CN101748175A

CN101748175A - 从食品样品中简易提取细菌dna的方法

Info

Publication number: CN101748175A
Application number: CN200810182554A
Authority: CN
Inventors: 王磊; 王敏; 曹勃阳; 杨斌
Original assignee: Tianjin Biochip Corp
Current assignee: Tianjin Biochip Corp
Priority date: 2008-12-05
Filing date: 2008-12-05
Publication date: 2010-06-23

Abstract

本发明公开了一种从食品样品中简易提取细菌基因组DNA的方法，其主要包含步骤：以含有细菌的食品为样品，过夜培养，离心富集菌体，然后用无菌水充分洗涤，得沉淀物；使用含KCl，Tris-HCl，MgCl₂和蛋白酶K的裂解液重悬上述的沉淀物，得重悬液；对所得的重悬液进行第一次水浴，裂解细菌细胞，然后再经第二次水浴；将所得物进行离心，获得含所述细菌基因组DNA的中层上清；收集上清，烘干，即制得所述细菌基因组DNA。使用本发明的方法，可充分裂解革兰氏阳性和革兰氏阴性(G⁺、G^-)菌的细胞壁，同时由于裂解液中加入了蛋白酶K，并加热煮沸，使得蛋白凝固变性，提高了DNA的提取效率和纯度。

Description

从食品样品中简易提取细菌DNA的方法

技术领域

本发明涉及一种细菌基因组DNA的提取方法，尤其涉及从食品样品中简易提取适用于致病菌检测的DNA的方法。

背景技术

自2004年4月安徽阜阳发生“劣质奶粉”事件以来，奶粉安全问题成为社会各界广泛关注的焦点。奶粉的主要消费群体是婴幼儿、儿童、老人或病人等免疫力较低的人群，尤其婴幼儿是奶粉的重要消费群体，因此，奶粉的安全性尤为重要，一直受到国务院、职能部门和各级政府的高度重视。2002年科技部下达了“十五”国家重大科技奶业专项，对乳制品中几种常见致病菌进行了快速检测方法的研究。由此可见，研究并建立快速准确检测奶粉中的致病菌的方法以保障奶制品的安全非常必要。

国标中检测食品中致病菌的方法多是采用传统的分离培养和生化鉴定的方法，报告检验结果大致需5～7天，加之检验方法繁琐、费时费力，不仅成为检验部门的一项沉重负担，而且越来越不能满足食品安全和日益发展的国际贸易的需要。另外，在检验环境中，也很容易造成环境和/或标本的污染。再者，传统方法还存在培养条件苛刻或某些致病菌难以培养的问题。

以PCR为基础的现代分子生物学技术为病原微生物的检测开辟了一条快速灵敏的途径。分子生物学技术应用于微生物检测首先需要用PCR方法扩增临床样品中病原体的靶核酸序列，然后用其它多种分子生物学手段对扩增产物进行分析，从而鉴定病原体的有无和种类。对扩增产物进行分析的常用方法包括电泳、杂交等。以DNA杂交为基础的基因芯片技术，更具有敏感性高、特异性强、可实现大规模集成化等优点。

分子生物学技术应用于食品致病微生物检测的核心之一是样品中病原体DNA的有效提取。食品中可能的致病菌既有G⁺菌，也有G^-菌，且食品种类复杂，成分多样，含有丰富的蛋白、脂肪、维生素、微量元素等，某些成分有强烈抑制PCR反应的作用，如果在细菌DNA提取过程中不能有效去除这些抑制成分，将会对以后的PCR反应造成很大问题。

为了克服上述缺陷，目前人们已采取了多种方法，例如对标本进行预处理并使用柱层析方法分离DNA，以及P.Cremonesi等人的方法(J.DairySci，89(2006)：163-169)。但这些方法皆因成本较高或试剂有毒且易于造成DNA的损伤等问题，而难以在基层医疗单位的实验室广泛使用。

因此，本领域有必要提供一种新的食品样品中细菌的基因组DNA的方法，以便能够以较低的成本，简单、快速地从食品样品中提取高质量的总DNA，使其适应检验检疫领域检测食品中致病菌的需要。

发明内容

本发明的目的在于克服现有技术存在的不足，提供一种操作简便、易行的从食品样品中提取高质量细菌基因组DNA的方法，以适应检验检疫领域快速检测食品中致病菌的需要。

本发明提供的从食品样品中提取细菌基因组DNA的方法，主要包含步骤：

1)以含有细菌的食品为样品，过夜培养，离心富集菌体，然后用无菌水充分洗涤，得沉淀物；

2)使用含KCl，Tris-HCl，MgCl₂和蛋白酶K的裂解液重悬步骤1)所得的沉淀物，得重悬液；

3)将步骤2)所得的重悬液进行第一次水浴，裂解细菌细胞，然后再经第二次水浴；

4)将步骤3)的所得物进行离心，获得含所述细菌基因组DNA的中层上清；

5)收集步骤4)的含所述细菌基因组DNA的中层上清，烘干，即制得所述细菌基因组DNA。

本发明的较佳实施例中，步骤1)中样品可以为婴儿配方奶粉，该婴儿配方奶粉中含有沙门氏菌、志贺氏菌、化脓性链球菌、蜡样芽孢杆菌、产酸克雷伯氏菌、金黄色葡萄球菌、粘质沙雷氏菌、单增李斯特氏菌、阪崎肠杆菌、肺炎克雷伯氏菌、小肠结肠炎耶尔森氏菌、弗氏柠檬酸杆菌、普通变形杆菌、奇异变形杆菌、副溶血弧菌中的至少一种致病菌。

本发明的较佳实施例中，步骤2)所述的裂解液还可以包含TritonX-100，NP40或Tween 20中的至少一种。优选地，步骤2)所述的裂解液包含KCl，Tris-HCl，MgCl₂，Triton X-100，NP40，Tween 20和蛋白酶K；具体地可以为：裂解液包含50mM KCl，10mM Tris-HCl，2.5mM MgCl₂，0.1％的Triton X-100，0.5％NP40，0.5％Tween 20和0.1mg/ml的蛋白酶K；其中Tris-HCl的pH值优选为9.0。

本发明的较佳实施例中，步骤3)中第一次水浴的温度为40～60℃，优选为45～55℃，更佳地为50℃。

本发明的较佳实施例中，步骤3)中第一次水浴的时间为0～120分钟，较佳地为20～100分钟，更佳地为40～80分钟，最合适为60分钟；第二次水浴的温度优选为100℃。

本发明的实验结果表明，本发明所述的方法其去除抑制剂的效果明显，其所使用的裂解液可有效破坏细菌细胞壁，去除蛋白并去除抑剂成分；灵敏度高，使用本发明的方法，可对少至10²cfu的样品进行处理，而获得稳定的PCR扩增效果；操作简便，适用于实际检验；所需试剂均为常规试剂，无毒且费用低；而且对DNA的损伤很小，提高了PCR的稳定性和分析结果的准确性。

下列实施例旨在进一步举例说明，而不是限制本发明。在不违背本发明的精神和原则前提下，对发明个别技术步骤进行的任何改动和改变都将落入本发明的权利要求范围内。

附图说明

图1A-图1B为经裂解液溶液处理奶粉样品中不同细菌后所得DNA的琼脂糖电泳结果及以其为模板的PCR产物的琼脂糖电泳结果。其中1-15分别为沙门氏菌、志贺氏菌、化脓性链球菌、蜡样芽孢杆菌、产酸克雷伯氏菌、金黄色葡萄球菌、粘质沙雷氏菌、单增李斯特氏菌、阪崎肠杆菌、肺炎克雷伯氏菌、小肠结肠炎耶尔森氏菌、弗氏柠檬酸杆菌、普通变形杆菌、奇异变形杆菌、副溶血弧菌，M为DL2000Marker，N为负对照。

图2为对不同食品样品(猪肉、鸡蛋)经裂解液处理得到的DNA及以其为模板的PCR产物的琼脂糖电泳结果。1为将金黄色葡萄球菌掺入的鸡蛋样品中，2为将金黄色葡萄球菌掺入的猪肉样品中，3为将阪崎肠杆菌掺入的鸡蛋样品中，4为将阪崎肠杆菌掺入的猪肉样品中，M为DL2000Marker。

图3A-图3B为裂解液不同时间下的裂解效果梯度试验。其中3A为革兰氏阳性菌的结果，3B为革兰氏阴性菌的结果，M为DL2000Marker。

图4A-图4B为裂解液在不同温度下裂解效果的梯度试验。其中4A为革兰氏阳性菌的结果，4B为革兰氏阴性菌的结果，M为DL2000Marker。

图5为使用裂解液提取基因组与使用商品化试剂盒提取基因组的对比实验。其中G+(裂)为裂解液提取的革兰氏阳性细菌金黄色葡萄球菌的结果，G-(裂)为裂解液提取的革兰氏阴性细菌阪崎肠杆菌的结果，G+(kit)为基因组提取试剂盒提取革兰氏阳性细菌金黄色葡萄球菌的结果，G-(kit)为基因组提取试剂盒提取的革兰氏阴性细菌阪崎肠杆菌的结果，M为DL2000Marker。

具体实施方式

下面通过最佳实施例对本发明作进一步的详细说明。以下实施例仅仅是用于说明而不是限制本发明。

实施例1 提取婴儿配方奶粉样品中的细菌总DNA

提取婴儿配方奶粉样品中的细菌总DNA的完整步骤包括：

1)取1.5ml的含菌的婴儿奶粉过夜培养物加入到1.5ml灭菌离心管中，8000rpm离心5分钟收集菌体。

2)加入700μl的无菌水洗涤菌体2次

3)加入100μl裂解液(50mM KCl，10mM Tris-HCl(pH9.0)，2.5mMMgCl₂，0.1％的Triton X-100，0.5％NP40，0.5％Tween 20和0.1mg/ml的蛋白酶K)重悬菌体。

4)将上述菌悬液50℃水浴1小时后再100℃水浴15分钟。

5)16,000×g离心4分钟，取中层上清20μl转移到一个新的1.5ml灭菌离心管中，进行后续PCR反应或-20℃储存。

实施例2 裂解溶液处理不同细菌的奶粉样品实验

将沙门氏菌、志贺氏菌、化脓性链球菌、蜡样芽孢杆菌、产酸克雷伯氏菌、金黄色葡萄球菌、粘质沙雷氏菌、单增李斯特氏菌、阪崎肠杆菌、肺炎克雷伯氏菌、小肠结肠炎耶尔森氏菌、弗氏柠檬酸杆菌、普通变形杆菌、奇异变形杆菌、副溶血弧菌分别搀入含婴儿配方奶粉的培养基中，过夜培养后，按照上述实施例的提取婴儿配方奶粉样品中细菌中总DNA的方法操作，最终所得DNA的琼脂糖电泳结果及以其为模板的PCR产物的琼脂糖电泳结果如图1A和图1B所示，其中1-15分别为上述15种细菌，M为DL2000Marker，N为负对照。从所述图中可以看出该提取方法可以提取出高质量的、对PCR无影响的基因组DNA。

实施例3 裂解液处理不同食品样品的实验

将革兰氏阳性菌(金黄色葡萄球菌)、革兰氏阴性菌(坂崎杆菌)分别搀入鸡蛋、猪肉食品中，过夜培养后，分别参照上述实施例的提取婴儿配方奶粉样品中细菌DNA的方法操作，所提取的DNA和以其为模板的PCR产物的琼脂糖电泳结果如图2所示，其中的1为将金黄色葡萄球菌掺入的鸡蛋样品中，2为将金黄色葡萄球菌掺入的猪肉样品中，3为将阪崎肠杆菌掺入的鸡蛋样品中，4为将阪崎肠杆菌掺入的猪肉样品中，M为DL2000Marker。从中可以看出该提取方法可以从不同的食品中提取出高质量的、对PCR无影响的基因组DNA。

实施例4 裂解液不同时间下裂解效果的实验

将革兰氏阳性菌(金黄色葡萄球菌)、革兰氏阴性菌(坂崎杆菌)分别过夜培养后，按照上述实施例的提取婴儿配方奶粉样品中细菌中总DNA的方法操作，50℃水浴时间分别为0分钟、20分钟、40分钟、60分钟、80分钟、100分钟、120分钟，最终所得DNA的琼脂糖电泳结果及以其为模板的PCR产物的琼脂糖电泳结果如图3A和3B所示，其中3A为革兰氏阳性菌的结果，3B为革兰氏阴性菌的结果，M为DL2000Marker。从所述图中可以看出，不小于60分钟的作用时间，效果较好，优选时间为60分钟。

实施例5 裂解液不同温度下裂解效果的实验

将革兰氏阳性菌(金黄色葡萄球菌)、革兰氏阴性菌(坂崎杆菌)分别过夜培养后，按照上述实施例的提取婴儿配方奶粉样品中细菌中总DNA的方法操作，水浴时间分别为40℃、45℃、50℃、55℃、60℃，最终所得DNA的琼脂糖电泳结果及以其为模板的PCR产物的琼脂糖电泳结果如图3A和3B所示，其中4A为革兰氏阳性菌的结果，4B为革兰氏阴性菌的结果，M为DL2000Marker。从所述图中可以看出，50℃或更高的作用温度，效果较好，但由于成分中有蛋白酶K，过高温度会影响其活性，所以最佳温度为50℃。

实施例6 裂解液与商品化基因组提取试剂盒的对比实验

将革兰氏阳性菌(金黄色葡萄球菌)、革兰氏阴性菌(坂崎杆菌)分别过夜培养后，按照上述实施例的提取婴儿配方奶粉样品中细菌中总DNA的方法操作，同时按照基因组提取试剂盒(北京天根公司)使用说明书的操作方法提取基因组，最终所得DNA的琼脂糖电泳结果及以其为模板的PCR产物的琼脂糖电泳结果如图5所示，其中G+(裂)为裂解液提取的革兰氏阳性细菌金黄色葡萄球菌的结果，G-(裂)为裂解液提取的革兰氏阴性细菌阪崎肠杆菌的结果，G+(kit)为基因组提取试剂盒提取革兰氏阳性细菌金黄色葡萄球菌的结果，G-(kit)为基因组提取试剂盒提取的革兰氏阴性细菌阪崎肠杆菌的结果，M为DL2000Marker。从所述图中可以看出，该裂解液提取的基因组的扩增效果与试剂盒提取效果相当。

Claims

1.一种从食品样品中提取细菌基因组DNA的方法，其特征在于包含步骤：

2.根据权利要求1所述的方法，其特征在于步骤1)中样品为婴儿配方奶粉，该婴儿配方奶粉中含有沙门氏菌、志贺氏菌、化脓性链球菌、蜡样芽孢杆菌、产酸克雷伯氏菌、金黄色葡萄球菌、粘质沙雷氏菌、单增李斯特氏菌、阪崎肠杆菌、肺炎克雷伯氏菌、小肠结肠炎耶尔森氏菌、弗氏柠檬酸杆菌、普通变形杆菌、奇异变形杆菌、副溶血弧菌中的至少一种致病菌。

3.根据权利要求1所述的方法，其特征在于步骤2)所述的裂解液包含Triton X-100，NP40或Tween 20中的至少一种。

4.根据权利要求3所述的方法，其特征在于步骤2)所述的裂解液包含KCl，Tris-HCl，MgCl₂，Triton X-100，NP40，Tween 20和蛋白酶K。

5.根据权利要求4所述的方法，其特征在于步骤2)所述的裂解液包含50mM KCl，10mM Tris-HCl，2.5mM MgCl₂，0.1％的Triton X-100，0.5％NP40，0.5％Tween 20和0.1mg/ml的蛋白酶K。

6.根据权利要求5所述的方法，其特征在于步骤2)所述的裂解液中Tris-HCl的pH值为9.0。

7.根据权利要求1所述的方法，其特征在于步骤3)中第一次水浴的温度为40～60℃。

8.根据权利要求7所述的方法，其特征在于步骤3)中第一次水浴的温度为45～55℃。

9.根据权利要求8所述的方法，其特征在于步骤3)中第一次水浴的温度为50℃。

10.根据权利要求1所述的方法，其特征在于步骤3)中第一次水浴的时间为0～120分钟。

11.根据权利要求10所述的方法，其特征在于步骤3)中第一次水浴的时间为20～100分钟。

12.根据权利要求11所述的方法，其特征在于步骤3)中第一次水浴的时间为40～80分钟。

13.根据权利要求12所述的方法，其特征在于步骤3)中第一次水浴的时间为60分钟。

14.根据权利要求1所述的方法，其特征在于步骤3)中第二次水浴的温度为100℃。