CN101993830A - 一种大肠杆菌感受态细胞的制备方法 - Google Patents

一种大肠杆菌感受态细胞的制备方法 Download PDF

Info

Publication number
CN101993830A
CN101993830A CN2009100674535A CN200910067453A CN101993830A CN 101993830 A CN101993830 A CN 101993830A CN 2009100674535 A CN2009100674535 A CN 2009100674535A CN 200910067453 A CN200910067453 A CN 200910067453A CN 101993830 A CN101993830 A CN 101993830A
Authority
CN
China
Prior art keywords
liquid
preparation
novel preparation
cell
abandon
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN2009100674535A
Other languages
English (en)
Inventor
张鹏举
张国梁
吴健
李旭
刘基伟
胡成华
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Jilin Academy of Agricultural Sciences
Original Assignee
Jilin Academy of Agricultural Sciences
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Jilin Academy of Agricultural Sciences filed Critical Jilin Academy of Agricultural Sciences
Priority to CN2009100674535A priority Critical patent/CN101993830A/zh
Publication of CN101993830A publication Critical patent/CN101993830A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

一种大肠杆菌感受态细胞的制备方法,属于微生物技术领域,其制备方法是:将离心管和新型制备液放入-20℃8-14小时,取菌株接种于LB平板,倒置37℃培养12-16小时;挑取单菌落接种于5mlLB液体培养基中,37℃摇床生长,取2ml培养物转种于200ml新鲜LB培养液中继续生长至菌液OD600为0.3-0.5;将菌液分装于冰冻的离心管中冰浴5min,4℃,离心5min,回收细胞;弃尽上清液,加入预冷的新型制备液重悬沉淀分装。有益效果是:获得了较高的转化率,对分子克隆实验意义重大。该方法操作简单,重复性好,转化效率高,具有极高的应用价值。

Description

一种大肠杆菌感受态细胞的制备方法
技术领域
本发明属于微生物技术领域。
背景技术
转化是将外源DNA分子引入受体细菌,使之获得新的遗传性状。这是现代分子生物学最基本的操作技术。转化效率直接影响前后试验的进展和工作效率,而感受态细胞的状态是影响转化效率最直接、关键的因素之一。通常有两种方法获得感受态细胞,一种是购于商业公司,这种感受态通常有较高的转化效率,每微克质粒DNA产生108个转化克隆的转化效率,但价格比较昂贵。另一种方法是实验室自己制备。目前常用的感受态细胞制备方法有CaCl2和RbCl/KCl法。RbCl/KCl法的感受态细胞转化效率较高,但需要特殊的试剂RbCl,CaCl2法简便易行,但转化效率较低。除上述两种方法外,还有制备超级感受态细胞的Inoue法和电穿孔法,Inoue法细菌的培养条件是18℃,一般的实验室很难达到。电穿孔法要求电穿孔仪,一般实验室不具有该设备。因而,研究一种转化效率高,重复性好,操作简单适用于普通实验室的感受态制备方法对与分子生物学的研究尤为必要,对分子克隆实验具有重要意义。
发明内容
本发明的目的是:提供一种大肠杆菌感受态细胞(E.coliCompetent Cells)的制备方法,它是一种转化效率高、方便、快捷、重复性好的感受态细胞制备和质粒转化方法。
本发明的制备方法是:
1)材料
LB液体培养基:蛋白胨8-12,酵母膏4-6,NaCl 8-12,蒸馏水定容900-1100,PH7.0,121℃灭菌20min。上述材料均为重量单位。
新型制备液:0.06M-0.1M的氯化钙溶液中PEG3350占体积比6-12%,甘油占体积比10-15%,加超纯水定容,121℃灭菌20min。
2)方法
预先将灭菌的离心管和新型制备液放入-20℃冰箱8-14小时,待制备感受态细胞时备用。所有的操作均要在冰上执行。
取菌株分区划线接种于LB平板,倒置37℃培养12-16小时;挑取单菌落接种于5ml LB液体培养基中,37℃摇床生长,取2ml培养物转种于200ml新鲜LB培养液中继续生长至菌液OD600为0.3-0.5;将菌液分装于冰冻的离心管中冰浴5min,4℃,离心5min,回收细胞;弃尽上清,将细菌沉淀重新悬浮于预冷的新型制备液中,冰浴5min;4℃离心5min;弃尽上清液将细菌沉淀重新悬浮于预冷的新型制备液,于4℃离心5min;弃尽上清液,加入预冷的新型制备液重悬沉淀,分装。
本发明的有益效果是:将氯化钙,甘油,PEG3350有机的按照一定的比例混在一起,制备感受态细胞,获得了较高的转化率,对分子克隆实验意义重大。该方法操作简单,重复性好,转化效率高,不但能满足常规的分子实验要求,还能够满足构建文库等复杂实验对转化效率的要求,是一项较为实用的新技术,具有极高的应用价值。
表1三种方法制备感受态转化效率比较
Figure B2009100674535D0000031
由表可知,我们的转化效率是传统氯化钙法的10-15倍,与商业公司的产品转化效率相当。
具体实施方式
实施例1、大肠杆菌JM109感受态细胞的制备及转化效率测定
本实施例中所用的材料和试剂如下:
材料:受体菌E.coli JM109由本实验室保存;pUC19(0.1μg)购自天根生物有限公司(北京)
试剂:LB液体培养基:蛋白胨10g,酵母膏5g,NaCl 10g,蒸馏水定容1L,PH7.0,121℃灭菌20min。新型制备液:0.07M的氯化钙溶液中PEG3350占体积比9%,甘油占体积比12%,加超纯水定容至1000毫升,121℃灭菌20min。
感受态细胞的制备:取菌株分区划线接种于LB平板,倒置37℃培养12-16小时。挑取单菌落接种于5ml LB液体培养基中,37℃培养12-16小时,取2ml培养物转种于200ml新鲜LB培养液中继续生长至菌液OD600为0.3-0.5;将菌液分装于50ml冰冻的离心管中冰浴5min;4℃1500g离心5min,回收细胞;弃尽上清,将细菌沉淀重新悬浮于20ml预冷的新型制备液中,冰浴5min;4℃,1500g离心5min;弃尽上清液,将细菌沉淀重新悬浮于20ml预冷的新型制备液,于4℃,1500g离心5min;弃尽上清液,加入4ml预冷的新型制备液重悬沉淀,分装,每管100ul。
转化效率的测定:取1μl PUC19质粒DNA加入100μl感受态细胞中;轻轻混合后,冰浴10min;42℃,热休克90sec,然后迅速置于冰浴冷却5min;加入900μl LB培养基,37℃振荡培养45min(转速:150rpm),使宿主菌复苏并表达抗性蛋白。取100μl稀释1000倍后取100μl涂布于相应的LB琼脂培养基。37℃倒置培养12~16h,待菌落长出后,菌落记数,计算转化效率。将该实验重复三次,每次做3个转化,计算平均值,确定转化效率。
实施例2、大肠杆菌DH5α感受态细胞的制备及转化效率测定
本实施例中所用的材料和试剂如下:
材料:受体菌E.coli DH5α,由本实验室保存;pUC19(0.1μg)购自天根生物有限公司(北京)
试剂:LB液体培养基:蛋白胨10g,酵母膏5g,NaCl 10g,蒸馏水定容1L,PH7.0,121℃灭菌20min。新型制备液:0.08M的氯化钙溶液中PEG3350占体积比8%,甘油占体积比11%,加超纯水定容至1000毫升,121℃灭菌20min。
感受态细胞的制备:取菌株分区划线接种于LB平板,倒置37℃培养12-16小时。挑取单菌落接种于5ml LB液体培养基中,37℃培养12-16小时,取2ml培养物转种于200ml新鲜LB培养液中继续生长至菌液OD600为0.3-0.5;将菌液分装于50ml冰冻的离心管中冰浴5min;4℃1200g离心5min,回收细胞;弃尽上清,将细菌沉淀重新悬浮于20ml预冷的新型制备液中,冰浴5min;4℃,1200g离心5min;弃尽上清液,将细菌沉淀重新悬浮于20ml预冷的新型制备液,于4℃,1200g离心5min;弃尽上清液,加入4ml预冷的新型制备液重悬沉淀,分装,每管100ul。
转化效率的测定:取1μl PUC19质粒DNA加入100μl感受态细胞中;轻轻混合后,冰浴10min;42℃,热休克90sec,然后迅速置于冰浴冷却5min;加入900μl LB培养基,37℃振荡培养45min(转速:150rpm),使宿主菌复苏并表达抗性蛋白。取100μl稀释1000倍后取100μl涂布于相应的LB琼脂培养基。37℃倒置培养12~16h,待菌落长出后,菌落记数,计算转化效率。将该实验重复三次,每次做3个转化,计算平均值,确定转化效率。
实施例3、大肠杆菌TOP10感受态细胞的制备及转化效率测定
本实施例中所用的材料和试剂如下:
材料:受体菌E.coli TOP10,由本实验室保存;pUC19(0.1μg)购自天根生物有限公司(北京)
试剂:LB液体培养基:蛋白胨10g,酵母膏5g,NaCl 10g,蒸馏水定容1L,PH7.0,121℃灭菌20min。新型制备液:0.075M的氯化钙溶液中PEG3350占体积比12%,甘油占体积比15%,加超纯水定容至1000毫升,121℃灭菌20min。
感受态细胞的制备:取菌株分区划线接种于LB平板,倒置37℃培养12-16小时。挑取单菌落接种于5ml LB液体培养基中,37℃培养12-16小时,取2ml培养物转种于200ml新鲜LB培养液中继续生长至菌液OD600为0.32-0.45;将菌液分装于50ml冰冻的离心管中冰浴5min;4℃1100g离心5min,回收细胞;弃尽上清,将细菌沉淀重新悬浮于20ml预冷的新型制备液中,冰浴5min;4℃,1100g离心5min;弃尽上清液,将细菌沉淀重新悬浮于20ml预冷的新型制备液,于4℃,1100g离心5min;弃尽上清液,加入4ml预冷的新型制备液重悬沉淀,分装,每管100ul。
转化效率的测定:取1μl PUC19质粒DNA加入100μl感受态细胞中;轻轻混合后,冰浴10min;42℃,热休克90sec,然后迅速置于冰浴冷却5min;加入900μl LB培养基,37℃振荡培养45min(转速:150rpm),使宿主菌复苏并表达抗性蛋白。取100μl稀释1000倍后取100μl涂布于相应的LB琼脂培养基。37℃倒置培养12~16h,待菌落长出后,菌落记数,计算转化效率。将该实验重复三次,每次做3个转化,计算平均值,确定转化效率。

Claims (1)

1.一种大肠杆菌感受态细胞的制备方法,其制备方法是:
a、材料
LB液体培养基:蛋白胨8-12,酵母膏4-6,NaCl 8-12,蒸馏水定容900-1100,PH7.0,121℃灭菌20min;上述材料均为重量单位;
新型制备液:0.06M-0.1M的氯化钙溶液中PEG3350占体积比6-12%,甘油占体积比10-15%,加超纯水定容,121℃灭菌20min;
b、方法
预先将灭菌的离心管和新型制备液放入-20℃冰箱8-14小时,待制备感受态细胞时备用,所有的操作均要在冰上执行;
取菌株分区划线接种于LB平板,倒置37℃培养12-16小时;挑取单菌落接种于5ml LB液体培养基中,37℃摇床生长,取2ml培养物转种于200ml新鲜LB培养液中继续生长至菌液OD600为0.3-0.5;将菌液分装于冰冻的离心管中冰浴5min,4℃,离心5min,回收细胞;弃尽上清,将细菌沉淀重新悬浮于预冷的新型制备液中,冰浴5min;4℃离心5min;弃尽上清液,将细菌沉淀重新悬浮于预冷的新型制备液,于4℃离心5min;弃尽上清液,加入预冷的新型制备液重悬沉淀,分装。
CN2009100674535A 2009-08-28 2009-08-28 一种大肠杆菌感受态细胞的制备方法 Pending CN101993830A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN2009100674535A CN101993830A (zh) 2009-08-28 2009-08-28 一种大肠杆菌感受态细胞的制备方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN2009100674535A CN101993830A (zh) 2009-08-28 2009-08-28 一种大肠杆菌感受态细胞的制备方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN101993830A true CN101993830A (zh) 2011-03-30

Family

ID=43784586

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN2009100674535A Pending CN101993830A (zh) 2009-08-28 2009-08-28 一种大肠杆菌感受态细胞的制备方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN101993830A (zh)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103045525A (zh) * 2013-01-22 2013-04-17 康盈创新生物技术(北京)有限公司 一种大肠杆菌高效感受态细胞的制备方法
CN110777106A (zh) * 2019-11-29 2020-02-11 宁波酶赛生物工程有限公司 一种电感受态细胞的制备方法
CN113430157A (zh) * 2021-07-14 2021-09-24 山东大学 一株适用多种感受态制备方法的高效价大肠杆菌克隆菌株及其应用
CN115786214A (zh) * 2022-12-26 2023-03-14 湖北擎科生物科技有限公司 感受态大肠杆菌的高密度发酵培养基及高密度发酵培养方法

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
A.NISHIMURA等: "A rapid and highly efficient method for preparation of competent Escherichia coli cells", 《NUCLEIC ACIDS RESEARCH》 *
房功思: "浅谈大肠杆菌感受态细胞的几种制备方法", 《技术与实践》 *
李路怡等: "大肠杆菌最佳感受态细胞制备的探讨", 《生命科学研究》 *

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103045525A (zh) * 2013-01-22 2013-04-17 康盈创新生物技术(北京)有限公司 一种大肠杆菌高效感受态细胞的制备方法
CN110777106A (zh) * 2019-11-29 2020-02-11 宁波酶赛生物工程有限公司 一种电感受态细胞的制备方法
CN110777106B (zh) * 2019-11-29 2023-02-03 宁波酶赛生物工程有限公司 一种电感受态细胞的制备方法
CN113430157A (zh) * 2021-07-14 2021-09-24 山东大学 一株适用多种感受态制备方法的高效价大肠杆菌克隆菌株及其应用
CN113430157B (zh) * 2021-07-14 2023-02-17 山东大学 一株适用多种感受态制备方法的高效价大肠杆菌克隆菌株及其应用
CN115786214A (zh) * 2022-12-26 2023-03-14 湖北擎科生物科技有限公司 感受态大肠杆菌的高密度发酵培养基及高密度发酵培养方法
CN115786214B (zh) * 2022-12-26 2023-08-18 湖北擎科生物科技有限公司 感受态大肠杆菌的高密度发酵培养基及高密度发酵培养方法

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Cao et al. Improving of lipid productivity of the oleaginous microalgae Chlorella pyrenoidosa via atmospheric and room temperature plasma (ARTP)
Tang et al. Scale-up study on the fed-batch fermentation of Ganoderma lucidum for the hyperproduction of ganoderic acid and Ganoderma polysaccharides
Wang et al. Isolation of a novel alginate lyase‐producing Bacillus litoralis strain and its potential to ferment Sargassum horneri for biofertilizer
CN109971663B (zh) 一株耐热亚罗解脂酵母及其应用
CN111893074B (zh) 一种纺锤形赖氨酸芽孢杆菌菌株及其用途
CN101993830A (zh) 一种大肠杆菌感受态细胞的制备方法
WO2021223770A1 (zh) 一种产类胡萝卜素的酵母突变菌株及其突变位点应用
CN112852678A (zh) 一株产烟酰胺单核苷酸的成都肠杆菌及其应用
Chen et al. A novel native bioenergy green alga can stably grow on waste molasses under variable temperature conditions
CN104726355B (zh) 酿酒酵母孢子表达的(s)‑羰基还原酶ii不对称转化制备(s)‑苯乙二醇的方法
CN103981106B (zh) Dha高产菌株及其应用
Wang et al. Research on separation, identification, and kinetic characterization of mixed photosynthetic and anaerobic culture (MPAC) for hydrogen production
CN102703509A (zh) 一种提高改良的Shewanella oneidensis MR-1遗传转化的方法
CN110885772B (zh) 一株产海藻糖酶的分散泛菌及其分离筛选和应用
Wang et al. Isolation and application of thermophilic and psychrophilic microorganisms in the composting process
WO2023284891A1 (zh) 一种低温耐酸酿酒酵母菌及其筛选方法与应用
CN106434466A (zh) 一种产生天然红色素的赤红球菌及其制备方法与应用
WO2022262874A1 (zh) 一种伯克霍尔德菌及其发酵产fr901464的方法
CN103923853B (zh) 一株类芽孢杆菌及其用于κ-卡拉胶酶的制备方法
CN103805548B (zh) 一种新型感受态细胞的制备方法及其转化步骤
Silva et al. Biomass production of Tolypothrix tenuis as a basic component of a cyanobacterial biofertilizer
CN103497925B (zh) 一株降解磺酰脲类除草剂的基因工程菌KT-puts2及其应用
CN110305797B (zh) 一株花青素产生菌株cj6及其应用
CN104403969A (zh) 一种可降解孔雀石绿的过氧化物酶及其制备方法
CN105296399B (zh) 一株马氏副球菌及其在促进聚球藻生长中的应用

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
C02 Deemed withdrawal of patent application after publication (patent law 2001)
WD01 Invention patent application deemed withdrawn after publication

Application publication date: 20110330