CN106324253A - 一种梅毒螺旋体抗体测定试剂盒及其检测方法 - Google Patents

一种梅毒螺旋体抗体测定试剂盒及其检测方法 Download PDF

Info

Publication number
CN106324253A
CN106324253A CN201610661966.9A CN201610661966A CN106324253A CN 106324253 A CN106324253 A CN 106324253A CN 201610661966 A CN201610661966 A CN 201610661966A CN 106324253 A CN106324253 A CN 106324253A
Authority
CN
China
Prior art keywords
antigen
antibody
detection
biotin
buffer
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN201610661966.9A
Other languages
English (en)
Inventor
刘振国
陈海生
王振
李小艳
李湘君
其他发明人请求不公开姓名
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
JIANGSU ZECHENG BIOLOGICAL TECHNOLOGY Co Ltd
Original Assignee
JIANGSU ZECHENG BIOLOGICAL TECHNOLOGY Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by JIANGSU ZECHENG BIOLOGICAL TECHNOLOGY Co Ltd filed Critical JIANGSU ZECHENG BIOLOGICAL TECHNOLOGY Co Ltd
Priority to CN201610661966.9A priority Critical patent/CN106324253A/zh
Publication of CN106324253A publication Critical patent/CN106324253A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/569—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
    • G01N33/571—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses for venereal disease, e.g. syphilis, gonorrhoea
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/531—Production of immunochemical test materials
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • G01N33/54313—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals the carrier being characterised by its particulate form
    • G01N33/54326—Magnetic particles
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/68—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving proteins, peptides or amino acids
    • G01N33/6854—Immunoglobulins

Abstract

本发明公开了一种梅毒螺旋体抗体测定试剂盒，包括以下组分：磁分离试剂；生物素抗原；酶标试剂，检测抗原与检测抗体偶联碱磷酶；阴性对照品；阳性对照品；定标液；其中生物素抗原和检测抗原为重组抗原，检测抗体为鼠单抗二抗；所述定标液中包含待检抗体。同时公开了该试剂盒的检测方法。本发明通过将间接法和双抗原夹心法进行结合，即保证了双抗原夹心法的特异性，又避免了双抗原夹心法中2个固相抗原或2个示踪剂标记抗原结合同一个抗体而导致无法被检测的情况，避免了由于假阳或假阴而导致的检测结果不准确的情况，因此，两种方法混合要优于单纯的间接法和双抗原夹心法。

Description

一种梅毒螺旋体抗体测定试剂盒及其检测方法
技术领域
本发明涉及一种磁微粒化学发光法梅毒螺旋体抗体测定试剂盒及其检测方法。
背景技术
梅毒螺旋体抗体作为传统的传染病项目，在疾病筛查、输血和术前检查中起着重要的作用，该类传染病对检测结果的准确性要求也很高。目前，医院的检验流程一般分2步：首先，用甲苯胺红不加热血清试验(toluLized red unheated serum test,TRUST)或TP-ELISA的方法进行初步筛选；然后对筛选为阳性的样本用TPPA的方法进行确认。由于TRUST针对的不是梅毒特异性抗体，因此特异性较差，因此，越来越多的医院开始用TP-ELISA的方法进行初筛。
ELISA作为一种较成熟检测手段，优势很明显，即抗原和抗体的特异性很高，并且包被对其生物活性影响很小，所以对待检抗原和抗体的结合有着很好的识别作用。从本世纪初开始，同样是基于免疫反应原理的各种化学发光法的试剂逐步开始成熟并替代市场上的ELISA产品。
对于梅毒等被检测物为抗体的项目来说，方法学一般为间接法和双抗原夹心法。所谓的间接法就是固相连接物为抗原，通过抗原-待检抗体特异性结合来识别样本中的抗体，洗涤后加入示踪剂标记的二抗，由于信号的强弱与样本中的待检抗体量呈正比，这样通过信号的强弱就能判断样本中的待检抗体的量，通过与定标液或参考值进行对比就能确定待测样本的阴阳性；双抗原夹心法原理即固相连接抗原和示踪剂标记的抗原可以对样本中的待检抗体的两个可变区进行结合，信号强则待检抗体量就多，反之就少。一般来说，由于双抗原夹心法使用了2个特异性抗原，不但可以同时检测IgG和IgM，而且结果的准确性要优于间接法，事实上，由于双抗原夹心法的2个结合固相的抗原都可以结合同一个抗体，会导致该抗体不能产生信号从而导致检测结果失败，同时还可能出现两个示踪剂标记的抗原结合同一个抗体的情况(一步法)，使得该抗体不能被结合至固相，因此使得结果不准确。
发明内容
本发明要解决的技术问题是克服现有技术的缺陷，提供一种磁微粒化学发光法梅毒螺旋体抗体测定试剂盒。
为了解决上述技术问题，本发明提供了如下的技术方案：
一种梅毒螺旋体抗体测定试剂盒，其特征在于，包括以下组分：
磁分离试剂；
生物素抗原；
酶标试剂，检测抗原与检测抗体偶联碱磷酶；
阴性对照品
阳性对照品
定标液；
其中生物素抗原和检测抗原为重组抗原，检测抗体为鼠单抗二抗；所述定标液中包含待检抗体。
进一步的，所述的生物素抗原采用以下方法制备：
1)将PD-10透析柱用PH9.0的0.1M的NaHCO3缓冲液20mL进行缓冲体系更换，然后取2mg/mL的抗原0.25mL加入PD-10透析柱中，再加入0.1M的NaHCO3缓冲液补足2.5mL，然后加入3mL 0.1M的NaHCO3缓冲液进行洗脱，将洗脱液收集之后进行浓缩，浓缩至抗原的浓度为2.5mg/mL；
2)称取2mg的生物素-NHS，并用DMSO进行溶解至终浓度为20mg/mL；
3)按照抗原：生物素的摩尔比1：20的投料量在抗原中加入DMSO溶解的生物素；
4)充分混匀后室温反应2h；
5)反应完成后按照第1步的操作用PD-10透析柱进行透析除盐，并收集偶联物溶液即为生物素偶联抗原；
6)用抗试剂缓冲液生物素偶联抗原稀释至0.5ug/mL作为工作液使用。
进一步的，酶标试剂采用以下方法制备：
1)将检测抗原和检测抗体分别用0.1倍PBS进行透析，然后分别用2IT进行活化；
2)将碱磷酶用SMCC进行活化；
3)将活化后的检测抗原和检测抗体分别和活化后的碱磷酶进行混合，2～8°反应18小时；
4)将反应物用层析柱进行纯化，收集I峰和II峰进行混合后，用抗试剂缓冲液将混合物稀释后作为工作液使用。
进一步的，磁分离试剂为链霉亲和素磁微粒。
进一步的，阴性对照品为定标液用缓冲液；阳性对照品为定标液用缓冲液中加入待测抗体使待测抗体的终浓度为1.5ug/ml；定标液为定标液用缓冲液中加入待测抗体使待测抗体的终浓度为1ug/ml。
该梅毒螺旋体抗体测定试剂盒的检测方法，包括以下步骤：
1)取待测样本15uL加入生物素抗原30uL，孵育15min；
2)加入磁分离试剂30uL，孵育5min；
3)加入磁-场进行磁分离2min，去上清；
4)洗涤3次，每次300uL洗液，重复步骤3操作；
5)加入酶标试剂60uL，孵育15min；
6)加入磁场进行磁分离2min，去上清；
7)洗涤3次，每次300uL洗液，重复步骤3操作；
8)加入底物200uL，测吸光值。
本发明所达到的有益效果是：
本发明通过将间接法和双抗原夹心法进行结合，即保证了双抗原夹心法的特异性，又避免了双抗原夹心法中2个固相抗原或2个示踪剂标记抗原结合同一个抗体而导致无法被检测的情况，避免了由于假阳或假阴而导致的检测结果不准确的情况，因此，两种方法混合要优于单纯的间接法和双抗原夹心法。
具体实施方式
以下对本发明的优选实施例进行说明，应当理解，此处所描述的优选实施例仅用于说明和解释本发明，并不用于限定本发明。
一种梅毒螺旋体抗体测定试剂盒，其特征在于，包括以下组分：
磁分离试剂；
生物素抗原；
酶标试剂，检测抗原与检测抗体偶联碱磷酶；
阴性对照品
阳性对照品
定标液；
其中生物素抗原和检测抗原为重组抗原，检测抗体为鼠单抗二抗；所述定标液中包含待检抗体。
其中，生物素抗原采用以下方法制备：
1)将PD-10透析柱用PH9.0的0.1M的NaHCO3缓冲液20mL进行缓冲体系更换，然后取2mg/mL的抗原0.25mL加入PD-10透析柱中，再加入0.1M的NaHCO3缓冲液2.25mL补足2.5mL，然后加入3mL0.1M的NaHCO3缓冲液进行洗脱，将洗脱液收集之后进行浓缩，浓缩至抗原的浓度为2.5mg/mL，约0.2mL；
2)称取2mg的生物素-NHS，并用DMSO进行溶解至终浓度为20mg/mL；
3)按照抗原(分子量65KD)：生物素(分子量587)的摩尔比1：20的投料量在抗原中加入DMSO溶解的生物素；
4)充分混匀后室温反应2h；
5)反应完成后按照第1步的操作用PD-10透析柱进行透析除盐，并收集3mL偶联物溶液即为生物素偶联抗原；
6)用抗试剂缓冲液生物素偶联抗原稀释至0.5ug/mL作为工作液使用。
酶标试剂采用以下方法制备：
1)将检测抗原和检测抗体分别用0.1倍PBS进行透析，然后分别用2IT进行活化；
2)将碱磷酶用SMCC进行活化；
3)将活化后的检测抗原和检测抗体分别和活化后的碱磷酶进行混合，2～8°反应18小时；
4)将反应物用层析柱进行纯化，收集I峰和II峰进行混合后，用抗试剂缓冲液将将抗原-碱磷酶和抗体-碱磷酶分别稀释至0.02ug/ml和0.1ug/ml作为工作液，将两种浓度的工作液等比例混合后使用，抗原-碱磷酶和抗体-碱磷酶终浓度分别为0.01ug/ml和0.05ug/ml。
磁分离试剂为链霉亲和素磁微粒。
阴性对照品为定标液用缓冲液；阳性对照品为定标液用缓冲液中加入待测抗体使待测抗体的终浓度为1.5ug/ml；定标液为定标液用缓冲液中加入待测抗体使待测抗体的终浓度为1ug/ml。
本发明的梅毒螺旋体抗体测定试剂盒的检测方法，包括以下步骤：
1)取待测样本15uL加入生物素抗原30uL，孵育15min；
2)加入磁分离试剂30uL，孵育5min；
3)加入磁场进行磁分离2min，去上清；
4)洗涤3次，每次300uL洗液，重复步骤3操作；
5)加入酶标试剂60uL，孵育15min；
6)加入磁场进行磁分离2min，去上清；
7)洗涤3次，每次300uL洗液，重复步骤3操作；
8)加入底物200uL，测吸光值。
验证实验
为了对比3种反应模式的优劣，选取20例阴性样本和20例阳性样本同时用3种模式进行检测，检测结果如下：
表1三种反应模式的对照
由表1的结果可以看出，双抗原夹心法的灵敏度较高，因此阳性测值也较高，而间接法和间接法+双抗原夹心法混合则要差一些，但是从检测结果的阴阳性来看，单纯的间接法和双抗原夹心法都会出现假阳性和假阴性的情况，而间接法和双抗原夹心两种方法混合使用则很好的避免了由于假阳或假阴而导致的检测结果不准确的情况，因此，两种方法混合要优于单纯的间接法和双抗原夹心法。
最后应说明的是：以上所述仅为本发明的优选实施例而已，并不用于限制本发明，尽管参照前述实施例对本发明进行了详细的说明，对于本领域的技术人员来说，其依然可以对前述各实施例所记载的技术方案进行修改，或者对其中部分技术特征进行等同替换。凡在本发明的精神和原则之内，所作的任何修改、等同替换，均在本发明的保护之内。

Claims (8)

1.一种梅毒螺旋体抗体测定试剂盒，其特征在于，包括以下组分：
磁分离试剂；
生物素抗原；
酶标试剂，检测抗原与检测抗体偶联碱磷酶；
阴性对照品；
阳性对照品；
定标液；
其中生物素抗原和检测抗原为重组抗原，检测抗体为鼠单抗二抗；所述定标液中包含待检抗体。
2.如权利要求1所述的梅毒螺旋体抗体测定试剂盒，其特征在于，所述的生物素抗原采用以下方法制备：
1)将PD-10透析柱用PH9.0的0.1M的NaHCO3缓冲液20mL进行缓冲体系更换，然后取2mg/mL的抗原0.25mL加入PD-10透析柱中，再加入0.1M的NaHCO3缓冲液补足2.5mL，然后加入3mL0.1M的NaHCO3缓冲液进行洗脱，将洗脱液收集之后进行浓缩，浓缩至抗原的浓度为2.5mg/mL；
2)称取2mg的生物素-NHS，并用DMSO进行溶解至终浓度为20mg/mL；
3)按照抗原：生物素的摩尔比1：20的投料量在抗原中加入DMSO溶解的生物素；
4)充分混匀后室温反应2h；
5)反应完成后按照第1步的操作用PD-10透析柱进行透析除盐，并收集偶联物溶液即为生物素偶联抗原；
6)用抗试剂缓冲液生物素偶联抗原稀释至0.5ug/mL作为工作液使用。
3.如权利要求1所述的梅毒螺旋体抗体测定试剂盒，其特征在于，所述的酶标试剂采用以下方法制备：
1)将检测抗原和检测抗体分别用0.1倍PBS进行透析，然后分别用2IT进行活化；
2)将碱磷酶用SMCC进行活化；
3)将活化后的检测抗原和检测抗体分别和活化后的碱磷酶进行混合，2～8°反应18小时；
4)将反应物用层析柱进行纯化，收集I峰和II峰进行混合后，用抗试剂缓冲液将混合物稀释后作为工作液使用。
4.如权利要求1所述的梅毒螺旋体抗体测定试剂盒，其特征在于，所述的磁分离试剂为链霉亲和素磁微粒。
5.如权利要求1所述的梅毒螺旋体抗体测定试剂盒，其特征在于，所述的阴性对照品为定标液用缓冲液。
6.如权利要求1所述的梅毒螺旋体抗体测定试剂盒，其特征在于，所述的阳性对照品为定标液用缓冲液中加入待测抗体使待测抗体的终浓度为1.5ug/ml。
7.如权利要求1所述的梅毒螺旋体抗体测定试剂盒，其特征在于，所述定标液为定标液用缓冲液中加入待测抗体使待测抗体的终浓度为1ug/ml。
8.如权利要求1所述的梅毒螺旋体抗体测定试剂盒的检测方法，其特征在于，包括以下步骤：
1)取待测样本15uL加入生物素抗原30uL，孵育15min；
2)加入磁分离试剂30uL，孵育5min；
3)加入磁场进行磁分离2min，去上清；
4)洗涤3次，每次300uL洗液，重复步骤3操作；
5)加入酶标试剂60uL，孵育15min；
6)加入磁场进行磁分离2min，去上清；
7)洗涤3次，每次300uL洗液，重复步骤3操作；
8)加入底物200uL，测吸光值。
CN201610661966.9A 2016-08-12 2016-08-12 一种梅毒螺旋体抗体测定试剂盒及其检测方法 Pending CN106324253A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201610661966.9A CN106324253A (zh) 2016-08-12 2016-08-12 一种梅毒螺旋体抗体测定试剂盒及其检测方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201610661966.9A CN106324253A (zh) 2016-08-12 2016-08-12 一种梅毒螺旋体抗体测定试剂盒及其检测方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN106324253A true CN106324253A (zh) 2017-01-11

Family

ID=57740817

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201610661966.9A Pending CN106324253A (zh) 2016-08-12 2016-08-12 一种梅毒螺旋体抗体测定试剂盒及其检测方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN106324253A (zh)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109991428A (zh) * 2019-04-10 2019-07-09 成都博奥新景医学科技有限公司 一种经过封闭处理的双抗原夹心间接法
CN111308073A (zh) * 2019-12-17 2020-06-19 郑州安图生物工程股份有限公司 一种梅毒螺旋体抗体检测试剂盒

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5914243A (en) * 1992-06-03 1999-06-22 Behring Diagnostics Gmbh Process for the immunochemical determination of an analyte
CN101363860A (zh) * 2007-08-06 2009-02-11 北京科美东雅生物技术有限公司 梅毒螺旋体抗体化学发光免疫分析测定试剂盒及其制备方法
CN101713780A (zh) * 2009-12-07 2010-05-26 陕西北美基因股份有限公司 磁酶免化学发光检测梅毒螺旋体抗体的方法
CN104698185A (zh) * 2015-02-10 2015-06-10 深圳市新产业生物医学工程股份有限公司 检测梅毒螺旋体抗体的试剂盒及其检测方法和应用
US20150204868A1 (en) * 2014-01-21 2015-07-23 Abaxis, Inc. Peptides, devices, and methods for the detection of anaplasma antibodies

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5914243A (en) * 1992-06-03 1999-06-22 Behring Diagnostics Gmbh Process for the immunochemical determination of an analyte
CN101363860A (zh) * 2007-08-06 2009-02-11 北京科美东雅生物技术有限公司 梅毒螺旋体抗体化学发光免疫分析测定试剂盒及其制备方法
CN101713780A (zh) * 2009-12-07 2010-05-26 陕西北美基因股份有限公司 磁酶免化学发光检测梅毒螺旋体抗体的方法
US20150204868A1 (en) * 2014-01-21 2015-07-23 Abaxis, Inc. Peptides, devices, and methods for the detection of anaplasma antibodies
CN104698185A (zh) * 2015-02-10 2015-06-10 深圳市新产业生物医学工程股份有限公司 检测梅毒螺旋体抗体的试剂盒及其检测方法和应用

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109991428A (zh) * 2019-04-10 2019-07-09 成都博奥新景医学科技有限公司 一种经过封闭处理的双抗原夹心间接法
CN111308073A (zh) * 2019-12-17 2020-06-19 郑州安图生物工程股份有限公司 一种梅毒螺旋体抗体检测试剂盒

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN106124757B (zh) 侧向流和相关免疫测定中的信号放大
CN104897901A (zh) 一种基于金磁微粒的吖啶酯化学发光免疫学检测he4的方法
CN106706926A (zh) 血清淀粉样蛋白a测定试剂盒及制作方法
CN109211867A (zh) 一种快速定量检测bnp的微流控荧光免疫芯片
KR102660904B1 (ko) 고농도의 분석물을 포함한 분석물을 측정하기 위한 용량 반응 곡선의 신호 부분을 감소시키는 단계를 사용하는 샌드위치-유형 분석법
CN106959372A (zh) 血清淀粉样蛋白a和c‑反应蛋白二合一测定试剂盒及制法
CN105988008A (zh) 测定装置、试剂盒及方法
CN103823058B (zh) 血清中抗原类蛋白的化学发光蛋白芯片方法和试剂盒
Macdonald et al. Affinity of anti-spike antibodies in SARS-CoV-2 patient plasma and its effect on COVID-19 antibody assays
CN106324253A (zh) 一种梅毒螺旋体抗体测定试剂盒及其检测方法
JP7451403B2 (ja) 高濃度の分析物を検出するための側方流動アッセイ及び方法
CN106460056A (zh) 新型试样内检测对象物的检测方法及利用其的检测试剂盒
CN105358976A (zh) 胰岛素测定法
CN106771264A (zh) 促甲状腺激素测定试剂盒及制作方法
JP2010237126A (ja) ＥＬＩＳＡ法を用いたヒト血清中の抗原特異的なＩｇＧ抗体力価測定の標準化法
Chou et al. Rapid and multiplexed detection of Lyme disease using a grating coupled-fluorescent plasmonics (GC-FP) biosensor platform
CN109991428A (zh) 一种经过封闭处理的双抗原夹心间接法
CN111936852B (zh) 区分细菌感染和病毒感染的多重横向流测定物
JP7157061B2 (ja) ジカウイルスを検出する方法及びキット
US20200348296A1 (en) Multiplex lateral flow assay for differentiating bacterial infections from viral infections
JP2688943B2 (ja) 試料中の物質の測定方法
CN107857815A (zh) 与糖肽反应的单克隆抗体及其用途
CN114324855A (zh) 糖类抗原ca72-4的检测试剂盒
KR20240059633A (ko) 고농도의 분석물을 포함한 분석물을 측정하기 위한 용량 반응 곡선의 신호 부분을 감소시키는 단계를 사용하는 샌드위치-유형 분석법
CN106198954A (zh) 一种用于荧光免疫定量检测的样本缓冲液

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
RJ01 Rejection of invention patent application after publication
RJ01 Rejection of invention patent application after publication

Application publication date: 20170111