CN104946564B - 一株植物乳杆菌及其在低温青贮中的应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一株植物乳杆菌及其在低温青贮中的应用。本发明所提供的植物乳杆菌具体为植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1‑313,其在中国典型培养物保藏中心的保藏编号为CCTCC NO:M 2015252。本发明所提供的植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1‑313CCTCC NO:M 2015252具有耐高低温、耐盐、耐酸碱等抗逆性,并在低温青贮(5℃)过程中迅速繁殖并产酸降pH,有效的抑制有害杂菌的生长或产生,粗蛋白质、粗脂肪、粗纤维等营养成分有效保留,非营养物质如粗灰分成分降低,达到长期保存青贮饲料的效果。
Description
技术领域
本发明属于微生物领域,涉及一株植物乳杆菌及其在低温青贮中的应用。
背景技术
青贮是在乳酸菌的厌氧发酵作用下将碳水化合物转化为有机酸,从而使pH降低达到长期贮存的目的。乳酸菌和温度是青贮饲料发酵品质好坏的决定性因素。
燕麦是高寒地区冬春饲补的主要饲料作物,由于高寒地区温度低海拔高,不利于乳酸菌的生长,很难发酵出品质优良并可以长期贮存的饲料。
因此,筛选出耐高低温、耐盐、耐酸碱的抗逆性较强的菌株,并将其作为发酵剂添加到低温青贮燕麦饲料中,将会对高寒地区的青贮饲料制作有着巨大的应用价值。
发明内容
本发明的第一个目的是提供一株植物乳杆菌。
本发明所提供的植物乳杆菌具体为植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313,该菌株已于2015年4月28日保藏于中国典型培养物保藏中心(简称CCTCC,地址为:湖北省武汉市武昌区八一路299号武汉大学校内武汉大学保藏中心),其保藏编号为CCTCC NO:M2015252。
所述植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313从中国青海省化隆县的小麦上分离得到的,该菌株单菌落形状呈杆状,革兰氏染色阳性,过氧化氢酶反应阴性,表明不产过氧化氢;发酵葡萄糖不产CO2,属于葡萄糖同型发酵型乳酸菌;在5,10,45和50℃下生长良好,表明该菌株耐高温耐低温性能好;在3%和6.5%的NaCl浓度下生长良好,表明其耐盐性强;能够在除了pH值为10的所有测定条件下生长良好,在pH值为10时生长微弱,表明其耐酸碱能力强。该菌株的生长适应能力很强,可耐极端环境存活繁殖。其16S rDNA序列如序列表中序列1所示。
本发明的第二个目的是提供一种菌剂。
本发明所提供的菌剂的活性成分为所述植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC M 2015252。
所述菌剂除了包含作为活性成的所述植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC M 2015252外,还可包含辅料,如MRS固体培养基(溶剂为水,溶质及其浓度如下:蛋白胨10g/L,牛肉膏10g/L,酵母膏5g/L,葡萄糖20g/L,三水合乙酸钠5g/L,吐温801g/L,磷酸氢二钾2g/L,柠檬酸铵2g/L,硫酸镁2g/L,硫酸锰0.25g/L,琼脂17g/L)。
本发明的第三个目的是提供一种青贮饲料添加剂。
本发明所提供的青贮饲料添加剂的活性成分为所述植物乳杆菌(Lactobacillusplantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252。
本发明的第四个目的是提供一种青贮饲料。
本发明所提供的青贮饲料中含有所述青贮饲料添加剂。
所述植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252或所述菌剂在如下任一中的应用也属于本发明的保护范围:
(a1)抑制细菌;
(a2)制备细菌抑制剂;
(a3)制备所述青贮饲料添加剂;
(a4)制备所述青贮饲料。
所述(a1)的应用为非疾病诊断治疗性应用。
在所述(a1)和所述(a2)中,所述细菌具体可为藤黄微球菌和/或沙门氏菌。
其中,所述植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252或所述菌剂对所述细菌的抑制具体体现为30℃条件下的抑制。
所述青贮饲料添加剂在制备所述青贮饲料中的应用也属于本发明的保护范围。
本发明的第五个目的是提供一种制备所述青贮饲料的方法。
本发明所提供的制备所述青贮饲料的方法,具体可包括:将青贮原料与所述植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252混合,进行固体厌氧发酵,收集所有发酵产物,得到所述青贮饲料;
在本发明中,所述青贮原料为燕麦全株;具体为乳熟期燕麦全株,水分含量82.97%,切割成1-2cm小段。
在所述方法中,所述燕麦全株和所述植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252的配比可为100g:105cfu;所述发酵为低温发酵;所述低温可为5℃;所述发酵的时间可为30天。
本发明所提供的植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M2015252具有耐高低温、耐盐、耐酸碱等抗逆性,并在低温青贮(5℃)过程中迅速繁殖并产酸降pH,有效的抑制有害杂菌的生长或产生,粗蛋白质、粗脂肪、粗纤维等营养成分有效保留,非营养物质如粗灰分成分降低,达到长期保存青贮饲料的效果。
保藏说明
菌种名称:植物乳杆菌
拉丁名:(Lactobacillus plantarum)
菌株编号:QH1-313
保藏机构:中国典型培养物保藏中心
保藏机构简称:CCTCC
地址:湖北省武汉市武昌区八一路299号武汉大学校内武汉大学保藏中心
保藏日期:2015年4月28日
保藏中心登记入册编号:CCTCC NO:M 2015252
具体实施方式
下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明,均为常规方法。
下述实施例中所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。
实施例1、植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313的分离与鉴定
一、菌株QH1-313的分离与筛选
取中国青海省化隆县小麦10g,放入90mL无菌水,震荡10秒,吸取1mL液体放于1.5mL离心管,依次稀释101,103,105倍,取稀释液体20μL分别涂布到MRS琼脂培养基上,30℃厌氧培养48小时,取单菌落MRS固体培养基扩大培养,将获得的其中一株菌编号为QH1-313。
其中,所述MRS固体培养基的溶剂为水,溶质及其浓度如下:蛋白胨10g/L,牛肉膏10g/L,酵母膏5g/L,葡萄糖20g/L,三水合乙酸钠5g/L,吐温801g/L,磷酸氢二钾2g/L,柠檬酸铵2g/L,硫酸镁2g/L,硫酸锰0.25g/L,琼脂17g/L。
二、菌株QH1-313的鉴定
从以下几个方面对步骤一分离并筛选得到的菌株QH1-313进行鉴定。
1、形态学鉴定
步骤一分离并筛选得到的菌株QH1-313单菌落,革兰氏染色后,显微镜下观察单菌落形状呈杆状。
2、生理生化特征鉴定
步骤一分离并筛选得到的菌株QH1-313为革兰氏染色阳性,过氧化氢酶反应阴性,表明不产过氧化氢;发酵葡萄糖不产CO2,属于葡萄糖同型发酵型乳酸菌。
利用API 50CH检测菌株QH1-313对不同碳源的发酵利用情况。结果如表1所示。可见,菌株QH1-313不能利用D-木糖,α-甲基-D-甘露糖,山梨糖,半乳糖醇,α-甲基-D-葡糖苷,L-海藻糖,D-松二糖,D-塔格糖,5-酮基-葡糖酸盐,D-阿拉伯醇,甘油,赤藓糖醇,2-酮基-葡糖酸盐,L-阿拉伯醇,纤维糖,菊糖,淀粉,糖原,木糖醇,β-甲基-木糖苷,核糖醇,D-海藻糖,D-来苏糖,L-木糖,D-阿拉伯糖做碳源进行发酵;可以利用海藻糖,核糖,半乳糖,果糖,L-阿拉伯糖,苦杏仁甙,熊果苷,七叶灵,棉子糖,蔗糖,葡萄糖,麦芽糖,蜜二糖,山梨醇,乳糖,甘露醇,N-乙酰葡糖胺,松三糖,水杨苷,甘露糖,纤维二糖做碳源进行发酵;可以微弱利用龙胆二糖,鼠李糖,葡糖酸盐做碳源进行发酵。
表1菌株QH1-313对不同碳源的发酵利用情况
注:“+”表示阳性,即能利用;“-”表示阴性,即不能利用;“w”表示弱阳性,即微弱利用。
3、16S rDNA序列同源性分析
提取步骤一所得的菌株QH1-313的基因组DNA,以其为模板,采用细菌通用引物进行PCR扩增,获得菌株QH1-313的16S rDNA片段,并进行序列测定,其序列为序列表中序列1。将序列1在GenBank数据库中进行BLAST(http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi)同源性比对,确定菌种类别。
根据上述形态、生理生化特征分析和16s rDNA序列同源性分析结果,将步骤一所得的菌株QH1-313鉴定为植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum),并于2015年4月28日保藏于中国典型培养物保藏中心(简称CCTCC,地址为:湖北省武汉市武昌区八一路299号武汉大学校内,武汉大学保藏中心,邮编430072),其保藏编号为CCTCC NO:M 2015252,其分类命名为植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313。
实施例2、植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313在不同温度、pH及盐浓度下的生长
1、不同温度下植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313的生长
将活化的植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252接种于MRS液体培养基,分别在5、10、45和50℃温度下恒温培养24h,用分光光度计测定600nm处光吸收值(OD600),以观察不同温度下植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313的生长情况。
其中,MRS液体培养基的溶剂为水,溶质及其浓度如下:蛋白胨10g/L,牛肉膏10g/L,酵母膏5g/L,葡萄糖20g/L,三水合乙酸钠5g/L,吐温801g/L,磷酸氢二钾2g/L,柠檬酸铵2g/L,硫酸镁2g/L,硫酸锰0.25g/L;pH6.8。
结果如表2所示,可见植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252在5,10,45和50℃下生长良好,表明该菌株耐高温耐低温性能好。
2、不同pH下植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313的生长
用1mol/L的盐酸和1mol/L的氢氧化钠将MRS液体培养基(配方同上)的起始pH分别调至3.0、3.5、4.0、4.5、5.0、5.5、6.0、9.0和10.0,30℃恒温静置培养植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252,培养24h,培养过程中不调酸,用分光光度计测定600nm处光吸收值(OD600),以观察不同pH下植物乳杆菌(Lactobacillusplantarum)QH1-313的生长情况。
结果如表2所示,可见植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252能够在除了pH值为10的所有测定条件下生长良好,在pH值为10时生长微弱,表明其耐酸碱能力强。
3、不同盐浓度下植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313的生长
将活化的植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252分别接种于含有NaCl的质量百分含量为3%和6.5%的MRS液体培养基(配方同上,pH6.8),于30℃恒温静置培养24h,用分光光度计测定600nm处光吸收值(OD600),以观察不同盐浓度下植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313的生长情况。
结果如表2所示,可见植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252在3%和6.5%的NaCl浓度下生长良好,表明其耐盐性强。
表2菌株QH1-313在不同环境下的生长特征
注:“+”表示生长良好;“w”表示生长微弱(OD600大于0.3视为生长良好,大于0.2小于等于0.3为生长微弱)。
根据以上结果,可知植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M2015252的生长适应能力很强,可耐极端环境存活繁殖。
实施例3、植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313的抑菌活性测定
供试细菌:藤黄微球菌,藤黄微球菌,沙门氏菌和大肠杆菌。
1、将活化的植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M2015252接种于MRS液体培养基(配方同上,pH6.8)中,30℃培养48h,发酵液经10000rpm离心5min,取上清液用于测定。
2、采用牛津杯双层平板法测定其抑菌活性,将已灭菌的琼脂培养基加热到完全融化,倒在培养皿内,每皿15ml(下层),待其凝固。此外,将融化的PDA培养基冷却到50℃左右混入供试细菌,将混有菌的培养基5ml加到已凝固的培养基上待凝固(上层)。以无菌操作在培养基表面直接垂直放上牛津杯(内径6mm、外径8mm、高10mm的圆形小管),轻轻加压,使其与培养基接触无空隙,在杯中加入加入步骤1获得的植物乳杆菌(Lactobacillusplantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252发酵液。加满后置37℃培养16-18小时,观察结果,抑菌圈用尺量。以MRS液体培养基取代发酵液作为对照。实验重复3次,结果取平均值。
结果如表3所示,可见:在30℃培养条件下,植物乳杆菌(Lactobacillusplantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252对藤黄微球菌和沙门氏菌有较好的抑制作用。
表3菌株QH1-313的抑菌活性
注:抑菌圈直径包含牛津杯外径(7.8mm);“-”表示无抑菌圈。
实施例4、植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313青贮燕麦
青贮原料:乳熟期燕麦全株,水分含量82.97%,切割成1-2cm小段。
一、制备燕麦青贮饲料
1、以植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252作为饲料添加剂制备燕麦青贮饲料
(1)植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252菌悬液的制备
无菌条件下,取植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M2015252接种于MRS液体培养基中30℃培养过夜,得到植物乳杆菌(Lactobacillusplantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252菌悬液,菌悬液中植物乳杆菌(Lactobacillusplantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252的含量为106cfu/ml。
其中,MRS液体培养基的溶剂为水,溶质及其浓度如下:蛋白胨10g/L,牛肉膏10g/L,酵母膏5g/L,葡萄糖20g/L,三水合乙酸钠5g/L,吐温801g/L,磷酸氢二钾2g/L,柠檬酸铵2g/L,硫酸镁2g/L,硫酸锰0.25g/L;pH6.8。
(2)以植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252作为饲料添加剂制备燕麦青贮饲料
将乳熟期燕麦全株收割后用铡刀切成1-2cm左右长短(水分含量82.97%),取100g放入青贮袋中,将步骤(1)获得的植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCCNO:M 2015252菌悬液每袋100μl分别加入青贮袋中,混匀,利用真空包装机抽真空后密封,放入5℃冰柜内。
2、对照燕麦青贮饲料
将乳熟期燕麦全株收割后用铡刀切成1-2cm左右长短(水分含量82.97%),取100g放入青贮袋中,将无菌水每袋100μl分别加入青贮袋中,混匀,利用真空包装机抽真空后密封,放入5℃冰柜内。
二、低温青贮过程中燕麦pH变化的测定
将饲料样品10g加入到90ml无菌蒸馏水中,利用漩涡振荡器震荡30s,取液体通过滤纸过滤,利用pH酸度计测定滤液的pH值。实验重复3次,结果以平均值±标准差的形式表示。
结果如表4所示,可见:在低温(5℃)青贮条件下,第3天、第7天、第30天添加植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252的燕麦青贮饲料pH均极显著低于没有添加植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252的对照组(P≤0.01);添加植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M2015252的燕麦青贮饲料,在青贮第7天时pH降到了3.94,在青贮第30天,pH仍保持在3.99。表明添加植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252可以更快并明显降低pH值,十分有利于青贮饲料的保存。
表4低温青贮(5℃)过程中燕麦pH变化a
注:a平均值±标准差(n=3)。“NS”表示差异不显著,P>0.05;“*”表示显著性差异(p≤0.05);“**”表示极显著性差异(p≤0.01)
三、低温青贮过程中燕麦的微生物变化测定
采用平板稀释法测定微生物变化。将饲料样品10g加入到90ml无菌蒸馏水中,利用漩涡振荡器震荡30s,10倍梯度稀释,然后分别取10-1、10-3和10-5倍样品稀释液各20μl涂布在MRS(用于检测乳酸菌)、BLB(用于检测大肠杆菌)、PDA(用于检测酵母菌和霉菌,根据菌落形态,肉眼区分,霉菌菌落呈绒毛状,絮状,蜘蛛网状,呈现其孢子的颜色,而酵母菌比较小,杆状,螺旋状,球状,菌落表面光滑或粘稠或干燥)NA(用于检测好氧细菌)培养基上;将10-1和10-2倍样品稀释液1ml在75℃水浴锅水浴15min后,分别取20μl涂布在NA(用于检测芽孢杆菌)和CLO(用于检测梭菌)培养基(CLO培养基的配方:每升培养基中含有蛋白胨15g,大豆蛋白胨7.5g,酵母膏7.5g,牛肉膏7.5g,柠檬酸铁铵1g,亚硫酸氢钠1g,L-半胱氨酸盐酸盐0.75g,琼脂15g,余量为水)上,将这些涂布好的培养基倒置放于30℃恒温培养箱培养48h,其中MRS和CLO培养基应放置于厌氧培养箱,其它培养基放置于普通恒温培养箱即可。培养48小时后记单菌落个数为n,菌落(logCFU/g)=log10[(n×10)/20×10-3]。实验重复3次,结果以平均值±标准差的形式表示。
结果如表5所示,可见:低温(5℃)条件下,青贮第1天和青贮第3天,添加植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252青贮燕麦与对照相比,乳酸菌数量高2个数量级。并且在青贮的第1天,与对照相比,植物乳杆菌(Lactobacillusplantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252添加组没有检出霉菌;在青贮第3天,与对照相比,植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252添加组没有检出梭菌。分析其原因可能在于,这段时间内植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252生长优势明显,可能有效的抑制了霉菌和梭菌的产生。青贮第30天,植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252添加组与对照相比,没有检出大肠杆菌。总之,青贮饲料中添加植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252,植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252迅速生长为优势菌株,综合表3,添加植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252明显降低青贮饲料pH,可以有效的抑制大肠杆菌,芽孢杆菌,霉菌等有害杂菌的生长。
表5低温青贮(5℃)过程中燕麦的微生物变化(logCFU/g)a
注:a平均值±标准差(n=3);“**”表示差异极显著(P≤0.01);“*”表示差异显著(P≤0.05);“ND”表示没有检到。同一纵列含有不同大写字母代表差异性极显著(P≤0.01);同一纵列含有不同小写字母表示差异显著(P≤0.05)。
四、低温青贮过程中燕麦的游离水、干重和粗灰分含量变化的测定
1、游离水含量和干重含量的测定方法
65℃,48h干燥法,首先将一张白纸订成一个纸袋,在分析天平上对纸袋进行称重,记为W1,将饲料样品放入纸袋中,称总重,记为W2,恒温通风65℃干燥48h后,放置于干燥器中30min后称重,记为W3。游离水分(%)=(W2-W3)/(W2-W1)×100。干重(%)=100%-游离水分(%)。实验重复3次,结果以平均值±标准差的形式表示。
2、粗灰分(Crude ash)的测定
(1)瓷坩埚在530℃马弗炉中加热2h后,取出放置于干燥器中1h放凉,称重,记为W1。
(2)通过分析天平称量2g(W2)左右饲料样品于瓷坩埚中,放置于电炉上进行灰化,直至烟散尽为止,用坩埚钳取出瓷坩埚放置于530℃马弗炉中加热2h后,取出放置于干燥器中1h放凉,称重,记为W3。
粗灰分(%)=(W3-W1)/W2×100。
实验重复3次,结果以平均值±标准差的形式表示。
结果如表6所示,可见:在整个青贮过程中,添加植物乳杆菌(Lactobacillusplantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252可以降低青贮饲料的水分含量,增加青贮饲料的干重百分含量,还可以降低粗灰分含量,并且在青贮第3天和第7天,添加植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252的饲料,其粗灰分含量与对照相比显著降低(P≤0.05)。
表6低温青贮(5℃)过程中燕麦的游离水分、干重和粗灰分含量变化(%/鲜重)a
注:a平均值±标准差(n=3);“*”表示差异显著(P≤0.05);“NS”表示差异不显著(p>0.05)。
五、低温青贮过程中燕麦的粗脂肪和粗蛋白变化的测定
1、粗脂肪的测定
采用乙醚萃取法。饲料样品在乙醚中3h萃取抽提粗脂肪,除了中性脂肪外,磷酸脂质、游离脂肪酸、脂溶性色素等也包含在内。
(1)脂肪瓶放置于100℃烘箱中干燥2h后,取出置于干燥器中放凉1h,称重,记为W1。
(2)分析天平称取1g(W2)左右饲料样品置于滤纸上,包好后将滤纸塞进脂肪桶内,用脱脂棉堵口。
(3)将装有饲料样品的脂肪桶放入脂肪抽出装置内,接上脂肪瓶,加入约50ml乙醚于脂肪瓶瓶中,打开冷却水系统,开始3h以上抽提。
(4)完成抽提以后,取出脂肪桶,将脂肪瓶置于100℃烘箱中3h干燥后,取出放在干燥器中冷却30m,称重,记为W3。
粗脂肪(%)=(W3-W1)/W2×100。实验重复3次,结果以平均值±标准差的形式表示。
2、粗蛋白的测定
采用消煮定量法测定粗蛋白。
(1)通过分析天平称取约1g(W1)饲料样品,称量纸包好以后放入消煮管中,加入0.2g硫酸铜和6.0g硫酸钾。
(2)轻轻加入20ml浓硫酸于消煮管中,轻轻震荡,使样品充分分布在浓硫酸中。
(3)将消煮管连接装置放置于消煮管上,阻止硫酸的挥发。
(4)打开循环水装置,将消煮管放置在消煮装置上,开始加热至420℃。
(5)等待消煮管内液体变为绿色透明后,继续420℃消煮2h。
(6)消煮分解完成以后,关掉消煮装置,取下消煮管放于隔热板上放凉。
(7)冷却后,将消化管放入凯氏定氮仪,开始滴定(根据AOAC(Official Methodsof Analysis[M].15th ed.Association of official analytical chemists.Arlington,VA.1999)记述的方法进行分析)。
全氮量(%)=n(V1-V2)×M×0.014/W1×100;
粗蛋白质量(%)=全氮量(%)×6.25;
其中,V1:滴定量ml;V2:空白滴定量;M:滴定液HCl的浓度;W1:样品重量。
实验重复3次,结果以平均值±标准差的形式表示。
结果如表7所示,可见:与对照组相比,添加植物乳杆菌(Lactobacillusplantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252对青贮燕麦的粗蛋白含量没有显著影响(p>0.05),在5℃低温青贮过程中,粗脂肪和粗蛋白成分保留较好。
表7低温青贮(5℃)过程中燕麦的粗脂肪和粗蛋白变化(%/鲜重)a
注:a平均值±标准差(n=3);“NS”表示差异不显著(p>0.05);“*”表示差异显著(p≤0.05)。
六、低温青贮过程中燕麦的中性洗涤纤维和酸性洗涤纤维的变化测定
1、中性洗涤纤维(neutral detergent fiber,NDF)的测定
植物性饲料经中性洗涤剂煮沸处理以后,不溶解的残渣为中性洗涤纤维,主要为细胞壁成分,中性洗涤纤维包括纤维素、本质素和半纤维素,可以用作定量草食家畜粗饲料的采食量。
(1)预先20min打开粗纤维测定仪器和冷却循环水。
(2)分析天平称取约0.5g(W1)左右饲料样品放置于玻璃坩埚内。
(3)上机,加入100ml中性洗涤剂3%(3g/100ml)十二烷基硫酸钠和适量丁辛醇作消泡剂,100℃加热至沸腾,保持50℃左右加热70min。
(4)抽滤以后、取下玻璃坩埚,利用丙酮冲洗三次。
(5)将玻璃坩埚放于通风橱中干燥过夜。
(6)将干燥以后的玻璃坩埚放置于烘箱内,135℃恒温通风干燥2h以上,放入干燥器中冷却1h后,称重,记为W2。
(7)玻璃坩埚放于电炉上进行灰化,直至烟散尽,使用坩埚钳取出坩埚放置于530℃马弗炉中加热灰化2h后,取出放置于干燥器中1h放凉,称重,记为W3。
NDF(%)=(W2-W3)/W1×100。
实验重复3次,结果以平均值±标准差的形式表示。
2、酸性洗涤纤维(acid detergent fiber,ADF)的测定
酸性洗涤纤维测定方法:利用酸性洗涤剂处理以后,剩余残渣即为酸性洗涤纤维,其中包括木质素和纤维素。酸性洗涤纤维经过硫酸处理后的残渣为木质素,从酸性洗涤纤维值中减去72%硫酸处理的残渣即为饲料纤维素含量。
(1)预先20min打开粗纤维测定仪器和冷却循环水。
(2)分析天平称取约0.5g(W1)左右饲料样品放置于玻璃坩埚内。
(3)上机,加入100ml酸性洗涤剂2%(2g/100ml)十六烷基三甲基溴化铵和适量丁辛醇作消泡剂,100℃加热至沸腾,保持50℃左右加热70min。
(4)抽滤以后、取下玻璃坩埚,利用丙酮冲洗三次。
(5)将玻璃坩埚放于通风橱中干燥过夜。
(6)将干燥以后的玻璃坩埚放置于烘箱内,135℃恒温通风干燥2h以上,放入干燥器中冷却1h后,称重,记为W2。
(7)玻璃坩埚放于电炉上进行灰化,直至烟散尽,使用坩埚钳取出坩埚放置于530℃马弗炉中加热灰化2h后,取出放置于干燥器中1h放凉,称重,记为W3。
ADF(%)=(W2-W3)/W1×100。
实验重复3次,结果以平均值±标准差的形式表示。
结果如表8所示,可见:植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCCNO:M 2015252对青贮饲料的中性洗涤纤维和酸性洗涤纤维含量均没有显著影响,但随着贮存时间的加长呈下降趋势,对照组和植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252添加组中性洗涤纤维含量分别从56.93%和54.6%降到了52%和52.17%;对照组和植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M 2015252添加组酸性洗涤纤维含量均从35.93%分别降到了30.82%和31.84%。
表8低温青贮(5℃)过程中燕麦的中性洗涤纤维和酸性洗涤纤维变化(%/鲜重)a
注:a平均值±标准差(n=3);“NS”表示差异不显著(p>0.05);“*”表示差异显著(p≤0.05)。NDF为中性洗涤纤维;ADF为酸性洗涤纤维。
综上所述,可见植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313CCTCC NO:M2015252在低温青贮(5℃)过程中迅速繁殖并产酸降pH,有效的抑制有害杂菌的生长或产生,粗蛋白质、粗脂肪、粗纤维等营养成分有效保留,非营养物质如粗灰分成分降低,达到长期保存青贮饲料的效果。
Claims (9)
1.植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313,其在中国典型培养物保藏中心的保藏编号为CCTCC NO:M 2015252。
2.一种菌剂,其特征在于:所述菌剂的活性成分为权利要求1所述的植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313。
3.一种青贮饲料添加剂,其特征在于:所述青贮饲料添加剂的活性成分为权利要求1所述的植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313。
4.一种青贮饲料,其特征在于:所述青贮饲料中含有权利要求3所述的青贮饲料添加剂。
5.根据权利要求4所述的青贮饲料,其特征在于:所述青贮饲料是按照包括如下步骤的方法制备得到的:
青贮原料与权利要求1所述的植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313混合,进行固体厌氧发酵,收集所有发酵产物,得到所述青贮饲料;
所述青贮原料具体为燕麦全株;
所述方法中,所述燕麦全株和所述植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313的配比为100g:105cfu;
所述发酵为低温发酵;所述低温为5℃;
所述发酵的时间为30天。
6.权利要求1所述的植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313在如下任一中的应用:
(a1)制备细菌抑制剂;
(a2)制备权利要求3所述的青贮饲料添加剂;
(a3)制备权利要求4所述的青贮饲料;
在所述(a1)中,所述细菌具体为藤黄微球菌或沙门氏菌。
7.根据权利要求6所述的应用,其特征在于:所述植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313对所述细菌的抑制为30℃条件下的抑制。
8.权利要求3所述的青贮饲料添加剂在制备权利要求4或5所述的青贮饲料中的应用。
9.制备权利要求4所述青贮饲料的方法,包括:将青贮原料与权利要求1所述的植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313混合,进行固体厌氧发酵,收集所有发酵产物,得到所述青贮饲料;
所述青贮原料具体为燕麦全株;
所述方法中,所述燕麦全株和所述植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)QH1-313的配比为100g:105cfu;
所述发酵为低温发酵;所述低温为5℃;
所述发酵的时间为30天。
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