CN103006624B - 甘露醇在制备抗胃腺癌药物中的应用 - Google Patents

Abstract

本发明公开了甘露醇在制备抗胃腺癌药物中的应用，特别是使用特定浓度（10%～19%）的甘露醇注射液治疗胃腺癌。传统上甘露醇仅作为利尿剂、高渗透降压药等，发明人通过科学实验发现甘露醇具有抗肿瘤活性，通过采用多项细胞凋亡检测技术及检测凋亡相关基因bcl-2、bax，证实特定浓度甘露醇可诱导人多种癌细胞株明显癌细胞凋亡，并掌握了与浓度、时间的效应关系，初步阐明其可能机理，而且，发明人已将研究结果用于肿瘤病人治疗并取得明显的疗效，这些为甘露醇在制备抗肿瘤药物中的应用及其临床推广提供了理论依据和实际病例。

Description

甘露醇在制备抗胃腺癌药物中的应用

技术领域

本发明涉及甘露醇的新用途，尤其是甘露醇在制备抗胃腺癌药物中的应用。

背景技术

目前，在抗肿瘤研究中，诱导癌细胞的凋亡是一个重要的途径，促进肿瘤细胞凋亡可达到肿瘤缩小，癌症消退的目的，如传统的抗肿瘤药物顺铂、美法伦等均能刺激细胞线粒体凋亡途径，引发凋亡。此种方式比采用杀伤肿瘤细胞的治疗方式有明显的优越性，因为抗肿瘤药物若能大量的诱发肿瘤细胞的凋亡，激活其自身的程序性死亡过程，将会避免因大量细胞坏死而释放细胞内物质引起的各种副作用，减轻化疗对正常细胞的损伤，延长患者的生存期。然而，至今尚未筛选出能诱发肿瘤细胞大量凋亡的抗肿瘤药。中药诱导肿瘤细胞凋亡多为体外实验研究，体内实验较少，基本上处于初级研究阶段。研究表明与细胞增殖有关的原癌基因和抑癌基因都参与对细胞凋亡的调控，其中研究较多的有Bcl-2家族、细胞色素C、抑癌基因p53、Ice蛋白酶以及Fas/APO-1等。因此，以上述细胞凋亡的调控基因为靶基因，寻找在引发细胞凋亡作用中具有区别肿瘤细胞及正常细胞（即能引发肿瘤细胞凋亡而对正常细胞无反应）能力的药物是近年来各国科学家努力的方向和抗肿瘤药物研究的新亮点。

在传统的非抗癌药物中，科学家发现其中有一些具有可引起细胞凋亡的作用，这可能成为研发新的抗肿瘤药物的途径。然而，已发现的具有引起细胞凋亡作用的非抗癌药物，仅仅在实验室中得到证实，且尚不能诱发大量肿瘤细胞的凋亡，在临床上尚未真正用于治疗肿瘤。

甘露醇（Mannitol）是一种己六醇，传统医药用作良好的利尿剂，也是降低颅内压、眼内压及治疗肾病的药物。常用制剂甘露醇注射液作为高渗透降压药，是临床抢救特别是脑部疾患抢救常用的一种药物，具有降低颅内压药物所要求的降压快、疗效准确的特点。国内外未见甘露醇是否具有诱导癌细胞凋亡作用的报道，也没有将甘露醇用于抗肿瘤治疗的临床应用先例。

发明内容

本发明要解决的技术问题是提供一种甘露醇在制备抗胃腺癌药物中的应用，特别是使用特定浓度的甘露醇注射液治疗胃腺癌。

为解决上述技术问题本发明采用如下技术方案：

甘露醇在制备抗肿瘤药物中的应用。

上述肿瘤是肺癌、肝癌、乳腺癌、胰腺癌、胃癌、胃腺癌。

肺癌是肺鳞癌、肺腺癌。

上述抗肿瘤药物为甘露醇注射液。

上述甘露醇注射液的质量浓度为10%～19%。

上述甘露醇注射液的质量浓度为13%～17%。

发明人通过科学实验发现甘露醇具有抗肿瘤活性，尤其是特定浓度的甘露醇注射液具有明显引起细胞凋亡的作用。通过采用多项细胞凋亡检测技术及检测凋亡相关基因bcl-2、bax，证实特定浓度甘露醇可诱导人多种癌细胞株明显癌细胞凋亡，并掌握了其与浓度、时间的效应关系，初步阐明其可能机理，而且，发明人已将研究结果用于肿瘤病人治疗并取得明显的疗效，这些为甘露醇在制备抗肿瘤药物中的应用及其临床推广提供了理论依据和实际病例。同时，本发明为科学廉价地寻找高效低毒的诱导肿瘤细胞凋亡的药物开辟了新的思路，极具科研意义。

附图说明

图1是48小时MTT浓度-抑制率曲线图。

图2是7天MTT时间-抑制率曲线图,图中：120ug/ul，240ug/ul，360ug/ul，480ug/ul，5100ug/ul，6120ug/ul。

图3是7天MTT浓度-抑制率曲线图,图中：1一天，2二天，3三天，4四天，5五天，6六天，7七天。

图4是7天化学发光时间-抑制率曲线图。

图5是对照组透射电镜图。

图6是对照组透射电镜图。

图7是24小时组透射电镜图。

图8是24小时组透射电镜图。

图9是48小时组透射电镜图。

图10是48小时组透射电镜图。

图11是H1299细胞凋亡流式细胞仪检测结果对照1组图。

图12是H1299细胞凋亡流式细胞仪检测结果对照2组图。

图13是H1299细胞凋亡流式细胞仪检测结果对照3组图。

图14是H1299细胞凋亡流式细胞仪检测结果0%组图。

图15是H1299细胞凋亡流式细胞仪检测结果5%组图。

图16是H1299细胞凋亡流式细胞仪检测结果9%组图。

图17是H1299细胞凋亡流式细胞仪检测结果13%组图。

图18是H1299细胞凋亡流式细胞仪检测结果17%组图。

图19是H1299细胞凋亡流式细胞仪检测结果20%组图。

图20是早期+晚期凋亡细胞与剂量关系图。

图21是晚期凋亡和坏死细胞与剂量关系图。

具体实施方式

实施例1甘露醇抗肿瘤的基础实验研究（肺癌）

1实验材料

1.1材料

1.1.1细胞株：SPC-A-1人肺癌细胞系引自上海肿瘤研究所。

1.1.2试剂：RPMI1640、胰蛋白酶购自Gibcol BRL公司；新生牛血清购自杭州四季青生物工程材料有限公司；碳酸氢钠（分析纯）为河北磁州制药厂生产；青霉素钠和硫酸链霉素为哈药集团制药总厂生产；噻唑蓝（MTT）、二甲基亚砜（DMSO）为Sigma公司产品；ATP试剂盒（ATP提取液、荧光素-荧光酶、稀释液等）为德国DCS公司产品；柠檬酸钠为广州化学试剂厂生产；碘化丙啶（PI）、RnaseA为Sigma公司产品；甘露醇注射液购自广西南宁百会药业集团有限公司。

1.1.3器材：CO₂培养箱（日本HERAEUS）；倒置显微镜（日本NIKON）；全自动酶标仪（芬兰DENLEY DRAGON MK-2型）；自发光板式分析仪（德国BETHOLD）；流式细胞仪（美国BECKMAN）；透射电镜。

2实验方法及观察指标

2.1细胞培养：5%CO₂培养箱，用含10%新生牛血清，青霉素、链霉素各1×10⁵U/L及NaHCO₃调PH值至7.2-7.4的RPMI1640培养基培养，收集对数生长期细胞进行实验。

2.2采用MTT法测定细胞抑制率：将浓度为2×10⁴/ml的细胞悬液接种于96孔细胞培养板中，每孔体积100μL。细胞贴壁后，分别加入1-150μg/μl浓度的甘露醇，对照组不加药，只加相应体积的培养基，同时设复孔，37℃、5%CO₂条件下培养48小时后，每孔加入20μl MTT，继续培养4小时，加入100μl DMSO，振荡混匀，用全自动酶标仪比色，492nm波长处测定各孔的吸光度A值，计算平均值，并按下列公式计算细胞生长抑制率：细胞生长抑制率（%）=（对照组A-实验组A）/对照组A×100%；同方法取20、40、60、80、100、120μg/μl浓度的甘露醇，对照组不加药，只加相应体积的培养基，同时设复孔，分别培养7天，计算出每天不同浓度的抑制率。

2.3采用化学发光法测定细胞抑制率:将浓度为2×10⁴/ml的细胞悬液接种于96孔细胞培养板中，每孔体积100μl。细胞贴壁后，加入48小时MTT结果中半数抑制浓度（IC₅₀）的甘露醇，对照组不加药，只加相应体积的培养基，同时设复孔，37℃、5%CO₂条件下培养1、2、3、4、5、6、7天，每孔加入50μlATP提取液，充分混匀，每孔吸出100μl混合液加入另一个96孔板相应的孔中，新板的每孔中加入20μl荧光素-荧光酶，振荡混匀，用自发光板式分析仪检测每孔的值，然后计算平均值，并按下列公式计算细胞生长抑制率：细胞生长抑制率（%）=（对照组-实验组）/（对照组-空白组）×100%。

2.4流式细胞仪分析细胞周期

2.4.1PI染液的配制:高精度天平上精确称取PI5mg、RnaseA10mg、枸橼酸钠0.1g，溶解于100ml灭菌生理盐水中。精确吸取NP-400.3ml加入上液中，摇匀，4℃下避光保存。2.4.2流式细胞仪分析细胞周期方法：收集培养细胞，于PBS中洗两次，然后按（1-2）×10⁶/ml加入70%冰乙醇并混匀，于4℃下固定过夜。检测时标本以1000r/min离5min,3mlPBS重悬5min,以300目筛网过滤细胞悬液以除去粘连成团的细胞群，再于1000r/min下离心5min，弃去上清液，加入PI染液1ml/管，4℃下避光30min。取48小时MTT结果中的半数抑制浓度（IC₅₀），分为24、48小时两组和对照组，共三组，用流式细胞仪进行细胞周期分析，收集数据，在MultiCycle分析软件进行细胞周期的分析，分别计算G₁、S、G₂/M期的相对比例。

2.5透射电镜检测：收集培养细胞，少量PBS混悬后移入塑料锥形离心管中，在1000-1500r/min离心5-10min，弃去上清液，加入新生牛血清1-2滴，然后用吸管吹散离心物使其混合，离心3-5min后，尽量吸弃上层多余的新生牛血清；沿管壁缓慢加入戊二醛固定液，4℃下预固定30min，用细针沿管壁在标本周围轻轻划一圈，使固定液充分渗入底部，并继续固定至少2小时，取48小时MTT结果中的半数抑制浓度（IC₅₀），分为24、48小时两组和对照组，共三组，按常规电镜包埋步骤处理。

2.6统计学处理：所有数据采用SPSS10.0软件进行统计处理，计量资料的比较采用t检验，计数资料的比较采用χ²检验。

3实验结果

3.1采用MTT法测定细胞抑制率结果显示：48小时内，在1-150μg/μl浓度范围时甘露醇可抑制肺癌细胞的增殖活性,其抑制作用随浓度的增高而增强,7天内，随着浓度和时间的增长，抑制率也不断增加。见图1、2、3。

3.2采用化学发光法测定细胞抑制率结果显示：取48小时MTT结果中的半数抑制浓度（IC₅₀）时，作用7天，甘露醇可抑制肺癌细胞的增殖活性，并且抑制作用随时间的延长而增强，见图4。

3.3流式细胞仪分析细胞周期结果显示：取48小时MTT结果中的半数抑制浓度（IC₅₀）时，作用24、48、72小时组细胞周期停止在G₂+M期的较对照组明显增多，见表1。

表1甘露醇不同处理时间对细胞周期的影响

3.4透射电镜检测结果显示：取48小时MTT结果中的半数抑制浓度（IC₅₀）时，作用24小时组电镜下可见细胞膜、核膜完整，核仁较清楚，胞质中较多脂滴，可见凋亡小体，作用48小时组电镜下可见细胞凋亡较明显，大量凋亡小体，而对照组细胞电镜下可见符合肿瘤细胞的特点，核大，见图5至图10。图5、6为对照组可见细胞核大，核浆比例失调，核仁较清楚，胞质中较多脂滴；图7、8为24小时组可见细胞核膜完整，可见凋亡小体图9、10为48小时组可见大量凋亡小体。

实施例2特定浓度甘露醇诱导肺腺癌细胞凋亡及机理的研究（肺腺癌）

1材料和方法

1．1主要试剂及仪器:DMEM(高糖)培养液(美国hyclone公司赛默飞世尔生物化学制品北京有限公司分装)，胰蛋白酶、新生小牛血清（FBS购自杭州四季青生物有限公司），20%甘露醇(购自安双鹤药业有限公司)，Giemsa染色试剂盒（由广西医科大学第一附属医院检验中心提供），细胞凋亡hoechst33342试剂盒(购自上海碧云天生物技术有限公司)细胞凋亡Dapi染色试剂盒、流式细胞仪试剂盒（均购自南京凯基生物科技发展有限公司）、Bcl-2检测试剂盒（购自福州迈新生物科技发展有限公司），戊二醇、透射电子显微镜由广西医科大学电镜室提供。CK41型倒置显微镜（日本Olympus）、照相系统（日本Nikon72000U倒置显微镜及DS-5MC高分辨率CCD数码照相500万像数），由广西大学国家重点实验室提供，流式细胞仪(美国BD公司FACSCalibur)由广西壮族自治人民医院实验中心提供并协助检测。

1.2细胞培养：H1299细胞株为人肺腺癌细胞，由广西肿瘤防治研究所潘弘博士惠赠。该细胞呈长梭形、叶形或多角形，贴壁生长，细胞质饱满，生长舒展，相邻细胞生长融合成片。取稀释成2×10⁴/ml处于对数生长期的细胞悬液，培养于37℃含5%CO₂细胞培养箱内，培养液为含10%新生小牛血清、100u/ml青霉素和100u/ml链霉素的DMEM(高糖)培养液，0.25%胰蛋白酶消化传代，CK41型倒置显微镜下观察细胞的生长状态。

1.3方法：

（1）Giemsa染色观察细胞凋亡形态：将生长良好状态细胞放入预先放取处于生长良好的H1299细胞悬浮液，加入预先放置有盖玻片的六孔板，放到37℃培养箱培养，让细胞爬片生长，待其长到85%～90%，分别加入不同浓度的甘露醇（0%，5%，9%，13%，17%，20%），培养48小时，取出盖玻片，PBS洗2次，甲醇固定5min，Giemsa染色15min，晾干后中性树脂封片，显微镜(日本Nikon72000U倒置显微镜及DS-5MC高分辨率CCD数码照相500万像数400倍)下观察拍照细胞凋亡的特性变化。

（2）细胞凋亡Dapi染色观察细胞核凋亡小体：取处于生长良好的H1299细胞别加入含不同浓度0%、5%、9%、13%、17%、20%甘露醇-:DMEM(高糖)培养液（含10%FBS）10ml。继续培养48小时，PBS洗涤2次，0.25%胰蛋白酶消化3min,立即加入DMEM(高糖)培养液（10%FBS）10ml终止消化,离心,弃上清,PBS洗涤2次,再离心,弃上清,后用PBS稀释制成细胞悬液(10万个细胞/1ml),将细胞悬液500ul放入打靶固定离心管离心（8000r/min、5min，）到载玻片上，干燥，无水乙醇固定，再干燥。然后在避光条件下按细胞凋亡Dapi染色盒说明书染色，PBS在玻璃缸内浸泡洗涤3次，每次15min，再干燥，晾干后中性数胶封片，荧光显微镜以340/380紫外光激发及DS-5MC高分辨率CCD数码照相400倍）下观察、拍照细胞核凋亡小体情况。细胞凋亡Dapi染色玻片4℃避光保存。

结果判断：细胞凋亡过程中细胞核染色质的形态学改变分为三期：Ⅰ期的细胞核呈波纹状（rippled)或呈折缝样（creased),部分染色质出现浓缩状态；Ⅱa期细胞核的染色质高度凝集、边缘化；Ⅱb期的细胞核裂解为碎块，产生凋亡小体。

（3）细胞凋亡hoechst33342试剂染色观察细胞核凋亡小体：步骤与（2）相同，然后在避光条件下按细胞凋亡hoechst33342试剂盒说明书染色，PBS在玻璃缸内浸泡洗涤3次，每次15min，再干燥，晾干后中性数胶封片，荧光显微镜以340/380紫外光激发及DS-5MC高分辨率CCD数码照相400倍）下观察、拍照细胞核凋亡小体情况。细胞凋亡hoechst33342试剂染色玻片4℃避光保存。

（4）透射电子显微镜观察：步骤与（2）相同，离心,弃上清,PBS洗涤2次,移入1．5EP管再离心,弃上清,用戊二醇固定后透射电子显微镜下观察凋亡细胞形态。

结果判断：凋亡细胞体积变小，细胞质浓缩。凋亡Ⅰ期（pro-apoptosis nuclei）的细胞核的染色质高度盘绕，出现许多称为气穴（cavitations)的空泡结构；Ⅱa期细胞核的染色质高度凝集、边缘化；细胞凋亡的晚期，细胞核裂解为碎块，产生凋亡小体。

（5）流式细胞仪检测细胞的凋亡：步骤与（2）相同，收集所有的悬浮细胞分别倒入标有0%，5%，9%，13%，17%，20%的离心管（10ml），离心2000r/2min,弃去上清液，用PBS洗2次，再离心2000r/2min，弃清液，重悬，离心2000r/2min，再重悬，细胞计数（1X10⁶）/ml，按表1加入相应试剂，避光、放入冰浴在1h内上FACSCalibur进行流式细胞术定量检测，结果见表2。

表2流式细胞仪检测细胞的凋亡结果

（6）细胞免疫组化bcl-2蛋白检测：步骤与（1）相同，4℃丙酮固定，晾干。高压加热法进行抗原修复，10min,蒸馏水冷却，PBS洗涤2-3次，将片放入孵育盒中，滴加一抗50ul，冰箱4℃过夜，取出再用PBS洗涤2-3次，晾干。再将片放入孵育盒中，滴加二抗（SuperpicTure编号：87-8963）50ul，室温孵育10min，PBS洗涤2-3次，晾干。DAB显色2-10min,苏木素复染、脱水、透明、封片。

结果判定：对肺癌H1299细胞免疫组化进行评估，细胞浆内有棕黄色颗粒为阳性（+），细胞无着色或与背景无差别为阴性（-）。

1.4统计分析方法：采用SPSS for windows17.0作曲线回归分析(Curve estimation)，以决定系数最大为判定最优方程的标准。细胞比例与剂量关系采用Spearman等级相关分析。

2．结果

2.1正常培养的肺癌H1299细胞生长发育情况

2.2Giemsa染色观察细胞凋亡形态：显微镜下观察可见DMEM(高糖)培养液（10%FBS）对照组细胞呈梭型，细胞质饱满，核均匀居中，而经甘露醇DMEM(高糖)培养液（10%FBS）处理组凋亡细胞胞体缩小、细胞质红染、核浓缩，染色质边集，有的还有空泡现象。含13%、17%甘露醇-DMEM(高糖)培养液（10%FBS）处理组染色质边集的细胞数量明显多于5%、9%、20%甘露醇-DMEM(高糖)培养液（10%FBS）组，提示凋亡细胞数量与作用剂量不同浓度之间有明显差异。

2.3Dapi染色观察细胞核凋亡小体：在荧光显微镜下观察可见DMEM(高糖)培养液（10%FBS）对照组细胞核凋亡小体很少，不足20%，含13%、17%甘露醇-DMEM(高糖)培养液（10%FBS）处理组细胞核凋亡小体在83%左右，凋亡细胞的细胞核边缘不规则，细胞核染色体浓集，着色较重，并伴有细胞核固缩，而5%、9%、20%甘露醇-DMEM(高糖)培养液（10%FBS）处理组细胞核凋亡小体在50%以下，提示凋亡细胞、核凋亡小体与作用剂量不同浓度之间有明显差异性。

2.4hoechst33342试剂染色观察细胞核凋亡小体：在荧光显微镜下观察可见DMEM(高糖)培养液（10%FBS）对照组细胞核膜完整，核形饱满，呈均匀ni漫微弱的蓝色荧光。而含13%、17%甘露醇-DMEM(高糖)培养液（10%FBS）处理组在荧光显微镜下观察到典型的凋亡细胞形态学特征；细胞核体积缩小、核染色质聚集、细胞质内可见到浓染致密的颗粒状或块状增强荧光，并可见到凋亡小体在90%左右，13%、17%甘露醇处理组荧光增强的细胞数明显多于5%、9%、20%甘露醇-DMEM(高糖)培养液（10%FBS）处理组。提示，荧光增强的细胞数量对实验使用的剂量有一定的依赖性。更提示凋亡细胞、核凋亡小体与作用剂量不同浓度之间有明显差异性。

2.5透射电子显微镜观察凋亡形态学观察：细胞凋亡核破裂，核异核染色质边集、核膜破裂、核染色质部分逸出，偶见凋亡小体。亦见细胞核出现早期凋亡，核染色质凝集呈块状、有破碎崩解。细胞质出现空泡。

2.6流式细胞仪检测细胞的凋亡率的变化（详见表2-4、图11至图21）

表3早期+晚期凋亡细胞模型汇总和参数估计值

因变量：x1

注：1.Spearman等级相关系数：r_s=0.943，P=0.005（有正相关关系）；

2.早期+晚期凋亡细胞与剂量有关系（其中复合曲线方程的效果最好）Y=18.994×1.087^X

表4晚期凋亡和坏死细胞模型汇总和参数估计值

因变量：y

注：1.Spearman等级相关系数：r_s=0.943，P=0.005（有正相关关系）

2.晚期凋亡和坏死细胞与剂量有关系（其中二次方程的效果最好）

Y=20.965－3.645X－0.362X²

2.7细胞免疫组化bcl-2蛋白表达情况：显微镜下观察可见13%、17%甘露醇处理组bcl-2蛋白表达阳性为（+）或（++），而5%、9%、20%甘露醇处理组bcl-2蛋白表达均为（-）。bcl-2蛋白表达阳性反应物质主要位于细胞浆，少数位于核膜上，呈棕黄色颗粒或团块状。

3讨论

Bcl-2蛋白家族是细胞中一组至关重要的凋亡蛋白，实验证明，过量表达Bcl-2，不能促进细胞增殖，相反却表现为能够强烈阻止由Gamma-辐射、热休克和多种化疗药物灯诱导的细胞凋亡。基因敲除实验表明，Bcl-2在保持细胞动态平衡中起着至关重要的作用，因为Bcl-2家族蛋白能够在线粒体外膜形成大的孔，释放促凋亡因子到细胞质，激活caspase,诱导细胞凋亡。另外，Bcl-2家族蛋白能够影响内质网Ca²⁺离子释放水平，改变线粒体外膜的渗透压，最终诱导细胞凋亡。因此，Bcl-2蛋白质家族是在线粒体水平上控制凋亡因子释放的最主要的调节因子，是细胞凋亡的调控者。

参照实施例2的方法，将不同浓度的甘露醇注射液在体外分别作用于SPC-A-1人肺癌细胞、PLC(人肝癌细胞)、HepG2(肝癌细胞)、HepG2/2-15(肝癌细胞)、Hep-3B(肝癌细胞)、SMMC-7721(肝癌细胞)、肝癌9204(肝癌细胞)、Bel-7402(肝癌细胞)、Bel-7404(肝癌细胞)、HuH7-HCV(感染HCV肝癌细胞)、HuH-7(肝癌细胞)、CBRH-7919(鼠肝癌细胞)、CRL-1548(大鼠肝癌细胞)、MiaPaCa-2（胰腺癌细胞）、BxPC-3（胰腺癌细胞）、CFPAC（胰腺癌细胞）、A549(肺腺癌细胞)、A549/DDP(A549耐药细胞株)、Tul-1(肺癌细胞)、LLC euwis肺癌细胞、MGC-803(胃癌细胞)、BGC-823(低分化胃癌细胞)、SGC-7901(胃腺癌细胞)，并利用Giemsa染色、细胞凋亡Dapi染色、hoechst33342试剂染色、透射电子显微镜、流式细胞仪以及细胞免疫组化等方法观察细胞凋亡及在该过程中bcl-2蛋白的表达，研究表明甘露醇同样可诱导上述目标癌细胞呈现细胞凋亡，结果如下：

1>甘露醇引起细胞凋亡的较佳质量浓度为13%～17%；

2>甘露醇引起细胞凋亡作用时间范围为24小时～120小时；

3>甘露醇引起细胞凋亡的时期包括早期凋亡、中期凋亡和晚期凋亡；

4>甘露醇引起细胞凋亡的可能机理：Bcl-2家族蛋白能够在线粒体外膜形成大的孔，释放促凋亡因子到细胞质，从而激活caspase诱导细胞凋亡。

实施例3乳腺癌

参照实施例1采用MTT法测定特定浓度甘露醇对乳腺癌细胞的细胞抑制率。结果显示：48小时内，在1～150μg/μl浓度范围时甘露醇可抑制乳腺癌细胞的增殖活性,其抑制作用随浓度的增高而增强，5天内，随着浓度和时间的增长，抑制率也不断增。

实施例4胃腺癌

参照实施例1采用化学发光法测定特定浓度甘露醇对SGC-7901(胃腺癌细胞)的细胞抑制率。结果显示：取48小时MTT结果中的半数抑制浓度（IC₅₀）时，作用7天，甘露醇可抑制胃腺癌细胞的增殖活性，并且抑制作用随时间的延长而增强。

临床病例1肝癌

杨某某患者病理诊断为弥漫型肝癌并肺内多发转移，无手术机会，亦未行化疗和放疗。经皮肺穿刺部分肺转移瘤内注射17%甘露醇注射液（10ml～15ml/次/单个瘤体，3天一次，连用3次）治疗。4周后经X线片复查并测量病灶大小，肺内转移灶由分别由原来2cm³、4cm³缩小到1cm³、1.5cm³，达到肿瘤治疗效果的“部分缓解”（PR），并且无任何副作用。（WHO关于实体瘤治疗评价标准PR：缩小50%维持4周；RECIST关于实体瘤治疗评价标准PR：缩小30%维持4周）

另有2例肝癌并肺内多发转移患者采用相同治疗后，效果达到RECIST标准PR。

临床病例2乳腺癌

卢某等5例患者为乳腺癌术后胸膜转移胸水形成，胸水细胞学检查见癌细胞，经19%甘露醇注射液胸腔灌注治疗（500ml/次，一天2次，连用3～5天），癌细胞消失，胸水控制2月～5月（达CR），无任何副作用。

临床病例3胰腺癌

马某等2例患者为晚期胰腺癌，有胸膜转移胸水形成，胸水细胞学检查见癌细胞，经19%甘露醇注射液胸腔灌注治疗（500ml/次，一天2次，连用3～5天），癌细胞消失，胸水控制2月以上（达CR），无任何副作用。

临床病例4胃腺癌

李某为胃腺癌术后2年胸膜转移胸水形成，胸水细胞学检查见癌细胞，经19%甘露醇注射液胸腔灌注治疗（500ml/次，一天2次，连用3～5天），癌细胞消失，胸水控制5月（达CR），无任何副作用。

临床病例5肺癌

蓝某等23例患者病理诊断为肺鳞癌或肺腺癌并癌性胸水形成（晚期），在经皮肺穿刺肿瘤内注射17%甘露醇注射液（10ml～15ml/次/单个瘤体，3天一次，连用3次），并用19%甘露醇注射液进行胸腔灌注治疗（500ml/次，一天2次，连用3～5天），肺内癌灶缩小30%～50%，癌性胸水控制2个月以上，个别病例癌性胸水控制2年未见复发，无任何副作用。

Claims (4)

1.甘露醇作为活性成分在制备抗胃腺癌药物中的应用。

2.根据权利要求1所述的应用，其特征在于：所述药物为甘露醇注射液。

3.根据权利要求2所述的应用，其特征在于：所述甘露醇注射液的质量浓度为10%～19%。

4.根据权利要求3所述的应用，其特征在于：所述甘露醇注射液的质量浓度为13%～17%。

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