CN106069721A - 油菜双单倍体诱导系选育白菜型油菜品种及材料的方法 - Google Patents

油菜双单倍体诱导系选育白菜型油菜品种及材料的方法 Download PDF

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Abstract

本发明油菜双单倍体诱导系选育白菜型油菜品种及材料的方法，包括：1）确定白菜型油菜品种及材料选育的目标性状；2）将至少2个具有目标性状的白菜型油菜杂交、聚合杂交或回交；3）用油菜双单倍体诱导系对杂交、聚合杂交或回交后代授粉；4）诱导后代打破自交不亲和性处理并鉴定诱导后代的遗传稳定性；5）诱导稳定后代株系产量、抗性、品质性状鉴定；6）根据产量、品质性状、抗性，确定稳定株系形成白菜型油菜常规品种；7）诱导后代遗传稳定株系形成白菜型油菜新品系并与白菜型油菜不育系测交，形成保持系或恢复系，或进入下一轮品种及材料选育过程。本发明方法能大大提高白菜型油菜杂交品种或常规品种的选育速度和效率，降低人力物力。

Description

油菜双单倍体诱导系选育白菜型油菜品种及材料的方法
技术领域：
本发明与农业有关，特别与油菜双单倍体诱导系选育白菜型油菜品种和材料的方法有关。
背景技术：
油菜是我国主要的油料作物，包括3个栽培种，甘蓝型油菜（Brassica napus，芸苔（aa，n=10）与甘蓝（cc，n=9）通过自然种间杂交后双二倍化进化而来的一种复合种，根据染色体来源判断为四倍体，2n=38）；芥菜型油菜（Brassica juncea，, 由芸薹(aa，n=10)和黑芥(bb，n=8)通过自然种间杂交后双二倍化进化而来的一个复合种，根据染色体来源判断为四倍体，2n=36）。白菜型油菜（Brassia campestris L. 包括原产中国的芸苔和油白菜。中国又称小白菜、矮油菜、甜油菜等。染色体组为aa，n=10，根据来源染色体组来源判断为二倍体，2n=20，）。白菜型油菜具有较短的生育期、耐寒、耐贫瘠、黄籽、高含油等优点，在高海拔地区、山区适合种植，但白菜型油菜自交不亲和、不容易形成基因纯合亲本，杂交品种选育受此影响不易实现。
常规白菜型油菜为地方品种多为群体改良品种，基因型多为杂合型。这是目前白菜型油菜推广的主要品种形式。白菜型油菜杂种优势利用，因自交不亲和，不易获得纯合亲本而难以开展。目前，白菜型油菜杂交种主要以自交不亲和性特性展开，将两个白菜型油菜间隔种植，利用白菜型油菜的自交不亲和性繁殖杂交种，但白菜型油菜材料自身很难实现基因型纯合，因此其杂交种的纯度和杂种优势无法得到体现。由于自交不亲和性，白菜型油菜无法提纯，普通的白菜型油菜育种材料通过单粒种子遗传选育法，通过群体改良的方式，株系内授粉可基本实现基因型的一致，但经历的时间较长，一般通过单粒种子遗传改良需要10代以上的时间才能基本实现群体改良的目的，而且需要足够大的群体样本才能实现，周期和效率都极为低下。利用本发明方法可快速获得遗传稳定的白菜型油菜纯合系或常规白菜型油菜品种，也可利用纯合系选育杂交白菜型油菜品种。
目前，在油菜中还未有诱导系或双单倍体诱导系的报道。所谓“诱导系”是指，用该植物作为父本用其花粉对同类植株授粉，能诱导同类植株（母本）产生相应的效应，如产生单倍体、双单倍体（DH系）等。在植物中运用诱导系进行新品种选育最多的是玉米，但玉米中的诱导系也只是单倍体诱导系。最早出现的玉米单倍体诱导系为stock6，该诱导系只能诱导玉米产生单倍体，然后单倍体植株再进行人工染色体加倍形成纯合二倍体（双单倍体），且诱导效率较低，一般诱导效率在10%以下（以收获种子中获得单倍体数计算）。
发明内容：
本发明的目的为了提供一种能快速、高效，只需3代（2年或3年）获得稳定白菜型油菜株系，提高白菜型油菜选育新材料、常规品种、以及杂种优势利用的效率，使白菜型油菜杂交育种更为便捷高效的油菜双单倍体诱导系选育白菜型油菜新材料及品种选育的新方法。
本发明的目的是这样来实现的：
本发明油菜双单倍体诱导系选育白菜型油菜新材料及品种的方法，包括以下步骤：
1）确定白菜型品种及材料选育的目标性状，如高含油、抗倒伏、抗低温、黄籽，早熟等性状；
2）将具有上述步骤1）中目标性状的至少两个不同遗传背景的白菜型油菜杂交或聚合杂交，获得杂交后代或聚合杂交后代，根据目标性状要求进行回交或多代回交，形成回交后代等；
3）对上述步骤2）中获得杂交、聚合杂交或回交后代,在花期，对花蕾进行人工去雄，并套袋隔离；
4）用油菜双单倍体诱导系花粉对上述步骤3）中去雄后2—4天植株进行人工授粉，并套袋隔离，收获其授粉后诱导结实种子；
5）对上述步骤4）获得的诱导结实种子进行单株种植，苗期利用流式细胞仪鉴定倍性，淘汰多倍体、单倍体、非白菜型油菜外型或具有油菜双单倍体诱导系显性性状特征植株，选择正常育性二倍体植株，单株套袋隔离；
6）上述步骤5）中二倍体单株套袋隔离，采用花蕾期剥蕾强制自交或花期质量百分浓度为3—5%的NaCl处理柱头后强制自交的方法，克服白菜型油菜自交不亲和性，获得自交后代；
7)上述步骤6）中单株自交种子进行株系种植，调查株系形态一致性，并通过分子标记（ＳＳＲ或ＳＡＲＰ）鉴定株系一致性及稳定性；
8)上述步骤7）中形态一致、遗传稳定的株系采取株系内群体授粉的方式获得遗传稳定的白菜型油菜稳定株系；
9）上述步骤8）中稳定株系进行产量潜力、抗性、品质性状鉴定，产量、品质性状、抗性达到生产需求的稳定株系，形成白菜型油菜常规品种；
10）上述步骤8）形成的稳定株系与白菜型油菜细胞质不育系或细胞核不育系测交，根据测交后代的育性判断测交父本得恢保关系，当测交后代全可育其测交父本为恢复系，当测交后代全不育其测交父本为保持系；
11）上述步骤10）中测交父本为恢复系与对应不育系统不育系测配，选育白菜型油菜杂交组合或品种；测交父本为保持系与对应不育系统不育系多代（5～8代）回交，选育与该保持系基因型一致的新不育系；
上述步骤4）中油菜双单倍体诱导系选育方法，包括如下步骤：
（1）选育具有孤雌生殖遗传特性的早代稳定系
①将两个油菜亲本材料杂交F1代种子在培养基上用染色体加倍诱导剂进行人工染色体加倍获得加倍后的F1代植株；
②加倍后的F1代植株进行自交或强制自交获得F2代，对F2代进行田间种植观察，并鉴定每个单株的育性，选择可育后代自交获得F3代，对F3代进行纯合度鉴定，通过形态、细胞学以及分子标记鉴定，对后代DNA进行聚合酶链反应扩增，电泳观察每个特异引物扩增下单株的DNA带型及条带数目，显示每个单株都是两个亲本的杂交后代，每个单株之间分子标记图谱一致，说明这些单株是纯合系---早代稳定系；
③获得的早代稳定系与至少10个油菜常规纯合稳定系进行正反交，F1代、F2代鉴定早代稳定系的遗传特性，即是否有孤雌生殖特性；上述正反交，如有F1代分离，F2代出现部分稳定株系，对应的早代稳定系是具有孤雌生殖遗传特性的早代稳定系；
（2）选育携带显性遗传性状、具有孤雌遗传特性且倍性遗传稳定的多倍体油菜；
①具有孤雌生殖遗传特性的早代稳定系与具有显性性状油菜杂交（如显性矮杆、紫叶、花叶、黄叶、高芥酸等性状），得到杂交F1代种子。上述杂交F1种子在培养基上用染色体加倍诱导剂进行人工染色体加倍，得到加倍后的带显性性状的F1植株；
②对加倍的带显性性状的F1植株，通过显微观察或流式细胞仪进行染色体倍性鉴定，选择带显性性状的多倍体的植株，淘汰非正常加倍株、非整倍体植株、以及不带显性性状加倍植株；带显性性状的多倍体的植株主要是倍性遗传稳定、结实性好、具有孤雌生殖遗传特性、带显性性状（如显性矮杆、紫叶、花叶、黄叶、高芥酸等性状）的六倍体或八倍体油菜植株；
（3）油菜双单倍体诱导系鉴定及诱导能力测定：
①倍性遗传稳定、具有孤雌生殖遗传特性、带显性性状的多倍体植株中的显性性状能去除测交后代中产生的杂交株，如果测交后代中出现显性性状植株、或非整倍体植株，说明该植株是多倍体植株和母本杂交产生的，去除该植株；
②上述单株测交后代如果出现全不育、为正常倍性（二倍体或四倍体）油菜、且不带显性性状，说明该测交后代对应的父本基因未进入测交后代中，显性多倍体植株为油菜双单倍体诱导系；
采用本发明方法获得白菜型油菜稳定遗传后代借助了油菜双单倍体诱导系能诱导母体植株在F1代发生孤雌生殖，在F2代形成稳定的双单倍体个体，F3代进行稳定性、一致性鉴定，获得稳定遗传后代。
上述获得油菜双单倍体诱导系是将两个亲本材料杂交F1代种子或具有孤雌生殖遗传特性的早代稳定系与具有显性性状油菜杂交得到的杂交F1代种子在培养基上用染色体加倍诱导剂进行人工染色体加倍的具体方法如下：
1)用纯度为75%酒精进行种子表面消毒25—40秒，用0.1%升汞消毒12—17分钟，然后用无菌水将种子表面的升汞冲洗干净，用无菌纸将种子表面的水分吸干，然后将种子接种在第一培养基上；
2）让种子在第一培养基上生根发芽，培养条件：温度23-250C，白天光照12—16小时，光照强度2000—3000勒克斯，夜晚暗培养8—12小时，待植株长到1—2片真叶时，从下胚轴处剪下植株继续在第二培养基上生长；
3)将剪下的植株继续插入第二培养基上继续培养，待有侧芽分化后，将侧芽及植株转入第三培养基中进行生根培养；
4)生根培养二周后，植株长出粗壮的根后，将植株在室温炼苗3-7天，取出植株将植株上的培养基用自来水冲洗干净，并在浸泡缓冲液中浸泡15—30分钟后移栽到温室中，温室温度160C—250C，相对湿度60-80%，能保证移栽成活率在95%以上；
上述的第一培养基由以下配比的组分组成：
MS 培养基 1L
6-苄基腺嘌呤 0.5—1.5mg
染色体加倍诱导剂 30—70mg
蔗糖 20—30g
琼脂 8—10g，
第一培养基的pH=5.8—6.0，
上述的第二培养基由以下配比的组分组成：
MS培养基 1L
6-苄基腺嘌呤 0.5—1mg
染色体加倍诱导剂 20—40mg
蔗糖 20—30g
琼脂 8—10g，
第二培养基的pH=5.8—6.0，
上述的第三培养基由以下配比的组分组成：
MS 培养基 1L
α-萘乙酸 0.03—0.5mg
染色体加倍诱导剂 5—20mg
蔗糖 20—30g
琼脂 8—10g，
第三培养基的pH=5.8-6.0，
上述的浸泡缓冲液由以及下配比的组分组成：
水 1L
易保或克露 0.6-1.2g
α-萘乙酸 0.5—1mg。
油菜双单倍体诱导系能直接诱导油菜产生双单倍体后代，无需进行人工染色体加倍来获得纯合系；且诱导效率高，最高可达100%，一般的诱导效率都在50%以上。
双单倍体诱导系诱导母体植株产生双单倍体的主要原理是：诱导系能诱导母体植株，大孢子生殖细胞（卵细胞）产生孤雌生殖效应，且卵细胞能进行染色体加倍，即卵细胞孤雌生殖产生的后代就双单倍体，本发明是油菜双单倍体诱导系选育白菜型油菜新材料及品种的方法，可以快速（3代）、高效获得育种上具有应用价值的白菜型油菜材料或常规品种；对白菜型油菜开展杂交品种选育具有积极的促进作用。
上述的染色体加倍诱导剂采用秋水仙素、氟乐灵、氨磺乐灵中的至少一种。
以上描述的方法可以快速用于白菜型油菜新材料及品种选育，特别是白菜型油菜恢复系、保持系材料的快速选育，以及白菜型油菜常规品种的快速选育。可以在2年或3代的时间内获得上述材料或品种，大大节约白菜型油菜的育种时间，提高育种效率。
上述油菜双单倍体诱导系（六倍体或八倍体植株）的基本原理是：诱导系具有孤雌生殖诱导基因，诱导系作父本时，诱导系染色体（或基因）没有与母体植株染色体融合，而是诱导母体植株（即卵细胞）产生孤雌生殖效应，且母体植株卵细胞染色体自身加倍形成双单倍体。
本发明具有以下优点：
1、本方法可快速（2年或3代）选育白菜型油菜杂交种亲本材料（恢复系、保持系），极大地提高了白菜型油菜杂交品种选育速度和效率。
2、本方法可快速（2年或3代）选育白菜型油菜常规品种，极大地提高了白菜型油菜品种选育速度和效率。
3、本方法克服了白菜型油菜的自交不亲和现象而带来的不能选育纯系的瓶颈，快速、高效选育基因型纯合的白菜型油菜新材料和常规品种。
4、本方法可运用于白菜型油菜，特别是杂交品种选育的不同杂种优势利用途径。白菜型油菜细胞质不育系统(CMS)，白菜型油菜核不育系统（GMS）均可应用。
5、油菜双单倍体诱导系直接诱导母体植株产生双单倍体，无需进行人工染色体加倍，可一步形成稳定后代。
附图说明：
图1为油菜双单倍体诱导系选育白菜型油菜新材料及品种的流程图。
图2为油菜双单倍体诱导系选育流程图。
图3为获得油菜早代稳定系的方法流程图。
图4为油菜双单倍体诱导系Y3380选育流程图。
图5为油菜双单倍体诱导系Y4958的选育流程图。
图6为油菜早代稳定系P3-2选育流程图。
图7为白菜型油菜新品系YH-15的选育流程图。
图8为白菜型油菜新品系YN-2的选育流程图。
图9为P3—2四倍体油菜根尖染色体倍性鉴定图。
图10为P3—2四倍体油菜流式细胞倍性鉴定图。
图11为Y3380流式细胞倍性鉴定图。
图12为Y4958流式细胞倍性鉴定图。
具体实施方式：
实施例1：
参见图1、图2、图5、图7，白菜型油菜雅安黄油菜YH(四川雅安地方品种，二倍体，2n=20)具有高含油、黄籽粒、生育期短、早熟、耐土壤贫瘠等优点，但自交不亲合，不能形成稳定遗传的品系，只能通过群体改良，实现株系稳定遗传。因此在生产上利用具有一定的局限性，为了获得稳定遗传的YH株系，用非稳定的YH作母本，用本申请人获得的油菜双单倍体诱导系Y4958作父本进行授粉诱导，F1代（诱导后代）单株种植，并进行流式细胞检测、选育性正常、倍性（二倍体）正常、无诱导系显性性状（花叶）植株花蕾期剥蕾、用3%的生理盐水处理柱头并强制自交，获得了F2种子，F2代按株系种植并株系内混合授粉，F3代鉴定株系内性状一致性和稳定性，选育出一个全黄籽、含油率（49%）、抗性较好、熟期180天的稳定株（品）系YH-15 。
上述油菜双单倍体诱导系是通过以下方法获得的：
参见图2、图4、图6、图9、图10、图11，由本申请人获得的甘蓝型油菜四倍体早代稳定系P3—2，与20个纯合甘蓝型四倍体油菜正反交，3个正反交F1代出现分离，且这3个组合F2代出现稳定株系，说明P3—2具有孤雌生殖遗传特性。用P3—2与四倍体甘蓝型矮杆油菜D3—5正反交（矮杆为显性性状），然后将杂交F1代种子进行染色体加倍，加倍后代用流式细胞仪鉴定或根尖显微镜观察鉴定为显示矮杆八倍体植株，该植株定名为Y3380。
参见图2、图5、图6、图9、图10、图12，由本申请人获得的甘蓝型油菜四倍体早代稳定系P3—2，与20个纯合甘蓝型四倍体油菜正反交，3个正反交F1代出现分离，且这3个组合F2代出现稳定株系，说明P3—2具有孤雌生殖遗传特性。用P3—2与白菜型花叶油菜08nl杂交（花叶为显性性状），然后将杂交F1代种子进行染色体加倍，加倍后代用流式细胞仪鉴定或根尖显微镜观察鉴定为显示矮杆六倍体植株，该植株定名为Y4958。
本实施例中将P3-2与矮杆油菜D3—5、P3—2与白菜型花叶油菜08nl杂交Ｆ1种子在培养基上用秋水仙素进行人工染色体加倍的具体方法如下：
1）用纯度为75%酒精进行种子表面消毒25秒，用0.1%升汞消毒12分钟，然后用无菌水将种子表面的升汞冲洗干净，用无菌纸将种子表面的水分吸干，然后将种子接种在第一培养基（染色体加倍诱导培养基）上；
2)让种子在第一培养基上生根发芽，培养条件：温度250C，白天光照16小时，光照强度2000勒克斯，晚上暗培养8小时,待长到1—2片真叶时，将植株从下胚轴剪下继续在第二培养基上生长；
3）将剪下的植株继续插入第二培养基上继续培养，待有侧芽分化后，将侧芽及植株转入第三培养基（生根培养基）中进行生根培养；
4）生根培养二周后，植株长出粗壮的根后，将植株在室温炼苗3天后，取出植株将植株上的培养基冲洗干净，并在浸泡缓冲液中浸泡15分钟后移栽到温室中，温室温度250C，相对湿度60%，能保证移栽成活率在95%以上；
上述的第一培养基由以下配比的组分组成：
MS 培养基 1L
6-苄基腺嘌呤（6BA） 0.5mg
秋水仙素 50mg
蔗糖 20g
琼脂 8g。
第一培养基的pH=5.8—6.0，
MS培养基由Murashige和Skoog发明，简写为MS，其配方参见附表1，
上述的第二培养基由以下配比的组分组成：
MS培养基 1L
6-苄基腺嘌呤（6BA） 0.5mg
秋水仙素 30mg
蔗糖 30g
琼脂 8g。
第二培养基的pH=5.8—6.0。
上述的第三培养基由以下配比的组分组成：
MS 培养基 1L
α-萘乙酸 0.03mg
秋水仙素 20mg
蔗糖 20g
琼脂 8g
第三培养基的pH=5.8-6.0。
上述的浸泡缓冲液由以下配比的组分组成：
水 1L
易保或克露 0.6g
α— 萘乙酸 0.5mg。
参见图2、图3、图4，用Y3380作父本，与甘蓝型油菜细胞质不育系（0464A）测交，测交后代50株，全为高杆,且全为四倍体油菜，其中49株为全不育，1株半不育，且形态特征与0464A完全相同。同时用P3-2与矮杆油菜D3-5杂交F1（非加倍株）做父本与0464A测交作为对照验证，测交后代102株，出现矮杆62株、高杆40株、且育性分离较大，出现全可育73株、半不育20株、全不育9株。说明Y3380中的基因并未进入测交株，测交后代为0464A孤雌生殖而来，诱导率98%。用Y3380做父本与甘蓝型油菜3954去雄聚合杂交（3954为F1，由中双11与CAX杂交而来），聚合杂交后代F1分离，每个F1自交，收获F1自交株45个。种植F2代株系45个，出现稳定株系45个，稳定株系出现比列100%，诱导率100%。
用Y3380做父本与甘蓝型油菜3968去雄聚合杂交（3968为F1，由中双11与1365杂交而来），聚合杂交后代F1分离，每个F1自交，收获F1自交株52个。种植F2代株系52个，出现稳定株系28个，稳定株系出现比例53.85%，诱导率53.85%。
用Y3380做父本与甘蓝型油菜中双11（常规品种，纯合系）去雄杂交，获得杂交F1植株70株，70株F1形态与中双11完全相同，且每个单株自交后F2代未发生分离，为稳定株系，与中双11形态也完全相同，说明F1代就为纯系。即Y3380与中双11杂交过程，诱导中双11发生了孤雌生殖，所产生的F1为孤雌生殖自交，是纯合系，因此F1稳定、F2也稳定，且与中双11形态完全相同，该诱导率100%。
同样用Y3380做父本与白菜型油菜雅安黄油菜YH（二倍体油菜，2n＝20）去雄杂交，获得杂交F1植株98株，97株F1形态与YH完全相同，且每个单株自交后F2代形态都为二倍体、外形与YH一致，说明Y3380与YH杂交过程，诱导YH发生了孤雌生殖，所产生的F1为孤雌生殖自交，且与YH形态完全相同，该诱导率98．9％。最终，显性矮杆八倍体植株Y3380确定为油菜双单倍体诱导系。
参加图2、图3、图5，用Y4958作父本，与甘蓝型油菜细胞质不育系（0068A）测交，测交后代112株，全为高杆,且全为四倍体油菜，其中108株为全不育，4株半不育，且形态特征与0068A完全相同。同时用P3-2与白菜型花叶油菜08nl杂交F1（非加倍株）做父本与0068A测交作为对照验证，测交后代89株，出现常叶植株59株、花叶植株30株、且育性分离较大，出现全可育45株、半不育20株、全不育24株。说明Y4958中的基因并未进入测交株，测交后代为0068A孤雌生殖而来，诱导率96．4%。
用Y4958做父本与白菜型油菜雅安黄油菜YH（二倍体油菜，2n＝20）去雄杂交，获得杂交F1植株88株，88株F1形态与YH完全相同，且每个单株自交后F2代形态都为二倍体、外形与YH一致，说明Y4959与YH杂交过程，诱导YH发生了孤雌生殖，所产生的F1为孤雌生殖自交，且与YH形态完全相同，该诱导率100％。
用Y4958做父本与芥菜型油菜GW（四倍体油菜，2n＝36）去雄杂交，获得杂交F1植株75株，75株F1形态与GW完全相同，且每个单株自交后F2代形态都为四倍体、外形与GW一致，说明Y4958与GW杂交过程，诱导GW发生了孤雌生殖，所产生的F1为孤雌生殖自交，且与 形态完全相同，该诱导率100％。
同样Y4958做父本与核不育GMS不育系3306测交，测交后代159株，且全为四倍体油菜，其中108株为全不育，4株半不育，且形态特征与0068A完全相同。同时用P3-2与白菜型花叶油菜08nl杂交F1（非加倍株）做父本与0068A测交作为对照验证，测交后代89株，出现常叶植株59株、花叶植株30株、且育性分离较大，出现全可育45株、半不育20株、全不育24株。说明Y4958中的基因并未进入测交株，测交后代为0068A孤雌生殖而来，诱导率96．4%。
最终，显性花叶六倍体植株Y4958确定为油菜双单倍体诱导系。
参见图3、图6、图9、图10，获得早代稳定系P3-2方法如下：
甘蓝型油菜F009（四倍体，染色体2n=38）与白菜型油菜YH（二倍体，雅安黄油菜，染色体2n=20）剥蕾进行人工去雄杂交获得F1代杂交种子。F1代杂交种子在培养基上用秋水仙素进行人工染色体加倍。对加倍后的F1代植株进行自交（或强制自交）获得F2代，对F2代进行田间种植观察、育性鉴定即通过醋酸洋红对花粉染色，判断花粉育性，出现三种情况（1、单倍体植株，花粉极少，且育性极低；2、多倍体植株完全不育，花器官发育受阻，不能正常的开花，无花粉；3、正常可育的植株，花粉量多，花粉育性95%以上）。对F2代正常可育单株进行自交获得F3代。对F3代进行纯合度鉴定，种植F3代单株株系，32%的可育株系单株植株整齐一致，开花结实正常。对整齐一致株系进行细胞学鉴定，染色体条数一致（38条），染色体形态未出现异常。SSR分子标记，通过DNA聚合酶链反应，电泳观察每个特异引物扩增下单株DNA带型，显示每个单株都是F009与YH的杂交后代，且每个单株DNA扩增条带数目及带型一致，可以判断这些株系为纯合系，即早代稳定系。将其中1个叶片较大、无裂叶、叶片着生紧凑、含油率55%的甘蓝型（染色体38条）油菜早代稳定系定名为P3-2。
本实施例中将F1代杂交种子在培养基上用秋水仙素进行人工染色体加倍的具体方法如下：
1）用纯度为75%酒精进行种子表面消毒25秒，用0.1%升汞消毒12分钟，然后用无菌水将种子表面的升汞冲洗干净，用无菌纸将种子表面的水分吸干，然后将种子接种在第一培养基（染色体加倍诱导培养基）上；
2)让种子在第一培养基上生根发芽，培养条件：温度250C，白天光照16小时，光照强度2000勒克斯，晚上暗培养8小时,待长到1—2片真叶时，将植株从下胚轴剪下继续在第二培养基上生长；
3）将剪下的植株继续插入第二培养基上继续培养，待有侧芽分化后，将侧芽及植株转入第三培养基（生根培养基）中进行生根培养；
4）生根培养二周后，植株长出粗壮的根后，将植株在室温炼苗3天后，取出植株将植株上的培养基冲洗干净，并在浸泡缓冲液中浸泡15分钟后移栽到温室中，温室温度250C，相对湿度60%，能保证移栽成活率在95%以上；
上述的第一培养基由以下配比的组分组成：
MS 培养基 1L
6-苄基腺嘌呤（6BA） 0.5mg
秋水仙素 30mg
蔗糖 20g
琼脂 8g。
第一培养基的pH=5.8—6.0。
MS培养基由Murashige和Skoog发明，简写为MS，其配方参见附表1。
附表1 MS培养基成分配方
上述的第二培养基由以下配比的组分组成：
MS培养基 1L
6-苄基腺嘌呤（6BA） 0.5mg
秋水仙素 20mg
蔗糖 30g
琼脂 8g。
第二培养基的pH=5.8—6.0。
上述的第三培养基由以下配比的组分组成：
MS 培养基 1L
α-萘乙酸 0.03mg
秋水仙素 5mg
蔗糖 20g
琼脂 8g。
第三培养基的pH=5.8-6.0。
上述的浸泡缓冲液由以下配比的组分组成：
水 1L
易保或克露 0.6g
α— 萘乙酸 0.5mg。
实施例2：
参见图1、图2、图4、图8,白菜型油菜雅安黄油菜YH(四川雅安地方品种，二倍体，2n=20)具有高含油、黄籽粒、生育期短、早熟、耐土壤贫瘠等优点，但品质为高芥酸、高硫苷、抗病能力差、易倒伏等缺点；白菜型油菜08nl引种自甘肃，具有抗旱、抗寒、抗倒伏、品质双低（低芥酸、低硫苷）、抗病能力好等优点。为了获得雅安黄油菜和08nl白菜型油菜共有优点的新白菜型油菜，将YH和08nl杂交，杂交F1蕾苔期人工去雄并套袋隔离，用本申请人获得的油菜双单倍体诱导系Y3380授粉，并套袋隔离。诱导后代F2代单株种植，并进行流式细胞检测、选育性正常、倍性（二倍体）正常、无诱导系显性性状（矮秆）植株花蕾期剥蕾、用3%的生理盐水处理柱头并强制自交，获得了F3种子，F3代按株系种植并株系内混合授粉，F3代鉴定株系内性状一致性和稳定性，选育出一个全黄籽、含油率（49%）、抗性较好、双低品质、熟期180天的稳定株（品）系YN-2。
本实施例2中油菜双单倍体诱导系选育方法同实施例1。
本发明方法能快速选育白菜型油菜常规品种或杂交育种新材料,特别是对白菜型油菜恢复系、保持系的选育中具有巨大的应用潜力，最快3代（2年），获得遗传稳定的白菜型油菜细胞质不育CMS恢复系和保持系，可4代(2—4年)形成白菜型杂交油菜新组合（新品种），也可最快3代获得白菜型油菜核不育GMS恢复系。本发明也能快速选育白菜型油菜常规品种，3代选育具有生产潜力的白菜型油菜常规油菜品种。
上述实施例是对本发明的上述内容作进一步说明，但不应将此理解为本发明上述主题的范围仅限于上述实施例。凡基于上述内容所实现的技术均属于本发明的保护范围。

Claims (3)

1.油菜双单倍体诱导系选育白菜型油菜品种及材料的方法，包括以下步骤：
1）确定白菜型品种及材料选育的目标性状；
2）将具有上述步骤1）中目标性状的至少两个不同遗传背景的白菜型油菜杂交或聚合杂交，获得杂交后代或聚合杂交后代，根据目标性状要求进行回交或多代回交，形成回交后代；
3）对上述步骤2）中获得的杂交、聚合杂交或回交后代,在花期，对花蕾进行人工去雄，并套袋隔离；
4）用油菜双单倍体诱导系花粉对上述步骤3）中去雄后2-4天植株进行人工授粉，并套袋隔离，收获其授粉后诱导结实种子；
5）对上述步骤4）获得的诱导结实种子进行种植，苗期利用流式细胞仪鉴定倍性，淘汰多倍体、单倍体、非白菜型油菜外型或具有油菜双单倍体诱导系显性性状特征植株，选择正常育性二倍体植株，单株套袋隔离；
6）上述步骤5）中二倍体单株套袋隔离，采用花蕾期剥蕾强制自交或花期质量百分浓度为3—5%的NaCl处理柱头后强制自交的方法，克服白菜型油菜自交不亲和性，获得自交后代；
7）上述步骤6）中获得的单株自交种子进行株系种植，调查株系形态一致性，并通过分子标记鉴定株系一致性及稳定性；
8）上述步骤7）中形态一致、遗传稳定的株系采取株系内群体授粉的方式获得遗传稳定的白菜型油菜稳定株系；
9）上述步骤8）中稳定株系进行产量潜力、抗性、品质性状鉴定，产量、品质性状、抗性达到生产需求的稳定株系，形成白菜型油菜常规品种；
10）上述步骤8）形成的白菜型油菜新品系与白菜型油菜细胞质不育系或细胞核不育系测交，根据测交后代的育性判断父本的恢保关系，当测交后代全可育其测交父本为恢复系，当测交后代全不育其测交父本为保持系；
11）上述步骤10）中测交父本为恢复系与对应不育系统不育系测配，选育白菜型油菜杂交组合或品种；测交父本为保持系与对应不育系统不育系多代回交，选育与该保持系基因型一致的新白菜型油菜不育系；
上述步骤4）中油菜双单倍体诱导系选育方法，包括如下步骤：
（1）选育具有孤雌生殖遗传特性的早代稳定系：
①将两个油菜亲本材料杂交F1代种子在培养基上用染色体加倍诱导剂进行人工染色体加倍获得加倍后的F1代植株；
②加倍后的F1代植株进行自交或强制自交获得F2代，对F2代进行田间种植观察，并鉴定每个单株的育性，选择可育后代自交获得F3代，对F3代进行纯合度鉴定，通过形态、细胞学以及分子标记鉴定，对后代DNA进行聚合酶链反应扩增，电泳观察每个特异引物扩增下单株的DNA带型及条带数目，显示每个单株都是两个亲本的杂交后代，每个单株之间分子标记图谱一致，说明这些单株是纯合系---早代稳定系；
③获得的早代稳定系与至少10个油菜常规纯合稳定系进行正反交，F1代、F2代鉴定早代稳定系的遗传特性，即是否有孤雌生殖特性；上述正反交，如有F1代分离，F2代出现部分稳定株系，对应的早代稳定系是具有孤雌生殖遗传特性的早代稳定系；
（2）选育携带显性遗传性状、具有孤雌遗传特性且倍性遗传稳定的多倍体油菜：
①具有孤雌生殖遗传特性的早代稳定系与具有显性性状油菜杂交得到杂交F1代种子，上述杂交F1种子在培养基上用染色体加倍诱导剂进行人工染色体加倍，得到加倍后的带显性性状的F1植株；
②对加倍的带显性性状的F1植株，通过显微观察或流式细胞仪进行染色体倍性鉴定，选择带显性性状的多倍体的植株，淘汰非正常加倍株、非整倍体植株、以及不带显性性状加倍植株；带显性性状的多倍体的植株主要是倍性遗传稳定、结实性好、具有孤雌生殖遗传特性、带显性性状的六倍体或八倍体油菜植株；
（3）油菜双单倍体诱导系鉴定及诱导能力测定：
①倍性遗传稳定、具有孤雌生殖遗传特性、带显性性状的多倍体植株中的显性性状能去除测交后代中产生的杂交株，如果测交后代中出现显性性状植株、或非整倍体植株，说明该植株是多倍体植株和母本杂交产生的，去除该植株；
②上述单株测交后代如果出现全不育、为正常倍性、即二倍体或四倍体油菜、且不带显性性状，说明该测交后代对应的父本基因未进入测交后代中，显性多倍体植株为油菜双单倍体诱导系。
2.如权利要求1所述的油菜双单倍体诱导系选育白菜型油菜品种及材料的方法，其特征在于油菜双单倍体诱导系选育是将两个亲本材料杂交F1代种子或具有孤雌生殖遗传特性的早代稳定系与具有显性性状油菜杂交得到的杂交F1代种子在培养基上用染色体加倍诱导剂进行人工染色体加倍，具体方法如下：
1)用纯度为75%酒精进行种子表面消毒25-40秒，用0.1%升汞消毒12-17分钟，然后用无菌水将种子表面的升汞冲洗干净，用无菌纸将种子表面的水分吸干，然后将种子接种在第一培养基上；
2）让种子在第一培养基上生根发芽，培养条件：温度23—250C，白天光照12—16小时，光照强度2000-3000勒克斯，夜晚暗培养8—12小时，待植株长到1—2片真叶时，从下胚轴处剪下植株继续在第二培养基上生长；
3)将剪下的植株继续插入第二培养基上继续培养，待有侧芽分化后，将侧芽及植株转入第三培养基中进行生根培养；
4)生根培养二周后，植株长出粗壮的根后，将植株在室温炼苗3—7天，取出植株将植株上的培养基用自来水冲洗干净，并在浸泡缓冲液中浸泡15—30分钟后移栽到温室中，温室温度160C—250C，相对湿度60—80%，能保证移栽成活率在95%以上；
上述的第一培养基由以下配比的组分组成：
MS 培养基 1L
6-苄基腺嘌呤 0.5—1.5mg
染色体加倍诱导剂 30—70mg
蔗糖 20—30g
琼脂 8—10g，
第一培养基的pH=5.8—6.0，
上述的第二培养基由以下配比的组分组成：
MS培养基 1L
6-苄基腺嘌呤 0.5—1mg
染色体加倍诱导剂 20—40mg
蔗糖 20—30g
琼脂 8—10g，
第二培养基的pH=5.8—6.0，
上述的第三培养基由以下配比的组分组成：
MS 培养基 1L
α-萘乙酸 0.03—0.5mg
染色体加倍诱导剂 5—20mg
蔗糖 20—30g
琼脂 8—10g，
第三培养基的pH=5.8-6.0，
上述的浸泡缓冲液由以及下配比的组分组成：
水 1L
易保或克露 0.6-1.2g
α-萘乙酸 0.5—1mg
3.如权利要求1或2所述的油菜双单倍体诱导系选育白菜型油菜品种及材料的方法，其特征在于染色体加倍诱导剂采用秋水仙素、氟乐灵、氨磺乐灵中的至少一种。
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