实施例
佐剂
MPL:monophosphoryl lipid A(单磷酰脂质A,sigma L6638)
DDA:dimethyl dioctadecylammonium bromide(双十八烷基溴化铵)
实施例1重组卡介苗rBCG-Ag85B的制备
1.目的基因Ag85BFL的PCR引物设计和扩增
根据GeneBank注册的BCG(Mycobacterium bovis BCG str.Pasteur 1173P2;GeneBank注册号为Taxonomy ID:410289)基因序列设计引物,上游引物含有HindIII酶切位点。
引物:P1:5’-ATATATAAGCTTTGTAGCTCCAATTCGTTG-3’
P2:5’-GTAAAAGGGCACCGG-3’
扩增得到的Ag85BFL基因的大小是4712bp。
PCR反应体系按照LATaq酶(TaKaRa LAwith GC Buffer(DRR02AG~DRR02BG))反应要求配制。
反应模板为所提取的购自上海生物制品研究所(国药准字S20013038)的BCG的基因组。BCG基因组DNA的提取:取5ml BCG液体培养物以10000rpm离心10min,将沉淀重悬于50μL裂解液(10X PCR缓冲液5μl,45g/L吐温-205μl,45g/L NP-405μl,20g/L蛋白K0.5μl及水34.5μl)中,55℃水浴1小时,沸水浴10分钟灭活蛋白酶K,再以8000rpm离心1分钟,取上清,用酚/氯仿抽提,再用无水乙醇沉淀,然后溶于50μl TE中,贮于-20℃下备用。
PCR反应条件:初始变性:94℃,10min;主循环:94℃,1min;50℃,1min;72℃,10min共30个循环;终延伸:72℃,20min。反应中间补充LATaq酶一次。
将PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳,从低熔点琼脂糖凝胶中回收DNA片段(按TIANGEN胶回收试剂盒说明书进行)即得到目的基因片段Ag85BFL。
2.目的基因Ag85BFL克隆
在10μl的反应体系,将步骤1中回收后的目的基因Ag85BFL和克隆载体pGEM-T-easy(
-T Easy Vector Systems,Promega)按1∶1混合反应,得到pGEM-T-easy-Ag85BFL质粒,反应条件为:4.0℃下反应16h。将连接产物转化大肠杆菌感受态细胞TOP10(TOP10来源:天根生化科技(北京)有限公司CB104-02TOP10感受态细胞),提取质粒(提取方法按试剂盒:天根生化科技(北京)有限公司DP103-02质粒小提试剂盒),用BamHI(NEB R0136L)+HindIII(NEB R0104L)双酶切和EcoRV(NEB R0195L)单酶切进行鉴定,观察有无目的片段,将筛选出的阳性克隆通过双向进行测序(由上海生工公司完成测序)。
3.目的基因和穿梭表达载体的连接
将测序正确的pGEM-T-easy-Ag85BFL质粒用BamHI和HindIII双酶切胶回收目的基因后,将Ag85BFL与pSMT3质粒用BamHI和HindIII双酶切胶回收的片断进行连接,酶切体系为:质粒1μg(1μl),BamHI(0.5μl),HindIII(0.5μl),缓冲液10X(2μl),H2O 16μl.37度反应2个小时。构建重组穿梭表达载体pSMT3-Ag85BFL(pSMT3质粒由Dr.Marcus A.Horwitz赠送,参见A New Vaccine against TuberculosisAffords Greater Survival after Challenge than the Current Vaccine in the Guinea PigModel of Pulmonary Tuberculosis)。
4.制备重组卡介苗rBCG-Ag85B
1)将BCG(上海生物制品研究所(国药准字S20013038)BCG)在Middlebrook7H9 Broth(Difco Middlebrook 7H9 Broth Difco Cat.No.271310)+10%ADC培养基(BD BBL Middlebrook ADC Enrichment,Product Number:211887)中于37℃下培养3-4周到对数生长期。
2)将培养物冰浴1.5小时。
3)将培养物转移至50ml离心管内,4℃下2000g高速冷冻离心(centrifuge5810R,eppendorf)15min。
4)弃去上清,将菌体用等体积冰预冷10%甘油(北京化学试剂公司)洗涤一次,4℃下2000g高速冷冻离心15min。
5)重复步骤4)两次。
6)将细胞用室温的10%甘油重悬,按初始体积的1%加入甘油。
7)将步骤6)的重悬细胞分装到eppendorf管(200μl/管),直接用于电转或保存于-70℃冰箱备用,即为BCG感受态。
8)取质粒pSMT3-Ag85BFL的DNA(10-15μg)和200μl BCG感受态混合10min。充分混合后,加入电转杯内。
9)在BIO-RAD电转仪上进行电转,BCG电转条件:电压2500v,电阻200ohm,电容25μF,电转杯0.2cm,质粒10-15μg。
10)电转后将电转杯迅速置于冰上,加入1ml Middlebrook 7H9Broth培养基(含潮霉素B(Hygromycin B Roche 843555)、50μg/ml)至电转杯内,混匀后转移细胞至15ml试管,37℃过夜培养。
11)将过夜培养物涂于Middlebrook 7H11 Agar(Difco Mycobacteria 7H11 AgarCat.No.283810)+10%OADC(BD BBL Middlebrook OADC Enrichment,ProductNumber:211886)固体平板(Hyg+、50μg/ml)上,培养4-6周筛选阳性单克隆,其中Hyg+表示含潮霉素B。
12)挑取阳性单克隆接种到液体Middlebrook 7H9Broth培养基(潮霉素B、50μg/ml)内培养,37℃恒温培养3-4周。
13)将培养物转移至50ml离心桶内,在4℃下以2000g离心15min。
14)弃去上清,将菌体用等体积冰预冷10%甘油PBS洗涤一次,在4℃下以2000g离心15min。
15)重复步骤14)两次。
16)将沉淀用冰预冷10%甘油PBS重悬分装,待用。
17)菌体悬液按照10∶1的比例进行稀释,取各梯度的菌液接种于Middlebrook7H11固体培养基(Hyg+、50μg/ml)上,每个斜面接种100μl,每个梯度各接2板,37℃恒温培养。4-6周后计算CFU数。
实施例2ADV856的制备
1.分子克隆,构建PDC-316-856穿梭质粒
1)EcoRI(NEB R0101M)酶切Teasy-856(按原理图即图2及人密码子使用效率,设计真核化856基因,委托上海生工生物工程技术服务有限公司合成至Teasy载体),37℃反应2小时,胶回收试剂盒回收856片段。
2)EcoRI酶切PDC316(Microbix Biosvstems Inc:AdMax Adenovirus VectorCreation Kits)载体,37℃反应2小时,胶回收试剂盒回收线性化PDC316载体。
3)将回收的片段和载体在4℃下连接过夜,连接体系为:载体2μl,片段5μl,连接酶1μl,缓冲液(10X)2μl,水10μl。将连接产物转化大肠杆菌(TOP10),经酶切筛选鉴定,得到PDC-316-856穿梭质粒。
2.使用10%DMEM(Dulbecco’s modified Eagle’s medium,Invitrogen)培养基传代HEK293细胞(ATCC Number:CRL-1573),使其融合率达90%。
3.利用腺病毒AD5(Microbix Biosystems Inc:AdMax Adenovirus VectorCreation Kits)与PDC-316-856在HEK293细胞中的同源重组(参见厂商的说明书,使用AdMaxVectorCreationKit(Microbix Biosystems Inc:AdMax AdenovirusVector Creation Kits)),获得重组型ADV856。
4.空斑筛选阳性克隆:
1)用六孔板培养好的HEK293细胞,吸出培养液,将同源重组细胞液加入2ml,感染4小时。
2)吸出细胞液,加入4ml含1%低融点琼脂糖-2.5%胎牛血清的DMEM,室温凝固,37℃培养
3)5天过后查找空斑挑取,加入含2.5%胎牛血清的DMEM,-80℃保存。
5.使用重组型ADV856感染HEK293细胞,48h后收获将细胞悬液用移液管转移至50-ml离心桶中,1200×g 4℃离心10分钟。
6.弃上清,并加入1ml完全DMEM2.5培养基(含2.5%胎牛血清的DMEM(Dulbecco’s modified Eagle’s medium,Invitrogen))中重悬震荡。
7.用液氮和37℃水浴冻融裂解细胞,震荡。反复3次。
8.于冰上超声1分钟,4000rpm离心30分钟,上清于-70℃保存。
9.取第8步上清,重复5-8,使病毒扩增。
10.收集足量待纯化病毒,细胞冻融后离心,4℃12000g×10min,取上清。
11.每20ml上清中加入10ml 20%PEG8000(上海生物工程公司)/2.5M NaCl,混匀后放在冰浴中1h。
12.离心,4℃12500g×30min,弃上清。
13.收集沉淀,溶于5ml 1.1g/ml CsCl(北京鼎国生物技术有限责任公司)中。
14.制备不连续CsCl密度梯度:依次加入2ml 1.4g/mlCsCl、3ml 1.3g/mlCsCl、5ml上清。
15.离心,4℃下以60000g离心3h(对应Beckman离心机sw40,22000rpm),吸出病毒带。
16.转入透析卡(PIERCE:Slide-A-
Dialysis Cassette),4℃透析过夜,换透析液(50mM MgCl
2 10ml,甘油100ml,10×PBS 100ml,加入双蒸水定容至1000ml),分装保存于-80℃。
17.按照10-1的比例用透析液进行稀释,使用腺病毒特异抗体(Adenovirus Type5 antibody(ab6982,Abcam))测定滴度,待用。
实施例3MVA856的制备
1.分子克隆,构建Psc11-856穿梭质粒
1)以ApaI(NEB R0114L)和PacI(NEB R0547L)酶切Teasy-856,37℃反应2小时,胶回收试剂盒回收856片段。
2)ApaI和PacI酶切Psc11(购自ATCC)载体,37℃反应2小时,胶回收试剂盒回收线性化Psc11载体。
3)将回收的片段和载体在4℃连接过夜,将连接产物转化大肠杆菌(TOP10),经酶切筛选鉴定,得到Psc11-856穿梭质粒。
2.使用10%DMEM培养基传代BHK tk-细胞(ATCC Number:CRL-1632tk-ts13),使其融合率达90%。
3.利用MVA(Modified vaccinia virus Ankara(MVA)ATCC Number:VR-1508)与Psc11-856在BHK tk-细胞中的同源重组(Earl PL,Moss B,Wyatt LS,Carroll MW.Generation of recombinant vaccinia viruses.Current Protocols in Molecular Biology2001May;Chapter 16:Unit16.17.),获得重组重组型MVA856。
4.蓝白斑筛选阳性克隆。筛选用固体及液体体系均加入1%体积的5mg/ml BrdU(Sigma B5002,5-Bromo-2′-deoxyuridine)作筛选用以控制非重组克隆生长。
1)六孔板培养好的BHK tk-细胞,吸出培养液,将同源重组细胞液加入2ml,感染4小时。
2)吸出细胞液,加入2ml含1%低融点琼脂糖-2.5%胎牛血清的DMEM,室温凝固,37℃培养
3)2天过后,加入2ml 1%X-gal-含1%低融点琼脂糖-2.5%胎牛血清的DMEM,室温凝固,37℃培养
4)1-2天,显示蓝斑,挑取,加入含2.5%胎牛血清的DMEM,-80℃保存。
5.使用重组型MVA856感染BHK tk-细胞,48h后收获将细胞悬液用移液管转移至50-ml离心桶中,1200×g 4℃离心10分钟。
6.弃上清,并加入1ml完全DMEM-2.5培养基中重悬震荡。
7.用液氮和37℃水浴冻融裂解细胞,震荡。反复3次。
8.于冰上超声1分钟,4000rpm离心30分钟,上清于-70℃保存。
9.取第8步上清,重复5-8,使病毒扩增。
10.收集足量待纯化病毒,细胞用10mmol/L Tris-HCL重悬,冻融裂解细胞,震荡。反复3次。
11.加入36%蔗糖至超离管一半体积形成垫层,加入相同体积病毒悬液。
12.30000g 4℃离心60分钟。
13.弃上清,重悬病毒沉淀于1mmol/L Tris-HCL,分装保存于-80℃。
14.按照10-1的比例进行稀释,使用痘病毒特异抗体(vaccinia virus polyclonalantibody(20-VR69,Fitzgerald))测定滴度,待用。
实施例4ADV856和MVA856联用的免疫方案
1.Balb/c雌鼠(吉林大学基础医学院动物实验中心,小鼠饲养条件:SPF级)6-8周龄免疫方案如下:
第一次免疫(prime)rBCG皮下注射1×106CFU第1周
第二次免疫(boost 1)ADV856皮下注射1×107PFU第7周
第三次免疫(boost 2)MVA856皮下注射2×107PFU第9周
第10-11周处死小鼠,分离脾脏,以总脾细胞进行实验
2.脾细胞处理方案:
1)拉颈处死Balb/c小鼠,并且将小鼠分组记号,75%酒精浸泡后拿入细胞室准备取脾;
2)无菌操作取脾,尽量将结缔组织去除。将脾放在含有RPMI-3(RPMI Medium1640,Invitrogen)培养基的六孔板中,每组脾放置在一个孔内,作好标记。
3)将脾放置纱网中于预先放好RPMI-3培养基的平皿内,用纱网包裹脾用5ml注射器内塞研磨。用一新纱网再过滤一遍至50ml离心桶(作好分组标记),用4mlRPMI-3洗涤培养皿,如果必要重复操作。每个脾加入3ml RPMI-3培养基,终体积约15ml。
4)20℃,200g离心10min,去除上清。用RPMI-3培养基重悬细胞沉淀,再加入红细胞裂解液(ACK缓冲液(NH4Cl-0.15M,KHCO3-10.0mM,Na2EDTA-0.1mM,pH 7.2-7.4))每个脾加2-3ml(培养基与ACK缓冲液比例为1∶2)室温放置5min,时而振动。
5)20℃,200g离心10min。裂解好的细胞沉淀应呈乳黄色,如果红细胞裂解不彻底可重复裂解。20ml RPMI-5培养基重悬洗涤2次,20C,200g离心5min。最后用7.5mlR-5培养基重悬。
6)用滤网再过滤一遍。
7)脾细胞计数:用RPMI-5培养基稀释脾细胞至1×107cells/ml
3.IFN-r ELISOPT实验:
第1天(杀鼠取脾前一天)
1)抗体包被板:
用IFN-gamma抗体包被elispot 96-孔板(96-well filter plates(BD 51-2447KC))。在5ml PBS中加入1mg/ml纯化的抗小鼠IFN-γ的mAb(purified anti-mouse IFN-γmAb,BD 51-2525KC)25μl,使浓度达5ug/ml,每孔加入50ul。加盖4℃过夜。
第2天(杀鼠取脾,参见步骤1和2)
2)封闭
弃去包被抗体,用含10%胎牛血清(武汉三利生物技术有限公司)的完全培养基(RPMI-10)洗涤一次,每孔加入200μl完全培养基,加盖于室温封闭2小时或37℃1小时,弃去培养基。
3)细胞激活
a.每孔加入3X105细胞,使每孔体积为100μl。
b.实验组每孔加入25μl刺激物(终浓度为1μg/ml)。
c.对照组每孔加入25μl培养基。
d.阳性对照每孔加入小鼠IFN-gamma。
e.阴性对照加入培养基。
混匀于37℃,5%CO2培养箱中培养36小时。
第三天ELISPOT试剂盒(BD ELISPOT Set,R D cat#EL485)
4)ELISPOT试剂盒操作
a.用无菌水洗板2次,用1X洗涤缓冲液或PBST洗涤6次,每次洗涤时浸洗1~2min。
b.将抗体生物素化抗小鼠IFN-γ的mAb(biotinylated anti-mouse IFN-γmAb,BD 51-1818KZ)加至12ml(10组量)的稀释缓冲液1中,终浓度为2ug/ml。
c.每孔加入50μl上步混合液。
d.室温2小时。
5)洗涤显色
a.用1X洗涤缓冲液或PBST洗涤3次。
b.将链亲和素-HRP浓缩物A(streptavidin-HRP,BD 51-9000209)加至稀释缓冲液比值为1∶100。每孔加入50μl混合液。
c.室温培养2小时,或4C过夜。
d.用PBST洗涤4次。
e.用PBS洗涤2次
f.每孔加50μl elispot染色液(BD AEC substrate Reagent set,cat no:551951,20μl的色原体(chromogen)加入到1ml的AEC底物溶液中)。
g.避光室温放置5-60分钟。
h.弃去染色液,用蒸馏水洗涤
i.室温空气干燥2小时或过夜干燥,保存数据。
结果:
表13×105细胞进行刺激36小时,产生斑点情况如下
其中,9肽1号和9肽2号为CD8+T细胞特异小肽,能够刺激CD8+T细胞分泌IFN-γ;18肽1号和18肽2号为CD4+T细胞特异小肽,18-2,18-1,20肽能够刺激CD4+T细胞分泌IFN-γ。
表2本研究中所使用的肽
其中20肽由强耀生物科技有限公司(ChinaPeptides Co.(Shanghai,China))合成,9-2,9-1,18-2,18-1肽由强耀生物科技有限公司合成。
以1X106细胞重复上述测试,所用具体免疫方式如图5所示,结果在表3中示出。
4.CD8+T CTL实验:
P815:
1)对150×10
5P815(
Number:TIB-64
TM)进行9-2肽标记,37℃培养,DMEM-105ml加25μl 9-2肽
2)对另一份150×105P815 37℃培养 无肽标记DMEM-105ml
3)37℃孵育2小时以上,经常振动,使得充分接触
4)对9-2肽标记的P815 80×105 进行5uM CFSE(5(6)-Carboxyfluoresceindiacetate N-succinimidyl ester,Sigma 21888)标记,使用不完全1640 8ml
对无标记的P815 80×105进行0.5uM CFSE标记,使用不完全1640 8ml
5)37℃孵育10-15min,每3-5min混匀细胞。
6)等体积冰冷小牛血清中止2-5min,以R-3洗2次,洗涤及离心过程中注意避光
7)最后每支用R-510ml重悬,计数
8)每个样品需要:9-2肽P8155×104;无肽P8155×104
9)以效靶比10∶1计算,需要效应细胞为10×105
10)将效应细胞(即步骤2脾细胞处理方案中所处理的脾细胞)与靶细胞混合,每个组别设置两个平行样品
11)200g,4min离心(使靶细胞和淋巴细胞充分接触)37℃培养,杀伤4-6小时,
结果:
以9肽2号MPVGG QSSF与P815孵育后作为靶细胞进行杀伤4小时,杀伤率达到28%±2%
以上实验说明:
此疫苗形式能够引起T淋巴细胞强烈的IFN-r分泌和细胞杀伤作用,这预示疫苗的有效性。
实施例5本发明的免疫方案与现有技术免疫方案的对比试验
采用以下方案进行相互比较
rBCG+ADV856+MVA856
BCG
rBCG
rBCG+(Ag85B-ESAT6)MPL/DDA
其中rBCG+ADV856+MVA856为本专利的免疫方案;
BCG为当前普遍使用之卡介苗;
rBCG为本专利初次免疫使用之第一针,也是国外提出的一种BCG替代方案[ANew Vaccine against Tuberculosis Affords Greater Survival after Challenge than theCurrent Vaccine in the Guinea Pig Model of Pulmonary Tuberculosis];
rBCG+(Ag85B-ESAT6)MPL/DDA,其中(Ag85B-ESAT6)MPL/DDA为国外提出的一种免疫方案,Ag85B-ESAT6融合蛋白与佐剂MPL+DDA联合使用,明显引起免疫保护[Protection of Mice with a Tuberculosis Subunit Vaccine Based on a FusionProtein of Antigen 85B and ESAT-6,Protective Effect of a Tuberculosis SubunitVaccine Based on a Fusion of Antigen 85B and ESAT-6 in the Aerosol Guinea PigModel,Protection of macaques against Mycobacterium tuberculosis infection by asubunit vaccine based on a fusion protein of antigen 85B and ESAT-6],用此蛋白并疫苗对原始rBCG进行加强2次,会使其保护作用进一步加强。
1.采用IFN-r ELISOPT实验(方法参见实施例4),结果如下:
图3中所示各图小标题为孵育时使用的刺激物,统计分析采用one-way ANOVAand Tukey’s post test,其中各组均与本专利提供的rBCG+ADV856+MVA856方案进行比较,*,p<0.05;**,p<0.01;***,p<0.001;ns,无统计学显著性.
结果显示,rBCG+ADV856+MVA856在各刺激物刺激下(20须肽除外),反应均强于BCG组和rBCG组,并具有统计学意义。说明本专利在特异活化细胞产生IFN-γ方面,具有显著优势,强于当前使用的BCG和rBCG。
rBCG+ADV856+MVA856在与rBCG+(Ag85B-ESAT6)MPL/DDA比较时,在Ag85B-ESAT6融合蛋白,Ag85B和ESAT6刺激下,显示效果与之相当。但使用CD8+T细胞特异小肽(9肽1号,9肽2号)和CD4+T细胞特异小肽(18肽1号,18肽2号)以及20肽刺激时,均显示出明显的统计学意义,说明本专利在特异活化CD8+T和CD4+T产生IFN-γ方面,具有显著优势,强于当前正在研究的改进方案rBCG+(Ag85B-ESAT6)MPL/DDA。
2.采用CD8+T CTL实验(方法参见实施例4),结果如下:
rBCG+ADV856+MVA856引起杀伤率达到28%±2%,其它各组均未引起可见的细胞杀伤
实施例6MVA单独免疫的结果
在IFN-r ELISOPT实验(方法参见实施例4)中,分别在各种刺激物刺激下,对MVA免疫后2周和4周的小鼠脾细胞进行检测,
其中PBS为对照阴性组。图4中显示,MVA免疫后,有特异性IFN-r细胞产生,尤其对Ag85B的刺激敏感。
实施例7攻毒实验程序
具体免疫及攻毒和检测程序方案参见图6。
Balb/c雌鼠(武汉大学医学动物实验中心.小鼠饲养条件:攻毒前为SPF级,攻毒后转移至动物生物安全3级)6-8周龄免疫方案如下:
完成免疫的小鼠于4周后,以结核菌(H37Rv)5.0×105CFU/只尾静脉注射。生物安全三级实验室饲养小鼠8周后,解剖,取肺、脾进行感染组织平皿培养。
1.感染组织平皿培养结核分枝杆菌
材料和特殊仪器
7H11-OADC琼脂培养皿(包含环己酰胺100ug/ml)
操作步骤
1)在50ml离心管上标记管重,由病理取材,并标记实验动物编号及组织名称,组织处理前称重,并记录之。
2)每个组织加入无菌PBS-tween805ml,用PRO250组织匀浆器最大速度60秒匀浆。
3)放置在冰上或4℃冰箱5分钟,使悬浮物沉降下来。
取原液0.5ml加入到4.5ml PBS液内,连续10倍稀释7个浓度,将原液储存在-30℃冰箱,为以后复查试验备用。
4)在处理下一个样本前对组织匀浆器进行洗涤,连续性通过用装有40-45mLPBS的50mL管,然后用80%EtOH,最后再用PBS,最大速度约为5-10秒。
5)样本稀释:组织匀浆按照下述方法系列稀释:
0.5mL匀浆液加入至4.5mL PBS (10X稀释)
0.5mL 10x稀释匀浆加入至4.5mL PBS (100X稀释)
0.5mL 100x稀释匀浆加入至4.5mL PBS (1000X稀释)
0.5mL 1000x稀释匀浆加入至4.5mL PBS (100000X稀释)
6)培养:
将100μl充分混匀的稀释匀浆加到7H11-OADC培养皿,做三块皿。
注意:一次性的移液管头要剪去1mm左右,这样开口更大,避免组织堵塞移液管。
每一接种的平板中加入10粒玻璃珠,将平板置于光滑的平面上,轻轻地旋转平板至少10次,使样本均匀地分布于平板表面。把玻璃珠倒入废物筒内,标记平板的底部,立即盖上平板。当接种完成后,将平板置入带拉链的塑料袋中,置于36±2℃培养箱,待观察到菌落为止(≥1mm,通常为3-4周)。
结果:将得到的组织菌数取对数后(logCFU),进行计算,结果如表4所示。
表4
结果说明:MVA856的单独使用,在结核攻毒时,对肺、脾产生明显的保护,对肺效果显著优于BCG,对脾效果与BCG相当。rBCG+AD856+MVA856产生的肺保护力与BCG相当,但高于rBCG。AD856+MVA856和MVA856+ADV856的两种病毒载体疫苗联合使用的加强策略(即B+A+M,B+M+A,rB+A+M,rB+M+A)能够显著提高BCG和rBCG原有的肺保护力。
实施例8ADV-Ag85B-TB10.4的制备
1.分子克隆,构建PDC-316-Ag85B-TB10.4穿梭质粒
1)EcoRI (NEB R0101M)酶切Teasy-Ag85B-TB10.4(按原理图及人密码子使用效率,设计真核化Ag85B-TB10.4基因,委托上海生工生物工程技术服务有限公司合成至Teasy载体),37℃反应2小时,胶回收试剂盒回收Ag85B-TB10.4片段。
2)EcoRI酶切PDC316载体(Microbix Biosystems Inc:AdMax AdenovirusVector Creation Kits),37℃反应2小时,胶回收试剂盒回收线性化PDC316载体。
3)将回收的片段和载体在4℃连接过夜,连接体系为:载体2μl,片段5μl,连接酶1μl,缓冲液(10X)2μl,水10μl。,将连接产物转化大肠杆菌(TOP10),经酶切筛选鉴定,得到PDC-316-Ag85B-TB10.4穿梭质粒。
2.使用10%DMEM(Dulbecco’s modified Eagle’s medium,Invitrogen)培养基传代HEK293细胞(ATCC Number:CRL-1573),使其融合率达90%。
3.利用腺病毒AD5与(Microbix Biosystems Inc:AdMax Adenovirus VectorCreation Kits)PDC-316-Ag85B-TB10.4在HEK293细胞中的同源重组(参见厂商的说明书,使用AdMaxVectorCreationKit(Microbix Biosystems Inc:AdMaxAdenovirus Vector Creation Kits)),获得重组型ADV-Ag85B-TB10.4。
4.空斑筛选阳性克隆。
实验方案与实施例2的空斑筛选阳性克隆相同。
5.使用重组型ADV-Ag85B-TB10.4感染HEK293细胞,48h后收获将细胞悬液用移液管转移至50-ml离心桶中,1200×g 4℃离心10分钟。
6.弃上清,并加入1ml完全DMEM2.5培养基(含2.5%胎牛血清的DMEM(Dulbecco’s modified Eagle’s medium,Invitrogen))中重悬震荡。
7.用液氮和37℃水浴冻融裂解细胞,震荡。反复3次。
8.于冰上超声1分钟,4000rpm离心30分钟,上清于-70℃保存。
9.取第8步上清,重复5-8,使病毒扩增。
10.收集足量待纯化病毒,细胞冻融后离心,4℃12000g×10min,取上清。
11.每20ml上清中加入10ml 20%PEG8000(上海生物工程公司)/2.5MNaCl,混匀后放在冰浴中1h。
12.离心,4℃12500g×30min,弃上清。
13.收集沉淀,溶于5ml1.1g/ml CsCl(北京鼎国生物技术有限责任公司)中。
14.制备不连续CsCl密度梯度:依次加入2ml 1.4g/mlCsCl、3ml 1.3g/mlCsCl、5ml上清。
15.离心,4℃60000g×3h(对应Beckman离心机sw40,22000rpm),吸出病毒带。
16.转入透析卡(PIERCE:Slide-A-
Dialysis Cassette),4℃透析过夜,换透析液(50mM MgCl
210ml,甘油100ml,10×PBS 100ml,加入双蒸水定容至1000ml),分装保存于-80℃。
17.按照10-1的比例用透析液进行稀释,使用腺病毒特异抗体(Adenovirus Type5antibody(ab6982,Abcam))测定滴度,待用。
实施例9MVA-Ag85B-TB10.4的制备
1.分子克隆,构建Psc11-Ag85B-TB10.4穿梭质粒。
1)以ApaI(NEB R0114L)和PacI(NEB R0547L)酶切Teasy-Ag85B-TB10.4,37℃反应2小时,胶回收试剂盒回收Ag85B-TB10.4片段。
2)ApaI和PacI酶切Psc11载体,37℃反应2小时,胶回收试剂盒回收线性化Psc11载体。
3)将回收的片段和载体在4℃连接过夜,将连接产物转化大肠杆菌(TOP10),经酶切筛选鉴定,得到Psc11-Ag85B-TB10.4穿梭质粒。
2.使用10%DMEM培养基传代BHK tk-细胞(ATCC Number:CRL-1632tk-ts13),使其融合率达90%。
3.利用MVA与Psc11Ag85B-TB10.4在BHK tk-细胞中的同源重组(Earl PL,MossB,Wyatt LS,Carroll MW.Generation of recombinant vaccinia viruses.CurrentProtocols in Molecular Biology 2001May;Chapter 16:Unit16.17.),获得重组重组型MVA-Ag85B-TB10.4。
4.蓝白斑筛选阳性克隆。
实验方案与实施例3的蓝白斑筛选阳性克隆相同。
5.使用重组型MVA-Ag85B-TB10.4感染BHK tk-细胞,48h后收获将细胞悬液用移液管转移至50-ml离心桶中,1200×g 4℃离心10分钟。
6.弃上清,并加入1ml完全DMEM-2.5培养基中重悬震荡。
7.用液氮和37℃水浴冻融裂解细胞,震荡。反复3次。
8.于冰上超声1分钟,4000rpm离心30分钟,上清于-70℃保存。
9.取第8步上清,重复5-8,使病毒扩增。
10.收集足量待纯化病毒,细胞用10mmol/L Tris-HCL重悬,冻融裂解细胞,震荡。反复3次。
11.加入36%蔗糖至超离管一半体积形成垫层,加入相同体积病毒悬液。
12.30000g 4℃离心60分钟。
13.弃上清,重悬病毒沉淀于1mmol/L Tris-HCL,分装保存于-80℃。
14.按照10-1的比例进行稀释,使用痘病毒特异抗体(vaccinia virus polyclonalantibody(20-VR69,Fitzgerald))测定滴度,待用。
实施例10ADV-Ag85B-TB10.4和MVA-Ag85B-TB10.4联用的免疫方案
1.Balb/c雌鼠(吉林大学基础医学院动物实验中心.小鼠饲养条件:SPF级)6-8周龄免疫方案如下:
第一次免疫(prime)rBCG皮下注射1×106CFU第1周
第二次免疫(boost 1)ADV-Ag85B-TB10.4皮下注射1×107PFU第7周
第三次免疫(boost 2)MVA-Ag85B-TB10.4皮下注射2×107PFU第9周
第10-11周处死小鼠,分离脾脏,以总脾细胞进行实验。
2.脾细胞处理方案:
处理方案及条件与实施例4中的脾细胞处理方案相同
3.IFN-r ELISOPT实验:
实验方案与实施例4中的IFN-r ELISOPT实验相同
结果:
表53×105细胞进行刺激36小时,产生斑点情况如下
刺激物 |
斑点数 |
Ag85B-TB10.4融合蛋白 |
396±42 |
Ag85B |
334±22 |
TB10.4 |
387±83 |
空白对照(无抗原) |
16±6 |
结果显示,经过此方案免疫后,产生了针对Ag85B和TB10.4的分泌IFN-γ的细胞,这意味着此方案的细胞免疫强度及免疫原性较好,对结核保护力将起到作用。
实施例11ADV-Ag85B-ESAT6-TB10.4的制备
1.分子克隆,构建PDC-316-Ag85B-ESAT6-TB10.4穿梭质粒。
1)EcoRI (NEB R0101M)酶切Teasy-Ag85B-ESAT6-TB10.4(按原理图及人密码子使用效率,设计真核化Ag85B-ESAT6-TB10.4基因,委托上海生工生物工程技术服务有限公司合成至Teasy载体),37℃反应2小时,胶回收试剂盒回收Ag85B-ESAT6-TB10.4片段。
2)EcoRI酶切PDC316(Microbix Biosystems Inc:AdMax Adenovirus VectorCreation Kits)载体,37℃反应2小时,胶回收试剂盒回收线性化PDC316载体。
3)将回收的片段和载体在4℃连接过夜,连接体系为:载体2μl,片段5μl,连接酶1μl,缓冲液(10X)2μl,水10μl。将连接产物转化大肠杆菌(TOP10),经酶切筛选鉴定,得到PDC-316-Ag85B-ESAT6-TB10.4穿梭质粒。
2.使用10%DMEM(Dulbecco’s modified Eagle’s medium,Invitrogen)培养基传代HEK293细胞(ATCC Number:CRL-1573),使其融合率达90%。
3.利用腺病毒AD5(Microbix Biosystems Inc:AdMax Adenovirus VectorCreation Kits)与PDC-316-Ag85B-ESAT6-TB10.4在HEK293细胞中的同源重组(参见厂商的说明书,使用AdMaxVectorCreationKit(Microbix Biosystems Inc:AdMaxAdenovirus Vector Creation Kits)),获得重组型ADV-Ag85B-ESAT6-TB10.4。
4.空斑筛选阳性克隆。
实验方案与实施例2的空斑筛选阳性克隆相同。
5.使用重组型ADV-Ag85B-ESAT6-TB10.4感染HEK293细胞,48h后收获将细胞悬液用移液管转移至50-ml离心桶中,1200×g 4℃离心10分钟。
6.弃上清,并加入1ml完全DMEM2.5培养基(含2.5%胎牛血清的DMEM(Dulbecco’s mo dified Eagle’s medium,Invitrogen))中重悬震荡。
7.用液氮和37℃水浴冻融裂解细胞,震荡。反复3次。
8.于冰上超声1分钟,4000rpm离心30分钟,上清于-70℃保存。
9.取第8步上清,重复5-8,使病毒扩增。
10.收集足量待纯化病毒,细胞冻融后离心,4℃12000g×10min,取上清。
11.每20ml上清中加入10ml 20%PEG8000(上海生物工程公司)/2.5MNaCl,混匀后放在冰浴中1h。
12.离心,4℃12500g×30min,弃上清。
13.收集沉淀,溶于5ml1.1g/ml CsCl(北京鼎国生物技术有限责任公司)中。
14.制备不连续CsCl密度梯度:依次加入2ml 1.4g/mlCsCl、3ml 1.3g/mlCsCl、5ml上清。
15.离心,4℃60000g×3h(对应Beckman离心机sw40,22000rpm),吸出病毒带。
16.转入透析卡(PIERCE:Slide-A-
Dialysis Cassette),4℃透析过夜,换透析液(50mM MgCl
2 10ml,甘油100ml,10×PBS 100ml,加入双蒸水定容至1000ml),分装保存于-80℃。
17.按照10-1的比例用透析液进行稀释,使用腺病毒特异抗体(Adenovirus Type5antibody(ab6982,Abcam))测定滴度,待用。
实施例12MVA-Ag85B-ESAT6-TB10.4的制备
1.分子克隆,构建Psc11-Ag85B-ESAT6-TB10.4穿梭质粒。
1)以ApaI(NEB R0114L)和PacI(NEB R0547L)酶切Teasy-Ag85B-ESAT6-TB10.4,37℃反应2小时,胶回收试剂盒回收Ag85B-ESAT6-TB10.4片段。
2)ApaI和PacI酶切Psc11载体,37℃反应2小时,胶回收试剂盒回收线性化Psc11载体。
3)将回收的片段和载体在4℃连接过夜,将连接产物转化大肠杆菌(TOP10),经酶切筛选鉴定,得到Psc11-Ag85B-ESAT6-TB10.4穿梭质粒。
2.使用10%DMEM培养基传代BHK tk-细胞(ATCC Number:CRL-1632tk-ts13),使其融合率达90%。
3.利用MVA与Psc11-Ag85B-ESAT6-TB10.4在BHK tk-细胞中的同源重组(EarlPL,Moss B,Wyatt LS,Carroll MW.Generation of recombinant vaccinia viruses.Current Protocols in Molecular Biology 2001May;Chapter 16:Unit16.17.),获得重组重组型MVA-Ag85B-ESAT6-TB10.4。
4.蓝白斑筛选阳性克隆。
实验方案与实施例3的蓝白斑筛选阳性克隆相同。
5.使用重组型MVA-Ag85B-ESAT6-TB10.4感染BHK tk-细胞,48h后收获将细胞悬液用移液管转移至50-ml离心桶中,1200×g 4℃离心10分钟。
6.弃上清,并加入1ml完全DMEM-2.5培养基中重悬震荡。
7.用液氮和37℃水浴冻融裂解细胞,震荡。反复3次。
8.于冰上超声1分钟,4000rpm离心30分钟,上清于-70℃保存。
9.取第8步上清,重复5-8,使病毒扩增。
10.收集足量待纯化病毒,细胞用10mmol/L Tris-HCL重悬,冻融裂解细胞,震荡。反复3次。
11.加入36%蔗糖至超离管一半体积形成垫层,加入相同体积病毒悬液。
12.30000g 4℃离心60分钟。
13.弃上清,重悬病毒沉淀于1mmol/L Tris-HCL,分装保存于-80℃。
14.按照10-1的比例进行稀释,使用痘病毒特异抗体(vaccinia virus polyclonalantibody(20-VR69,Fitzgerald))测定滴度,待用。
实施例13ADV-Ag85B-ESAT6-TB10.4和MVA-Ag85B-ESAT6-TB10.4联用的免
疫方案
1.Balb/c雌鼠(吉林大学基础医学院动物实验中心.小鼠饲养条件:SPF级)6-8周龄免疫方案如下:
第一次免疫(prime)rBCG皮下注射1×106CFU第1周
第二次免疫(boost 1)ADV-Ag85B-ESAT6-TB10.4皮下注射1×107PFU第7周
第三次免疫(boost 2)MVA-Ag85B-ESAT6-TB10.4皮下注射2×107PFU第9周
第10-11周处死小鼠,分离脾脏,以总脾细胞进行实验。
2.脾细胞处理方案:
处理方案及条件与实施例4中的脾细胞处理方案相同
3.IFN-r ELISOPT实验:
实验方案与实施例4中的IFN-r ELISOPT实验相同
结果:
表613×105细胞进行刺激36小时,产生斑点情况如下
刺激物 |
斑点数 |
Ag85B-ESAT6-TB10.4融合蛋白 |
469±88 |
Ag85B |
324±35 |
ESAT-6 |
73±15 |
TB10.4 |
327±53 |
空白对照(无抗原) |
19±5 |
结果显示,经过此方案免疫后,产生了针对Ag85B和ESAT-6和TB10.4的分泌IFN-γ的细胞,这意味着此方案的细胞免疫强度及免疫原性较好,且综合了多种抗原,作用更广泛,对结核保护力将起到作用。
实施例14Ag85B-ESAT6蛋白的制备
1.原核Ag85B-ESAT6目的基因获得
委托上海生工公司合成原核Ag85B-ESAT6表达序列(SEQ ID NO:5)至克隆载体pGEM-T-easy(-T Easy Vector Systems,Promega)。
2.目的基因和表达载体连接
将测序正确的pGEM-T-easy-Ag85B-ESAT6质粒用NdeI和XhoI双酶切胶回收目的基因后,将Ag85B-ESAT6与pET-20b(Novagen pET system)质粒用NdeI和XhoI双酶切胶回收的片断进行连接。酶切体系为:质粒1Pg(1μl),NdeI(0.5μl),XhoI(0.5μl),缓冲液10X(2μl),H2O 16μl.37度反应2个小时。连接体系为:在10μl的反应体系,将目的基因Ag85B-ESAT6和载体pET-20b按1∶1混合反应,得到pET-20b-Ag85B-ESAT6质粒,反应条件为:4.0℃下反应16h。
3.重组表达菌的获得及诱导表达重组蛋白Ag85B-ESAT6
将步骤2的连接产物转化大肠杆菌感受态细胞BL21(DE3)plysS(来源:Novagen公司)。在氨苄青霉素抗性平板上培养,挑取阳性克隆,加入5ml LB[LB液体培养基:1L去离子水中含:蛋白胨(tryptone)10g,酵母提取物(yeast extract)5g,NaCl10g。121℃湿热灭菌20min]培养液,在37℃下以200rpm振荡培养过夜,第二天以1∶100转接到1L培养液中,37℃,200rpm培养至OD600约为0.6-0.8(约在2.5小时),加入IPTG至终浓度为1mM,继续培养5小时,将菌液以6000rpm在4℃下离心10min收集菌体。
4.收获Ag85B-ESAT6蛋白
将收集到的菌体沉淀加入10ml超声破碎缓冲液(50mM Tris-Cl,1mM EDTA,100mM NaCl,pH 8.0),在冰上进行超声破碎。超声破碎仪(美国Sonics公司)工作参数:(750W,20KHz,40%)工作6s,间歇6s,超声5min,停2min,共4次。以12000rpm于4℃下离心20min,将沉淀用8M尿素溶解,以0.45微米膜过滤,获得待上柱样品,用于下一步进行亲和层析纯化。
5.Ag85B-ESAT6蛋白亲和层析纯化蛋白的过程如下(Invitrogen公司Ni-NTAPurification System Purification试剂盒):
取2ml柱料加入纯化柱中,平稳后的柱料体积为柱体积。然后向层析柱中加入5倍柱体积的无菌去离子水,并且加入5倍柱体积的1X Charge Buffer。接下来,向层析柱中加入5倍柱体积的1X Binding Buffer(含8M尿素)。
将样品处理后上样,控制流速约5min/柱体积。然后向层析柱中加入5倍柱体积的1X Binding Buffer(含8M尿素)。接下来向层析柱中加入5倍柱体积的1XWashingBuffer 1(含8M尿素),然后向层析柱中加入5倍柱体积的1XWashing Buffer 2(含8M尿素)。最后向层析柱中加入5倍柱体积的1X Elute Buffer(含8M尿素),并且以每管1ml的量接样,至此获得变性的目的蛋白Ag85B-ESAT6。
向层析柱中加入5倍柱体积的1X Strip Buffer(或含8M尿素)。然后向层析柱中加入5倍柱体积的无菌去离子水,最后层析柱中加入20%乙醇并于4℃下保存。
5.变性的Ag85B-ESAT6蛋白复性
将步骤4中收集纯化的变性蛋白样品以[1X Elute Buffer(含8M尿素)]稀释为0.1-mg/mL,装入透析袋中,每8h更换一次复性液(共3次)(复性液:50mM Tris-Cl、pH 8.0、0.5mM EDTA、50mM NaCl、10%甘油、1%甘氨酸)透析完成后将蛋白样品以12000rpm 4℃离心,取上清进行超滤浓缩[使用截流分子量为10KD的截流离心柱(MILLIPORE公司),5000rpm 4℃离心浓缩至5%体积]。
至此得到的Ag85B-ESAT6蛋白可进行各实施例的免疫实验。
实施例15Ag85B-ESAT6蛋白与ADV856联用的免疫方案
Ag85B-ESAT6蛋白溶液的制备:MPL用含0.2%三乙胺的无菌水溶解,加入DDA,70度水浴30秒,超声30秒,重复2次,加入Ag85B-ESAT6蛋白混匀。最终剂量为每只鼠接受为0.2ml含50μg Ag85B-ESAT6蛋白,25μgMPL,250μgDDA。
1.Balb/c雌鼠(吉林大学基础医学院动物实验中心.小鼠饲养条件:SPF级)6-8周龄免疫方案如下:
第一次免疫(prime)rBCG皮下注射1×106CFU第1周
第二次免疫(boost 1)ADV856皮下注射1×107PFU第7周
第三次免疫(boost 2)Ag85B-ESAT6蛋白(含佐剂,佐剂为MPL+DDA,)皮下注射第9周
第10-11周处死小鼠,分离脾脏,以总脾细胞进行实验。
2.脾细胞处理方案:
处理方案及条件与实施例4中的脾细胞处理方案相同
3.IFN-r ELISOPT实验:
实验方案与实施例4中的IFN-r ELISOPT实验相同
结果:
表713×105细胞进行刺激36小时,产生斑点情况如下
刺激物 |
斑点数 |
Ag85B-ESAT6融合蛋白 |
782±103 |
Ag85B |
536±55 |
ESAT-6 |
156±27 |
TB10.4 |
227±36 |
空白对照(无抗原) |
19±5 |
结果显示,经过此方案免疫后,产生了针对Ag85B和ESAT-6的分泌IFN-γ的细胞,这意味着此方案的细胞免疫强度及免疫原性较好,且综合了多种抗原,作用更广泛,对结核保护力将起到作用。
实施例16Ag85B-ESAT6蛋白与MVA856联用的免疫方案
Ag85B-ESAT6蛋白溶液的制备:与实施例15中的Ag85B-ESAT6蛋白溶液的制备步骤相同。
1.Balb/c雌鼠(吉林大学基础医学院动物实验中心.小鼠饲养条件:SPF级)6-8周龄免疫方案如下:
第一次免疫(prime)rBCG皮下注射1×106CFU第1周
第二次免疫(boost 1)MVA856皮下注射2×107PFU第7周
第三次免疫(boost 2)Ag85B-ESAT6蛋白(含佐剂,佐剂为MPL+DDA,)皮下注射第9周
第10-11周处死小鼠,分离脾脏,以总脾细胞进行实验。
2.脾细胞处理方案:
处理方案及条件与实施例4中的脾细胞处理方案相同
3.IFN-r ELISOPT实验:
实验方案与实施例4中的IFN-r ELISOPT实验相同
结果:
表813×105细胞进行刺激36小时,产生斑点情况如下
刺激物 |
斑点数 |
Ag85B-ESAT6融合蛋白 |
698±93 |
Ag85B |
486±45 |
ESAT-6 |
177±32 |
TB10.4 |
209±28 |
空白对照(无抗原) |
24±7 |
结果显示,经过此方案免疫后,产生了针对Ag85B和ESAT-6的分泌IFN-γ的细胞,这意味着此方案的细胞免疫强度及免疫原性较好,且综合了多种抗原,作用更广泛,对结核保护力将起到作用。
对于本领域技术人员显而易见的是,在不背离本发明的范围和精神的前提下,可对其进行各种修改和变动,上述各项技术特征之间的组合及根据上述内容所完成的其它技术方案改变均属本发明范围。