CN102690832A - 一种提高第10家族木聚糖酶最适温度的方法 - Google Patents

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邬敏辰
汪俊卿
李剑芳
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Abstract

本发明的目的是提供一种第10家族木聚糖酶Aus Xyn10A热稳定性改造及重组突变酶的高效表达和纯化方法。依据Aus Xyn10A(源于Aspergillus usamii E001)与耐热木聚糖酶(源于Thermotoga maritima)蛋白质序列比对结果,运用基因工程的方法将耐热酶的C末端序列融合到Aus Xyn10A的C末端。获得的突变酶命名为Aus Xyn10A’。实验结果表明突变后该酶的最适温度有了明显的提高,作为一种耐热型的酶制剂,该木聚糖酶具有较大的工业化生产潜力和经济价值。

Description

一种提高第10家族木聚糖酶最适温度的方法
技术领域
本发明涉及第10家族木聚糖酶改造及突变酶的高效表达方法,属于生物工程技术领域。
背景技术
随着人口的不断增长和资源的进一步消耗,可再生资源的开发利用已经成为全世界共同关注的问题。木聚糖是半纤维素的重要组分,在植物细胞壁中的含量仅次于纤维素,约占细胞干重的三分之一左右。木聚糖是一种杂合多聚分子,主链由多个吡喃木糖基通过木糖苷键相连。根据糖苷键的类型可将木聚糖可分为两种,即β-1,4-木聚糖和β-1,3-木聚糖。前者存在于陆生植物细胞壁中,而后者主要存在于海洋藻类的细胞壁中。根据菌株来源的不同,木聚糖的侧链可以被多种取代基取代。
木聚糖酶是可将木聚糖降解成低聚木糖和木糖的一类酶的总称。狭义上木聚糖酶特指β-1,4-内切木聚糖酶(endo-β-1,4-xylanase,EC 3.2.1.8)。β-1,4-内切木聚糖酶可以从主链内部作用于木糖苷键,是木聚糖降解过程中最重要的酶之一。目前所克隆的木聚糖酶大多属于F/10和G/11家族,第10家族木聚糖酶与第11家族相比具有底物特异性低、水解速度快、水解产物聚合度低,具有较大大多研究和应用价值。由于目前所克隆到的木聚糖酶大多具有热稳定性低的特点,较难满足工业上的应用需求,因此寻找有效途径和手段,提高木聚糖酶在高温环境中的稳定性及催化活性已成为国内木聚糖酶工业的当务之急。
发明内容
本发明的目的是提供一种第10家族木聚糖酶Aus Xyn10A热稳定性改造及重组突变酶的高效表达和纯化方法。
为实现上述目的,本发明的技术方案提供了一种提高第10家族木聚糖酶最适温度的方法,其特征在于,依据Aus Xyn10A(源于Aspergillus usamii E001)与耐热木聚糖酶(源于Thermotogamaritima)蛋白质序列比对结果,运用基因工程的方法将耐热酶的C末端序列融合到AusXyn10A的C末端。获得的突变酶命名为Aus Xyn10A’,其对应的基因和蛋白质序列分别为SEQID NO:1和SEQ IDNO:2。
所述的木聚糖酶的活性测定方法:
于25mL具塞试管A和B中,各加入用pH 4.6、柠檬酸-Na2HPO4缓冲液配制的质量浓度为0.5%的桦木木聚糖(Sigma,USA)溶液2.4mL,50℃预热10min,在A管中加入0.1mL适当稀释的酶液,50℃准确反应15min;立即各加入2.5mL 3′,5′-二硝基水杨酸(DNS)试剂,在B管中再补加0.1mL酶液,A和B管均煮沸7min;冷却后各加去离子水5mL,摇匀;540nm处以B管为空白对照测定A管吸光度值,并从木糖标准曲线上查出相应的还原糖(以木糖计)含量并折算成酶活性单位。酶活性单位定义:在本测定条件下,以每分钟产生1μmol还原糖所需的酶量定义为1个木聚糖酶活性单位(IU)。
所述突变酶的构建和表达方法:
(1)突变酶的构建:依据Aus Xyn10A与来源于Thermotoga maritima的耐热木聚糖酶蛋白质序列比对结果选择KEVLEKKIEER(SEQ ID NO:3)作为拟替换序列,并依此设计两条突变引物XynCHR1和XynCHR2。
XynCHR1:5′-TTCTTCAATCTTCTTTTCCAGAACTTCCTTGATAGCAGTGTATGCAG-3′
XynCHR2:5′-GCGGCCGCCTATCTTTCTTCAATCTTCTTTTCC-3′
提取包含Aus Xyn10A基因的T载体(pUCm-T-Aus xyn10A),依此为模板使用Aus Xyn10A基因的成熟肽引物Xyn10A-F1(5′-GAATTCCAGGCTTCAGTGAGTATTGA-3′)和引物XynCHR1进行第一轮PCR,其后依第一轮PCR产物为模板,使用引物Xyn10A-F1和引物XynCHR2进行第二轮PCR。将两轮PCR扩增产物用1%琼脂糖凝胶电泳分析,割胶回收目的条带并与pUCm-T载体连接(pUCm-T-Aus xyn10A’),转化JM109,经酶切鉴定正确后送上海生工测序,得到突变酶的成熟肽基因序列。
(2)含编码Aus Xyn10A’成熟肽基因的表达质粒的构建:
使用EcoR I和Not I对割胶回收的目的基因与pPIC9K分别进行双酶切,割胶回收的酶切产物在T4DNA连接酶的作用下进行连接,得到重组质粒pPIC9K-Aus xyn10A’(图1),并对重组表达质粒进行序列测定。
(3)GS115/Aus xyn10A’重组子的构建、表达、产物纯化及活性测定:用Sal I对pPIC9K-Aus xyn10A’进行线性化,按照毕赤酵母表达手册进行电转、筛选,得到高拷贝的毕赤酵母重组子GS115/Aus xyn10A’;按照手册上的标准流程进行诱导表达,用DNS法测定重组木聚糖酶活性;发酵液经冷冻离心、超滤、离子交换层析和凝胶过滤层析,获得了电泳纯的重组木聚糖酶。
本发明的有益效果:本发明的目的是提供一种第10家族木聚糖酶Aus Xyn10A改造及重组突变酶的高效表达和纯化方法。依据Aus Xyn10A与来源于Thermotoga maritima的耐热木聚糖酶蛋白质序列比对结果,运用基因工程的方法将耐热酶的C末端序列融合到Aus Xyn10A的C末端。获得的突变酶命名为Aus Xyn10A’。Aus Xyn10A’较原酶最适温度有了一定幅度的调高,具有一定的工业化生产和应用潜力以及经济价值,也为其它木聚糖酶的研究奠定了基础。
附图说明
图1:重组质粒pPIC9K-Aus xyn10A’示意图
具体实施方式
以下结合具体实施例,进一步阐述本发明的操作方法。但是这些实施例仅用于详细说明本发明,而不用于限制本发明的范围。
实施例1突变酶的构建
提取包含Aus Xyn10A基因的T载体(pUCm-T-Aus xyn10A),依此为模板使用Aus Xyn10A基因的成熟肽引物Xyn10A-F1(5′-GAATTCCAGGCTTCAGTGAGTATTGA-3′)和引物XynCHR1进行第一轮PCR,其反应条件为:94℃5min;2个循环,94℃30s,45℃30s,72℃70s;28个循环94℃30s,55℃30s,72℃70s;72℃10min;10℃保存;其后依第一轮PCR产物为模板,使用引物Xyn10A-F1和引物XynCHR2进行第二轮PCR,其反应条件为:94℃5min;2个循环,94℃30s,45℃30s,72℃70s;28个循环94℃30s,55℃30s,72℃70s;72℃10min;10℃保存。将两轮PCR扩增产物用1%琼脂糖凝胶电泳分析,割胶回收目的条带并与pUCm-T载体连接(pUCm-T-Aus xyn10A’),转化JM109,经酶切鉴定正确后送上海生工测序,得到突变酶的成熟肽基因序列。
实施例2含编码Aus Xyn10A’成熟肽基因的表达质粒的构建
使用EcoR I和Not I对割胶回收的目的基因与pPIC9K分别进行双酶切,酶切时间为4h,割胶回收的酶切产物在T4DNA连接酶的作用下连接过夜(>12h),得到重组质粒pPIC9K-Ausxyn10A’(图1),并对重组表达质粒进行序列测定。
实施例3GS115/Aus xyn10A’的构建、表达、产物纯化及活性测定
用Sal I对pPIC9K-Aus xyn10A’进行线性化,按照毕赤酵母表达手册进行电转化、筛选,得到高拷贝的毕赤酵母重组子GS115/Aus xyn10A’。该工程菌用0.5%甲醇诱导72h,DNS法测得发酵液中重组木聚糖酶活性达24IU/mL。离心上清液为重组木聚糖酶粗酶液,经截留分子量为10kDa的超滤膜浓缩,再经DEAE-Sepharose Fast Flow离子交换层析和Sephadex G-75凝胶过滤层析纯化,纯化后经SDS-PAGE检测为单一条带,并显示重组木聚糖酶分子量为42kDa。该重组木聚糖酶最适作用温度50℃,较原酶提高了5℃。
Figure ISA00000728440500011
Figure ISA00000728440500021
Figure ISA00000728440500031

Claims (3)

1.一种改造后的源自宇佐美曲霉(Aspergillus usamii)E001、归属于糖苷水解酶第10家族的木聚糖酶基因Aus xyn10A’,其对应的基因和蛋白质序列分别为SEQ ID NO:1和SEQ ID NO:2。
2.突变酶的构建方法:
依据Aus Xyn10A与来源于Thermotoga maritima的耐热木聚糖酶蛋白质序列比对结果选择KEVLEKKIEER(SEQ ID NO:3)作为拟替换序列,并依此设计两条突变引物XynCHR1和XynCHR2:
XynCHR1:5′-TTCTTCAATCTTCTTTTCCAGAACTTCCTTGATAGCAGTGTATGCAG-3′
XynCHR2:5′-GCGGCCGCCTATCTTTCTTCAATCTTCTTTTCC-3′
提取包含Aus Xyn10A基因的T载体(pUCm-T-Aus xyn10A),依此为模板使用Aus Xyn10A基因的成熟肽引物Xyn10A-F1(5′-GAATTCCAGGCTTCAGTGAGTATTGA-3′)和引物XynCHR1进行第一轮PCR,其后依第一轮PCR产物为模板,使用引物Xyn10A-F1和引物XynCHR2进行第二轮PCR;将两轮PCR扩增产物用1%琼脂糖凝胶电泳分析,割胶回收目的条带并与pUCm-T载体连接(pUCm-T-Aus xyn10A’),转化JM109,经酶切鉴定正确后送上海生工测序,得到突变酶的成熟肽基因序列。
3.Aus Xyn10A’表达质粒的构建、表达及纯化:
使用EcoR I和Not I对割胶回收的目的基因与pPIC9K分别进行双酶切,割胶回收的酶切产物在T4DNA连接酶的作用下进行连接,得到重组质粒pPIC9K-Aus xyn10A’,并对重组表达质粒进行序列测定;
用Sal I对pPIC9K-Aus xyn10A’进行线性化,按照毕赤酵母表达手册进行电转、筛选,得到高拷贝的毕赤酵母重组子GS115/Aus xyn10A’;按照手册上的标准流程进行诱导表达,用DNS法测定重组木聚糖酶活性;发酵液经冷冻离心、超滤、离子交换层析和凝胶过滤层析,获得了电泳纯的重组木聚糖酶。
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