CN105981637A

CN105981637A - 添加微生物促进苦草生长的方法

Info

Publication number: CN105981637A
Application number: CN201510080337.2A
Authority: CN
Inventors: 何文辉
Original assignee: SHANGHAI TAIHE WATER ECOLOGICAL TECHNOLOGY Co Ltd
Current assignee: Shanghai Maritime University
Priority date: 2015-02-13
Filing date: 2015-02-13
Publication date: 2016-10-05

Abstract

本发明涉及环境工程领域，特别是涉及促进苦草幼苗生长的方法及其应用。所述方法包括以下步骤：在培养箱中加入含微生物的水体，将苦草幼苗置于所述含微生物的水体进行培养，并辅以间歇式曝气。本发明的方法简单、使得苦草幼苗存活率提高10~30%以上、并且经济成本低，适宜于实际生产应用，对于苦草在富营养化水体中的快速生长和繁殖具有重要的意义。

Description

添加微生物促进苦草生长的方法

技术领域

本发明涉及环境工程领域，特别是涉及一种促进苦草幼苗生长的方法及其应用。

背景技术

苦草(Vallisneria Natana)，属水鳖科苦草属多年生沉水植物，为我国最常见的沉水植物之一。当前，水体富营养化问题正受到全世界环境学者愈来愈多的关注。沉水植物作为水体生态系统的重要组成部分，能吸收水体中的氮磷等营养元素，对维护水体生态系统、控制水体富营养化具有重要的生态价值。苦草具有较强的水质净化能力，并且对水体污染有着较强的耐受性，在水生生态系统修复重建工程中，扮演着非常重要的角色，但由于水体富营养化加剧引起的水质条件的限制以及水生植物本身的生物学特性，水体中种植苦草的幼苗成活率较低，生长状况较差，无法快速构建水下沉水植物群落，逐步构建水下生态系统，达到净化水质的理想效果。

而现有技术中，也没有特别理想的能够促进苦草幼苗生长的方法。

发明内容

鉴于以上所述现有技术的缺点，本发明的目的在于提供一种促进苦草幼苗生长的方法，用于解决现有技术中的问题。

为实现上述目的及其他相关目的，本发明提供一种促进苦草幼苗生长的方法，所述方法包括以下步骤：在培养箱中加入含微生物的水体，将苦草幼苗置于所述含微生物的水体进行培养，并辅以间歇式曝气。

优选的，所述培养箱的温度是20～30℃。

优选的，所述光照强度是1200～2800lux。更优选为2500lux。

优选的，所述微生物为A类微生物系统，所述A类微生物系统为光合细菌、有益放线菌和有益芽胞杆菌的混合系统微生物群体。

优选的，在使用A类微生物系统时，所述A类微生物系统在水体中的终浓度为5～40g/m³。更优选为20g/m³，该浓度对苦草幼苗的生长促进作用最为明显。

更优选的，所述光合细菌选自蓝细菌、螺旋菌中一种或两种的组合。所述光合细菌在A类微生物系统中所占的质量比例为40-60％。更优选为50％。所述蓝细菌的拉丁名为：Cyanophyta。所述螺旋菌的拉丁名为：Helicobocton Pyloni。

更优选的，所述有益放线菌选自链霉菌。所述有益放线菌在A类微生物系统中所占的质量比为20％-40％。更优选为30％。所述链霉菌的拉丁名为Streptomyces。

更优选的，所述有益芽孢杆菌选自多粘类芽孢杆菌。所述有益芽孢杆菌在A类微生物系统中所占的质量比为10-30％。更优选为20％。所述有益芽孢杆菌的拉丁名为Bacillus。

所述A类微生物系统的构建方法为：将光合细菌、有益放线菌和有益芽胞杆菌按照质量比混合配制成A类微生物系统。把A类微生物系统放置在4000lux的光照下，经磁力搅拌器摇菌并每隔3-4天接种一次，12天后可投入到培养苦草幼苗的水体中。

优选的，所述微生物为B类微生物系统，所述B类微生物系统为氨氧化细菌与反硝化细菌的混合系统微生物群体。

优选的，在使用B类微生物系统时，所述B类微生物系统在水体中的终浓度为5～40g/m³。更优选为20g/m³，该浓度对苦草幼苗的生长促进作用最为明显。

更优选的，所述氨氧化细菌选自亚硝化细菌。所述氨氧化细菌在B类微生物系统中所占的质量比为30-50％。更优选为：40％。所述亚硝化细菌的拉丁名是Nitrosococcus。

更优选的，所述反硝化细菌选自反硝化杆菌。所述反硝化细菌在B类微生物系统中所占的质量比为50％-70％。更优选为60％。所述反硝化杆菌的拉丁名是Nitrococcus。

所述B类微生物系统的构建方法为：将氨氧化细菌和反硝化细菌按质量比配制成B类微生物系统。把B类微生物系统放置在4000lux的光照下，经磁力搅拌器摇菌并每隔3-4天接种一次，15天后可投入到培养苦草幼苗的水体中。

进一步优选的，所述微生物还可以是前述A类微生物系统和B类微生物系统二者的组合。

优选的，所述A类微生物系统在水体中的终浓度为5～40g/m³；所述B类微生物系统在水体中的终浓度为5～40g/m³。更优选的，所述A类微生物系统在水体中的终浓度为20g/m³；所述B类微生物系统在水体中的终浓度为20g/m³。

本发明第二方面提供了前述方法在促进苦草幼苗生长中的用途。

与现有技术相比，本发明的有益效果为：

(1)本发明选择具有产氧的蓝细菌和螺旋菌及可产生抗生素的链霉菌和具有杀灭害虫、固定分子态氮能力的有益芽孢杆菌组成A类微生物系统，能够解决病虫害、植物根系损失等因素而导致的苦草幼苗的生长和成活率等问题。

(2)考虑到苦草的生长环境，多为富营养化水体。因此为了防止水体富营养化加剧，消除影响苦草生长的不利因素，选择亚硝化细菌和反硝化细菌组成B类微生物系统，该系统可附着在苦草的根、茎、叶表面，大幅度增强氮的硝化/反硝化能力，帮助苦草达到消去水体中大量氮的目的，有助于苦草在污染水体中更好的生长。

(3)本发明的方法，在培养箱中加入A类微生物系统和B类微生物系统中的至少一种，并辅以微量间歇式曝气，不仅增强了苦草的根的活力，促进根吸收水分和养料，促进苦草的主根和侧根的增长，还提高了苦草的光合作用速率，从而促进苦草生长，生长的苦草根系发达，叶片长且宽，颜色翠绿，生物量明显增加。此外，在苦草的根、茎、叶表面及底质表层硝化、反硝化等细菌最佳的着生点和场所，它们可以帮助苦草修复受损的根部，并且可大幅度增强水体中氮的硝化/反硝化能力，达到消去水体中大量氮的目的，从而防止水体富营养化加剧，消除了影响苦草生长的不利因素。

(4)本发明中，以微生物作为促进苦草生长的调节剂，该系统的各种微生物均为常见的种类，并且在农业、食品等领域被广泛使用，安全可靠，不会对土壤环境或水体环境造成污染，另外，在苦草生长的过程中辅以曝气，可以防止水体富营养化加剧，促进苦草生长，并且具有一定的搅拌作用，可以使得微生物均匀扩散到水体中。还可以增加水中的溶解氧，有利于苦草的根进行有氧呼吸，增强根的活力，促进根吸收水分和养料，还有利于促进苦草的主根和侧根的增长，增加根密度。

(5)本发明的方法简单、使得苦草幼苗存活率提高10～30％以上、并且经济成本低，适宜于实际生产应用，对于苦草在富营养化水体中的快速生长和繁殖具有重要的意义。

具体实施方式

以下通过特定的具体实例说明本发明的实施方式，本领域技术人员可由本说明书所揭露的内容轻易地了解本发明的其他优点与功效。本发明还可以通过另外不同的具体实施方式加以实施或应用，本说明书中的各项细节也可以基于不同观点与应用，在没有背离本发明的精神下进行各种修饰或改变。

在进一步描述本发明具体实施方式之前，应理解，本发明的保护范围不局限于下述特定的具体实施方案；还应当理解，本发明实施例中使用的术语是为了描述特定的具体实施方案，而不是为了限制本发明的保护范围；在本发明说明书和权利要求书中，除非文中另外明确指出，单数形式“一个”、“一”和“这个”包括复数形式。

当实施例给出数值范围时，应理解，除非本发明另有说明，每个数值范围的两个端点以及两个端点之间任何一个数值均可选用。除非另外定义，本发明中使用的所有技术和科学术语与本技术领域技术人员通常理解的意义相同。除实施例中使用的具体方法、设备、材料外，根据本技术领域的技术人员对现有技术的掌握及本发明的记载，还可以使用与本发明实施例中所述的方法、设备、材料相似或等同的现有技术的任何方法、设备和材料来实现本发明。

本发明实施例中所用到的苦草幼苗、各种微生物均来自上海太和水环境科技发展有限公司朱行基地。

实施例1 A类微生物系统对苦草生长的促进作用

本实施例中用到的A类微生物系统：按照质量比为5:3:2取蓝细菌和螺旋菌的混合菌体、链霉菌和有益芽孢杆菌配置成A类微生物系统，并把A类微生物系统放置在4000lux的光照下，经磁力搅拌器摇菌并每隔3-4天接种一次，12天后可投入到培养苦草幼苗的水体中。

将苦草幼苗分别置于5个培养箱中，培养箱的温度为20-30℃，光照强度为2500lux，培养箱中装有蒸馏水，并依次加入0g/m³、5g/m³、10g/m³、20g/m³、40g/m³的A类微生物系统，每个培养箱中均放置5株苦草幼苗，同时辅以微量间歇式曝气。对苦草幼苗培养12天后，生长情况见表1。

表1投入不同浓度A类微生物系统后苦草幼苗的生长情况

经试验证明，当A类微生物系统中，蓝细菌和螺旋菌的混合菌体、链霉菌和有益芽孢杆菌各自所占的质量比例有上下10％的波动时，最终的促进枯草幼苗生长的效果基本一致。

实施例2 B类微生物系统对苦草生长的促进作用

本实施例中用到的B类微生物系统：将质量比是4:6的亚硝化细菌和反硝化细菌配制成B类微生物系统。把B类微生物系统放置在4000lux的光照下，经磁力搅拌器摇菌并每隔3-4天接种一次，15天后可投入到培养苦草幼苗的水体中。

将苦草幼苗分别置于5个培养箱中，培养箱的温度为20-30℃，光照强度为2500lux，培养箱中装有蒸馏水，并依次加入0g/m³、5g/m³、10g/m³、20g/m³、40g/m³的B类微生物系统，每个培养箱中均放置5株苦草幼苗，同时辅以微量间歇式曝气。对苦草幼苗培养12天后，生长情况见表2。

表2投入不同浓度B类微生物系统后苦草幼苗的生长情况

经试验证明，当B类微生物系统中，亚硝化细菌和反硝化细菌各自所占的质量比例有上下10％的波动时，最终的促进枯草幼苗生长的效果基本一致。

实施例3 A类微生物系统和B类微生物系统对苦草生长的促进作用

本实施例中用到的A类微生物系统和B类微生物系统分别同实施例1和实施例2。

将苦草幼苗分别置于5个培养箱中，培养箱的温度为20-30℃，光照强度为2500lux，培养箱中装有蒸馏水，并依次加入10g/m³A类微生物系统(以下简称A)和20g/m³B类微生物系统(以下简称B)、20g/m³A类微生物系统和20g/m³B类微生物系统、40g/m³的A类微生物系统和20g/m³B类微生物系统、20g/m³A类微生物系统和10g/m³B类微生物系统、20g/m³A类微生物系统和40g/m³B类微生物系统，每个培养箱中均放置5株苦草幼苗，同时辅以微量间歇式曝气。对苦草幼苗培养12天后，生长情况见表3。

表3投入不同浓度A、B类微生物系统后苦草幼苗的生长情况

经试验证明，当A类微生物系统中，蓝细菌和螺旋菌的混合菌体、链霉菌和有益芽孢杆菌各自所占的质量比例有上下10％的波动时；当B类微生物系统中，亚硝化细菌和反硝化细菌所占的质量比例各自有上下10％的波动时，最终的促进枯草幼苗生长的效果基本一致。

实施例4 苦草幼苗在富营养化水体的生长情况

将实施例1-3获得的最优苦草幼苗以及常规苦草幼苗分别应用在富营养河道水体中，同时辅以微量间歇式曝气。苦草幼苗在富营养河道水体中生长12天后，生长情况见表4。

表4投入富营养化水体中苦草幼苗的生长情况

综上所述，本发明所提供的促进苦草生长的方法，有效克服了现有技术中的种种缺点而具高度产业利用价值。

上述实施例仅例示性说明本发明的原理及其功效，而非用于限制本发明。任何熟悉此技术的人士皆可在不违背本发明的精神及范畴下，对上述实施例进行修饰或改变。因此，举凡所属技术领域中具有通常知识者在未脱离本发明所揭示的精神与技术思想下所完成的一切等效修饰或改变，仍应由本发明的权利要求所涵盖。

Claims

1.一种促进苦草幼苗生长的方法，所述方法包括以下步骤：在培养箱中加入含微生物的水体，将苦草幼苗置于所述含微生物的水体进行培养，并辅以间歇式曝气。

2.根据权利要求1所述的方法，其特征在于，所述培养箱的温度是20～30℃；所述培养箱的光照强度是1200～2800lux。

3.根据权利要求1所述的方法，其特征在于，所述微生物选自A类微生物系统、B类微生物系统中的任一或两种的组合；所述A类微生物系统为光合细菌、有益放线菌和有益芽胞杆菌的混合系统微生物群体；所述B类微生物系统为氨氧化细菌与反硝化细菌的混合系统微生物群体。

4.根据权利要求3所述的方法，其特征在于，在使用A类微生物系统时，所述A类微生物系统在水体中的终浓度为5～40g/m³；在使用B类微生物系统时，所述B类微生物系统在水体中的终浓度为5～40g/m³。

5.根据权利要求3所述的方法，其特征在于，所述A类微生物系统中，所述光合细菌选自蓝细菌、螺旋菌中一种或两种的组合；所述光合细菌在A类微生物系统中所占的质量比例为40-60％。

6.根据权利要求3所述的方法，其特征在于，所述A类微生物系统中，所述有益放线菌选自链霉菌；所述有益放线菌在A类微生物系统中所占的质量比为20％-40％。

7.根据权利要求3所述的方法，其特征在于，所述A类微生物系统中，所述有益芽孢杆菌选自多粘类芽孢杆菌；所述有益芽孢杆菌在A类微生物系统中所占的质量比为10-30％。

8.根据权利要求3所述的方法，其特征在于，所述B类微生物系统中，所述氨氧化细菌选自亚硝化细菌；所述氨氧化细菌在B类微生物系统中所占的质量比为30-50％。

9.根据权利要求3所述的方法，其特征在于，所述B类微生物系统中，所述反硝化细菌选自反硝化杆菌；所述反硝化细菌在B类微生物系统中所占的质量比为50％-70％。

10.如权利要求1-9任一权利要求所述的方法在促进苦草生长中的用途。