CN101781658B - 一种利用基因转化改善水稻产量性状的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明属于基因工程领域,涉及一种利用lrk1基因转化提高水稻产量及产量性状的方法。本发明利用基因枪微弹轰击法,将水稻lrk1基因转化水稻愈伤组织,经过恢复培养获得表达lrk1基因的水稻植株。结果显示,成功转化的水稻,其种子发芽势快于对照,苗期分蘖势好于对照,苗期生长势、苗期生长势和植株成熟穗子指标总体优于对照。本发明为水稻提高产量提供了一种低成本、高效益的新方法。
Description
技术领域
本发明属于遗传工程领域,具体涉及一种利用lrk1基因转化提高水稻产量和改善产量性状的方法。
背景技术
目前国内外利用转基因改良作物经济性状的技术与方法主要是根据已知的功能基因与表型性状的关系,采用组成型表达载体或组织专一性表达载体将目的基因导入目标植物,以期获得作物特定经济性状或抗逆性性状的改良.
在农作物特别是谷类作物中,产量性状通常是由多基因或称数量基因控制的。分离与克隆这类产量性状基因的方法一般采用定位克隆技术,然后通过转基因验证其功能。以栽培水稻与江西东乡野生稻杂交与回交构建的基因系为材料,通过染色体定位与基因组序列分析分离克隆了来自东乡野生稻基因组的一组编码跨膜受体蛋白LRK的基因,共有8个首尾相连簇集排列的家族成员,分别命名为lrk1,lrk2,lrk3,lrk4,lrk5,lrk6,lrk7和lrk8。在有些籼稻品种中只含有7个lrk基因,它们缺少lrk1基因。粳稻中,lrk2,lrk3和lrk5基因不表达。籼稻中,缺少lrk1基因,lrk3和lrk5基因不表达(Guangming He,Xiaojin Luo,Feng Tian,Kegui Li,Zuofeng Zhu,Wei Su,Xiaoyin Qian,Xiangkun Wang,Chuangqing Sun and Jinshui Yang*HaplotypeVariation in Structure and Expression of a Gene Cluster that is Associated with aQuantitative Trait Locus for Improved Yield in Rice,Genome Research,2006,16:618-626)。
这个基因簇位于水稻2号染色体的端部,其DNA序列已经登录在国际基因组数据库NCBI,克隆编号为AY756174和DQ195081。经水稻苗期分子检测证实,在粳稻日本晴的8个lrk基因中,有5个基因表达,分别为lrk1,lrk4,lrk6,lrk7和lrk8。在籼稻9311(超级杂交稻亲本之一)中,也有5个lrk基因表达,分别为lrk2,lrk4,lrk6,lrk7和lrk8。
但是,尚未有利用这组lrk基因提高水稻产量或者明显改善产量性状的报道。
发明内容
本发明目的是提供一种利用基因转化提高水稻产量的方法。
本发明提供了一种提高水稻产量的方法,即用水稻lrk1基因转化水稻,所述的lrk1基因的蛋白氨基酸序列如SEQ ID NO 2所示。
本发明中,水稻lrk1基因是指氨基酸序列如SEQ ID NO 2的蛋白。该术语还包括具有与水稻lrk1蛋白相同功能的、SEQ ID NO.2序列的变异形式。这些变异形式包括(但并不限于):若干个(通常为1-50个,较佳地1-30个,更佳地1-20个,最佳地1-10个)氨基酸的缺失、插入和/或取代,以及在C末端和/或N末端添加一个或数个(通常为20个以内,较佳地为10个以内,更佳地为5个以内)氨基酸。例如,在本领域中,用性能相近或相似的氨基酸进行取代时,通常不会改变蛋白质的功能。又比如,在C末端和/或N末端添加一个或数个氨基酸通常也不会改变蛋白质的功能。该术语还包括水稻lrk1蛋白的活性片段和活性衍生物。
本发明中,所述的lrk1基因的核苷酸序列如SEQ ID NO 1所示。
本发明中,水稻lrk1基因的核苷酸序列包括编码具有水稻lrk1蛋白活性的多肽的核苷酸序列,如SEQ ID NO.1中32-3181位核苷酸序列及其简并序列。该简并序列是指,位于SEQ ID NO.1序列的编码框32-3181位核苷酸中,有一个或多个密码子被编码相同氨基酸的简并密码子所取代后而产生的序列。由于密码子的简并性,所以与SEQ ID NO.1中32-3181位核苷酸序列同源性低至约70%的简并序列也能编码出SEQ ID NO.2所述的序列。该术语还包括能在中度严紧条件下,更佳地在高度严紧条件下,与SEQ ID NO.1中从核苷酸32-3181位的核苷酸序列杂交的核苷酸序列。还术语还包括与SEQ ID NO.1中从核苷酸32-3181位的核苷酸序列的同源性至少70%,较佳地至少80%,更佳地至少90%的核苷酸序列。
本发明中,所述的方法具体包括以下步骤:
(1)将lrk1基因编码序列插入植物表达载体构建重组表达载体;
(2)诱导处理水稻愈伤组织;
(3)用(1)所得的重组表达载体转化水稻愈伤组织;
(4)恢复培养(3)所得的水稻愈伤组织。
本发明中,所述的植物表达载体可以是常规的水稻表达载体。构建重组序列的方法参考《分子克隆》的标准方法,例如,将lrk1基因编码序列克隆到植物表达载体的多克隆位点。
本发明中,所述的植物表达载体可以是已经市售或者文献报道过的植物表达载体,例如pCAMBIA1304等。
本发明中,步骤(3)中用基因枪微弹轰击法实现重组表达载体转化水稻愈伤组织。除此以外,还可以参用其他常规的基因转化方法。
本发明中,恢复培养水稻愈伤组织是先在不含筛选剂的诱导培养基上生长,然后再在含有筛选剂的培养基上筛选,并将筛选后的愈伤组织光照培养。
本发明中,所述的筛选剂是潮霉素。
在进行筛选时,可以采用筛选剂浓度逐步提高的方法,也可以配合光照条件进行。例如在本发明的一个实施例中,采用下述含有30mg/和50mg/L潮霉素的筛选培养基、同时配合暗培养约两周进行筛选。
筛选完成后,所得即含有lrk1基因的愈伤组织,可以将筛选后存活的愈伤于分化培养基上光照培养,待分化出小植株后,再转入生根壮苗培养基,长大后移入温室。
本发明提供了一种利用lrk1基因转化提高水稻产量及产量性状的方法。本发明利用基因枪微弹轰击法,将水稻lrk1基因转化水稻愈伤组织,经过恢复培养获得表达lrk1基因的水稻植株。结果显示,成功转化的水稻,其种子发芽势快于对照,苗期分蘖势好于对照,苗期生长势、苗期生长势和植株成熟穗子指标总体优于对照。本发明为水稻提高产量提供了一种低成本、高效益的新方法。
附图说明
图1是含lrk1基因的表达载体结构图。lrk1基因插入表达载体的位置有箭头标示。
图2是转lrk1基因的种子发芽势快于对照9311的结果图1。
图3是转lrk1基因的种子发芽势快于对照9311结果图2。具体方法为:浸种两天,催芽两天,催苗4天。
图4是lrk1转基因苗期分蘖势好于对照9311结果图1。
图5是lrk1转基因苗期生长势图。左,9311对照;右:转lrk1基因9311。
图6是lrk1转基因9311成熟单株图。左,9311对照,株高110厘米,分蘖数为9;右,lrk1转基因9311单株,株高105厘米,分蘖数为12。
图7是lrk1转基因9311植株成熟穗子图。上,9311对照,穗长29.5厘米,第一枝梗为12,第二枝梗为54,总颖花数为244,千粒重为28克,生育期:5/1播种,始穗:8/7,采收:9/5;下,lrk1转基因9311,穗长29.0厘米,第一枝梗为13,第二枝梗为73,总颖花数为293,千粒重为26克,生育期:5/1播种,始穗:8/2,采收:9/5。
具体实施方式
实施例1lrk1基因的功能验证
1)lrk1基因表达载体的构建
采用pCAMBIA1304为表达载体,将东乡野生稻lrk1基因插入到pCAMBIA1304载体35S组型启动子下游。含lrk1基因的表达载体结构图如下:
2)lrk1基因转化实验与结果
采用目前国内超级杂交稻的主要亲本之一9311为转基因受体。将9311成熟种子去壳消毒后接种在脱分化植物组织培育基上诱导愈伤组织。在愈伤组织诱导2-3周后,采用基因枪微弹轰击法,将含lrk1基因的纯化的pCAMBIA1304质粒DNA导入9311愈伤组织细胞。在添加30ppm潮霉素的MS培养基上连续培养3-4周筛选抗性细胞系,然后将筛选的细胞系转移到分化培养基诱导长芽和生根。
3)转化处理试管苗移载及转化植株后代的分子检测
将lrk1基因转化处理的9311试管苗移载田间,并在分蘖期取叶片提取DNA采用PCR扩放技术进行分子检测,于2005年秋获得阳性T0代。2005年冬,在海南岛加代繁殖,获得转基因T1代,共计7个株系。
4)lrk1转基因T2代群体产量性状的调查与统计
将lrk1基因转基因T2代于2006年春播种,四叶期将转化的7个lrk1转基因T2代株系种植在复旦大学试验田。7个株系每个株系各种植49株,行株距为6寸x 6寸,重复三次,同时设立9311亲本对照。在分蘖盛期调查统计分蘖数,成熟期统计有效穗数,单株总粒数和千粒重,结果如下:
根据上述田间调查及考种数据,与对照相比,lrk1转基因9311的产量性状优于对照:
有效穗:增加27.8%;每株总粒数:增加38.9%;平均每穗穗粒数:增加8.9%。千粒重:减少7%。
水稻lrk1转基因增加产量的主要原因是增加分蘖力和有效穗以及穗粒数.转基因9311植株的平均穗长与对照基本一致,但穗粒数增加,主要是因为转基因株系的稻穗二次枝梗数增加,从而增加了每穗总粒数。
实施例2水稻lrk1基因转化籼稻9311的方法
1)选择lrk1全长ORF区段(见序列表),采用PCR方法从东乡野生稻中将其扩增,并合成插入接头克隆到植物表达载体pCAMBIA1304,获得lrk1表达载体pCAMBIA1304/lrk1.
2)诱导水稻愈伤组织培养基
1.诱导及继代培养基:MS+2mg/L 2,4-D.
2.高渗培养基:MS+2mg/L 2,4-D+46.67g/L山梨醇+46.67g/L甘露醇.
3.第一轮筛选培养基:MS+2mg/L 2,4-D+30mg/L潮霉素.
4.第二轮筛选培养基:MS+2mg/L 2,4-D+50mg/L潮霉素.
5.分化培养基:MS+3mg/L 6-BA+0.5mg/L NAA+50mg/L潮霉素.
6.生根壮苗培养基:1/2MS+0.1mg/L NAA
注:1.以上培养基均含30g/L蔗糖+2.5g/L agar,pH 5.8
2.愈伤诱导、继代、筛选培养条件为26-28℃暗培养,分化、生根壮苗为26-28℃及16小时光周期
3)愈伤组织诱导与处理
1.取授粉后12-15天的未成熟种子,在无菌条件下,先用70%乙醇浸洗10min,转入0.1%升汞浸泡20min,无菌水清洗3次。
2.在无菌条件下剥离幼胚,接种于愈伤诱导培养基上,26-28℃暗培养约20天后切芽,继代一次。
3.在继代培养基中挑选生长旺盛、淡黄色的愈伤约30-50块(每块3mm左右),置于高渗培养基上中央,排成直径约2.5cm的圆圈内,培养约4-5h后用于转化。
4)基因枪转化
1.基因枪:从宁波新芝科技有限公司购置的高压气体基因枪,型号:GJ-1000.
2.微粒子弹制备
3.称取60mg钨粉(直径约1um),加入到1.5ml灭菌离心管中,再加入1ml无水乙醇,振荡1min,于10000rpm离心10s,弃上清,重复洗一次后,将金粉悬浮于1ml无菌水中现用或-20℃保存。
4.吸取50ul钨粉悬浮液于1.5ml离心管,依次加入5ug DNA、50ul2.5M CaCl2、20ul 0.1M亚精胺,振荡5分钟,10000rpm离心20s,弃上清,以140ul无水乙醇漂洗两次,加入60ul无水乙醇,悬浮待用。
5)轰击受体材料
1.将基因枪放于超净工作台上,用70%酒精擦净真空室,并将可裂膜、载粒膜、金属挡网(均由宁波新芝科技有限公司供货)于70%酒精中消毒30分钟,然后用无菌滤纸吸干或吹净残余酒精.
2.打开电源开关,真空泵及氦气瓶阀。
3.将可裂膜装入固定、旋紧。
4.取10ul包被DNA的钨粉无水乙醇悬浮液,均匀涂布于载粒膜中心,放在超净台上吹干。
5.将载有微弹的载粒膜及挡网装入微弹发射装置,使有颗粒的一面朝下。
6.将培养皿放在托盘上,使愈伤集中于培养皿中央。
7.打开气瓶,调节压力1100Psi。
8.抽真空,当真空度达到需要值时,将VAC键转到Hold位置。
9.轰击,每皿轰击2次(第一次轰击后将培养皿旋转90度后进行第二次轰击),按放气键使真空表读数回零,取出样品,轰击后于高渗培养基上继续培养12-16h。
6)转化愈伤组织筛选
1.将打枪后高渗培养基上的愈伤转入不含筛选剂的诱导培养基上恢复生长5-7天。
2.将愈伤转到含30mg/L潮霉素的筛选培养基上,均匀摆放,暗培养14-17天进行第一次抗性筛选。
3.将抗性愈伤转入含50mg/L潮霉素的筛选培养基上,暗培养8-12天进行第二次抗性筛选。
7)水稻rFCA基因RRM2结构域转化植株筛选与检测
1.转化试管苗分子检测
A,将筛选后存活的愈伤于分化培养基上光照培养30天。
B,待分化出小植株后,将小植株转入生根壮苗培养基,长大后移入温室。
2.转化植株的分子检测
分别采用PCR扩增和基因组Southern杂交杂法检测后选的转化植株,共获得两株含有转化的rFCA-RRM片段的阳性植株
序列表
<210>1
<211>3240
<212>DNA
<213>Oryza sativa
<220>
<221>CDS
<222>(32)..(3181)
<223>
<400>1
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1 5
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280 285 290 295
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330 335 340
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345 350 355
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360 365 370 375
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380 385 390
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410 415 420
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425 430 435
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440 445 450 455
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475 480 485
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505 510 515
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540 545 550
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635 640 645
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745 750 755
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760 765 770 775
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795 800 805
gaa agg gag ttc agt gca gag gtt gaa acg ctc tcc atg gca cga cat 2500
Glu Arg Glu Phe Ser Ala Glu Val Glu Thr Leu Ser Met Ala Arg His
810 815 820
gac aat ctt gtg cca ctc tgg ggt tac tgt atc cag gga aac tcg agg 2548
Asp Asn Leu Val Pro Leu Trp Gly Tyr Cys Ile Gln Gly Asn Ser Arg
825 830 835
ctc ctc ata tat tct tac atg gag aat ggc agc ctg gat gat tgg ctt 2596
Leu Leu Ile Tyr Ser Tyr Met Glu Asn Gly Ser Leu Asp Asp Trp Leu
840 845 850 855
cat aac aag gat gat gat acc agc aca att cta gat tgg cca aga cgg 2644
His Asn Lys Asp Asp Asp Thr Ser Thr Ile Leu Asp Trp Pro Arg Arg
860 865 870
ctc aaa ata gca aaa ggg gca agc cat ggc ctt tct tac atc cac aat 2692
Leu Lys Ile Ala Lys Gly Ala Ser His Gly Leu Ser Tyr Ile His Asn
875 880 885
atc tgc aag cct cgt att gtc cac cgt gac atc aaa tct agc aac atc 2740
Ile Cys Lys Pro Arg Ile Val His Arg Asp Ile Lys Ser Ser Asn Ile
890 895 900
ctt ctc gac aaa gaa ttc aaa gct tat att gca gat ttt gga tta tca 2788
Leu Leu Asp Lys Glu Phe Lys Ala Tyr Ile Ala Asp Phe Gly Leu Ser
905 910 915
cgg ttg atc ctt ccc aac aaa act cat gtc cca act gaa cta gtt ggc 2836
Arg Leu Ile Leu Pro Asn Lys Thr His Val Pro Thr Glu Leu Val Gly
920 925 930 935
act ctt ggt tac atc cca cct gag tac gcc cag gca tgg gtt gct aca 2884
Thr Leu Gly Tyr Ile Pro Pro Glu Tyr Ala Gln Ala Trp Val Ala Thr
940 945 950
ttg aaa ggt gat gta tac agt ttc gga gtg gtc ctg ctt gag ctt ctc 2932
Leu Lys Gly Asp Val Tyr Ser Phe Gly Val Val Leu Leu Glu Leu Leu
955 960 965
act ggg agg agg cca gtt ccg ata ctg tct acc tca aag gaa ctt gtc 2980
Thr Gly Arg Arg Pro Val Pro Ile Leu Ser Thr Ser Lys Glu Leu Val
970 975 980
cca tgg gta cag gag atg gta tca aat gga aag cag att gag gtg ctg 3028
Pro Trp Val Gln Glu Met Val Ser Asn Gly Lys Gln Ile Glu Val Leu
985 990 995
gat tta aca ttt caa ggc aca ggg tgt gaa gag caa atg cta aag 3073
Asp Leu Thr Phe Gln Gly Thr Gly Cys Glu Glu Gln Met Leu Lys
1000 1005 1010
gtc ctt gaa att gct tgc aag tgt gtc aaa ggt gat cct ttg cgg 3118
Val Leu Glu Ile Ala Cys Lys Cys Val Lys Gly Asp Pro Leu Arg
1015 1020 1025
agg cct act atg ata gaa gta gta gcc agt ctg cac agt ata gac 3163
Arg Pro Thr Met Ile Glu Val Val Ala Ser Leu His Ser Ile Asp
1030 1035 1040
cct gac ggc ctg acc taa agatacaata atatgacaaa taatcttgta 3211
Pro Asp Gly Leu Thr
1045
ctttcagtga actgagttga tctagtctc 3240
<210>2
<211>1049
<212>PRT
<213>Oryza sativa
<400>2
Met Gln Pro Pro His Phe Ser Tyr Lys Thr Gln Ser Asn Arg Leu Pro
1 5 10 15
Ile Pro Val Leu Ser Leu Ala Leu Val Leu Leu Leu Asn Phe Thr Ser
20 25 30
Pro Thr Ser Ser Cys Thr Glu Gln Glu Lys Asn Ser Leu Leu Asn Phe
35 40 45
Leu Thr Gly Leu Ser Lys Asp Gly Gly Leu Ser Met Ser Trp Lys Asp
50 55 60
Gly Val Asp Cys Cys Glu Trp Glu Gly Ile Thr Cys Arg Thr Asp Arg
65 70 75 80
Thr Val Thr Asp Val Ser Leu Pro Ser Arg Ser Leu Glu Gly Tyr Ile
85 90 95
Ser Pro Ser Leu Gly Asn Leu Thr Gly Leu Leu Arg Leu Asn Leu Ser
100 105 110
Tyr Asn Leu Leu Ser Ser Val Leu Pro Gln Glu Leu Leu Ser Ser Ser
115 120 125
Lys Leu Ile Val Ile Asp Ile Ser Phe Asn Arg Leu Asn Gly Gly Leu
130 135 140
Asp Lys Leu Pro Ser Ser Thr Pro Ala Arg Pro Leu Gln Val Leu Asn
145 150 155 160
Ile Ser Ser Asn Leu Leu Ala Gly Gln Phe Pro Ser Ser Thr Trp Val
165 170 175
Val Met Ala Asn Leu Ala Ala Leu Asn Val Ser Asn Asn Ser Phe Thr
180 185 190
Gly Lys Ile Pro Thr Asn Phe Cys Thr Asn Ser Pro Ser Leu Ala Val
195 200 205
Leu Glu Leu Ser Tyr Asn Gln Phe Ser Gly Ser Ile Pro Pro Glu Leu
210 215 220
Gly Ser Cys Ser Arg Leu Arg Val Leu Lys Ala Gly His Asn Asn Leu
225 230 235 240
Ser Gly Thr Leu Pro Asp Glu Ile Phe Asn Ala Thr Ser Leu Glu Cys
245 250 255
Leu Ser Phe Pro Asn Asn Asn Leu Gln Gly Thr Leu Glu Gly Ala Asn
260 265 270
Val Val Lys Leu Gly Lys Leu Ala Thr Leu Asp Leu Gly Glu Asn Asn
275 280 285
Phe Ser Gly Asn Ile Pro Glu Ser Ile Gly Gln Leu Asn Arg Leu Glu
290 295 300
Glu Leu His Leu Asn Asn Asn Lys Met Phe Gly Ser Ile Pro Ser Thr
305 310 315 320
Leu Ser Asn Cys Thr Ser Leu Lys Thr Ile Asp Leu Asn Ser Asn Asn
325 330 335
Phe Ser Gly Glu Leu Met Asn Val Asn Phe Ser Asn Leu Pro Ser Leu
340 345 350
Gln Thr Leu Asp Leu Arg Gln Asn Ile Phe Ser Gly Lys Ile Pro Glu
355 360 365
Thr Ile Tyr Ser Cys Ser Asn Leu Thr Ala Leu Arg Leu Ser Leu Asn
370 375 380
Lys Phe Gln Gly Gln Leu Ser Lys Gly Leu Gly Asn Leu Lys Ser Leu
385 390 395 400
Ser Phe Leu Ser Leu Gly Tyr Asn Asn Leu Thr Asn Ile Thr Asn Ala
405 410 415
Leu Gln Ile Leu Arg Ser Ser Ser Lys Leu Thr Thr Leu Leu Ile Ser
420 425 430
Asn Asn Phe Met Asn Glu Ser Ile Pro Asp Asp Asp Arg Ile Asp Gly
435 440 445
Phe Glu Asn Leu Gln Val Leu Asp Leu Ser Gly Cys Ser Phe Ser Gly
450 455 460
Lys Ile Pro Gln Trp Leu Ser Lys Leu Ser Arg Leu Glu Met Leu Val
465 470 475 480
Leu Asp Asn Asn Gln Leu Thr Gly Pro Ile Pro Asp Trp Ile Ser Ser
485 490 495
Leu Asn Phe Leu Phe Tyr Leu Asp Val Ser Asn Asn Asn Leu Thr Gly
500 505 510
Glu Ile Pro Met Ala Leu Leu Gln Met Pro Met Leu Arg Ser Asp Arg
515 520 525
Ala Ala Ala Gln Leu Asp Thr Arg Ala Phe Glu Leu Pro Ile Tyr Ile
530 535 540
Asp Ala Thr Leu Leu Gln Tyr Arg Lys Ala Ser Ala Phe Pro Lys Val
545 550 555 560
Leu Asn Leu Gly Asn Asn Glu Phe Thr Gly Leu Ile Pro Gln Glu Ile
565 570 575
Gly Gln Leu Lys Ala Leu Leu Leu Leu Asn Leu Ser Phe Asn Lys Leu
580 585 590
Tyr Gly Asp Ile Pro Gln Ser Ile Cys Asn Leu Arg Asp Leu Leu Met
595 600 605
Leu Asp Leu Ser Ser Asn Asn Leu Thr Gly Thr Ile Pro Ala Ala Leu
610 615 620
Asn Asn Leu Thr Phe Leu Ile Glu Phe Asn Val Ser Tyr Asn Asp Leu
625 630 635 640
Glu Gly Pro Ile Pro Thr Gly Gly Gln Phe Ser Thr Phe Thr Asn Ser
645 650 655
Ser Phe Tyr Gly Asn Pro Lys Leu Cys Gly Pro Met Leu Thr His His
660 665 670
Cys Ser Ser Phe Asp Arg His Leu Val Ser Lys Gln Gln Gln Asn Lys
675 680 685
Lys Val Ile Leu Val Ile Val Phe Cys Val Leu Phe Gly Ala Ile Val
690 695 700
Ile Leu Leu Leu Leu Gly Tyr Leu Leu Leu Ser Ile Arg Gly Met Ser
705 710 715 720
Phe Thr Thr Lys Ser Arg Cys Asn Asn Asp Tyr Ile Glu Ala Leu Ser
725 730 735
Pro Asn Thr Asn Ser Asp His Leu Leu Val Met Leu Gln Gln Gly Lys
740 745 750
Glu Ala Glu Asn Lys Leu Thr Phe Thr Gly Ile Val Glu Ala Thr Asn
755 760 765
Asn Phe Asn Gln Glu His Ile Ile Gly Cys Gly Gly Tyr Gly Leu Val
770 775 780
Tyr Lys Ala Gln Leu Pro Asp Gly Ser Met Ile Ala Ile Lys Lys Leu
785 790 795 800
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805 810 815
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820 825 830
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Ile Leu Asp Trp Pro Arg Arg Leu Lys Ile Ala Lys Gly Ala Ser His
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Gly Leu Ser Tyr Ile His Asn Ile Cys Lys Pro Arg Ile Val His Arg
885 890 895
Asp Ile Lys Ser Ser Asn Ile Leu Leu Asp Lys Glu Phe Lys Ala Tyr
900 905 910
Ile Ala Asp Phe Gly Leu Ser Arg Leu Ile Leu Pro Asn Lys Thr His
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Val Pro Thr Glu Leu Val Gly Thr Leu Gly Tyr Ile Pro Pro Glu Tyr
930 935 940
Ala Gln Ala Trp Val Ala Thr Leu Lys Gly Asp Val Tyr Ser Phe Gly
945 950 955 960
Val Val Leu Leu Glu Leu Leu Thr Gly Arg Arg Pro Val Pro Ile Leu
965 970 975
Ser Thr Ser Lys Glu Leu Val Pro Trp Val Gln Glu Met Val Ser Asn
980 985 990
Gly Lys Gln Ile Glu Val Leu Asp Leu Thr Phe Gln Gly Thr Gly Cys
995 1000 1005
Glu Glu Gln Met Leu Lys Val Leu Glu Ile Ala Cys Lys Cys Val
1010 1015 1020
Lys Gly Asp Pro Leu Arg Arg Pro Thr Met Ile Glu Val Val Ala
1025 1030 1035
Ser Leu His Ser Ile Asp Pro Asp Gly Leu Thr
1040 1045
Claims (7)
1.一种增加水稻分蘖和每穗粒数的方法,其特征在于,用水稻lrk1基因转化籼稻9311,所述的lrk1基因的蛋白氨基酸序列如SEQ ID NO 2所示。
2.如权利要求1所述的方法,其特征在于,所述的lrk1基因的核苷酸序列如SEQ ID NO 1所示。
3.如权利要求1所述的方法,其特征在于,所述的方法具体包括以下步骤:
(1)将lrk1基因编码序列插入植物表达载体构建重组表达载体;
(2)诱导处理水稻愈伤组织;
(3)用(1)所得的重组表达载体转化水稻愈伤组织;
(4)恢复培养(3)所得的水稻愈伤组织。
4.如权利要求3所述的方法,其特征在于,所述的植物表达载体是水稻表达载体。
5.如权利要求3所述的方法,其特征在于,所述的植物表达载体是pCAMBIA1304。
6.如权利要求3所述的方法,其特征在于,步骤(3)中用基因枪微弹轰击法实现重组表达载体转化水稻愈伤组织。
7.如权利要求3所述的方法,其特征在于,恢复培养水稻愈伤组织是先在不含潮霉素的诱导培养基上生长,然后再在含有潮霉素的培养基上筛选,并将筛选后的愈伤组织光照培养。
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EXPY | Termination of patent right or utility model |