CN107144657A - 黄曲霉毒素b1适配体亲和毛细管整体柱的制备及应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种黄曲霉毒素B1适配体亲和毛细管整体柱的制备及应用,将氨基修饰的黄曲霉毒素B1适配体通过戊二醛偶联接枝修饰于有机‑无机杂化的氨基毛细管整体柱,通过适配体与黄曲霉毒素B1特异性亲和作用,有机‑无机杂化整体柱高的柱渗透性和大的比表面积,可以高灵敏、高选择性地分离、富集复杂食品样品中痕量、超痕量黄曲霉毒素B1,与检测仪器联用可实现黄曲霉毒素B1简便、灵敏、快速检测。
Description
技术领域
本发明涉及黄曲霉毒素B1的分离富集方法,具体涉及一种黄曲霉毒素B1适配体亲和毛细管整体柱的制备方法及应用。
背景技术
黄曲霉毒素B1(AFB1)是主要由黄曲霉和寄生曲霉等产生的一种有毒代谢产物,已被国际癌症研究机构(IARC)定为一级致癌物。黄曲霉毒素B1广泛分布于各类农产品和食品中,其中最易受到污染的主要有花生、玉米、稻谷、小麦、花生油等粮油食品。鉴于AFB1的严重危害性,国内外相关组织对其制定了严格的限量标准。
目前黄曲霉毒素B1的检测方法主要有薄层色谱法(TLC)、高效液相色谱法(HPLC)、液质联用法(LC-MS)、免疫分析法(IA)等。在众多的方法中,HPLC由于操作简单,准确可靠,重复性好,已成为实验室内黄曲霉毒素B1的主要检测方法。但是由于农产品和食品样品基体复杂,在采用HPLC检测黄曲霉毒素B1时,需要对提取液有一个分离纯化的过程。由于相对高的亲和力和特异性,免疫亲和柱在分离纯化和检测分析中得到了广泛的应用。然而,在亲和色谱中,免疫抗体存在一些明显的局限性,(1)抗体在固定相上的固定化仍然具有一定的挑战性,固定的抗体在空间上的取向难以保持一致,影响抗体的亲和力;(2)抗体易受外界条件的影响,在强亲和力的亲和色谱模式下,分离富集操作过程中经常需要改变溶液的pH、添加有机溶剂或变性剂等,剧烈的洗脱条件,可能会导致抗体失活,在很大程度上限制了方法的灵活应用;(3)抗体由于体积大,在固定相表面的覆盖率小,导致免疫亲和柱容量比较小;(4)抗体制备需要经过免疫动物实验或细胞实验、繁琐费时、成本高。
发明内容
本发明的目的是针对上述问题,提供一种黄曲霉毒素B1适配体亲和毛细管整体柱,将氨基修饰的黄曲霉毒素B1适配体通过戊二醛偶联接枝修饰于有机-无机杂化的氨基毛细管整体柱,用于待测样品中黄曲霉毒素B1的高选择性分离与富集。
本发明的技术方案如下:一种黄曲霉毒素B1适配体亲和毛细管整体柱的制备方法,包括如下步骤:
(1)毛细管活化:用于制备整体柱的石英毛细管内径为530μm,外径为690μm。分别用1.0mol/L氢氧化钠溶液冲洗毛细管4h,去离子水冲洗30min,1.0mol/L盐酸溶液冲洗4h,然后再以去离子水洗至中性,在160℃下用氮气吹干。
(2)整体柱的原位合成:首先将10~30mg CTAB溶于150~350μL无水乙醇和50~150μL去离子水的混合溶液中。然后将100~200μL TEOS和50~100μL APTES快速加入上述混合溶液中。室温涡旋0.5~5min,然后放置在-5~5℃的水浴中超声0.5~5min后,将混合溶液灌入上述活化处理过的毛细管中。最后,毛细管两端以硅橡胶封口,放置于30~60℃烘箱中反应10~30h。
(3)整体柱的清洗:反应完成后,以甲醇和水充分清洗毛细管。
(4)戊二醛衍生:将含有5~20%戊二醛的磷酸缓冲溶液以5~20μL/min速率通入毛细管整体柱中,连续反应12h,然后用磷酸缓冲溶液冲洗掉残留的戊二醛。
(5)修饰适配体:将黄曲霉毒素B1适配体制成浓度为4~8nmol/L的磷酸缓冲溶液,注入毛细管整体柱中反应8~12h,重复三次,用磷酸缓冲溶液冲洗掉未反应的适配体。最后用3~8mg/ml氰基硼氢化钠冲洗整体柱6h,将制得的毛细管整体柱截取5 cm的长度用于之后的固相微萃取操作。
上述的毛细管整体柱在分离富集黄曲霉毒素B1中的应用。
一种基于上述的毛细管整体柱分离富集黄曲霉毒素B1的方法,它是基于黄曲霉毒素B1的毛细管整体柱选择性捕捉上样液中的黄曲霉毒素B1,实现黄曲霉毒素B1的分离富集;其步骤是:
(1)毛细管活化:用10~20 mmol/L的Tris-HCl缓冲溶液平衡亲和毛细管整体柱,将亲和毛细管整体柱活化;
(2)上样:将待测样品溶液以10~100μL/min通入亲和毛细管整体柱内;
(3)清洗:待样品全部流经亲和毛细管整体柱后,用10~20 mmol/L Tris-HCl缓冲液将柱内残留和未被特异性捕获的黄曲霉毒素B1淋洗下来;
(4)洗脱:用含有40~60%甲醇的Tris-HCl 缓冲溶液将被亲和毛细管整体柱捕获的黄曲霉毒素B1洗脱。
本发明的黄曲霉毒素B1适配体亲和毛细管整体柱,将氨基修饰的黄曲霉毒素B1适配体通过戊二醛偶联接枝修饰于有机-无机杂化的氨基毛细管整体柱,通过适配体与黄曲霉毒素B1特异性亲和作用,有机-无机杂化整体柱高的柱渗透性和大的比表面积,可以高灵敏、高选择性地分离、富集复杂食品样品中痕量、超痕量黄曲霉毒素B1,与检测仪器联用可实现黄曲霉毒素B1简便、灵敏、快速检测。
附图说明
图1本发明实施例1适配体亲和毛细管整体柱的扫描电子显微镜图;
图2本发明实施例4整体柱净化后的色谱图。
具体实施方式
本发明在有机-无机杂化毛细管整体柱的表面修饰并结合黄曲霉毒素B1适配体,然后用这种毛细管整体柱去分离富集黄曲霉毒素B1。以下实施例仅作为本发明内容的进一步说明,其中的实验条件和设定参数不应视为本发明基本技术方案的局限。
实施例1 黄曲霉毒素B1适配体亲和毛细管整体柱的制备
(1)毛细管活化:用于制备整体柱的石英毛细管内径为530μm,外径为690μm。分别用1.0mol/L氢氧化钠溶液冲洗毛细管4h,去离子水冲洗30min,1.0mol/L盐酸溶液冲洗4h,然后再以去离子水洗至中性,在160℃下用氮气吹干。
(2)整体柱的原位合成:首先将25mg CTAB溶于225μL无水乙醇和100μL去离子水的混合溶液中。然后将150μL TEOS和80μL APTES快速加入上述混合溶液中。室温涡旋30s,然后放置在0℃的冰水浴中超声30s后,将混合溶液灌入上述活化处理过的毛细管中。最后,毛细管两端以硅橡胶封口,放置于40℃烘箱中反应20h。
(3)整体柱的清洗:反应完成后,以甲醇和去离子水充分清洗毛细管,以除去未反应的硅烷试剂和模板剂CTAB。
(4)戊二醛衍生:配制含10%戊二醛的100mmol/L磷酸缓冲溶液(pH 8.0),将该溶液以5μL/min的速率通入毛细管,连续反应12小时,然后用磷酸缓冲溶液冲洗掉残留的戊二醛。
(5)适配体修饰:将黄曲霉毒素B1适配体溶于100mmol/L磷酸缓冲溶液,配制成5nmol/L的适配体溶液,然后以5μL/min速率通入毛细管,在4℃下反应8h,重复三次,用磷酸缓冲溶液冲洗掉未反应的适配体。最后用5mg/mL氰基硼氢化钠溶液以5μL/min冲洗整体柱6h,将制得的整体柱截取5cm的长度用于之后的固相微萃取操作。
上述步骤中,黄曲霉毒素B1适配体的来源于实验室合成,其碱基序列为:
5’-AGCAGCACAGAGGTCAGATGGTGCTATCATGCGCTCAATGGGAGACTTTAGCTG
CCCCCACCTATGCGTGCTACCGTGAA-3’,其中5'端通过C6间隔臂被-NH2修饰。
实施例2
首先采用与实施例1相同的步骤进行毛细管活化处理。然后,将10mg CTAB溶于150μL无水乙醇和50μL去离子水的混合溶液中,然后将100μL TEOS和50 μL APTES快速加入上述混合溶液中。室温涡旋5min,然后放置在-5℃的冰水浴中超声5min后,将混合溶液灌入上述活化处理过的毛细管中。毛细管两端以硅橡胶封口,放置于30℃烘箱中反应10h。反应完成后,以甲醇和去离子水充分清洗毛细管。
配制含5%戊二醛的磷酸缓冲溶液,将该溶液以10μL/min的速率通入毛细管,连续反应。在适配体修饰过程中,将黄曲霉毒素B1适配体制成浓度为4nmol/L的磷酸缓冲溶液,然后以5μL/min速率通入毛细管,在4℃下反应12h,重复三次,用磷酸缓冲溶液冲洗掉未反应的适配体。最后用3mg/mL氰基硼氢化钠溶液以5μL/min冲洗整体柱6h,将制得的整体柱截取5cm的长度用于之后的固相微萃取操作。
实施例3
首先采用与实施例1相同的步骤进行毛细管活化处理。然后,将30mg CTAB溶于350μL无水乙醇和150μL去离子水的混合溶液中,然后将200μL TEOS和100 μL APTES快速加入上述混合溶液中。室温涡旋2min,然后放置在5℃的水浴中超声2min后,将混合溶液灌入上述活化处理过的毛细管中。毛细管两端以硅橡胶封口,放置于60℃烘箱中反应30h。反应完成后,以甲醇和去离子水充分清洗毛细管。
配制含20%戊二醛的磷酸缓冲溶液,将该溶液以20μL/min的速率通入毛细管,连续反应。在适配体修饰过程中,将黄曲霉毒素B1适配体制成浓度为8nmol/L的磷酸缓冲溶液,然后以5μL/min速率通入毛细管,在4℃下反应10h,重复三次,用磷酸缓冲溶液冲洗掉未反应的适配体。最后用8mg/mL氰基硼氢化钠溶液以5μL/min冲洗整体柱6h,将制得的整体柱截取5cm的长度用于之后的固相微萃取操作。
实施例4 黄曲霉毒素B1适配体亲和毛细管整体柱的应用
(1)活化:用100μL 10mmol/L Tris-HCl平衡实施例1制备得到的亲和整体柱,将亲和整体柱活化。
(2)上样:将500 μL样品溶液以10 μL/min的速率通入整体柱内。
(3)清洗:待样品全部流经亲和柱后用50μL 10mmol/L Tris-HCl(pH=7.5)缓冲液将柱内残留和未被特异性捕获的黄曲霉毒素B1淋洗下来;
(4)洗脱:以20 μL/min的速率,用含有40%甲醇的Tris-HCl溶液,将被亲和柱捕获的黄曲霉毒素B1洗脱。
(5)上机检测:采用高效液相色谱柱后衍生荧光检测洗脱液中的黄曲霉毒素B1。色谱柱为C18反相色谱柱,检测所采用的激发波长和发射波长分别为365 nm和440 nm。小麦加标样品色谱分离图如附图2所示,其中横坐标是保留时间,纵坐标是荧光强度。提取液加标量5μg/L浓度水平时,回收率为83.1~92.3%。
实施例5
采用与实施例4相同的步骤,对待测样品中的黄曲霉毒素B1进行分离与富集,其不同点在于:其中采用20mmol/L 的Tris-HCl缓冲液,上样速率为100 μL/min,并用含60%甲醇的Tris-HCl溶液进行洗脱处理。
本发明并不局限于上述实施方式,如果对本发明的改动或变型不脱离本发明的精神和范围,倘若这些改动和变型属于本发明的权利要求和等同技术范围之内,则本发明也意图包含这些改动和变型。
Claims (6)
1.一种黄曲霉毒素B1适配体亲和毛细管整体柱的制备方法,其特征在于,包括如下步骤:
(1)毛细管活化:分别用1.0mol/L氢氧化钠溶液冲洗毛细管4h,去离子水冲洗30min,1.0mol/L盐酸溶液冲洗4h,然后再以去离子水洗至中性,在160℃下用氮气吹干;
(2)整体柱的原位合成:首先将10~30mg CTAB溶于150~350μL无水乙醇和50~150μL去离子水的混合溶液中;然后将100~200μL TEOS和50~100μL APTES快速加入上述混合溶液中,室温涡旋0.5~5min,然后放置在-5~5℃的水浴中超声0.5~5min后,将混合溶液灌入上述活化处理过的毛细管中;最后,毛细管两端以硅橡胶封口,放置于30~60℃烘箱中反应10~30h;
(3)整体柱的清洗:反应完成后,以甲醇和水充分清洗毛细管;
(4)戊二醛衍生:将含有5~20%戊二醛的磷酸缓冲溶液以5~20μL/min速率通入毛细管整体柱中,连续反应12h,然后用磷酸缓冲溶液冲洗掉残留的戊二醛;
(5)修饰适配体:将黄曲霉毒素B1适配体制成浓度为4~8nmol/L的磷酸缓冲溶液,注入毛细管整体柱中反应8~12h,重复三次,用磷酸缓冲溶液冲洗掉未反应的适配体;最后用3~8mg/ml氰基硼氢化钠冲洗整体柱6h,将制得的毛细管整体柱截取5 cm的长度用于之后的固相微萃取操作。
2.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述步骤(1)中,用于制备整体柱的石英毛细管内径为530μm,外径为690μm。
3.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述步骤(2)中,将25mg CTAB溶于225μL无水乙醇和100μL去离子水的混合溶液中,然后将150μL TEOS和80μL APTES快速加入上述混合溶液中。
4.一种权利要求1-3任一项所述方法制备得到的毛细管整体柱。
5.一种权利要求4所述毛细管整体柱在分离富集黄曲霉毒素B1中的应用。
6.根据权利要求5所述的毛细管整体柱的应用方法,其特征在于,步骤如下:
(1)毛细管活化:用10~20 mmol/L Tris-HCl缓冲溶液平衡亲和毛细管整体柱,将亲和毛细管整体柱活化;
(2)上样:将待测样品溶液以10~100μL/min通入亲和毛细管整体柱内;
(3)清洗:待样品全部流经亲和毛细管整体柱后,用10~20 mmol/L Tris-HCl缓冲液将柱内残留和未被特异性捕获的黄曲霉毒素B1淋洗下来;
(4)洗脱:用含有40~60%甲醇的Tris-HCl 缓冲溶液将被亲和毛细管整体柱捕获的黄曲霉毒素B1洗脱。
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