CN105861471B - 一种中性低温木糖苷酶CaXyl43A及其基因和应用 - Google Patents

一种中性低温木糖苷酶CaXyl43A及其基因和应用 Download PDF

Info

Publication number
CN105861471B
CN105861471B CN201610342316.8A CN201610342316A CN105861471B CN 105861471 B CN105861471 B CN 105861471B CN 201610342316 A CN201610342316 A CN 201610342316A CN 105861471 B CN105861471 B CN 105861471B
Authority
CN
China
Prior art keywords
xylosidase
caxyl43a
low temperature
gene
neutrality
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN201610342316.8A
Other languages
English (en)
Other versions
CN105861471A (zh
Inventor
姚斌
马锐
柏映国
黄火清
罗会颖
苏小运
王亚茹
王苑
师霞
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Institute of Animal Science of CAAS
Original Assignee
Feed Research Institute of Chinese Academy of Agricultural Sciences
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Feed Research Institute of Chinese Academy of Agricultural Sciences filed Critical Feed Research Institute of Chinese Academy of Agricultural Sciences
Priority to CN201610342316.8A priority Critical patent/CN105861471B/zh
Publication of CN105861471A publication Critical patent/CN105861471A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN105861471B publication Critical patent/CN105861471B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/24Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • C12N9/2402Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12N9/2477Hemicellulases not provided in a preceding group
    • C12N9/248Xylanases
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y302/00Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
    • C12Y302/01Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12Y302/01037Xylan 1,4-beta-xylosidase (3.2.1.37)

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

本发明涉及基因工程领域,具体地,本发明涉及一种中性低温木糖苷酶CaXyl43A及其基因和应用。其氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示,本发明的木糖苷酶的具有以下性质:最适pH6.8,最适温度35℃,在0℃保持酶活,比活为181.6U/mg;具有木糖苷酶、阿拉伯呋喃糖苷酶和外切木聚糖酶的活性;具有一定的木糖耐受性和完全降解木寡糖生成木糖的能力;且易于工业化发酵生产。做为一种新型的广谱酶制剂,可广泛用于水产饲料、食品、造纸、能源工业等。

Description

一种中性低温木糖苷酶CaXyl43A及其基因和应用
技术领域
本发明涉及基因工程领域,具体地,本发明涉及一种中性低温木糖苷酶CaXyl43A及其基因和应用。
背景技术
木聚糖(xylan)是植物生物质的主要成分,在自然界中的含量仅次于纤维素(Lyndet al.Microbiology and Molecular Biology Review,2002,66:506–577),其有效利用具有重要的意义。木聚糖的生物降解需要木聚糖酶(EC 3.2.1.8)将多聚糖切割成木寡糖,再由木糖苷酶(EC 3.2.1.37)进一步将木寡糖降解生成木糖(Collins et al.FEMSMicrobiology Review 2005,29:3–23)。因此木糖苷酶在木聚糖降解过程中起着限速酶的作用,可以减轻木聚糖酶的产物抑制作用(De Almeida et al.FEMS MicrobiologyLetters 1995,130:171–175)。多种微生物,包括细菌、古细菌、真菌等,都可以产生木糖苷酶,且木糖苷酶多为胞内酶,因此在生物能量转化方面也起着重要的作用(Saha.Bioresource Technology,2003,90:33–38;Jordan and Wagschal.AppliedMicrobiology and Biotechnology,2010,86:1647–1658)。基于氨基酸序列和催化域的结构,木糖苷酶划分在糖苷水解酶第3、39、43和52家族(http://www.cazy.org/glycoside-hydrolases.html)。第43家族的木糖苷酶数量多,且一般具有多种活性,因此在工业领域中具有更广泛的应用前景。
丝状真菌易于培养、含有多种木糖苷酶编码基因而成为木糖苷酶的理想来源。大多数丝状真菌来源的木糖苷酶都是中温或高温酶,在环境温度或低温条件下丧失酶活。开发中性低温的木糖苷酶在节约能源、保护环境、易于催化反应等方面具有重要的意义。
尽管真菌来源的木糖苷酶已广泛应用于不同的工业领域,获得新型具有优良特性的中性低温木糖苷酶仍具有重大的研究意义与应用价值。克隆和异源表达中性低温木糖苷酶,为生物降解、饲料、食品和造纸工业提供经济有效、环境友好的候补酶,是木糖苷酶应用于工业化生产所必需的。
发明内容
本发明的目的是提供一种能高效应用的中性低温木糖苷酶。
本发明的再一目的是提供编码上述中性低温木糖苷酶的基因。
本发明的另一目的是提供包含上述基因的重组载体。
本发明的另一目的是提供包含上述基因的重组菌株。
本发明的另一目的是提供一种制备上述中性低温木糖苷酶的基因工程方法。
本发明的另一目的提供上述中性低温木糖苷酶的应用。
本发明从枝孢菌(Cladosporium acalyphae SL-16)中分离得到一种新的中性低温木糖苷酶CaXyl43A。
上述中性低温木糖苷酶CaXyl43A,其氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示。
SEQ ID NO.1:
MTDPTQKDPSPIVTHLFTADPSAHVFNGKLYVYPSHDRETDIQDNDNGDQYDMNDYHVFSMPNVEGPVTDHGIALKASDIPWVDKQLWAPDAAEKNGKYYLYFPARDKEGIFRIGVAVADQPEGPFKPDENYIPGSYSIDPASFVDDDGQAYLYFGGIWGGQLQCWRTGEFKRDAYSTMEADGDEPALMPRVAKLSDDMHTFSSDVQDLVVNDTDGKPIHASKHDRRFFEAAWMHKYQGKYYFSYSTGDTHYLAYAIGDSPLGPFTYQDRILEPVKGWTTHHSIAEFKGKWYLFYHDTSISGKNHLRCVKIREIVYDEQGKIKLAQPQE
其中,该酶基因编码329个氨基酸,N端无信号肽序列,理论分子量为37.6kDa。
本发明的木糖苷酶CaXyl43A在中性(pH 6.5-6.8)和中低温(30-40℃)范围内均具有高活性的特性。本发明筛选到Cladosporium acalyphae SL-16所产生的木糖苷酶CaXyl43A,其最适pH值为6.8,在pH6.5~7.2的范围内维持70%以上的酶活性;最适温度为35℃,在30-40℃间均具有80%以上的酶活力;在0℃条件下还有酶活;具有木糖苷酶、阿拉伯呋喃糖苷酶和外切木聚糖酶的活力。这种性质的中性低温木糖苷酶还未曾有过报道。
本发明提供了编码上述中性低温木糖苷酶CaXyl43A。具体地,该基因的基因组序列如SEQ ID NO.2所示:
atgaccgaccctacacagaaagaccccagcccgatcgtcacccatctcttcacagctgaccccagcgctcacgtcttcaatggcaagctctacgtctacccttcccacgacagggagaccgacatccaggacaacgacaatggcgaccagtatgacatgaacgactaccacgtcttctccatgcccaatgtggaaggccccgtcaccgaccacggcatcgccctcaaggcatcagatatcccatgggtggataagcagctctgggcacccgatgctgcggagaagaacggcaaatactacctctacttccccgccagagacaaggagggtatcttcagaatcggtgttgctgtcgccgaccagcctgagggacctttcaagcccgacgagaactacatccccggcagctacagcatcgaccccgccagctttgttgacgatgacggccaggcctacctttacttcggcggtatctggggtggtcagctgcagtgctggcggaccggcgagttcaagcgcgacgcctactcgaccatggaagccgacggcgacgaacccgctctcatgcctcgcgtggccaaactgagcgacgacatgcacaccttctccagcgacgtgcaggacctcgtcgtcaacgacaccgacggcaagccgatccacgccagcaagcacgaccgccgcttcttcgaggccgcgtggatgcacaagtaccagggcaaatactacttctcatactccaccggcgacacccactacctcgcatacgccattggcgactctccactcggacccttcacataccaggacagaatcttggagcctgtcaaaggctggacgacgcaccactctattgcggagttcaagggcaagtggtacttgttctaccacgacacgagcatctcgggcaagaaccacttgcgctgcgtcaagatcagggagatcgtgtacgatgagcagggcaagatcaagttggcgcagccgcaggagtag
本发明通过PCR的方法分离克隆了木糖苷酶基因Caxyl43A,DNA全序列分析结果表明,木聚糖酶Caxyl43A结构基因全长990bp,没有内含子。
成熟蛋白理论分子量为37.6kDa。所述CaXyl43A是一种新的木糖苷酶。
本发明还提供了包含上述中性低温木糖苷酶基因Caxyl43A的重组载体,优选为pET30-Caxyl43A。将本发明的木糖苷酶基因插入到表达载体合适的限制性酶切位点之间,使其核苷酸序列可操作的与表达调控序列相连接。作为本发明的一个最优选的实施方案,优选为将本发明的木糖苷酶基因插入到质粒pET30(a)上的NdeI和EcoRI限制性酶切位点之间,使该核苷酸序列位于T7启动子的下游并受其调控,得到重组大肠杆菌表达质粒pET30-Caxyl43A。
本发明还提供了包含上述中性低温木糖苷酶基因Caxyl43A的重组菌株,优选所述菌株为大肠杆菌、酵母菌、芽孢杆菌、乳酸杆菌、曲霉或木霉,优选为重组菌株pET30/Caxyl43A。
本发明还提供了一种制备中性低温木糖苷酶CaXyl43A的方法,包括以下步骤:
1)用上述的重组载体转化宿主细胞,得重组菌株;
2)培养重组菌株,诱导重组木糖苷酶表达;以及
3)回收并纯化所表达的木糖苷酶CaXyl43A。
其中,优选所述宿主细胞为大肠杆菌,优选将重组大肠杆菌表达质粒转化大肠杆菌细胞(Escherichia coli)BL21,得到重组菌株pET30/Caxyl43A。
本发明还提供了上述中性低温木糖苷酶CaXyl43A的应用。
本发明首先所要解决的技术问题是克服现有技术的不足,获得中性低温木糖苷酶的菌物资源,提供一种性质优良的、适合于在饲料、食品、工业中应用新的中性低温木糖苷酶。本发明的木糖苷酶最适pH为6.8,在pH6.5~7.2都有较高的酶活性;在中性范围内pH稳定性好;比活力为181.6U/mg;具有宽泛的底物特异性。其中性低温的特点,可降低木糖苷酶在工业生产上的能源成本。其宽泛的底物特异性可以提高降解效率,增加木聚糖的利用率。还可以在常温条件下,将生物质降解的木寡糖转化为有价值的可发酵的木糖。因此,本木糖苷酶在多个产业可以与木聚糖酶协同作用,完全降解木聚糖。
附图说明
图1在大肠菌中表达的重组木糖苷酶的SDS-PAGE分析,其中,1:纯化的重组木糖苷酶;M:低分子量蛋白质Marker。
图2重组木糖苷酶的最适pH。
图3重组木糖苷酶的pH稳定性。
图4重组木糖苷酶的最适温度。
图5重组木糖苷酶的热稳定性。
图6重组木糖苷酶的木糖耐受性。
具体实施方式
试验材料和试剂
1、菌株及载体:本发明从枝孢菌Cladosporium acalyphae SL-16。大肠杆菌表达载体pET30(a)及菌株BL21。
2、酶类及其它生化试剂:内切酶购自TaKaRa公司,连接酶购自Invitrogen公司。对硝基苯基-β-D-木糖(pNPX)、对硝基苯基-α-L-阿拉伯呋喃糖(pNPAf)和榉木木聚糖购自Sigma公司,其它都为国产试剂(均可从普通生化试剂公司购买得到)。
3、培养基:
(1)Cladosporium acalyphae SL-16培养基为马铃薯汁培养基:1000mL马铃薯汁,10g葡萄糖,25g琼脂,pH5.0。
(2)大肠杆菌培养基LB(1%蛋白胨、0.5%酵母提取物、1%NaCl,pH7.0)。
说明:以下实施例中未作具体说明的分子生物学实验方法,均参照《分子克隆实验指南》(第三版)J.萨姆布鲁克一书中所列的具体方法进行,或者按照试剂盒和产品说明书进行。
实施例1 枝孢菌Cladosporium acalyphae SL-16产酶特性
将枝孢菌Cladosporium acalyphae SL-16经马铃薯汁培养基培养后,制成孢子悬液,接种于麸皮液体培养基中(Luo et al.Enzyme Microbial Technology,2009,45:126–133),15℃培养7d,以1mM的对硝基苯基-β-D-木糖为底物,在pH 6.0和30℃条件下反应10min,以分光光度计法确定其具有木糖苷酶活性。
实施例2 枝孢菌Cladosporium acalyphae SL-16木糖苷酶编码基因Caxyl43A的克隆
提取枝孢菌Cladosporium acalyphae SL-16基因组DNA:
将液体培养3天的菌丝体用无菌滤纸过滤放入研钵中,加入2mL提取液,研磨5min,然后将研磨液置于50mL离心管中,65℃水浴锅裂解20min,每隔10min混匀一次,在4℃下10000rpm离心5min。取上清于酚/氯仿中抽提除去杂蛋白,再取上清加入等体积异丙醇,于室温静置5min后,4℃下10000rpm离心10min。弃上清,沉淀用70%的乙醇洗涤两次,真空干燥,加入适量TE溶解,置于-20℃备用。
设计合成特异引物Caxyl43A-F/Caxyl43A-F:
Caxyl43A-F:5'-atgaccgaccctacacagaaagacc-3';
Caxyl43A-R:5'-ctactcctgcggctgcgccaacttg-3';
以枝孢菌Cladosporium acalyphae SL-16总DNA为模板进行PCR扩增。PCR反应参数为:94℃变性5min;然后94℃变性30sec,60℃退火30sec,72℃延伸60sec,30个循环后72℃保温10min。得到一约990bp片段,将该片段回收后与pEASY-T3载体相连送三博生物技术有限公司测序。
实施例3 枝孢菌Cladosporium acalyphae SL-16木糖苷酶基因的RT-PCR分析
提取枝孢菌Cladosporium acalyphae SL-16的总RNA,利用反转录酶得到cDNA的一条链,然后以引物Caxyl43A-E-F/Caxyl43A-E-F扩增该单链cDNA,获得木聚糖酶的cDNA序列,扩增得到产物回收后送三博生物技术有限公司测序。
Caxyl43A-E-F:5'-atgaccgaccctacacagaaagacc-3';
Caxyl43A-E-R:5'-ggggaattcctagtggtggtggtggtggtgctcctgcggctgcgccaacttg-3';
通过比较木糖苷酶的基因组序列和cDNA序列后发现该基因没有内含子,编码329个氨基酸和一个终止密码子,无信号肽序列,分离克隆得到的编码木糖苷酶的基因为新基因。
实施例4 重组木糖苷酶的制备。
将表达载体pET30(a)进行双酶切(NedI+EcoRI),同时将编码木糖苷酶的基因Caxyl43A双酶切(NedI+EcoRI),切出编码木糖苷酶的基因片段与表达载体pET30(a)连接,获得含有枝孢菌Cladosporium acalyphae SL-16木糖苷酶基因Caxyl43A的重组质粒pET30-Caxyl43A并转化大肠杆菌BL21,获得重组大肠杆菌菌株pET30/Caxyl43A。
取含有重组质粒的BL21菌株,接种于100mL LB培养液中,16℃150rpm振荡培养12h后,加入0.6%IPTG诱导10h,收集细胞,超声波破碎,离心收集上清液。测定木糖苷酶的活力。重组木糖苷酶的表达量为0.86U/mL。SDS-PAGE结果(图1)表明,重组木糖苷酶在大肠杆菌中得到了表达。所表达的木糖苷酶经过纯化之后,其蛋白质的含量达到总蛋白的15%以上。
实施例5 重组木糖苷酶的活性分析
分光光度计法(Shao et al.Applied and Environmental Microbiology,2011,77:719–726):具体方法如下:在pH6.8,35℃条件下,1mL的反应体系包括100μL适当的稀释酶液,900μL 1mM的对硝基苯基-β-D-木糖,反应10min,冷却后405nm测定OD值。1个酶活单位(U)定义为在给定的条件下每分钟释放出1μmol对硝基苯的酶量。
实施例6 重组木糖苷酶CaXyl43A的性质测定
1、重组木糖苷酶CaXyl43A的最适pH和pH稳定性的测定方法如下:
将实施例4纯化的重组木糖苷酶在不同的pH下进行酶促反应以测定其最适pH。底物对硝基苯基-β-D-木糖用不同pH的0.1mol/L柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液中30℃下进行木糖苷酶活力测定。结果(图2)表明,CaXyl43A的最适pH为6.8,在pH6.5~7.2的范围内,酶活性均维持在最大酶活性的60%以上。木糖苷酶于上述各种不同pH的缓冲液中30℃处理60min,再在pH6.8缓冲液体系中35℃下测定酶活性,以研究酶的pH耐性。结果(图3)表明木糖苷酶在pH 5.0-8.0之间均很稳定,在此pH范围内处理60min后剩余酶活性在70%以上,这说明此酶pH稳定性较好。
2、木糖苷酶的最适温度及热稳定性测定方法如下:
木糖苷酶的最适温度的测定为在柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液(pH6.8)缓冲液体系及不同温度下进行酶促反应。耐温性测定为木糖苷酶在不同温度下处理不同时间,再在pH6.8、35℃下进行酶活性测定。酶反应最适温度测定结果(图4)表明其最适温度为35℃。酶的热稳定性性试验表明(图5),重组酶在30℃时稳定性良好。40℃下保温60min,丧失80%的酶活。
3、木糖苷酶的Km值测定方法如下:
用不同浓度的对硝基苯基-β-D-木糖为底物,在柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液(pH6.0)缓冲液体系中,20℃和35℃下测定酶活性,计算出其在20℃和35℃下的Km、Vmax、kcat和kcat/Km值。经测定,此木糖苷酶在35℃下以对硝基苯基-β-D-木糖为底物的km值为2.73mg/mL,最大反应速度Vmax为272.4μmol/min·mg,kcat值为175.2/s和kcat/Km值为67.4ml/mg·s;在20℃下以对硝基苯基-β-D-木糖为底物的km值为0.69mg/mL,最大反应速度Vmax为58.1μmol/min·mg,kcat值为37.4/s和kcat/Km值为54.1ml/mg·s
4、不同金属离子化学试剂对CaXyl43A酶活的影响测定如下:
在酶促反应体系中加入不同浓度的不同的金属离子及化学试剂,研究其对酶活性的影响,各种物质终浓度为5mmol/L。在35℃、pH6.8条件下测定酶活性。结果(表1)表明,部分离子和化学试剂在浓度为5mmol时对重组木糖苷酶的活力有明显影响,包括Ni2+、Co2+、Mn2 +、Cu2+、Pb2+、Zn2+、Ag+、SDS和EDTA。
表1.各种化学试剂对木糖苷酶CaXyl43A活力的影响
5、CaXyl43A的底物特异性
在酶促反应体系中加入不同的底物,研究CaXyl43A的酶活性。在35℃、pH6.8条件下测定酶活性。结果(表2)表明,CaXyl43A同时具有木糖苷酶、阿拉伯呋喃糖苷酶和外切木聚糖酶的活性。
表2.CaXyl43A的底物特异性
底物 相对酶活(%)
对硝基苯基-β-D-木糖(1mM) 100.0
对硝基苯基-α-L-阿拉伯呋喃糖(1mM) 69.6
榉木木木聚糖(1%) 可检测
6、CaXyl43A的木糖耐受性
在酶促反应体系中加入0-400mM的木糖和4mM或5mM的对硝基苯基-β-D-木糖,研究CaXyl43A的木糖耐受性。在35℃、pH6.8条件下测定酶活性。结果(图6)表明,CaXyl43A的木糖耐受性Ki值为44.3mM。
7、CaXyl43A木糖苷酶降解木寡糖的产物分析如下:
在500μL 5mM的木寡糖(木二糖至木六糖)中加入100μL纯化的酶液,最适温度下保温12h。用无水乙醇将酶蛋白沉淀,上清液用2500色谱仪,利用高效阴离子交换色谱-脉冲安培(HPAEC-PAD)检测方法,进行产物中糖种类的分析。分析结果表明:CaXyl43A可以完全降解木寡糖,生成唯一的产物:木单糖。

Claims (9)

1.一种中性低温木糖苷酶CaXyl43A,其特征在于,其氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示。
2.一种中性低温木糖苷酶基因Caxyl43A,其特征在于,编码权利要求1所述的中性低温木糖苷酶CaXyl43A。
3.如权利要求2所述的中性低温木糖苷酶基因Caxyl43A,其特征在于,其碱基序列如SEQ ID NO.2所示。
4.包含权利要求3所述中性低温木糖苷酶基因Caxyl43A的重组载体。
5.包含权利要求2所述中性低温木糖苷酶基因Caxyl43A的重组载体pET30-Caxyl43A,其中,将权利要求2所述的中性低温木糖苷酶基因Caxyl43A插入到质粒pET30(a)上,使其核苷酸序列位于T7启动子的下游并受其调控,得到重组载体pET30-Caxyl43A。
6.包含权利要求2所述中性低温木糖苷酶基因Caxyl43A的重组菌株。
7.如权利要求6所述 的重组菌株,其特征在于,所述菌株为大肠杆菌、酵母菌、芽孢杆菌、乳酸杆菌、曲霉或木霉。
8.一种制备中性低温木糖苷酶CaXyl43A的方法,其特征在于,包括以下步骤:
1)用权利要求4的重组载体转化宿主细胞,得重组菌株;
2)培养重组菌株,诱导重组木糖苷酶表达;以及
3)回收并纯化所表达的木糖苷酶CaXyl43A。
9.权利要求1所述中性低温木糖苷酶CaXyl43A用于降解木聚糖的应用。
CN201610342316.8A 2016-05-23 2016-05-23 一种中性低温木糖苷酶CaXyl43A及其基因和应用 Active CN105861471B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201610342316.8A CN105861471B (zh) 2016-05-23 2016-05-23 一种中性低温木糖苷酶CaXyl43A及其基因和应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201610342316.8A CN105861471B (zh) 2016-05-23 2016-05-23 一种中性低温木糖苷酶CaXyl43A及其基因和应用

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN105861471A CN105861471A (zh) 2016-08-17
CN105861471B true CN105861471B (zh) 2019-08-27

Family

ID=56634521

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201610342316.8A Active CN105861471B (zh) 2016-05-23 2016-05-23 一种中性低温木糖苷酶CaXyl43A及其基因和应用

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN105861471B (zh)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110904076B (zh) * 2019-12-11 2020-10-16 云南师范大学 一种耐氯化钾的木糖苷酶突变体k317d及其应用
CN110904077B (zh) * 2019-12-11 2021-10-15 云南师范大学 低温改良的木糖苷酶突变体MutLK10及制备和用途

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103275955A (zh) * 2013-05-26 2013-09-04 山东隆科特酶制剂有限公司 一种高木糖耐受性的木糖苷酶Xyl43B及其基因和应用
CN105543197A (zh) * 2016-01-13 2016-05-04 云南师范大学 高木糖耐受性双功能半纤维素降解酶、其编码基因及其制备方法

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103275955A (zh) * 2013-05-26 2013-09-04 山东隆科特酶制剂有限公司 一种高木糖耐受性的木糖苷酶Xyl43B及其基因和应用
CN105543197A (zh) * 2016-01-13 2016-05-04 云南师范大学 高木糖耐受性双功能半纤维素降解酶、其编码基因及其制备方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
glycoside hydrolase family 43 protein [Acidomyces richmondensis];GenBank: KXL51042.1;《GenBank》;20160224;序列和注释 *

Also Published As

Publication number Publication date
CN105861471A (zh) 2016-08-17

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Nawani et al. Purification and characterization of a thermophilic and acidophilic chitinase from Microbispora sp. V2
Shah et al. Xylanase production by a newly isolated Aspergillus foetidus strain and its characterization
Taibi et al. Purification and biochemical characterization of a highly thermostable xylanase from Actinomadura sp. strain Cpt20 isolated from poultry compost
CN103275955B (zh) 一种高木糖耐受性的木糖苷酶Xyl43B及其基因和应用
Nghi et al. The wood rot ascomycete Xylaria polymorpha produces a novel GH78 glycoside hydrolase that exhibits α-L-rhamnosidase and feruloyl esterase activities and releases hydroxycinnamic acids from lignocelluloses
Sanjivkumar et al. Biosynthesis, purification and characterization of β-1, 4-xylanase from a novel mangrove associated actinobacterium Streptomyces olivaceus (MSU3) and its applications
Liao et al. A new acidophilic endo-β-1, 4-xylanase from Penicillium oxalicum: cloning, purification, and insights into the influence of metal ions on xylanase activity
Wipusaree et al. Purification and characterization of a xylanase from the endophytic fungus Alternaria alternata isolated from the Thai medicinal plant, Croton oblongifolius Roxb
WO2017197546A1 (zh) 一种β-甘露聚糖酶mRmMan5A及其编码基因与应用
Jeong et al. Characterization of Xyn10J, a novel family 10 xylanase from a compost metagenomic library
Lo et al. Characterization and high-level production of xylanase from an indigenous cellulolytic bacterium Acinetobacter junii F6-02 from southern Taiwan soil
Chi et al. Production and characterization of a thermostable endo-type β-xylanase produced by a newly-isolated Streptomyces thermocarboxydus subspecies MW8 strain from Jeju Island
Yang et al. Purification and characterization of an extracellular xylanase from Aspergillus niger C3486
Padilla-Reynaud et al. Suberin regulates the production of cellulolytic enzymes in Streptomyces scabiei, the causal agent of potato common scab
Wongratpanya et al. Multifunctional properties of glycoside hydrolase family 43 from Paenibacillus curdlanolyticus strain B-6 including exo-β-xylosidase, endo-xylanase, and α-L-arabinofuranosidase activities
CN104357429B (zh) 一种高温中性β‑葡萄糖苷酶HiBgl3A及其基因和应用
CN105861471B (zh) 一种中性低温木糖苷酶CaXyl43A及其基因和应用
CN107586767A (zh) 一种耐热内切型木聚糖酶EpXYN1及其编码基因和应用
CN102719417B (zh) 一种耐高温阿拉伯呋喃糖苷酶Abf51B8及其基因和应用
CN101724565A (zh) 一种酸性木聚糖酶xynb及其基因和应用
CN105950591B (zh) 一种中性低温木聚糖酶CaXyn10A及其基因和应用
Seemakram et al. Purification and characterization of low molecular weight alkaline xylanase from Neosartorya tatenoi KKU-CLB-3-2-4-1
Bajaj et al. Thermoactive alkali-stable xylanase production from a newly isolated Streptomyces sp. SU 9
Yoon et al. A novel endo-β-1, 4-xylanase from Acanthophysium sp. KMF001, a wood rotting fungus
CN102399768B (zh) 一种低温木聚糖酶ba-xyl11a及其基因和应用

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant
TR01 Transfer of patent right

Effective date of registration: 20200825

Address after: 100193 Beijing Old Summer Palace West Road, Haidian District, No. 2

Patentee after: Beijing Institute of Animal Science and Veterinary Medicine, Chinese Academy of Agricultural Sciences

Address before: 100081 Beijing, Zhongguancun, South Street, No. 12, No.

Patentee before: FEED Research Institute CHINESE ACADEMY OF AGRICULTURAL SCIENCES

TR01 Transfer of patent right