CN105277493B - 检测dera酶催化醛缩反应液中氯乙醛含量及催化效率的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种检测DERA酶催化连续醛缩反应液中氯乙醛含量及催化效率的方法,检测反应液中氯乙醛含量的方法包括:(1)取反应上清液,加入2,4‑二硝基苯肼,在酸性条件下进行反应,获得样本反应液;(2)向样本反应液中加入碱液继续反应,获得样本待测液;(3)在520~535nm波长下测量样本待测液的吸光度,根据标准曲线计算反应上清液中氯乙醛的含量。然后根据计算参与催化反应的氯乙醛的消耗量来反映DERA酶的催化效率。在528nm下测量样本待测液的吸光度,在该波长下只有氯乙醛参与产生的产物的吸收峰,不存在乙醛参与产生的产物的干扰,测量结果稳定、其准确率和灵敏度均大大提高。
Description
技术领域
本发明涉及一种酶催化效率的检测方法,具体涉及一种检测DERA酶催化醛缩反应液中氯乙醛含量及催化效率的方法。
背景技术
他汀类药物是降血脂主要药物,其结构中均带有侧链(3R,5S)-二羟基酯结构,该结构可作为甲羟戊二酸单酰辅酶A(HMG-CoA)还原酶抑制剂,抑制HMG-CoA向甲羟戊酸的还原性转化,进而降低低密度脂蛋白胆固醇的水平,从而达到降低血脂的目的。
他汀类药物虽然化学结构相对简单,但其制备过程难度较大,原因有两个,一是侧链(3R,5S)-二羟基酯具有2个手性中心,难以通过一步反应完成;二是侧链(3R,5S)-二羟基酯在他汀类分子中的对映体过量(e.e.)和非对映体过量(d.e.)值分别大于99.5%和99%,使得对映体的拆分比较困难。这些因素都导致他汀类药物侧链合成产率较低,成本较高。
生物催化是解决当前问题的重要途径。目前,已经发现有生物酶对羟醛缩合反应有催化效果,其中醛缩酶DERA能够催化乙醛和氯乙醛的连续醛缩反应,生成带有两个手性中心的6-氯-(3R,5S)-二羟基醛,在他汀类药物合成中具有巨大的潜在应用价值。
但不同的生物酶,甚至不同来源的DERA酶,对连续醛缩反应的催化效果均不相同。在寻找催化效果更佳的DERA酶的过程中,就需要对其产物进行检测,以评价DERA酶的催化效率。然而,由于利用DERA酶催化连续醛缩反应时,对其产物的检测非常困难,一般需要用到气相色谱等仪器,对仪器要求高,检测成本高,从而严重限制了改进DERA酶催化性能的研究。
通过检测DERA酶催化连续醛缩反应的上清液中未反应底物的含量,可以得出参与催化反应的底物的消耗量,从而可获得DERA酶的催化效率。
对于甲醛、乙醛等羰基化合物的检测方法,一般是先将甲醛在酸性条件下与2,4-二硝基苯肼反应,生产稳定的2,4-二硝基苯腙;然后可经环己烷萃取,用配有电子波或检测器的气相色谱仪测定2,4-二硝基苯腙的含量,得出甲醛的含量;还可将2,4-二硝基苯腙置于碱性条件下生成有色的醌类化合物,并在430nm左右波长下利用比色法测定醌类化合物的吸光度,也可以计算出甲醛的含量。
但DERA酶催化连续醛缩反应的反应体系中,含有乙醛和氯乙醛两种羰基化合物,乙醛和氯乙醛均能依次与2,4-二硝基苯肼、碱液发生反应,生成棕红色化合物。在测量含有两种棕红色化合物的样本待测液的吸光度时,本发明人发现,在430nm左右波长下测量时,检测结果极不稳定,准确率较差。
发明内容
本发明提供了一种检测DERA酶催化连续醛缩反应液中氯乙醛含量的方法,该方法具有检测结果准确、检测灵敏度高等特点。
一种检测DERA酶催化连续醛缩反应液中氯乙醛含量的方法,包括以下步骤:
(1)取反应上清液,加入2,4-二硝基苯肼,在酸性条件下进行反应,获得样本反应液;
(2)向样本反应液中加入碱液继续反应,获得样本待测液;
(3)在520~535nm波长下测量样本待测液的吸光度,根据标准曲线计算反应上清液中氯乙醛的含量。
传统方法在检测溶液中羰基化合物的含量时,一般是在430nm左右波长下测量样本待测液的吸光度。但本发明的上清液中含有乙醛和氯乙醛两种羰基化合物,乙醛和氯乙醛均能依次与2,4-二硝基苯肼、碱液发生反应,生成棕红色化合物。在测量含有两种棕红色化合物的样本待测液的吸光度时,发明人发现,在430nm左右波长下测量时,检测结果极不稳定,准确率较差。这是因为乙醛参与反应生成的棕红色化合物A,其特异性吸收峰在438nm处,而氯乙醛参与反应生成的棕红色化合物B,其特异性吸收峰却在520~535nm,这是出乎本领域技术人员常规认知之外的。同时棕红色化合物B在430nm波长下也具有与棕红色化合物A相近的吸收峰,两者的吸收峰彼此覆盖,使得在430nm左右波长下测量样本待测液的吸光度时,测量结果不准确。而本发明在520~535nm下测量样本待测液的吸光度,在该波长下只有棕红色化合物B的吸收峰,测量结果稳定、准确率和灵敏度均大大提高。
具体地,所述方法包括:
(1)取反应上清液,加入2,4-二硝基苯肼,在酸性条件下进行反应,获得样本反应液;
作为优选,2,4-二硝基苯肼的终浓度为0.0025%~0.005%,更为优选的终浓度为0.005%。根据本领域技术人员的常规认知,2,4-二硝基苯肼的加入量应为过量,大于反应液中乙醛与氯乙醛的总量。
作为优选,上清液与2,4-二硝基苯肼的反应时间为10~30min;更优选的反应时间为20min。
(2)向样本反应液中加入碱液继续反应,获得样本待测液;
作为优选,加入碱液后至pH为8~9。
作为优选,样本反应液与碱液的反应时间为5~20min;更优选的反应时间为10min。
(3)在520~535nm波长下测量样本待测液的吸光度,根据标准曲线计算反应上清液中氯乙醛的含量;
作为优选,在528nm波长下测量样本待测液的吸光度,因棕红色化合物B的最大吸收峰在528nm处。
所述标准曲线的建立方法为:
(a)制备一组氯乙醛浓度呈梯度分布的标准品;
(b)取各标准品,加入2,4-二硝基苯肼,在酸性条件下进行反应,再加入碱液继续反应,获得标准品待测液;
(c)在520~535nm的波长下测量标准品待测液的吸光度;
(d)根据氯乙醛浓度与吸光度绘制标准曲线。
本发明还提供了一种快速检测DERA酶催化效率的方法,包括以下步骤:
(1)在反应体系中加入DERA酶、乙醛和氯乙醛,经催化反应后取上清液;
(2)利用上述的方法检测上清液中氯乙醛的含量;
(3)计算得到DERA酶的催化效率K;
K=(A-B)/A×100%
A为反应体系中氯乙醛的初始量,B为催化反应后反应体系中氯乙醛的量。
本发明通过检测上清液中未参与催化反应的氯乙醛的含量,计算出氯乙醛参与催化反应的消耗量,通过反应底物的消耗量来反映DERA酶的催化效率K。在相同的催化条件下,氯乙醛的消耗量越大,说明该DERA酶的催化效率越高,反之,则说明DERA酶的催化效率越低。
与现有技术相比,本发明的有益效果为:
本发明发现氯乙醛与乙醛等其他常规羰基化合物不同,氯乙醛依次与2,4-二硝基苯肼、碱液发生反应生成的棕红色化合物B,其特异吸收峰在528nm处;在528nm下测量样本待测液的吸光度时,在该波长下只有棕红色化合物B的吸收峰,不存在棕红色化合物A(乙醛依次与2,4-二硝基苯肼、碱液发生反应生成)的干扰,测量结果稳定、其准确率和灵敏度均大大提高。
附图说明
图1为乙醛与2,4-二硝基苯肼衍生物的光谱扫描结果;
图2为氯乙醛与2,4-二硝基苯肼衍生物的光谱扫描结果;
图3为三种DERA酶催化连续醛缩反应活性的定性检测结果;
图4为氯乙醛浓度和528nm处吸光度的标准曲线示意图。
具体实施方式
下面结合具体实施方式和附图对本发明作进一步说明。
1、溶液配制
(1)2,4-二硝基苯肼溶液(0.1%):取2,4-二硝基苯肼1g,加乙醇1000mL,使其溶解,再缓缓加入盐酸10mL,摇匀,即得。
(2)氢氧化钾溶液(100g/L):取100g氢氧化钾,加800mL蒸馏水溶解,定容至1L,即得。
2、乙醛与2,4-二硝基苯肼衍生物特异性吸收峰的确定
在24孔板的三个孔中分别加入对照蒸馏水、0.5mg/L乙醛溶液、1mg/L乙醛溶液各2mL,加入100μL 2,4-二硝基苯肼溶液,混匀,室温放置20min;加入100μL氢氧化钾溶液,混匀,放置10min。以对照蒸馏水为基线校准,分别对0.5mg/L和1mg/L的乙醛溶液参与反应生成的产物进行200-700nm的光谱扫描,确定乙醛与2,4-二硝基苯肼衍生物的特异性吸收峰在438nm处(如图1)。
3、氯乙醛与2,4-二硝基苯肼衍生物特异性吸收峰的确定
在24孔板的三个孔中分别加入对照蒸馏水、0.45mg/L、0.9mg/L的氯乙醛溶液2mL,加入100μL 2,4-二硝基苯肼溶液,混匀,室温放置20min,加入100μL氢氧化钾溶液,混匀,放置10min。反应方程式为:
以对照蒸馏水为基线校准,对0.45mg/L和0.9mg/L的氯乙醛溶液参与反应生成的产物进行200-700nm的光谱扫描,确定氯乙醛与2,4-二硝基苯肼衍生物的特异性吸收峰在528nm处(如图2),不同于乙醛与2,4-二硝基苯肼的衍生物。
当反应体系中同时存在乙醛和氯乙醛时,乙醛与2,4-二硝基苯肼的衍生物对氯乙醛与2,4-二硝基苯肼产生的衍生物在528nm的吸光度不造成显著干扰;而氯乙醛与2,4-二硝基苯肼产生的衍生物对乙醛与2,4-二硝基苯肼的衍生物在438nm的吸光度却造成显著干扰。
4、DERA酶催化连续醛缩反应活性的定性检测
将分别表达大肠杆菌DERAEco(F200I)(参见文献:Directed evolution of anindustrial biocatalyst:2-deoxy-D-ribose 5-phosphate aldolase.StefanJennewein,Martin Schürmann,Michael Wolberg,Iris Hilker,Ruud Luiten,MarcelWubbolts and Daniel Mink.Biotechnol.J.2006,1,537–548)、嗜热菌DERApya(野生型)(参见申请号为2014105211494的中国专利文献)、嗜热菌DERApyas(I174V,V187I)(参见申请号为2014105211494的中国专利文献)的工程菌株在37℃条件下培养至OD600=0.6,加入IPTG至终浓度为1mM,置于25℃下诱导培养12h,经Ni-NTA柱子纯化,分别得到三种DERA酶。
在1mL反应体系中分别加入20mg DERA酶、200mM乙醛和100mM氯乙醛,于25℃、200rpm震荡反应2h,反应方程式为:
取1μL上清液,稀释10000倍,将上述稀释液加入至24孔板,每孔2mL,加入100μL 2,4-二硝基苯肼溶液,混匀,室温放置20min,加入100μL氢氧化钾溶液,混匀,放置10min后进行颜色观察。
结果显示空白对照样品为深棕红色,而大肠杆菌DERAEco(F200I)、嗜热菌DERApya(野生型),嗜热菌DERApya(I174V,V187I)三个样品的颜色呈浅黄色,并颜色依次从深向浅过渡(如图3)。颜色越深,说明未参与醛缩反应的氯乙醛的含量越高,醛缩反应的效率越低。由此可见,嗜热菌DERApyas(I174V,V187I)具有更好地催化醛缩反应的能力,与气相检测产物(6R,4S)-2,4-二羟基-6氯甲基吡喃结论(如表1)一致。
表1
5、DERA酶催化效率的检测
(1)建立标准曲线
分别配制0.5mg/L、1mg/L、2mg/L、4mg/L、5mg/L、8mg/L、10mg/L的氯乙醛溶液,各取2mL上述浓度的氯乙醛溶液和蒸馏水分别加入到24孔板的八个孔中,加入100μL 2,4-二硝基苯肼溶液,混匀,室温放置20min,加入100μL氢氧化钾溶液,混匀,放置10min。以蒸馏水为对照,用紫外分光光度计分别测量各样品528nm波长下的吸光度,根据浓度和吸光度的建立标准曲线(见图4),结果发现氯乙醛浓度和吸光度存在良好的线性关系。
(2)定量检测
将分别表达大肠杆菌DERAEco(F200I)、嗜热菌DERApya(野生型)、嗜热菌DERApyas(I174V,V187I)的工程菌株在37℃条件下培养至OD600=0.6,加入IPTG至终浓度为1mM,置于25℃下诱导培养12h,经Ni-NTA柱子纯化,分别得到三种DERA酶。
在1mL反应体系中分别加入20mg DERA酶、200mM乙醛和100mM氯乙醛,于25℃、200rpm震荡反应2h。取1μL上清液,稀释10000倍,将将上述稀释液加入至24孔板,每孔2mL,加入100μL的2,4-二硝基苯肼溶液,混匀,室温放置20min,加入100μL氢氧化钾溶液,混匀,放置10min后,以对照蒸馏水为基准,用紫外分光光度计测量528nm波长下的吸光度,根据标准曲线计算上清液中氯乙醛的含量分别为93.1mM、82.4mM、59.5mM。
(3)计算得到DERA酶的催化效率K
设反应体系中氯乙醛的初始量为A,催化反应后反应体系中氯乙醛的量为B,根据公式
K=(A-B)/A×100%
计算大肠杆菌DERAEco(F200I)、嗜热菌DERApya(野生型)、嗜热菌DERApyas(I174V,V187I)的催化效率K分别为6.9%、17.6%、40.5%。
Claims (5)
1.一种快速检测DERA酶催化效率的方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)在反应体系中加入DERA酶、乙醛和氯乙醛,经催化反应后取上清液;
(2)检测上清液中氯乙醛的含量;
(3)计算得到DERA酶的催化效率K;
K=(A-B)/A×100%
A为反应体系中氯乙醛的初始量,B为催化反应后反应体系中氯乙醛的量;
步骤(2)中,检测上清液中氯乙醛的含量的方法,包括以下步骤:
1)取反应上清液,加入2,4-二硝基苯肼,在酸性条件下进行反应,获得样本反应液;
2)向样本反应液中加入碱液继续反应,获得样本待测液;
3)在528nm波长下测量样本待测液的吸光度,根据标准曲线计算反应上清液中氯乙醛的含量;
所述标准曲线的建立方法为:
(a)制备一组氯乙醛浓度呈梯度分布的标准品;
(b)取各标准品,加入2,4-二硝基苯肼,在酸性条件下进行反应,再加入碱液继续反应,获得标准品待测液;
(c)在528nm的波长下测量标准品待测液的吸光度;
(d)根据氯乙醛浓度与吸光度绘制标准曲线。
2.如权利要求1所述的方法,其特征在于,步骤1)中,2,4-二硝基苯肼的终浓度为0.0025%~0.005%。
3.如权利要求1所述的方法,其特征在于,步骤1)中,反应时间为10~30min。
4.如权利要求1所述的方法,其特征在于,步骤2)中,加入碱液后至pH为8~9。
5.如权利要求1所述的方法,其特征在于,步骤2)中,反应时间为5~20min。
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