CN103205469A - 一种利用香蕉生物酶法生产γ-氨基丁酸的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种利用香蕉生物酶法生产
γ
-
氨基丁酸的方法,将香蕉切碎研磨,每1kg香蕉中加入1~3L浸提液,均匀搅拌后在4~25
℃
条件下静置
提取3~5h;5000~7000rpm离心5~10min后,得谷氨酸脱羧酶粗酶液;1L酶液中加入30~50g谷氨酸及谷氨酸钠(pH值4.5~6.0),37
℃
条件下12~24h即可转化完全;加入0.1%~3.0%活性炭搅拌30~60min,过滤,旋蒸结晶得20~40g
γ
-
氨基丁酸。该生产工艺简单、反应专一、成本低、产率高、纯度好、周期短、浸提液可反复使用、废弃物少、环保,适合工业化生产。
Description
技术领域
本发明涉及生物转化酶法合成技术领域,具体涉及利用香蕉生物酶法生产γ-氨基丁酸的方法。
背景技术
谷氨酸脱羧酶(Glutamate decarboxylase,GAD)广泛存在于原核和真核生物中,是一种胞内酶,主要存在于细胞质中,与辅因子磷酸吡哆醛(PLP)结合催化谷氨酸转化为γ-氨基丁酸和CO
2
。在植物中,GAD的C末端具有特殊的与钙调蛋白(CaM)结合的区域,能够与CaM结合并增加酶的活力。香蕉谷氨酸脱羧酶的分子量为56kD,香蕉谷氨酸脱羧酶基因cDNA的ORF全长l500bp,编码499个氨基酸。
γ-氨基丁酸(γ-aminobutyric acid,GABA) 分子式为C
4
H
9
NO
2
,是一种天然的非蛋白质的游离氨基酸活性成分,广泛分布于动植物体内。植物如豆属、参属以及一些中草药等的种子和根茎中都含有GABA。在动物体内,GABA几乎只存在于神经组织中,其中脑组织中的含量大约为0.1~0.6mg/g组织,免疫学研究表明,大脑黑质中的GABA浓度最高。GABA可以与GABAA受体、GABAB受体、GABAC受体3种不同受体结合, 导致细胞膜离子通透性变化,会产生不同的调节性影响。研究表明GABA具有降血压、抗焦虑、降低血氨、抗癫痫、调节免疫、改善脂质代谢、防止动脉硬化、减肥、促进乙醇代谢、防止皮肤老化、消除体臭、健脑益智等功能,能够用作尿毒症、睡眠障碍以及CO中毒的治疗药物。
GABA可以开发为保健食品,也可以开发为具有显著药理作用的药物,前景非常乐观,因而GABA正越来越引起人们的关注。然而GABA天然存在量低,且从动植物组织中大量提取分离难度非常大,目前已知的制取GABA的方法有化学合成法、微生物发酵法、植物富集法和酶法。一、化学合成法主要有:(1)通过γ-氯丁氰的取代水反应来合成,将邻苯二甲酰亚氨钾与γ-氯丁氰在180℃反应,然后将产物与浓硫酸回流,再结晶提纯而得;(2)由吡咯烷酮经氢氧化钙、碳酸氢铵水解开环制得;(3)以丁内酯为起始原料,经过氯化酯化反应,生成4-氯丁酸甲酯,再经氨解和皂化反应制得GABA。化学合成方法条件剧烈,且有化学物质残留,成本较高,主要应用于化工和医药领域,不适合在食品中应用。二、微生物发酵法主要是用筛选法或者基因重组法得到具有高GAD活性的大肠杆菌、曲霉和乳酸菌等微生物来发酵生产GABA。微生物发酵法生产周期较长,副反应多,分离纯化较复杂。三、植物富集法主要是用含米胚芽的糙米或者米糠、辣椒、蜜柑、番茄、南瓜、茄子、豆芽等来生产富含GABA食品等。此法可使水果蔬菜等的加工深度得到提升,提高水果蔬菜等的附加值,但加工复杂。四、酶法主要有两种:(1)将微生物中的GAD提取后得到的粗酶液或者纯酶液作用于谷氨酸生产GABA;(2)将植物中的GAD提取后得到的粗酶液或者纯酶液作用于谷氨酸生产GABA。酶法生产GABA具有周期短、副反应少、纯度高等优点。
近年来,GABA的生理作用被不断发现,其应用也越来越广泛。研究开发低成本且适合大规模工业化生产食品药品级GABA的技术方法,意义重大。本发明就是基于此背景诞生的。
发明内容
本发明的目的是提供一种从香蕉中提取谷氨酸脱羧酶用来制备γ-氨基丁酸的生产方法,该生产方法成本低、周期短、适于大规模工业化生产食品药品级γ-氨基丁酸。
为达到上述目的,本发明采用的技术方案如下:一种利用香蕉生物酶法生产γ-氨基丁酸的方法,包括以下步骤:
(1)将香蕉切碎研磨,然后在每1kg所述香蕉中加入1~3L浸提液,均匀搅拌后,于4~25℃静置提取3~5h,接着5000~7000rpm离心5~10min,所得上清液即为香蕉谷氨酸脱羧酶粗酶液,所述浸提液采用H
2
O、0.05~0.1mol/L Na
2
HPO
4
/NaH
2
PO
4
、0.1~0.2mol/L NaCl、10~40mg/L CaCl
2
以及0.1~0.5mmol/L维生素B
6
或者0.1~0.5mmol/L磷酸吡哆醛配制而成,并保持pH值4.5~6.0,所述浸提液中的维生素B
6
或者磷酸吡哆醛能够缓解所述谷氨酸脱羧酶粗酶液的氧化;
(2)在上述步骤(1)制得的每1L谷氨酸脱羧酶液中加入10~30g/L谷氨酸及谷氨酸钠溶液0.5~1.0L,控制pH值在4.5~6.0,于25~40℃,50~200r/min搅拌反应1~4h后,然后每隔0.5~2h分批添加1~5g谷氨酸及谷氨酸钠继续反应,直至谷氨酸脱羧酶活性消失;
或者,在上述步骤(1)制得的每1L谷氨酸脱羧酶液中加入30~50g谷氨酸或谷氨酸钠,控制pH值在4.5~6.0,于25~40℃,50~200r/min搅拌反应12~24h;
(3)步骤(2)反应完成后,在反应液中加入0.1%~3.0%(w/v)活性炭于25~80℃、50~200r/min条件下搅拌脱色30~60min;
或者,将步骤(2)反应完成的反应液旋蒸至原反应液体积一半后,加入0.1~3.0%(w/v)活性炭于25~80℃、50~200r/min条件下搅拌脱色30~60min;
(4)然后将步骤(3)的脱色液趁热过滤,过滤液40~80℃旋蒸至原过滤液体积的10~30%后,4~25℃冷却,重结晶,则得到γ-氨基丁酸。
在步骤(2)中,所述谷氨酸脱羧酶活性的测定采用Berthelot反应原理。
在步骤(1)前,设置香蕉成熟过程中测定谷氨酸脱羧酶酶活的步骤,使用的香蕉为国产或者进口的能食用的香蕉,从香蕉果肉中或连皮带果肉中提取谷氨酸脱羧酶进行测定,该测定采用Berthelot反应原理。
测定所述谷氨酸脱羧酶活性的方法包括:首先将200μL 0.1mol谷氨酸或谷氨酸钠溶液和100μL待测谷氨酸脱羧酶液在30℃反应0.5h,然后将反应液置于冰浴中,并加入200μL 0.2 mol/L pH 9.0的硼酸缓冲液终止反应,再加入1.0mL 6%苯酚和400μL次氯酸钠溶液,充分振荡后,在沸水浴中反应10 min,然后迅速在冰浴中冷却20 min,于分光光度计上在630nm处测定吸光值。
在步骤(2)中,所述谷氨酸、谷氨酸钠采用分批添加的方式。
由于上述技术方案的运用,本发明与现有技术相比具有下列优点:从香蕉中提取谷氨酸脱羧酶,催化谷氨酸或谷氨酸钠转化为γ-氨基丁酸并提纯出,该酶法生产工艺简单,操作方便,反应专一,成本低,产率高,纯度好,周期短,浸提液可反复使用,废弃物少,环保,能够大规模生产出γ-氨基丁酸,满足对食品药品级γ-氨基丁酸的需求。
附图说明
图1是4℃储存条件下香蕉谷氨酸脱羧酶活性变化图;
图2是25℃储存条件下香蕉谷氨酸脱羧酶活性变化图;
图3是37℃储存条件下香蕉谷氨酸脱羧酶活性变化图。
具体实施方式
下面进一步阐述本发明。
本发明中使用的原料是国产或者进口的能食用的香蕉、谷氨酸和谷氨酸钠。
实施例1
(1)配置浸提液:0.05mol/L Na
2
HPO
4
/NaH
2
PO
4
、0.15mol/L NaCl、0.2mmol/L维生素B
6
或者磷酸吡哆醛PLP、30mg/L CaCl
2
,pH值5.7;
(2)将成熟的整根香蕉(连皮带果肉)切碎研磨,每1kg香蕉中加入2L浸提液,搅拌均匀,于室温静置提取4小时;
(3)7000rpm离心10min后,上清即为谷氨酸脱羧酶液;
(4)向谷氨酸脱羧酶液中加入15g谷氨酸或者谷氨酸钠,pH值控制在4.5~5.5,于37℃条件下,150r/min搅拌反应2~3h后每1h补加3~5g谷氨酸或者谷氨酸钠, pH值控制在5.0~5.5,如此重复进行,直至酶活性消失,这里酶活性的测定采用Berthelot反应原理;
(5)反应完成后,加入1%(w/v)活性炭于37℃、100r/min条件下搅拌脱色30min;
(6)然后过滤,55℃旋蒸至有少量晶体析出时,室温冷却结晶,重结晶,可得到约30g γ-氨基丁酸。
在步骤(2)前,设置香蕉成熟过程中测定谷氨酸脱羧酶酶活的步骤,从香蕉果肉中或连皮带果肉中用浸提液提取谷氨酸脱羧酶进行测定,该测定采用Berthelot反应原理。通过Berthelot反应原理测定香蕉中谷氨酸脱羧酶的酶活后发现,如图1-3所示,购买的国产或进口香蕉在37℃条件下放置两天左右,酶活达最大值,此时作用于谷氨酸或者谷氨酸钠从而制得γ-氨基丁酸的产率最高。
运用Berthelot反应原理测定谷氨酸脱羧酶活性的方法包括:首先将200μL 0.1mol谷氨酸或谷氨酸钠溶液和100μL待测谷氨酸脱羧酶液在30℃反应0.5h,然后将反应液置于冰浴中,并加入200μL 0.2 mol/L pH 9.0的硼酸缓冲液终止反应,再加入1.0mL 6%苯酚和400μL次氯酸钠溶液,充分振荡后,在沸水浴中反应10 min,然后迅速在冰浴中冷却20 min,于分光光度计上在630nm处测定吸光值。
实施例2
(1)配置浸提液: 0.08mol/L Na
2
HPO
4
/NaH
2
PO
4
、0.15mol/L NaCl、0.3mmol/L维生素B
6
或者PLP、30mg/L CaCl
2
,pH值5.7;
(2)将成熟的整根香蕉切碎研磨, 每1kg香蕉中加入1L浸提液,搅拌均匀,于室温静置提取4小时;
(3)7000rpm离心10min后,上清即为谷氨酸脱羧酶液;
(4)向谷氨酸脱羧酶液中加入pH值在4.5~5.5的20g/L谷氨酸或者谷氨酸钠溶液500mL,于37℃条件下,150r/min搅拌反应1~2h后每1h补加3~5g谷氨酸或者谷氨酸钠,pH值控制在5.0~5.5,如此重复进行,直至酶活性消失;
(5)反应完成后,加入1%(w/v)活性炭于37℃、100r/min条件下搅拌脱色30min;
(6)过滤,55℃旋蒸至有少量晶体析出时,室温冷却结晶,重结晶,可得到约30g γ-氨基丁酸。
实施例3
(1)配置浸提液:0.05mol/L Na
2
HPO4/NaH
2
PO
4
、0.15mol/L NaCl、0.3mmol/L维生素B
6
或者PLP、30mg/L CaCl
2
,pH值5.5;
(2)将成熟的整根香蕉切碎研磨,每1kg香蕉中加入1.5L浸提液,搅拌均匀,于室温静置提取4小时;
(3)7000rpm离心8min后,上清即为谷氨酸脱羧酶液;
(4)向谷氨酸脱羧酶液中加入10g谷氨酸,pH值在5.0~5.5,于37℃条件下,120r/min搅拌反应1~2h后每1h补加3~5g谷氨酸,pH值控制在5.0~5.5,如此重复进行,直至酶活性消失;
(5)反应完成后,加入1%(w/v)活性炭于37℃、120r/min条件下搅拌脱色60min;
(6)过滤,55℃旋蒸至有少量晶体析出时,室温冷却结晶,重结晶,可得到约30g γ-氨基丁酸。
实施例4
(1)配置浸提液:0.05mol/L Na
2
HPO
4
/NaH
2
PO
4
、0.15mol/L NaCl、0.3mmol/L维生素B
6
或者PLP、30mg/L CaCl
2
,pH值5.5;
(2)将成熟的整根香蕉切碎研磨,每1kg香蕉中加入1.5L浸提液,搅拌均匀,于室温静置提取4小时;
(3)7000rpm离心8min后,上清即为谷氨酸脱羧酶液;
(4)向谷氨酸脱羧酶液中加入10g谷氨酸钠,pH值在5.0~5.5,于37℃条件下,120r/min搅拌反应1~2h后每1h补加3~5g谷氨酸钠,pH值控制在5.0~5.5,如此重复进行,直至酶活性消失;
(5)反应完成后,加入1%(w/v)活性炭于37℃、120r/min条件下搅拌脱色60min;
(6)过滤,55℃旋蒸至有少量晶体析出时,室温冷却结晶,重结晶,可得到约30g γ-氨基丁酸。
实施例5
(1)配置浸提液:0.08mol/L Na
2
HPO
4
/NaH
2
PO
4
、0.15mol/L NaCl、0.3mmol/L维生素B
6
或者PLP、30mg/L CaCl
2
,pH值5.7;
(2)将成熟的整根香蕉切碎研磨,每1kg香蕉中加入1L浸提液,搅拌均匀,于室温静置提取4小时;
(3)7000rpm离心10min后,上清即为谷氨酸脱羧酶液;
(4)向谷氨酸脱羧酶液中加入含有10g重量比约为1:3的谷氨酸和谷氨酸钠的pH值在4.5~5.5的溶液500mL,于37℃条件下,150r/min搅拌反应2~3h后每2h补加2~3g谷氨酸和谷氨酸钠, pH值控制在5.0~5.5,如此重复进行,直至酶活性消失;
(5)反应完成后,加入1%(w/v)活性炭于37℃、100r/min条件下搅拌脱色30min;
(6)过滤,55℃旋蒸至有少量晶体析出时,室温冷却结晶,重结晶,可得到约30g γ-氨基丁酸。
实施例6
(1)配置浸提液: 0.08mol/L Na
2
HPO
4
/NaH
2
PO
4
、0.15mol/L NaCl、0.3mmol/L维生素B
6
或者PLP、30mg/L CaCl
2
,pH值5.7;
(2)将成熟的整根香蕉切碎研磨,每1kg香蕉中加入2L浸提液,搅拌均匀,于室温静置提取4小时;
(3)7000rpm离心10min后,上清即为谷氨酸脱羧酶液;
(4)向谷氨酸脱羧酶液中加入30~50g谷氨酸,pH值控制在5.0~5.5于37℃条件下,150r/min搅拌反应12~24h;
(5)反应完成后,加入1%(w/v)活性炭于37℃、100r/min条件下搅拌脱色30min;
(6)过滤,55℃旋蒸至有少量晶体析出时,室温冷却结晶,重结晶,可得到约25g γ-氨基丁酸。
实施例7
(1)配置浸提液: 0.08mol/L Na
2
HPO
4
/NaH
2
PO
4
、0.15mol/L NaCl、0.3mmol/L维生素B
6
或者PLP、30mg/L CaCl
2
,pH值5.7;
(2)将成熟的整根香蕉切碎研磨, 每1kg香蕉中加入2L浸提液,搅拌均匀,于室温静置提取4小时;
(3)7000rpm离心10min后,上清即为谷氨酸脱羧酶液;
(4)向谷氨酸脱羧酶液中加入30~50g谷氨酸钠,pH值控制在5.0~5.5于37℃条件下,150r/min搅拌反应12~24h;
(5)反应完成后,加入1%(w/v)活性炭于37℃、100r/min条件下搅拌脱色30min;
(6)过滤,55℃旋蒸至有少量晶体析出时,室温冷却结晶,重结晶,可得到约25g γ-氨基丁酸。
实施例8
(1)配置浸提液: 0.08mol/L Na
2
HPO
4
/NaH
2
PO
4
、0.15mol/L NaCl、0.3mmol/L维生素B
6
或者PLP、30mg/L CaCl
2
,pH值5.7;
(2)将成熟的整根香蕉切碎研磨,每1kg香蕉中加入2L浸提液,搅拌均匀,于室温静置提取4小时;
(3)7000rpm离心10min后,上清即为谷氨酸脱羧酶液;
(4)向谷氨酸脱羧酶液中加入30~50g重量比约为1:3的谷氨酸和谷氨酸钠,pH值控制在5.0~5.5于37℃条件下,150r/min搅拌反应12~24h;
(5)反应完成后,加入1%(w/v)活性炭于37℃、100r/min条件下搅拌脱色30min;
(6)过滤,55℃旋蒸至有少量晶体析出时,室温冷却结晶,重结晶,可得到约30g γ-氨基丁酸。
上述的制备方法中,从香蕉中提取谷氨酸脱羧酶,催化谷氨酸或谷氨酸钠转化为γ-氨基丁酸并提纯出,该酶法生产工艺简单,操作方便,成本低,周期短,能够大规模生产出γ-氨基丁酸,满足对食品药品级γ-氨基丁酸的需求。
Claims (5)
1.一种利用香蕉生物酶法生产γ-氨基丁酸的方法,其特征在于:包括以下步骤:
(1)将香蕉切碎研磨,然后在每1kg所述香蕉中加入1~3L浸提液,均匀搅拌后,于4~25℃静置提取3~5h,接着5000~7000rpm离心5~10min,所得上清液即为香蕉谷氨酸脱羧酶粗酶液,所述浸提液采用H2O、0.05~0.1mol/L Na2HPO4/NaH2PO4、0.1~0.2mol/L NaCl、10~40mg/L CaCl2以及0.1~0.5mmol/L维生素B6或者0.1~0.5mmol/L磷酸吡哆醛配制而成,并保持pH值4.5~6.0,所述浸提液中的维生素B6或者磷酸吡哆醛能够缓解所述谷氨酸脱羧酶粗酶液的氧化;
(2)在上述步骤(1)制得的每1L谷氨酸脱羧酶液中加入10~30g/L谷氨酸及谷氨酸钠溶液0.5~1.0L,控制pH值在4.5~6.0,于25~40℃,50~200r/min搅拌反应1~4h后,然后每隔0.5~2h分批添加1~5g谷氨酸及谷氨酸钠继续反应,直至谷氨酸脱羧酶活性消失;
或者,在上述步骤(1)制得的每1L谷氨酸脱羧酶液中加入30~50g谷氨酸或谷氨酸钠,控制pH值在4.5~6.0,于25~40℃,50~200r/min搅拌反应12~24h;
(3)步骤(2)反应完成后,在反应液中加入0.1%~3.0%(w/v)活性炭于25~80℃、50~200r/min条件下搅拌脱色30~60min;
或者,将步骤(2)反应完成的反应液旋蒸至原反应液体积一半后,加入0.1~3.0%(w/v)活性炭于25~80℃、50~200r/min条件下搅拌脱色30~60min;
(4)然后将步骤(3)的脱色液趁热过滤,过滤液40~80℃旋蒸至原过滤液体积的10~30%后,4~25℃冷却,重结晶,则得到γ-氨基丁酸。
2.根据权利要求1所述的一种利用香蕉生物酶法生产γ-氨基丁酸的方法,其特征在于:在步骤(2)中,所述谷氨酸脱羧酶活性的测定采用Berthelot反应原理。
3.根据权利要求1所述的一种利用香蕉生物酶法生产γ-氨基丁酸的方法,其特征在于:在步骤(1)前,设置香蕉成熟过程中测定谷氨酸脱羧酶酶活的步骤,使用的香蕉为国产或者进口的能食用的香蕉,从香蕉果肉中或连皮带果肉中提取谷氨酸脱羧酶进行测定,该测定采用Berthelot反应原理。
4.根据权利要求2或3所述的一种利用香蕉生物酶法生产γ-氨基丁酸的方法,其特征在于:测定所述谷氨酸脱羧酶活性的方法包括:首先将200μL 0.1mol谷氨酸或谷氨酸钠溶液和100μL待测谷氨酸脱羧酶液在30℃反应0.5h,然后将反应液置于冰浴中,并加入200μL 0.2 mol/L pH 9.0的硼酸缓冲液终止反应,再加入1.0mL 6%苯酚和400μL次氯酸钠溶液,充分振荡后,在沸水浴中反应10 min,然后迅速在冰浴中冷却20 min,于分光光度计上在630nm处测定吸光值。
5.根据权利要求1所述的一种利用香蕉生物酶法生产γ-氨基丁酸的方法,其特征在于:在步骤(2)中,所述谷氨酸、谷氨酸钠采用分批添加的方式。
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《中国优秀硕士论文全文数据库 工程科技I辑》 20120215 张术聪 固定化植物乳杆菌合成gamma-氨基丁酸及分离纯化的初步研究 第12页 1-5 , 第2期 * |
张术聪: "固定化植物乳杆菌合成γ-氨基丁酸及分离纯化的初步研究", 《中国优秀硕士论文全文数据库 工程科技I辑》, no. 2, 15 February 2012 (2012-02-15), pages 12 * |
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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