一种基于发卡错配循环放大技术检测DNA的方法
技术领域
本发明属于分析化学领域,具体涉及一种基于发卡错配循环放大技术检测DNA的方法。
背景技术
虽然催化发卡自组装技术有很多优点,但是发卡结构在正常情况下会自己打开发卡结构,即使没有引发链存在时也会形成发卡自组装,即非特定性自组装,这样就会造成背景信号过高,所以本申请在发卡结构上引入错配碱基,以降低实验的背景信号,提高信噪比。本申请以磁珠为载体固定捕获DNA,通过错配催化发卡自组装技术并通过羟胺-O-磺酸作为氧化剂催化LumAuNPs产生化学发光的方法,对DNA进行了检测。方法具有灵敏度高、选择性好的特点。
发明内容
本发明旨在发明一种方法简单、灵敏度高的测定DNA的方法。
鉴于现有技术的不足,本发明的目的在于提供一种基于发卡错配循环放大技术检测DNA的方法。
实现本发明目的技术方案是:
一种基于发卡错配循环放大技术检测DNA的方法。其原理是以鲁米诺还原氯金酸,得到鲁米诺胶体金纳米粒子LumAuNPs,以探针DNA修饰LumAuNPs,得化学发光探针;然后以磁珠为载体固定发卡结构的捕获DNA,在目标物DNA存在时,捕获DNA的发卡结构被打开,并在化学发光探针上的探针DNA的杂交作用下,通过催化发卡自组装技术将化学发光探针连接在磁珠表面;经过磁分离后,再加入羟胺-O-磺酸,以LumAuNPs—羟胺-O-磺酸为化学发光体系,进行化学发光测定,根据产生的化学发光实现目标DNA的测定。LumAuNPs—羟胺-O-磺酸为化学发光体系,提高了检测信号强度;在探针DNA引入两个错配碱基降低了背景信号,提高了测定灵敏度。
本发明是通过以下措施来实现的:一种基于发卡错配循环放大技术检测DNA的方法,其特征是包括以下步骤:
(1)鲁米诺胶体金纳米粒子的制备;
(2)捕获DNA修饰磁珠的制备;
(3)探针DNA修饰LumAuNPs的制备;
(4)目标DNA的检测。
优选的,所述的鲁米诺胶体金纳米粒子的制备包括以下步骤:
实验开始前,将所用的玻璃仪器用HNO3/HCl(3:1,v/v)的王水浸泡24h后,用二次蒸馏水冲洗,放入烘箱烘干。取一定量的1%的氯金酸溶液加去离子水稀释成0.02%的氯金酸溶液并置于三口烧瓶中,在磁力搅拌下加热回流煮沸;待溶液沸腾后,快速加入0.01mL~5mL 0.01M的鲁米诺溶液,继续加热煮沸,溶液的颜色由浅黄色变为黑色,最后变成酒红色,40min后停止加热,并在继续搅拌下冷却至室温,得鲁米诺胶体金纳米粒子,即LumAuNPs,将制得的LumAuNPs转移到棕色广口瓶中,4℃下保存备用。
优选的,所述的捕获DNA修饰磁珠的制备包括以下步骤:
取10μL~100μL羧基化磁珠溶液放入1.5mL离心管中,用10μL~200μL浓度为0.1M咪唑缓冲液洗涤三次,然后分散到0.01mL~2mL含有0.1M EDC和0.05M NHS的0.1M咪唑缓冲液中,在37℃条件下,振荡反应30min;然后向离心管中加入10μL~200μL浓度为5.0×10-8M捕获DNA,在37℃条件下振荡过夜,得到捕获DNA修饰磁珠,然后再用2.0mL 0.1M PBS缓冲溶液清洗三次,最后分散到2.0mL PBS缓冲溶液中,4℃保存。
优选的,所述的探针DNA修饰LumAuNPs的制备包括以下步骤:
将1μL~20μL的TCEP加到10μL~200μL浓度为1.0×10-6M的探针DNA溶液中,37℃振荡活化1小时,再取100μL~1000μL合成好的LumAuNPs加入到该溶液中,在37℃条件下震荡过夜,然后再加入10μL~200μL含0.3M NaCl pH 8.2的10mM Tris-HCl缓冲液;继续震荡48h后,在12000rpm的条件下离心30min后,将红色沉淀用1mL pH 7.4的0.1M PBS缓冲溶液清洗,再次离心,如此重复三次,得探针DNA修饰LumAuNPs,即化学发光探针。最后得到的化学发光探针分散到1000μL pH 7.4的0.1M PBS缓冲溶液中,4℃保存备用。
优选的,所述的目标DNA的检测包括以下步骤:
取10μL~200μL捕获DNA修饰磁珠溶液置于离心管中,然后取10μL~100μL含目标DNA的溶液加入到离心管中,37℃震荡反应40min,然后再加入10μL~100μL探针DNA修饰LumAuNPs溶液,37℃条件下震荡反应40min,通过目标DNA与捕获DNA的作用以及探针DNA与目标DNA和捕获DNA的作用,化学发光探针连接在磁珠表面;经过磁分离后,将磁性分离物分散在50μL pH 7.4的0.1M PBS缓冲溶液中,然后再加入羟胺-O-磺酸溶液,产生化学发光,根据化学发光强度定量,实现目标DNA的测定。
所述的DNA序列为:
捕获DNA:5’-NH2-CCCGGTAGTTATTCAAAGATGAGT CTA CCG GGT TTA ATC CAC TCATCT TTG AAT AA-3’;
目标DNA:5’-ACTCATCTTTGAATAACTACCGGG-3’;
探针DNA:5’-AGA TGA GTG GAT TAA ACC CGG TAG ACT CAT CTT TGA ATA TGTACC GGG TTT AAT CCCACGAGATACTGTTCC-SH-3’。
本发明研究了不同浓度目标DNA与化学发光强度之间的关系,得到了检测目标DNA的标准曲线,线性范围及线性方程。
发明的优点与效果
当目标DNA的浓度在2.5fM到1pM之间时,随着目标DNA浓度的变化,化学发光强度有明显变化。经计算得到检测目标DNA的非线性方程为y=6244.26656+420.50459*x(y:化学发光强度;x:目标DNA浓度的对数,单位为M),线性相关系数为0.9974,检出限为0.8fM(3σ)(图2)。该测定方法的精密度通过对浓度为100fM的目标DNA进行11次平行测定而计算得出,相对标准偏差分别为3.4%,表明本测定方法有较好的重现性。
另外,利用LumAuNPs-H2O2为检测体系,在其他步骤相同时,按本发明的方法对目标DNA进行检测,测定的检出限为100fM。表明本发明提出的一种基于发卡错配循环放大技术检测DNA的方法具有高的灵敏度。
无目标物时,探针DNA和捕获DNA杂交效率低,空白信号,即背景信号低,从而有利于低浓度目标物测定,故灵敏度得到了提高。这无目标物时种杂交效率低归因于错配碱基的存在;当探针DNA中碱基和捕获DNA碱基无错配时,无目标物时,探针DNA和捕获DNA也会杂交,并且杂交效率较高,空白信号,即背景信号高,不利于低浓度目标物测定,故灵敏度低。
附图说明
图1检测目标DNA的原理示意图。探针DNA粗线为错配碱基。
图2目标DNA的浓度与化学发光强度关系图。
具体实施方式
下面的实例将进一步说明本发明的操作方法,但不构成对发明的进一步限制。
实例1:一种基于发卡错配循环放大技术检测DNA的方法
1.实验部分
1.1仪器与试剂
1.1.1仪器设备
DHG鼓风干燥箱(善志仪器设备有限公司,上海);AR224CN型奥豪斯分析天平(青岛中和恒信电子有限公司,青岛);THZ型恒温振荡箱(佳源兴业科技有限公司,北京);RFL-1型超微弱化学发光检测仪(瑞迈分析仪器有限公司,西安);Anke-TGL-16C飞翁牌高速离心机(安亭科学仪器厂,上海)。
1.1.2试剂
1-(3-二甲氨基丙基)-3-乙基碳二亚胺盐酸盐(EDC)、N-羟基丁二酰亚胺(NHS)、氯金酸(HAuCl4)从Sigma公司购买;粒径为0.5μm,浓度为10mg/mL的羧基磁珠从天津倍思乐色谱技术开发中心购买;鲁米诺(Luminol)、羟胺-O-磺酸(HOSA)和TCEP(三(2-羧乙基)膦盐酸盐)购买于Aladdin公司;0.01M的鲁米诺用0.1M NaOH溶解,在棕色瓶中保存在4℃冰箱中;取1g氯金酸加100mL水配成1%的氯金酸溶液,用棕色瓶保存,使用前用二次蒸馏水稀释。
PBS缓冲溶液是0.10M,pH 7.4,其配制方法是称取0.1g KH2PO4、4.0g NaCl、1.45gNa2HPO4·12H2O及0.1g KCl溶解于1L水中,即得。
所用到的单链DNA和发卡DNA(由上海生工生物工程有限公司合成)的序列如下:
捕获DNA:5’-NH2-CCCGGTAGTTATTCAAAGATGAGT CTA CCG GGT TTA ATC CAC TCATCT TTG AAT AA-3’;
目标DNA:5’-ACTCATCTTTGAATAACTACCGGG-3’;
探针DNA:5’-AGA TGA GTG GAT TAA ACC CGG TAG ACT CAT CTT TGA ATA TGTACC GGG TTT AAT CCCACGAGATACTGTTCC-SH-3’。
发卡结构的DNA进行孵育处理后再使用。
1.2 LumAuNPs的合成
实验开始前,所用的玻璃仪器均用HNO3/HCl(3:1,v/v)的王水浸泡24h后,用二次蒸馏水冲洗,放入烘箱烘干。取100μL1%的氯金酸溶液加去离子水稀释成50mL 0.02%的氯金酸溶液并置于三口烧瓶中,在三口烧瓶中加磁子,并将其放入磁力搅拌器中,磁力搅拌下加热回流煮沸。待溶液沸腾后,快速加入1mL 0.01M的鲁米诺溶液,继续加热煮沸40min,溶液的颜色由浅黄色变为黑色,最后变成酒红色,40min后停止加热并在继续搅拌下冷却至室温。将制得的LumAuNPs转移到棕色广口瓶中,4℃下保存备用。
1.3捕获DNA修饰磁珠的制备
取50μL羧基化磁珠溶液放入1.5mL离心管中,用100μL浓度为0.1M咪唑缓冲液洗涤三次,然后分散到1mL含有0.1M EDC和0.05M NHS的0.1M咪唑缓冲液中,在37℃条件下,振荡反应30min;然后在离心管中加入100μL浓度为5.0×10-8M捕获DNA,在37℃条件下振荡过夜,得到捕获DNA修饰的磁珠,然后再用2.0mL 0.1M PBS缓冲溶液清洗三次,最后分散到2.0mLPBS缓冲溶液中,4℃保存。
1.4探针DNA修饰LumAuNPs的制备
将5μL的TCEP加到100μL浓度为1.0×10-6M的探针DNA溶液中,37℃振荡活化1小时,再取600μL合成好的LumAuNPs加入到该溶液中,在37℃条件下震荡过夜,然后再加入50μL含0.3M NaCl pH 8.2的10mM Tris-HCl缓冲液;继续震荡48h后,在12000rpm的条件下离心30min后,将红色沉淀用1mL pH 7.4的0.1M PBS缓冲溶液清洗,再次离心,如此重复三次,得探针DNA修饰LumAuNPs,即化学发光探针。最后得到的化学发光探针分散到1000μL pH 7.4的0.1M PBS缓冲溶液中,4℃保存备用。
1.5目标DNA的检测
取50μL捕获DNA修饰磁珠溶液置于离心管中,然后再取50μL含目标DNA的溶液加入到离心管中,37℃震荡反应40min,然后再加入50μL探针DNA修饰LumAuNPs溶液,37℃条件下震荡反应40min,通过目标DNA与捕获DNA的作用以及探针DNA与目标DNA和捕获DNA的作用,化学发光探针连接在磁珠表面;经过磁分离后,将磁性分离物分散在50μL pH 7.4的0.1MPBS缓冲溶液中,然后再加入羟胺-O-磺酸溶液,产生化学发光。根据标准溶液浓度和化学发光强度关系作图得标准曲线。
实例2:样品分析
将含目标DNA的样品溶液按步骤实例1中步骤1.5方法进行实验,根据化学发光强度和所得标准曲线可以获取目标DNA含量。
根据发明的方法对目标DNA含量进行了测定,并采用标准加入法对方法进行了评价,样品测定回收率为97.3–101.0%,测定结果见表1,本发明的方法在目标DNA检测中具有精密度高的特点。
表1.样品分析测定结果
编号 |
含量<sup>a,b</sup> |
标准加入量 |
测得量 |
回收率 |
1 |
12.52 |
10.0 |
22.48 |
99.6% |
2 |
9.80 |
10.00 |
19.53 |
97.3% |
3 |
5.12 |
5.00 |
10.17 |
101.0% |
a7次测量结果
b单位:fM。
SEQUENCE LISTING
<110> 青岛科技大学
<120> 一种基于发卡错配循环放大技术检测DNA的方法
<160> 3
<170> PatentIn version 3.3
<210> 1
<211> 56
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 1
CCCGGTAGTT ATTCAAAGAT GAGTCTACCG GGTTTAATCC ACTCATCTTT GAATAA 56
<210> 2
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工系列
<400> 2
ACTCATCTTT GAATAACTAC CGGG 24
<210> 3
<211> 72
<212> DNA
<213> 人工系列
<400> 3
AGATGAGTGG ATTAAACCCG GTAGACTCAT CTTTGAATAT GTACCGGGTT TAATCCCACGAGATACTGTT CC 72