CN102539776A - 一种肠道病毒71型特异性抗体的酶联免疫吸附检测方法 - Google Patents
一种肠道病毒71型特异性抗体的酶联免疫吸附检测方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN102539776A CN102539776A CN2010105943901A CN201010594390A CN102539776A CN 102539776 A CN102539776 A CN 102539776A CN 2010105943901 A CN2010105943901 A CN 2010105943901A CN 201010594390 A CN201010594390 A CN 201010594390A CN 102539776 A CN102539776 A CN 102539776A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- hole
- enzyme
- plate
- elisa plate
- microlitres
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
本发明涉及生物技术领域,特别是用于血清中肠道病毒71型(Enterovirus 71,简称EV71)特异性抗体的酶联免疫吸附检测方法。通过间接酶联免疫吸附法(ELISA)的方法,将制备的EV71病毒抗原固定到酶标板上,通过抗原抗体的特异性吸附来实现抗体的检测。由于包被的抗原包含EV71病毒的特异性抗原表位,因而能用来检测出血清中EV71病毒的特异性抗体,从而减少血清检测的假阳性。本发明适合对大批量动物或人体血清标本进行检测,适用于大规模的血清学和流行病学调查。
Description
技术领域
本发明属于生物技术领域,特别是用于肠道病毒71型(Enterovirus71,简称EV71)特异性抗体的定性或定量检测,通过酶联免疫吸附测定肠道病毒71型抗体的检测方法。
背景技术
肠道病毒引起的传染病,多发生于5岁以下儿童,可引起手、足、口腔等部位的疱疹。引起手足口疾病的主要致病原是肠道病毒71型和柯萨奇病毒A16。大量的流行病学研究表明,肠道病毒71型病毒的感染多发生于5岁以下的婴幼儿,其感染可能引起多种与神经系统相关的严重疾病,包括致死脑炎、无菌性脑膜炎和急性麻痹等。因而,对EV71病毒的特异性诊断具有非常重大的临床意义。
EV71病毒属于小核糖核酸(RNA)病毒科肠道病毒属的成员,其病毒颗粒为二十面体立体对称的球形结构,无包膜和突起,直径大约在24~30nm。病毒粒子的衣壳由60个亚单位构成,后者由4种衣壳蛋白(VP1-VP4)拼装成五聚体样,抗原决定簇基本上位于VP1-VP3上。病毒衣壳与病毒毒力有关,而由297个氨基酸组成的VP1结构蛋白,其大部分结构暴露于病毒表面,含有EV71病毒的重要抗原表位,可以诱发机体产生特异性的EV71中和抗体。因此,可以利用这些特异性的抗原表位来捕获机体中的特异性抗体,从而实现特异性抗体的检测。
目前,针对EV71病毒的特异性检测方法包括病毒分离、核酸分子生物学检测和血清学检测。病毒分离常用的细胞系有Vero、RD、Hep-2细胞。目前发现Vero细胞分离病毒的阳性率最高。用于病毒分离的样本有咽拭子、肛拭或粪便、脑脊液、血清及囊泡液。有研究显示病毒分离阳性率最高的样本是咽拭子,可达90%-95%;其次是肛拭样本,约为40%-50%;囊泡液也有较高的阳性率,而脑脊液的病毒分离率很低。病毒分离的缺点是繁杂费时,无法满足病毒流行期间同时处理大量样本的需要。
核酸分子生物学检测方法具有较高的敏感度和特异性,包括RT-PCR(反转录聚合酶链反应)和荧光定量RT-PCR检测方法。与其他肠道病毒一样,PCR检测主要针对EV71的VP1区保守的核苷酸序列设计引物和探针。采用半巢式RT-PCR直接从样本中检测EV71,检出率可达53%。荧光定量RT-PCR方法特异度达100%,可检测5个拷贝病毒量,可用于直接检测样本。与普通RT-PCR相比,由于其污染可能性小,手上操作时间少,为EV71的快速检测提供了有效手段。但是该方法操作较为复杂,对操作人员的要求较高,且标本中的杂质可能引起聚合酶的失活等问题,在实际的应用过程中存在一些问题,无法满足病毒流行期间同时处理大量样本的需要。
血清学检测包括中和试验和ELISA检测方法。其中最常用方法目前仍是中和实验,但该方法的灵敏度和特异性较差。而且该方法在检测过程中需要进行细胞培养,从而导致试验周期变长,往往需要1个月左右的时间才能得到结果,在实际的应用过程中存在一定的局限性。与血清中和试验相比,运用ELISA方法对EV71进行特异性的检测,具有较好的灵敏度和特异性其方法简便、快速,具有很好的应用前景。
发明内容
本发明的目的是利用EV71特异性的抗原作为固定包被抗原,建立一种特异性检测肠道病毒71型抗体的方法,利用间接酶联免疫吸附法(ELISA),提供一种特异性好、灵敏度高、使用方便、检测快速的肠道病毒71型抗体的检测方法,可以用于血清中肠道病毒71型抗体检测及效价测定,能适用于大规模的血清学和流行病学调查。
本发明肠道病毒71型(Enterovirus 71,简称EV71)特异性抗体的酶联免疫吸附检测方法,通过间接酶联免疫吸附法(ELISA)的方法,将制备的EV71病毒抗原固定到酶标板上,通过抗原抗体的特异性吸附来实现抗体的检测。由于包被的抗原包含EV71病毒的特异性抗原表位,因而能用来检测出血清中EV71病毒的特异性抗体,从而减少血清检测的假阳性。本发明适合对大批量动物或人体血清标本进行检测,适用于大规模的血清学和流行病学调查。
本发明肠道病毒71型特异性抗体的酶联免疫吸附检测方法,将纯化的肠道病毒71型(EV71)病毒颗粒,合成的病毒样颗粒(VLP)抗原,合成的含病毒特异性抗原表位的多肽固定到酶标板上,通过间接酶联免疫吸附的方法进行测定,其中合成的含病毒特异性抗原表位的多肽主要含有EV71病毒的162-177氨基酸位点、208-222氨基酸位点以及240-260氨基酸位点。
本发明采用间接酶联免疫吸附法,通过固定EV71抗原-待测血清-酶标抗体这样一个模型(见图1)来实现。即将EV71抗原固定在酶标板孔上,随后加入待测血清,用相应的酶标抗体指示显色。
本发明提供一种肠道病毒71型抗体的检测方法的技术方案,具体步骤如下:
A.酶标板的预制
A.1EV71抗原的固定:用碳酸盐缓冲液(pH9.6)将EV71病毒特异性抗原稀释至1~5微克/毫升,按50~100微升/孔的量,加入酶标板的孔中,放于4℃孵育过夜,用磷酸盐缓冲液(PBS)洗液洗板3~5次;
A.2酶标板的封闭:用封闭液按200微升/孔的量加入步骤A.1的酶标板孔中,37℃孵育1~2小时,PBS洗液洗板3~5次;
A.3加保护剂:用5%蔗糖按100~200微升/孔的量,加入步骤A.2酶标板的孔中,37℃孵育0.5~1小时,拍干,4度储存待用;
B.用含有1%牛血清白蛋白(BSA)的PBS将血清作不同的稀释度,按50~100微升/孔的量,加入步骤A.3酶标板的孔中,同时设立阴性孔,阳性孔和空白孔,37℃孵育1~2小时,PBS洗液洗板3~5次;
C.按50~100微升/孔的量,在步骤B的酶标板的各孔中,加入酶标抗体,放入37℃孵育0.5~1小时,PBS洗液洗板3~5次;
D.按50~100微升/孔的量,在步骤C的酶标板的各孔中,加入邻苯二胺(OPD)显色液,放入湿盒中,于37℃保温10~20分钟;
E.按50~100微升/孔的量,在步骤D的酶标板的各孔中,加入终止液,而后置于酶标仪上,在492nm波长下,用空白孔调零后检测吸光度OD值,即得到检测结果。
上述A.1步骤所述的EV71病毒特异性抗原为本公司自制。
上述A.1步骤所述EV71病毒特异性抗原将纯化的肠道病毒71型病毒颗粒,合成的病毒样颗粒抗原,合成的含病毒特异性抗原表位的多肽作为固定抗原。
上述A.3步骤所述的添加5%蔗糖作为稳定保护剂。
上述C步骤所述的酶标抗体为市购。
所述洗板为用磷酸盐缓冲液洗液在洗板机上洗板或者手工洗板。
所述磷酸盐缓冲液、磷酸盐缓冲液洗液、碳酸盐缓冲液、邻苯二胺显色液、终止液、封闭液均为现有技术的常规用液。
该方法用于血清中肠道病毒71型特异性抗体的定性或定量检测,减少血清检测的假阳性。
附图说明
图1为本发明实验模型。
图2为小鼠血清中肠道病毒71型抗体测定结果。
图3为人体肠道病毒71型阴、阳性血清标本中特异性抗体测定结果比较。
图4为不同年龄段正常人群血清的EV71抗体阳性率结果。
本发明具有以下优点和效果:根据上述方案,采用EV71病毒特异性抗原作为固定相,来检测血清样本中的EV71特异性抗体水平,从而判断机体针对EV71的免疫状况,该方法有助于提高抗体检测的特异性和灵敏度,减少假阳性的产生。本发明操作简单,试验周期短,全程实验不超过2小时,适用于大批量样本筛查,便于进行大规模的血清学和流行病学调查。
具体实施方案
实施例1
固定纯化EV71病毒抗原检测小鼠血清中的EV71抗体效价
1)用碳酸盐缓冲液(pH9.6)将纯化的EV71病毒抗原稀释至2微克/毫升,按100微升/孔的量加入酶标板孔中,置于4℃孵育过夜,PBS洗液洗板3次;
2)用封闭液按200微升/孔的量加入酶标板孔中,37℃孵育1小时,PBS洗液洗板3次;
3)用5%蔗糖按100微升/孔的量,加入酶标板孔中,37℃孵育0.5~1小时,拍干,4度储存待用;
4)用0.9%生理盐水将待测血清稀释10倍,再用含有1%BSA的PBS将血清作一系列的稀释度:1∶20、1∶40、1∶80、1∶160、1∶320、1∶640、1∶1280、1∶2560,按100微升/孔的量,加入预制备的酶标板的孔中,37℃孵1小时,PBS洗液洗板4次,同时设立阴性对照孔2个,和空白孔1个;
5)按100微升/孔的量,在步骤4)所述的酶标板的各孔中,加入酶标抗体,放入37℃孵育0.5小时,PBS洗液洗板3~5次;
6)按100微升/孔的量,在步骤5)所述的酶标板的各孔中,加入邻苯二胺显色液,放入湿盒中,于37℃保温15分钟;
7)按50微升/孔的量,在步骤6)所述的酶标板的各孔中,加入终止液,而后置于酶标仪上,在492nm波长下,用空白孔调零后检测吸光度A值,即得到检测结果(结果见表1和图2)。
8)判定结果:
阴性对照空的平均值为:0.06
故域值(Cutoff)值=0.06×2.1=0.126
按照样品的A值≥域值(Cutoff)值,该样品判定为阳性样品;样品的A值<Cutoff值,该样品判为阴性。则本样品1∶20~1∶1280稀释度均为阳性,1∶2560为阴性,因此,该血清中EV71抗体的效价为1∶1280。
所用溶液如下:
1、包被缓冲液(0.05M碳酸盐缓冲液,PH9.6):碳酸钠1.59克,碳酸氢钠2.93克,加蒸馏水至1000毫升。
2、磷酸盐缓冲液(PBS,PH7.4):磷酸二氢钾0.2克,磷酸氢二钠2.9克,氯化钠8.0克,氯化钾0.2克,Tween-200.5毫升,加蒸馏水至1000毫升。
3、PBS洗液:1000毫升磷酸盐缓冲液中,加入0.5毫升吐温20。
4、封闭液:100毫升PBS洗液中加入1克牛血清白蛋白,溶解混匀。
5、OPD显色液:称取20mg邻苯二胺,溶于50毫升0.1摩尔浓度/升pH 5.0的柠檬酸钠-磷酸盐缓冲液,再加入20微升双氧水,混匀后避光保存。
6、终止液(2N硫酸):取浓硫酸10毫升,缓慢加入80毫升水中,冷却待用。
表1、小鼠血清中肠道病毒71型抗体测定结果(A492值)
稀释倍数 | 阳性 | 阴性 | 阴性 | 空白 |
20x | 1.686 | 0.061 | 0.059 | 0.003 |
40x | 1.617 | |||
80x | 1.279 | |||
160x | 0.858 | |||
320x | 0.517 | |||
640x | 0.286 | |||
1280x | 0.174 | |||
2560x | 0.102 |
实施例2
固定纯化EV71病毒抗原检测小鼠血清中的EV71抗体阳性率
1)用碳酸盐缓冲液(pH9.6)将纯化的EV71病毒抗原稀释至3微克/毫升,按100微升/孔的量加入酶标板孔中,置于4℃孵育过夜,PBS洗液洗板3次;
2)用封闭液按200微升/孔的量加入酶标板孔中,37℃孵育1小时,PBS洗液洗板3次;
3)用5%蔗糖按100微升/孔的量,加入酶标板孔中,37℃孵育0.5~1小时,拍干,4度储存待用
4)将75份小鼠阳性血清分别稀释100倍,按100微升/孔的量,加入预制备的酶标板的孔中,37℃孵育1小时,PBS洗液洗板4次,同时设立阴性对照孔2个,和空白孔1个;
5)按100微升/孔的量,在步骤4)所述的酶标板的各孔中,加入酶标抗体,放入37℃孵育0.5小时,PBS洗液洗板3~5次;
6)按100微升/孔的量,在步骤5)所述的酶标板的各孔中,加入邻苯二胺显色液,放入湿盒中,于37℃保温15分钟;
7)按50微升/孔的量,在步骤6)所述的酶标板的各孔中,加入终止液,而后置于酶标仪上,在492nm波长下,用空白孔调零后检测吸光度A值,即得到检测结果(结果见表2)。
8)判定结果:
阴性对照空的平均值为:0.027,小于0.05,应按0.05计算,
故Cutoff值=0.05×2.1=0.105
按照样品的A值≥Cutoff值,该样品判定为阳性样品;样品的A值<Cutoff值,该样品判为阴性。
表2、小鼠血清检测结果
阳性结果 | 阴性结果 | 阳性率 | |
血样例数 | 70 | 5 | 93.3% |
实施例3
固定病毒特异性抗原表位多肽检测小鼠血清中的EV71抗体阳性率
1)用碳酸盐缓冲液(pH9.6)将纯化的EV71病毒抗原稀释至3微克/毫升,按100微升/孔的量加入酶标板孔中,置于4℃孵育过夜,PBS洗液洗板3次;
2)用封闭液按200微升/孔的量加入酶标板孔中,37℃孵育1小时,PBS洗液洗板3次;
3)用5%蔗糖按100微升/孔的量,加入酶标板孔中,37℃孵育0.5~1小时,拍干,4度储存待用
4)将75份接种EV71病毒的小鼠血清分别稀释50倍,按100微升/孔的量,加入预制备的酶标板的孔中,37℃孵育1小时,PBS洗液洗板4次,同时设立阴性对照孔2个,和空白孔1个;
5)按100微升/孔的量,在步骤4)所述的酶标板的各孔中,加入酶标抗体,放入37℃孵育0.5小时,PBS洗液洗板3~5次;
6)按100微升/孔的量,在步骤5)所述的酶标板的各孔中,加入邻苯二胺显色液,放入湿盒中,于37℃保温15分钟;
7)按50微升/孔的量,在步骤6)所述的酶标板的各孔中,加入终止液,而后置于酶标仪上,在492nm波长下,用空白孔调零后检测吸光度A值,即得到检测结果(结果见表3)。
8)判定结果:
阴性对照空的平均值为:0.035,小于0.05,应按0.05计算
故Cutoff值=0.05×2.1=0.105
按照样品的A值≥Cutoff值,该样品判定为阳性样品;样品的A值<Cutoff值,该样品判为阴性。
表3、小鼠血清检测结果
阳性结果 | 阴性结果 | 阳性率 | |
血样例数 | 71 | 4 | 94.7% |
实施例4
固定病毒特异性抗原表位多肽检测小鼠血清中的EV71抗体
1)用碳酸盐缓冲液(pH9.6)将病毒特异性抗原表位多肽稀释至1微克/毫升,按100微升/孔的量加入酶标板孔中,置于4℃孵育过夜,PBS洗液洗板3次;
2)用封闭液按200微升/孔的量加入酶标板孔中,37℃孵育1小时,PBS洗液洗板3次;
3)用5%蔗糖按100微升/孔的量,加入酶标板孔中,37℃孵育0.5~1小时,拍干,4度储存待用
4)用含有1%BSA的PBS将四份小鼠阳性血清和两份小鼠阳性血清作一系列的稀释度:1∶4、1∶8、1∶16、1∶32,按100微升/孔的量,加入预制备的酶标板的孔中,37℃孵育1小时,PBS洗液洗板4次,同时设立阴性对照孔2个,和空白孔1个;
5)按100微升/孔的量,在步骤4)所述的酶标板的各孔中,加入酶标抗体,放入37℃孵育0.5小时,PBS洗液洗板3~5次;
6)按100微升/孔的量,在步骤5)所述的酶标板的各孔中,加入邻苯二胺显色液,放入湿盒中,于37℃保温15分钟;
7)按50微升/孔的量,在步骤6)所述的酶标板的各孔中,加入终止液,而后置于酶标仪上,在492nm波长下,用空白孔调零后检测吸光度A值,即得到检测结果(结果见表4)。
表4、小鼠血清中肠道病毒71型抗体测定结果(OD492值)
稀释倍数 | 阳性1 | 阳性2 | 阳性3 | 阳性4 | 阴性1 | 阴性2 |
4 | 2.179 | 2.207 | 2.578 | 1.37 | 0.109 | 0.108 |
8 | 1.717 | 1.816 | 2.445 | 0.875 | 0.084 | 0.071 |
16 | 1.348 | 1.448 | 2.248 | 0.581 | 0.051 | 0.051 |
32 | 0.981 | 1.126 | 2.144 | 0.351 | 0.04 | 0.042 |
实施例5
固定病毒特异性抗原表位多肽检测人体血清中肠道病毒71型抗体
1)用碳酸盐缓冲液(pH9.6)将病毒特异性抗原表位多肽稀释至1微克/毫升,按100微升/孔的量加入酶标板孔中,置于4℃孵育过夜,PBS洗液洗板3次;
2)用封闭液按200微升/孔的量加入酶标板孔中,37℃孵育1小时,PBS洗液洗板3次;
3)用5%蔗糖按100微升/孔的量,加入酶标板孔中,37℃孵育0.5~1小时,拍干,4度储存待用
4)用含有1%BSA的PBS将分别对两份EV71人体阳性血清和两份人体阴性血清作一系列的稀释度:1∶10、1∶20、1∶40、1∶80、1∶160、1∶320,按100微升/孔的量,加入步骤预制备的酶标板的孔中,37℃孵育1小时,PBS洗液洗板4次,同时设立空白孔1个;
5)按100微升/孔的量,在步骤4)所述的酶标板的各孔中,加入酶标抗体,放入37℃孵育0.5小时,PBS洗液洗板3~5次;
6)按100微升/孔的量,在步骤5)所述的酶标板的各孔中,加入邻苯二胺显色液,放入湿盒中,于37℃保温15分钟;
7)按50微升/孔的量,在步骤6)所述的酶标板的各孔中,加入终止液,而后置于酶标仪上,在492nm波长下,用空白孔调零后检测吸光度OD值,即得到检测结果(结果见表5和图3)。
表5、人体血清中肠道病毒71型抗体测定结果(OD492值)
稀释倍数 | 阳性1 | 阳性2 | 阴性1 | 阴性2 | 空白 |
10 | 1.113 | 1.135 | 0.304 | 0.316 | -0.003 |
20 | 1.019 | 1.081 | 0.222 | 0.244 | |
40 | 0.863 | 0.928 | 0.176 | 0.205 | |
80 | 0.688 | 0.746 | 0.137 | 0.168 | |
160 | 0.489 | 0.584 | 0.103 | 0.132 | |
320 | 0.358 | 0.429 | 0.081 | 0.1 |
实施例6
固定病毒特异性抗原表位多肽检测不同年龄人群血清EV71抗体水平
运用本发明对170份不同年龄组的正常人群血清中的EV71抗体阳性水平进行检测,将血清样平用稀释液稀释50倍,以阴性参照的2.1倍作为域值(Cutoff值),大于Cutoff值得血样判为阳性,反之则为阴性。结果见表6和图4。从该结果可以看出,随着年龄的增长,人群中EV71抗体的阳性率逐渐增加,说明人群中EV71病毒的感染随着年龄的增长而增加,这一结果与流行病学规律相符。
表6、不同年龄段正常人群血清的EV71抗体检测结果
Claims (7)
1.一种肠道病毒71型特异性抗体的酶联免疫吸附检测方法,其特征在于将纯化的肠道病毒71型病毒颗粒,合成的病毒样颗粒抗原,合成的含病毒特异性抗原表位的多肽固定到酶标板上,通过间接酶联免疫吸附的方法进行测定。
2.根据权利要求1所述的肠道病毒71型特异性抗体的酶联免疫吸附检测方法,其特征在于具体步骤如下:
A.酶标板的预制
A.1EV71病毒抗原的固定:用碳酸盐缓冲液(pH9.6)将纯化的EV71病毒抗原稀释至1~5微克/毫升,按50~100微升/孔的量,加入酶标板的孔中,放于4℃孵育过夜,用磷酸盐缓冲液(PBS)洗液洗板3~5次;
A.2酶标板的封闭:用封闭液按200微升/孔的量加入步骤A.1的酶标板孔中,37℃孵育1~2小时,PBS洗液洗板3~5次;
A.3加保护剂:用5%蔗糖按100~200微升/孔的量,加入步骤A.2酶标板的孔中,37℃孵育0.5~1小时,拍干,4度储存待用;
B.用含有1%牛血清白蛋白(BSA)的PBS将血清作不同的稀释度,按50~100微升/孔的量,加入步骤A.3酶标板的孔中,同时设立阴性对照,阳性对照和空白孔,37℃孵育1~2小时,PBS洗液洗板3~5次;
C.按50~100微升/孔的量,在步骤B的酶标板的各孔中,加入酶标抗体,放入37℃孵育0.5~1小时,PBS洗液洗板3~5次;
D.按50~100微升/孔的量,在步骤C的酶标板的各孔中,加入邻苯二胺显色液,放入湿盒中,于37℃保温10~20分钟;
E.按50~100微升/孔的量,在步骤D的酶标板的各孔中,加入终止液,而后置于酶标仪上,在492nm波长下,用空白孔调零后检测吸光度OD值,即得到检测结果。
3.根据权利要求1所述的肠道病毒71型特异性抗体的酶联免疫吸附检测方法,其特征在于含有病毒特异性抗原表位的多肽抗原用作固定抗原。
4.根据权利要求2所述的肠道病毒71型特异性抗体的酶联免疫吸附检测方法,其特征在于A.3步骤所述的添加5%蔗糖作为稳定保护剂。
5.根据权利要求2所述的肠道病毒71型特异性抗体的酶联免疫吸附检测方法,其特征在于洗板用磷酸盐缓冲液洗液在洗板机上洗板或手工洗板。
6.根据权利要求2所述的肠道病毒71型特异性抗体的酶联免疫吸附检测方法,其特征在于磷酸盐缓冲液、磷酸盐缓冲液洗液、碳酸盐缓冲液、终止液、邻苯二胺显色液、封闭液为常规用液。
7.根据权利要求1所述的肠道病毒71型特异性抗体的酶联免疫吸附检测方法,其特征在于用于血清中肠道病毒71型特异性抗体的定性或定量检测。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN2010105943901A CN102539776A (zh) | 2010-12-10 | 2010-12-10 | 一种肠道病毒71型特异性抗体的酶联免疫吸附检测方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN2010105943901A CN102539776A (zh) | 2010-12-10 | 2010-12-10 | 一种肠道病毒71型特异性抗体的酶联免疫吸附检测方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN102539776A true CN102539776A (zh) | 2012-07-04 |
Family
ID=46347173
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN2010105943901A Pending CN102539776A (zh) | 2010-12-10 | 2010-12-10 | 一种肠道病毒71型特异性抗体的酶联免疫吸附检测方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN102539776A (zh) |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104447959A (zh) * | 2014-12-31 | 2015-03-25 | 赵亚萍 | 多肽、包含该多肽的检测器件和包含该器件的检测试剂盒 |
CN104569428A (zh) * | 2014-12-30 | 2015-04-29 | 浙江普康生物技术股份有限公司 | 一种肠道病毒71型灭活疫苗抗原酶联免疫检测试剂盒 |
CN104725479A (zh) * | 2015-01-27 | 2015-06-24 | 马东礼 | 一种多肽、包含该多肽的检测器件以及检测试剂盒 |
CN104945477A (zh) * | 2014-12-31 | 2015-09-30 | 苏州九龙医院有限公司 | 多肽、包含该多肽的检测器件和包含该器件的检测试剂盒 |
CN105785026A (zh) * | 2014-12-24 | 2016-07-20 | 中国科学院苏州纳米技术与纳米仿生研究所 | 用于检测肠道病毒71型IgM抗体的试剂盒及检测方法 |
-
2010
- 2010-12-10 CN CN2010105943901A patent/CN102539776A/zh active Pending
Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105785026A (zh) * | 2014-12-24 | 2016-07-20 | 中国科学院苏州纳米技术与纳米仿生研究所 | 用于检测肠道病毒71型IgM抗体的试剂盒及检测方法 |
CN105785026B (zh) * | 2014-12-24 | 2017-07-18 | 中国科学院苏州纳米技术与纳米仿生研究所 | 用于检测肠道病毒71型IgM抗体的试剂盒及检测方法 |
CN104569428A (zh) * | 2014-12-30 | 2015-04-29 | 浙江普康生物技术股份有限公司 | 一种肠道病毒71型灭活疫苗抗原酶联免疫检测试剂盒 |
CN104447959A (zh) * | 2014-12-31 | 2015-03-25 | 赵亚萍 | 多肽、包含该多肽的检测器件和包含该器件的检测试剂盒 |
CN104945477A (zh) * | 2014-12-31 | 2015-09-30 | 苏州九龙医院有限公司 | 多肽、包含该多肽的检测器件和包含该器件的检测试剂盒 |
CN104725479A (zh) * | 2015-01-27 | 2015-06-24 | 马东礼 | 一种多肽、包含该多肽的检测器件以及检测试剂盒 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Rowe et al. | Detection of antibody to avian influenza A (H5N1) virus in human serum by using a combination of serologic assays | |
Ma et al. | COVID-19 diagnosis and study of serum SARS-CoV-2 specific IgA, IgM and IgG by chemiluminescence immunoanalysis | |
CN103450350B (zh) | 人感染h7n9禽流感表位抗原及其在免疫检测试剂中的用途 | |
Zhang et al. | Development and evaluation of a DAS-ELISA for rapid detection of avian influenza viruses | |
Watson et al. | A multiplexed immunoassay for detection of antibodies against avian influenza virus | |
CN102539776A (zh) | 一种肠道病毒71型特异性抗体的酶联免疫吸附检测方法 | |
CN102183643A (zh) | 鉴别诊断羊痘野毒感染的试剂盒及制备与检测方法 | |
KR102351653B1 (ko) | 사스 코로나바이러스 2 스파이크 단백질과 결합하는 수용체와 항체를 포함하는 사스 코로나바이러스 2 진단 키트 | |
EP4113121A1 (en) | Antigen for 2019 novel coronavirus and detection use thereof | |
CN106872695B (zh) | 一种h7亚型禽流感病毒血凝素抗体间接elisa检测试剂盒 | |
CN103487582A (zh) | 猪繁殖与呼吸综合征病毒抗体竞争 AlphaLISA检测试剂盒及其方法 | |
CN101609097B (zh) | Ev71中和抗体的竞争酶联免疫检测方法、试剂盒或试剂及其制备方法 | |
Pinette et al. | Development of a duplex Fluorescent Microsphere Immunoassay (FMIA) for the detection of antibody responses to influenza A and newcastle disease viruses | |
Srisombundit et al. | Development of an inactivated 3Cpro-3ABC (mu3ABC) ELISA to differentiate cattle infected with foot and mouth disease virus from vaccinated cattle | |
CN103513027A (zh) | 新型超灵敏性elisa方法的建立 | |
Gerber et al. | Diagnostic evaluation of assays for detection of antibodies against porcine epidemic diarrhea virus (PEDV) in pigs exposed to different PEDV strains | |
Song et al. | Evaluation of a competitive ELISA for antibody detection against avian influenza virus | |
CN103616509B (zh) | 检测猪乙型脑炎病毒的eⅲ-间接elisa抗体检测试剂盒及应用 | |
CN102854317A (zh) | 一种ev71抗原酶联反应检测试剂盒及其制备方法 | |
CN109580942A (zh) | Qx型ibv的细胞适应株mj在制备全病毒抗原elisa检测试剂盒中的应用及试剂盒 | |
CN102721812B (zh) | 检测嗜肾型鸡传染性支气管炎病毒及其抗体的间接elisa试剂盒 | |
Lehmann et al. | A line immunoassay utilizing recombinant nucleocapsid proteins for detection of antibodies to human coronaviruses | |
Direksin et al. | An immunoperoxidase monolayer assay for the detection of antibodies against swine influenza virus | |
CN102809653A (zh) | 一种检测新布尼亚病毒抗原的elisa试剂盒的制备和应用 | |
WANG et al. | Development of a cELISA for effective detection of the antibody against H7 subtype of avian influenza virus |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C02 | Deemed withdrawal of patent application after publication (patent law 2001) | ||
WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |
Application publication date: 20120704 |