CN106521021A - 一种用于鉴定水稻粒宽和粒重gs5基因的单倍体型的基因标记及应用 - Google Patents

一种用于鉴定水稻粒宽和粒重gs5基因的单倍体型的基因标记及应用 Download PDF

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Abstract

本发明提供了一种用于鉴定水稻粒宽和粒重GS5基因的单倍体型的基因标记:包括正向引物与反向引物,以鉴定三种GS5单倍体型:明恢63型、珍汕97型或中花11型。本发明还提供了上述鉴定水稻粒宽和粒重GS5基因单倍体型的方法,包括将用上述引物组对水稻基因组DNA进行PCR扩增;对获得的PCR产物,以限制性内切酶Stu I和/或限制性内切酶Nco I进行酶切电泳,以鉴定GS5基因的单倍体型。本发明所获得的基因标记为基因自身标记,不需要作表型鉴定;实验重复性好,结果可靠,能够准确、高效地选择GS5基因座位相应的单倍体型,为水稻分子标记辅助育种提供了重要的工具。

Description

一种用于鉴定水稻粒宽和粒重GS5基因的单倍体型的基因标 记及应用
技术领域
本发明属于生物技术领域,具体涉及一种用于鉴定水稻粒宽和粒重GS5基因的单倍体型的基因标记及应用。
背景技术
粒重是决定水稻产量的要素之一,它由水稻谷粒大小决定,该性状又可以分解为粒长、粒宽和粒厚,与粒长相关的基因/QTL如GS3、GL3、GL7(Fan等,2006;Zhang等,2012;Qi等,2012;Wang等,2015),与粒宽相关的GW2、qSW5/GW5、GW8/OsSPL16)(Song等,2007;Shomura,等2008;Weng等,2008;Li等,2011;Wang等,2012),与灌浆相关的GIF1和TGW6(Wang等,2008;Ishimaru等,2013),以及调控谷粒大小/粒重的GS2(Hu等,2015;Duan等,2015;Chen等,2015)等相继被克隆。这些粒型形成相关基因的克隆和功能分析,为粒型分子设计育种提供了基因资源。
Li等(2011)报道的GS5控制粒宽和粒重,该基因编码一个丝氨酸羧肽酶,正调控籽粒大小,其较高的表达水平可能参与促进细胞周期循环,加快细胞循环进程,从而促进水稻颖壳细胞的横向分裂,增大颖壳的宽度,继而加快谷粒的充实和胚乳的生长速度,最终种子变大、粒重及单株产量提高。重组单株测序、qRT-PCR以及遗传转化实验都表明,GS5影响粒宽是由启动子的序列变异造成的。对GS5启动子区域测序发现,栽培品种序列分为三种单倍体型:H94或明恢63型(窄粒)、珍汕97型(中间型)和中花11型(宽粒),每种单倍体型内的品种序列完全相同。然而目前还没有关于GS5基因辅助选择育种的功能分子标记,目前缺少通过对GS5基因的功能研究和序列变异进行分析从而确定GS5基因标记、以及GS5基因单倍体型的研究。
发明内容
有鉴于此,本发明首先提供了用于鉴定水稻粒宽和粒重GS5基因的单倍体型的基因标记及应用,以在分子标记辅助选择育种中提高选育效率,即本发明的第一目的在于提供一种用于鉴定水稻粒宽和粒重GS5基因单倍体型的基因标记(下称CAPS标记或“GS5-M1”),所述基因标记为以下引物组:
正向引物(5′-3′)CTCTTGCTAACTTTCCTCCA
反向引物(5′-3′)AGTTTCCTTTTCCACACACT。
优选地,本发明所述水稻粒宽和粒重GS5基因单倍体型为明恢63型、珍汕97型或中花11型。
优选地,本发明所述的明恢63型、珍汕97型或中花11型被标记的DNA序列分别为SEQ ID NO3、SEQ ID NO4或SEQ ID NO5的DNA序列;更优选地,本发明所述的明恢63型、珍汕97型或中花11型被扩增的DNA序列分别为SEQ ID NO6、SEQ ID NO7或SEQ ID NO8的DNA序列。其中,SEQ ID NO3~SEQ ID NO8分别为:
SEQ ID NO 3:单倍体型明恢63型被标记的DNA序列;
SEQ ID NO 4:单倍体型珍汕97型被标记的DNA序列;
SEQ ID NO 5:单倍体型中花11型被标记的DNA序列;
SEQ ID NO 6:单倍体型明恢63型被扩增的DNA序列;
SEQ ID NO 7:单倍体型珍汕97型被扩增的DNA序列;
SEQ ID NO 8:单倍体型中花11型被扩增的DNA序列。
本发明还提供了一种用于鉴定水稻粒宽和粒重GS5基因单倍体型的PCR试剂组,优选地,所述PCR试剂组包括上述引物组、dNTP、DNA聚合酶和PCR缓冲液。
本发明还提供了上述用于鉴定水稻粒宽和粒重GS5基因单倍体型的试剂盒,优选地。本发明所述试剂盒包括上述GS5-M1基因标记或包括上述PCR试剂组。
本发明的另一目的在于提供一种鉴定水稻粒宽和粒重GS5基因单倍体型的方法,包括如下步骤:
1)、以上述引物组(GS5-M1基因标记),对水稻基因组DNA进行PCR扩增;
2)、将步骤1)获得的PCR产物,限制性内切酶Stu I和/或限制性内切酶Nco I进行酶切电泳,以鉴定GS5基因的单倍体型。
优选地,本发明所述步骤1)中的PCR扩增的条件为:
1)94℃预变性5min;2)94℃变性30s,55℃退火30s,72℃延伸45s,扩增32个循环;3)72℃延伸5min,16℃保温。
优选地,本发明所述步骤2)使用限制性内切酶Stu I酶切电泳后,获得电泳条带大小为456bp的水稻单倍体型为中花11型;获得93bp和363bp两个条带,分别为明恢63型和珍汕97型;优选地,所述步骤2)使用限制性内切酶Nco I酶切电泳后,获得电泳条带大小为456bp的水稻单倍体型为明恢63和中花11型;获得184bp和272bp两条片段为珍汕97型。
因此,本发明提供了上述基因标记在鉴定水稻粒宽和粒重GS5基因单倍体型以及水稻分子标记辅助育种中的应用。
通过本发明的技术方案以及后续实施例所示,本发明的用于鉴定水稻粒宽和粒重GS5基因的单倍体型的基因标记至少具有以下优点:
1)本发明所获得的基因标记是根据GS5基因造成表型变异的启动子的碱基差异设计的,为基因自身标记,在标记辅助选择育种中不需要作表型鉴定。
2)本发明的标记为共显性标记,可鉴别GS5基因座位不同单倍体型的杂合体和纯合体,实验重复性好,结果可靠。
3)利用本发明的标记进行辅助选择育种,不仅节约成本,而且能够准确、高效地选择GS5基因座位相应的单倍体型。
附图说明
图1为GS5基因的三种单倍体型明恢63型(MH63)、珍汕97型(ZS97)和中花11型(ZH11)被标记的部分启动子序列比较图;
图2为标记基因GS5-M1对24个水稻品种基因组DNA扩增的PCR产物利用Stu I酶切的电泳检测结果图;
图3为标记基因GS5-M1对24个水稻品种基因组DNA扩增的PCR产物利用Nco I酶切的电泳检测结果图。
具体实施方式
在本发明的实施例中,提供了一种用于鉴定水稻粒宽和粒重GS5基因单倍体型的基因标记,包括以下引物组:
正向引物(5′-3′)CTCTTGCTAACTTTCCTCCA——序列表中SEQ ID NO1;以及
反向引物(5′-3′)AGTTTCCTTTTCCACACACT——序列表中SEQ ID NO2。
在本发明的实施例中,所述水稻粒宽和粒重GS5基因单倍体型为明恢63型、珍汕97型或中花11型。
在本发明的一个实施例中,所述的明恢63型、珍汕97型或中花11型被标记的DNA序列分别为SEQ ID NO3、SEQ ID NO4或SEQ ID NO5的DNA序列;在本发明另一个优选的实施例中,所述的明恢63型、珍汕97型或中花11型被扩增的DNA序列分别为SEQ ID NO6、SEQ IDNO7或SEQ ID NO8的DNA序列。
其中,SEQ ID NO3~SEQ ID NO8分别为序列表中以下序列:
SEQ ID NO3:单倍体型明恢63型被标记的DNA序列;
SEQ ID NO4:单倍体型珍汕97型被标记的DNA序列;
SEQ ID NO5:单倍体型中花11型被标记的DNA序列;
SEQ ID NO6:单倍体型明恢63型被扩增的DNA序列;
SEQ ID NO7:单倍体型珍汕97型被扩增的DNA序列;
SEQ ID NO8:单倍体型中花11型被扩增的DNA序列。
在本发明的一个实施例中,本发明还提供了一种用于鉴定水稻粒宽和粒重GS5基因单倍体型的PCR试剂组;在本发明的另一个实施例中,所述PCR试剂组包括上述正反向引物组、dNTP、DNA聚合酶和PCR缓冲液。
在本发明的一个实施例中,所述PCR缓冲液采用10μL反应体系:模板DNA 1.0μL,10×PCR Buffer 1.0μL,25mM的MgCl2 1.0μL,2mM的dNTP 1.0μL,0.3μM的引物1.0μL,Taq酶0.2U,加ddH2O补至10μL。
在本发明的另一个实施例中,PCR反应后的酶切反应分别体系为:Stu I0.5μL,10×M Buffer 2μL,加ddH2O补至20μL;Nco I 0.5μL,10×K Buffer 2μL,BSA 2μL,加ddH2O补至20μL。反应条件为:37℃温浴(水浴或空气浴)1个小时。
在本发明的一个实施例中,还提供了上述用于鉴定水稻粒宽和粒重GS5基因单倍体型的试剂盒;在本发明的又一个实施例中,本发明所述试剂盒包括上述引物组或包括上述PCR试剂组。
在本发明的一个实施例中,提供了一种鉴定水稻粒宽和粒重GS5基因单倍体型的方法,包括如下步骤:
1)、以上述引物组(GS5-M1基因标记),对水稻基因组DNA进行PCR扩增;
2)、将步骤1)获得的PCR产物,限制性内切酶Stu I和/或限制性内切酶Nco I进行酶切电泳,以鉴定GS5基因的单倍体型。
在本发明的一个实施例中,本发明所述步骤1)中的PCR扩增的条件为:1)94℃预变性5min;2)94℃变性30s,55℃退火30s,72℃延伸45s,扩增32个循环;3)72℃延伸5min,16℃保温。
在本发明的再一个实施例中,本发明所述步骤2)使用限制性内切酶Stu I酶切电泳后,获得电泳条带大小为456bp的水稻单倍体型为中花11型;获得93bp和363bp两个条带,分别为明恢63型和珍汕97型;优选地,所述步骤2)使用限制性内切酶Nco I酶切电泳后,获得电泳条带大小为456bp的水稻单倍体型为明恢63和中花11型;获得184bp和272bp两条片段为珍汕97型。因此,利用Stu I对GS5-M1标记的PCR扩增产物进行酶切电泳,可以准确鉴定出宽粒中花11型品种;利用Nco I对PCR产物进行酶切电泳,可以鉴定出中宽珍汕97型品种,结合二者检测结果可以鉴定出窄粒明恢63型品种。
以下通过具体实施例进一步对本发明的技术方案进行说明,应理解以下仅为本发明的示例性说明,并不用于限制本发明权利要求的保护范围。
实施例1 24种水稻的GS5基因型分析
1、供试材料
三种水稻单倍体型GS5基因单倍体型(窄粒明恢63型、中宽珍汕97型和宽粒中花11型)分别选择如下表1所示的水稻品种,并按如下方法测定粒宽。
表1 24种水稻品种的单倍体型及粒宽
2、粒宽测定
每份材料随机取10粒饱满的谷粒,将它们肩并肩排列,不重叠、不留隙紧靠摆成一行,用游标卡尺读数,求其平均值即为粒宽(mm)。参见上表1。
3、DNA提取
在苗期取上述水稻叶片,基因组DNA的提取参照Scott等(1988)的CTAB法,改进如下:
1)取约0.1g叶片,置于2.0mL离心管中,加入1粒钢珠及500μL 2×CTAB DNA提取液(20g CTAB,12.1g Tris-Base,7.44g EDTA-Na,81.9g NaCl,溶解于1L蒸馏水中),使用组织研磨仪打碎叶片,65℃温浴30min,期间振动混匀数次;
2)从水浴中取出离心管,加入约500μL氯仿(CHCl3),充分震荡混匀,在10000rpm下离心5min;
3)转移上清液至新的1.5mL的离心管中,加入上清体积0.7~1倍的异丙醇,将离心管轻微混匀后于-20℃冰箱中放置半小时后,10000rpm离心5min;
4)弃上清液,管底的乳白色沉淀用70%的酒精洗涤两次。将离心管中的酒精倒出后,倒置于干净的吸水纸上自然晾干;
5)晾干后的DNA加双蒸水溶解,调节最终浓度为100~1000ng/μL,置于-20℃冰箱内保存备用。
4、基因标记的设计
如图1所示,发明人有选择地设计了三种水稻GS5基因单倍体型(窄粒明恢63型、中宽珍汕97型和宽粒中花11型)的CAPS基因标记GS5-M1(图1),其中,设计的正反引物序列如下:
正向引物(5′-3′)CTCTTGCTAACTTTCCTCCA
反向引物(5′-3′)AGTTTCCTTTTCCACACACT。
其中,灰色突出表示水稻窄粒明恢63型、中宽珍汕97型和宽粒中花11型之间的序列变异位置,基因标记GS5-M1的前后引物(即正向、反向引物)位置在图1中标明,Stu I和Nco I两处酶切识别位点也标注在相应的SNP位置上。
其中,如图1所示,SEQ ID NO 3~NO8所对应的DNA序列分别为:
SEQ ID NO3:单倍体型明恢63型(MH63)部分启动子DNA序列;
SEQ ID NO4:单倍体型珍汕97型(ZS97)部分启动子DNA序列;
SEQ ID NO5:单倍体型中花11型(ZH11)部分启动子DNA序列;
SEQ ID NO6:单倍体型明恢63型被扩增的DNA序列;
SEQ ID NO7:单倍体型珍汕97型被扩增的DNA序列;
SEQ ID NO8:单倍体型中花11型被扩增的DNA序列。
5、基因型分析
利用设计的基因标记GS5-M1(上述正反向引物组)对24份供试水稻品种进行基因型检测,首先通过设计的上述引物组进行PCR扩增,扩增产物进行酶切反应,酶切后的PCR产物进行凝胶电泳即可鉴定出三种基因型水稻。
PCR采用10μL反应体系:模板DNA 1.0μL,10×PCR Buffer 1.0μL,25mM的MgCl21.0μL,2mM的dNTP 1.0μL,0.3μM的引物1.0μL,Taq酶0.2U,加ddH2O补至10μL。
PCR扩增条件为:1)94℃预变性5min;2)94℃变性30s,55℃退火30s,72℃延伸45s,扩增32个循环;3)72℃延伸5min,16℃保温。
PCR结束后,取1μL产物进行酶切反应。酶切反应分别体系为:Stu I 0.5μL,10×MBuffer 2μL,加ddH2O补至20μL;Nco I 0.5μL,10×K Buffer 2μL,BSA2μL,加ddH2O补至20μL。反应条件为:37℃温浴(水浴或空气浴)1个小时。
酶切后的PCR产物在2%琼脂糖凝胶中电泳,经溴化乙锭染色后在凝胶成像仪上拍照。
PCR产物利用限制性内切酶Stu I进行酶切,所有14个籼稻品种能够被切开,扩增出93bp和363bp两个条带,所有10个粳稻品种都不能被切,电泳条带大小为456bp(图2)。如图2所示,M为DNA marker,1~24品种分别为明恢63、R402、R998、黄华占、Dular、Kasalath、珍汕97、龙特甫、广陆矮4号、桂朝2号、南京11号、特青、马尾占、IR8、中花11、日本晴、空育131、桂花黄、秀水09、郑稻5号、农垦57、苏御糯、辽粳287、武育粳3号。
PCR产物利用限制性内切酶Nco I进行酶切,籼稻珍汕97等8个品种能够被切开,扩增出184bp和272bp两条片段,籼稻明恢63等6个和中花11等10个粳稻品种不能被切,电泳条带大小为456bp(图3)。如图3所示,M为DNA marker,1~24品种分别为明恢63、R402、R998、黄华占、Dular、Kasalath、珍汕97、龙特甫、广陆矮4号、桂朝2号、南京11号、特青、马尾占、IR8、中花11、日本晴、空育131、桂花黄、秀水09、郑稻5号、农垦57、苏御糯、辽粳287、武育粳3号。
对这24个品种的粒宽进行烤种,结合基因型分析,发现利用Stu I对GS5-M1标记的PCR扩增产物进行酶切电泳,可以准确鉴定出宽粒中花11型品种;利用Nco I对PCR产物进行酶切电泳,可以鉴定出中宽珍汕97型品种,结合二者检测结果可以鉴定出窄粒明恢63型品种。
电泳谱带清晰、特异,表明利用该基因标记GS5-M1进行PCR扩增,随后对PCR产物用Stu I和Nco I两种限制性内切酶酶切后进行电泳检测,能够很好地区分GS5基因座上的三种等位基因型,可用于水稻GS5基因的标记辅助选择育种。
以上所述仅是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。
<110> 江西省农业科学院水稻研究所
<120> 一种用于鉴定水稻粒宽和粒重GS5基因的单倍体型的基因标记及应用
<160> 8
<170> PatentIn version 3.5
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<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 1
ctcttgctaa ctttcctcca 20
<210> 2
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 2
agtttccttt tccacacact 20
<210> 3
<211> 1205
<212> DNA
<213> 水稻
<400> 3
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atctctaatt tctaactccc atggaattac tagagaagcc aaactgactc taatgtcaat 900
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aacataatct cttttttttt tcttcaccat ggacgatgga tatatagata gatagatata 1020
tttatccgag tcctccaaga acaccaaacg agaagctcca agctcgcaat aattcaccaa 1080
gaatcgcacc acttttcacc ttttcttctc ctcctccatt tccatccatg gcgacgctgc 1140
tgctgctgct gcacacggcg caacagtgag ctatagctag agctcggcac cacgggttag 1200
ca 1202
<210> 5
<211> 1205
<212> DNA
<213> 水稻
<400> 5
ccaccctggt atacatgaca ctaaaagtag gcaaggaccc cacttgtcat acagtaaggg 60
ctcatttgaa tcgcaggaat gaaaaaacac aggattctga taggaataca attgtaaaac 120
agagaatttg taaaacacag gaaaaacaca ggaatggccg tttgattgga ccacagaaaa 180
aacataggaa tctgatggga gagatagata gactcagagg aaatgttcca agaggttaga 240
cctcttgcta actttcctcc aaaatatgca taagattacc cattccatag aaattttaaa 300
ggattggata ggattcaatc ctttgtttca aagaccttcg taggattttt ttttccatag 360
gattgaaatc ctccaaaatt cctacatttt ttctacaaat caaaggtgcc ataaatccac 420
cctggtatac atgacactga aagtatatat taattatatg atagcaatag attttctatc 480
gttttcttta caatgtcatg gaggttgaac tttcaactaa agtgatatta cctcgtcaaa 540
gaaaaagtga tatcacctcc atctcaaaat attgcaaccc ggatctggac agatatctag 600
atttattata gtaggaacaa attacatcct aaattacaat attttggaat ggaggaagta 660
ataagagtaa tttgaaagtg tgtggaaaag gaaactttag ctctttatgt gcggaacgca 720
gcctaactac ctaagtagac actacaggaa tattggcacg catgttcaaa aaataataaa 780
tatggtacct gtgaaaaaca gacttttaat agacaatgag agagataggt aactgagtca 840
tctctaattt ctaactccca tggaattact agagaagcca aacaaactgc ctctaatgtc 900
aatcagtttc gctttccatc cttctcatgc tgtcaattta tcagtcaatc acactacaaa 960
attaacataa tctctttttt ttttcttcac catggacgat ggatatatag atagatagat 1020
atatttatcc gagtcctcca agaacaccaa acgagaagct ccaagctcgc aataattcac 1080
caagaatcgc accacttttc accttttctt ctcctcctcc atttccatcc atggcgacgc 1140
tgctgctgct gctgcacacg gcgcaacagt gagctatagc tagagctcgg caccacgggt 1200
tagca 1205
<210> 6
<211> 429
<212> DNA
<213> 水稻
<400> 6
ctcttgctaa ctttcctcca aaatatgcat aagattaccc attccataga aattttaaag 60
gattggatag gattcaatcc ttcgtttcaa aggccttcgt aggatttttt tttccataga 120
attgaaatcc tccaaaattc ttacattttt tctacaaatc aaaggtgcca taaatccacc 180
ctggtataca tgacactgaa agtatatatt aattatatga tagcaataga ttttctatcg 240
ttttctttac aatgtcatgg aggttgaact ttcaactaaa gtgatattac ctcgtcaaag 300
aaaaagtgat atcacctcca tctcaaaata ttgcaacccg gatctggaca gatatctaga 360
tttattatag taggaacaaa ttacatccta aattacaata ttttggaatg gaggaagtaa 420
taagagtaa 429
<210> 7
<211> 430
<212> DNA
<213> 水稻
<400> 7
ctcttgctaa ctttcctcca aaatatgcat aagattaccc attccataga aattttaaag 60
gattggataa gattcaatcc ttcgtttcaa aggccttcgt aggatttttt ttttccatag 120
aattgaaatc ctccaaaatt cctacatttt ttctacaaat caaaggtgcc ataaatccac 180
catggtatac atgacactga aagtatatat taattatatg atagcaatag attttctatc 240
gttttcttta caatgtcatg gaggttgaac tttcaactaa agtgatatta cctcatcaaa 300
gaaaaagtga tatcacctcc atctcaaaat attgcaaccc ggatctggac agatatctag 360
atttattata gtaggaacaa attacatcct aaattacaat attttggaat ggaggaagta 420
ataagagtaa 430
<210> 8
<211> 429
<212> DNA
<213> 水稻
<400> 8
ctcttgctaa ctttcctcca aaatatgcat aagattaccc attccataga aattttaaag 60
gattggatag gattcaatcc tttgtttcaa agaccttcgt aggatttttt tttccatagg 120
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ctggtataca tgacactgaa agtatatatt aattatatga tagcaataga ttttctatcg 240
ttttctttac aatgtcatgg aggttgaact ttcaactaaa gtgatattac ctcgtcaaag 300
aaaaagtgat atcacctcca tctcaaaata ttgcaacccg gatctggaca gatatctaga 360
tttattatag taggaacaaa ttacatccta aattacaata ttttggaatg gaggaagtaa 420
taagagtaa 429

Claims (10)

1.一种用于鉴定水稻粒宽和粒重GS5基因单倍体型的基因标记,其特征在于,所述基因标记为以下引物组:
正向引物(5′-3′)CTCTTGCTAACTTTCCTCCA
反向引物(5′-3′)AGTTTCCTTTTCCACACACT。
2.根据权利要求1所述的基因标记,其特征在于,所述水稻粒宽和粒重GS5基因单倍体型为明恢63型、珍汕97型或中花11型。
3.根据权利要求2所述的基因标记,其特征在于,所述明恢63型、珍汕97型或中花11型中被标记的DNA序列分别为SEQ ID NO3、SEQ ID NO4或SEQ ID NO5的DNA序列。
4.根据权利要求2所述的基因标记,其特征在于,所述明恢63型、珍汕97型或中花11型被扩增的DNA序列分别为SEQ ID NO6、SEQ ID NO7或SEQ ID NO8的DNA序列。
5.一种用于鉴定水稻粒宽和粒重GS5基因单倍体型的PCR试剂组,其特征在于,所述PCR试剂组包括权利要求1所述的引物组、dNTP、DNA聚合酶和PCR缓冲液。
6.一种用于鉴定水稻粒宽和粒重GS5基因单倍体型的试剂盒,其特征在于,所述试剂盒包括权利要求1所述的基因标记或包括权利要求5所述的PCR试剂组。
7.一种鉴定水稻粒宽和粒重GS5基因单倍体型的方法,包括如下步骤:
1)、以权利要求1~4任一项所述的引物组,对水稻基因组DNA进行PCR扩增;
2)、将步骤1)获得的PCR产物,限制性内切酶Stu I和/或限制性内切酶Nco I进行酶切电泳,以鉴定GS5基因的单倍体型。
8.根据权利要求7所述的方法,其特征在于,所述步骤1)中的PCR扩增的条件为:
1)94℃预变性5min;2)94℃变性30s,55℃退火30s,72℃延伸45s,扩增32个循环;3)72℃延伸5min,16℃保温。
9.根据权利要求7所述的方法,其特征在于,所述步骤2)使用限制性内切酶Stu I酶切电泳后,获得电泳条带大小为456bp的水稻单倍体型为中花11型;获得93bp和363bp两个条带,分别为明恢63型和珍汕97型;优选地,所述步骤2)使用限制性内切酶Nco I酶切电泳后,获得电泳条带大小为456bp的水稻单倍体型为明恢63和中花11型;获得184bp和272bp两条片段为珍汕97型。
10.根据权利要求1所述的基因标记在鉴定水稻粒宽和粒重GS5基因单倍体型以及水稻分子标记辅助育种中的应用。
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