CN102382182A

CN102382182A - 一种与植物耐逆性相关的蛋白nek6及其编码基因与应用

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Publication number: CN102382182A
Application number: CN2010102705564A
Authority: CN
Inventors: 陈受宜; 张劲松; 张波; 张万科; 马彪; 林晴
Original assignee: Institute of Genetics and Developmental Biology of CAS
Current assignee: Institute of Genetics and Developmental Biology of CAS
Priority date: 2010-09-01
Filing date: 2010-09-01
Publication date: 2012-03-21
Anticipated expiration: 2030-09-01
Also published as: CN102382182B

Abstract

本发明公开了一种与植物耐逆性相关的蛋白NEK6及其编码基因与应用。本发明提供的蛋白质，是如下1)或2)的蛋白质：1)由序列表中序列2所示的氨基酸序列组成的蛋白质；2)将序列2的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与植物耐逆性和/或籽粒产量相关的由1)衍生的蛋白质。本发明的实验证明，所述蛋白及其编码基因对培育耐逆且籽粒高产植物品种具有重要意义。

Description

一种与植物耐逆性相关的蛋白NEK6及其编码基因与应用

技术领域

本发明涉及一种与植物耐逆性相关的蛋白NEK6及其编码基因与应用。

背景技术

环境中物理、化学因素的变化，例如干旱、盐碱、冷害、冻害、水涝等胁迫因素以及生物因素，例如病虫害对植物的生长发育具有重要的影响，严重时会造成农作物大规模减产，培育耐逆性作物是种植业的主要目标之一。提高作物的耐逆性，除了利用传统的育种方法，目前，分子遗传育种已经成为科技工作者所关注的领域之一。在非生物和生物逆境的胁迫下，高等植物细胞有多种途径感受和应答外界环境中物化参数的变化，将胞外的信号变为胞内信号，经过一系列磷酸化级联反应将信号传递到细胞核，经转录因子调控相关的功能基因，启动逆境应答基因的表达，提高植物的耐逆性。专利号为ZL99119096.3的专利和以下参考文献中均已证明烟草的乙烯受体NTHK1参与了植物对逆境的应答反应，与植物耐逆性相关。NTHK1在植物对逆境应答中处于上游(Wanhong Cao，Jinsong Zhang & Shouyi Chen，et al.，Expression of tobaccoethylene receptor NTHK1 alters plant responses to salt stress，Plant，Cell andEnvironment(2006)29，1210-1219。)。

在过量表达的NTHK1的拟南芥中，发现NTHK1调控一系列基因，阐明NTHK1调控蛋白与耐逆性的关系，对于进一步了解NTHK1所参与的植物应答非生物逆境的信号传递，并将其应用于植物耐逆性的改良，既具有重要的理论意义也具有重大的实用价值。

发明内容

本发明的一个目的是提供一种与植物耐逆性相关的NEK6蛋白及其编码基因。

本发明所提供的蛋白质，名称为NEK6，来源于拟南芥(Arabidopsis thaliana)，是如下1)或2)的蛋白质：

1)由序列表中序列2所示的氨基酸序列组成的蛋白质；

2)将序列表中序列2的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与植物耐逆性和/或籽粒产量相关的由1)衍生的蛋白质。

上述序列表中序列2由956个氨基酸残基组成。所述一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加为不超过10个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加。

为了使1)中的NEK6便于纯化，可在由序列表中序列2所示的氨基酸序列组成的蛋白质的氨基末端或羧基末端连接上如表1所示的标签。

表1.标签的序列

标签	残基	序列
			Poly-Arg	5-6(通常为5个)	RRRRR
Poly-His	2-10(通常为6个)	HHHHHH
			FLAG	8	DYKDDDDK
Strep-tag II	8	WSHPQFEK
			c-myc	10	EQKLISEEDL

上述2)中的NEK6可人工合成，也可先合成其编码基因，再进行生物表达得到。上述2)中的NEK6的编码基因可通过将序列表中序列1的自5′末端第1-2871位碱基所示的DNA序列中缺失一个或几个氨基酸残基的密码子，和/或进行一个或几个碱基对的错义突变，和/或在其5′端和/或3′端连上表1所示的标签的编码序列得到。

上述与植物耐逆性相关的蛋白NEK6的编码基因也属于本发明的保护范围，该基因命名为NEK6。

本发明所提供的NEK6蛋白质的编码基因具体可为如下1)或2)或3)中任一所述的基因：

1)序列表中序列1所示的DNA分子；

2)在严格条件下与1)限定的DNA分子杂交且编码所述植物耐逆性和/或籽粒产量相关蛋白质的DNA分子；

3)与1)限定的DNA序列至少具有70％、至少具有75％、至少具有80％、至少具有85％、至少具有90％、至少具有95％、至少具有96％、至少具有97％、至少具有98％或至少具有99％同源性且编码所述植物耐逆性和/或籽粒产量相关蛋白质的DNA分子。

其中，序列表中序列1由2871位脱氧核糖核苷酸组成，其开放阅读框架(ORF)为自5′末端第1-2871位碱基，自5’端的第1至3位脱氧核糖核苷酸为NEK6的起始密码子ATG，自5’端的第2869至2871位脱氧核糖核苷酸为NEK6的终止密码子TAG，编码氨基酸序列是序列表中序列2所示的NEK6。

所述特异性杂交条件可为如下：50℃，在7％十二烷基硫酸钠(SDS)、0.5M NaPO₄和1mM EDTA的混合溶液中杂交，在50℃，2X SSC，0.1％SDS中漂洗；还可为：50℃，在7％十二烷基硫酸钠(SDS)、0.5M NaPO₄和1mM EDTA的混合溶液中杂交，在50℃，1X SSC，0.1％SDS中漂洗；还可为：50℃，在7％十二烷基硫酸钠(SDS)、0.5M NaPO₄和1mM EDTA的混合溶液中杂交，在50℃，0.5X SSC，0.1％SDS中漂洗；还可为：50℃，在7％十二烷基硫酸钠(SDS)、0.5M NaPO₄和1mM EDTA的混合溶液中杂交，在50℃，0.1X SSC，0.1％SDS中漂洗；还可为：50℃，在7％十二烷基硫酸钠(SDS)、0.5M NaPO₄和1mM EDTA的混合溶液中杂交，在65℃，0.1X SSC，0.1％SDS中漂洗。

所述严格条件也可为在6×SSC，0.5％SDS的溶液中，在65℃下杂交，然后用2×SSC，0.1％SDS和1×SSC，0.1％SDS各洗膜一次。

含有上述蛋白NEK6编码基因NEK6的重组表达载体、重组菌、转基因细胞系或表达盒也属于本发明的保护范围。

所述重组表达载体具体可为在pROKII的BamHI和KpnI位点间插入序列表中序列1的自5’末端的第1-2871位脱氧核苷酸得到的pROKII-NEK6。

可用现有的植物表达载体构建含有NEK6基因的重组表达载体。

所述植物表达载体包括双元农杆菌载体和可用于植物微弹轰击的载体等。所述植物表达载体还可包含外源基因的3’端非翻译区域，即包含聚腺苷酸信号和任何其它参与mRNA加I或基因表达的DNA片段。所述聚腺苷酸信号可引导聚腺苷酸加入到mRNA前体的3’端，如农杆菌冠瘿瘤诱导(Ti)质粒基因(如胭脂合成酶Nos基因)、植物基因(如大豆贮存蛋白基因)3’端转录的非翻译区均具有类似功能。

使用NEK6构建重组植物表达载体时，在其转录起始核苷酸前可加上任何一种增强型启动子或组成型启动子，如花椰菜花叶病毒(CAMV)35S启动子、玉米的泛素启动子(Ubiquitin)，它们可单独使用或与其它植物启动子结合使用；此外，使用本发明的基因构建植物表达载体时，还可使用增强子，包括翻译增强子或转录增强子，这些增强子区域可以是ATG起始密码子或邻接区域起始密码子等，但必需与编码序列的阅读框相同，以保证整个序列的正确翻译。所述翻译控制信号和起始密码子的来源是广泛的，可以是天然的，也可以是合成的。翻译起始区域可以来自转录起始区域或结构基因。

为了便于对转基因植物细胞或植物进行鉴定及筛选，可对所用植物表达载体进行加工，如加入可在植物中表达的编码可产生颜色变化的酶或发光化合物的基因(GUS基因、萤光素酶基因等)、具有抗性的抗生素标记物(庆大霉素标记物、卡那霉素标记物等)或是抗化学试剂标记基因(如抗除莠剂基因)等。从转基因植物的安全性考虑，可不加任何选择性标记基因，直接以逆境筛选转化植株。

扩增上述任一所述编码基因全长或其任意片段的引物对也属于本发明的保护范围。

本发明的另一个目的是提供培育籽粒产量提高和/或耐逆性提高的转基因植物的方法。

本发明所提供的培育籽粒产量提高和/或耐逆性提高的转基因植物的方法，是将所述的编码基因导入目的植物得到的转基因植物，所述转基因植物的籽粒产量和/或耐逆性高于所述目的植物。

所述转基因植物的籽粒产量高于所述目的植物由籽粒数目增加引起。

所述编码基因是通过所述重组表达载体导入所述目的植物中。

所述耐逆性为耐旱性和/或耐盐性。

所述植物为双子叶植物或单子叶植物，所述双子叶植物优选为拟南芥。

转化的细胞、组织或植物理解为不仅包含转化过程的最终产物，也包含其转基因子代。

本发明中所述的“多核苷酸”、“多核苷酸分子”、“多核苷酸序列”、“编码序列”、“开放阅读框(ORF)”等包括单链或双链的DNA和RNA分子，可包含一个或多个原核序列，cDNA序列，包含外显子和内含子的基因组DNA序列，化学合成的DNA和RNA序列，以及有义和相应的反义链。

本发明基因可通过如下方式导入宿主中：将本发明基因插入表达盒中，再将表达盒通过植物表达载体、非致病自我复制的病毒或弄杆菌导入宿主。携带本发明基因的表达载体可通过使用Ti质粒、Ri质粒、植物病毒载体、直接DNA转化、显微注射、电导、农杆菌介导等常规生物学方法转化植物细胞或组织。

本发明的实验证明，本发明的蛋白及其编码基因具有提高植物耐逆性功能，转入本发明基因的植物的耐逆性明显高于野生型植物，如转基因拟南芥，经过盐或干旱处理后，转基因植物的恢复情况明显好于野生型拟南芥，且存活率、抽薹率等都较对照组有显著提高。同时，转入本发明基因的转基因植物的每株籽粒总产量也明显高于对照，过量表达本发明所述基因的各转基因株系其耐旱、耐盐性及单株籽粒产量均与转基因植株中本发明所述基因的表达量呈正相关，进一步表明本发明所述蛋白及其编码基因对培育耐逆且籽粒高产植物品种，特别是培育耐非生物胁迫如耐干旱和/或耐盐且高产植物品种，从而提高农作物产量具有重要意义。因此，本发明蛋白及其编码基因有广阔的应用前景。

附图说明

图1为NEK6基因在NaCl和ACC处理时的表达情况。

图2为NEK6的过量表达载体的示意图和转基因植株的分子鉴定。

图3为NEK6突变体nek6的分子鉴定。

图4为正常生长条件下转基因植株和突变体nek6的表型分析。

图5为转基因植株和突变体nek6的耐盐性鉴定。

图6为转基因植株和突变体nek6的耐旱性鉴定。

图7为转基因植株和突变体nek6在不同浓度甘露醇处理后的存活率和开花率的统计。

具体实施方式

下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明，均为常规方法。

下述实施例中所用的材料、试剂等，如无特殊说明，均可从商业途径得到。

实施例1、拟南芥NEK6基因的克隆

1、NEK6基因的克隆

采用异硫氰酸胍-酚-氯仿的方法进行提取野生型拟南芥(Arabidopsis thaliana)Col-0(

G Arabidopsis Research Science.1965Nov 26；150(3700)：1192，公众可从中国科学院遗传与发育生物学研究所获得。)总RNA(Zhang et al.2001 Atwo-component gene(NTHK1)encoding a putative ethylene-receptor homolog isboth developmentally and stress-regulated in tobacco.Theor Appl Genet 102：815-824)，使用Promega试剂盒(购自Promega公司)PolyAT tract mRNA isolationsystem IV进行mRNA分离纯化，分离得到的mRNA用紫外分光光度计进行定量，然后反转录得到cDNA。以反转录得到的cDNA为模板，正向引物：5’-cgcgggatccatggagtcacgaatggaccc g-3’和反向引物：5’-cgcggtcgactcatgaacaattcctggagctgccactg-3’进行PCR扩增。对PCR产物进行0.8％琼脂糖凝胶电泳检测，结果表明，PCR扩增产物的大小约为2.9kb，与预期结果相符。用琼脂糖凝胶回收试剂盒(TIANGEN)回收该片段。将该回收片段与pGEM-T Easy(Promega)连接，参照Cohen等的方法，将连接产物转化大肠杆菌DH5α感受态细胞，根据pGEM-T Easy载体上的羧卞青霉素抗性标记筛选阳性克隆，得到含有回收片段的重组质粒。以该重组质粒载体上的T7和SP6启动子序列为引物对其进行核苷酸序列测定，测序结果表明该PCR产物具有序列表中的序列1的核苷酸序列，该PCR产物的基因命名为NEK6，其ORF为序列1的自5’末端第1-2871位核苷酸。该基因编码的蛋白命名为NEK6，该蛋白的氨基酸序列为序列表的序列2，序列表中的序列2由956个氨基酸组成。序列分析表明，NEK6由14个外显子构成，ORF为2871个脱氧核糖核苷酸组成，编码956个氨基酸。

2、NEK6基因的表达模式乙烯前体ACC处理

将在MS培养基中生长10天的野生型拟南芥分别植入含200mM NaCl的MS培养基和含10μM ACC(一氨基环丙烷羧酸)的MS培养基中，在处理2、4、6、12小时时分别取样，制备每个样本的总RNA，每泳道上样量为15μg，以NEK6为探针，进行NORTHERN分析。结果如图1所示，可以看出，在乙烯的前体ACC(10μM)处理后诱导NEK6基因的表达，并在6小时表达量达到最高；同样NaCl(200mM)处理也诱导NEK6基因的表达，并在4小时表达量达到最高。因此NEK6是乙烯和盐响应基因。

实施例2、转NEK6拟南芥培育和NEK6基因突变体nek6的鉴定

1、植物表达载体的构建及转基因纯系的获得

将由实施例1获得的PCR产物连接在pMD-18T载体(Promega)上构建重组质粒pMD-18T-NEK6，将pMD-18T-NEK6经BamH1和Kpn1酶切得到的小片段连接到同样经BamH1和Kpn1酶切PBSK载体(Promega)得到重组质粒PBSK-NEK6。将重组质粒PBSK-NEK6用BamHI和KpnI酶切获得的小片段连接到经同样酶切双元载体pROKII(购自Stratagene公司)获得的大片段上，得到重组载体pROK II-NEK6。经测序，该重组载体pROK II-NEK6为将序列表中序列1的5’末端第1-2871位核苷酸插入载体pROK II的BamH1和Kpn1酶切位点间得到的。

将重组载体pROK II-NEK6用电击转化法导入农杆菌GV3101菌株(Clough-SJ，Bent-AF.Floral dip：a simplified method for Agrobacterium-mediatedtransformation of Arabidopsis thaliana.Plant-Journal.1998，16：6，735-743；公众可从中国科学院遗传与发育生物学研究所获得。)得到重组菌GV3101/pROK II-NEK6。将重组菌进行菌液PCR鉴定，引物为正向引物：5’-cgcgggatccatggagtcac gaatggaccc g-3’和反向引物：5’-cgcggtcgactcatgaacaattcctggagctgccactg-3’，得到2.9kb片段的重组菌提取质粒测序，结果为该质粒为pROK II-NEK6，将含有质粒的重组菌命名为GV3101/pROK II-NEK6。

挑取GV3101/pROK II-NEK6的单菌落在5mlLB中，于28℃培养8-12小时，再转接到200mlLB中继续培养3-6小时，收菌后重悬于LB培养基中得到转化液。将野生型拟南芥(Arabidopsis thaliana)Col-0的花浸泡于转化液中10s，取出后放入MS培养基中避光培养8-12小时，获得T0代转化种子，将其播于含卡那霉素(50mg/L)的MS培养基上，获得30株T0代转NEK6拟南芥。

采用同样的方法将空载体pROKII转入野生型拟南芥中，获得转pROKII拟南芥。

提取上述30株T0代转NEK6拟南芥植株的RNA，并反转录获得cDNA，分别进行RT-PCR鉴定，引物为5’-cgcgggatccatggagtcacgaatggatcag-3’和5’-cgcggtcgacacaattcctggagctgccactg-3’，结果如图2所示，其中图2A为表达载体pROK II-NEK6的部分结构示意图，图2B为T0代转NEK6拟南芥的分子鉴定，对照Col为转pROKII拟南芥，1-8分别为8株T0代转NEK6拟南芥，图2B显示，转pROKII拟南芥没有表达NEK6；在转基因株系中，NEK6基因表达较高的为编号1(NEK6-OE1)和编号2(NEK6-OE2)株系，NEK6-OE2株系中NEK6的表达量高于NEK6-OE1中NEK6的表达量。

T0代转NEK6拟南芥株系经过3代连续筛选，分别获得T3代转NEK6拟南芥纯系。将T3代转NEK6拟南芥纯系中的NEK6-OE1纯系和NEK6-OE2纯系采用同样的方法进行RT-PCR鉴定，结果为NEK6-OE1纯系和NEK6-OE2纯系的NEK6均得到表达。

2、NEK6T-DNA突变体鉴定：

NEK6突变体nek6记载在Motose H，Tominaga R，Wada T，Sugiyama M，Watanabe Y，ANIMA-related protein kinase suppresses ectopic outgrowth of epidermal cells through its kinaseactivity and the association with microtubules，Plant J.2008Jun；54(5)：829-44；公众可从中国科学院遗传与发育生物学研究所获得。

提取野生型拟南芥叶片的DNA，以分别为NEK6基因两端的引物LP+BP序列为LP：CTTTGAAAGCAGGTCGATACG；BP：TTTGGTTACAGGGCTGAGTTG及以T-DNA边界序列设计的引物LBb1：GCGTGGACCGCTTGCTGCAACT共3条引物进行PCR，野生型拟南芥中，LP+BP引物可获得大于800bp的条带，而突变体nek6中，由于T-DNA的插入，不以LP+BP为引物进行扩增而以BP和LBb1或LP和LBb1为引物，扩出的2条PCR条带均小于800bp，因此PCR产物为两条带证明是杂合体。T-DNA的插入位点示于图3A。

提取nek6突变体的RNA后转录出CDNA进行RT-PCR鉴定，引物为5’-cgcgggatccatggagtcacgaatggatcag-3’和5’-cgcggtcgacacaattcctggagctgccactg-3’，以野生型拟南芥为对照，结果显示在nek6突变体中未检测到NEK6的转录(如图3B所示)，其中col为对照。说明在NEK6突变体中，NEK6基因被沉默，没有转录子，不能正确表达。

实施例3、转NEK6拟南芥、突变体nek6和对照的表型分析

将由实施例2获得NEK6-OE1纯系和NEK6-OE2纯系及nek6突变体培养约2个月收获种子，观察各植株表型，以野生型拟南芥和实施例2获得的转pROKII拟南芥为对照，统计结果如表1所示，表型见图4，实验重复三次，结果取平均值±标准差。

表1Nek6-OE株系和突变体nek6的表型统计

n为株数；＊表示显著差异；＊＊表示极显著差异。(种子重为单株种子重。)

图中和表中，对照(col)是指野生型拟南芥。NEK6-OE1(OE1)和NEK6-OE2(OE2)的单株种子重(单株籽粒产量)、果荚长均大于野生型拟南芥，而千粒重均小于野生型拟南芥或者与野生型拟南芥相当，说明两个转基因株系的单株籽粒产量均高于野生型拟南芥是由籽粒数量增多、果荚数及长度增加所致。

表1和图4的结果均说明，在正常条件下，与野生型拟南芥(col)相比，nek6的莲座明显变小，荚变短。而NEK6-OE1(OE1)、NEK6-OE2(OE2的表型和突变体相反，莲座明显变大，叶宽、荚长，荚数增加与野生型拟南芥相比均呈显著或极显著。NEK6-OE2株系的上述表型，如叶宽、荚长、千粒重、单株籽粒产量(单株种子重)等性状比NEK6-OE1株系的变化更显著，NEK6-OE2中NEK6的表达量明显高于NEK6-OE1，说明转基因株系在上述性状上的变化是与NEK6基因的过量表达相关。野生型拟南芥和转pROKII拟南芥的结果无显著差异。

综上所述，可以说明转NEK6拟南芥的表型变化与NEK6的表达水平相关，且NEK6-OE2植株中NEK6的表达高于NEK6-OE1。

实施例4、NEK6过量表达转基因株系和突变体nek6的耐盐性和耐旱性鉴定

1、耐盐性鉴定

将由实施例2获得NEK6-OE1纯系、由实施例2获得NEK6-OE2纯系、nek6突变体、转pROKII拟南芥和野生型拟南芥在MS培养基上生长5天且生长一致的苗移至含有125mM NaClMS培养基上继续生长14天，移苗至蛭石中恢复生长，14天后统计存活率和开花率。以未经125mM NaCl处理为对照。NEK6-OE1(OE1)、NEK6-OE2(OE2)、nek6突变体、转pROKII拟南芥和野生型拟南芥各15株。实验重复三次，结果取平均值。

结果见图5所示，

图5A为苗期：在MS培养基上生长5天后移至含有125mM NaCl的MS培养基上继续生长14天的苗记作NaCl(125mM)；一直在MS培养基生长的苗作为对照记作MS；从图中看出，125mM NaCl处理均影响了NEK6-OE1、NEK6-OE2、nek6突变体(nek6)和野生型拟南芥(col)的生长，但是2个转基因株系明显优于野生型对照，而野生型对照明显优于nek6突变体。

图5B为对照、nek6突变体和转基因转系经盐胁迫后恢复生长的比较。图中第二排和第三排是不同角度拍的上述株系的生长情况。从图中看出，在经过125mM NaCl处理14天后恢复生长14天时，NEK6-OE1和NEK6-OE2株系的生长明显优于nek6突变体(nek6)和野生型拟南芥(col)，而野生型对照略优于nek6突变体。

图5C为显示了各株系经上述处理后的存活率和开花率比较。从图中看出，野生型拟南芥(col)存活率为73％，nek6突变体(nek6)存活率52％，NEK6-OE1和NEK6-OE2存活率分别为90％和98％，三者的明显差异与所观察的表型一致。开花率的差异则更为显著，野生型拟南芥(col)为32％，nek6突变体(nek6)为14％，而NEK6-OE1和NEK6-OE2开花率分别为64％和86％。

图5的结果表明，在转基因植株OE-2中，NEK6的表达量高于OE-1中NEK6的表达量，从表1列出的表型统计说明，OE-2株系的单株籽粒产量(单株种子重)明显高于野生型拟南芥和OE-1株系，从图5看出，OE-2株系的耐盐性明显高于野生型拟南芥和OE-1株系。因此NEK6的表达与植株的耐盐性和单株籽粒产量呈正相关。野生型拟南芥和转pROKII拟南芥的结果无显著差异。

2、耐旱性鉴定

将由实施例2获得NEK6-OE1和NEK6-OE2纯系、nek6突变体和野生型拟南芥在MS培养基上生长5天，将5天的苗移至分别含90、120、150、200、300mM甘露醇的MS培养基中14天，之后再移栽至蛭石中恢复14天，对存活率及抽薹率作统计。以未经任何浓度甘露醇处理为对照。实验中各株系均取15株，实验重复三次，结果取平均值。

结果如图6所示，

图6A为苗期：在MS培养基上生长5天移至含200mM甘露醇的MS培养基中14天的苗记作200mM甘露醇；在MS培养基生长未作处理的苗作为对照记作MS；从图中看出，NEK6-OE1、NEK6-OE2、nek6突变体(nek6)和野生型拟南芥(col)在经过200mM甘露醇处理后均出现不同程度的黄萎，但是2个转基因株系明显优于野生型对照，而野生型对照明显优于nek6突变体。

图6B为成熟期，经过200mM甘露醇处理14天，恢复生长14天后，NEK6-OE1和NEK6-OE2的生长明显优于nek6突变体(nek6)和野生型拟南芥(col)。

野生型拟南芥和转pROKII拟南芥的结果无显著差异。

将由实施例2获得NEK6-OE1和NEK6-OE2纯系、nek6突变体、野生型拟南芥分别经90、120、150、200、300mM甘露醇的MS培养基处理14天，之后再移栽至蛭石中恢复14天，统计存活率及开花率。

结果如图7所示，其中图7A为存活率统计；图7B为开花率统计，其中col为野生型拟南芥。从图7中可以看出，未加入甘露醇时，NEK6-OE1、NEK6-OE2、nek6和野生型拟南芥(col)的存活率和开花率均为100％，未显示差异。当甘露醇浓度达到120mM后，NEK6-OE1和NEK6-OE2的存活率分别为95％和100％，而nek6和野生型拟南芥(col)的存活率分别为50％和70％。开花率的差异在经90mM甘露醇处理后即显示了差异，NEK6-OE1和NEK6-OE2的开花率分别为90％和93％，而nek6和野生型拟南芥(col)的开花率分别为70％和73％，甘露醇浓度达120mM时，它们间的差异趋于显著，NEK6-OE1和NEK6-OE2的开花率分别为74％和80％，nek6和野生型拟南芥(col)的开花率分别仅为15％和35％。随着甘露醇浓度升高，三种株系间的存活率和开花率的差异也更加明显，因此NEK6基因的过表达可以提高植物的耐旱性。野生型拟南芥和转pROKII拟南芥的结果无显著差异。