具体实施方式
本发明所制备的载体中鸭瘟病毒gE基因的上下游同源臂分别为1046bp和1081bp;含有CMV启动子、多克隆酶切位点MCS、LacZ基因、BHG pA基因序列的长度为4146bp。本发明的核酸长度为6217bp。
下面结合具体实施例对本发明载体的制备及应用效果进行详细的描述。
一.设计引物
(1)扩增gE基因兼并引物:
gE1: 5’ ATGATGGTTACTTTTATATCTACAG 3’
gE2: 5’ TCAGATGCGGAAACTAGATT 3’
(2)gE基因上游同源臂扩增引物:
UpgE1: 5’ GGCGGAGCAACTGCCTTCAAG 3’
UpgE2:5’TTGTCGACCCCGGGCGTACCAATTGTTGAGGTTCC 3’ (SmaI和SalI)
(3)gE基因下游同源臂扩增引物:
DogE1: 5’ GCGCCCGGGTCATGGATGTTGAACTAAT 3’ (SmaI)
DogE2:5’CTTGTCGACCGCGTCGGTACGTAGCGTCAC 3’ (SalI)
扩增gE基因及上、下游同源臂引物,引物应用示意图见附图1。
(4)扩增CMV+MCS+BHG pA基因序列引物
gE3: 5’ TTCCCGGGGTTGACATTGATTATTG 3’ (SmaI)
gE4: 5’ AACCCGGGCCATAGAGCCCACCGCAT 3’ (SmaI)
(5)扩增LacZ基因序列引物
gE5: 5’ AAGGTACCAGTTGATCCCGTCGTTTTA 3’ (KpnI)
gE6: 5’ TTCTAGATTATTTTTGACACCAGACCAACTG 3’ (XbaI)
二.重组载体pCMV-LacZ的构建
重组载体pCMV-LacZ的构建策略见附图2。
1. pCMV序列的克隆
利用扩增CMV+MCS+BHG pA基因序列引物以pcDNA5_TO质粒(购自LifeTechnologies公司,货号:V103320)为模板,进行PCR扩增,连接pGEM-T easy载体(购自Promega公司,货号:A3600),测定序列正确,构成质粒pCMV。
2. 重组载体pCMV-LacZ的构建
分别用内切酶KpnI和XbaI双酶切质粒pcDNA3.1/His/LacZ(购自LifeTechnologies公司,货号:V38520)和pCMV,获得LacZ序列和线性pCMV序列,分别纯化回收。酶切后的LacZ片段与pCMV载体进行连接、转化、及阳性克隆筛选,获得转移质粒pCMV-LacZ。
三.gE基因缺失载体pdgE质粒的构建
gE基因缺失载体pdgE质粒的构建策略见附图3。
1. gE基因上下游同源臂基因克隆的构建
分别利用UpgE1/ UpgE2、DogE1/ DogE2两对引物以鸭瘟病毒基因组DNA为模板进行上、下游同源臂PCR扩增,获得上游同源臂和下游同源臂基因。同源臂序列分别连接pGEM-T easy载体,转化DH5a感受态细胞。将测序正确质粒分别命名为pUPgE和pDOgE。
2. gE基因缺失载体pdgE质粒的构建
用内切酶分别双酶切pUPgE和pDOgE质粒,获得UPgE片段和线性pDOgE质粒片段,进行纯化回收。UPgE和线性pDOgE质粒片段进行连接,并转化DH5a感受态细胞。筛选阳性克隆,构建质粒命名为pdgE。
四.带有LacZ基因的鸭瘟病毒gE基因缺失转移载体的构建
带有LacZ基因的鸭瘟病毒gE基因缺失转移载体的构建策略见附图4。
用内切酶酶切pdgE、pCMV-LacZ质粒。将片段CMV-LacZ插入线性化的质粒pdgE,连接,转化DH5a感受态细胞。利用酶切鉴定筛选阳性克隆,获得重组质粒pdgE –LacZ,其核苷酸序列为SEQ ID NO:1,与最初的构思的序列相一致。
五.表达LacZ基因的gE—毒株的筛选和鉴定
1.pdgE-LacZ转移载体质粒的纯化
使用Wizard Purefection Plasmid DNA纯化试剂盒(购自Promega公司)纯化pdgE-LacZ转移载体质粒。
2.转染细胞的准备
将长成单层鸡胚成纤维细胞用胰酶消化后,用含有10%牛血清的液体培养基营养液吹打分散细胞,以1×106/mL的浓度接种于六孔细胞培养板,在37℃、5% CO2的培养箱中培养约20小时至细胞长至80%单层,用于转染。
3.转染
将制备的鸭瘟病毒液稀释1000倍,以500uL接种于单层鸡胚成纤维细胞细胞,在37℃、5% CO2的培养箱中吸附1小时,吸弃病毒液,加入含2%牛血清的DMEM培养基,在37℃、5% CO2的培养箱中培养4小时,吸弃培养基,加入新鲜的不含有抗生素和血清的DMEM培养基洗涤细胞,弃去培养基,重复洗涤3次,使用Invitrogen公司Lepofectamine 2000脂质体将质粒pdgE–LacZ转染鸡胚成纤维细胞细胞。制备250uL A液(用不含有抗生素和血清的培养基稀释2.5ug pdgE –LacZ质粒),300 uL B液(240uL不含有抗生素和血清的培养基、10 uL脂质体),室温放置5min后,逐滴将A液加入B液,室温放置20min,将混合液温和混匀,逐滴接种细胞,在37℃、5% CO2的培养箱中培养2小时,吸弃上清,加入含2%牛血清培养基,在37℃、5% CO2的培养箱中培养。
4. 重组病毒的筛选
逐日用显微镜观察转染的细胞,待出现明显CPE后,吸取细胞培养物,反复冻融3次,离心去掉细胞碎片,保存上清作为重组病毒的原液。将上述病毒液作10倍梯度稀释,以10-1、10-2、10-3的浓度分别接种生长至90%以上的单层鸡胚成纤维细胞,感作1小时后加入含2%牛血清、1%甲基纤维素的DMEM培养基,在37℃、5% CO2的培养箱中培养至出现CPE后,吸弃培养基,加入融化的含1 %低熔点琼脂糖、150 u g/mLX-gal的DMEM培养基,待培养基凝固后,在37℃、5% CO2的培养箱中培养,当蓝色蚀斑出现时,挑取彼此分离的单个蚀斑,用巴氏管小心刺穿培养基吸取蓝斑,放入1mL含有2%牛血清的DMEM培养基中,冻融3次进行新一轮的蚀斑纯化,直至病变细胞全为蓝色。
5. 重组病毒的PCR鉴定
利用扩增LacZ和gE基因两对引物进行分别PCR鉴定,确定转入了上述构建的质粒pdgE –LacZ,获得鸭瘟gE基因缺失疫苗株DPV/ gE—。
六.鸭瘟gE基因缺失疫苗株(DPV/ gE—)产生鸭瘟抗体水平
1. 鸭瘟gE基因缺失疫苗(DPV/ gE—)的制备
(1)制苗毒液制备 将毒种鸭瘟gE基因缺失疫苗株DPV/ gE—加入长有致密单层的鸡胚成纤维细胞转瓶内,37℃吸附1小时,弃毒液,加入维持液,37℃培养。每天在倒置显微镜下观察细胞病变情况。接毒后1-3天75%以上细胞出现病变,即可反复冻融3次后,10000rpm离心10min,收获病毒液。
(2)配苗及分装 将检验合格的半成品苗于37℃水浴中快速融化,过滤除去细胞碎片,加入5%蔗糖脱脂牛乳保护剂,充分混匀,无菌分装于小瓶中。
(3)无菌检验 按现行《中华人民共和国兽药典》附录进行无菌检验,结果无菌生长,符合规定。
2. 鸭瘟gE基因缺失重组病毒免疫产生鸭瘟抗体水平测定
按鸭瘟弱毒活疫苗的标准免疫程序分别用鸭瘟gE基因缺失重组病毒、鸭瘟标准毒株(阳性对照组)和生理盐水接种1日龄雏鸭,将100倍稀释的重组病毒的ELD50作为免疫剂量。建立试验组、阳性对照组和空白对照组,每组5只,0.5mL/只,正常条件下饲养。分别于免疫后1周、2周、3周、4周抽取雏鸭血清。将抽取的血清灭活处理后,每组血清按1:40、1:80、1:160、1:320、1:640、1:1280做梯度稀释,分别与体积为0.5mL的鸭瘟病毒等体积混合,用含有100个ELD50/0.2mL作为中和剂量,混合物37℃感作30min,混合物接种9日龄鸭胚,各组5枚,每枚0.2mL,37℃条件培养,6天后记录培养结果。通过鸭胚中和试验检测抗血清的中和滴度,结果显示雏鸭经过鸭瘟gE基因缺失重组病毒免疫后可以产生鸭瘟病毒抗体,而且抗体水平再统计期内呈增高趋势,说明鸭瘟gE基因缺失重组病毒保持了原有的抗原性。