CN104894079A - 木质素降解液及制备方法以及用其降解木质素的方法 - Google Patents

木质素降解液及制备方法以及用其降解木质素的方法 Download PDF

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Abstract

木质素降解液及制备方法以及用其降解木质素的方法，属于生物化学和生物炼制方法，解决现有采用漆酶等单一木质素酶难以实现木质素高效生物降解的问题。所述木质素降解液由漆酶和锰过氧化物酶，以10∶1～1∶5的酶负荷比例，溶于pH4～6的醋酸-醋酸钠缓冲液中，使得漆酶和锰过氧化物酶酶负荷分别为1U/ml～50U/ml和1U/ml～50U/ml，然后加入1～10mM MnSO4和0.1～1mM H2O2；所述漆酶和锰过氧化物酶分别由白腐菌发酵获取胞外粗酶液，再经分离纯化后得到。本发明实现结构多样性丰富的大分子木质素协同氧化降解，与单一木质素酶降解反应体系相比，木质素高分子的降解率可达到30～50％，显著提高降解转化效率，可用于木质纤维素生物炼制、生物制浆或环境处理等领域。

Description

木质素降解液及制备方法以及用其降解木质素的方法
技术领域
本发明属于生物化学和生物炼制方法，具体涉及一种木质素降解液及制备方法以及用其降解木质素的方法。
背景技术
随着化石资源不断枯竭，利用生物炼制技术从木质纤维素原料中获取乙醇、丁醇等液体燃料以及化学材料和化学品将成为石油炼制的重要补充。由多种苯丙烷基结构单元高度交联而成的木质素是木质纤维素中的主要成分，也是地球上含量最丰富的生物高分子之一，木质素的生物转化极为困难，它不仅限制了木质纤维素中纤维素和半纤维素等多糖组分的转化，也是生物炼制废弃物的主要成分。因此，木质素的高效降解转化是当前生物炼制工业的发展重点和必然趋势。
白腐菌(white rot fungus)是自然界中木质素的主要分解者，也是唯一可以完全降解木质素的一类微生物。白腐菌通过胞外分泌的锰过氧化物酶、漆酶、木质素过氧化物酶等木质素酶降解木质素。当前，已经从Phanerochae tesp.、Echinodon tium sp.、Irpex sp、Pleuro tus sp.、Trame tes sp.、Ganodermasp.等白腐菌中分离出多种木质素酶。但是，大多数研究仅将漆酶或漆酶/介体系统用于体外催化木质素的降解。研究表明，在漆酶作用下，木质素大分子的主要结构骨架降解甚微，漆酶催化过程中木质素片段的再聚合也会对木质素降解产生不利影响。因此，通常先用理化方法将木质素大分子降解为简单的小分子木质素片段或使木质素改性，再利用漆酶或漆酶/介体催化系统降解。如在造纸制浆工艺中，常先利用化学制浆工艺去除木材中大部分木质素，再利用漆酶或漆酶/介体系统降解纸浆残余木质素片段进行生物漂白；中国科学院过程工程研究所陈洪章等先将玉米秸秆蒸汽爆破，使木质素大分子解聚或改性，再利用漆酶降解，木质素降解率可达10-25％。而直接利用漆酶等木质素酶降解木质素则很少见报道。
在天然环境下，白腐菌对木质素的降解通常依赖于几种木质素酶的共同作用。依据其菌株来源、种类不同，白腐菌产生的木质素酶对不同木质素结构单元的降解具有偏好性，且不同木质素酶对木质素底物的降解具有叠加增效作用，如锰过氧化物酶主要降解木质素中的非酚型结构，而漆酶主要降解木质素中的酚型结构，漆酶在介体存在时对非酚型结构也具有降解作用。木质素酶的复合作用不仅有利于木质素大分子中多样化的木质素结构基团的同步降解，而且有利于抑制木质素降解产物的再聚合。因此，既然现有单一的漆酶或漆酶/介体系统很难实现大分子木质素的高效降解，那么利用不同木质素酶构建复合催化体系降解木质素应是一个可行的技术途径。当前，已有少数工艺利用几种木质素酶复合降解木质素。但这些工艺通常利用粗酶液进行木质素的降解，如河南天冠企业集团有限公司利用白腐菌粗漆酶和粗过氧化物酶协同降解秸秆木质素促进燃料乙醇的转化效率。但由于粗酶液中成分非常复杂，很难确定木质素降解是木质素酶还是其它成分的作用，且每批次酶液的成分都不可能保持一致，因此可能导致处理效果不稳定。而利用纯化的白腐菌漆酶和锰过氧化物酶复合降解木质素的研究尚未见报道。
发明内容
本发明提供一种木质素降解液，同时提供其制备方法以及用于降解木质素的方法，解决现有采用漆酶等单一木质素酶难以实现木质素高效生物降解的问题。
本发明所提供的一种木质素降解液，包括漆酶和锰过氧化物酶，其特征在于：
所述木质素降解液中，将漆酶和锰过氧化物酶，以10∶1～1∶5的酶负荷比例，溶于pH4～6的醋酸-醋酸钠缓冲液中，使得漆酶和锰过氧化物酶酶负荷分别为1U/ml～50U/ml和1U/ml～50U/ml，然后加入1～10mM MnSO4和0.1～1mMH2O2；
所述漆酶和锰过氧化物酶分别由白腐菌发酵获取胞外粗酶液，再经分离纯化后得到。
所述的木质素降解液制备方法，依次包括制备木质素酶步骤和制备降解液步骤，其特征在于：
(1)所述制备木质素酶步骤：将白腐菌分别接种于漆酶产酶培养基和锰过氧化物酶产酶培养基，发酵后分别获得胞外粗酶液，分别经分离纯化后得到漆酶和锰过氧化物酶；
(2)所述制备降解液步骤：将漆酶和锰过氧化物酶，以10∶1～1∶5的酶负荷比例，溶于pH4～6的醋酸缓冲液中，使得漆酶和锰过氧化物酶酶负荷分别为1U/ml～50U/ml和1U/ml～50U/ml，再加入1～10mM MnSO4和0.1～1mMH2O2，得到木质素降解液。
所述的木质素降解液制备方法，其进一步特征在于，所述制备木质素酶步骤中：
(1.1)所述漆酶的制备包括下述子步骤：
A.从白腐菌斜面培养物上划取接种块，接种到土豆液体种子培养基中，放置于摇床以50r/min～200r/min速度震荡培养2d～8d，温度25℃～37℃，获得液体菌种；
B.将所述液体菌种以体积比10％～50％的接种量接入漆酶产酶培养基，25℃～37℃下静置培养2～6d后，加入1～10mM藜芦醇，继续培养3d～15d后，培养物过滤获得漆酶粗酶液；
C.漆酶粗酶液分别经硫酸铵沉淀、疏水层析、离子交换柱层析和超滤管浓缩后得到电泳纯的漆酶；
(1.2)所述锰过氧化物酶的制备包括下述子步骤：
A.从白腐菌斜面培养物上划取接种块，接种到土豆液体种子培养基中，放置于摇床以50r/min～200r/min速度震荡培养2d～8d，温度25℃～37℃，获得液体菌种；
B.将所述液体菌种以体积比10％～50％的接种量接入锰过氧化物酶产酶培养基，25℃～37℃培养10d～60d后，按质量体积比1∶5～1∶50加入蒸馏水浸泡培养物1h～8h，过滤获得锰过氧化物酶粗酶液；
C.锰过氧化物酶粗酶液分别经硫酸铵沉淀、疏水层析、离子交换柱层析和超滤管浓缩后得到电泳纯的锰过氧化物酶。
所述的木质素降解液制备方法，其更进一步特征在于，
所述白腐菌为灵芝、乳白耙菌、糙皮侧耳、射脉菌、多孔菌中的一种或多种；
所述漆酶产酶培养基组成为：每100mLKirk限氮液体培养基中加入0.1～20g麸皮，100℃～125℃灭菌10～40min；
所述锰过氧化物酶产酶培养基组成为：将20目～80目的木质纤维素类生物质，按质量体积比1∶1～1∶5加入蒸馏水，pH自然，100℃～125℃灭菌10～40min；所述木质纤维素类生物质包括竹粉、农业秸秆粉或木屑。
利用所述木质素降解液降解木质素的方法，其特征在于：
对于从生物质中分离获得的木质素高分子，添加所述木质素降解液，使木质素质量浓度达到0.2％～5％，于25℃～50℃通氧或不通氧反应2h～48h；
对于含有木质素的木质纤维素生物质，添加所述木质素降解液，使木质素质量浓度达到1％～10％，于25℃～50℃通氧或不通氧反应12h～48h。
所述木质素包括从生物质中分离获取的木质素高分子及木质纤维素生物质中的木质素，从生物质中分离获取的木质素包括碱木素、酶解木质素、磺化木质素、磨木木质素等；所述木质纤维素生物质包括草本类植物秸秆和木材，其中草本类植物秸秆包括荻竹、玉米杆、麦秆、稻秆、高粱秆、棉秆、油菜秆、芒草等；木材包括各类木材加工后的木屑。
本发明基于不同木质素酶对各种木质素结构单元降解的偏好性及降解作用的协同增效，实现结构多样性丰富的大分子木质素各基团和连键的协同氧化降解，与现有单一木质素酶降解反应体系相比，木质素高分子的降解率可达到30～50％，显著提高木质素降解转化效率，尤其显著提升非酚型木质素的降解效率，适用于不同来源的木质素和木质纤维素中木质素的高效降解，可用于木质纤维素生物炼制、生物制浆或环境处理等领域。
附图说明
图1为木质素降解液LacP-MnpI降解玉米秸秆木质纤维素中的木质素效果示意图。
具体实施方式
为了便于理解，以下通过具体实施例对本发明进行详细描述。
实施例1制备来源于多孔菌的漆酶LacT：
A.从多孔菌斜面培养物上划取接种块，接种到100ml土豆液体种子培养基中，放置于摇床以200r/min速度震荡培养8d，温度25℃，获得液体菌种；
B.将制备好的液体菌种以体积比10％的接种量接入漆酶产酶培养基，将培养物置于25℃下静置培养6d后，加入1mM藜芦醇，分别继续培养3、10、15d后，培养物过滤获得漆酶粗酶液；
漆酶产酶培养基配置方法为：每100mlKirk限氮液体培养基加入20g麸皮，100℃灭菌40min。
C.测定漆酶酶活，结果见表1所示，选取酶活最高的3d漆酶粗酶液，进行分离纯化；
表1多孔菌不同培养时间漆酶粗酶液中的酶活
首先将漆酶粗酶液进行硫酸铵分级沉淀，收集酶活最高部分的沉淀物于4℃在20mM的醋酸-醋酸钠缓冲液中透析除去硫酸铵，获得浓缩粗酶液；浓缩后的粗酶液分别经Phenyl SepharoseTM 6Fast Flow疏水层析、DEAESepharoseTM Fast Flow离子交换柱层析、Millipore超滤管浓缩后得到电泳纯的漆酶LacT。
实施例2制备来源于灵芝的漆酶LacG：
A.从灵芝斜面培养物上划取接种块，接种到100ml土豆液体种子培养基中，放置于摇床以50r/min速度震荡培养2d，温度37℃，获得液体菌种；
B.将制备好的液体菌种以体积比50％的接种量接入漆酶产酶培养基。将培养物置于37℃下静置培养2d后，加入4mM藜芦醇，分别继续培养3、10、15d后，培养物过滤获得粗酶液；
漆酶产酶培养基配置方法为：每100mlKirk限氮液体培养基加入0.1g麸皮，125℃灭菌10min。
C.测定漆酶酶活，结果见表2所示，选取酶活最高的15d漆酶粗酶液，进行分离纯化；
表2灵芝不同培养时间漆酶粗酶液中的酶活
首先将漆酶粗酶液进行硫酸铵分级沉淀，收集酶活最高部分的沉淀物于4℃在20mM的醋酸-醋酸钠缓冲液中透析除去硫酸铵，获得浓缩粗酶液；浓缩后的粗酶液分别经Phenyl SepharoseTM 6Fast Flow疏水层析、DEAESepharoseTM Fast Flow离子交换柱层析、Millipore超滤管浓缩后得到电泳纯的漆酶LacG。
实施例3制备来源于糙皮侧耳的漆酶LacP：
A.从糙皮侧耳斜面培养物上划取接种块，接种到100ml土豆液体种子培养基中，放置于摇床以150r/min速度震荡培养4d，温度28℃，获得液体菌种；
B.将制备好的液体菌种以体积比20％的接种量接入漆酶产酶培养基。将培养物置于28℃下静置培养4d后，加入10mM藜芦醇，分别继续培养3、10、15d后，培养物过滤获得粗酶液；
漆酶产酶培养基配置方法为：每100mlKirk限氮液体培养基加入2g麸皮，121℃灭菌30min。
C.测定漆酶酶活，结果见表3所示，选取酶活最高的10d漆酶粗酶液，进行分离纯化；
表3糙皮侧耳不同培养时间漆酶粗酶液中的酶活
首先将粗酶液进行硫酸铵分级沉淀，收集酶活最高部分的沉淀物于4℃在20mM的醋酸-醋酸钠缓冲液中透析除去硫酸铵，获得浓缩粗酶液；浓缩后的粗酶液分别经Phenyl SepharoseTM 6Fast Flow疏水层析、DEAE SepharoseTMFast Flow离子交换柱层析、Millipore超滤管浓缩后得到电泳纯的漆酶LacP。
实施例4制备来源于射脉菌的锰过氧化物酶MnpR：
A.将射脉菌斜面培养物上划取接种块，接种到100ml土豆液体种子培养基中，放置于摇床以50r/min速度震荡培养2d，温度25℃，获得液体菌种；
B.将制备好的液体菌种以体积比50％的接种量接入锰过氧化物酶产酶培养基，25℃分别培养10、45、60d后，按照质量体积比1∶5加入30ml蒸馏水浸泡培养物8h，过滤获得粗酶液；
锰过氧化物酶产酶培养基组成为：20-80目竹粉6g，按质量体积比1∶1加入蒸馏水，pH自然，125℃灭菌10min。
C.测定锰过氧化物酶酶活，结果如表4所示，选取酶活最高的10d粗酶液，进行分离纯化；
表4射脉菌不同培养时间锰过氧化物酶粗酶液中的酶活
首先进行粗酶液的硫酸铵分级沉淀，收集酶活最高部分的沉淀物于4℃在20mM的醋酸-醋酸钠缓冲液中透析除去硫酸铵，获得浓缩粗酶液；浓缩后的粗酶液分别经Phenyl SepharoseTM 6Fast Flow疏水层析、DEAE SepharoseTMFast Flow离子交换柱层析、Millipore超滤管浓缩后得到电泳纯的锰过氧化物酶MnpR。
实施例5制备来源于乳白耙菌的锰过氧化物酶MnpI：
A.将乳白耙菌斜面培养物上划取接种块，接种到100ml土豆液体种子培养基中，放置于摇床以200r/min速度震荡培养8d，温度37℃，获得液体菌种；
B.将制备好的液体菌种以体积比10％的接种量接入锰过氧化物酶产酶培养基，37℃分别培养10、45、60d后，按照质量体积比1∶50加入300ml蒸馏水浸泡培养物1h，过滤获得粗酶液；
锰过氧化物酶产酶培养基组成为：20-80目农业秸秆粉6g，按质量体积比1∶5加入蒸馏水，pH自然，100℃灭菌40min。
C.测定锰过氧化物酶酶活，结果如表5所示，选取酶活最高的60d粗酶液，进行分离纯化；
表5乳白耙菌不同培养时间锰过氧化物酶粗酶液中的酶活
首先进行粗酶液的硫酸铵分级沉淀，收集酶活最高部分的沉淀物于4℃在20mM的醋酸-醋酸钠缓冲液中透析除去硫酸铵，获得浓缩粗酶液；浓缩后的粗酶液分别经Phenyl SepharoseTM 6Fast Flow疏水层析、DEAE SepharoseTMFast Flow离子交换柱层析、Millipore超滤管浓缩后得到电泳纯的锰过氧化物酶MnpI。
实施例6制备来源于糙皮侧耳的锰过氧化物酶MnpP：
A.将糙皮侧耳斜面培养物上划取接种块，接种到100ml土豆液体种子培养基中，放置于摇床以150r/min速度震荡培养5d，温度28℃，获得液体菌种；
B.将制备好的液体菌种以体积比20％的接种量接入锰过氧化物酶产酶培养基，28℃分别培养10、45、60d后，按照质量体积比1∶10加入60ml蒸馏水浸泡培养物3h，过滤获得粗酶液；
锰过氧化物酶产酶培养基组成为：20-80目木屑6g，按固液比1∶2加入蒸馏水，pH自然，121℃灭菌30min。
C.测定锰过氧化物酶酶活，结果如表6所示，选取酶活最高的45d粗酶液，进行分离纯化；
表6木齿菌不同培养时间锰过氧化物酶粗酶液中的酶活
首先进行粗酶液的硫酸铵分级沉淀，收集酶活最高部分的沉淀物于4℃在20mM的醋酸-醋酸钠缓冲液中透析除去硫酸铵，获得浓缩粗酶液；浓缩后的粗酶液分别经Phenyl SepharoseTM 6Fast Flow疏水层析、DEAE SepharoseTMFast Flow离子交换柱层析、Millipore超滤管浓缩后得到电泳纯的锰过氧化物酶MnpI。
实施例7制备木质素降解液LacP-MnpP：
将漆酶LacP和锰过氧化物酶MnpP以1∶5的酶负荷比例，溶于pH6的醋酸-醋酸钠缓冲液中，使得漆酶和锰过氧化物酶酶负荷分别为1U/mL和5U/mL，再加入1mM MnSO4和1mM H2O2，获得木质素降解液LacP-MnpP，可用于碱木素降解。
利用非酚型木质素模型化合物4-甲氧基肉桂酸评价降解液的性质：向木质素降解液中加入1mM 4-甲氧基肉桂酸，30℃反应48小时，然后用HPLC检测木质素模型化合物的剩余率(％)，然后用HPLC检测木质素模型化合物的剩余率。HPLC条件为：流动相为0.1％(v：v)的甲醇溶液，色谱柱为A WondaSil-18column(250mm×4.6mm，5μm)，流速是1mL/min，进样量是10μL。结果表明与单一锰过氧化物酶相比，非酚型木质素降解率由42.6％增加到84.3％，表明该木质素降解液对可以提升非酚型木质素结构的降解效率。
实施例8制备木质素降解液LacG-MnpR：
将漆酶LacG和锰过氧化物酶MnpR以10∶1的酶负荷比例，溶于pH4的醋酸-醋酸钠缓冲液中，使得漆酶和锰过氧化物酶酶负荷分别为10U/mL和1U/mL，再加入10mM MnSO4和0.1mM H2O2，获得木质素降解液LacG-MnpR，可用于酶解木质素降解。
实施例9制备木质素降解液LacT-MnpP：
将漆酶LacT和锰过氧化物酶MnpP以10∶1的酶负荷比例，溶于pH4.5的醋酸-醋酸钠缓冲液中，使得漆酶和锰过氧化物酶酶负荷分别为50U/mL和5U/mL，再加入2mM MnSO4和0.5mM H2O2，获得木质素降解液LacT-MnpP，可用于麦秆、稻秆、木屑木质纤维素中木质素降解。
实施例10制备木质素降解液LacP-MnpI：
将漆酶LacP和锰过氧化物酶MnpI以1∶5的酶负荷比例，溶于pH4.8的醋酸-醋酸钠缓冲液中，使得漆酶和锰过氧化物酶酶负荷分别为10U/mL和50U/mL，再加入3mM MnSO4和0.6mM H2O2，获得木质素降解液LacP-MnpI，可用于玉米秸秆木质纤维素中木质素降解。
实施例11木质素降解液LacP-MnpP降解碱木素
向碱木素中添加木质素降解液LacP-MnpP，使碱木素浓度达到5％，于25℃不通氧反应48小时，并分别以单独漆酶LacP和单独锰过氧化物酶MnpP为对照，进行木质素的降解反应。反应后酸洗沉淀残余碱木素，沉淀冷冻干燥后称重，计算碱木素降解率，结果如表7所示。
表7木质素降解液LacP-MnpP降解碱木素
实施例12木质素降解液LacG-MnpR降解酶解木质素：
向酶解木质素中添加木质素降解液LacG-MnpR，使酶解木质素浓度达到0.2％，50℃通氧反应2小时，并分别以单独漆酶LacG和单独锰过氧化物酶MnpR为对照，进行木质素的降解反应。反应后将反应物冷冻干燥，利用Klason木质素测定法测定反应物中木质素含量，计算降解率，结果如表8所示。
表8木质素降解液LacG-MnpR降解酶解木质素
实施例13木质素降解液LacT-MnpP的降解麦秆、稻秆和木屑木质纤维素中的木质素：
分别向麦秆、稻秆和木屑木质纤维素中添加木质素降解液LacT-MnpP，使木质纤维素浓度达到10％，在不通氧条件下25℃反应48小时，并分别以单独漆酶LacT和单独锰过氧化物酶MnpP为对照，降解木质纤维素中的木质素。反应后过滤沉淀，测定沉淀中残余木质素含量，木质素含量采用Klason木质素的测定方法，结果如表9所示。
表9木质素降解液LacT-MnpP降解麦秆、稻秆和木屑中木质素的降解率
实施例14木质素降解液LacP-MnpI的降解玉米秸秆木质纤维素中的木质素：
向玉米秸秆中添加木质素降解液LacP-MnpI，使玉米秸秆木质纤维素浓度达到1％，在加氧条件下50℃反应12小时，并分别以单独漆酶LacP和单独锰过氧化物酶MnpI为对照，进行木质素的降解反应。反应后过滤沉淀，测定秸秆中残余木质素含量，木质素含量采用Klason木质素的测定方法，同时测定秸秆木质纤维素在木质素降解后的糖化率。结果如图1所示，经过复合酶木质素降解液降解秸秆中的木质素后，木质素降解效率增强，秸秆木质纤维素糖化率提升。

Claims (6)

1.一种木质素降解液，包括漆酶和锰过氧化物酶，其特征在于：
所述木质素降解液中，将漆酶和锰过氧化物酶，以10∶1～1∶5的酶负荷比例，溶于pH4～6的醋酸-醋酸钠缓冲液中，使得漆酶和锰过氧化物酶酶负荷分别为1U/ml～50U/ml和1U/ml～50U/ml，然后加入1～10mM MnSO4和0.1～1mMH2O2；
所述漆酶和锰过氧化物酶分别由白腐菌发酵获取胞外粗酶液，再经分离纯化后得到。
2.权利要求1所述木质素降解液的制备方法，依次包括制备木质素酶步骤和制备降解液步骤，其特征在于：
(1)所述制备木质素酶步骤：将白腐菌分别接种于漆酶产酶培养基和锰过氧化物酶产酶培养基，发酵后分别获得胞外粗酶液，分别经分离纯化后得到漆酶和锰过氧化物酶；
(2)所述制备降解液步骤：将漆酶和锰过氧化物酶，以10∶1～1∶5的酶负荷比例，溶于pH4～6的醋酸缓冲液中，使得漆酶和锰过氧化物酶酶负荷分别为1U/ml～50U/ml和1U/ml～50U/ml，再加入1～10mM MnSO4和0.1～1mMH2O2，得到木质素降解液。
3.如权利要求2所述的制备方法，其进一步特征在于，所述制备木质素酶步骤中：
(1.1)所述漆酶的制备包括下述子步骤：
A.从白腐菌斜面培养物上划取接种块，接种到土豆液体种子培养基中，放置于摇床以50r/min～200r/min速度震荡培养2d～8d，温度25℃～37℃，获得液体菌种；
B.将所述液体菌种以体积比10％～50％的接种量接入漆酶产酶培养基，25℃～37℃下静置培养2～6d后，加入1～10mM藜芦醇，继续培养3d～15d后，培养物过滤获得漆酶粗酶液；
C.漆酶粗酶液分别经硫酸铵沉淀、疏层析、离子交换柱层析和超滤管浓缩后得到电泳纯的漆酶；
(1.2)所述锰过氧化物酶的制备包括下述子步骤：
A.从白腐菌斜面培养物上划取接种块，接种到土豆液体种子培养基中，放置于摇床以50r/min～200r/min速度震荡培养2d～8d，温度25℃～37℃，获得液体菌种；
B.将所述液体菌种以体积比10％～50％的接种量接入锰过氧化物酶产酶培养基，25℃～37℃培养10d～60d后，按质量体积比1∶5～1∶50加入蒸馏水浸泡培养物1h～8h，过滤获得锰过氧化物酶粗酶液；
C.锰过氧化物酶粗酶液分别经硫酸铵沉淀、疏水层析、离子交换柱层析和超滤管浓缩后得到电泳纯的锰过氧化物酶。
4.如权利要求2或3所述的制备方法，其更进一步特征在于，
所述白腐菌为灵芝、乳白耙菌、糙皮侧耳、射脉菌、多孔菌中的一种或多种；
所述漆酶产酶培养基组成为：每100mLKirk限氮液体培养基中加入0.1～20g麸皮，100℃～125℃灭菌10～40min；
所述锰过氧化物酶产酶培养基组成为：将20目～80目的木质纤维素类生物质，按质量体积比1∶1～1∶5加入蒸馏水，pH自然，100℃～125℃灭菌10～40min；所述木质纤维素类生物质包括竹粉、农业秸秆粉或木屑。
5.利用权利要求1所述木质素降解液降解木质素的方法，其特征在于：
对于从生物质中分离获得的木质素高分子，添加所述木质素降解液，使木质素质量浓度达到0.2％～5％，于25℃～50℃通氧或不通氧反应2h～48h；
对于含有木质素的木质纤维素生物质，添加所述木质素降解液，使木质素质量浓度达到1％～10％，于25℃～50℃通氧或不通氧反应12h～48h。
6.如权利要求5所述的方法，其特征在于：
所述木质素包括从生物质中分离获取的木质素高分子及木质纤维素生物质中的木质素，从生物质中分离获取的木质素高分子包括碱木素、酶解木质素、磺化木质素、磨木木质素等；所述木质纤维素生物质包括草本类植物秸秆和木材，其中草本类植物秸秆包括荻竹、玉米杆、麦秆、稻秆、高粱秆、棉秆、油菜秆、芒草等；木材包括各类木材加工后的木屑。
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