CN103333232B - 百子莲赤霉素受体APGID1a蛋白及其编码基因和探针 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种百子莲赤霉素受体APGID1a蛋白及其编码基因和探针,所述蛋白质为如下(a)或(b)的蛋白质:(a)由如SEQ ID NO.2所示的氨基酸序列组成的蛋白质;(b)SEQ ID NO.2所示的氨基酸序列经过取代、缺失或者添加一个或几个氨基酸且具有百子莲赤霉素受体活性的由(a)衍生的蛋白质。本发明还提供编码上述蛋白质的核酸序列,以及检测探针;步骤如下:通过RACE技术分别扩增得到APGID1a基因的3′和5′端,进行基因全长序列拼接和同源性分析,通过时空表达模式分析以及外源调控物质处理,分析APGID1a基因表达差异情况进而验证基因的功能。本发明为利用基因工程技术调控百子莲赤霉素受体APGID1a基因的时空表达特性,进而能够改变植物株高。
Description
技术领域
本发明涉及百子莲赤霉素信号转导过程中的受体蛋白及其编码基因和探针,具体涉及一种百子莲赤霉素受体APGID1a蛋白及其编码基因和探针。
背景技术
观赏植物的株型是决定其观赏价值和的商品价值重要因素之一。改变和定向调控株型,创造矮化紧凑的株型,可以增加观赏植物的观赏价值和商品价值,通过增加株高可以获得良好的切花性状。植物的形态建成受多种激素的综合调控,赤霉素(Gibberellin,GA)是决定植物茎的伸长的最重要的激素,赤霉素的合成和代谢直接影响到植物的株型发育。赤霉素信号转导过程中的受体GID1编码一个可溶性的GA受体,它首先从水稻(Oryza sativa)一个赤霉素不敏感矮化突变体中被克隆。GID1蛋白能特异地结合活性GA,并进一步与GA负调控因子DELLA蛋白结合形成复合体。该复合物通过介导DELLA蛋白的降解或抑制DELLA蛋白的活性,解除DELLA蛋白对GA反应系统的抑制作用,激活GA反应下游的基因。近年来,GID1蛋白作为GA信号识别和转导的一个重要组成部分,已成为继DELLA蛋白后研究GA信号转导的又一热点。GID1蛋白以家族的形式存在,其中GID1a受体蛋白具有重要的作用,其表达量的改变显著影响GA的生物反应,GID1a的突变体多表现为矮化性状。
GID1a在一些植物中已被分离,如:拟南芥(Arabidopsis thaliana)、陆地棉(Gossypium hirsutum)、水稻、矮牵牛(Petunia hybrida Vilm)、大麦(Hordeumvulgare)、菜豆(Phaseolus vulgaris)、玉米(Zea mays)等,但对于球根花卉百子莲(Agapanthus praecox),APGID1a基因的克隆、表达模式及APGID1a蛋白编码序列目前尚不清楚。在本发明被公布之前,未有任何与本专利申请中所提及的百子莲APGID1a蛋白序列相关的文献报道。
发明内容
本发明的目的在于填补赤霉素受体GID1a基因家族成员的克隆、表达模式分析以及赤霉素受体GID1a蛋白的空白,提供了一种赤霉素受体蛋白APGID1a,本发明还提供了一种编码上述蛋白质的核酸序列以及检测所述核酸序列的探针;本发明公开了百子莲APGID1a蛋白及其核酸序列在百子莲不同器官、不同发育阶段的表达模式,为今后利用基因工程技术对APGID1a基因表达的时空特性进行调控,而且APGID1a突变体对外源赤霉素不敏感,从而为改变株高、创造合理株型提供了理论依据,具有很大的应用价值。
一方面,本发明提供了具有百子莲赤霉素受体活性的蛋白质,所述蛋白质是由如SEQID NO.2所示的氨基酸序列组成的蛋白质;或由SEQ ID NO.2所示的氨基酸序列经过取代、缺失或者添加一个或几个氨基酸且具有百子莲赤霉素受体活性的蛋白质。该多肽在百子莲发育的不同阶段,不同器官内的有无及活性大小存在较大差异。
优选的,所述蛋白质为SEQ ID NO.2所示氨基酸序列经过1~50个氨基酸的缺失、插入和/或取代,或者在C末端和/或N末端添加1~20个以内氨基酸而得到的序列。
进一步优选的,所述蛋白质为SEQ ID NO.2所示氨基酸序列中1~10个氨基酸被性质相似或相近的氨基酸所替换而形成的序列。
另一方面,本发明提供了一种编码上述蛋白质的核酸序列。
优选的,所述核酸序列具体为:(a)碱基序列如SEQ ID NO.1第1~1044位所示;或(b)与SEQ ID NO.1第1~1044位所示的核酸有至少70%的同源性的序列;或(c)能与SEQ ID NO.1第1~1044位所示的核酸进行杂交的序列。
优选的,所述核酸序列具体为SEQ ID NO.1第1~1044位所示的核酸序列中1~90个核苷酸的缺失、插入和/或取代,以及在5′和/或3′端添加60个以内核苷酸形成的序列。
此外,本发明还提供了一种检测上述核酸序列的探针,所述探针为具有上述核酸序列8~100个连续核苷酸的核酸分子,该探针可用于检测样品中是否存在编码百子莲APGID1a相关的核酸分子。
本发明还涉及一种百子莲赤霉素受体APGID1a蛋白编码基因的用途,所述编码基因的碱基序列如SEQ ID NO.1第1~1044位所示,所述应用是:通过基因工程对基因表达进行调控以改变植株株高,获得新的百子莲株型。
优选地,所述应用具体为:通过常规手段提高APGID1a蛋白编码基因的表达量,使得百子莲的株高增加,获得新的百子莲株型。
进一步优选地,所述应用具体为:使用GA处理百子莲,使得植株APGID1a蛋白编码基因表达量提高,进而使得百子莲的株高增加,获得新的百子莲株型。
在本发明中,“分离的DNA”、“纯化的DNA”是指,该DNA或片段已从天然状态下位于其两侧的序列中分离出来,还指该DNA或片段已经与天然状态下伴随核酸的组分分开,而且已经与在细胞中相伴随的蛋白质分开。
在本发明中,术语“百子莲赤霉素受体APGID1a蛋白编码序列”指编码具有百子莲APGID1a蛋白活性的多肽的核苷酸序列,如SEQ ID NO.1所示的第1~1044位核苷酸序列及其简并序列。该简并序列是指,位于SEQ ID NO.1所示的第1~1044位核苷酸中,有一个或多个密码子被编码相同氨基酸的简并密码子所取代后而产生的序列。由于密码子的简并性,所以与SEQ ID NO.1所示的第1~1044位核苷酸序列同源性低至约70%的简并序列也能编码出SEQ ID NO.2所示的序列。该术语还包括与SEQ ID NO.1所示的核苷酸序列的同源性至少70%的核苷酸序列。
该术语还包括能编码天然百子莲APGID1a蛋白的相同功能、SEQ ID NO.1所示序列的变异形式。这些变异形式包括(但并不限于):通常为1~90个核苷酸的缺失、插入和/或取代,以及在5′和/或3′端添加为60个以内核苷酸。
在本发明中,术语“百子莲赤霉素受体APGID1a蛋白”指具有百子莲赤霉素受体APGID1a蛋白活性的SEQ ID NO.2所示序列的多肽。该术语还包括具有与天然百子莲赤霉素受体APGID1a蛋白相同功能的、SEQ ID NO.2序列的变异形式。这些变异形式包括(但并不限于):通常为1~50个氨基酸的缺失、插入和/或取代,以及在C末端和/或N末端添加一个或为20个以内氨基酸。例如,在本领域中,用性能相近或相似的氨基酸进行取代时,通常不会改变蛋白质的功能。又比如,在C末端和/或N末端添加一个或数个氨基酸通常也不会改变蛋白质的功能。该术语还包括百子莲赤霉素受体APGID1a蛋白的活性片段和活性衍生物。
本发明的百子莲APGID1a蛋白的变异形式包括:同源序列、保守性变异体、等位变异体、天然突变体、诱导突变体、在高或低的严谨条件下能与百子莲APGID1a相关DNA杂交的DNA所编码的蛋白、以及利用百子莲APGID1a蛋白的抗血清获得的多肽或蛋白。
在本发明中,“百子莲APGID1a保守性变异多肽”指与SEQ ID NO.2所示的氨基酸序列相比,有至多10个氨基酸被性质相似或相近的氨基酸所替换而形成多肽。这些保守性变异多肽最好根据表1进行替换而产生。
表1
最初的残基 | 代表性的取代 | 优选的取代 |
Ala(A) | Val;Leu;Ile | Val |
Arg(R) | Lys;Gln;Asn | Lys |
Asn(N) | Gln;His;Lys;Arg | Gln |
Asp(D) | Glu | Glu |
Cys(C) | Ser | Ser |
Gln(Q) | Asn | Asn |
Glu(E) | Asp | Asp |
Gly(G) | Pro;Ala | Ala |
His(H) | Asn;Gln;Lys;Arg | Arg |
Ile(I) | Leu;Val;Met;Ala;Phe | Leu |
Leu(L) | Ile;Val;Met;Ala;Phe | Ile |
Lys(K) | Arg;Gln;Asn | Arg |
Met(M) | Leu;Phe;Ile | Leu |
Phe(F) | Leu;Val;Ile;Ala;Tyr | Leu |
Pro(P) | Ala | Ala |
Ser(S) | Thr | Thr |
Thr(T) | Ser | Ser |
Trp(W) | Tyr;Phe | Tyr |
Tyr(Y) | Trp;Phe;Thr;Ser | Phe |
Val(V) | Ile;Leu;Met;Phe;Ala | Leu |
发明还包括百子莲APGID1a蛋白或多肽的类似物。这些类似物与百子莲APGID1a相关多肽的差别可以是氨基酸序列上的差异,也可以是不影响序列的修饰形式上的差异,或者兼而有之。这些多肽包括天然或诱导的遗传变异体。诱导变异体可以通过各种技术得到,如通过辐射或暴露于诱变剂而产生随机诱变,还可通过定点诱变法或其他已知分子生物学的技术。类似物还包括具有不同于天然L-氨基酸的残基(如D-氨基酸)的类似物,以及具有非天然存在的或合成的氨基酸(如β、γ-氨基酸)的类似物。应理解,本发明的多肽并不限于上述列举的代表性的多肽。
修饰(通常不改变一级结构)形式包括:体内或体外的多肽的化学衍生形式如乙酰化或羧基化。修饰还包括糖基化,如那些在多肽的合成和加工中或进一步加工步骤中进行糖基化修饰而产生的多肽。这种修饰可以通过将多肽暴露于进行糖基化的酶(如哺乳动物的糖基化酶或去糖基化酶)而完成。修饰形式还包括具有磷酸化氨基酸残基(如磷酸酪氨酸,磷酸丝氨酸,磷酸苏氨酸)的序列。还包括被修饰从而提高了其抗蛋白水解性能或优化了溶解性能的多肽。
在本发明中,可用实时荧光定量PCR的方法分析百子莲APGID1a基因产物的表达模式,即分析百子莲APGID1a基因的mRNA转录物在细胞中的存在与否和数量。
本发明检测样品中是否存在百子莲APGID1a相关核苷酸序列的检测方法,包括用上述的探针与样品进行杂交,然后检测探针是否发生了结合。该样品是PCR扩增后的产物,其中PCR扩增引物对应于百子莲APGID1a相关核苷酸编码序列,并可位于该编码序列的两侧或中间。引物长度一般为15~50个核苷酸。
此外,根据本发明的百子莲APGID1a核苷酸序列和氨基酸序列,可以在核酸同源性或表达蛋白质的同源性基础上,筛选百子莲APGID1a相关同源基因或同源蛋白。
为了得到与百子莲APGID1a相关基因的点阵,可以用DNA探针筛选百子莲cDNA文库,这些探针是在低严谨条件下,用32P对百子莲APGID1a相关的全部或部分做放射活性标记而得的。适合于筛选的cDNA文库是来自百子莲的文库。构建来自感兴趣的细胞或者组织的cDNA文库的方法是分子生物学领域众所周知的。另外,许多这样的cDNA文库也可以购买到,例如购自Clontech,Stratagene,Palo Alto,Cal.。这种筛选方法可以识别与百子莲APGID1a相关的基因家族的核苷酸序列。
本发明的百子莲APGID1a相关核苷酸全长序列或其片段通常可以用PCR扩增法、重组法或人工合成的方法获得。对于PCR扩增法,可根据本发明所公开的有关核苷酸序列,尤其是开放阅读框序列来设计引物,并用市售的cDNA库或按本领域技术人员已知的常规方法所制备的cDNA库作为模板,扩增而得有关序列。当序列较长时,常常需要进行两次或多次PCR扩增,然后再将各次扩增出的片段按正确次序拼接在一起。
当获得了有关序列后,就可以用重组法来大批量地获得有关序列。这通常是将其克隆入载体,再转入细胞,然后通过常规方法从增殖后的宿主细胞中分离得到有关序列。
此外,还可通过化学合成将突变引入本发明蛋白序列中。
除了用重组法产生之外,本发明蛋白的片段还可用固相技术,通过直接合成肽而加以生产(Stewart等人,(1969)固相多肽合成,WH Freeman Co.,San Francisco;Merrifield J.(1963)J.Am Chem.Soc85:2149-2154)。在体外合成蛋白质可以用手工或自动进行。例如,可以用Applied Biosystems的431A型肽合成仪(Foster City,CA)来自动合成肽。可以分别化学合成本发明蛋白的各片段,然后用化学方法加以连接以产生全长的分子。
利用本发明的百子莲APGID1a蛋白,通过各种常规筛选方法,可筛选出与百子莲APGID1a蛋白相关发生相互作用的物质,或者受体、抑制剂或拮抗剂等。
百子莲为世界著名切花之一,观赏价值极高,应用广泛,人们对高品质观赏价值的新品种的需求也越来越大。因此,本发明具有很大的应用价值。本发明首次克隆百子莲赤霉素生物信号转导复合体中的关键受体蛋白百子莲APGID1a的编码序列,并采用荧光实时定量PCR的方法分析APGID1a基因的表达模式,为今后利用基因工程技术调控APGID1a基因的时空表达,从而改变株高、创造高观赏价值的株型提供了理论依据,具有很大的应用价值。
附图说明
通过阅读参照以下附图对非限制性实施例所作的详细描述,本发明的其它特征、目的和优点将会变得更明显:
图1为本发明的百子莲APGID1a基因与杨树赤霉素受体基因mRNA的核苷酸序列的同源比较(GAP)结果;
图2为本发明的百子莲APGID1a蛋白与杨树赤霉素受体的氨基酸序列的同源比较(FASTA)结果,其中,相同的氨基酸在两个序列之间用氨基酸单字符标出。
图3为本发明的百子莲APGID1a蛋白表达量与百子莲株高调控之间的关系。
具体实施方式
下面结合具体实施例,进一步阐述本发明。这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。下列实施例中未注明具体条件的实验方法,通常按照常规条件,例如Sambrook等分子克隆:实验室手册(New York:Cold Spring HarborLaboratory Press,1989)中所述的条件,或按照制造厂商所建议的条件。
实施例1、百子莲赤霉素受体APGID1a基因的克隆
1.植物材料的获得
百子莲于2000年由南非引入我国,并在上海进行引种试验。孙博在2011年发表的硕士学位论文《百子莲盆栽矮化的研究》一文中,对百子莲的基本生物学特性,引种历史等进行了较为详细的介绍。本实施例涉及的百子莲材料可以通过公开的渠道获得。愈伤组织、胚性愈伤组织、体胚、幼苗由组培室培育并保存,用于提取RNA。将健康、大小一致的百子莲植株于温室栽植并进行常规管理,待花朵花蕾形成,花瓣即将开裂时采集各个器官和组织,用于提取RNA。
2.RNA的抽提
用“RNA prep pure植物总RNA提取试剂盒”抽提总RNA(RNA prep pure PlantKit:上海莱枫生物科技有限公司)。用甲醛变性胶电泳鉴定RNA的完整性,然后在分光光度计(Thermo Scientific NANODROP 1000 Spectrophotometer)上测定RNA的纯度及浓度。
3.基因的全长克隆
根据GID1a基因的氨基酸保守序列,利用同源性基因克隆原理,采用RACE方法(SMARTerTM RACE cDNA Amplification Kit:Clontech Laboratories,Inc.)进行cDNA全长克隆,分三个阶段进行:
(1)RT-PCR获得基因中间片段
将提取RNA进行反转录(Prime Script Ⅱ 1st Strand cDNA Synthesis Kit:宝生物工程(大连)有限公司),以第一链cDNA为模板,
利用引物F1:5′-CGTCCTGTCCTTTGACCGCCTTATCCA-3′;(SEQ ID NO.3)
和R1:5′-GCATCAAATCCAAACCCGCAACCACG-3′。(SEQ ID NO.4)
进行PCR,扩增得到689bp片段,回收并连接到pMD18-T Simple vector载体上,用RV-M和M13-47作为通用引物,采用终止物荧光标记(Big-Dye,Perkin-Elmer,USA)的方法,在ABI377测序仪(Perkin-Elmer,USA)上进行测序。测序结果通过在NCBI网站进行BLAST(http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/)比对已有的数据库(Genebank),知其核酸序列及编码蛋白与已知的杨树属赤霉素受体基因的同源性很高,故初步认为它是一个赤霉素受体基因。
(2)3′RACE
以3′RACE ready cDNA为模板,二轮巢式PCR完成3′末端序列的扩增。
第一轮:UPM+APGID1a3-1:
5′-CGTCCTGTCCTTTGACCGCCTTATCCA-3′;(SEQ ID NO.5)
第二轮:NUP+APGID1a3-2:
5′-GGAGGGACTCAGAGGACGGAATCGGAAA-3′。(SEQ ID NO.6)
得到APGID1a3′末端序列(594bp),回收,连接到pMD18-T Simple vector载体上,用RV-M和M13-47作为通用引物,采用终止物荧光标记(Big-Dye,Perkin-Elmer,USA)的方法,在ABI377测序仪(Perkin-Elmer,USA)上进行测序。测序结果通过在NCBI网站进行BLAST(http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/)比对已有的数据库(Genebank),知其核酸序列及编码蛋白与已知的杨树属赤霉素受体基因的同源性很高。
(3)5′RACE
以5′RACE ready cDNA为模板,通过二轮巢式PCR完成5′末端序列的扩增。第一轮UPM+APGID1a5-1:
5′-GCATCAAATCCAAACCCGCAACCACG-3′;(SEQ ID NO.7)
第二轮:NUP+APGID1a5-2:
5′-GGTAAATGCGGGCAAGAAGGTTGGTGG-3′。(SEQ ID NO.8)
得到APGID1a5′末端序列(616bp),回收连接,用与3′RACE相同的方法进行测序。
将通过上述3种方法获得的序列的测序结果进行拼接,将拼接序列提交BLAST分析,结果证明从百子莲中新得到的APGID1a基因的确为一个与赤霉素受体相关的基因。将测序结果结合NCBI的ORF Fingding(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/gorf)网页预测,发现了百子莲APGID1a基因的起始密码子与终止密码子。根据获得的序列,分别从起始密码子和终止密码子处设计特异性引物
ORF-F:5′-ATGGCTGGAAGCAACGAGGTGAACG-3′;(SEQ ID NO.9)
ORF-R:5′-CTATGCTAGCAAATTCGGAATCACG-3′。(SEQ ID NO.10)
以百子莲cDNA为模板进行PCR,扩增得到1044bp百子莲赤霉素受体GID1a蛋白的全长编码序列(SEQ ID NO.1)。
实施例2、百子莲APGID1a基因的序列信息与同源性分析
本发明新的百子莲APGID1a全长CDS开放读框序列为1044bp,详细序列见SEQ IDNO.1第一条序列。根据CDS开放读码框序列推导出百子莲APGID1a的氨基酸序列,共347个氨基酸残基,分子量为38762.1道尔顿,等电点(pI)为7.01。详细序列见SEQ IDNO.2所示序列;
将百子莲APGID1a的CDS开放读框序列及其编码蛋白的氨基酸序列用BLAST程序在Non-redundant GenBank+EMBL+DDBJ+PDB和Non-redundant GenBank CDStranslations+PDB+SwissProt+Superdate+PIR数据库中进行核苷酸和蛋白质同源性检索,结果发现它与杨树GID1a基因(XM_002319540.1)在核苷酸水平上具有67.15%的相同性。如图1所示(Query:百子莲赤霉素受体APGID1a的编码基因序列;Sbjct:杨树赤霉素受体的mRNA序列);在氨基酸水平上,它与杨树GID1a基因(GenBank登录号XP_002319576.1)也有72%的一致性,如图2所示(Query:百子莲赤霉素受体APGID1a的氨基酸序列;Sbjct:杨树赤霉素受体的氨基酸序列)。由此可见,百子莲APGID1a基因与杨树GID1a基因无论从核酸还是蛋白水平上都存在较高的同源性。
实施例3、百子莲APGID1a基因在不同发育阶段以及在百子莲不同组织中的表达差异性
1.材料的获得:在百子莲体胚发育的不同阶段(愈伤组织;肧性愈伤组织;体胚分化;幼苗形成),利用实验室组培材料为研究对象,同时在实验温室取成年植株的主根、侧根、茎、花葶、老叶、新叶、小花梗、花瓣、花丝、花药、子房、种子,将样品分别用铝铂纸包好后立刻投入液氮中,接着转入-80℃超低温冰箱中贮存待用。将GA和多效唑(Paclobutrazol,PBZ)喷施处理过的百子莲植株叶片取样用于RNA提取。
2.RNA的提取:利用RNA prep pure植物总RNA提取试剂盒”(RNA prep pure PlantKit:上海莱枫生物科技有限公司)提取百子莲不同发育阶段以及不同组织中的RNA。
3.RNA的完整性、纯度、浓度的确定:用普通琼脂糖凝胶电泳(胶浓度1.2%;0.5×TBE电泳缓冲液;150v,15min)检测完整性。电泳条带中最大rRNA亮度应为第二条rRNA亮度的1.5-2.0倍,否则表示rRNA样品的降解。纯度较好的RNA,A260/A280以及A260/A230约为2.0左右。用分光光度计测定OD值并计算RNA含量。
4.cDNA的获得:以500ng的总RNA为模板,按照宝生物公司TaKaRa PrimeScriptTMRT reagent Kit Perfect Real Time试剂盒操作说明进行反转录获得cDNA备用。
5.设计特异性引物以进行实时荧光定量PCR分析基因在各器官与组织中的表达量。根据已经获得的百子莲APGID1a基因序列,利用引物设计软件设计用于Real-timePCR中APGID1a基因定量分析的特异性引物,
GID1a-F:5′-ATAGCGATGGCAGCGATA-3′;(SEQ ID NO.11)
GID1a-R:5′-ATGGAATCAGCATTGTATAATCAC-3′。(SEQ ID NO.12)
内参基因为Actin,其引物为
Actin-F:5′-CAGTGTCTGGATTGGAGG-3′;(SEQ ID NO.13)
Actin-R:5′-TAGAAGCACTTCCTGTG-3′。(SEQ ID NO.14)
6.制作目的基因及内参基因的标准曲线。用EASY Dilution(试剂盒提供)将标准品cDNA溶液进行梯度稀释,然后分别以稀释后的cDNA溶液为模板,以目的基因及内参基因的特异性引物进行Real-time PCR扩增,反应结束后绘制溶解曲线和标准曲线。分析溶解曲线,判断目的基因及内参基因的溶解曲线是否得到单一峰,以判断使用该引物能否得到单一的PCR扩增产物。通过标准曲线确定模板cDNA的合适稀释倍数。
7.待测样品中目的基因的实时荧光定量分析。以合成的cDNA第一条链为模板,分别用目的基因与内参照基因的特异性引物扩增进行荧光定量分析,Real-time PCR反应在BIO-RAD Chromo4实时定量仪上进行,反应体系为20μL。反应采用三步法,94℃变性20s,接着40个循环:94℃15s;53℃15s;72℃25s。每次扩增完成后,均做溶解曲线,以检验扩增产物是否为特异产生。
8.采用2-△△Ct法作相对定量分析。结果表明百子莲APGID1a基因的表达水平在胚性愈伤组织的表达量最高,成苗时期的表达量最低,其中最高表达量为最低表达量的5.97倍,说明该基因的表达与百子莲发育过程密切相关。APGID1a基因在主根、侧根、茎、花葶、老叶、新叶、小花梗、花瓣、花丝、花药、子房、种子中均有表达,在根、茎和花药中表达量较高,花葶中表达量最低。侧根比主根表达量高,新叶比老叶表达量高。这说明APGID1a基因的表达具有明显的空间差异性,其中生长旺盛的部位表达量较高,表明该基因对生长发育具有重要的调控作用,尤其参与了植物根尖的伸长生长和茎的伸长生长。如图3所示,通过GA处理的植株APGID1a基因在叶片的表达量是CK的28.74倍,表明GA处理后由于活性GA的增加,显著增强了GA的信号转导,而APGID1a作为GA的受体蛋白,通过加强表达调控了植物的高生长,比CK高度增加了32.53%,而经过PBZ处理后,信号转导过程中由于反馈调节机制减弱了APGID1a在叶片的表达量,与CK相比降低了30.11%,由于GA合成和信号转导受阻,植株的高度比CK减少了28.63%,以上结果表明APGID1a基因对百子莲植株发育具有重要调控作用,特别是该基因在GA信号转导过程中的作用机制对植物株高具有显著的调控作用。
以上对本发明的具体实施例进行了描述。需要理解的是,本发明并不局限于上述特定实施方式,本领域技术人员可以在权利要求的范围内做出各种变形或修改,这并不影响本发明的实质内容。
Claims (3)
1.一种由如SEQ ID NO.2所示的氨基酸序列组成的蛋白质。
2.一种编码权利要求1所述蛋白质的核酸序列。
3.如权利要求2所述的核酸序列,其特征是,所述核酸序列具体如SEQ ID NO.1第1~1044位所示。
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CN109553670B (zh) * | 2019-01-17 | 2023-04-18 | 信阳农林学院 | 百子莲赤霉素负调控因子ApGAI蛋白及编码基因 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101212907A (zh) * | 2005-06-30 | 2008-07-02 | 阿格拉福拉姆股份公司 | 来自“百子莲”的提取物和化合物及其作为生物学植物保护剂的应用 |
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2013
- 2013-06-04 CN CN201310221049.5A patent/CN103333232B/zh not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101212907A (zh) * | 2005-06-30 | 2008-07-02 | 阿格拉福拉姆股份公司 | 来自“百子莲”的提取物和化合物及其作为生物学植物保护剂的应用 |
Non-Patent Citations (1)
Title |
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李博.不同调控途径对百子莲开花特性的影响.《中国优秀硕士学位论文全文数据库(农业科技辑)》.2011,D048-166. * |
Also Published As
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CN103333232A (zh) | 2013-10-02 |
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