CN102391967B - 一株链霉菌及其在生产放线菌素中的应用 - Google Patents

一株链霉菌及其在生产放线菌素中的应用 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一株链霉菌及其在生产放线菌素中的应用。本发明提供的菌株为链霉菌MS449,它的保藏编号为CGMCC No.5452。本发明提供的链霉菌MS449在没有经过任何培养基及发酵条件优化的前提下,其放线菌素X2,放线菌素D和放线菌素X的产量分别可达1.92、1.77和0.15mg/ml,均高于目前已见报道的放线菌素生产菌株的产量。本发明所提供的生产放线菌素的方法是发酵链霉菌MS449,发酵稳定、化合物分离工艺简便、产率高。本发明提供的菌株具有很好的工业化潜力和前景。

Description

一株链霉菌及其在生产放线菌素中的应用
技术领域
本发明涉及一株链霉菌及其在生产放线菌素中的应用。
背景技术
癌症是一种非常古老的疾病,伴随着整个人类发展的历史,严重威胁着人类的健康与生命。放线菌素能够通过影响核酸合成、诱导细胞分化、诱导细胞凋亡、抑制一些蛋白酶活性及影响细胞周期等方式发挥其抗肿瘤活性。放线菌素还可通过与DNA结合抑制RNA合成而发挥抗菌、抗病毒的作用。
放线菌素D已经成为较为理想的抗肿瘤药物,广泛应用于恶性肿瘤的临床治疗、结合手术治疗和放射治疗,对肾母细胞瘤、横纹肌肉瘤、神经母细胞瘤、霍奇金病、绒毛膜癌及睾丸肿瘤的治疗有效,尤其是对儿童肾母细胞瘤有很好的治疗效果,也常与其他药物联合用于肿瘤的治疗与研究。
放线菌素X2除了更好的抗肿瘤作用外,对病毒性心肌炎最常见的病原体柯萨奇病毒(CVB3)有显著地抑制作用。
上世纪后期人们开始对放线菌素进行深入研究,主要集中于放线菌素的生物学功能和临床药理学研究,目前放线菌素已不仅是临床上重要的抗肿瘤药物,也越来越成为分子生物学和细胞生物学研究的工具。
放线菌素的产生菌已见报道的有近30种,但基本上都是单一成分高产,且在这些产生菌中,放线菌素D的产量最高为野生菌株0.21mg/ml、诱变菌株0.85mg/ml,放线菌素X2的最高产量为0.15mg/ml。
发明内容
本发明的目的是提供一株链霉菌及其在生产放线菌素中的应用。
本发明提供的链霉菌(Streptomyces sp.)MS449,已于2011年11月09日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(简称CGMCC,地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号,中国科学院微生物研究所,邮编100101),保藏号为CGMCCNo.5452。
本发明还保护所述链霉菌MS449在生产放线菌素中的应用。所述放线菌素可为放线菌素X2、放线菌素D和放线菌素X中的至少一种。
本发明还保护一种种子培养基,是通过如下方法制备得到的培养基:将20-30g可溶性淀粉、0.2-0.6g L-天冬酰胺、0.5-1.0g KNO3、0.2-0.6g K2HPO4·H2O、0.2-0.6gNaCl和0.2-1.0g MgSO4·7H2O用水定容至1L。所述种子培养基的pH可为7.0-7.5。所述种子培养基具体可通过如下方法制备得到:将25g可溶性淀粉、0.4g L-天冬酰胺、0.8g KNO3、0.4g K2HPO4·H2O、0.4g NaCl和0.6g MgSO4·7H2O用水定容至1L。
本发明还保护一种发酵培养基,是通过如下方法制备得到的培养基:将5-15g葡萄糖、10-30g稷粉、10-30g棉籽蛋白粉和10-30g 3-(N-吗啉基)丙磺酸用水定容至1L。所述发酵培养基的pH可为7.0-7.5。所述发酵培养基培养基具体可通过如下方法制备得到:将10g葡萄糖、20g稷粉、20g棉籽蛋白粉和20g 3-(N-吗啉基)丙磺酸用水定容至1L。
本发明还保护一种制备放线菌素的方法,是发酵所述链霉菌MS449,得到放线菌素。所述发酵的条件具体可为25-30℃、140-200rpm、6-20天(如6-15天)。所述发酵的条件具体可为28℃、180rpm、15天。
所述方法具体可包括如下步骤:将所述链霉菌MS449的种子液接种至所述发酵培养基中发酵并收获发酵液。
所述方法中,可将5ml所述种子液接种至100ml所述发酵培养基中。所述种子液具体可通过如下方法制备:将所述链霉菌MS449接种于所述种子培养基中,25-30℃(如28℃)、140-200rpm(如180rpm)培养2-6天(如96小时),得到种子液。
所述方法还可包括如下步骤:
(1)将所述发酵液离心(离心参数具体可为:4℃、8000转/min、15min),分别收集上清液和沉淀;
(2)将步骤(1)获得的沉淀用丙酮浸提(可室温静置10小时),离心(离心参数具体可为:4℃、8000转/min、15min)并收集上清液;
(3)将步骤(1)的上清液和步骤(2)的上清液合并,即为放线菌素粗提液(菌株粗提液);
(4)将所述放线菌素粗提液上样于HP-20大孔吸附树脂,依次用体积百分比为40%、60%和80%的丙酮水溶液洗脱(各一升),依次收集用60%和80%丙酮水溶液洗脱得到的过柱后洗脱液,依次命名为洗脱液乙和洗脱液丙;
(5)将所述洗脱液乙蒸干并用丙酮重新溶解,过滤后进行反相HPLC;反相HPLC参数:采用Agilent ZORBAX XDB C-18 column(5μm,9.4×250mm);流动相为体积百分比为60%的甲醇水溶液,流速为2.0ml/min;收集保留时间为29.2-29.9min的洗脱液,蒸干后得到放线菌素X
将所述洗脱液丙蒸干用丙酮重新溶解,过滤后进行反相HPLC;反相HPLC参数:采用Agilent ZORBAX XDB C-18 column(5μm,9.4×250mm);流动相为体积百分比为70%的甲醇水溶液,流速为2.0ml/min;收集保留时间为38.1-39.6min的洗脱液,蒸干后得到放线菌素X2;收集保留时间为39.9-40.7min的洗脱液,蒸干后得到放线菌素D。
本发明提供的链霉菌MS449在没有经过任何培养基及发酵条件优化的前提下,其放线菌素X2,放线菌素D和放线菌素X的产量分别可达1.92、1.77和0.15mg/ml,均高于目前已见报道的放线菌素生产菌株的产量。本发明所提供的生产放线菌素的方法是发酵链霉菌MS449,发酵稳定、化合物分离工艺简便、产率高。本发明提供的菌株具有很好的工业化潜力和前景。
附图说明
图1为链霉菌MS449在斜面培养基上28℃培养28天的照片。
图2为链霉菌MS449在扫描电镜(Quanta 200)10000×下观察的照片。
图3为放线菌素粗提液的HPLC分析图。
图4为活性组份甲(A)、活性组份乙(B)和活性组份丙(C)的质谱图。
图5为活性组份甲(A)、活性组份乙(B)和活性组份丙(C)的紫外光谱图。
图6为活性组份甲、活性组份乙和活性组份丙的碳信号归属。
图7为每毫升发酵液中活性组份甲、活性组分乙和活性组分丙的产量。
具体实施方式
以下的实施例便于更好地理解本发明,但并不限定本发明。下述实施例中的实验方法,如无特殊说明,均为常规方法。下述实施例中所用的试验材料,如无特殊说明,均为自常规生化试剂商店购买得到的。以下实施例中的定量试验,均设置三次重复实验,结果取平均值。可溶性淀粉购自北京化工厂,产品目录号为K0800034。葡萄糖购自北京现代东方精细化学品有限公司(HG)。稷粉购自农贸市场。棉籽蛋白粉(药媒)购自北京中棉紫光生物科技有限公司。MOPS即3-(N-吗啉基)丙磺酸,购自北京江晨生物。HP-20大孔吸附树脂(三菱):购自北京慧德易科技有限公司。Agilent ZorbaxXDB C-8 column:购自北京慧德易科技有限公司。Agilent ZORBAX XDB C-18 column:购自北京慧德易科技有限公司。
实施例1、链霉菌MS449的分离和鉴定
一、链霉菌MS449的分离
菌株分离培养基的组成如下(以下均为质量百分比):淀粉2%、L-天冬素0.05%、KNO3 0.1%、K2HPO4·H2O 0.05%、NaCl 0.05%、MgSO4·7H2O 0.05%、CaCO3 0.1%、Agar1.8%和H2O;pH值为7.5。
取1.0g土样(采自中国南海海底泥的泥土样品),放入装有9.0ml无菌水的50ml离心管中,180rpm摇2h,于20KHz、100W功率超声2min;取1.0ml悬浊液,放入装有9.0ml无菌水的50ml离心管中,混匀;取1.0ml悬浊液,放入装有9.0ml无菌水的50ml离心管中,混匀;系列稀释10-3和10-4;盖紧管盖,于100℃保温1h,取0.2ml涂板。获得了一株菌,将其命名为菌株MS449。
菌株MS449的保藏方法:于25%甘油冻存管-80℃保藏。
二、链霉菌MS449的鉴定
菌株MS449在斜面培养基上28℃培养28天的照片见图1。菌株MS449在扫描电镜(Quanta 200)10000×下观察的照片见图2。在斜面培养基上培养28天产生圆柱形孢子,表面光滑,大小均匀(0.5-0.7μm×1.5-2.0μm)。气生菌丝呈黄白色,表面带刺,基内菌丝呈黄色,有黄色色素产生。
根据菌落形态特征,将菌株MS449鉴定为链霉菌。
链霉菌(Streptomyces sp.)MS449已于2011年11月09日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(简称CGMCC,地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号,中国科学院微生物研究所,邮编100101),保藏号为CGMCC No.5452。
实施例2、应用链霉菌MS449生产放线菌素
斜面培养基的制备方法如下(pH7.0):将25g可溶性淀粉、0.4g L-天冬酰胺、0.8g KNO3、0.4g K2HPO4·H2O、0.4g NaCl、0.6g MgSO4·7H2O和18g琼脂用水溶解并用水定容至1L。
种子培养基的制备方法如下(pH7.5):将25g可溶性淀粉、0.4g L-天冬酰胺、0.8g KNO3、0.4g K2HPO4·H2O、0.4g NaCl和0.6g MgSO4·7H2O用水溶解并用水定容至1L。
发酵培养基的制备方法如下(pH7.0):将10g葡萄糖、20g稷粉、20g棉籽蛋白粉和20g MOPS用水溶解并用水定容至1L。
一、菌株发酵
1、种子培养
(1)将链霉菌MS449的孢子接种于斜面培养基,28℃培养8天(到气生菌丝丰满),即得到斜面菌种。
(2)在500ml玻璃瓶中装入100ml种子培养基。
(3)从步骤(1)的斜面挖块接种至步骤(2)的培养基,28℃、180rpm培养96小时,得到种子液。
2、发酵培养
(1)在500ml的三角瓶中加入100ml发酵培养基。
(2)在步骤(1)的培养基中接种5ml步骤1得到的种子液,28℃、180rpm培养15天,收获发酵液(发酵液为容器内的所有物质)。
二、有效成分的分离纯化
1、将1升步骤一得到的发酵液4℃条件下离心15min(8000转/min),分别收集上清液和沉淀(菌体)。
2、将步骤1获得的菌体用350mL丙酮室温条件下浸泡过夜(约10小时),4℃条件下离心15min(8000转/min),收集上清液。
3、将步骤1的上清液和步骤2的上清液合并,即为放线菌素粗提液(菌株粗提液)。
4、将50ml放线菌素粗提液上样于HP-20大孔吸附树脂柱,用100%丙酮洗脱,浓缩洗脱液,并进行HPLC分析。
HPLC参数:Agilent Zorbax XDB C-8column(5μm,4.6×150mm);体积百分比为70%的甲醇水溶液为流动相,流速为1.0ml/min;检测波长为254nm。
HPLC图谱见图3。粗提液中存在三种成分,保留时间分别为8.6min、14.7min和16.9min。
5、将步骤3得到的菌株粗提液(约1300ml)上样于300ml HP-20大孔吸附树脂,先用800ml水洗脱,然后依次用体积百分比为40%、60%和80%的丙酮水溶液(各1升)洗脱,依次收集用60%和80%丙酮水溶液洗脱得到的过柱后洗脱液,依次命名为洗脱液乙(约1升)和洗脱液丙(约1升)。
6、将洗脱液乙通过旋转蒸发仪除去丙酮并蒸干,用3mL丙酮重新溶解,过滤后进行反相HPLC。
反相HPLC参数:Agilent ZORBAX XDB C-18 column(5μm,9.4×250mm);体积百分比为60%的甲醇水溶液为流动相,流速为2.0ml/min;检测波长为254nm。
收集保留时间为29.2-29.9min的洗脱液,用旋转蒸发仪蒸干,得到活性组分甲(每毫升步骤一得到的发酵液中含有0.15mg活性组分甲)。
7、将洗脱液丙通过旋转蒸发仪除去丙酮并蒸干,用6mL丙酮重新溶解,过滤后进行反相HPLC。
反相HPLC参数:Agilent ZORBAX XDB C-18 column(5μm,9.4×250mm);体积百分比为70%的甲醇水溶液为流动相,流速为2.0ml/min;检测波长为254nm。
收集保留时间为38.1-39.6min的洗脱液,用旋转蒸发仪蒸干,得到活性组分乙(每毫升步骤一得到的发酵液中含有1.92mg活性组分乙)。
收集保留时间为39.9-40.6min的洗脱液,用旋转蒸发仪蒸干,得到活性组分丙(每毫升步骤一得到的发酵液中含有1.77mg活性组分丙)。
三、有效成分的鉴定
1、外观
活性组份甲、活性组分乙和活性组分丙均为无定形桔红色粉末。
2、溶解性
活性组份甲、活性组分乙和活性组分丙均易溶于甲醇、丙酮、氯仿,不溶于水。
3、质谱
活性组份甲的质谱图见图4A。ESI-MS质谱检测其[M+H]+为1271.3,与文献报道放线菌素X的分子离子峰一致。
活性组分乙的质谱图见图4B。ESI-MS质谱检测其[M+H]+为1269.1,[M+Na]+为1291.1。与文献报道放线菌素X2的分子离子峰一致。
活性组分丙的质谱图见图4C。ESI-MS质谱检测其[M+H]+为1255.1,[M+Na]+为1277.1。与文献报道放线菌素D的分子离子峰一致。
4、紫外光谱
紫外光谱测试仪器为Mariner System 5304instrument。
活性组份甲的紫外光谱图见图5A,在238和444.0nm处有最大吸收峰。
活性组份乙的紫外光谱图见图5B,在239和445.0nm处有最大吸收峰。
活性组份丙的紫外光谱图见图5C,在240和444.0nm处有最大吸收峰。
5、核磁信号归属
核磁图谱测试仪器为Varian Inova 600MHz,所用溶剂为氘代丙酮(acetone-d6)。活性组份甲、活性组份乙和活性组份丙的碳信号归属如表1和图6所示。与文献报道一致。
表1活性组份甲、活性组份乙和活性组份丙的碳信号归属
Figure BDA0000109456560000061
Figure BDA0000109456560000071
综合上述结果:所述活性组份甲的结构式见式(I),为放线菌素X;所述活性组分乙的结构式见式(II),为放线菌素X2;所述活性组分乙的结构式见式(III),为放线菌素D。
Figure BDA0000109456560000081
式(I);
Figure BDA0000109456560000082
式(II);
Figure BDA0000109456560000083
式(III)。
实施例3、应用链霉菌MS449生产放线菌素
一、菌株发酵
1、种子培养
同实施例2的步骤一的1。
2、发酵培养
(1)在500ml的三角瓶中分装100ml发酵培养基。
(2)在步骤(1)的培养基中接种5ml步骤1得到的种子液,28℃、180rpm培养,间隔时间(每24小时取样1次,每24小时计为1天)取样,收获发酵液(发酵液为容器内的所有物质)。
二、有效成分的分离纯化
同实施例2的步骤二。
每毫升发酵液中活性组份甲(放线菌素X)、活性组分乙(放线菌素X2)和活性组分丙(放线菌素D)的产量见图7。

Claims (8)

1.链霉菌(Streptomyces sp.)MS449,它的保藏编号为CGMCC No.5452。
2.权利要求1所述链霉菌MS449在生产放线菌素中的应用。
3.如权利要求2所述的应用,其特征在于:所述放线菌素为放线菌素X2、放线菌素D和放线菌素X中的至少一种。
4.用于培养权利要求1所述链霉菌MS449的培养基,是通过如下方法制备得到的培养基:将5-15g葡萄糖、10-30g稷粉、10-30g棉籽蛋白粉和10-30g 3-(N-吗啉基)丙磺酸用水定容至1L。
5.一种制备放线菌素的方法,是发酵权利要求1所述链霉菌MS449,得到放线菌素。
6.如权利要求5所述的方法,其特征在于:所述方法包括如下步骤:将权利要求1所述链霉菌MS449的种子液接种至权利要求4所述培养基中发酵并收获发酵液。
7.如权利要求6所述的方法,其特征在于:所述种子液的制备方法如下:将权利要求1所述链霉菌MS449接种于下述培养基中,25-30℃、140-200rpm培养2-6天,得到种子液;
通过如下方法制备得到所述培养基:将20-30g可溶性淀粉、0.2-0.6gL-天冬酰胺、0.5-1.0g KNO3、0.2-0.6g K2HPO4·H2O、0.2-0.6g NaCl和0.2-1.0g MgSO4·7H2O用水定容至1L。
8.如权利要求6或7所述的方法,其特征在于:所述方法还包括如下步骤:
(1)将所述发酵液离心,分别收集上清液和沉淀;
(2)将步骤(1)获得的沉淀用丙酮浸提,离心并收集上清液;
(3)将步骤(1)的上清液和步骤(2)的上清液合并,即为放线菌素粗提液;
(4)将所述放线菌素粗提液上样于HP-20大孔吸附树脂,依次用体积百分比为40%、60%和80%的丙酮水溶液洗脱,依次收集用60%和80%丙酮水溶液洗脱得到的过柱后洗脱液,依次命名为洗脱液乙和洗脱液丙;
(5)将所述洗脱液乙蒸干并用丙酮重新溶解,过滤后进行反相HPLC;反相HPLC参数:采用Agilent ZORBAX XDB C-18 column;流动相为体积百分比为60%的甲醇水溶液,流速为2.0ml/min;收集保留时间为29.2-29.9min的过柱后洗脱液,得到放线菌素X
将所述洗脱液丙蒸干用丙酮重新溶解,过滤后进行反相HPLC;反相HPLC参数:采用Agilent ZORBAX XDB C-18 column;流动相为体积百分比为70%的甲醇水溶液,流速为2.0ml/min;收集保留时间为38.1-39.6min的过柱后洗脱液,得到放线菌素X2;收集保留时间为39.9-40.7min的过柱后洗脱液,得到放线菌素D。
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