工作者共同关注的焦点。从大豆种质资源中发掘与生育期等农艺性状相关的等位基因，然后通过传统杂交和分子标记辅助选择相结合加以利用，是最直接有效且最易被接受的大豆品种改良方法。
大豆GmGBP1基因可调控植物开花：过表达GmGBP1基因的拟南芥在长日照条件下较早开花，在短日照条件下较晚开花(Zhao L，Wang Z，Lu Q，et al.Overexpression of aGmGBP1 ortholog of soybean enhances the responses to flowering，stemelongation and heat tolerance in transgenic tobaccos[J].Plant MolecularBiology，2013，82(3)：279.)。因此GmGBP1基因是与大豆花期相关的优异基因资源，然而目前尚未开发出与GmGBP1基因相关的分子标记。
发明内容
本发明所要解决的技术问题是如何筛选具有不同生育时期和/或株高的大豆品种。
为解决上述技术问题，本发明首先提供了与大豆生育时期和/或始花期和/或始荚期和/或始粒期和/或初熟期和/或完熟期和/或株高相关的多态性位点组合，可为如下(X1)或(X2)或(X3)或(X4)：
(X1)包括下表所示的G-796A SNP、G-770C SNP、T-307G SNP、InDel-242和A353GSNP；
(X2)由所述G-796A SNP、所述G-770C SNP、所述T-307G SNP、所述InDel-242和所述A353G SNP组成；
(X3)由所述G-796A SNP、所述G-770C SNP、所述T-307G SNP、所述InDel-242和所述A353G SNP中的任意两个、任意三个或任意四个组成；
(X4)所述G-796A SNP、所述G-770C SNP、所述T-307G SNP、所述InDel-242或所述A353G SNP；
为解决上述技术问题，本发明还提供了成套引物，所述成套引物包括引物对甲、引物对乙、引物对丙和引物对丁；
所述成套引物具体可由所述引物对甲、所述引物对乙、所述引物对丙和所述引物对丁组成。
本发明还保护所述成套引物的应用，可为a-1)至a-14)中的任一种：
a-1)制备用于鉴定待测大豆始花期长短的试剂盒；
a-2)制备用于鉴定待测大豆始荚期长短的试剂盒；
a-3)制备用于鉴定待测大豆始粒期长短的试剂盒；
a-4)制备用于鉴定待测大豆初熟期长短的试剂盒；
a-5)制备用于鉴定待测大豆完熟期长短的试剂盒；
a-6)制备用于鉴定待测大豆生育时期长短的试剂盒；
a-7)制备用于鉴定待测大豆株高高低的试剂盒；
a-8)筛选具有不同始花期的大豆品种；
a-9)筛选具有不同始荚期的大豆品种；
a-10)筛选具有不同始粒期的大豆品种；
a-11)筛选具有不同初熟期的大豆品种；
a-12)筛选具有不同完熟期的大豆品种；
a-13)筛选具有不同生育时期的大豆品种；
a-14)筛选具有不同株高的大豆品种。
本发明还保护含有所述成套引物的试剂盒；所述试剂盒的用途可为a-8)至a-14)中的任一种：
a-8)筛选具有不同始花期的大豆品种；
a-9)筛选具有不同始荚期的大豆品种；
a-10)筛选具有不同始粒期的大豆品种；
a-11)筛选具有不同初熟期的大豆品种；
a-12)筛选具有不同完熟期的大豆品种；
a-13)筛选具有不同生育时期的大豆品种；
a-14)筛选具有不同株高的大豆品种。
所述试剂盒的制备方法也属于本发明的保护范围。所述试剂盒的制备方法可包括将各条引物单独包装的步骤。
本发明还保护一种筛选不同生育时期大豆品种的方法，可包括如下步骤：检测待测大豆品种基于所述多态性位点组合的基因型，“所述G-796A SNP为GG纯合型和/或所述G-770C SNP为GG纯合型和/或所述T-307G SNP为TT纯合型和/或所述InDel-242无插入和/或所述A353G SNP为AA纯合型”的待测大豆品种的生育时期短于“所述G-796A SNP为AA纯合型和/或所述G-770C SNP为CC纯合型和/或所述T-307G SNP为GG纯合型和/或所述InDel-242有插入和/或所述A353G SNP为GG纯合型”的待测大豆品种。
上述方法中，所述生育时期可为始花期和/或始荚期和/或始粒期和/或初熟期和/或完熟期。
上述方法中，所述“短于”可为在统计学上的短于。
本发明还保护一种筛选不同株高大豆品种的方法，可包括如下步骤：检测待测大豆品种基于所述多态性位点组合的基因型，“所述G-796A SNP为GG纯合型和/或所述G-770CSNP为GG纯合型和/或所述T-307G SNP为TT纯合型和/或所述InDel-242无插入和/或所述A353G SNP为AA纯合型”的待测大豆品种的株高低于“所述G-796A SNP为AA纯合型和/或所述G-770C SNP为CC纯合型和/或所述T-307G SNP为GG纯合型和/或所述InDel-242有插入和/或所述A353G SNP为GG纯合型”的待测大豆品种。
上述方法中，所述“低于”可为在统计学上的低于。
上述任一所述方法中，所述“检测待测大豆品种基于所述多态性位点组合的基因型”的方法可如下：以待测大豆品种的基因组DNA为模板，采用所述引物对甲、所述引物对乙、所述引物对丙或所述引物对丁进行PCR扩增，得到PCR扩增产物；将所述PCR扩增产物进行测序，从而评判待测大豆品种基于所述多态性位点组合的基因型。
所述多态性位点组合、或、所述成套引物、或、所述试剂盒、或、上述任一所述的方法在大豆育种中的应用也属于本发明的保护范围。
上文中，所述InDel-242有插入具体可为在GmGBP1基因的第-241位和第-242位之间插入ATA。
上文中，含有“-”的多态性位点(如G-796A SNP、G-770C SNP、T-307G SNP、InDel-242)表示该多态性位点位于GmGBP1基因的转录起始位点(即ATG)之前；不含有“-”的多态性位点(如A353G SNP)表示该多态性位点位于GmGBP1基因的转录起始位点(即ATG)之后。
上文中，以待测大豆品种的基因组DNA为模板，采用所述引物对甲进行PCR扩增，得到的PCR扩增产物的核苷酸序列如序列表中序列9所示。以待测大豆品种的基因组DNA为模板，采用所述引物对乙进行PCR扩增，得到的PCR扩增产物的核苷酸序列如序列表中序列10所示。以待测大豆品种的基因组DNA为模板，采用所述引物对丙进行PCR扩增，得到的PCR扩增产物的核苷酸序列如序列表中序列11或序列12所示。以待测大豆品种的基因组DNA为模板，采用所述引物对丁进行PCR扩增，得到的PCR扩增产物的核苷酸序列如序列表中序列13所示。
实验证明，利用本发明提供的方法筛选不同生育时期和/或株高的大豆品种，操作简单且准确率高；通过检测大豆品种的基因组DNA即可预测大豆品种的生育时期和/或株高，具有重要的应用价值。
附图说明
图1为实施例1步骤二中3的部分实验结果。
图2实施例2步骤三中3的部分实验结果。
具体实施方式
以下的实施例便于更好地理解本发明，但并不限定本发明。下述实施例中的实验方法，如无特殊说明，均为常规方法。下述实施例中所用的试验材料，如无特殊说明，均为自常规生化试剂商店购买得到的。以下实施例中的定量试验，均设置三次重复实验，结果取平均值。
下述实施例中，引物合成和测序均由华大基因进行。
实施例1、与大豆生育时期和株高相关的5个多态性位点的发现
一、试验材料的种植和目标农艺性状的测定
试验材料为具有不同纬度适应性(20°13′N-50°15′N)的278个大豆品种。278个大豆品种(记载于如下文献中：Han,Y.，Zhao,X.，Cao,G.，Wang,Y.，Li,Y.，Liu,D.，Teng,W.，Zhang,Z.，Li，D.and Qiu，L.(2015)Genetic characteristics of soybean resistanceto HG type 0 and HG type 1.2.3.5.7 of the cyst nematode analyzed by genome-wide association mapping.Bmc Genomics，16，1-11.)的名称和来源地详见表1。
表1
1、分别于2015年和2016年，在试验点(哈尔滨试验点、长春试验点或沈阳试验点)种植278个大豆品种，正常水肥管理。调查各个品种在6个环境中的农艺性状(如始花期、始荚期、始粒期、初熟期、完熟期、株高)。
部分大豆品种在6个环境中的农艺性状见表2。
表2
2、完成步骤1后，将同一环境中的各个农艺性状取平均值。结果见表3。
表3
二、筛选多态性位点与农艺性状关联分析
1、根据大豆品种Willianms82的GmGBP1基因的核苷酸序列(Genebank号为：FJ794266.1)，设计并合成4个引物对GmGBP1-1、GmGBP1-2、GmGBP1-3和GmGBP1-4(见表4)，用于检测GmGBP1基因。
表4
2、完成步骤1后，分别以278个大豆品种幼嫩叶片的基因组DNA为模板，采用GmGBP1-1、GmGBP1-2、GmGBP1-3或GmGBP1-4进行PCR扩增，得到PCR扩增产物。
反应程序：94℃10min；94℃30s，X℃30s，72℃1min 30s，35个循环；72℃10min。其中采用GmGBP1-1、GmGBP1-3或GmGBP1-4进行PCR扩增时，X℃为60℃；采用GmGBP1-2进行PCR扩增时，X℃为55℃。
反应体系共50μL，由1μL大豆品种幼嫩叶片的基因组DNA(含50-100ng基因组DNA)、1μL上游引物(浓度为10μmol/μL)、1μL对应的下游引物(浓度为10μmol/μL)、5μL10×LA PCRBuffer II(Mg2+)、8μL dNTP Mixture、0.5μL LA Taq和33.5μL ddH2O组成。
LA Taq为TaKaRa公司的产品。10×LA PCR Buffer II(Mg2+)为LA Taq中的组件。dNTP Mixture为生工生物工程(上海)股份有限公司的产品。
3、完成步骤2后，取PCR扩增产物，进行琼脂糖凝胶电泳。
大豆品种东农42的琼脂糖凝胶电泳的结果见图1(M为DNA Marker2000，1为GmGBP1-1，2为GmGBP1-2，3为GmGBP1-3，4为GmGBP1-4)。结果表明，采用GmGBP1-1、GmGBP1-2、GmGBP1-3和GmGBP1-4进行PCR扩增，得到的PCR扩增产物大小依次为1720bp、1300bp、1110bp和1120bp。
4、完成步骤3后，取步骤2得到的PCR扩增产物，纯化后测序。
5、完成步骤4后，使用ClustalX软件(http://www.clustal.org/)进行序列拼接，然后比对，筛选得到11个次级等位基因频率(MAF)大于5％的多态性位点。用TASSEL软件(https://tassel.bitbucket.io/)MLM模型将各个多态性位点与农艺性状的表型进行关联分析。部分实验结果见表5和表6。结果表明，G-796A SNP、G-770C SNP、T-307G SNP、InDel-242和A353G SNP为5个与大豆生育时期(如始花期、始荚期、始粒期、初熟期、完熟期)和株高性状显著相关的多态性位点(-log10P-value>3.04)。其中，InDel-242和A353G SNP与6个环境中的始花期、始荚期、始粒期、初熟期、完熟期和株高均显著相关(-log10P-value>3.05)；T-307G SNP与6个环境中的初熟期和株高显著相关(-log10P-value>3.06)；G-796A SNP和G-770C SNP与5个环境中的初熟期和株高显著相关(-log10P-value>3.05)。
表5.关联分析获得与表型相关的多态性位点的-log10P值
表6.关联分析获得与表型相关的GmGBP1多态性位点的信息
| 多态性位点 | 基因型(主要/次要) | 次要基因型频率(％) | 在GmGBP1基因上的位置 |
| G-796A SNP | GG纯合型/AA纯合型 | 12 | 正义链第-796位 |
| G-770C SNP | GG纯合型/CC纯合型 | 12 | 正义链第-770位 |
| T-307G SNP | TT纯合型/GG纯合型 | 12 | 正义链第-307位 |
| InDel-242 | 插入ATA/无插入 | 45 | 正义链第-242位 |
| A353G SNP | AA纯合型/GG纯合型 | 27 | 正义链第353位 |
三、278个大豆品种中5个多态性位点的相关性状统计分析
统计278个大豆品种基于上述5个多态性位点的基因型，然后与6个环境中的始花期、始荚期、始粒期、初熟期、完熟期和株高进行统计分析。
结果表明(表7)，GmGBP1基因中在所述G-796A SNP为GG纯合型和/或在所述G-770CSNP为GG纯合型和/或在所述T-307G SNP为TT纯合型和/或在所述InDel-242无插入和/或在所述A353G SNP为AA纯合型的待测大豆的性状的表型值低于GmGBP1基因中在所述G-796ASNP为AA纯合型和/或在所述G-770C SNP为CC纯合型和/或在所述T-307G SNP为GG纯合型和/或在所述InDel-242有插入和/或在所述A353G SNP为GG纯合型的待测大豆；性状为始花期、始荚期、始粒期、初熟期、完熟期和株高中的至少一种。
表7.278个大豆品种中5个多态性位点的相关性状统计分析结果
实施例2、用于鉴定待测大豆的农艺性状的试剂盒的制备
一、正向引物和反向引物的合成
根据实施例1发现的5个多态性位点在GmGBP1基因上的位置，设计并合成正向引物和反向引物。正向引物的核苷酸序列见表8中第3列。反向引物的核苷酸序列见表8中第4列。引物对的名称见表8中第2列。靶序列的相关信息见表9，靶序列即采用正向引物和反向引物扩增获得的PCR扩增产物。
表8.引物对的信息
表9.采用引物对扩增的PCR扩增产物的信息
二、试剂盒的制备
试剂盒由引物对甲、引物对乙、引物对丙和引物对丁组成。其中引物对甲用于鉴定G-796ASNP和G-770C SNP的基因型，引物对乙用于鉴定T-307G SNP的基因型，引物对丙用于鉴定InDel-242的基因型，引物对丁用于鉴定A353G SNP的基因型。
三、试剂盒在鉴定待测大豆的农艺性状中的应用
待测大豆为实施例1所述的278个大豆品种。
1、分别以待测大豆幼嫩叶片的基因组DNA为模板，采用引物对甲、引物对乙、引物对丙或引物对丁进行PCR扩增，得到PCR扩增产物。
反应程序：94℃10min；94℃30s，X℃30s，72℃1min 30s，35个循环；72℃10min。其中采用引物对甲、引物对乙或引物对丙进行PCR扩增时，X℃为50℃；采用引物对丁进行PCR扩增时，X℃为55℃。
反应体系共50μL，由1μL待测大豆品种幼嫩叶片的基因组DNA(含50-100ng基因组DNA)、1μL正向引物(浓度为10μmol/μL)、1μL对应的反向引物(浓度为10μmol/μL)、5μL 10×LA PCR Buffer II(Mg2+)、8μL dNTP Mixture、0.5μL LA Taq和33.5μL ddH2O组成。
2、完成步骤1后，取PCR扩增产物，进行琼脂糖凝胶电泳。
大豆品种东农42的琼脂糖凝胶电泳的结果见图2(M为DNA Marker2000，1为引物对甲，2为引物对乙，3为引物对丙，4为引物对丁)。
3、完成步骤2后，取PCR扩增产物，纯化后测序。
根据测序结果，确定待测大豆在上述5个多态性位点的基因型。“所述G-796A SNP为GG纯合型和/或所述G-770C SNP为GG纯合型和/或所述T-307G SNP为TT纯合型和/或所述InDel-242无插入和/或所述A353G SNP为AA纯合型”的待测大豆的性状的表型值低于“所述G-796ASNP为AA纯合型和/或所述G-770C SNP为CC纯合型和/或所述T-307G SNP为GG纯合型和/或所述InDel-242有插入和/或所述A353G SNP为GG纯合型”的待测大豆，性状为始花期和/或始荚期和/或始粒期和/或初熟期和/或完熟期和/或株高。
上述实验结果与实施例1中统计的农艺性状结果完全一致。因此，步骤二制备的试剂盒可用于鉴定待测大豆的始花期和/或始荚期和/或始粒期和/或初熟期和/或完熟期和/或株高。
<110> 东北农业大学
<120> 一种筛选具有不同生育时期和株高的大豆品种的方法及其专用试剂盒
<160> 8
<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
<211> 22
<212> DNA
<213> Artificial sequence
<400> 1
aagatttata atatccctat at 22
<210> 2
<211> 22
<212> DNA
<213> Artificial sequence
<400> 2
gattttgcag gaggaagaag ct 22
<210> 3
<211> 22
<212> DNA
<213> Artificial sequence
<400> 3
attatgtgag tgatgttaat ga 22
<210> 4
<211> 22
<212> DNA
<213> Artificial sequence
<400> 4
gattttgcag gaggaagaag ct 22
<210> 5
<211> 22
<212> DNA
<213> Artificial sequence
<400> 5
atatttatgt cctaatttta ta 22
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<211> 22
<212> DNA
<213> Artificial sequence
<400> 6
gattttgcag gaggaagaag ct 22
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<212> DNA
<213> Artificial sequence
<400> 7
cgcctactac gaccacacca 20
<210> 8
<211> 19
<212> DNA
<213> Artificial sequence
<400> 8
catcggagtt ctgcttcgg 19
Claims (9)
1.成套引物，包括引物对甲、引物对乙、引物对丙和引物对丁；
2.权利要求1所述成套引物的应用，为a-1）至a-14）中的任一种：
a-1）制备用于鉴定待测大豆始花期长短的试剂盒；
a-2）制备用于鉴定待测大豆始荚期长短的试剂盒；
a-3）制备用于鉴定待测大豆始粒期长短的试剂盒；
a-4）制备用于鉴定待测大豆初熟期长短的试剂盒；
a-5）制备用于鉴定待测大豆完熟期长短的试剂盒；
a-6）制备用于鉴定待测大豆生育时期长短的试剂盒；
a-7）制备用于鉴定待测大豆株高高低的试剂盒；
a-8）筛选具有不同始花期的大豆品种；
a-9）筛选具有不同始荚期的大豆品种；
a-10）筛选具有不同始粒期的大豆品种；
a-11）筛选具有不同初熟期的大豆品种；
a-12）筛选具有不同完熟期的大豆品种；
a-13）筛选具有不同生育时期的大豆品种；
a-14）筛选具有不同株高的大豆品种。
3.含有权利要求1所述成套引物的试剂盒；所述试剂盒的用途为a-8）至a-14）中的任一种：
a-8）筛选具有不同始花期的大豆品种；
a-9）筛选具有不同始荚期的大豆品种；
a-10）筛选具有不同始粒期的大豆品种；
a-11）筛选具有不同初熟期的大豆品种；
a-12）筛选具有不同完熟期的大豆品种；
a-13）筛选具有不同生育时期的大豆品种；
a-14）筛选具有不同株高的大豆品种。
4.权利要求3所述试剂盒的制备方法，包括将各条引物单独包装的步骤。
5.一种筛选不同生育时期大豆品种的方法，包括如下步骤：检测待测大豆品种多态性位点组合的基因型，“所述G-796A SNP为GG纯合型和/或所述G-770C SNP为GG纯合型和/或所述T-307G SNP为TT纯合型和/或所述InDel -242无插入和/或所述A353G SNP为AA纯合型”的待测大豆品种的生育时期短于“所述G-796A SNP为AA纯合型和/或所述G-770C SNP为CC纯合型和/或所述T-307G SNP为GG纯合型和/或所述InDel -242有插入和/或所述A353GSNP为GG纯合型”的待测大豆品种；
所述多态性位点组合，为如下（X1）或（X2）或（X3）或（X4）：
（X1）包括下表所示的G-796A SNP、G-770C SNP、T-307G SNP、InDel -242和A353G SNP；
（X2）由所述G-796A SNP、所述G-770C SNP、所述T-307G SNP、所述InDel -242和所述A353G SNP组成；
（X3）由所述G-796A SNP、所述G-770C SNP、所述T-307G SNP、所述InDel -242和所述A353G SNP中的任意两个、任意三个或任意四个组成；
（X4）所述G-796A SNP、所述G-770C SNP、所述T-307G SNP、所述InDel -242或所述A353G SNP；
6.如权利要求5所述的方法，其特征在于：所述生育时期为始花期和/或始荚期和/或始粒期和/或初熟期和/或完熟期。
7.一种筛选不同株高大豆品种的方法，包括如下步骤：检测待测大豆品种基于权利要求5中所述多态性位点组合的基因型，“所述G-796A SNP为GG纯合型和/或所述G-770C SNP为GG纯合型和/或所述T-307G SNP为TT纯合型和/或所述InDel -242无插入和/或所述A353G SNP为AA纯合型”的待测大豆品种的株高低于“所述G-796A SNP为AA纯合型和/或所述G-770C SNP为CC纯合型和/或所述T-307G SNP为GG纯合型和/或所述InDel -242有插入和/或所述A353G SNP为GG纯合型”的待测大豆品种。
8.如权利要求5至7任一所述的方法，其特征在于：所述“检测待测大豆品种基于所述多态性位点组合的基因型”的方法如下：以待测大豆品种的基因组DNA为模板，采用权利要求1中所述引物对甲、所述引物对乙、所述引物对丙或所述引物对丁进行PCR扩增，得到PCR扩增产物；将所述PCR扩增产物进行测序，从而评判待测大豆品种基于所述多态性位点组合的基因型。
9.权利要求5所述多态性位点组合、或、权利要求1所述成套引物、或、权利要求3所述试剂盒、或、权利要求5至8任一所述的方法在大豆育种中的应用。
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