CN101870731A - 双甲胺草磷(h-9201)的多克隆抗体及其制备方法和应用 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种双甲胺草磷(H-9201)的多克隆抗体及其制备方法和应用,多克隆抗体是由半抗原与牛血清白蛋白BSA偶联获得免疫抗原,免疫新西兰大白兔后获得,其特征在于:半抗原为设计合成的分子结构式(4)的双甲胺草磷过渡态类似化合物,并引入羧基制备半抗原;其次,采用活性酯法将半抗原与载体蛋白偶联获得完全抗原;经动物免疫获得多克隆抗体,建立了ELISA检测方法,本发明可对水体样本中双甲胺草磷(H-9201)农药残留进行检测。其优点是:双甲胺草磷(H-9201)的多克隆抗体的制备可以用于水体中的双甲胺草磷(H-9201)农药残留进行快速,大量样本的筛查。
Description
技术领域:
本发明涉及一种双甲胺草磷(H-9201)多克隆抗体的制备方法及其应用。
背景技术:
双甲胺草磷(H-9201)是由我国自主研发的,具有独立知识产权的一种新型农用除草剂,该化合物是利用活性与构效关系(QSAR)预测了其活性,并合成的新化合物,其化学名称为:O-甲基-O-(2,4-二甲基-6-硝基苯氧基)-N-异丙基硫代磷酰胺酯,分子量为318.5,是一种硫化磷酰胺酯类化合物,商品名为双甲胺草磷。该化合物是一种内吸传导型选择性土壤处理水旱两用除草剂,可用于大豆、水稻、小麦、玉米、蔬菜等作物,防除多种一年生单、双子叶杂草,杀草谱广,且可与多种除草剂品种复配,田间药效试验未发现对后茬作物生长的影响,是一种具有广泛应用价值的新型除草剂品种。
目前对双甲胺草磷(H-9201)残留检测的研究报道仅见气相色谱法(参见张存政,张志勇,刘媛,王冬兰,刘贤进.新型除草剂双甲胺草磷(H-9201)在胡萝卜和土壤中的残留动态研究.分析科学学报,2007,23(3):337-339.),有关双甲胺草磷(H-9201)的抗体制备以及免疫分析法及其在残留检测中的应用,国内外均未见文献报道。
发明内容:
本发明的目的在于:针对目前双甲胺草磷(H-9201)抗体匮乏,提供一种半抗原为设计合成的结构为分子式(4)的双甲胺草磷过渡态类似化合物的双甲胺草磷(H-9201)的多克隆抗体及其制备方法和应用。
本发明的目的是这样实现的:一种双甲胺草磷(H-9201)的多克隆抗体,由半抗原与牛血清白蛋白BSA偶联获得免疫抗原,免疫新西兰大白兔后获得,其特征在于:半抗原是由的双甲胺草磷过渡态类似化合物引入羧基制备,所述双甲胺草磷过渡态类似化合物为分子结构式(4),
化学名称为:O-甲基-O-(2,4-二甲基-6-硝基苯氧基)-氨基硫代磷酰胺酯,分子量为:276.249。
在双甲胺草磷(H-9201)的多克隆抗体中,适合动物免疫的半抗原-载体蛋白偶联物的结构为分子式(1),
其中,R为BSA或OVA。
它是以设计合成的双甲胺草磷过渡态类似化合物为半抗原,以琥珀酸酐为桥梁,使一个羧基与半抗原的氨基联结,继尔以活性酯法使之与载体蛋白偶联后获得的:
上述设计合成的双甲胺草磷过渡态类似化合物的合成具体步骤如下:
(1)分子结构式(6)的甲氧基硫代磷酰二氯的合成
三氯硫磷预冷后,缓慢滴加甲醇,溶液温度控制在-5℃以下,三氯硫磷∶甲醇的克分子比1∶5。甲醇滴加完毕后,持续搅拌15min。冰水洗涤溶液。分层后,取下层,获得甲氧基硫代磷酰二氯,-20℃保存,分子结构式(6)。
(2)分子结构式(5)化合物的合成
将30ml甲氧基硫代磷酰二氯、DMNT的丙酮混合液预冷至5~10℃,滴加三乙胺催化反应,监测pH约为6;将20%氢氧化钠水溶液,滴加到反应液当中,滴加完后pH约为12;反应体系中甲氧基硫代磷酰二氯∶DMNT∶NaOH的克分子比为1∶1∶1.1。反应溶液抽滤除去盐酸盐后保存滤液,获得含有结构为分子式(5)化合物的丙酮溶液。
(3)分子结构式(4)的双甲胺草磷过渡态类似化合物的合成
将含有为分子结构式(5)化合物的丙酮溶液预冷至5~10℃,向其中滴加氨水。氨水滴加完后pH约为8,滴加40%的氢氧化钠水溶液至PH为10,脱去丙酮,加入30mL乙醚分两次萃取,水洗涤乙醚层,经无水硫酸镁干燥后,脱去乙醚。柱层析分离,取中间的组分,脱去溶剂,获得双甲胺草磷过渡态类似化合物,为分子结构式(4)。
上述双甲胺草磷(H-9201)的多克隆抗体的制备,其特征在于:用活性酯法使半抗原与牛血清白蛋白偶联,合成免疫抗原,再将免疫抗原用于免疫新西兰大白兔,获得双甲胺草磷(H-9201)的多克隆抗体。
在双甲胺草磷(H-9201)的多克隆抗体的制备中:活性酯法合成免疫抗原的步骤是:
0.5mM的双甲胺草磷过渡态类似化合物与0.8mM的琥珀酸酐乙腈溶液共10ml充分混匀,滴加0.5mM DMAP乙腈溶液,50℃搅拌反应2小时;终止反应后加入50ml蒸馏水,用二氯甲烷萃取,有机相经无水硫酸镁除水后,脱去有机溶剂,获得分子结构式(3)的化合物,形成半抗原;向0.3mM分子结构式(3)化合物的二氯甲烷溶液中加入DMF溶解的0.23mM的NHS,0.33mM的DCC,0.033mM的DMAP,0℃搅拌反应过夜;次日10000g离心10min,弃去沉淀,脱去溶剂,以DMF溶解所得活化酯,分子结构式(2),将活化酯溶液缓慢加入到5mL预冷的含有40mg牛血清白蛋白BSA的磷酸盐缓冲液中,磷酸盐缓冲液的pH为9.0,4℃反应过夜;
将反应混合液装入透析袋中,在去离子水中4℃透析3天,每8小时换水一次,透析结束后获得适合动物免疫的免疫抗原,如分子结构式(1),将它们分装-20℃保存中备用;
将免疫抗原用于免疫新西兰大白兔,获得双甲胺草磷的多克隆抗体。
上述双甲胺草磷(H-9201)的多克隆抗体的应用,其特征在于:将所述多克隆抗体采用间接竞争性ELISA法对水体中双甲胺草磷(H-9201)的残留进行检测,检测中使用的包被抗原为半抗原通过活性酯法与卵清蛋白OVA的偶联物。
在双甲胺草磷(H-9201)的多克隆抗体的应用中:活性酯法合成包被抗原的步骤同前述与免疫抗原的BSA的合成过程,其区别仅在于在磷酸盐缓冲液中用卵清蛋白OVA替代牛血清白蛋白BSA;
在双甲胺草磷(H-9201)的多克隆抗体的应用中:多克隆抗体采用间接竞争性ELISA法对水体中双甲胺草磷(H-9201)的残留进行检测是指:将被测样品提取、净化后制备得到ELISA待测液,然后利用间接竞争性ELISA法进行检测,最后通过标准曲线计算出待测样品中的双甲胺草磷(H-9201)含量。
本发明的优点在于:双甲胺草磷(H-9201)的多克隆抗体的制备方法简单,可以用于对样本中的双甲胺草磷(H-9201)农药残留进行快速检测,适合大量样品快速筛查检测。
附图说明
图1是双甲胺草磷过渡态类似化合物的核磁共振图(NMR);
图2是图1的局部放大图;
图3是双甲胺草磷过渡态类似化合物的液相色谱-质谱图(LC/MS),其中a是化合物总离子流图,b是该化合物的多级质谱图;
图4是分子结构式(3)的化合物的液相色谱/质谱图(LC/MS);
图5是双甲胺草磷(H-9201)半抗原(hapten)、BSA及偶联物(hap-bsa)的紫外扫描图谱;
图6是双甲胺草磷(H-9201)半抗原(hapten)、OVA及偶联物(hap-ova)的紫外扫描图谱;
图7是间接竞争ELISA法建立的双甲胺草磷(H-9201)检测标准抑制曲线。
具体实施方式
通过下述实施实例结合附图有助于进一步理解本发明,但并不限制本发明的内容。
实施例1.双甲胺草磷过渡态类似化合物的制备
以三氯硫磷与甲醇为原料,溶液温度控制在-5℃以下进行反应,冰水洗涤溶液留取下层,得到甲氧基硫代磷酰二氯。
在5~10℃丙酮溶液温控条件下,以三乙胺为催化剂,甲氧基硫代磷酰)与2,4-二甲基-6-硝基苯酚(DMNT),氢氧化钠(NaOH)反应获得含有分子结构式(5)化合物的丙酮溶液。
将含有分子结构式(5)的化合物溶液预冷至5~10℃,向其中滴加氨水。氨水滴加完后pH约为8,滴加40%的氢氧化钠水溶液至PH为10,脱去丙酮,加入30mL乙醚分两次萃取,水洗涤乙醚层,经无水硫酸镁干燥后,脱去乙醚。柱层析分离,取中间的组分,脱去溶剂,获得双甲胺草磷过渡态类似化合物;TLC监控反应出现新的产物斑点(展开剂:石油醚∶乙酸乙酯=4∶1);经NMR,LC/MS鉴定结构与分子量正确,产率为78%。见图1~图3。
产物的1H NMR数据:2.77(t,J=7.2,3H,OCH2CH3),2.04(s,3H,COCH3),2.34(s,3H,PhCH3),2.44(s,3H,PhCH3),3.70(bd,3H,NH2),3.77,3.80(ss,3H,OCH3),4.09(q,J=7.1,2H,OCH2CH3),7.27(s,1H,PhH),7.51(s,1H,PhH)
实施例2.分子结构式(3)的化合物的制备
0.5mM的双甲胺草磷过渡态类似化合物与0.8mM的琥珀酸酐乙腈溶液共10ml充分混匀,滴加0.5mM DMAP乙腈溶液,50℃搅拌反应2小时;终止反应后加入50ml蒸馏水,用二氯甲烷萃取,有机相经无水硫酸镁除水后,脱去有机溶剂,获得分子结构式(3)的化合物。其液相色谱/质谱鉴定图(LC/MS)见图4。
实施例3.抗原的合成
向含有0.3mM分子结构式(3)化合物的二氯甲烷溶液中加入0.23mM的NHS,0.33mM的DCC,0.033mM的DMAP,0℃搅拌反应过夜;次日10000g离心10min,弃去沉淀,脱去溶剂,以DMF溶解所得活化酯,将活化酯溶液缓慢加入到5mL预冷的含有40mg牛血清白蛋白BSA的磷酸盐缓冲液中,磷酸盐缓冲液的pH为9.0,4℃反应过夜;
反应结束后,将反应混合液装入透析袋中,在去离子水中4℃透析3天,每8小时换水一次,透析结束后获得分子结构式(1)的免疫抗原,分装并保存于-20℃冰箱中备用。如图5图6所示的紫外扫描图谱可见,半抗原(hapten)、载体蛋白(BSA或OVA)的最大吸收峰分别为260nm和278nm,而偶联物(hap-bsa或hap-ova)的最大吸收峰介于260nm~278nm之间,初步证明偶联成功。在图5中,由上至下分别为半抗原,BSA,偶联物;在图6中,由从上至下分别为半抗原,偶联物,OVA。
实施例4.双甲胺草磷(H-9201)多克隆抗体的制备
用合成的偶联物作为免疫抗原Hapten-BSA,选取2只1.5~2.0kg的纯种新西兰大白兔作为试验动物,进行皮下多点注射免疫,试验前一周采集阴性血清。首次免疫采用1mg免疫原与弗氏完全佐剂等体积混和,背部皮下多点注射。三周后用同样剂量免疫原与等体积不完全弗氏佐剂进行加强免疫,每两周加强1次,共加强4次。最后一次免疫用2mg免疫原与等体积的生理盐水混合,耳缘静脉注射。七天后心脏采血,血液4℃放置过夜,凝结后吸取清,40%饱和硫酸铵溶液沉淀,离心去上清,沉淀用PH7.4的磷酸缓冲液溶解,超滤管脱盐纯化血清后,即得多克隆抗体。
实施例5间接非竞争ELISA法测定抗体的滴度及工作浓度
(1)工作浓度的确定
方阵滴定法确定抗体及包被抗原的工作浓度。选择OD值为1.0时的抗原抗体稀释浓度作为包被抗原抗原、抗体工作浓度,最终选择的包被抗原稀释倍数为1/512(以蛋白计,包被抗原实际浓度为2.3μg/mL),抗体的工作浓度为1/18,000。具体操作步骤如下:
①包被:CBS包被缓冲液将包被抗原倍比稀释2n(n=7,8,9,10)4组,分别加于96孔酶标微孔板的A和B、C和D、E和F、G和H的四组八行中,100μL/孔,4℃过夜。
②封闭:每孔加1%OVA封闭液200μL,37℃孵育1h。
③加样:将倍比稀释的六组抗体分别加于酶标板的1和2、3和4、5和6、7和8、9和10、11和12的六组十二列孔中,100μL/孔,以阴性血清作对照,PBS溶液为空白,37℃孵育2h。
④加酶标二抗:用含1%OVA的PBS溶液稀释酶标二抗到工作浓度,100μL/孔加入酶标板,37℃孵育1h。
(以上每一步结束都用PBST洗涤液洗3次)
⑤显色:将底物溶液加到酶标板上,100μL/孔,37℃显色15min。
⑥终止反应:将2M H2SO4快速加到96孔中,50μL/孔,450nm读取光吸收值。
(2)效价的测定
用方阵滴定法确定的包被原工作浓度包被96孔酶标微孔板,将抗血清(阳性血清)和阴性血清进行倍比稀释,以PBS溶液作为空白对照,用间接非竞争ELISA法测定抗体效价,具体步骤按照以下步骤进行。以A阳/A阴>2.1的最大稀释倍数作为抗体的最终效价。抗体计算获得的最终效价为1/102,400。具体操作步骤如下:
①包被:CBS包被缓冲液将2μg/ml包被原倍加入96孔酶标微孔板中,100μL/孔,4℃过夜。
②封闭:每孔加1%OVA封闭液200μL,37℃孵育1h。
③加样:将倍比稀释1000×2n(n=7,8,9,10,11,12)的六组抗体分别加于酶标板的1和2、3和4、5和6、7和8、9和10、11和12的六组十二列孔中,100μL/孔,以阴性血清作对照,PBS溶液为空白,37℃孵育2h。
④加酶标二抗:用含1%OVA的PBS溶液稀释酶标二抗到工作浓度,100μL/孔加入酶标板,37℃孵育1h。
(以上每一步结束都用PBST洗涤液洗3次)
⑤显色:将底物溶液加到酶标板上,100μL/孔,37℃显色15min。
⑥终止反应:将2M H2SO4快速加到96孔中,50μL/孔,450nm读取光吸收值。
当光吸收值低于0.2时为阴性血清;当光吸收值高于0.2时为阳性血清。
实施例6.间接竞争ELISA(IC-ELISA)的建立
具体步骤如下:
(1)抗体与标样(待测样)预混:用含有10%(v/v)甲醇的PBS缓冲液配置不同浓度的双甲胺草磷(H-9201)标样,浓度分别为0.05μg/ml,0.1μg/ml,1μg/ml,5μg/ml,10μg/ml,20μg/ml。用PBS将抗体稀释9000倍(两倍工作浓度),再与等体积的标样(待测样品)室温预混进行前抑制,对照用PBS与抗体等体积预混,过夜。
(2)包被:CBS缓冲液将2ug/ml包被抗原,100μL/孔分别加入酶标板,4℃过夜。
(3)封闭:每孔加封闭液200μL,37℃温浴1h。
(4)加样品:将预混液加入酶标板,100μL/孔,以PBS为空白对照,37℃温浴2h。
(5)加酶标二抗:用含1%OVA的PBS将酶标二抗稀释到工作浓度加入酶标板,100μL/孔,37℃温浴1h。
(以上每一步结束都用洗涤液PBST洗3次)
(6)显色:将底物溶液加到酶标板上,100μL/孔,37℃显色15min。
(7)终止反应:50μL/孔2M H2SO4快速加到96孔酶标板中,于450nm读取光吸收值。
将不同浓度双甲胺草磷(H-9201)标样对应的吸光值(OD)结果,按照公式抑制率(I)=100[(OD对照-OD标样)/OD对照],计算抑制率(I)。以抑制率为纵坐标,标样浓度(C)为横坐标绘制标准抑制曲线。建立双甲胺草磷(H-9201)的标准抑制曲线(如图5所示),并对线性范围进行回归分析。计算得到,双甲胺草磷(H-9201)对抗体的抑制中浓度(I50)为1.554μg/mL,双甲胺草磷(H-9201)最低检测限I10为0.0945μg/mL,线性检测范围在0.1524~12.4135μg/mL。见图8。
实施例7.本发明对水体中双甲胺草磷(H-9201)农药残留的检测
具体操作如下:
(1)样品提取:采集田间无污染的水沉淀杂质,过0.45um微孔滤膜后备用,分别取10ml水样,添加双甲胺草磷(H-9201)标样(用含有10%甲醇(v/v)的PBS溶液配置),使得样品中双甲胺草磷(H-9201)的含量分别为1mg/kg、2mg/kg、5mg/kg、10mg/kg、20mg/kg五个水平,第六组添加甲醇作为空白对照,每组重得4次,室温下放置2小时。水样中加入2g NaCL,3ml X 3正己烷提取,合并提取液后,氮气浓缩至干,用PBST缓冲液稀释至检测浓度范围,进行ELISA检测。
(2)ELISA检测方法
用间接竞争性ELISA方法测定,将添加样品的提取液与等体积抗体预混两小时,根据实施例6的步骤进行间接竞争性ELISA测定,计算水体中双甲胺草磷(H-9201)的残留量及添加回收率及变异系数。
结果表明,当水体中双甲胺草磷(H-9201)浓度在1mg/kg-20mg/kg的范围内,添加回收率为72.5±5.5%~85.2±4.3%。
以上各实施例不是对本发明的具体限定。
Claims (7)
2.根据权利要求1所述的双甲胺草磷(H-9201)的多克隆抗体,其特征在于:所述的双甲胺草磷过渡态类似化合物是这样合成的:
1)以三氯硫磷与甲醇为原料,溶液温度控制在-5℃以下进行反应,冰水洗涤溶液留取下层,得到甲氧基硫代磷酰二氯,为分子结构式(6):
2)在5~10℃丙酮溶液温控条件下,以三乙胺为催化剂,甲氧基硫代磷酰二氯与2,4-二甲基-6-硝基苯酚(DMNT),氢氧化钠(NaOH)反应获得含有分子结构式(5)化合物的丙酮溶液,
3)在5~10℃溶液温控条件下,向预冷的含有分子结构式(5)化合物的丙酮溶液中滴加氨水,以氢氧化钠调节溶液pH为10进行反应,得到双甲胺草磷过渡态类似化合物,分子结构式(4)。
3.根据权利要求1或2所述的双甲胺草磷(H-9201)的多克隆抗体,其特征在于:适合动物免疫的半抗原-载体蛋白偶联物,如分子结构式(1),
其中,R为BSA或OVA
4.一种如权利要求1所述双甲胺草磷(H-9201)的多克隆抗体的制备方法,其特征在于:
a)以4-二甲氨基吡啶(DMAP)为催化剂,使所述分子结构式(4)的双甲胺草磷过渡态类似化合物与琥珀酸酐(Succinic anhydride)在50℃温控乙腈溶液中反应,获得分子结构式(3)的化合物,形成半抗原,
b)在温控为0℃的除水的二氯甲烷溶液中,以DMAP为催化剂的条件下,分子结构式(3)的化合物与N-羟基琥珀酰亚胺(NHS),N,N’-二环己基碳二亚胺(DCC)反应过夜,获得溶有分子结构式(2)的化合物活化酯,
c)以pH为9的溶有牛血清白蛋白的磷酸盐缓冲液与溶有分子结构式(2)的化合物活化酯的DMF溶液在4℃温度条件下反应过夜,获得含有分子结构式(1)的半抗原-载体蛋白偶联物的反应混合液;
d)将含有半抗原-载体蛋白偶联物的反应混合液装入透析袋中,在去离子水中4℃透析3天,每8小时换水一次,透析结束后获得免疫抗原;
e)再将免疫抗原用于免疫新西兰大白兔,获得双甲胺草磷的多克隆抗体。
5.根据权利要求4所述的双甲胺草磷(H-9201)的多克隆抗体的制备方法,其特征在于:免疫新西兰大白兔前,d步骤获得的免疫抗原应该分装保存于-20℃冰箱中备用。
6.一种如权利要求1所述双甲胺草磷(H-9201)的多克隆抗体的应用,其特征在于:将多克隆抗体建立的间接竞争性ELISA法对水样中双甲胺草磷(H-9201)农药的残留进行检测,检测中使用的包被抗原是这样获得的:
在权利要求4所述多克隆抗体的制备方法的a~b步骤的基础上,以pH为9的溶有卵清蛋白OVA的磷酸盐缓冲液,与溶有分子结构式(2)的化合物活化酯的DMF溶液在4℃温度条件下反应过夜,获得含有分子结构式(1)的半抗原-载体蛋白偶联物的反应混合液;
将含有半抗原-载体蛋白偶联物的反应混合液装入透析袋中,在去离子水中4℃透析3天,每8小时换水一次,透析结束后获得包被抗原。
7.根据权利要求6所述双甲胺草磷(H-9201)的多克隆抗体的应用,其特征在于:多克隆抗体采用间接竞争性ELISA法对水样中双甲胺草磷(H-9201)农药的残留进行检测是指:将被测水样经简单过滤净化处理、提取后制备得到ELISA待测液,然后利用间接竞争性ELISA法进行检测,计算得出待测样品中的双甲胺草磷(H-9201)含量。
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---|---|
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Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102721802A (zh) * | 2012-07-06 | 2012-10-10 | 深圳市易瑞生物技术有限公司 | 一种提高竞争免疫分析灵敏性的方法 |
CN104327183A (zh) * | 2014-10-31 | 2015-02-04 | 南昌大学 | 一种多效唑人工抗原和多克隆抗体的制备方法与应用 |
CN104356237A (zh) * | 2014-10-31 | 2015-02-18 | 南昌大学 | 一种多效唑单克隆抗体的制备方法 |
CN105273003A (zh) * | 2015-10-12 | 2016-01-27 | 深圳市检验检疫科学研究院 | 水胺硫磷半抗原及其制备方法和应用 |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1269971A (zh) * | 2000-04-19 | 2000-10-18 | 南开大学 | 硫代磷酰胺酯类的混配除草剂 |
CN1969630A (zh) * | 2006-11-21 | 2007-05-30 | 南开大学 | 一种水旱两用混配除草剂 |
-
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Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1269971A (zh) * | 2000-04-19 | 2000-10-18 | 南开大学 | 硫代磷酰胺酯类的混配除草剂 |
CN1969630A (zh) * | 2006-11-21 | 2007-05-30 | 南开大学 | 一种水旱两用混配除草剂 |
Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102721802A (zh) * | 2012-07-06 | 2012-10-10 | 深圳市易瑞生物技术有限公司 | 一种提高竞争免疫分析灵敏性的方法 |
CN102721802B (zh) * | 2012-07-06 | 2014-11-26 | 深圳市易瑞生物技术有限公司 | 一种提高竞争免疫分析灵敏性的方法 |
CN104327183A (zh) * | 2014-10-31 | 2015-02-04 | 南昌大学 | 一种多效唑人工抗原和多克隆抗体的制备方法与应用 |
CN104356237A (zh) * | 2014-10-31 | 2015-02-18 | 南昌大学 | 一种多效唑单克隆抗体的制备方法 |
CN104327183B (zh) * | 2014-10-31 | 2017-12-15 | 南昌大学 | 一种多效唑人工抗原和多克隆抗体的制备方法与应用 |
CN105273003A (zh) * | 2015-10-12 | 2016-01-27 | 深圳市检验检疫科学研究院 | 水胺硫磷半抗原及其制备方法和应用 |
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