CN105624196A - 一种建立cyp2c11基因敲除大鼠模型的方法 - Google Patents
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-
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Abstract
本发明涉及一种建立CYP2C11基因敲除大鼠模型的方法，属于转基因技术领域；本发明首先确定待敲除基因的靶位点并设计合成其引物序列；插入经酶切好的Cas9-gRNA-Bsal载体中，扩增得到带有T7启动子序列的靶位点sgRNA；体外转录并纯化后检测其活性；将有活性的sgRNA和Cas9？RNA显微注射入大鼠单细胞胚，获得Founder大鼠；筛选出CYP2C11基因敲除大鼠杂合子后交配得到纯合子个体，即CYP2C11基因敲除大鼠；本发明提供全新的用P450基因敲除大鼠模型代替小鼠模型的制备方法，使基因敲除技术真正融入药物的非临床安全评价，有利于候选药物的早期毒性的发现。
Description
技术领域
本发明涉及一种建立CYP2C11基因敲除大鼠模型的方法，属于转基因技术领域。
背景技术
细胞色素P450(cytochromeP450)，又称混合功能氧化酶（mixed-functionoxidase)或单加氧酶(monooxygenase)，主要存在于肝微粒体中，在内源性物质和包括药物、环境化合物在内的外源性物质的生物转化中起着关键的作用。P450是药物代谢的第I相酶，它的活性对药物的代谢和毒性产物的生成往往起着决定性作用。人体内约有75%的药物通过CYP代谢。人体内CYP1A2，CYP2C9，CYP2C19，CYP2D6，CYP2E1和CYP3A4与95%现有临床药物的代谢相关，而与大鼠相对应的CYP1A2，CYP2C11，CYP2C13，CYP2D2，CYP2E1和CYP3A1同工酶是当两种或两种以上药物联合应用时，由于药物之间的相互作用而使药效或不良反应加强或减轻，甚至出现未预期的不良反应。因此，对该酶系的研究一直是药物代谢和毒理学中的热点领域。
尽管P450基因敲除小鼠模型的建立和应用已经取得了初步成功，但在实际的操作过程中一直存在两个主要困难，一是在临床前药物安全性评价工作中，常规的手段包括基于大鼠肝微粒体的体外试验、基于大鼠的各类毒性试验和药代动力学试验，如何把这些大鼠的数据与基因敲除小鼠模型的实验数据加以整合，需要操作者对不同物种的P450酶系具有深入的理论认识和长期的实践经验，这一困难在相当程度上制约了P450基因敲除小鼠模型的使用和推广；二是小鼠模型受限于其物种，存在可检测组织体积小，体液容量小等特点，这对后续的药代动力学和毒理学试验提出了更高的技术要求。因此建立P450基因敲除大鼠模型，将切实解决上述两个困难。
人类CYP2C9基因位于10号染色体，全长55kb，包含9个外显子和8个内含子。目前已证实约10％-20％的临床常用处方药物是CYP2C9的底物，其中包括抗癫痫作用的苯妥英钠、抗凝血作用的华法林等一些治疗指数较窄的药物。CYP2C11作为大鼠P450基因，与人类CYP2C9具有基本相同的底物和组织分布（尤其在雄性大鼠体内），被视为CYP2C9的直系同源基因。因此，CYP2C11基因敲除大鼠模型缺乏人类CYP2C9相类似的代谢能力，可以较好的模拟CYP2C9慢代谢人群，验证候选药物针对该人群的安全性。因此CYP2C11实验模型可以用以评估人体内基于CYP2C9药物相互作用情况，另外也可以作为个体化给药、致癌物代谢等研究的动物模型。
锌指核酸酶（zincfingernuclease，ZFN）和类转录激活因子效应物核酸酶（Transcriptionactivator-likeeffectornuclease，TALEN）分别通过锌指蛋白（Zincfingerprotein，ZNP）和类转录激活因子效应物（Transcriptionactivator-likeeffector）识别DNA序列，并在特定位点对DNA进行切割，形成双链断裂（DoublestrandbreaksDSB），随后在非同源末端连接（Nonhomologousendjoining，NHEJ）修复机制下形成随机的多个碱基的插入或删除，从而实现基因敲除；或者在同源重组（Homologousrecombination，HR）修复机制以及修复模板(donor)存在的条件下，实现定点的单个碱基或者长片段的插入、删除或者突变。此外，利用TALEN和特定的转录因子或者抑制因子结合，还可以实现对内源基因特异性的转录激活或者抑制、操纵内源基因的表达。目前TALEN技术的靶位点已经覆盖了多个物种的全基因组，实现了真正意义上的全基因组操作。ZFN和TALEN技术不仅极大地提高了基因打靶的效率，而且更高效地实现了对基因组的定点操作以及基因表达控制，如定点插入、删除和替换、转录抑制或激活等，真正的在应用水平实现了对动植物基因组的精细操作，因此也将以ZFN和TALEN为代表的技术统称为基因组编辑（Genomeediting）技术。
CRISPR是指成簇的、规律的短回文重复序列(Clusteredregularlyinterspacedshortpalindromicrepeats)。CRISPR-CAS9系统主要是由三个部分组成，分别是Cas9蛋白、precursorCRISPRRNA(pre-crRNA)和trans-activatingcrRNA(tracrRNA)，CRISPR-CAS9识别特定的DNA序列，进行特定位点切割造成双链DNA断裂(Double-Strandbreaks，DSB)，在没有模板的条件下，发生非同源重组末端连接(Non-homologousendjoining，NHEJ)，造成移码突变(frameshiftmutation)，导致基因敲除（刘志国，CRISPR-CAS9系统介导基因组编辑的研究进展，畜牧兽医学报，2014-45（10）：167-1583）。
与ZFN/TALEN相比，CRISPR/Cas更易于操作，效率更高，更容易得到纯合子突变体，而且可以在不同的位点同时引入多个突变。从质粒构建上来看，CRISPR-CAS9技术设计简单，操作简便，节约成本。CRISPR-CAS9系统设计过程中只需改变勒基因SgRNA的20个碱基组成的向导序列即可，一步简单的分子克隆即可完成。CRISPR/Cas9技术的发展十分迅猛，已经广泛应用在动物的细胞水平、植物、微生物以及人类医学等各方面。但是CRISPR-CAS9系统目前也面临着脱靶率高、特异性差的难题，这无疑是CRISPR/Cas9系统应用于基础研究和临床治疗的最大的挑战。
发明内容
本发明旨在提供一种CRISPR/cas9基因敲除的CYP2C11大鼠模型。
另一个方面，本发明提供了一种基于CRISPR/cas9基因敲除技术建立CYP2C11基因大鼠动物模型的方法，包括以下步骤：
（1）确定CYP2C11大鼠待敲除基因的特异性靶位点sgRNA1和sgRNA2：使用GeneKnock-OutwithCas9软件（南京徇齐生物技术有限公司提供），确定在CYP2C11基因（GeneID：29277）的靶位点exon6内挑选2个特异性的sgRNA靶序列，这两个靶序列分别为：sgRNA1：GCTACTGTAACTGACATGTT（SEQ.ID.NO.1）；sgRNA2：TCAAGGGTAAACTCAGACTG（SEQ.ID.NO.2）。CYP2C11基因长度为684bp。
（2）设计合成两对寡聚核苷酸链sgRNA1和sgRNA2的引物序列：根据步骤（1）sgRNA靶序列，设计2对引物（南京金斯瑞生物有限公司），
Rat_CYP2C11_c9_1-O1（SEQ.ID.NO.3）：caccGCTACTGTAACTGACATGTT
和Rat_CYP2C11_c9_1-O2（SEQ.ID.NO.4）：aaacAACATGTCAGTTACAGTAGC；
Rat_CYP2C11_c9_2-O1（SEQ.ID.NO.5）：caccTCAAGGGTAAACTCAGACTG
和Rat_CYP2C11_c9_2-O2（SEQ.ID.NO.6）：aaacCAGTCTGAGTTTACCCTTGA，
（3）将步骤（2）中合成的2对引物以逐步降温（94℃-55℃）的方法退火成双链，插入经Bsal酶切好的Cas9-gRNA-Bsal载体中。载体DNA测出浓度为1000ng/mL，测序验证插入片段正确，将正确的克隆用作转录模板。
（4）将步骤（3）正确的克隆作为PCR模板，通过PCR得到带有T7启动子序列的sgRNA1，sgRNA2。用T7QuickHighYieldRNASynthesisKit试剂盒体外转录sgRNA1，sgRNA2。酚氯仿萃取和酒精沉降法纯化转录产物。
（5）Cas9载体体外转录为Cas9mRNA并进行纯化：使用T7UltraKit(Ambion,AM1345)试剂盒，将pST1374-cas9载体经Agel线性化后，在体外转录成Cas9mRNA。用RNeasyMiniKit(Qiagen,74104)试剂盒纯化Cas9mRNA。
（6）将步骤（5）构建好的cas9mRNA与步骤（4)构建好的sgRNA1和sgRNA2，分别在斑马鱼受精卵中检测活性，结果显示sgRNA2活性较高。
（7）将步骤（6）有活性的sgRNA2和Cas9mRNA直接显微注射入大鼠单细胞胚，获得Founder大鼠。
（8）将步骤（7）获得的Founder大鼠作为F0代大鼠与SD大鼠交配得到的F1代，通过PCR扩增与DNA测序技术筛选得到F1代雄性CYP2C11基因敲除大鼠杂合子个体，再将F1代雄性杂合子大鼠与SD母鼠杂交，得到子代（F2代）杂合子大鼠，将得到的子代杂合子大鼠按雌雄2:1比例合笼交配获得纯合子个体，即为CYP2C11基因敲除大鼠模型。
本发明的主要优点在于：
CYP2C11作为大鼠P450基因，与人类CYP2C9具有基本相同的底物和组织分布（尤其在雄性大鼠体内），被视为CYP2C9的直系同源基因。目前已证实约10％-20％的临床常用处方药物是CYP2C9酶的底物，其中包括抗癫痫作用的苯妥英钠、抗凝血作用的华法林等一些治疗指数较窄的药物。药物基因组学研究发现，高加索人种中大约有10%-30%属于CYP2C9慢代谢者，亚洲人种约为3%-5%。因此，CYP2C11基因敲除大鼠模型缺乏人类CYP2C9相类似的代谢能力，可以较好的模拟CYP2C9慢代谢人群，验证候选药物针对该人群的安全性。
细胞色素P450基因敲除小鼠模型虽然是药物代谢研究和临床前安全性评价的重要工具，但是有两个主要不足限制了该类模型的应用：一是基于小鼠模型的数据难以与常规的大鼠实验数据（包括基于大鼠肝微粒体的体外试验、基于大鼠的各类毒性试验和药代动力学试验）进行比较和整合；二是小鼠可检测组织体积小，体液容量小，提高了后续药代动力学和毒理实验的难度。本发明提出针对这两个困难的解决办法：首次将最新的CRISPR/cas9基因敲除技术引入细胞色素P450领域，建立了最早的CYP2C11基因敲除大鼠模型。
本发明构建了CYP2C11基因敲除大鼠模型，模拟人类CYP2C9慢代谢型人群。项目的成功实施是细胞色素P450基因敲除小鼠模型的全新升级，实现P450基因敲除技术与常规药物研发过程的无缝对接。同时全新的用P450基因敲除大鼠模型代替小鼠模型，将使基因敲除技术真正融入药物的非临床安全评价，有利于候选药物的早期毒性的发现。
附图说明
图1：菌落PCR鉴定图(A：marker；B，C：目的条带为sgRNA1；D，E：目的条带为sgRNA2)。
图2：sgRNA转录产物，电泳鉴定转录产物图（1-1：sgRNA1，1-2：对照；2-1：sgRNA，2-2：对照）
图3：显示了CYP2C11基因敲除大鼠PCR条带图（A：雄性SD大鼠；B：雌性SD大鼠；
C：雄性CYP2C11基因敲除大鼠；D：雌性CYP2C11基因敲除大鼠E：Marker）。
图4：大鼠基因序列图（A：SD大鼠序列；B：杂合子CYP2C11基因敲除大鼠序列；C：纯合子CYP2C11基因敲除大鼠序列）。
图5：WesternBlot鉴定图（A：雄性SD大鼠；B：雌性SD大鼠；C：雄性CYP2C11基因敲除大鼠；D：雌性CYP2C11基因敲除大鼠）。
具体实施方式
实施例1：
一、使用GeneKnock-OutwithCas9软件（南京徇齐生物技术有限公司提供），确定在CYP2C11基因（GeneID：29277）的靶位点exon6内挑选2个特异性的sgRNA靶序列，这两个靶序列分别为sgRNA1：GCTACTGTAACTGACATGTT；sgRNA2：TCAAGGGTAAACTCAGACTG
二、构建可表达sgRNA的Cas9质粒
（1）在南京金斯瑞生物科技有限公司合成2对特异性的sgRNA靶序列引物：
RatCYP2C11_c9_1-O1：caccGCTACTGTAACTGACATGTT
和Rat_CYP2C11_c9_1-O2：aaacAACATGTCAGTTACAGTAGC；
Rat_CYP2C11_c9_2-O1：caccTCAAGGGTAAACTCAGACTG
和Rat_CYP2C11_c9_2-O2：aaacCAGTCTGAGTTTACCCTTGA
（2）取sgRNA1的上下游引物（100μM）5μL混合；同时取sgRNA2的上下游引物（100μM）5μL混合，分别放入沸水，20min取出（94℃~55℃），退火成双链，分别插入经Bsal酶切好的Cas9-gRNA-Bsal载体中（南京徇齐生物技术有限公司），转化，LB固体培养基涂板。次日，分别将连接sgRNA1和sgRNA2的平板取出，随机各挑3个白色菌落，放入含有20mLLB培养基的EP管中，做菌落PCR，图1显示B，C为目的条带sgRNA1；D，E为目的条带sgRNA2。
其中，菌落PCR反应体系：U6Forward0.5μL，每对oligo的Reverse0.5μL，2XMIX10μL，模板1μL，加H2O至20μL。PCR反应条件：95℃2min，95℃30sec，50℃30sec，72℃30sec，72℃3min，32个循环。PCR完成后，将PCR产物进行琼脂糖凝胶验证(2%)，目的条带大小97bp，将验证正确的克隆菌液，放入LB液体培养基过夜扩大培养，提取过夜培养的菌液质粒，质粒DNA测出浓度为1000ng/mL，经测序验证（上海生工生物工程有限公司）插入片段大小正确，将正确的sgRNA1和sgRNA2质粒DNA用作扩增模板。
通过PCR扩增得到带有T7启动子序列的sgRNA1和sgRNA2，用T7QuickHighYieldRNASynthesisKit试剂盒体外转录sgRNA1与sgRNA2，图2为sgRNA1与sgRNA2的转录产物，获得带有T7启动子的sgRNA的转录产物；图中1-1：sgRNA1，1-2：对照；2-1：sgRNA，2-2：对照。
T7启动子引物为：
Rat_CYP2C11_c9_1-T7-O1（SEQ.ID.NO.7）：
caccTAATACGACTCACTATAGGGGCTACTGTAACTGACATGTT
Rat_CYP2C11_c9_2-T7-O2（SEQ.ID.NO.8）：
caccTAATACGACTCACTATAGGGTCAAGGGTAAACTCAGACTG
扩增带有T7启动子序列的sgRNA1和sgRNA2反应体系如下：
Taq0.5μL
Mg2+4μL
dNTP1μL
Buffer(Mg2+free)5μL
Forward2μL
Reverse2μL
模版（sgRNA1、sgRNA2质粒DNA）5~10ng
H2O（RNAfree)to50μL
PCR反应条件：98℃2min，98℃30sec,55℃30sec，72℃30sec，72℃5min，循环30次
体外转录体系：
Nucleasefreewater1μL
NTPbufferMIX5μL
PCR模板（带有T7启动子序列的sgRNA1和sgRNA2）8μL
T7RNAPolymerase1μL
Total15μL
将反应后的转录产物混匀，离心，封口膜封好，37℃，过夜。
（3）纯化转录产物
酚氯仿萃取和酒精沉降法纯化转录产物sgRNA1和sgRNA2，用RNA-freewater补充体系到180μL，再加20μL3M醋酸钠，pH=5.2，混匀，各加200μL的酚氯彷，混匀，13000g，离心，10min，吸取上清；加上清的2倍体积的100%酒精，放于-80℃冰箱，30min，取出，4℃离心，13500g，10min，去上清。各加500μL70%酒精，13500g，7min；去上清，注意不要吸走沉淀；常温干燥30min加30μLRNA-freewater，溶解，测转录产物sgRNA1和sgRNA2浓度均为1000ng/μL。
（4）转录Cas9载体
使用T7UltraKit(Ambion,AM1345)试剂盒，将pST1374-cas9载体（南京徇齐生物技术有限公司）经Agel线性化后，在体外转录成Cas9mRNA。用RNeasyMiniKit(Qiagen,74104)试剂盒纯化Cas9mRNA。
三、将构建出的Cas9mRNA和sgRNA1为一组，Cas9mRNA和sgRNA2为一组分别显微注射到15枚斑马鱼受精卵（南京徇齐生物技术有限公司）中检测sgRNA1和sgRNA2活性，（其中用量分别为cas9mRNA：50ng/μL，sgRNA1：100ng/μL，sgRNA2：100ng/μL）；sgRNA1组取2个斑马鱼受精卵进行检测，结果鱼卵中检测突变率为0%，sgRNA2组取5个斑马鱼受精卵进行检测，结果鱼卵中检测突变率为100%，结果显示sgRNA-2活性较高。
表1.sgRNA1和sgRNA2活性比较
四、将检测得到的有活性的sgRNA2和Cas9mRNA混合直接显微注射入10只受体（SD母鼠，南京徇齐生物技术有限公司）的单细胞胚中，其中用量为：cas9mRNA：50ng/μL，sgRNA2：30ng/μL；总共注射226枚胚胎，结果存活202枚。由此获得Founder大鼠，将Founder大鼠做为F0代与SD大鼠杂交，利用PCR与基因测序技术鉴定（上海生工生物工程有限公司），获得F1代雄性CYP2C11基因敲除大鼠杂合子1只（鉴定方法同实施例2的步骤2-4所述）。
表2：胚胎注射结果
实施例2：
一、CYP2C11基因敲除大鼠的繁殖：
采用1只F1代雄性CYP2C11基因敲除大鼠杂合子和2只SD雌鼠（江苏大学动物实验中心提供）合笼的方式进行繁殖。三个月后得到子代17只，对子代（F2代）进行鉴定，鉴定结果为子代雄性大鼠杂合子11只，雌性大鼠杂合子6只。将得到的子代雄性杂合子（CYP2C11+/-）与雌性杂合子（CYP2C11+/-）为亲代以1：2配对，扩大纯合子种群数量。
二、CYP2C11基因组DNA提取与鉴定
子代大鼠在出生7～14d时，用剪脚趾标记法标记，收集剪下的组织，加入裂解液和蛋白酶K（sigma），混匀。恒温电热振荡箱中55℃过夜。加入酚∶氯仿∶异戊醇（体积比25∶24∶1），混匀。12000r/min，离心5min，吸上清液至另一EP管中。加入与上清液等体积异丙醇，沉淀DNA，离心15min。倒掉上清液，加入75%乙醇。倒掉乙醇，干燥。加入50μLTE缓冲液溶解。
将得到的DNA作为模板进行PCR反应：引物序列由上海生工生物工程有限公司提供，上游引物（SEQ.ID.NO.9）：5′-AGTGATGGAAAACTGACTACATTGC-3′，下游引物（SEQ.ID.NO.10）：5′-TGCTACAGACACCTCCCAGT-3′。目的基因片段长度为684bp。PCR反应条件：95℃5min，94℃30sec，60℃30sec，72℃45sec，72℃5min，16℃Hold，重复35个循环。1%琼脂糖凝胶电泳获得PCR条带。纯化PCR产物，送上海生工生物工程有限公司测序。
三、CYP2C11基因敲除大鼠纯合子和杂合子的确定
根据PCR条带图3，在684bp处均有亮带表明含有CYP2C11基因；测序结果图4C显示，CYP2C11基因敲除大鼠测序图为单峰，在350bp左右处成功插入2bp（GT），表明获得纯合CYP2C11基因敲除大鼠。
CYP2C11基因敲除大鼠杂合子的测序的鉴定判断是：测序结果图4B显示，CYP2C11基因敲除大鼠测序图为双峰，在350bp左右处成功插入2bp（GT），表明获得杂合CYP2C11基因敲除大鼠。
四、Westernblot验证CYP2C11基因敲除大鼠模型肝脏中CYP2C11的表达
分别取两月大雌雄CYP2C11基因敲除纯合子大鼠与SD大鼠（江苏大学动物实验中心提供）各一只，二氧化碳窒息法处死大鼠，差速离心法提取肝微粒体，利用Westernblot技术确定肝微粒体中CYP2C11基因敲除大鼠蛋白表达，图5A显示肝脏中雄性CYP2C11基因敲除大鼠缺乏CYP2C11蛋白的表达。以上说明CYP2C11基因敲除大鼠模型构建成功。
SEQUENCELISTING
<110>江苏大学
<120>一种建立CYP2C11基因敲除大鼠模型的方法
<130>一种建立CYP2C11基因敲除大鼠模型的方法
<160>10
<170>PatentInversion3.3
<210>1
<211>20
<212>DNA
<213>大鼠（Rattusnorvegicus）
<400>1
gctactgtaactgacatgtt20
<210>2
<211>20
<212>DNA
<213>大鼠（Rattusnorvegicus）
<400>2
tcaagggtaaactcagactg20
<210>3
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>3
caccgctactgtaactgacatgtt24
<210>4
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>4
aaacaacatgtcagttacagtagc24
<210>5
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>5
cacctcaagggtaaactcagactg24
<210>6
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>6
aaaccagtctgagtttacccttga24
<210>7
<211>44
<212>DNA
<213>人工序列
<400>7
cacctaatacgactcactataggggctactgtaactgacatgtt44
<210>8
<211>44
<212>DNA
<213>人工序列
<400>8
cacctaatacgactcactatagggtcaagggtaaactcagactg44
<210>9
<211>25
<212>DNA
<213>人工序列
<400>9
agtgatggaaaactgactacattgc25
<210>10
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<400>10
tgctacagacacctcccagt20
Claims (10)
1.一种建立CYP2C11基因敲除大鼠模型的方法，其特征在于，所述方法是基于CRISPR/cas9基因敲除技术。
2.根据权利要求1所述的一种建立CYP2C11基因敲除大鼠模型的方法，其特征在于，所述方法是敲除P450基因家族中的CYP2C11基因建立的大鼠模型。
3.根据权利要求1所述的一种建立CYP2C11基因敲除大鼠模型的方法，其特征在于，按以下步骤进行：
(1)确定CYP2C11大鼠待敲除基因的特异性靶位点sgRNA1和sgRNA2；
(2)设计合成两对寡聚核苷酸链sgRNA1和sgRNA2的引物序列；
(3)将步骤（2）中合成的2对引物以逐步降温的方法退火成双链，插入经Bsal酶切好的Cas9-gRNA-Bsal载体中；将经验证正确的克隆片段用作扩增模板；
(4)将步骤（3）经验证正确的克隆片段用作扩增模板，通过PCR扩增得到带有T7启动子序列的sgRNA1和sgRNA2；体外转录带有T7启动子序列的sgRNA1和sgRNA2后纯化转录产物；
（5）Cas9载体体外转录为Cas9mRNA并进行纯化；
(6)将步骤（5）得到的Cas9mRNA分别与步骤（4）得到的sgRNA1和sgRNA2混合，直接注射入斑马鱼受精卵检测sgRNA1和sgRNA2的活性；
(7)将步骤（6）验证有活性的sgRNA和Cas9RNA混合直接显微注射入大鼠单细胞胚，获得Founder大鼠；
(8)PCR扩增与DNA测序技术筛选出CYP2C11基因敲除大鼠杂合子，杂合子间交配得到纯合子个体，即为CYP2C11基因敲除大鼠模型。
4.根据权利要求3所述的一种建立CYP2C11基因敲除大鼠模型的方法，其特征在于，步骤（1）中所述的2个特异性的靶位点序列分别为：sgRNA1：GCTACTGTAACTGACATGTT；sgRNA2：TCAAGGGTAAACTCAGACTG。
5.根据权利要求3所述的一种建立CYP2C11基因敲除大鼠模型的方法，其特征在于，步骤（2）中所述的2个特异性的靶位点序列引物分别为：Rat_Cyp2c11_c9_1-O1：caccGCTACTGTAACTGACATGTT
和Rat_Cyp2c11_c9_1-O2：aaacAACATGTCAGTTACAGTAGC；
Rat_Cyp2c11_c9_2-O1：caccTCAAGGGTAAACTCAGACTG
和Rat_Cyp2c11_c9_2-O2：aaacCAGTCTGAGTTTACCCTTGA。
6.根据权利要求3所述的一种建立CYP2C11基因敲除大鼠模型的方法，其特征在于，步骤（4）中所述的PCR扩增得到带有T7启动子序列的sgRNA1和sgRNA2中，T7启动子扩增引物为：
Rat_Cyp2c11_c9_1-T7-O1：
caccTAATACGACTCACTATAGGGGCTACTGTAACTGACATGTT
Rat_Cyp2c11_c9_2-T7-O2：
caccTAATACGACTCACTATAGGGTCAAGGGTAAACTCAGACTG。
7.根据权利要求3所述的一种建立CYP2C11基因敲除大鼠模型的方法，其特征在于，步骤（6）中所述注射入斑马鱼受精卵中cas9mRNA、sgRNA1、sgRNA2的用量分比为：50ng/μL、100ng/μL、100ng/μL。
8.根据权利要求3所述的一种建立CYP2C11基因敲除大鼠模型的方法，其特征在于，步骤（7）中所述有活性的sgRNA为sgRNA2；注射入大鼠单细胞胚的cas9mRNA和sgRNA2的用量分别为：50ng/μL、30ng/μL。
9.根据权利要求3所述的一种建立CYP2C11基因敲除大鼠模型的方法，其特征在于，步骤（8）中所述杂合子间交配为雄性杂合子（CYP2C11+/-）与雌性杂合子（CYP2C11+/-）以1：2配对。
10.一种CYP2C11基因敲除大鼠模型，其特征在于，所述模型是基于CRISPR/cas9基因敲除技术，敲除P450基因家族中的CYP2C11基因建立的大鼠模型。
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