CN101863964B - 一种幽门螺杆菌尿素酶b抗原表位多肽及其应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种幽门螺杆菌尿素酶B抗原表位多肽及其应用。该抗原表位多肽,其氨基酸序列为序列表中序列31。它的编码基因序列为序列表中序列22。本发明提供的抗原表位多肽能刺激机体产生抗幽门螺杆菌保护性免疫反应,从而增强对幽门螺杆菌感染的抑制作用,提高机体清除病菌的能力,对相应疫苗的研发、致病机理的研究以及临床诊断中起到很好的推动作用。
Description
技术领域
本发明涉及一种幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)尿素酶B亚单位(UreB)蛋白B细胞抗原表位多肽及其应用。
背景技术
1982年澳大利亚学者Warren和Marshall首次从慢性活动性胃炎病人胃黏膜中分离并培养出幽门螺杆菌(Helicabucter pylori,H.pylori),该菌的发现揭开了胃微生物研究的新时代。幽门螺杆菌分布极为广泛,世界范围内人群感染率高达50%左右。业已证实,幽门螺杆菌感染是慢性慢性胃炎、胃溃疡、十二指肠溃疡的主要病因,幽门螺杆菌的持续性感染还与胃腺癌(gastric adenocarcinoma)和胃淋巴瘤(gastric lymphoma)的发生密切相关。1994年,世界卫生组织将它定为I类致癌因子(Type I carcinogen)。
现在针对幽门螺杆菌感染的治疗主要是采用两种抗生素联合质子泵抑制剂,然而,这一治疗手段有着诸多缺点,如花费过高,患者依从性差和产生药物抗性菌株的高风险性等,尤其是抗生素治疗不能防止再度感染。所以,现普遍认为疫苗是在全球范围内控制幽门螺杆菌感染的最有效的方法。早期的幽门螺杆菌疫苗研究大多应用幽门螺杆菌全菌成分,存在着效果差、不易标准化等缺点。目前幽门螺杆菌疫苗抗原的研究集中在幽门螺杆菌中具有免疫保护作用的抗原上。目前在小鼠模型上已证实多种幽门螺杆菌抗原,包括空泡毒素(VacA)、细胞毒素相关蛋白(CagA)、热休克蛋白A和B(HspA和HspB)、尿素酶和过氧化氢酶等。其中尿素酶蛋白被视为最有前途的幽门螺杆菌疫苗候选,是研究最多的一个。尿素酶不仅对幽门螺杆菌在胃内酸性环境下定植提供保护作用,而且是幽门螺杆菌中的一种保守蛋白,不同菌株间的保守性达98%以上。已有大量动物实验证明了它作为疫苗抗原的安全性和有效性。尿素酶包括尿素酶A(UreA)和B(UreB)两个结构亚单位,其中UreB是尿素酶的主要功能单位,含有尿素酶的活性位点,其保护性优于UreA。
疫苗是控制感染性疾病最为经济有效的办法,疫苗接种能够刺激机体产生不同于自然感染导致的特异性免疫应答,可以达到预防或者治疗幽门螺杆菌感染的目的。目前尿素酶疫苗预防幽门螺杆菌感染已在许多动物模型上获得成功,国外多个研究组报告口服幽门螺杆菌尿素酶能防止小鼠感染猫螺杆菌。迄今为止,国内外对幽门螺杆菌疫苗的研究主要是采用模拟自然抗原的方法进行蛋白疫苗的研制,单独表达某个抗原分子或融合表达几个抗原分子,亦或将抗原分子与粘膜免疫佐剂融合表达,可部分获得一定时期内的免疫保护作用。目前,表位疫苗已成为研制感染性疾病和恶性肿瘤疫苗的方向,且已在HIV、疟疾、乙肝病毒、肿瘤等方面表现出独特的优势。鉴于此,在表位水平上进行选择和重组来设计疫苗,可能会是一种有效的预防和治疗幽门螺杆菌感染的疫苗形式。利用幽门螺杆菌保护性抗原的表位来设计疫苗,通过单个或串连表达保护性抗原上的特异性表位,并辅以能有效诱发黏膜免疫的佐剂来激发机本更强、更特异的、不同于自然感染时的免疫应答,有可能打破免疫耐受,从而可以达到预防或治疗幽门螺杆菌感染的目的。
已经有大量实验表明,尿素酶B亚单位(UreB)不仅对幽门螺杆菌感染具有预防作用,而且还可以在一定程度上清除体内已经感染的幽门螺杆菌。研究发现针对UreB不同表位的单抗可以抑制尿素酶的活性,从而阻断幽门螺杆菌的感染,但用完整的尿素酶免疫动物并不能很好的抑制尿素酶的活性,因而不能完全阻止幽门螺杆菌在胃内的定植。
发明内容
本发明的目的是提供一种幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)尿素酶B亚单位(UreB)蛋白B细胞抗原表位多肽及其应用。
本发明提供的幽门螺杆菌尿素酶B亚单位中和性B细胞抗原表位多肽,来源于幽门螺杆菌尿素酶B亚单位(UreB),名称为UP32,是如下1)或2)的多肽:
1)由序列表中序列31所示的氨基酸序列组成的多肽;
2)将序列表中序列31的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有幽门螺杆菌尿素酶抗原表位功能的由1)衍生的多肽。
序列表中序列31由15个氨基酸残基组成,来源于幽门螺杆菌尿素酶B亚单位(UreB)上第158-172位氨基酸残基。
所述一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加可为1-10个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加;所述一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加可发生在上述结构域之外。
上述表位多肽的编码基因也属于本发明的保护范围,所述编码基因为1)、2)、3)或4):
1)序列表中序列22的DNA;
2)编码序列表中序列31的蛋白质序列的多核苷酸;
3)在严格条件下与1)或2)的基因杂交且编码权利要求1所述蛋白的基因。
4)与序列表中序列22同源性在80%以上并且编码幽门螺杆菌尿素酶抗原表位功能的多肽的核苷酸。
上述严格条件可为用0.1×SSPE(或0.1×SSC),0.1%SDS的溶液,在DNA或者RNA杂交实验中65℃下杂交并洗膜。
序列表中的序列22由45个核苷酸组成,自5′端第1至45位核苷酸为编码序列。
本发明还提供检测、预防或治疗幽门螺杆菌感染的免疫制剂,其活性成分包括上述表位多肽,如该免疫制剂由上述表位多肽和序列表中序列34所示的表位多肽、序列表中序列37所示的表位多肽组成多联多聚表位疫苗制剂,该免疫制剂的活性成分也可以单独为上述序列表中序列31所示的表位多肽。本发明还提供抑制尿素酶的活性的药物,其活性成分包括上述表位多肽和/或其抗体。如该由上述表位多肽和序列表中序列34所示的表位多肽、序列表中序列37所示的表位多肽组成的药物;该药物活性成分也可以单独为上述表位多肽和/或其抗体;该抗体为体外培养杂交瘤细胞系获得的抗体。
本发明还提供上述幽门螺杆菌尿素酶B亚基中和性B细胞抗原表位多肽的筛选方法,主要包括以下步骤:
(1)将幽门螺杆菌的UreB抗原采用截短法分段构建并进行目的蛋白的表达,通过免疫印迹分析,初步确定单抗A1H10、B3D9、A3C10所针对的表位范围;
(2)根据上述步骤(1)所确定的幽门螺杆菌尿素酶B亚单位单克隆抗体A1H10、B3D9、A3C10所针对的抗原表位所在区域,进行第二次和第三次的截短分段构建UreB抗原,将单抗A1H10、B3D9、A3C10所针对的抗原表位精确定位在UreB特定的位置;
(3)化学合成上述步骤(2)鉴定出来的抗原表位,通过间接ELISA法,以进一步确定抗幽门螺杆菌尿素酶B亚单位单克隆抗体A1H10、B3D9、A3C10所针对的抗原表位。
本发明运用分子生物学结合分子免疫学实验鉴定的方法,筛选得到了由15个氨基酸残基构成的表位多肽,经济、有效,为抗原表位的筛选提供了参考。本发明为新型的多联多聚表位疫苗的开发尊定了基础,也为基于蛋白表位的病原生物诊断试剂盒的开发及治疗制剂的研制带来新的思路。获得的抗原表位对H.pylori发病机制的研究具有重要的意义,有助于更有效的预防和控制幽门螺杆菌的感染。
本发明提供的抗原表位多肽具有良好的免疫原性,在小鼠动物模型中可以诱导产生针对此B细胞表位的特异性体液免疫应答,产生的抗血清不仅能够中和尿素酶的活性,而且还能与H.pylori天然菌株的尿素酶发生特异性抗原抗体反应。同时采用血清学分析方法证实临床感染幽门螺杆菌患者血清中产生了针对该UreB抗原表位的抗体。
本发明提供的抗原表位多肽激发小鼠体内产生的抗体可抑制尿素酶活性,为尿素酶抗原表位的研究奠定了良好的基础。本发明提供的抗原表位多肽能刺激机体产生抗幽门螺杆菌保护性免疫反应,并可以避免产生构象表位特异性抗体,从而增强对幽门螺杆菌感染的抑制和清除效果,对相应疫苗的研发、致病机理的研究以及临床诊断中起到很好的推动作用。本发明的激发机体抗H.pylori的保护性免疫反应的抗原表位在体外检测和产生免疫保护上的具有很有价值的应用。
附图说明
图1不同截短UreB片段相对应的位置图(数字表示在UreB中所对应的位置,白色条表示与单克隆抗体A1H10、B3D9或A3C10 western blot反应为阴性,灰色条表示与单克隆抗体A1H10、B3D9或A3C10 western blot反应为阳性)
图2幽门螺杆菌(H.pylori)尿素酶B亚单位各截短抗原PCR扩增结果;其中,
A:泳道1为核酸(DNA)分子量标准(Marker);泳道2为目的基因UP1的PCR扩增产物(400bp);泳道3为目的基因UP2的PCR扩增产物(430bp);泳道4为目的基因UP3的PCR扩增产物(450bp);泳道5为目的基因UP4的PCR扩增产物(660bp);
B:泳道1为核酸(DNA)分子量标准(Marker);泳道2为目的基因U21的PCR扩增产物(100bp);泳道3为目的基因U22的PCR扩增产物(85bp);泳道4为目的基因U23的PCR扩增产物(100bp);泳道5为目的基因U24的PCR扩增产物(115bp);泳道6为目的基因U25的PCR扩增产物(115bp);泳道7为目的基因U26的PCR扩增产物(100bp)。
C:泳道1为核酸(DNA)分子量标准(Marker);泳道2为目的基因GST-UP32的PCR扩增产物(60bp);泳道3为目的基因GST-UP33的PCR扩增产物(60bp);泳道4为目的基因GST-UP34的PCR扩增产物(60bp);泳道5为目的基因GST-UP36的PCR扩增产物(60bp);泳道6为目的基因GST-UP38的PCR扩增产物(60bp);泳道7为目的基因GST-UP39的PCR扩增产物(60bp)
D:泳道1为核酸(DNA)分子量标准(Marker);泳道2为目的基因GST-UP31的PCR扩增产物(330bp);泳道3为目的基因GST-UP35的PCR扩增产物(330bp);泳道4为目的基因GST-UP37的PCR扩增产物(330bp);结果表明各目的基因的PCR克隆扩增效果良好。
图3为幽门螺杆菌(H.pylori)尿素酶B亚单位各截短抗原基因重组菌TPTG诱导表达SDS-PAGE电泳图;其中,
A:泳道1为蛋白质分子量标准(Marker);泳道2为空载体菌诱导4h;泳道3为表达UP1基因的重组菌诱导4h;泳道4为表达UP2基因重组菌诱导4h;泳道5为表达UP3基因重组菌诱导4h;泳道6为表达UP4基因重组菌诱导4h;
B:泳道1为蛋白质分子量标准(Marker);泳道2为宿主菌诱导4h;泳道3为空载体菌诱导4h;泳道4为基因重组菌UP21诱导4h;泳道5为基因重组菌UP22诱导4h;泳道6为基因重组菌UP23诱导4h;泳道7为基因重组菌UP24诱导4h;泳道8为基因重组菌UP25诱导4h;泳道9为基因重组菌UP26诱导4h;
C:泳道1为蛋白质分子量标准(Marker);泳道2为宿主菌诱导4h;泳道3为空载体菌诱导4h;泳道4为基因重组菌GST-UP32诱导4h;泳道5为基因重组菌GST-UP33诱导4h;泳道6为基因重组菌GST-UP34诱导4h;泳道7为基因重组菌GST-UP36诱导4h;泳道8为基因重组菌GST-UP38诱导4h;泳道9、10为基因重组菌GST-UP39诱导4h;
D:泳道1为蛋白质分子量标准(Marker);泳道2为宿主菌诱导4h;泳道3为空载体菌诱导4h;泳道4为基因重组菌GST-UP31诱导4h;泳道5为基因重组菌GST-UP35诱导4h;泳道6为基因重组菌GST-UP37诱导4h
图4为截短的UreB片段与单克隆抗体A1H10、B3D9、A3C10免疫印迹图;其中,A第一次分段表达的截短抗原(UP1、UP2、UP3和UP4)与单克隆抗体A1H10、B3D9或A3C10免疫印迹分析;(1)UP1、UP2、UP3和UP4与单克隆抗体A1H10的免疫印迹结果;(2)UP1、UP2、UP3和UP4与单克隆抗体B3D9的免疫印迹结果;(3)UP1、UP2、UP3和UP4与单克隆抗体A3C10的免疫印迹结果;
B为第二次分段表达的截短抗原(UP21、UP22、UP23、UP24、UP25和UP26)与单克隆抗体A1H10、B3D9或A3C10免疫印迹分析;(1)UP21、UP22、UP23、UP24、UP25和UP26与单克隆抗体A1H10的免疫印迹结果;(2)UP21、UP22、UP23、UP24、UP25和UP26与单克隆抗体B3D9的免疫印迹结果;(3)UP21、UP22、UP23、UP24、UP25和UP26与单克隆抗体A3C10的免疫印迹结果;
C为第三次分段表达的截短抗原(GST-UP31、GST-UP32、GST-UP33,GST-UP34、GST-UP35、GST-UP36,GST-UP37、GST-UP38和GST-UP39)与单克隆抗体A1H10、B3D9或A3C10免疫印迹分析;(1)GST-UP31、GST-UP32、GST-UP33与单克隆抗体A1H10的免疫印迹结果;(2)GST-UP34、GST-UP35、GST-UP36与单克隆抗体B3D9的免疫印迹结果;(3)GST-UP37、GST-UP38、GST-UP39与单克隆抗体A3C10的免疫印迹结果
图5为融合表位肽GST-UP32、GST-UP35、GST-UP38分别与A1H10、B3D9、A3C10间接ELISA分析。
图6为单克隆抗体A1H10、B3D9、A3C10对合成表位肽的识别的间接ILISA分析
图7为表位肽对H.pylori病人血清的识别。
A:H.pylori病人血清与融合表位GST-UP32、GST-UP35和GST-UP38的ELISA反应;B:H.pylori病人血清与合成表位肽UP32、UP35和UP38的ELISA反应。
图8为鼠抗融合表位肽血清对融合表位肽、合成肽、不同天然H.pylori菌株尿素酶B亚单位蛋白的识别;A抗表位血清与对应融合肽的Western blot分析;B抗表位血清与对应合成肽的ELISA反应;C抗表位血清与天然H.pylori菌株尿素酶B亚单位蛋白ELISA反应。
图9为单克隆抗体A1H10、B3D9、A3C10及抗融合表位多抗抑制幽门螺杆菌尿素酶活性实验。
具体实施方式
下述实施例中的方法,如无特别说明,均为常规方法。
下述实施例中的百分含量,如无特别说明,均为质量百分含量。
实施例1、抗幽门螺杆菌尿素酶B亚单位单克隆抗体A1H10、B3D9、A3C10抗原识别表位的鉴定
通过多次截短分段表达尿素酶B片段筛选抗原表位,各次截断片段在幽门螺杆菌尿素酶B亚单位的位置关系如图1所示。
一、UreB截短蛋白的第一次分段表达及抗原表位的初步鉴定
1、截短的幽门螺杆菌UreB分段抗原UP1(序列5)、UP2(序列6)、UP3(序列7)、UP4(序列8)的重组表达:
1)幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)的培养
幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)26695(ATCC No.700392)采用固体培养,培养基为:空肠弯曲菌琼脂基质(中国腹泻病控制上海试剂供应研究中心)43g/L、脱纤维羊血(由市场采购活羊经颈动脉取血后用玻璃珠脱纤维处理后即得)50ml/L、抗菌素多粘菌素B(购自Merck)0.38mg/L、万古霉素(购自Amresco)10mg/L和两性霉素B(购自Sigma)5mg/L。37℃微需氧环境(5%O2,10%CO2,85%N2)中培养48-72hr,改良布氏肉汤收集菌体。
2)幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)基因组DNA的制备
幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)26695基因组DNA提取按照promega公司细菌基因组提取试剂盒说明书进行。
3)引物序列设计
根据Genbank已公布的H.pylori国际标准株26695的基因组序列找到UreB的基因序列(gi:21637177),利用Primer5.0软件设计设计4对特异性引物,在上游和下游引物中分别加入SacI和Hind Ⅲ酶切位点(下划线示酶切位点),它们的序列如下所示:
扩增UP1的编码基因(序列表中序列1)的引物:UP1-F:CGAGCTCAAAAAGAT
TAGCAGAAAAG;UP1-R:CCCAAGCTTTTAAGCAGTTACGATC。
扩增UP2的编码基因(序列表中序列2)的引物:UP2-F:CGAGCTCAATCTTAG
CGTAGGTCC;UP2-R:CCCAAGCTTTTAGTCTGTGTGGATAG。
扩增UP3的编码基因(序列表中序列3)的引物:UP3-F:CGAGCTCATCAATC
ATGCGTTAG;UP3-R:CCCAAGCTTTTACCAAGTTCTAGTGATA。
扩增UP4的编码基因(序列表中序列4)的引物:UP4-F:GAGCTCATTTTCTCA
ATCACCAG;UP4-R:CCCAAGCTTGAAAATGCTAAAGAGTT。
4)PCR扩增目的基因
以幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)26695株基因组DNA为模板,加入相应引物,经过30个PCR循环扩增得到UreB分段片段UP1(编码基因具有序列表中序列1的核苷酸序列)、UP2(编码基因有序列表中序列2的核苷酸序列)、UP3(编码基因具有序列表中序列3的核苷酸序列)、UP4(编码基因具有序列表中序列4的核苷酸序列)的编码基因,经1.0%琼脂糖电泳显示,各目的片段与扩增基因的理论大小一致。
各段目的基因的PCR扩增结果如图2中A所示,表明目的基因UP1、UP2、UP3、UP4编码基因的PCR克隆扩增效果较好,分别扩增出了约400bp、430bp、450bp、660bp大小的目的片段,经测序表明序列正确。
2、分段抗原UP1、UP2、UP3、UP4表达质粒的构建及表达
将步骤1扩增得到的PCR产物UP1、UP2、UP3、UP4编码基因纯化后分别用SacI和Hind Ⅲ双酶切与经同样酶双酶切的质粒pET-28a(+)(购自Merck)连接后转化E.coli DH5α(购自天根生化),在终浓度为50μg/ml卡那霉素抗性的培养基筛选后进行酶切和测序鉴定,将酶切和测序鉴定表明正确的重组载体命名为pET-UP1、pET-UP2、pET-UP3、pET-UP4。提取重组质粒pET-UP1、pET-UP2、pET-UP3、pET-UP4并转化大肠杆菌BL21(购自天根生化)株,在终浓度为50μg/ml卡那霉素抗性的培养基筛选后,质粒进行酶切鉴定,得到鉴定无误的表达UP1、UP2、UP3或UP4的重组菌。取鉴定无误的重组菌接种于5ml含卡那霉素的LB培养液中,37℃摇床培养过夜。次日,将过夜培养的重组菌按1∶100的比例转种于5ml含卡那霉素的新鲜LB培养液中,37℃,200rpm培养至OD600值约为0.6时加入IPTG至终浓度1.0mM,诱导培养4h,取1ml培养物,离心收集菌体,用80μl PBS(0.01mol/L,pH7.4)重悬,加入20μl 5倍SDS-PAGE上样缓冲液(1L溶液中含:15.1g Tris碱,94g甘氨酸,5gSDS),混均后沸水中煮5分钟,离心收上清进行SDS-PAGE分析。同时,以转pET-28a(+)的大肠杆菌BL21重组菌为对照。SDS-PAGE检测重组蛋白的表达情况,筛选高效表达菌株。
诱导表达鉴定结果如图3中A所示,结果显示UP1在相对分子质量约18kD、UP2在相对分子质量约20kD、UP3在相对分子质量约21kD、UP4在相对分子质量约28kD处有的特异蛋白表达条带,与预期的融合蛋白大小一致。
3、Western blot鉴定A1H10、B3D9、A3C10单克隆抗体识别的表位所在区域
Western blot具体操作步骤如下:
按照步骤2的方法,分别培养表达UP1、UP2、UP3或UP4的重组菌,制备蛋白电泳样品,进行15%的SDS-PAGE电泳。电泳完毕,50V电压湿转4h至NC膜上。加入含5%脱脂奶粉的PBST室温封闭2h,PBST洗3次,每次5min。分别加入1∶5000稀释的三株小鼠抗UreB单抗B3D9(生物技术通讯,2007;18(2):246-8,中国人民解放军军事医学科学院生物工程研究所在专利保护期限内提供)、A1H10(生物技术通讯,2007;18(2):246-8,中国人民解放军军事医学科学院生物工程研究所在专利保护期限内提供)、A3C10(生物技术通讯,2007;18(2):246-8,中国人民解放军军事医学科学院生物工程研究所在专利保护期限内提供),室温放置1h,PBST洗3次。加入1∶50000稀释的HRP标记的羊抗小鼠IgG(Sigma),室温放置1h,PBST洗3次。DAB显色。
Western blot结果见图4中A,免疫印迹结果显示重组UP2蛋白与小鼠抗UreB单抗A1H10和B3D9发生了抗原抗体特异性结合反应,重组UP3和UP4蛋白与小鼠抗UreB单抗A3C10发生了抗原抗体特异性结合反应,说明了单克隆抗体A1H10和B3D9所针对的抗原表位位于UreB蛋白UP2内,单克隆抗体A3C10所针对的抗原表位位于UP3和UP4叠加的位置。
为了将三株单抗识别UreB各段的抗原表位限定到比校小的范围内,我们又将第一次表达能被这三株单抗识别的段进行第二次的表达及鉴定。
二、UreB截短蛋白的第二次分段表达及抗原表位的进一步鉴定
UreB截短蛋白的第二次分段表达及抗原表位的进一步鉴定所用的方法与第一次分段表达鉴定的方法类似,所用的表达载体为PGEX-4T-2(购自Amersham)。
第二次分段分成六段UreB截短蛋白UP21(序列表中序列15)、UP22(序列表中序列16)、UP23(序列表中序列17)、UP24(序列表中序列18)、UP25(序列表中序列19)和UP26(序列表中序列20),表达UP21、UP22、UP23、UP24、UP25、UP26的各编码基因引物表如下,在上游和下游引物中分别加入EcoRⅠ和XhoⅠ酶切位点,下划线示酶切位点。
扩增UP21编码基因(序列表中序列9)的引物对:UP21F:
CCGGAATTCTAGATGGCGTTAAAAA;UP21R:CCGCTCGAGTCATGTGTCAATACCA。
扩增UP22编码基因(序列表中序列10)的引物对:UP22F:CCGGAATTCTCGGT
GGTATTGACA;UP22R:CCGCTCGAGTTAGGTTGTTACACCGCTT。
扩增UP23编码基因(序列表中序列11)的引物对:UP23F:CCGGAATTCTAAG
CGGTGTAACAAC;UP23R:CCGCTCGAGTTATTTTAAATTTCTTCTG。
扩增UP24编码基因(序列表中序列12)的引物对:UP24F:CCGGAATTCTAACT
ATCACTCCAGGCA;UP24R:CCGCTCGAGTTACGCGTCGTTAGAAG。
扩增UP25编码基因(序列表中序列13)的引物对:UP25F:CCGGAATTCTAGCT
TCTAACGACGCG;UP25R:CCGCTCGAGTTATAACGCATGATTGATT。
扩增UP26编码基因(序列表中序列14)的引物对:UP26F:
CGGAATTCTACCTCAAACCATTGCGGC;UP26R:
CCGCTCGAGTTAACCCACACGACCCATAG。
PCR扩增结果如图2B所示,分别扩增出UP21、UP22、UP23、UP24、UP25、UP26编码基因,它们的大小约100bp、85bp、100bp、115bp、115bp、100bp大小的目的片段。
按照步骤一中的步骤2的方法分别构建表达UP21、UP22、UP23、UP24、UP25或UP26的重组载体,只是将出发载体由PGEX-4T-2替换pET-28a(+)。鉴定表明正确的重组载体命名为PGEX-UP21、PGEX-UP22、PGEX-UP23、PGEX-UP24、PGEX-UP25、PGEX-UP26。按照步骤一的步骤2所述的方法诱导表达UP21、UP22、UP23、UP24、UP25或UP26蛋白,并进行SDS-PAGE检测重组蛋白的表达情况,筛选高效表达菌株。
蛋白诱导表达鉴定结果如图3中B所示,表明基因重组菌经过诱导后,在约28KDa~29KDa处有增加的蛋白表达条带,与目的蛋白分子量大小一致。
参照步骤一的步骤3的方法进行UP21、UP22、UP23、UP24、UP25或UP26蛋白Western blot检测,Western blot结果如图4中B所示,重组UP23蛋白能被小鼠抗UreB单抗A1H10识别,UP24蛋白能被小鼠抗UreB单抗B3D9识别,UP26蛋白能被小鼠抗UreB单抗A3C10识别,出现特异性的反应条带,表明单克隆抗体A1H10所针对的抗原表位位于UreB蛋白UP23内,单克隆抗体B3D9所针对的抗原表位位于UP24内,单克隆抗体A3C10所针对的抗原表位位于UP26内。
为了将三株单抗识别UreB各段的抗原表位精确定位到更小的范围,同样将第二次鉴定为阳性的片段进行更小的分段鉴定。
三、UreB截短蛋白的第三次分段表达及抗原表位的精确定位
第三次分段分成九段UreB截短蛋白,表达引物表如下,在GST-UP32(UP32序列为序列表中序列31)、GST-UP33(UP33序列为序列表中序列32)、GST-UP34(UP34序列为序列表中序列33)、GST-UP36(UP36序列为序列表中序列35)、GST-UP38(UP38序列为序列表中序列37)、GST-UP39(UP39序列为序列表中序列38)上游和下游引物中分别加入EcoRⅠ和XhoⅠ酶切位点,在GST-UP31(UP31序列为序列表中序列30)、GST-UP35(UP35序列为序列表中序列34)、GST-UP37(UP37序列为序列表中序列36)上游和下游引物中分别加入BstBⅠ和XhoⅠ酶切位点(下划线示酶切位点)
扩增GST-UP31编码基因(UP31编码基因序列为序列表中序列21)的引物对:GST-UP31F:
GAAAATGTTCGAAGATCGTTTATGTCA;GST-UP31R:
CCGCTCGAGATCAGCAGGACCAGTTCCGCCACCAATCATGGTTGTTACACCGCTACGCG
GAACCAGATC。
扩增GST-UP32编码基因(UP32编码基因序列为序列表中序列22)的引物对:GST-UP32F:
CGGAATTCTAGGTGGCGGAACTGGTCCTGCTGATGGC;GST-UP32R:
CCGCTCGAGTCAGATAGTAGTCGCATTAGTGCCATCAGCAGGAC。
扩增GST-UP33编码基因(UP33编码基因序列为序列表中序列23)的引物对:GST-UP33F:
CCGGAATTCTCGGCACTAATGCGACTACTATCACTCCAGGC;GST-UP33R:
CCGCTCGAGCTATTTTAAATTTCTTCTGCCTGGAGTGAT。
扩增GST-UP34编码基因(Up34编码基因序列为序列表中序列24)的引物对:GST-UP34F:
CCGGAATTCTGACTATCACTCCAGGCAGAAGAAATTTAAAA;
GST-UP34R:CCGCTCGAGTTACGCTCTGAGCATCCATTTTAAATTTCT。
扩增GST-UP35编码基因(UP35编码基因序列为序列表中序列25)的引物对:GST-UP35F:
GAAAATGTTCGAAGATCGTTTATGTCA;GST-UP35R:
CCGCTCGAGGAAACCTAAGTTCATAGAATATTCTTCAGCCGCTCTGAGCATCCAACGCG
GAACCAGATC。
扩增GST-UP36编码基因(UP36编码基因序列为序列表中序列26)的引物对:GST-UP36F:
CGGAATTCTAATGAACTTAGGTTTCTTGGCTAAAGGTAACGC;
GST-UP36R:CCGCTCGAGTTACGCGTCGTTAGAAGCGTTACCTTTA。
扩增GST-UP37编码基因(UP37编码基因序列为序列表中序列27)的引物对:GST-UP37F:
GAAAATGTTCGAAGATCGTTTATGTCA;GST-UP37R:
CCGCTCGAGCCCCATGTCATGCAAAGTGTCTTCAGCCGCAATGGTTTGAGGACGCGGAA
CCAGATC。
扩增GST-UP38编码基因(UP38编码基因序列为序列表中序列28)的引物对:GST-UP38F:
CGGAATTCTAACTTTGCATGACATGGGGATTTTCTCAATCAC;GST-UP38R:
CCGCTCGAGTTAAGAGTCAGAGCTGGTGATTGAGAAAATCC。
扩增GST-UP39编码基因(UP39编码基因序列为序列表中序列29)的引物对:GST-UP39F:
GGAATTCTAATTTTCTCAATCACCAGCTCTGACTCTCAAGCTATGGG;GST-UP39R:
CCGCTCGAGTTAACCCACACGACCCATAGCTTGA。
GST-UP32、GST-UP33、GST-UP34、GST-UP36、GST-UP38、GST-UP39以两个长引物直接退火合成,GST-UP31、GST-UP35、GST-UP37以PGEX-4T-2为模板,用常规PCR方法扩增得到。
PCR扩增结果如图2C、2D所示,扩增出了GST-UP32、GST-UP33、GST-UP34、GST-UP36、GST-UP38、GST-UP39的编码基因约60bp大小的特异性目的片段,扩增得到GST-UP31、GST-UP35、GST-UP37的编码基因为约330bp大小的特异性目的片段。
按照步骤一中的步骤2的方法分别构建表达GST-UP31、GST-UP32、GST-UP33、GST-UP34、GST-UP35、GST-UP36、GST-UP37、GST-UP38、GST-UP39的重组载体,只是将出发载体由PGEX-4T-2替换pET-28a(+)。鉴定表明正确的重组载体命名为PGEX-UP31、PGEX-UP32、PGEX-UP33、PGEX-UP34、PGEX-UP35、PGEX-UP36、PGEX-UP37、PGEX-UP38、PGEX-UP39。按照步骤一的步骤2所述的方法构建表达GST-UP31、GST-UP32、GST-UP33、GST-UP34、GST-UP35、GST-UP36、GST-UP37、GST-UP38、GST-UP39目的蛋白的大肠杆菌工程菌,并诱导表达GST-UP31、GST-UP32、GST-UP33、GST-UP34、GST-UP35、GST-UP36、GST-UP37、GST-UP38、GST-UP39并进行SDS-PAGE检测重组蛋白的表达情况,筛选高效表达菌株。
蛋白诱导表达鉴定结果如图3中C、图3中D所示,表明基因重组菌经过诱导后,在约27KDa~28KDa处有增加的蛋白表达条带,与目的蛋白分子量大小一致。
参照步骤一的步骤3的方法对GST-UP31、GST-UP32、GST-UP33、GST-UP34、GST-UP35、GST-UP36、GST-UP37、GST-UP38、GST-UP39进行Western blot检测,Western blot结果如图4中C所示,结果显示重组GST-UP32蛋白与单抗A1H10发生了特异性结合反应,GST-UP35蛋白与单抗B3D9发生了特异性结合反应,GST-UP38蛋白与单抗A3C10发生了特异性结合反应,表明单克隆抗体A1H10说明单抗所对应表位为GST-UP32,单克隆抗体B3D9所对应表位为GST-UP35,单克隆抗体A3C10所对应表位为GST-UP38。
四、酶联免疫吸附试验(ELISA)方法确定单抗A1H10、B3D9、A3C10的表位
同时,用酶联免疫吸附试验(ELISA)方法确定单抗A1H10、B3D9、A3C10的表位,将通过GSTrap 4B亲和柱纯化的融合表位蛋白GST-UP32、GST-UP35、GST-UP38分别包被ELISA板,以检测单抗A1H10、B3D9、A3C10所针对的表位。具体操作步骤如下:
1、重组蛋白样品准备:
将上述构建的表达GST-UP32、GST-UP35、GST-UP38目的蛋白的大肠杆菌工程菌于含有相应抗生素的LB平板上划线,37℃活化16-20h;挑单克隆接种于5ml LB培养基中,37℃摇菌过夜;次日,以1∶100(重量比)接种量转接到新鲜LB培养基中,37℃摇菌至OD600≈1.0,加入IPTG(终浓度1mM)诱导培养3-4h;收集菌体,每升菌液约以50mL预冷的STE(10mM Tris HCl pH8.0、150m M NaCl、1mM EDTA,pH 8.0)的溶液重悬;超声破碎菌体,15000g,10min离心收集上清,通过GSTrap 4B亲和柱纯化融合表位蛋白,具体是在上清中加入适量Triton x-100至终浓度为1%,h)0.45μm滤膜注射器过滤,上清4℃保存备用;在8mL上清中加入1mL用预冷1X PBS(140mM NaCl,2.7mM KCl,10mMNa2HPO4,1.8mM KH2PO4,pH 7.3)洗涤过的GST树脂,轻轻晃动令其吸附蛋白0.5h。将含有GST融合蛋白的溶液注入已平衡好的层析柱中,当含有融合蛋白的溶液全部进入柱中时,以30倍体积的预冷PBS洗涤,加入1mL新鲜配制的15mM的谷胱甘肽洗脱液(10mM的谷胱甘肽、50mM的Tris-HCl中pH8.0),轻轻悬起后静置10min,收集洗脱液,重复洗脱两次;分别取等量的含有GST融合蛋白(PGEX-4T-2表达蛋白纯化)的流出液,洗涤液和洗脱的目的蛋白进行SDS-PAGE以分析目的蛋白;收集含有目的蛋白的洗脱部分;然后通过PBS透析或去除游离的谷胱甘肽,样品进行SDS-PAGE后采集凝胶照片,用BandScan5.0软件进行分析,检测表面纯化得到的融合蛋白纯度为90%以上。
2、用酶联免疫吸附试验(ELISA)方法确定单抗A1H10、B3D9、A3C10的表位
1)抗原包被:用包被液分别将抗原(步骤1获得的蛋白)稀释为3μg/mL的混悬液,加入ELISA板,100ul/孔,同时设定阴性对照(即纯化的GST融合蛋白),4℃包被过夜;
2)洗涤:用洗涤液PBST洗涤ELISA板各孔3次,每次5分钟,沥干;
3)封闭:每孔加入含5%脱脂奶粉的PBST溶液各200μL,置37℃孵育2h;
4)加入用保温液(含0.5%脱脂奶粉的PBST溶液)适当稀释(1∶400-1∶1000倍)的单克隆抗体A1H10、B3D9、A3C10,100μl/孔,每个稀释度各加两孔。置37℃孵育2h,洗涤:同步骤2);
5)加入酶结合物(二抗):用保温液将辣根过氧化物酶标记的抗小鼠二抗适当稀释(1∶50000)加入反应孔,每孔100μL。置37℃孵育1h,洗涤:同步骤(2);
6)显色:加入显色底物溶液,每孔100μL,室温避光显色5-10min;
7)终止反应:加入终止液2M/L H2SO4,每孔50μL;
8)测定OD值:用酶联检测仪于492nm波长测定各反应孔的OD值,记录结果;
9)结果判断:以纯化的GST OD492平均值作为阴性对照,融合表位蛋白OD492≥2.1倍阴性对照值(P/N≥2.1)视为单抗所针对的抗原表位。
上述反应结果与Western blot结果一致,如图5所示,表明单克隆抗体A1H10、B3D9、A3C10与融合表位蛋白GST-UP32、GST-UP35、GST-UP38发生了特异性结合反应,说明单克隆抗体A1H10、B3D9、A3C10所对应的表位分别为GST-UP32、GST-UP35、GST-UP38。
实施例2、合成表位多肽以进一步确证单克隆抗体A1H10、B3D9、A3C10所针对的抗原表位
1、表位肽的合成
针对实施例1中所确定的单抗识别表位,采用化学合成法合成表位多肽(送北京中科亚光生物有限公司合成),分别命名为UP32(氨基酸序列为序列表中序列31)、UP35(氨基酸序列为序列表中序列34)、UP38(氨基酸序列为序列表中序列37)纯度为90%以上,合成量为4mg。
2、ELISA方法确定单抗A1H10、B3D9、A3C10所针对的抗原表位
将合成的3条表位多肽UP32、UP35、UP38(10μg/ml)分别包被ELISA板(100ul/孔),以检测A1H10、B3D9、A3C10单抗所针对的表位。具体操作步骤同实施例1的步骤四。
反应结果如图6所示,表明单克隆抗体A1H10、B3D9、A3C10与融合表位蛋白GST-UP32、GST-UP35、GST-UP38发生了特异性结合反应,说明单克隆抗体A1H10、B3D9、A3C10所对应的表位分别为UP32、UP35、UP38。
实施例3、融合表位肽和合成表位肽与病人血清的识别实验
为了检测临床感染H.pylori病人血清中是否产生针对本发明鉴定出的抗原表位的特异性抗体,我们将实施例1制备的融合表位肽(3μg/ml)GST-UP32、GST-UP35、GST-UP38及实施例2合成的表位肽(10μg/ml)UP32、UP35、UP38分别包被ELISA板(100ul/孔),以本实验室收集并用S001幽门螺杆菌尿素酶检测试剂盒(胶体金法,北京康美天鸿生物技术有限公司)鉴定为UreB阳性的病人血清3份和2份正常人血清作为一抗(1∶100)进行ELISA分析,具体操作步骤同实施例1的步骤四。
反应结果如图7所示,融合表位蛋白和合成表位肽均与3份幽门螺杆菌感染患者血清发生了阳性反应,与2份正常人血清均不发生反应,说明幽门螺杆菌感染病人中产生了针对本发明表位肽的抗体,这为多价表位疫苗和诊断试剂的研制提供了新的思路。
实施例4、表位抗原的多克隆抗血清对合成肽和天然UreB蛋白的识别
1、鼠抗血清的制备
1)动物免疫
选取6-8周龄的SPF级雌性BALB/C小鼠,于背部皮下多点注射实施例1中所纯化的融合表位蛋白GST-UP32、GST-UP35及GST-UP38进行免疫,3次免疫抗原剂量均为100μg/只。首次免疫时将抗原加等量完全弗氏佐剂(CFA)充分混合乳化后皮下多点注射,每隔2周再以抗原加等量不完全弗氏佐剂(IFA)乳化后加强免疫两次。同时设立只注射PBS缓冲液(pH7.0,50mmol/L)和GST蛋白免疫组作为对照免疫组,免疫程序相同,每组5只小鼠。3次免疫后10天耳缘静脉采血,检测抗血清效价,达到较理想的滴度后,于免疫程序结束后14天,取血并收集免疫后多克隆抗血清。
2)间接ELISA法检测抗体效价
对抗体效价的检测采用间接ELISA法进行。用纯化的GST-UP32、GST-UP35、GST-UP38融合蛋白以包被液稀释至3μg/ml,包被于酶标板中,每孔100μl,4℃包被过夜。次日加入不同稀释度待检抗血清,以1∶100稀释的正常小鼠血清为对照,二抗为1∶50000稀释的HRP标记羊抗鼠IgG,显色底物为邻苯二胺(OPD),显色结果用酶标仪在波长490nm处进行测定,P/N大于2.1为阳性。
结果显示,三次免疫后,各实验组的抗体效价可达1∶25600-1∶51200,而PBS对照组基本不与任何一个融合表位反应,说明本发明构建融合表位蛋白能够很好地激发机体的体液免疫应答。
2、ELISA法检测多克隆抗血清与不同表位合成肽和天然UreB蛋白的识别
1)蛋白样品的准备
(1)幽门螺杆菌的培养
幽门螺杆菌国际标准菌株NCTC I 1637(购自英国的国立标准菌种收藏所(NCTC))、幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)26695的培养同实施例1的步骤1中的步骤1)。
(2)幽门螺杆菌NCTC I 1637、26695全菌蛋白样品的制备
用肉汤从幽门螺杆菌固体培养板上刮下幽门螺杆菌国际标准菌株NCTC I 1637或幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)26695菌体,4℃,5000g离心10min收集菌体,用预冷的低盐PBS缓冲液(pH7.0,50mmol/L)洗3次,每次均为4℃,5000g离心10min,最后用低盐PBS(pH7.0,50mmol/L)重悬。冰浴超声10min,使细胞彻底破碎。然后将溶液室温放置0.5h,充分溶解蛋白质,8000g离心20min去掉不溶物。收集上清,即为全菌蛋白溶液。
2)酶联免疫吸附实验检测多克隆抗血清与不同表位合成肽天然UreB蛋白的识别
将实施例2合成的表位肽UP32、UP35、UP38及幽门螺杆菌NCTC I 1637、26695全菌蛋白样品以1000ng/100ul/孔的量包被ELISA板。一抗为融合蛋白免疫的鼠抗血清(1∶100),具体实验步骤同实施例1。
反应结果如图8A、8B所示,结果发现,免疫的鼠抗血清能够很好地识别相应的表位合成肽,同时也能与天然的UreB发生反应。
3、多克隆抗血清与天然UreB蛋白的western blot分析
将上述准备好的幽门螺杆菌26695全菌蛋白样品行SDS-PAGE电泳,转膜,然后与实施例1中所纯化的融合表位蛋白GST-UP32、GST-UP35及GST-UP38免疫小鼠后抗血清进行免疫印迹分析,以纯化的融合表位蛋白及截短的UreB蛋白UreBM(是UreB蛋白上第106-377位的多肽,按照实施例1的方法表达纯化,其编码基因的扩增引物为F:
CGAGCTCAATCTTAGCGTAGGTCC(SacI);R:CCCAAGCTTCCAAGTTCTAGTGATAA(Hind Ⅲ);利用该引物,以幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)26695基因组为模板,扩出目标基因片段,再插入pET28a(+)载体的SacI和Hind Ⅲ酶切位点之间构建得到重组载体,将重组载体转化BL21后表达,纯化就可以得到用于阳性对照的UreBM)作为阳性对照,同时以BSA作为阴性对照,抗血清按1∶200倍稀释其余具体操作步骤同实施例1。
结果如图8C所示,抗血清与纯化的融合表位蛋白及截短的UreB蛋白UreBM发生了阳性反应,并且与天然幽门螺杆菌26695的UreaB也发生了特异性抗原抗体反应,而与BSA未见阳性反应发生,说明由融合表位蛋白免疫BALB/e小鼠制备的抗血清能够识别天然的UreB蛋白,进一步说明我们鉴定出来的表位是有效的表位,可作为表位疫苗的候选分子。
实施例5、单抗及多抗血清抑制尿素酶活性试验
含有尿素酶活性的提取物来自于上述制备的幽门螺杆菌NCTC 11637全菌破碎物的离心上清。取含有尿素酶的提取物稀释于25μl PBS(pH7.0)中,分别与同样稀释于25μl PBS(pH7.0)的实施例4中制备的GST-UP32、GST-UP35及GST-UP38多克隆抗血清、单克隆抗体A1H10、B3D9、A3C10共孵育于酶联板中,4℃过夜。取含有500mM尿素,0.02%酚红和0.1mM DTT的50mM磷酸盐缓冲液(pH6.8)50μl加于酶联孔中,室温孵育5h后测量560nm处的OD值。同时以抗GST的多抗鼠血清、用实施例4中PBS免疫的小鼠血清作为对照。抑制率(%)=(无抗体的OD值-加抗体后的OD值)/(无抗体的OD值)×100。
试验结果如图9所示,与对照组相比,单克隆抗体A1H10、B3D9、A3C10对尿素酶有显著的抑制作用,当剂量达到25μg时,抑制率均可达70%,GST-UP32、GST-UP35及GST-UP38多克隆抗血清对尿素酶也有一定的抑制作用,当加入的抗体剂量为30μg时,抑制率均可达50%,而且这种抑制具有剂量依赖性,随着加入抗体剂量的增加,抑制率呈上升趋势。
根据以上试验可证明,本发明利用分段截短法构建分段抗原并用western blot方法确定了各单抗所针对的抗原表位。本发明鉴定出来的表位免疫动物后,能够有效地激发机体的特异性体液免疫应答,证实了它们具有良好免疫原性,并且产生的抗血清具有一定的尿素酶活性抑制作用,并可以避免产生构象表位特异性抗体,增强对幽门螺杆菌感染的抑制和清除效果,对相应疫苗的研发、致病机理的研究以及临床诊断中起到很好的推动作用。同时,本发明的表位产生的抗血清能够和天然幽门螺杆菌菌株的尿素酶发生反应,表明本发明的表位可以应用于蛋白表位的病原生物诊断。
序列表
<160>38
<210>1
<211>390
<212>DNA
<213>幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)
<400>1
atgaaaaaga ttagcagaaa agaatatgtt tctatgtatg gccctactac aggcgataaa 60
gtgagattgg gcgatacaga cttgatcgct gaagtagaac atgactacac catttatggc 120
gaagagctta aattcggtgg cggtaaaacc ctgagagaag gcatgagcca atccaacaac 180
cctagcaaag aagaattgga tctaatcatc actaacgctt taatcgtgga ttacaccggt 240
atttataaag cggatattgg tattaaagat ggcaaaatcg ctggcattgg taaaggcggt 300
aacaaagaca tgcaagatgg cgttaaaaac aatcttagcg taggtcctgc tactgaagcc 360
ttagccggtg aaggtttgat cgtaactgct 390
<210>2
<211>420
<212>DNA
<213>幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)
<400>2
aatcttagcg taggtcctgc tactgaagcc ttagccggtg aaggtttgat cgtaactgct 60
ggtggtattg acacacacat ccacttcatt tcaccccaac aaatccctac agcttttgca 120
agcggtgtaa caaccatgat tggtggcgga actggtcctg ctgatggcac taatgcgact 180
actatcactc caggcagaag aaatttaaaa tggatgctca gagcggctga agaatattct 240
atgaacttag gtttcttggc taaaggtaac gcttctaacg acgcgagctt agtcgatcaa 300
attgaagctg gtgcgattgg ctttaaaatc cacgaagact ggggcaccac tccttctgca 360
atcaatcatg cgttagatgt tgcagacaaa tacgatgtgc aagtcgctat ccacacagac 420
<210>3
<211>441
<212>DNA
<213>幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)
<400>3
atcaatcatg cgttagatgt tgcagacaaa tacgatgtgc aagtcgctat ccacacagac 60
actttgaatg aagccggttg cgtggaagac actatggcag ctattgccgg acgcactatg 120
cacactttcc acactgaagg tgctggcggc ggacacgctc ctgatattat taaagtagct 180
ggtgaacaca acattcttcc cgcttccact aaccccacta tccctttcac tgtgaataca 240
gaagcagaac acatggacat gcttatggtg tgccaccact tggataaaag cattaaagaa 300
gatgttcagt tcgctgattc aaggatccgc cctcaaacca ttgcggctga agacactttg 360
catgacatgg ggattttctc aatcaccagc tctgactctc aagctatggg tcgtgtgggt 420
gaagttatca ctagaacttg g 441
<210>4
<211>648
<212>DNA
<213>幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)
<400>4
attttctcaa tcaccagctc tgactctcaa gctatgggtc gtgtgggtga agttatcact 60
agaacttggc aaacagctga caaaaacaaa aaagaatttg gccgcttgaa agaagaaaaa 120
ggcgataacg acaacttcag gatcaaacgc tacttgtcta aatacaccat taacccagcg 180
atcgctcatg ggattagcga gtatgtaggt tctgtagaag tgggcaaagt ggctgacttg 240
gtattgtgga gtcccgcatt ctttggcgta aaacccaaca tgatcatcaa aggcgggttc 300
attgcgttga gtcaaatggg tgacgcgaac gcttctatcc ctaccccaca accagtttat 360
tacagagaaa tgttcgctca tcatggtaaa gccaaatacg atgcaaacat cacttttgtg 420
tctcaagcgg cttatgacaa aggcattaaa gaagaattag ggcttgaaag acaagtgttg 480
ccggtaaaaa attgcagaaa catcactaaa aaagacatgc aattcaacga cactaccgct 540
cacattgaag tcaatcctga aacttaccat gtgttcgtgg atggcaaaga agtaacttct 600
aaaccagcca ataaagtgag cttggcgcaa ctctttagca ttttctag 648
<210>5
<211>130
<212>PRT
<213>幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)
<400>5
Met Lys Lys Ile Ser Arg Lys Glu Tyr Val Ser Met Tyr Gly Pro Thr
1 5 10 15
Thr Gly Asp Lys Val Arg Leu Gly Asp Thr Asp Leu Ile Ala Glu Val
20 25 30
Glu His Asp Tyr Thr Ile Tyr Gly Glu Glu Leu Lys Phe Gly Gly Gly
35 40 45
Lys Thr Leu Arg Glu Gly Met Ser Gln Ser Asn Asn Pro Ser Lys Glu
50 55 60
Glu Leu Asp Leu Ile Ile Thr Asn Ala Leu Ile Val Asp Tyr Thr Gly
65 70 75 80
Ile Tyr Lys Ala Asp Ile Gly Ile Lys Asp Gly Lys Ile Ala Gly Ile
85 90 95
Gly Lys Gly Gly Asn Lys Asp Met Gln Asp Gly Val Lys Asn Asn Leu
100 105 110
Ser Val Gly Pro Ala Thr Glu Ala Leu Ala Gly Glu Gly Leu Ile Val
115 120 125
Thr Ala
130
<210>6
<211>140
<212>PRT
<213>幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)
<400>6
Asn Leu Ser Val Gly Pro Ala Thr Glu Ala Leu Ala Gly Glu Gly Leu
1 5 10 15
Ile Val Thr Ala Gly Gly Ile Asp Thr His Ile His Phe Ile Ser Pro
20 25 30
Gln Gln Ile Pro Thr Ala Phe Ala Ser Gly Val Thr Thr Met Ile Gly
35 40 45
Gly Gly Thr Gly Pro Ala Asp Gly Thr Asn Ala Thr Thr Ile Thr Pro
50 55 60
Gly Arg Arg Asn Leu Lys Trp Met Leu Arg Ala Ala Glu Glu Tyr Ser
65 70 75 80
Met Asn Leu Gly Phe Leu Ala Lys Gly Asn Ala Ser Asn Asp Ala Ser
85 90 95
Leu Val Asp Gln Ile Glu Ala Gly Ala Ile Gly Phe Lys Ile His Glu
100 105 110
Asp Trp Gly Thr Thr Pro Ser Ala Ile Asn His Ala Leu Asp Val Ala
115 120 125
Asp Lys Tyr Asp Val Gln Val Ala Ile His Thr Asp
130 135 140
<210>7
<211>147
<212>PRT
<213>幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)
<400>7
Ile Asn His Ala Leu Asp Val Ala Asp Lys Tyr Asp Val Gln Val Ala
1 5 10 15
Ile His Thr Asp Thr Leu Asn Glu Ala Gly Cys Val Glu Asp Thr Met
20 25 30
Ala Ala Ile Ala Gly Arg Thr Met His Thr Phe His Thr Glu Gly Ala
35 40 45
Gly Gly Gly His Ala Pro Asp Ile Ile Lys Val Ala Gly Glu His Asn
50 55 60
Ile Leu Pro Ala Ser Thr Asn Pro Thr Ile Pro Phe Thr Val Asn Thr
65 70 75 80
Glu Ala Glu His Met Asp Met Leu Met Val Cys His His Leu Asp Lys
85 90 95
Ser Ile Lys Glu Asp Val Gln Phe Ala Asp Ser Arg Ile Arg Pro Gln
100 105 110
Thr Ile Ala Ala Glu Asp Thr Leu His Asp Met Gly Ile Phe Ser Ile
115 120 125
Thr Ser Ser Asp Ser Gln Ala Met Gly Arg Val Gly Glu Val Ile Thr
130 135 140
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<213>幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)
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Glu Val Ile Thr Arg Thr Trp Gln Thr Ala Asp Lys Asn Lys Lys Glu
20 25 30
Phe Gly Arg Leu Lys Glu Glu Lys Gly Asp Asn Asp Asn Phe Arg Ile
35 40 45
Lys Arg Tyr Leu Ser Lys Tyr Thr Ile Asn Pro Ala Ile Ala His Gly
50 55 60
Ile Ser Glu Tyr Val Gly Ser Val Glu Val Gly Lys Val Ala Asp Leu
65 70 75 80
Val Leu Trp Ser Pro Ala Phe Phe Gly Val Lys Pro Asn Met Ile Ile
85 90 95
Lys Gly Gly Phe Ile Ala Leu Ser Gln Met Gly Asp Ala Asn Ala Ser
100 105 110
Ile Pro Thr Pro Gln Pro Val Tyr Tyr Arg Glu Met Phe Ala His His
115 120 125
Gly Lys Ala Lys Tyr Asp Ala Asn Ile Thr Phe Val Ser Gln Ala Ala
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Tyr Asp Lys Gly Ile Lys Glu Glu Leu Gly Leu Glu Arg Gln Val Leu
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Pro Val Lys Asn Cys Arg Asn Ile Thr Lys Lys Asp Met Gln Phe Asn
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Val Asp Gly Lys Glu Val Thr Ser Lys Pro Ala Asn Lys Val Ser Leu
195 200 205
Ala Gln Leu Phe Ser Ile Phe
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<212>DNA
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<400>10
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agcggtgtaa caacc 75
<210>11
<211>90
<212>DNA
<213>幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)
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ageggtgtaa caaccatgat tggtggcgga actggtcctg ctgatggcac taatgcgact 60
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<210>12
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actatcactc caggcagaag aaatttaaaa tggatgctca gagcggctga agaatattct 60
atgaacttag gtttcttggc taaaggtaac gcttctaacg acgcg 105
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gcttctaacg acgcgagctt agtcgatcaa attgaagctg gtgcgattgg ctttaaaatc 60
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<213>幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)
<400>15
Asp Gly Val Lys Asn Asn Leu Ser Val Gly Pro Ala Thr Glu Ala Leu
1 5 10 15
Ala Gly Glu Gly Leu Ile Val Thr Ala Gly Gly Ile Asp Thr
20 25 30
<210>16
<211>25
<212>PRT
<213>幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)
<400>16
Gly Gly Ile Asp Thr His Ile His Phe Ile Ser Pro Gln Gln Ile Pro
1 5 10 15
Thr Ala Phe Ala Ser Gly Val Thr Thr
20 25
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<213>幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)
<400>17
Ser Gly Val Thr Thr Met Ile Gly Gly Gly Thr Gly Pro Ala Asp Gly
1 5 10 15
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<213>幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)
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Thr Ile Thr Pro Gly Arg Arg Asn Leu Lys Trp Met Leu Arg Ala Ala
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35
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Ala Ser Asn Asp Ala Ser Leu Val Asp Gln Ile Glu Ala Gly Ala Ile
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Gly Phe Lys Ile His Glu Asp Trp Gly Thr Thr Pro Ser Ala Ile Asn
20 25 30
His Ala Leu
35
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<212>PRT
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<400>20
Pro Gln Thr Ile Ala Ala Glu Asp Thr Leu His Asp Met Gly Ile Phe
1 5 10 15
Ser Ile Thr Ser Ser Asp Ser Gln Ala Met Gly Arg Val Gly
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<212>DNA
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agcggtgtaa caaccatgat tggtggcgga actggtcctg ctgat 45
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<213>幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)
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<212>DNA
<213>幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)
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cctcaaacca ttgcggctga agacactttg catgacatgg gg 42
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attttctcaa tcaccagctc tgactctcaa gctatgggtc gtgtgggt 48
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<212>PRT
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Ser Gly Val Thr Thr Met Ile Gly Gly Gly Thr Gly Pro Ala Asp
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<210>31
<211>15
<212>PRT
<213>幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)
<400>31
Gly Gly Gly Thr Gly Pro Ala Asp Gly Thr Asn Ala Thr Thr Ile
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<210>32
<211>15
<212>PRT
<213>幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)
<400>32
Gly Thr Asn Ala Thr Thr Ile Thr Pro Gly Arg Arg Asn Leu Lys
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<211>15
<212>PRT
<213>幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)
<400>33
Thr Ile Thr Pro Gly Arg Arg Asn Leu Lys Trp Met Leu Arg Ala
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<210>34
<211>15
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<213>幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)
<400>34
Trp Met Leu Arg Ala Ala Glu Glu Tyr Ser Met Asn Leu Gly Phe
1 5 10 15
<210>35
<211>15
<212>PRT
<213>幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)
<400>35
Met Asn Leu Gly Phe Leu Ala Lys Gly Asn Ala Ser Asn Asp Ala
1 5 10 15
<210>36
<211>14
<212>PRT
<213>幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)
<400>36
Pro Gln Thr Ile Ala Ala Glu Asp Thr Leu His Asp Met Gly
1 5 10
<210>37
<211>15
<212>PRT
<213>幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)
<400>37
Thr Leu His Asp Met Gly Ile Phe Ser Ile Thr Ser Ser Asp Ser
1 5 10 15
<210>38
<211>16
<212>PRT
<213>幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)
<400>38
Ile Phe Ser Ile Thr Ser Ser Asp Ser Gln Ala Met Gly Arg Val Gly
1 5 10 15
Claims (9)
1.由序列表中序列31所示的氨基酸序列组成的多肽。
2.权利要求1所述的多肽的编码基因。
3.根据权利要求2所述的编码基因,其特征在于:所述编码基因为序列表中序列22的DNA。
4.权利要求1所述的多肽在制备预防或治疗幽门螺杆菌感染的免疫制剂中的应用。
5.根据权利要求4所述的应用,其特征在于:所述免疫制剂为表位疫苗制剂。
6.根据权利要求5所述的应用,其特征在于:所述表位疫苗制剂为多联多聚表位疫苗制剂。
7.权利要求1所述的多肽在制备幽门螺杆菌体外检测试剂中的应用。
8.检测、预防或治疗幽门螺杆菌感染的免疫制剂,其活性成分包括权利要求1所述的多肽。
9.抑制尿素酶的活性的药物,其活性成分包括权利要求1所述的多肽的抗体。
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J. P. Burnie,A. Al-Dughaym.The application of epitope mapping in the development of a new serological test for Helicobacter pylori infection.《The application of epitope mapping in the development of a new serological test for Helicobacter pylori infection》.1996,第194卷第85-94页. * |
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