CN102241685B - 注射用黄芪皂苷中单体化合物的分离方法 - Google Patents

注射用黄芪皂苷中单体化合物的分离方法 Download PDF

Info

Publication number
CN102241685B
CN102241685B CN 201010169411 CN201010169411A CN102241685B CN 102241685 B CN102241685 B CN 102241685B CN 201010169411 CN201010169411 CN 201010169411 CN 201010169411 A CN201010169411 A CN 201010169411A CN 102241685 B CN102241685 B CN 102241685B
Authority
CN
China
Prior art keywords
component
elutriant
column
column volumes
spot
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN 201010169411
Other languages
English (en)
Other versions
CN102241685A (zh
Inventor
傅予
丁立生
彭树林
谭兴根
胡思玉
梁隆
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Sichuan Kelun Pharmaceutical Co Ltd
Original Assignee
Sichuan Kelun Pharmaceutical Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Sichuan Kelun Pharmaceutical Co Ltd filed Critical Sichuan Kelun Pharmaceutical Co Ltd
Priority to CN 201010169411 priority Critical patent/CN102241685B/zh
Publication of CN102241685A publication Critical patent/CN102241685A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN102241685B publication Critical patent/CN102241685B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Plant Substances (AREA)
  • Steroid Compounds (AREA)

Abstract

本发明公开了一种注射用黄芪皂苷中单体化合物的分离方法,本发明分离得到的单体化合物通过标准品比对、质谱、核磁共振氢谱和核磁共振碳谱等常规手段进行了结构鉴定,本发明所述的黄芪皂苷单体化合物可以用于注射用黄芪皂苷的质量控制,使该注射剂的化学物质基础更清楚,提高用药安全。

Description

注射用黄芪皂苷中单体化合物的分离方法
技术领域
本发明涉及医药技术领域,特别是涉及一种注射用黄芪皂苷中单体化合物的分离方法。
背景技术
近年来中药注射剂的不良反应越来越受到公众的关注,中药注射剂的质量亟待提高,与西药注射剂相比,中药注射剂主要存在化学物质基础不明确的问题,这给质量控制带来了困难。
经文献检索,未见对注射用黄芪皂苷中单体化合物的分离鉴定报道,一般只是用黄芪甲苷标准品对其中的黄芪甲苷进行定性和定量检测。
发明内容
本发明的目的在于提供一种注射用黄芪皂苷中的单体化合物的分离方法。
本发明注射用黄芪皂苷中单体化合物的分离方法如下:
按专利申请号为CN200510020402.9的专利中的方法制备注射用黄芪皂苷。将药物原料黄芪用体积浓度为40%-95%的含水乙醇回流提取,提取液除去乙醇,重新加入乙醇至混合溶液的乙醇体积含量至40%-95%进行沉淀和过滤,滤液调节至pH6.0-11.0后进行沉淀过滤,将滤液调节至pH6.0-8.0后,按原料药/水重量比为0.5-3/1的量加水混合,在保持不冻结的低温条件下沉淀后过滤,滤液用大孔吸附树脂吸附,用浓度为50%-90%的含水乙醇解吸附洗脱并收集,将除去乙醇后的解吸附浓缩溶液调节pH至9.0-13.0后,用经水饱和的正丁醇提取,提取液除去正丁醇后用丙酮和乙醚中的至少一种进行沉淀,分离沉淀物为供注射剂用的黄芪皂苷;
其中所述的黄芪原料回流提取所用的含水乙醇优选浓度为60%-80%;
其中所述的除去乙醇后的回流提取液重新加入乙醇进行沉淀的混合溶液乙醇体积含量优选为70%-90%;
其中所述的除去乙醇后的回流提取液重新加入乙醇进行沉淀和过滤后,优选将滤液调节至pH8.0-10.0沉淀过滤;
其中所述的经乙醇沉淀和过滤后的滤液调节至pH6.0-8.0后,优选按原料药/水重量比为1-2/1的量加水混合;
其中所述的按原料药/水重量比为0.5-3/1的量加水混合后,优选在0℃-10℃条件下沉淀后过滤;
其中所述的滤液用大孔吸附树脂吸附,大孔吸附树脂为制药生产中常用的大孔吸附树脂,如平均孔径为0.02-0.03μm,比表面积≥400m2/g的常用的D-101、DiaionHP-20、D-201、AB-8、DM-301等型号。
取黄芪皂苷100-300重量份,用5-10重量倍的水分散,用分析纯的乙酸乙酯萃取2-5次,每次用量为2-5重量倍,合并乙酸乙酯萃取液,回收乙酸乙酯得到乙酸乙酯萃取物15-50重量份;萃取后的水相用分析纯的正丁醇萃取2-5次,每次用量为2-5重量倍,合并正丁醇萃取液,回收正丁醇得到正丁醇萃取物60-200重量份;
将乙酸乙酯萃取物15-50重量份经正相硅胶柱层析分离,体积比为95-100:0-5→50-65:35-50的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为5-10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为10-20:0.8-1.2和2-6:0.8-1.2的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前1.25-2.5倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份A,依次接下来的0.75-1.5倍柱体积、0.5-1倍柱体积、0.5-1倍柱体积、0.75-1.5倍柱体积、1.25-2.5倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份B、组份C、组份D、组份E和组份F,回收溶剂后,分别得到组份A0.1-0.5重量份、组份B1.2-4.8重量份、组份C2-9重量份、组份D4-13重量份、组份E1-5重量份、组份F1-6重量份6个组份,其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将正丁醇萃取物60-200重量份经正相硅胶柱层析分离,以体积比为85-90:10-15→30-35:65-70氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为5-10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为8-12:0.8-1.2和2-5:0.8-1.2的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前1.5-3倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份G,依次接下来的1-2倍柱体积、0.5-1倍柱体积、0.5-1倍柱体积、1.5-3倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份H、组份I、组份J和组份K,回收溶剂后,得到组份G1-5重量份、组份H3-12重量份、组份I8-30重量份、组份J12-40重量份、组份K2-9重量份5个组份,其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份A 0.1-0.5重量份经正相硅胶柱层析分离,用分析纯的氯仿洗脱,洗脱液用量为8-12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为8-12:0.8-1.2的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3.2-4.8倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份A-1,依次接下来的0.8-1.2倍柱体积、4-6倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份A-2和组份A-3,将其中组分A-2回收溶剂后,得到单体化合物10-50mg,经结构鉴定为:10-甲氧基美迪紫檀素,其化学式如下:
Figure GDA00003488344100031
其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份B 1.2-4.8重量份经正相硅胶柱层析分离,以体积比为95-100:0-5→50-65:35-50的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为8-12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为4-8:0.8-1.2的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3.2-4.8倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份B-1,依次接下来的1.6-2.4倍柱体积、3.2-4.8倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份B-2和组份B-3,将其中组分B-2回收溶剂后,再用80-120体积份甲醇重结晶得到单体化合物90-320mg,经结构鉴定为:胡萝卜苷,其化学式如下:
Figure GDA00003488344100032
其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份C 2-9重量份经正相硅胶柱层析分离,以体积比为95-100:0-5→50-60:40-50的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为8-12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为4-8:0.8-1.2的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前2.4-3.6倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-1,依次接下来的2.4-3.6倍柱体积、3.2-4.8倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-2和组份C-3,回收溶剂后,得到组份C-1 0.2-1.2重量份、组份C-2 0.5-1.5重量份、组份C-3 1-4重量份3个组份,其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份C-1 0.2-1.2重量份经Sephadex LH-20凝胶柱层析分离,用分析纯的甲醇洗脱,洗脱液用量为10-15倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为4-8:0.8-1.2的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3-4.5倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-1-1,依次接下来的1-1.5倍柱体积、6-9倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-1-2和组份C-1-3,将其中组分C-1-2回收溶剂后,得到单体化合物50-200mg,经结构鉴定为:乙酰黄芪皂苷Ⅰ,其化学式如下:
Figure GDA00003488344100041
其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份C-2 0.5-1.5重量份经Sephadex LH-20凝胶柱层析分离,用分析纯的甲醇洗脱,洗脱液用量为10-15倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为3-8:0.8-1.2的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前5-7.5倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-2-1,依次接下来的2-3倍柱体积、3-4.5倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-2-2和组份C-2-3,将其中组分C-2-2回收溶剂后,得到单体化合物100-420mg,经结构鉴定为:2-羟基-3,4-二甲氧基异黄烷-7-O-β-D-吡喃葡萄糖苷,其化学式如下:
Figure GDA00003488344100051
其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份C-3 1-4重量份经正相硅胶柱层析分离,以体积比为90-100:0-10→50-55:45-50的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为10-15倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为3-8:0.8-1.2的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3-4.5倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-3-1,依次接下来的2.5-3.75倍柱体积、4.5-6.75倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-3-2和组份C-3-3,将其中组分C-3-2回收溶剂后,得到单体化合物0.3-1.5g,经结构鉴定为:9,10-二甲氧基紫檀烷-3-O-β-D-吡喃葡萄糖苷,其化学式如下:
其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份E 1-5重量份经40-60体积份的甲醇重结晶得到单体化合物0.5-2.5g,经结构鉴定为:毛蕊异黄酮-7-O-β-D-吡喃葡萄糖苷,其化学式如下:
将组份F 1-6重量份经正相硅胶柱层析分离,以体积比为90-100:0-10→50-55:45-50的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为8-12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为2-6:0.8-1.2的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3.6-5.4倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份F-1,依次接下来的1.2-1.8倍柱体积、3.2-4.8倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份F-2和组份F-3,将组分F-2回收溶剂后,得到单体化合物0.5-3.5g,经结构鉴定为:黄芪甲苷,其化学式如下:
其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份H 3-12重量份经80-120体积份的甲醇重结晶得到单体化合物1.5-6g,经结构鉴定为:芒柄花苷,其化学式如下:
将组份K 2-9重量份经Sephadex LH-20凝胶柱层析分离,用分析纯的甲醇洗脱,洗脱液用量为8-12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为2-5:0.8-1.2的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4.8-7.2倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份K-1,接下来的3.2-4.8倍柱体积的洗脱液斑点相近,收集为组份K-2,回收溶剂后,得到组份K-11-3重量份、组份K-20.5-3重量份2个组份,其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份K-1 1-3重量份经反相C18硅胶柱层析分离,以体积比为10-15:85-90→85-90:10-15的甲醇-水梯度洗脱,洗脱液用量为10-15倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为2-5:0.8-1.2的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4-6倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份K-1-1,依次接下来的0.8-1.25倍柱体积、5.2-7.75倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份K-1-2和组份K-1-3,将组分K-1-2回收溶剂后,得到单体化合物90-340mg,经结构鉴定为:环黄芪苷E,其化学式如下:
Figure GDA00003488344100081
其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份K-2 0.5-3重量份经反相C18硅胶柱层析分离,以体积比为10-15:85-90→85-90:10-15的甲醇-水梯度洗脱,洗脱液用量为10-15倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为2-5:0.8-1.2的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3.5-5.2倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份K-2-1,依次接下来的1.2-1.8倍柱体积、5.3-8倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份K-2-2和组份K-2-3,将组分K-2-2回收溶剂后,得到单体化合物60-250mg,经结构鉴定为:黄芪皂苷Ⅵ,其化学式如下:
Figure GDA00003488344100091
其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB。
本发明重量份与体积份的比例关系为g/ml的关系。
本发明分离得到的单体化合物通过标准品比对、质谱、核磁共振氢谱和核磁共振碳谱等常规手段进行了结构鉴定,本发明所述的黄芪皂苷单体化合物可以用于注射用黄芪皂苷的质量控制,使该注射剂的化学物质基础更清楚,提高用药安全。
下述实施例用于进一步说明但不限于本发明
具体实施方式
实施例1:黄芪皂苷中单体化合物的分离方法
按专利申请号为CN200510020402.9的专利中的方法制备黄芪皂苷。取黄芪药材20kg,切片,加体积浓度为70%的含水乙醇8倍回流提取,提取液除去乙醇,重新加入乙醇至混合溶液的乙醇体积含量至65%进行沉淀和过滤,滤液调节至pH9.0后沉淀过滤,滤液调节至pH7.0左右,按原料药/水为1.5/1的量加水混合后,在5℃低温下沉淀后过滤,滤液用大孔吸附树脂D-101吸附,以30%浓度的含水乙醇洗脱至洗脱液几乎无色除杂,再以75%浓度的含水乙醇解吸附洗脱并收集,将除去乙醇后的解吸附浓缩溶液调节pH至10.0后,用经水饱和的正丁醇提取,提取液除去正丁醇后用丙酮-乙醚(1:1)进行沉淀,分离沉淀物为供注射剂用的黄芪皂苷,所得黄芪皂苷经全检完全符合注射用要求;
取黄芪皂苷100g先用水1000ml分散,用分析纯的乙酸乙酯萃取3次,每次500ml,合并乙酸乙酯萃取液,回收乙酸乙酯得到乙酸乙酯萃取物15g;萃取后的水相用分析纯的正丁醇萃取3次,每次500ml,合并正丁醇萃取液,回收正丁醇得到正丁醇萃取物65g;
将乙酸乙酯萃取物15g经正相硅胶柱层析分离,体积比为95:5→65:35的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为8倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为15:1和4:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前2倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份A,依次接下来的1.2倍柱体积、0.8倍柱体积、0.8倍柱体积、1.2倍柱体积、2倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份B、组份C、组份D、组份E和组份F,回收溶剂后,分别得到组份A:0.1g、组份B:1.4g、组份C:2.8g、组份D:4.0g、组份E:1.5g、组份F:1.8g6个组份,其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将正丁醇萃取物65g经正相硅胶柱层析分离,体积比为85:15→30:70的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为10:1和3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份G,依次接下来的2倍柱体积、1倍柱体积、1倍柱体积、3倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份H、组份I、组份J和组份K,回收溶剂后,得到组份G:1.4g、组份H:3.2g、组份I:9.5g、组份J:12.0g、组份K:2.5g5个组份,其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份A 0.1g经正相硅胶柱层析分离,用分析纯的氯仿洗脱,洗脱液用量为12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为10:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4.8倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份A-1,依次接下来的1.2倍柱体积、6倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份A-2和组份A-3,将其中组分A-2回收溶剂后,得到单体化合物10mg,经结构鉴定为:10-甲氧基美迪紫檀素,其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份B 1.4g经正相硅胶柱层析分离,以体积比为95:5→65:35的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为6:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份B-1,依次接下来的2倍柱体积、4倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份B-2和组份B-3,将其中组分B-2回收溶剂后,再用120ml甲醇重结晶得到单体化合物95mg,经结构鉴定为:胡萝卜苷;其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份C 2.8g经正相硅胶柱层析分离,以体积比为100:0→60:40的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为8倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为6:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前2.4倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-1,依次接下来的2.4倍柱体积、3.2倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-2和组份C-3,回收溶剂后,得到组份C-1:0.3g、组份C-2:0.5g、组份C-3:1.2g3个组份,其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份C-1 0.3g经Sephadex LH-20凝胶柱层析分离,用分析纯的甲醇洗脱,洗脱液用量为15倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为6:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4.5倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-1-1,依次接下来的1.5倍柱体积、9倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-1-2和组份C-1-3,将其中组分C-1-2回收溶剂后,得到单体化合物50mg,经结构鉴定为:乙酰黄芪皂苷Ⅰ;其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份C-2 0.5g经Sephadex LH-20凝胶柱层析分离,用分析纯的甲醇洗脱,洗脱液用量为15倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为5:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前7.5倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-2-1,依次接下来的3倍柱体积、4.5倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-2-2和组份C-2-3,将其中组分C-2-2回收溶剂后,得到单体化合物105mg,经结构鉴定为:2-羟基-3,4-二甲氧基异黄烷-7-O-β-D-吡喃葡萄糖苷;其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份C-3 1.2g经正相硅胶柱层析分离,以体积比为100:0→55:45的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为5:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3.6倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-3-1,依次接下来的3倍柱体积、5.4倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-3-2和组份C-3-3,将其中组分C-3-2回收溶剂后,得到单体化合物310mg,经结构鉴定为:9,10-二甲氧基紫檀烷-3-O-β-D-吡喃葡萄糖苷;其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份E 1.5g经甲醇50ml重结晶得到单体化合物800mg,经结构鉴定为:毛蕊异黄酮-7-O-β-D-吡喃葡萄糖苷;
将组份F 1.8g经硅胶柱层析分离,以体积比为90:10→55:45的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为4:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4.5倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份F-1,依次接下来的1.5倍柱体积、4倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份F-2和组份F-3,将组分F-2回收溶剂后,得到单体化合物750mg,经结构鉴定为:黄芪甲苷;其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份H 3.2g经甲醇100ml重结晶得到单体化合物1.8g,经结构鉴定为:芒柄花苷;
将组份K 2.5g经Sephadex LH-20凝胶柱层析分离,用分析纯的甲醇洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前6倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份K-1,接下来的4倍柱体积的洗脱液斑点相近,收集为组份K-2,回收溶剂后,得到组份K-1:1.1g、组份K-2:0.8g2个组份,其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份K-1 1.1g经反相C18硅胶柱层析分离,以体积比为15:85→85:15的甲醇-水梯度洗脱,洗脱液用量为12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4.8倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份K-1-1,依次接下来的1倍柱体积、6.2倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份K-1-2和组份K-1-3,将组分K-1-2回收溶剂后,得到单体化合物95mg,经结构鉴定为:环黄芪苷E;其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份K-2 0.8g经反相C18硅胶柱层析分离,以体积比为15:85→90:10的甲醇-水梯度洗脱,洗脱液用量为15倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前5.2倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份K-2-1,依次接下来的1.8倍柱体积、8倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份K-2-2和组份K-2-3,将组分K-2-2回收溶剂后,得到单体化合物70mg,经结构鉴定为:黄芪皂苷Ⅵ;其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB。
实施例2:黄芪皂苷中单体化合物的分离方法
按专利申请号为CN200510020402.9的专利中的方法制备黄芪皂苷,取黄芪药材50kg,切片,加体积浓度为80%的含水乙醇8倍回流提取,提取液除去乙醇,重新加入乙醇至混合溶液的乙醇体积含量至50%进行沉淀和过滤,滤液调节至pH9.0后沉淀过滤,滤液调节至pH7-8,按原料药/水为1.5/1的量加水混合后,在5℃低温下沉淀后过滤,滤液用大孔吸附树脂D-201吸附,以30%浓度的含水乙醇洗脱至洗脱液几乎无色除杂,再以80%浓度的含水乙醇解吸附洗脱并收集,将除去乙醇后的解吸附浓缩溶液调节pH至11.0后,用经水饱和的正丁醇提取,提取液除去正丁醇后用丙酮-乙醚(1:2)进行沉淀,分离沉淀物为供注射剂用的黄芪皂苷,按注射剂标准检验,所得黄芪皂苷经全检完全符合注射用要求;
将黄芪皂苷300g先用水1500ml分散,用分析纯的乙酸乙酯萃取3次,每次1000ml,合并乙酸乙酯萃取液,回收乙酸乙酯得到乙酸乙酯萃取物50g;萃取后的水相用分析纯的正丁醇萃取3次,每次1000ml,合并正丁醇萃取液,回收正丁醇得到正丁醇萃取物200g;
将乙酸乙酯萃取物50g经正相硅胶柱层析分离,体积比为95:5→50:50的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为5倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为15:1和4:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前1.25倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份A,依次接下来的0.75倍柱体积、0.5倍柱体积、0.5倍柱体积、0.75倍柱体积、1.25倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份B、组份C、组份D、组份E和组份F,回收溶剂后,分别得到组份A:0.5g、组份B:4.5g、组份C:9.0g、组份D:12.5g、组份E:4.8g、组份F:5.1g6个组份,其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将正丁醇萃取物200g经正相硅胶柱层析分离,体积比为90:10→35:65的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为5倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为10:1和3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前1.5倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份G,依次接下来的1倍柱体积、0.5倍柱体积、0.5倍柱体积、1.5倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份H、组份I、组份J和组份K,回收溶剂后,得到组份G:4.6g、组份H:10.3g、组份I:29.4g、组份J:37.7g、组份K:8.2g5个组份,其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份A 0.5g经正相硅胶柱层析分离,用分析纯的氯仿洗脱,洗脱液用量为8倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为10:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3.2倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份A-1,依次接下来的0.8倍柱体积、4倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份A-2和组份A-3,将其中组分A-2回收溶剂后,得到单体化合物45mg,经结构鉴定为:10-甲氧基美迪紫檀素,其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份B 4.5g经正相硅胶柱层析分离,以体积比为95:5→60:40的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为8倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为6:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3.2倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份B-1,依次接下来的1.6倍柱体积、3.2倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份B-2和组份B-3,将其中组分B-2回收溶剂后,再用100ml甲醇重结晶得到单体化合物310mg,经结构鉴定为:胡萝卜苷;其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份C 9.0g经正相硅胶柱层析分离,以体积比为95:5→60:40的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为6:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-1,依次接下来的3倍柱体积、4倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-2和组份C-3,回收溶剂后,得到组份C-1:1.1g、组份C-2:1.4g、组份C-3:3.7g3个组份,其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份C-1 1.1g经Sephadex LH-20凝胶柱层析分离,用分析纯的甲醇洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为6:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-1-1,依次接下来的1倍柱体积、6倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-1-2和组份C-1-3,将其中组分C-1-2回收溶剂后,得到单体化合物180mg,经结构鉴定为:乙酰黄芪皂苷Ⅰ;其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份C-2 1.4g经Sephadex LH-20凝胶柱层析分离,用分析纯的甲醇洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为5:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前5倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-2-1,依次接下来的2倍柱体积、3倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-2-2和组份C-2-3,将其中组分C-2-2回收溶剂后,得到单体化合物415mg,经结构鉴定为:2-羟基-3,4-二甲氧基异黄烷-7-O-β-D-吡喃葡萄糖苷;其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份C-3 3.7g经正相硅胶柱层析分离,以体积比为90:10→50:50的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为5:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-3-1,依次接下来的2.5倍柱体积、4.5倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-3-2和组份C-3-3,将其中组分C-3-2回收溶剂后,得到单体化合物1.5g,经结构鉴定为:9,10-二甲氧基紫檀烷-3-O-β-D-吡喃葡萄糖苷;其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份E 4.8g经甲醇50ml重结晶得到单体化合物2.5g,经结构鉴定为:毛蕊异黄酮-7-O-β-D-吡喃葡萄糖苷;
将组份F 5.1g经硅胶柱层析分离,以体积比为100:0→55:45的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为4:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4.5倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份F-1,依次接下来的1.5倍柱体积、4倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份F-2和组份F-3,将组分F-2回收溶剂后,得到单体化合物3.1g,经结构鉴定为:黄芪甲苷;其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份H 10.3g经甲醇100ml重结晶得到单体化合物5.7g,经结构鉴定为:芒柄花苷;
将组份K 8.2g经Sephadex LH-20凝胶柱层析分离,用分析纯的甲醇洗脱,洗脱液用量为12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前7.2倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份K-1,接下来的4.8倍柱体积的洗脱液斑点相近,收集为组份K-2,回收溶剂后,得到组份K-1:3.0g、组份K-2:2.6g2个组份,其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份K-1 3.0g经反相C18硅胶柱层析分离,以体积比为15:85→90:10的甲醇-水梯度洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份K-1-1,依次接下来的0.8倍柱体积、5.2倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份K-1-2和组份K-1-3,将组分K-1-2回收溶剂后,得到单体化合物320mg,经结构鉴定为:环黄芪苷E;其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份K-2 2.6g经反相C18硅胶柱层析分离,以体积比为10:90→85:15的甲醇-水梯度洗脱,洗脱液用量为12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4.16倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份K-2-1,依次接下来的1.44倍柱体积、6.4倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份K-2-2和组份K-2-3,将组分K-2-2回收溶剂后,得到单体化合物240mg,经结构鉴定为:黄芪皂苷Ⅵ;其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB。
实施例3:黄芪皂苷中单体化合物的分离方法
按专利申请号为CN200510020402.9的专利中的方法制备黄芪皂苷,取黄芪药材30kg,切片,加体积浓度为50%的含水乙醇10倍回流提取,提取液除去乙醇,重新加入乙醇至混合溶液的乙醇体积含量至85%进行沉淀和过滤,滤液调节至pH9.0后沉淀过滤,滤液调节至pH6.5-7.5,按原料药/水为1.8/1的量加水混合后,在5℃低温下沉淀后过滤,滤液用大孔吸附树脂D-101吸附,以30%浓度的含水乙醇洗脱至洗脱液几乎无色除杂,再以75%浓度的含水乙醇解吸附洗脱并收集,将除去乙醇后的解吸附浓缩溶液调节pH至12.0后,用经水饱和的正丁醇提取,提取液除去正丁醇后用丙酮-乙醚(2:1)进行沉淀,分离沉淀物为供注射剂用的黄芪皂苷,按注射剂标准检验,所得黄芪皂苷经全检完全符合注射用要求;
将黄芪皂苷150g先用水1000ml分散,用分析纯的乙酸乙酯萃取3次,每次750ml,合并乙酸乙酯萃取液,回收乙酸乙酯得到乙酸乙酯萃取物22g;萃取后的水相用分析纯的正丁醇萃取3次,每次750ml,合并正丁醇萃取液,回收正丁醇得到正丁醇萃取物99g;
将乙酸乙酯萃取物22g经正相硅胶柱层析分离,体积比为100:0→65:35的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为15:1和4:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前2.5倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份A,依次接下来的1.5倍柱体积、1倍柱体积、1倍柱体积、1.5倍柱体积、2.5倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份B、组份C、组份D、组份E和组份F,回收溶剂后,分别得到组份A:0.2g、组份B:2.0g、组份C:4.4g、组份D:5.9g、组份E:2.4g、组份F:2.5g6个组份,其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将正丁醇萃取物65g经正相硅胶柱层析分离,体积比为85:15→35:65的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为8倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为10:1和3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前2.4倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份G,依次接下来的1.6倍柱体积、0.8倍柱体积、0.8倍柱体积、2.4倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份H、组份I、组份J和组份K,回收溶剂后,得到组份G:2.3g、组份H:5.0g、组份I:15g、组份J:20.5g、组份K:3.9g5个组份,其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份A 0.2g经正相硅胶柱层析分离,用分析纯的氯仿洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为10:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份A-1,依次接下来的1倍柱体积、5倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份A-2和组份A-3,将其中组分A-2回收溶剂后,得到单体化合物20mg,经结构鉴定为:10-甲氧基美迪紫檀素,其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份B 2.0g经正相硅胶柱层析分离,以体积比为100:0→60:40的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为6:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4.8倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份B-1,依次接下来的2.4倍柱体积、4.8倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份B-2和组份B-3,将其中组分B-2回收溶剂后,再用80ml甲醇重结晶得到单体化合物150mg,经结构鉴定为:胡萝卜苷;其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份C 4.4g经正相硅胶柱层析分离,以体积比为95:5→50:50的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为6:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3.6倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-1,依次接下来的3.6倍柱体积、4.8倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-2和组份C-3,回收溶剂后,得到组份C-1:0.5g、组份C-2:0.9g、组份C-3:2.3g3个组份,其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份C-1 0.5g经Sephadex LH-20凝胶柱层析分离,用分析纯的甲醇洗脱,洗脱液用量为12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为6:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3.6倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-1-1,依次接下来的1.2倍柱体积、7.2倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-1-2和组份C-1-3,将其中组分C-1-2回收溶剂后,得到单体化合物84mg,经结构鉴定为:乙酰黄芪皂苷Ⅰ;其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份C-2 0.9g经Sephadex LH-20凝胶柱层析分离,用分析纯的甲醇洗脱,洗脱液用量为12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为5:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前6倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-2-1,依次接下来的2.4倍柱体积、3.6倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-2-2和组份C-2-3,将其中组分C-2-2回收溶剂后,得到单体化合物186mg,经结构鉴定为:2-羟基-3,4-二甲氧基异黄烷-7-O-β-D-吡喃葡萄糖苷;其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份C-3 2.3g经正相硅胶柱层析分离,以体积比为90:10→55:45的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为15倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为5:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4.5倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-3-1,依次接下来的3.75倍柱体积、6.75倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-3-2和组份C-3-3,将其中组分C-3-2回收溶剂后,得到单体化合物740mg,经结构鉴定为:9,10-二甲氧基紫檀烷-3-O-β-D-吡喃葡萄糖苷;其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份E 2.4g经甲醇50ml重结晶得到单体化合物1.3g,经结构鉴定为:毛蕊异黄酮-7-O-β-D-吡喃葡萄糖苷;
将组份F 2.5g经硅胶柱层析分离,以体积比为90:10→50:50的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为4:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前5.4倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份F-1,依次接下来的1.8倍柱体积、4.8倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份F-2和组份F-3,将组分F-2回收溶剂后,得到单体化合物1.4g,经结构鉴定为:黄芪甲苷;其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份H 5.0g经甲醇100ml重结晶得到单体化合物2.8g,经结构鉴定为:芒柄花苷;
将组份K 3.9g经Sephadex LH-20凝胶柱层析分离,用分析纯的甲醇洗脱,洗脱液用量为8倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4.8倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份K-1,接下来的3.2倍柱体积的洗脱液斑点相近,收集为组份K-2,回收溶剂后,得到组份K-1:1.7g、组份K-2:1.5g2个组份,其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份K-1 1.7g经反相C18硅胶柱层析分离,以体积比为10:90→85:15的甲醇-水梯度洗脱,洗脱液用量为15倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前6倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份K-1-1,依次接下来的1.25倍柱体积、7.75倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份K-1-2和组份K-1-3,将组分K-1-2回收溶剂后,得到单体化合物148mg,经结构鉴定为:环黄芪苷E;其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB;
将组份K-2 1.5g经反相C18硅胶柱层析分离,以体积比为15:85→85:15的甲醇-水梯度洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3.5倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份K-2-1,依次接下来的1.2倍柱体积、5.3倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份K-2-2和组份K-2-3,将组分K-2-2回收溶剂后,得到单体化合物115mg,经结构鉴定为:黄芪皂苷Ⅵ;其中所述的正相硅胶薄层层析检查参照《中国药典》2005年版一部附录ⅥB。

Claims (3)

1.一种注射用黄芪皂苷中单体化合物的分离方法,其特征在于该方法包括如下步骤:
取黄芪药材20kg,切片,加体积浓度为70%的含水乙醇8倍回流提取,提取液除去乙醇,重新加入乙醇至混合溶液的乙醇体积含量至65%进行沉淀和过滤,滤液调节至pH9.0后沉淀过滤,滤液调节至pH7.0左右,按原料药/水为1.5/1的量加水混合后,在5℃低温下沉淀后过滤,滤液用大孔吸附树脂D-101吸附,以30%浓度的含水乙醇洗脱至洗脱液几乎无色除杂,再以75%浓度的含水乙醇解吸附洗脱并收集,将除去乙醇后的解吸附浓缩溶液调节pH至10.0后,用经水饱和的正丁醇提取,提取液除去正丁醇后用丙酮-乙醚(1:1)进行沉淀,分离沉淀物为供注射剂用的黄芪皂苷;
取黄芪皂苷100g先用水1000ml分散,用分析纯的乙酸乙酯萃取3次,每次500ml,合并乙酸乙酯萃取液,回收乙酸乙酯得到乙酸乙酯萃取物15g;萃取后的水相用分析纯的正丁醇萃取3次,每次500ml,合并正丁醇萃取液,回收正丁醇得到正丁醇萃取物65g;
将乙酸乙酯萃取物15g经正相硅胶柱层析分离,体积比为95:5→65:35的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为8倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为15:1和4:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前2倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份A,依次接下来的1.2倍柱体积、0.8倍柱体积、0.8倍柱体积、1.2倍柱体积、2倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份B、组份C、组份D、组份E和组份F,回收溶剂后,分别得到组份A:0.1g、组份B:1.4g、组份C:2.8g、组份D:4.0g、组份E:1.5g、组份F:1.8g6个组份;
将正丁醇萃取物65g经正相硅胶柱层析分离,体积比为85:15→30:70的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为10:1和3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份G,依次接下来的2倍柱体积、1倍柱体积、1倍柱体积、3倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份H、组份I、组份J和组份K,回收溶剂后,得到组份G:1.4g、组份H:3.2g、组份I:9.5g、组份J:12.0g、组份K:2.5g5个组份;
将组份A 0.1g经正相硅胶柱层析分离,用分析纯的氯仿洗脱,洗脱液用量为12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为10:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4.8倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份A-1,依次接下来的1.2倍柱体积、6倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份A-2和组份A-3,将其中组分A-2回收溶剂后,得到单体化合物10mg,经结构鉴定为:10-甲氧基美迪紫檀素;
将组份B 1.4g经正相硅胶柱层析分离,以体积比为95:5→65:35的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为6:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份B-1,依次接下来的2倍柱体积、4倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份B-2和组份B-3,将其中组分B-2回收溶剂后,再用120ml甲醇重结晶得到单体化合物95mg,经结构鉴定为:胡萝卜苷;
将组份C 2.8g经正相硅胶柱层析分离,以体积比为100:0→60:40的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为8倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为6:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前2.4倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-1,依次接下来的2.4倍柱体积、3.2倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-2和组份C-3,回收溶剂后,得到组份C-1:0.3g、组份C-2:0.5g、组份C-3:1.2g3个组份;
将组份C-1 0.3g经Sephadex LH-20凝胶柱层析分离,用分析纯的甲醇洗脱,洗脱液用量为15倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为6:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4.5倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-1-1,依次接下来的1.5倍柱体积、9倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-1-2和组份C-1-3,将其中组分C-1-2回收溶剂后,得到单体化合物50mg,经结构鉴定为:乙酰黄芪皂苷Ⅰ;
将组份C-2 0.5g经Sephadex LH-20凝胶柱层析分离,用分析纯的甲醇洗脱,洗脱液用量为15倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为5:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前7.5倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-2-1,依次接下来的3倍柱体积、4.5倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-2-2和组份C-2-3,将其中组分C-2-2回收溶剂后,得到单体化合物105mg,经结构鉴定为:2-羟基-3,4-二甲氧基异黄烷-7-O-β-D-吡喃葡萄糖苷;
将组份C-3 1.2g经正相硅胶柱层析分离,以体积比为100:0→55:45的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为5:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3.6倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-3-1,依次接下来的3倍柱体积、5.4倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-3-2和组份C-3-3,将其中组分C-3-2回收溶剂后,得到单体化合物310mg,经结构鉴定为:9,10-二甲氧基紫檀烷-3-O-β-D-吡喃葡萄糖苷;
将组份E 1.5g经甲醇50ml重结晶得到单体化合物800mg,经结构鉴定为:毛蕊异黄酮-7-O-β-D-吡喃葡萄糖苷;
将组份F 1.8g经硅胶柱层析分离,以体积比为90:10→55:45的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为4:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4.5倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份F-1,依次接下来的1.5倍柱体积、4倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份F-2和组份F-3,将组分F-2回收溶剂后,得到单体化合物750mg,经结构鉴定为:黄芪甲苷;
将组份H 3.2g经甲醇100ml重结晶得到单体化合物1.8g,经结构鉴定为:芒柄花苷;
将组份K 2.5g经Sephadex LH-20凝胶柱层析分离,用分析纯的甲醇洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前6倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份K-1,接下来的4倍柱体积的洗脱液斑点相近,收集为组份K-2,回收溶剂后,得到组份K-1:1.1g、组份K-2:0.8g2个组份;
将组份K-1 1.1g经反相C18硅胶柱层析分离,以体积比为15:85→85:15的甲醇-水梯度洗脱,洗脱液用量为12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4.8倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份K-1-1,依次接下来的1倍柱体积、6.2倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份K-1-2和组份K-1-3,将组分K-1-2回收溶剂后,得到单体化合物95mg,经结构鉴定为:环黄芪苷E;
将组份K-2 0.8g经反相C18硅胶柱层析分离,以体积比为15:85→90:10的甲醇-水梯度洗脱,洗脱液用量为15倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前5.2倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份K-2-1,依次接下来的1.8倍柱体积、8倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份K-2-2和组份K-2-3,将组分K-2-2回收溶剂后,得到单体化合物70mg,经结构鉴定为:黄芪皂苷Ⅵ。
2.一种注射用黄芪皂苷中单体化合物的分离方法,其特征在于该方法包括如下步骤:
取黄芪药材50kg,切片,加体积浓度为80%的含水乙醇8倍回流提取,提取液除去乙醇,重新加入乙醇至混合溶液的乙醇体积含量至50%进行沉淀和过滤,滤液调节至pH9.0后沉淀过滤,滤液调节至pH7-8,按原料药/水为1.5/1的量加水混合后,在5℃低温下沉淀后过滤,滤液用大孔吸附树脂D-201吸附,以30%浓度的含水乙醇洗脱至洗脱液几乎无色除杂,再以80%浓度的含水乙醇解吸附洗脱并收集,将除去乙醇后的解吸附浓缩溶液调节pH至11.0后,用经水饱和的正丁醇提取,提取液除去正丁醇后用丙酮-乙醚(1:2)进行沉淀,分离沉淀物为供注射剂用的黄芪皂苷,按注射剂标准检验,所得黄芪皂苷经全检完全符合注射用要求;
将黄芪皂苷300g先用水1500ml分散,用分析纯的乙酸乙酯萃取3次,每次1000ml,合并乙酸乙酯萃取液,回收乙酸乙酯得到乙酸乙酯萃取物50g;萃取后的水相用分析纯的正丁醇萃取3次,每次1000ml,合并正丁醇萃取液,回收正丁醇得到正丁醇萃取物200g;
将乙酸乙酯萃取物50g经正相硅胶柱层析分离,体积比为95:5→50:50的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为5倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为15:1和4:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前1.25倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份A,依次接下来的0.75倍柱体积、0.5倍柱体积、0.5倍柱体积、0.75倍柱体积、1.25倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份B、组份C、组份D、组份E和组份F,回收溶剂后,分别得到组份A:0.5g、组份B:4.5g、组份C:9.0g、组份D:12.5g、组份E:4.8g、组份F:5.1g6个组份;
将正丁醇萃取物200g经正相硅胶柱层析分离,体积比为90:10→35:65的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为5倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为10:1和3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前1.5倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份G,依次接下来的1倍柱体积、0.5倍柱体积、0.5倍柱体积、1.5倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份H、组份I、组份J和组份K,回收溶剂后,得到组份G:4.6g、组份H:10.3g、组份I:29.4g、组份J:37.7g、组份K:8.2g5个组份;
将组份A 0.5g经正相硅胶柱层析分离,用分析纯的氯仿洗脱,洗脱液用量为8倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为10:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3.2倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份A-1,依次接下来的0.8倍柱体积、4倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份A-2和组份A-3,将其中组分A-2回收溶剂后,得到单体化合物45mg,经结构鉴定为:10-甲氧基美迪紫檀素;
将组份B 4.5g经正相硅胶柱层析分离,以体积比为95:5→60:40的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为8倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为6:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3.2倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份B-1,依次接下来的1.6倍柱体积、3.2倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份B-2和组份B-3,将其中组分B-2回收溶剂后,再用100ml甲醇重结晶得到单体化合物310mg,经结构鉴定为:胡萝卜苷;
将组份C 9.0g经正相硅胶柱层析分离,以体积比为95:5→60:40的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为6:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-1,依次接下来的3倍柱体积、4倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-2和组份C-3,回收溶剂后,得到组份C-1:1.1g、组份C-2:1.4g、组份C-3:3.7g3个组份;
将组份C-1 1.1g经Sephadex LH-20凝胶柱层析分离,用分析纯的甲醇洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为6:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-1-1,依次接下来的1倍柱体积、6倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-1-2和组份C-1-3,将其中组分C-1-2回收溶剂后,得到单体化合物180mg,经结构鉴定为:乙酰黄芪皂苷Ⅰ;
将组份C-2 1.4g经Sephadex LH-20凝胶柱层析分离,用分析纯的甲醇洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为5:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前5倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-2-1,依次接下来的2倍柱体积、3倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-2-2和组份C-2-3,将其中组分C-2-2回收溶剂后,得到单体化合物415mg,经结构鉴定为:2-羟基-3,4-二甲氧基异黄烷-7-O-β-D-吡喃葡萄糖苷;
将组份C-3 3.7g经正相硅胶柱层析分离,以体积比为90:10→50:50的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为5:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-3-1,依次接下来的2.5倍柱体积、4.5倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-3-2和组份C-3-3,将其中组分C-3-2回收溶剂后,得到单体化合物1.5g,经结构鉴定为:9,10-二甲氧基紫檀烷-3-O-β-D-吡喃葡萄糖苷;
将组份E 4.8g经甲醇50ml重结晶得到单体化合物2.5g,经结构鉴定为:毛蕊异黄酮-7-O-β-D-吡喃葡萄糖苷;
将组份F 5.1g经硅胶柱层析分离,以体积比为100:0→55:45的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为4:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4.5倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份F-1,依次接下来的1.5倍柱体积、4倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份F-2和组份F-3,将组分F-2回收溶剂后,得到单体化合物3.1g,经结构鉴定为:黄芪甲苷;
将组份H 10.3g经甲醇100ml重结晶得到单体化合物5.7g,经结构鉴定为:芒柄花苷;
将组份K 8.2g经Sephadex LH-20凝胶柱层析分离,用分析纯的甲醇洗脱,洗脱液用量为12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前7.2倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份K-1,接下来的4.8倍柱体积的洗脱液斑点相近,收集为组份K-2,回收溶剂后,得到组份K-1:3.0g、组份K-2:2.6g2个组份;
将组份K-1 3.0g经反相C18硅胶柱层析分离,以体积比为15:85→90:10的甲醇-水梯度洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份K-1-1,依次接下来的0.8倍柱体积、5.2倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份K-1-2和组份K-1-3,将组分K-1-2回收溶剂后,得到单体化合物320mg,经结构鉴定为:环黄芪苷E;
将组份K-2 2.6g经反相C18硅胶柱层析分离,以体积比为10:90→85:15的甲醇-水梯度洗脱,洗脱液用量为12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4.16倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份K-2-1,依次接下来的1.44倍柱体积、6.4倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份K-2-2和组份K-2-3,将组分K-2-2回收溶剂后,得到单体化合物240mg,经结构鉴定为:黄芪皂苷Ⅵ。
3.一种注射用黄芪皂苷中单体化合物的分离方法,其特征在于该方法包括如下步骤:
取黄芪药材30kg,切片,加体积浓度为50%的含水乙醇10倍回流提取,提取液除去乙醇,重新加入乙醇至混合溶液的乙醇体积含量至85%进行沉淀和过滤,滤液调节至pH9.0后沉淀过滤,滤液调节至pH6.5-7.5,按原料药/水为1.8/1的量加水混合后,在5℃低温下沉淀后过滤,滤液用大孔吸附树脂D-101吸附,以30%浓度的含水乙醇洗脱至洗脱液几乎无色除杂,再以75%浓度的含水乙醇解吸附洗脱并收集,将除去乙醇后的解吸附浓缩溶液调节pH至12.0后,用经水饱和的正丁醇提取,提取液除去正丁醇后用丙酮-乙醚(2:1)进行沉淀,分离沉淀物为供注射剂用的黄芪皂苷,按注射剂标准检验,所得黄芪皂苷经全检完全符合注射用要求;
将黄芪皂苷150g先用水1000ml分散,用分析纯的乙酸乙酯萃取3次,每次750ml,合并乙酸乙酯萃取液,回收乙酸乙酯得到乙酸乙酯萃取物22g;萃取后的水相用分析纯的正丁醇萃取3次,每次750ml,合并正丁醇萃取液,回收正丁醇得到正丁醇萃取物99g;
将乙酸乙酯萃取物22g经正相硅胶柱层析分离,体积比为100:0→65:35的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为15:1和4:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前2.5倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份A,依次接下来的1.5倍柱体积、1倍柱体积、1倍柱体积、1.5倍柱体积、2.5倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份B、组份C、组份D、组份E和组份F,回收溶剂后,分别得到组份A:0.2g、组份B:2.0g、组份C:4.4g、组份D:5.9g、组份E:2.4g、组份F:2.5g6个组份;
将正丁醇萃取物65g经正相硅胶柱层析分离,体积比为85:15→35:65的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为8倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为10:1和3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前2.4倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份G,依次接下来的1.6倍柱体积、0.8倍柱体积、0.8倍柱体积、2.4倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份H、组份I、组份J和组份K,回收溶剂后,得到组份G:2.3g、组份H:5.0g、组份I:15g、组份J:20.5g、组份K:3.9g5个组份;
将组份A 0.2g经正相硅胶柱层析分离,用分析纯的氯仿洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为10:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份A-1,依次接下来的1倍柱体积、5倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份A-2和组份A-3,将其中组分A-2回收溶剂后,得到单体化合物20mg,经结构鉴定为:10-甲氧基美迪紫檀素;
将组份B 2.0g经正相硅胶柱层析分离,以体积比为100:0→60:40的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为6:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4.8倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份B-1,依次接下来的2.4倍柱体积、4.8倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份B-2和组份B-3,将其中组分B-2回收溶剂后,再用80ml甲醇重结晶得到单体化合物150mg,经结构鉴定为:胡萝卜苷;
将组份C 4.4g经正相硅胶柱层析分离,以体积比为95:5→50:50的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为6:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3.6倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-1,依次接下来的3.6倍柱体积、4.8倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-2和组份C-3,回收溶剂后,得到组份C-1:0.5g、组份C-2:0.9g、组份C-3:2.3g3个组份;
将组份C-1 0.5g经Sephadex LH-20凝胶柱层析分离,用分析纯的甲醇洗脱,洗脱液用量为12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为6:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3.6倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-1-1,依次接下来的1.2倍柱体积、7.2倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-1-2和组份C-1-3,将其中组分C-1-2回收溶剂后,得到单体化合物84mg,经结构鉴定为:乙酰黄芪皂苷Ⅰ;
将组份C-2 0.9g经Sephadex LH-20凝胶柱层析分离,用分析纯的甲醇洗脱,洗脱液用量为12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为5:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前6倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-2-1,依次接下来的2.4倍柱体积、3.6倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-2-2和组份C-2-3,将其中组分C-2-2回收溶剂后,得到单体化合物186mg,经结构鉴定为:2-羟基-3,4-二甲氧基异黄烷-7-O-β-D-吡喃葡萄糖苷;
将组份C-3 2.3g经正相硅胶柱层析分离,以体积比为90:10→55:45的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为15倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为5:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4.5倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C-3-1,依次接下来的3.75倍柱体积、6.75倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C-3-2和组份C-3-3,将其中组分C-3-2回收溶剂后,得到单体化合物740mg,经结构鉴定为:9,10-二甲氧基紫檀烷-3-O-β-D-吡喃葡萄糖苷;
将组份E 2.4g经甲醇50ml重结晶得到单体化合物1.3g,经结构鉴定为:毛蕊异黄酮-7-O-β-D-吡喃葡萄糖苷;
将组份F 2.5g经硅胶柱层析分离,以体积比为90:10→50:50的氯仿-甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为4:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前5.4倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份F-1,依次接下来的1.8倍柱体积、4.8倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份F-2和组份F-3,将组分F-2回收溶剂后,得到单体化合物1.4g,经结构鉴定为:黄芪甲苷;
将组份H 5.0g经甲醇100ml重结晶得到单体化合物2.8g,经结构鉴定为:芒柄花苷;
将组份K 3.9g经Sephadex LH-20凝胶柱层析分离,用分析纯的甲醇洗脱,洗脱液用量为8倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4.8倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份K-1,接下来的3.2倍柱体积的洗脱液斑点相近,收集为组份K-2,回收溶剂后,得到组份K-1:1.7g、组份K-2:1.5g2个组份;
将组份K-1 1.7g经反相C18硅胶柱层析分离,以体积比为10:90→85:15的甲醇-水梯度洗脱,洗脱液用量为15倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前6倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份K-1-1,依次接下来的1.25倍柱体积、7.75倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份K-1-2和组份K-1-3,将组分K-1-2回收溶剂后,得到单体化合物148mg,经结构鉴定为:环黄芪苷E;
将组份K-2 1.5g经反相C18硅胶柱层析分离,以体积比为15:85→85:15的甲醇-水梯度洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3.5倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份K-2-1,依次接下来的1.2倍柱体积、5.3倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份K-2-2和组份K-2-3,将组分K-2-2回收溶剂后,得到单体化合物115mg,经结构鉴定为:黄芪皂苷Ⅵ。
CN 201010169411 2010-05-11 2010-05-11 注射用黄芪皂苷中单体化合物的分离方法 Active CN102241685B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN 201010169411 CN102241685B (zh) 2010-05-11 2010-05-11 注射用黄芪皂苷中单体化合物的分离方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN 201010169411 CN102241685B (zh) 2010-05-11 2010-05-11 注射用黄芪皂苷中单体化合物的分离方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN102241685A CN102241685A (zh) 2011-11-16
CN102241685B true CN102241685B (zh) 2013-11-06

Family

ID=44959958

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN 201010169411 Active CN102241685B (zh) 2010-05-11 2010-05-11 注射用黄芪皂苷中单体化合物的分离方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN102241685B (zh)

Families Citing this family (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102861123B (zh) * 2012-10-22 2014-12-24 陕西新药技术开发中心 一种具有促血管新生作用的中药提取物及其制备方法和应用
CN103285071B (zh) * 2013-06-21 2014-11-19 上海中医药大学 黄芪总皂苷的医药用途
CN104122287B (zh) * 2014-08-01 2016-08-17 山西大学 一种野生黄芪和栽培黄芪的鉴别方法
CN105801594B (zh) * 2016-04-28 2018-01-12 陕西师范大学 一种川赤芍醇及其结构类似物的合成方法
CN108721311A (zh) * 2017-04-19 2018-11-02 陈曦 黄芪皂苷在制备促进神经干细胞再生的药物中的应用
CN107260777B (zh) * 2017-06-28 2020-12-08 南京中医药大学 一种具有抗肿瘤活性的八月札精制总皂苷及其应用

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1682862A (zh) * 2005-02-24 2005-10-19 四川科伦药业股份有限公司 注射用黄芪皂苷的制备方法
CN1854148A (zh) * 2005-02-06 2006-11-01 成都地奥九泓制药厂 黄芪总苷提取物及其制备方法
US20100099633A1 (en) * 2005-06-23 2010-04-22 Nuliv Holding Inc. Method for enhancing nutrient absorption with astragalosides

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1854148A (zh) * 2005-02-06 2006-11-01 成都地奥九泓制药厂 黄芪总苷提取物及其制备方法
CN1682862A (zh) * 2005-02-24 2005-10-19 四川科伦药业股份有限公司 注射用黄芪皂苷的制备方法
US20100099633A1 (en) * 2005-06-23 2010-04-22 Nuliv Holding Inc. Method for enhancing nutrient absorption with astragalosides

Non-Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Effects of triterpene saponins from Astragalus species on in vitro cytokine release;Erdem Yesilada,等;《Journal of Ethnopharmacology》;20050104;第96卷(第1-2期);第71-77页 *
膜荚黄芪的化学成分研究;杨芮平,等;《中国药物化学杂志》;20081231;第18卷(第6期);第457-460页 *
蒙古黄芪干燥根的化学成分研究;李瑞芬;《沈阳药科大学硕士学位论文》;20061215;第8-12,20-22页 *
蒙古黄芪的化学成分研究;温宇寒;《中国医科大学硕士学位论文》;20080915;第8-14页 *
黄芪主要化学成分制备及含量测定方法研究;程亮;《中国医科大学硕士学位论文》;20091115;第7-13页 *
黄芪皂苷的提取及含量测定;王培培,等;《中国实验方剂学杂志》;20100430;第16卷(第4期);第27-30页 *

Also Published As

Publication number Publication date
CN102241685A (zh) 2011-11-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN102241685B (zh) 注射用黄芪皂苷中单体化合物的分离方法
CN101157947B (zh) 一种从石蒜属植物中提取活性生物碱的方法
CN101559088B (zh) 穿心莲总内酯与新穿心莲内酯、脱水穿心莲内酯、去氧穿心莲内酯的生产工艺
US9109003B2 (en) Extraction method for Ilex kudingcha C. J. Tseng leaves, total saponins and use thereof
EP3412679B1 (en) Baicalin magnesium, preparation method thereof and application of same
CN103145677B (zh) 一种利用高速逆流色谱分离白木香叶片中活性成分的方法
CN101343305A (zh) 黄芪甲苷的制备方法
CN101935359B (zh) 一种短葶山麦冬多糖及其制备方法
CN102895294B (zh) 一种黄芪注射液及其制备方法
CN101862385A (zh) 地榆总皂苷及地榆皂苷i的制备方法
CN102875450A (zh) 一种从桑叶中提取制备1-脱氧野尻霉素的工艺方法
CN101322758A (zh) 利用复合酶生产酸枣仁提取物的方法
CN115703740B (zh) 一种草乌甲素的制备方法
CN109400566B (zh) 一种从卷柏属植物中提取分离高纯度穗花杉双黄酮的方法
CN101284861B (zh) 一种三萜皂苷类化合物及制备方法及用途
CN101456803B (zh) 一种纯化金丝桃素的方法
CN101531721B (zh) 一种三萜皂苷单体的工业化制备方法
CN101342227A (zh) 一种大豆皂苷的医药用途及其纯化方法
CN105031178A (zh) 一种高效利用知母的提取精制方法
CN101613384B (zh) 一种二羟基苯乙醇葡萄糖甙化合物及其制备方法
CN101375937A (zh) 一种柘木提取物、其制备及应用
CN101428049B (zh) 抗上呼吸道感染的药物组合物及其制备方法和应用
CN101176755B (zh) 槲皮素-7-o-葡萄糖甙在柘木或其制剂检测方法中的应用
CN103880896B (zh) 野金柴中分离新二氢查耳酮苷类化合物及其制备方法
CN101375938A (zh) 一种柘木提取物、其制备及应用

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
C14 Grant of patent or utility model
GR01 Patent grant