CN104059900A - 一种蛋白酶k及其应用 - Google Patents

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王华明
林艳梅
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    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
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    • C12N9/50Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25)
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Abstract

本发明涉及一种蛋白酶K及其应用,所述的一种蛋白酶K的核苷酸序列为SEQ ID NO:2,氨基酸序列为SEQ ID NO:1。本发明筛选出的蛋白酶K切割脂族氨基酸和芳香族氨基酸的羧基端肽键,可以用来制备脉冲电泳的染色体DNA,蛋白印迹以及去除DNA和RNA制备中的核酸酶,也可以用于提取组织中非蛋白成份降解含有蛋白质的杂志,比如DNA疫苗和肝素的制备等,具有工业生产应用价值。而且筛选出的蛋白酶K基因可以用来转化工程菌,从而获得具有表达蛋白酶K的重组菌。

Description

一种蛋白酶K及其应用
技术领域
本发明属于酶基因工程技术领域,具体涉及一种蛋白酶K及其应用。
背景技术
蛋白酶K(E.C.3.4.21.64)是真菌Tritirachium album Limber合成的胞外内肽酶,它是具有典型催化三元组Asp39-His69-Ser224的丝氨酸蛋白酶类中的一员。蛋白酶K具有高于30U/mg的特异活性,是已知的内肽酶中最有活性的之一,并且非特异性水解天然的和变性的蛋白质。
成熟蛋白酶K由279个氨基酸组成,两个二硫桥和两个键合的钙离子使得紧密结构稳定。所以,与其他枯草杆菌蛋白酶相比,蛋白酶K对极端pH值、高温、离液剂和去污剂具有高得多的稳定性,蛋白酶K在高温(达65℃)和宽pH范围(pH 7.5—12.0)具有高稳定性。在变性剂例如脲或SDS存在下其活性得以提高。上述性质使得蛋白酶K在要求非特异性蛋白质降解的生物技术领域中具有很好的应用,特别是从粗提取液中分离核酸(DNA或RNA)以及在DNA分析中预制备样品,另外蛋白酶K也可应用于蛋白质分析领域,例如结构释析。
但因为目前的Tritirachium album Limber基因的核苷酸序列不适合大规模发酵,而且难以进行基因操作,之前曾进行过在其它宿主细胞中过量表达的重组蛋白酶K的尝试,但存在着不表达、产生失活“包涵体”或者与复性有关的问题,在这些试验中没有检测到显著活性。因此,需要对其序列进行相应的改造,以满足工业生产的要求。
发明内容
本发明的目的是提供一种蛋白酶K及其应用,即一种具有工业应用价值的新型蛋白酶K,以弥补现有技术的不足。
本发明一个方面涉及一种蛋白酶K,包括有:
a)序列为SEQ ID NO:1的酶;
b)在a)中的氨基酸序列经过取代、缺失或添加一个或几个氨基酸且具有a中所述酶的活性的,由a衍生的酶。
编码上述蛋白酶K的核苷酸,其优化的序列为SEQ ID NO:2。
本发明还提供用于表达上述蛋白酶K的重组表达质粒,是将序列为SEQID NO:2的核苷酸片段插入到原核表达载体中构建的。
本发明还涉及携带有表达上述蛋白酶K的重组表达质粒的重组菌。
本发明筛选出的蛋白酶K能切割脂族氨基酸和芳香族氨基酸的羧基端肽键,可以用来制备脉冲电泳的染色体DNA,蛋白印迹以及去除DNA和RNA制备中的核酸酶,也可以用于提取组织中非蛋白成份降解含有蛋白质的杂志,比如DNA疫苗和肝素的制备等,具有工业生产应用价值。而且筛选出的蛋白酶K基因可以用来转化工程菌,从而获得具有表达蛋白酶K的重组菌。
附图说明
图1:本发明的蛋白酶K在黑曲霉宿主中的pH稳定性;
图2:本发明的蛋白酶K在黑曲霉宿主中的温度稳定性。
具体实施方式
下面结合实例对本发明的方法做进一步说明。但实例仅限于说明,并不限于此。下列实施例中未注明具体条件的实验方法,通常可按常规条件,如J.萨姆布鲁克(Sambrook)等编写的《分子克隆实验指南》中所述的条件,或按照制造厂商所建议的条件运行。
1、蛋白酶K基因的合成
将Tritirachium album Limber的序列进行改造,形成新的核酸序列ProK,使ProK不被XhoⅠ和XbaⅠ两个酶切位点切断,获得的新的基因的核苷酸序列为SEQ ID NO:2,其编码的蛋白酶K的氨基酸序列为SEQ ID NO:1。在ProK序列两端加XhoⅠ和XbaⅠ酶切位点,将文本序列送至生物公司(上海生工)合成,合成的ProK被连接在载体PSG-TS上, 插入位点为t-a克隆,受体菌为大肠杆菌DH5α菌株。
2、蛋白酶K基因重组载体的构建
将连在PSG-TS载体上的ProK基因用XhoⅠ和XbaⅠ双酶切,经琼脂糖凝胶电泳,切胶回收酶切产物片段,与同样用XhoⅠ和XbaⅠ双酶切并切胶回收的质粒pGm连接,转化感受态大肠杆菌(E.coli)DH5α后,涂于含有Amp的LB固体培养基上。37℃培养14-16小时,进行菌落PCR验证,有正确条带的,挑取单克隆转接到4 ml LB液体培养基中进行培养(含Amp),培养14-16小时后,提取质粒,将重组质粒pGm-ProK转入表达宿主黑曲霉G1,含有该重组质粒的重组菌株命名为G1-pGm-ProK。
其中的酶切及连接反应均参照表1。
3、转化黑曲霉及重组子筛选鉴定
(1)将装有100ml CMA 的250ml 4-挡板摇瓶用新鲜的黑曲霉G1菌株孢子接种,在30℃、200rpm条件下使培养物生长12小时。
(2)将(1)中获得的菌体用4层无菌纱布过滤,先用无菌水冲洗3次,再用溶液 A冲洗3次。
(3)在无菌条件下将清洗过的菌丝体转移到原生质体溶液中并在30℃、200rpm温育2小时,显微镜观察监测原生质体化进展。
(4)用无菌Micra-Cloth将原生质体化反应滤入至两个50ml无菌的一次性离心管中,并将每管的体积用溶液B定容至45ml,4000 rpm离心10 min。弃上清;向管中加20 ml 溶液B,混匀,4000 rpm离心5min,弃上清;再向管中加20 ml溶液B,混匀,4000 rpm离心5min,弃上清。
(5)加100 μl 溶液B重悬原生质体,原生质体的浓度应达到1×107个/100μl。在冰上,将100μl原生质体溶液转移到预冷的15ml管中,每个转化反应一管。以不超过10μl的体积向管中加入10μg DNA,并加入12.5 μl 溶液 C,温和混匀并在冰上温育20分钟。
(6)将MMSA上层培养基(每管8ml)熔化并保持在55℃。从冰中移出原生质体,向原生质体中加入1ml溶液C和2ml溶液B,并与一管MMSA上层培养基温和混匀,将混合液分别倒入三个amdS下层培养基平板中30℃恒温培养4-7天。
(7)将长出的转化子转接至admS二次验证培养基平板,30℃恒温培养,并进行菌落PCR验证,获得的阳性菌株经测序鉴定正确,α-淀粉酶的核苷酸序列为SEQ ID NO:1,其编码的氨基酸序列为SEQ ID NO:2。
溶液A(每500ml)— 2.5ml 1M K2HPO4; 2.5ml 1M KH2PO4;48.156g无水MgSO4(FW 120.37);加入dlH2O至终体积500ml,pH 5.5。将溶液过滤灭菌并在室温下保存。
原生质体化溶液—将0.6g的β-D-葡聚糖酶(InterSpex Products,Inc,CA)或者450mgβ-D-葡聚糖酶和150mg Driselase(InterSpexProducts,Inc.)溶解于40ml溶液A中,并将溶液过滤灭菌,0.2微米。
溶液B(每500ml)—5ml 1M Tris,pH 7.5;2.77g CaCl2(FW110.99);109.32g山梨醇(FW 182.2;1.2 M);加入dlH2O至终体积500ml。将此溶液过滤灭菌并在室温下保存。
溶液C(每500ml)—250g PEG4000;2.77g CaCl2;5ml 1M Tris,pH7.5;加入dlH2O至终体积500ml。将此溶液过滤灭菌。
MMSA琼脂—将0.59g/L乙酰胺;3.4g/L CsCl;0.52g/L KCl;1.52g/L KH2PO4;218.5g/L D-山梨醇;1ml/L 痕量元素;10g/L琼脂(顶层琼脂中的低熔点琼脂糖)溶解于1L dlH2O,高压灭菌。灭菌后,在无菌条件下加入10ml 50%葡萄糖和1.25ml 20% MgSO4·7H2O。
CMA(1升)= 20g无水葡萄糖;20g麦芽膏(Difco Brand Malt Extract),1g蛋白胨(Bacto Peptone);20g琼脂(Bacto Agar)
4、蛋白酶K的活性测定
将获得的阳性菌株接种于液体发酵培养基中,于30℃、200 rpm摇床培养。蛋白酶K酶活用福林法测定。转入了pGm-ProK质粒的黑曲霉G1在pH 7.5、40℃条件下测定的蛋白酶K酶活可达到 1307.56 U/ml,结果证明本发明构建的蛋白酶K的核苷酸序列可以在黑曲霉中大量表达。
4.1、测定本发明蛋白酶K在不同pH下的酶活:
将测酶活的反应缓冲液pH分别设定为pH 3、pH 4、pH 5、pH 6、pH 7、pH 8、pH 9、pH 10、pH 11,测定在这些pH条件下本发明序列为SEQ ID NO:1的蛋白酶K的酶活,测定结果参见图1。从该图中可以看出,蛋白酶K的最适反应pH为11。
4.2、测定本发明蛋白酶K在pH为11、不同温度下的酶活:
将反应pH设定为11,反应温度分别设定为20℃、30℃、40℃、50℃、60℃、70℃、80℃。测定结果参见图2。从该图中可以看出,蛋白酶K的最适反应温度为50℃。
5、蛋白酶K的应用实例
本发明使用蛋白酶K水解小麦面筋蛋白,以DPPH 自由基清除率为筛选指标,在温度 50 ℃、pH 9、底物量 5 g、水解时间 25 min的条件下,小麦面筋蛋白混合酶解液 DPPH 自由基清除率达到 87.67%。这表明在本发明的蛋白酶K的作用下,水解的产物的体外抗氧化效果显著,可对其进一步分离纯化研究,为小麦面筋蛋白的综合利用和开发提供一定的基础。

Claims (5)

1.一种蛋白酶K,包括有:
a)序列为SEQ ID NO:1的酶;
b)在a)中的氨基酸序列经过取代、缺失或添加一个或几个氨基酸且具有
a中所述酶的活性的,由a衍生的酶。
2.一种编码权利要求1所述的蛋白酶K的核苷酸,其序列为SEQ ID NO:2。
3.一种重组表达质粒,所述的重组表达质粒用于表达权利要求1所述的蛋
白酶K。
4.如权利要求3所述的重组表达质粒,其特征在于所述的重组表达质粒是
将序列为SEQ ID NO:2的核苷酸片段插入到原核表达载体中构建的。
5.一种重组菌,所述的重组菌携带有权利要求3所述的重组表达质粒。
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