CN101384710B

CN101384710B - 烟草烟碱脱甲基酶基因组克隆及其应用

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Publication number: CN101384710B
Application number: CN2005800196694A
Authority: CN
Inventors: 许冬梅
Original assignee: US Smokeless Tobacco Co LLC
Current assignee: US Smokeless Tobacco Co LLC
Priority date: 2004-04-29
Filing date: 2005-04-20
Publication date: 2012-05-02
Anticipated expiration: 2025-04-20
Also published as: CN101065481A; CN101384710A; CN101065481B

Abstract

本发明的特征是烟草烟碱脱甲基酶核酸和氨基酸序列，包含这样的序列的烟草植物和植物组分，其包括具有烟碱脱甲基酶的减少的表达或改变的酶活性的烟草植物和植物组分，使用烟碱脱甲基酶序列来产生与对照植物相比，具有改变水平的去甲烟碱或N′-亚硝基去甲烟碱(″NNN″)或两者的植物的方法，以及具有减少水平的去甲烟碱或NNN的烟草制品。

Description

烟草烟碱脱甲基酶基因组克隆及其应用

本发明涉及编码烟碱脱甲基酶的核酸序列和使用那些核酸序列来改变植物表型的方法。

背景

细胞色素p450s催化广泛范围的在化学上不相似的底物的酶促反应，其包括内源性和异生底物的氧化、过氧化和还原代谢。在植物中，p450s参与生化途径，所述生化途径包括植物产物诸如phenylpropanoids，生物碱，类萜，脂质，氰苷和芥子油苷的合成(Chappell，Annu.Rev.Plant Physiol.Plant Mol.Biol.46：521-547，1995)。细胞色素p450s，也已知为p450血红素-硫醇盐蛋白质，通常充当被称为包含p450的单氧化酶系统的多成分电子传递链中的末端氧化酶。由这些酶系统催化的具体反应包括脱甲基作用，羟基化作用，环氧化作用，N-氧化作用，硫代氧化作用，N-、S-、和O-脱烷基化，脱硫作用，脱氨作用和偶氮、硝基和N-氧化物基团的还原作用。

烟草属(Nicotiana)植物p450酶的多样作用涉及对多种植物代谢物的影响，所述植物代谢物诸如phenylpropanoids，生物碱，类萜，脂质，氰苷，芥子油苷和许多其它的化学实体。一些p450酶可以影响植物代谢物的组成。例如，长期以来，理想的是通过育种来改变植物的选定脂肪酸的模式从而改善某些植物的香味和香气；然而关于涉及控制这些叶组分的水平的机制知道的很少。与脂肪酸改变相关的p450酶的下调或上调可以促进理想的脂肪酸的积累，这提供了更为优选的叶表型的品质。

关于p450酶的功能和它们在植物组分中的更多作用仍旧在发现中。例如，发现一类特殊的p450酶催化脂肪酸分解为挥发性C6-和C9-醛和β-醇，其是水果和蔬菜的“鲜绿”气味的主要起作用的因素。可以改变其它新的目标p450s的水平，从而通过改变在烟草属叶中的脂质组成和相关的分解代谢物来提高叶子组分的品质。这些叶组分中的一些受到刺激叶品质成熟的衰老的影响。还有其它的报道显示p450s酶在改变脂肪酸中具有功能性作用，所述脂肪酸涉及植物-病原体相互作用和疾病抗性。

在其它的情形中，已经显示p450酶涉及生物碱的生物合成。如通过申请人的专利申请所提供，去甲烟碱，一种在烟草(Nicotiana tabacum)中发现的次要生物碱，通过p450-介导的烟碱的脱甲基作用随后在N位点进行酰化作用和亚硝化作用由此产生一系列的N-酰基去甲烟碱和N-亚硝基去甲烟碱而产生，本申请要求所述专利申请的优先权，并且将所述专利申请并入本文作为参考。认为由p450脱甲基酶催化的N-脱甲基作用是烟草属中去甲烟碱生物合成中的主要来源。

在本领域中存在对于改进植物表型的试剂和方法的需要。特别地，存在对于改进烟碱脱甲基酶的试剂和方法的需要。本发明提供许多用于改进烟碱脱甲基酶的表达的策略。

发明概述

本申请人已经鉴定和表征了来自烟草的烟碱脱甲基酶的基因组克隆。包括在本文中的是，烟碱脱甲基酶蛋白质编码区的序列，3′非翻译序列(″3′UTR″)，单一内含子和烟碱脱甲基酶基因启动子及其转录调节序列(图1)。另外描述的是将这些序列用于产生转基因植物的应用，所述转基因植物相对于对照植物，具有去甲烟碱或N’-亚硝基去甲烟碱(“NNN”)或两者的改变的水平。

因此，在第一个方面，本发明的特征是分离的核酸分子，例如包含编码烟碱脱甲基酶的核苷酸序列的DNA序列。在理想的实施方案中，第一个方面的核苷酸序列基本上与编码烟草烟碱脱甲基酶的核苷酸序列相同，所述烟草烟碱脱甲基酶诸如这样的烟草烟碱脱甲基酶，其包含与SEQ IDNO：1或SEQ ID NO：3的核苷酸序列至少70％相同的核苷酸序列，或包含SEQ ID NO：1的核苷酸2010-2949和/或3947-4562，或包含SEQ ID NO：1或SEQ ID NO：3的序列。本发明的第一个方面的分离的核酸分子，例如与在植物细胞中有功能的启动子可操纵地连接并且理想地被包含在表达载体中。在其它理想的实施方案中，表达载体被包含在细胞中，例如植物细胞中。理想地，植物细胞，诸如烟草植物细胞被包括在植物中。在另一个理想的实施方案中，本发明的特征是来自包含表达载体的植物的种子，例如烟草种子，其中所述种子包括分离的核酸分子，所述分离的核酸分子在严谨条件下杂交于SEQ ID NO：3的序列，其与异源启动子序列可操纵地连接。此外，本发明的特征是来自包含表达载体的萌发的种子的植物，来自所述植物的绿色或加工处理(cured)的叶子，和由所述叶子制成的制品。

在另一个理想的实施方案中，核苷酸序列包含这样的序列，所述序列在严谨条件下杂交于SEQ ID NO：1和/或SEQ ID NO：3的核苷酸序列的互补体，或SEQ ID NO：1或SEQ ID NO：3的片段。理想地，所述核苷酸序列编码烟碱脱甲基酶，所述烟碱脱甲基酶与SEQ ID NO：2的氨基酸序列基本上相同。在本发明的第一个方面的另一个理想实施方案中，所述烟碱脱甲基酶具有这样的氨基酸序列，所述氨基酸序列与SEQ ID NO：2的烟碱脱甲基酶氨基酸序列或烟碱脱甲基酶的片段具有至少70％同一性，所述烟碱脱甲基酶的片段与全长多肽相比具有改变的(例如减少)的酶活性。理想地，所述烟碱脱甲基酶包括SEQ ID NO：2的氨基酸序列。

在另一个方面，本发明的特征是包含启动子或驱动转录的其片段的分离的核酸分子，所述启动子在严谨条件下杂交于SEQ ID NO：6的序列。理想地，所述启动子(i)在用乙烯处理后或在衰老过程中被诱导；并且(ii)包括(a)SEQ ID NO：1的碱基对1-2009，或(b)至少200个连续的碱基对，其与由SEQ ID NO：1的碱基对1-2009限定的200个连续的碱基对的序列相同，或(c)20个碱基对核苷酸部分，其在序列上与在SEQ ID NO：1的碱基对1-2009中提出的20个连续碱基对部分的序列相同。

本发明的另一个方面的特征是分离的核酸启动子，其包含与SEQ IDNO：6的序列具有50％或更多的序列同一性的核苷酸序列。理想地，该分离的核酸启动子在用乙烯处理后，或在衰老过程中被诱导，并且例如包含SEQ ID NO：6的序列。备选地，所述启动子可以包含可从SEQ ID NO：6中获得的片段，其中所述片段驱动异源基因的转录或减少或改变烟碱脱甲基酶活性(例如，使基因表达沉默)。在理想的实施方案中，所述启动子序列与异源核酸序列可操纵地连接，并且可以例如被包含在表达载体中。在其它理想的实施方案中，所述表达载体被包含在细胞，例如植物细胞中。理想地，植物细胞，诸如烟草植物细胞，被包括在植物中。在另一个理想的实施方案中，本发明的特征是来自包含表达载体的植物的种子，例如烟草种子，其中所述种子包含分离的核酸分子，其在严谨条件下，杂交于SEQID NO：6的序列，其与异源核酸序列可操纵地连接。此外，本发明的特征是来自包含本发明的该方面的启动子的萌发种子的植物，来自所述植物的绿色或加工处理的叶子，或由所述叶子制成的制品。

本发明的另一个方面的特征是在植物中表达异源基因的方法。该方法包括(i)将包含启动子序列的载体引入植物细胞，所述启动子序列与SEQ IDNO：6的序列具有50％或更多的序列同一性，其与异源核酸序列可操纵地连接；和(ii)从细胞中再生植物。此外，该方法可以包括将载体通过性手段传递到子代，并且进一步可以包括收集从子代中产生的种子的步骤。

在另一个方面，本发明的特征是在烟草植物中减少烟碱脱甲基酶的表达的方法。该方法包括下列步骤：(i)将包含与异源核酸序列可操纵地连接的SEQ ID NO：6的序列或可从SEQ ID NO：6获得的片段的载体引入烟草植物中，和(ii)在烟草植物中表达所述载体。在该方法的理想实施方案中，烟草脱甲基酶的表达被沉默。在其它理想的实施方案中，所述载体表达RNA，诸如反义RNA或能够诱导RNA干扰(RNAi)的RNA分子。

在另一个理想的方面中，本发明的特征是包含这样的内含子的分离的核酸分子，所述内含子在严谨条件下杂交于SEQ ID NO：5的序列或其片段，所述片段减少或改变烟碱脱甲基酶的酶活性(例如，沉默基因表达)或可以充当分子标志物以鉴定烟碱脱甲基酶核酸序列。在理想的实施方案中，内含子包括(a)SEQ ID NO：1的碱基对2950-3946，或(b)至少200个连续的碱基对，其与SEQ ID NO：1的碱基对2950-3946所定义的200个连续的碱基对的序列相同，或(c)20个碱基对核苷酸部分，其在序列上与在SEQID NO：1的碱基对2950-3946中提出的20个连续的碱基对部分的序列相同。

本发明的另一个理想的方面的特征是分离的核酸内含子，所述内含子包括与SEQ ID NO：5的序列或其片段具有50％或更多序列同一性的核苷酸序列，其减少或改变烟碱脱甲基酶的酶活性(例如，沉默基因表达)或可以充当分子标志物以鉴定烟碱脱甲基酶核酸序列。使基因表达沉默，可以例如，包括导致不具有烟碱脱甲基酶活性的基因产物的同源重组或突变。

具体而言，所述内含子可以包括SEQ ID NO：5的序列或可以从SEQ ID NO：5获得的片段。理想地，包含内含子的分离的核酸分子与异源核酸序列可操纵地连接并且该序列理想地被包含在表达载体中。在另一个实施方案中，所述表达载体被包含在细胞，诸如植物细胞中。具体而言，所述细胞可以是烟草细胞。包含这样的植物细胞的植物，例如烟草植物是本发明的另一个理想的实施方案，所述植物细胞包含在表达载体中与异源核酸序列可操纵地连接的SEQ IDN O：5的序列或可从SEQ ID NO：5获得的片段。另外，来自植物的种子，例如烟草种子也是理想的，其中所述种子包含内含子，所述内含子在严谨条件下杂交于SEQ ID NO：5，其与异源核酸序列可操纵地连接。此外，本发明的特征是来自包含本发明的该方面的内含子的萌发的种子的植物，来自所述植物的绿色或加工处理的叶子，和从绿色或加工处理的叶子制成的制品。

本发明的另一个方面的特征是在植物中表达内含子的方法。该方法包括(i)将表达载体引入植物细胞，所述表达载体包含与异源核酸序列可操纵地连接的SEQ ID NO：5的序列或可从SEQ ID NO：5获得的片段；和(ii)从细胞中再生植物。在理想的实施方案中，该方法还包括(iii)将载体通过性手段传递到子代，并可以包括收集子代产生的种子的另外的步骤。所述方法理想地包括，例如再生来自萌发的种子的植物，来自所述植物的绿色或加工处理的叶子，和从所述叶子制备制品的方法。

在另一个方面中，本发明的特征是减少烟草植物中烟碱脱甲基酶的表达的方法。该方法包括下列步骤(i)将载体引入烟草植物，所述载体包含与异源核酸序列可操纵地连接的SEQ ID NO：5的序列或可从SEQ IDNO：5获得的片段，和(ii)在烟草植物中表达所述载体。在该方法的理想实施方案中，使烟碱脱甲基酶的表达被沉默。在其它理想的实施方案中，所述载体表达RNA，诸如反义RNA或能够诱导RNA干扰(RNAi)的RNA分子。

在另一个方面，本发明的特征是分离的核酸分子，所述核酸分子包含非翻译区，所述非翻译区在严谨条件下杂交于SEQ ID NO：7的序列或其片段，所述SEQ ID NO：7的序列或其片段可以改变基因的表达模式，减少或改变烟碱脱甲基酶酶活性(例如，使基因表达沉默)，或可以用作标志物来鉴定烟碱脱甲基酶核酸序列。在本发明该方面的理想实施方案中，非翻译区包括(a)SEQ ID NO：1的碱基对4563-6347，或(b)至少200个连续的碱基对，其与SEQ ID NO：1的碱基对4563-6347所限定的序列的200个连续的碱基对相同，或(c)20个碱基对核苷酸部分，其在序列上与SEQ IDNO：1的碱基对4563-6347提出的序列的20个连续的碱基对部分相同。

本发明的另一个理想的方面的特征是分离的核酸非翻译区，所述核酸非翻译区包含这样的核苷酸序列，其与SEQ ID NO：7的序列具有50％或更多的序列同一性。理想地，所述非翻译区包含SEQ ID NO：7的序列或所述非翻译区包括可从SEQ ID NO：7获得的片段，其可以改变基因的表达模式，减少或改变烟碱脱甲基酶的酶活性(例如，使基因表达沉默)，或可以用作标志物来鉴定烟碱脱甲基酶核酸序列。所述非翻译区理想地与异源核酸序列可操纵地连接并且可以包含在表达载体中。此外，该表达载体理想地包含在细胞，诸如植物细胞，例如烟草细胞中。本发明的另一个理想的实施方案的特征是包括植物细胞的植物，诸如烟草植物，所述植物细胞包含包括分离的核酸序列的载体，所述分离的核酸序列与SEQ ID NO：7的序列具有50％或更多的序列同一性并且与异源核酸序列可操纵地连接。

本发明的特征还在于来自植物的种子，例如烟草种子，其中所述种子包括非翻译区，所述非翻译区在严谨条件下杂交于SEQ ID NO：7，其与异源核酸序列可操纵地连接。此外，本发明的特征是来自包含本发明的该方面的非翻译区的萌发的种子的植物，来自所述植物的绿色或加工处理的叶子，和由绿色或加工处理的叶子制成的制品。

在另一个方面，本发明的特征是在植物中表达非翻译区的方法。该方法包括(i)将载体引入植物细胞，所述载体包含这样的分离的核酸序列，所述核酸序列与SEQ ID NO：7的序列具有50％或更多的序列同一性，并且与异源核酸序列可操纵地连接；和(ii)从细胞中再生植物。此外，该方法还可以包括(iii)将载体通过性手段传递到子代，并且理想地，包括收集由子代产生的种子的另外的步骤。该方法理想地包括再生来自萌发的种子的植物，来自所述植物的绿色或加工处理的叶子，和从绿色或加工处理的叶子制备制品的方法。

此外，本发明的特征是在烟草植物中减少烟碱脱甲基酶的表达或改变烟碱脱甲基酶的酶活性的方法。该方法包括下列步骤：(i)将载体引入烟草植物中，所述载体包含这样的分离的核酸序列，所述分离的核酸序列与SEQ ID NO：7的序列具有50％或更多的序列同一性并且与异源核酸序列可操纵地连接和(ii)在烟草植物中表达所述载体。理想地，烟碱脱甲基酶的表达被沉默。在其它理想的实施方案中，载体表达RNA，例如反义RNA或能够诱导RNA干扰(RNAi)的RNA分子。

本发明的另一个方面的特征是表达载体，所述表达载体包括包含编码烟碱脱甲基酶的核苷酸序列的核酸分子，其中所述载体能够定向由分离的核酸分子编码的烟碱脱甲基酶的表达。理想地，所述载体包括SEQ ID NO：1或SEQ ID NO：3的序列。在其它理想的实施方案中，本发明的特征是植物或植物组分，例如烟草植物或植物组分(例如，烟草叶子或茎)，其包括核酸分子，所述核酸分子包含编码使烟碱脱甲基的多肽的核苷酸序列。

本发明的另一个方面的特征是包含分离的核酸分子的细胞，所述分离的核酸分子包括编码烟碱脱甲基酶的核苷酸序列。理想地，该细胞是植物细胞或细菌细胞，诸如土壤杆菌属(Agrobacterium)。

本发明的另一个方面的特征是植物或植物组分(例如烟草叶子或茎)，其包含分离的核酸分子，所述核酸分子编码烟碱脱甲基酶，其中所述核酸分子在植物或植物组分中进行表达。理想地，所述植物或植物组分是被子植物、双子叶植物、茄科植物或烟草属物种。该方面的其它理想的实施方案是来自所述植物或植物组分的种子或细胞，以及来自所述植物的绿色或加工处理的叶子和由其制备的制品。

在另外的方面中，本发明的特征是烟草植物，其具有编码多肽的核酸序列的减少的表达，所述多肽是例如包括SEQ ID NO：2的序列并且使烟碱脱甲基的多肽，其中所述减少的表达(或酶活性的减少)减少植物中去甲烟碱的水平。在理想的实施方案中，烟草植物是转基因植物，诸如包括转基因的植物，当所述转基因在转基因植物中进行表达时，使内源烟草烟碱脱甲基酶的基因表达沉默。

具体而言，所述转基因植物理想地包括下列各项中的一个或多个：表达烟草烟碱脱甲基酶的反义分子或能够诱导RNA干扰(RNAi)的RNA分子的转基因；当在转基因植物中表达时，共抑制烟草烟碱脱甲基酶的表达的转基因；编码显性负调控(dominant negative)失活基因产物，例如SEQ IDNO：2的氨基酸序列的突变形式的转基因；在编码SEQ ID NO：2的氨基酸序列的基因中的点突变；在编码烟草烟碱脱甲基酶的基因中的缺失；和在编码烟草烟碱脱甲基酶的基因中的插入。

在其它理想的实施方案中，编码多肽的核酸序列的减少的表达在转录水平、在翻译水平或在翻译后水平发生。

本发明的另一个方面的特征是烟草植物，所述烟草植物包含被稳定整合到其基因组中的重组表达盒，其中所述表达盒能够实现烟碱脱甲基酶活性中的减少。该烟草植物的种子是理想的实施方案中的特征。其它的理想的实施方案包括来自该植物的绿色或加工处理的叶子和由其制备的制品。

本发明的另一个方面的特征是在植物中表达烟草烟碱脱甲基酶的方法。该方法包括(i)将表达载体引入植物细胞中，所述表达载体包括包含编码烟碱脱甲基酶的核苷酸序列的核酸分子；和(ii)从所述细胞中再生植物。在理想的实施方案中，该方法的特征是将载体通过性手段传递到子代，并且理想地还包括收集由子代产生的种子的另外的步骤。另外的理想的实施方案包括来自萌发的种子的植物，来自所述植物的绿色或加工处理的叶子，或由所述绿色或加工处理的叶子制备的制品。

本发明的另一个方面的特征是基本纯的烟草烟碱脱甲基酶。理想地，该烟草烟碱脱甲基酶包括与SEQ ID NO：2的氨基酸序列具有至少70％同一性的氨基酸序列或包括SEQ ID NO：2的氨基酸序列。在理想的实施方案中，所述烟草烟碱脱甲基酶，在植物细胞中表达后，将烟碱转化为去甲烟碱。在其它理想的实施方案中，所述烟草烟碱脱甲基酶，在植物细胞中表达后，被主要定位在叶子中，或所述烟草烟碱脱甲基酶由乙烯诱导或在植物衰老的过程中进行表达。

在另一个方面，本发明的特征是基本纯的抗体，其特异性地识别并且结合烟草烟碱脱甲基酶。理想地，所述抗体识别并且结合重组烟草烟碱脱甲基酶，例如包含SEQ ID NO：2的序列或其片段的重组烟草烟碱脱甲基酶。

本发明的另一个方面的特征是产生烟草烟碱脱甲基酶的方法。该方法包括下列步骤：(a)提供被用分离的核酸分子转化的细胞，所述分离的核酸分子包含编码使烟碱脱甲基的多肽的核苷酸序列；(b)在表达所述分离的核酸分子的条件下培养所述转化的细胞；和(c)回收所述烟草烟碱脱甲基酶。本发明的特征还在于按照该方法产生的重组烟草烟碱脱甲基酶。

在另一个方面，本发明的特征是分离烟草烟碱脱甲基酶或其片段的方法。该方法包括下列步骤：(a)使SEQ ID NOS：1，3，5，6，或7的核酸分子或其部分与来自植物细胞的核酸制品在这样的杂交条件下进行接触，所述杂交条件提供核酸序列的检测，所述核酸序列与SEQ ID NOS：1，3，5，6，或7的核酸序列具有至少70％或更大的序列同一性；和(b)分离所述杂交的核酸序列。

在另一个方面，本发明的特征是分离烟草烟碱脱甲基酶或其片段的另一个方法。该方法包括下列步骤：(a)提供植物细胞DNA的样品；(b)提供寡核苷酸对，其与具有SEQ ID NOS：1，3，5，6，或7的序列的核酸分子的区域具有序列同一性；(c)使所述寡核苷酸对与植物细胞DNA在这样的条件下进行接触，所述条件适合于聚合酶链反应介导的DNA扩增；和(d)分离所述扩增的烟草烟碱脱甲基酶或其片段。在该方面的理想的实施方案中，使制备自植物细胞的cDNA的样品进行扩增步骤。在另一个理想的实施方案中，所述烟草烟碱脱甲基酶编码多肽，所述多肽与SEQ ID NO：2的氨基酸序列具有至少70％的同一性。

本发明的另一个方面的特征是在植物或植物组分中减少烟草烟碱脱甲基酶的表达的方法。该方法包括下列步骤：(a)将编码烟草烟碱脱甲基酶的转基因引入植物细胞中以产生转化的植物细胞，所述转基因与在植物细胞中有功能的启动子可操纵地连接；和(b)从转化的植物细胞中再生植物或植物组分，其中所述烟草烟碱脱甲基酶在植物或植物组分的细胞中进行表达，由此在植物或植物组分中减少烟草烟碱脱甲基酶的表达。在本发明的该方面的具体实施方案中，将编码烟草烟碱脱甲基酶的转基因例如，以组织特异性，细胞特异性或器官特异性方式，组成性地表达或诱导性地进行表达。在本发明的该方面的另一个实施方案中，转基因的表达共抑制内源烟草烟碱脱甲基酶的表达。

本发明的另一个方面的特征是在植物或植物组分中减少烟草烟碱脱甲基酶的表达的另一种方法。该方法包括下列步骤：(a)将编码烟草烟碱脱甲基酶的反义编码序列或能够诱导RNA干扰(RNAi)的RNA分子的转基因引入植物细胞中以产生转化的植物细胞，所述转基因与在植物细胞中有功能的启动子可操纵地连接；和(b)从转化的植物细胞中再生植物或植物组分，其中烟草烟碱脱甲基酶的编码序列的反义编码序列或能够诱导RNA干扰(RNAi)的RNA分子在植物或植物组分的细胞中进行表达，由此在植物或植物组分中减少烟草烟碱脱甲基酶的表达。理想地，编码烟草烟碱脱甲基酶的反义序列或能够诱导RNA干扰(RNAi)的RNA分子的转基因，例如以组织特异性、细胞特异性或器官特异性方式组成性地表达或诱导性地进行表达。

本发明的另一个方面的特征是在植物或植物组分中减少烟草烟碱脱甲基酶的表达的另一种方法。该方法包括下列步骤：(a)将转基因引入植物细胞中以产生转化的植物细胞，所述转基因编码烟草烟碱脱甲基酶的显性负调控的基因产物，其与在植物细胞中有功能的启动子可操纵地连接；和(b)从转化的植物细胞再生植物或植物组分，其中烟草烟碱脱甲基酶的显性负调控基因产物在植物或植物组分的细胞中进行表达，由此在植物或植物组分中减少烟草烟碱脱甲基酶的表达。在本发明的该方面的具体实施方案中，编码显性负调控基因产物的转基因以例如组织-特异性、细胞特异性或器官特异性方式进行组成性表达或诱导性表达。

本发明的另一个方面的特征是在植物细胞中减少烟草烟碱脱甲基酶的表达或酶活性的另一种方法。该方法包括在植物细胞中减少内源烟草烟碱脱甲基酶的水平，或其酶活性。理想地，所述植物细胞来自双子叶植物、茄科植物，或烟草植物种类。在该方面的理想实施方案中，减少内源烟草烟碱脱甲基酶水平包括在植物细胞中表达编码烟草烟碱脱甲基酶的反义核酸分子或能诱导RNA干扰(RNAi)的RNA分子的转基因，或包括在植物细胞中表达编码烟草烟碱脱甲基酶的双链RNA分子的转基因。理想地，所述双链RNA是对应于SEQ ID NO：1，SEQ ID NO：3，SEQ ID NO：5，SEQID NO：6，或SEQ IDNO：7的序列的RNA序列，或其片段。在另一个实施方案中，减少内源烟草烟碱脱甲基酶的水平包括在植物细胞中共抑制内源烟草烟碱脱甲基酶或包括在植物细胞中表达显性负调控基因产物。具体而言，所述显性负调控基因产物可以包括编码SEQ ID NO：2的氨基酸序列的突变形式的基因。

在本发明的该方面的其它理想实施方案中，内源烟草烟碱脱甲基酶包括在编码SEQ ID NO：2的氨基酸序列的基因中的点突变。在其它理想的实施方案中，减少内源烟草烟碱脱甲基酶的表达的水平包括在编码烟草烟碱脱甲基酶的基因中的缺失或包括在编码烟草烟碱脱甲基酶的基因中的插入。减少的表达可以在转录水平，在翻译水平，或在翻译后水平发生。

在本发明的另一个方面的特征是鉴定在细胞中改变烟草烟碱脱甲基酶的表达的化合物的方法。该方法包括下列步骤：(a)提供包含编码烟草烟碱脱甲基酶的基因的细胞；(b)将候选化合物应用到细胞中；和(c)测量编码烟草烟碱脱甲基酶的基因的表达，其中相对于未处理的对照样品在表达中的增加或减少是化合物改变烟草烟碱脱甲基酶的表达的指示。

在该方法的理想实施方案中，部分(a)的基因编码这样的烟草烟碱脱甲基酶，其与SEQ ID NO：2的氨基酸序列具有至少70％的同一性。理想地，所述化合物减少或增加编码所述烟草烟碱脱甲基酶的基因的表达。

在另一个方面，本发明的特征是鉴定在细胞中改变烟草烟碱脱甲基酶的活性的化合物的另一种方法。该方法包括下列步骤：(a)提供表达编码烟草烟碱脱甲基酶的基因的细胞；(b)将候选化合物应用到细胞中；和(c)测量所述烟草烟碱脱甲基酶的活性，其中相对于未处理的对照样品的活性的增加或减少是化合物改变所述烟草烟碱脱甲基酶的活性的指示。在本发明的该方面的理想实施方案中，步骤(a)的基因编码这样的烟草烟碱脱甲基酶，其与SEQ ID NO：2的氨基酸序列具有至少70％的同一性。理想地，所述化合物减少或增加烟草烟碱脱甲基酶的活性。

本发明的另一个方面的特征是加工处理的烟草植物或植物组分，其包含(i)减少的水平的烟碱脱甲基酶或(ii)具有改变的酶活性的烟碱脱甲基酶和减少量的亚硝胺。理想地，所述植物组分是烟草叶子或烟草茎。在理想的实施方案中，亚硝胺是去甲烟碱，并且所述去甲烟碱的含量理想地是少于5mg/g，4.5mg/g，4.0mg/g，3.5mg/g，3.0mg/g，更理想地少于2.5mg/g，2.0mg/g，1.5mg/g，1.0mg/g，更理想地少于750μg/g，500μg/g，250μg/g，100μg/g，甚至更理想地少于75μg/g，50μg/g，25μg/g，10μg/g，7.0μg/g，5.0μg/g，4.0μg/g，和甚至更理想地少于2.0μg/g，1.0μg/g，0.5μg/g，0.4μg/g，0.2μg/g，0.1μg/g，0.05μg/g，或0.01μg/g，或其中次要生物碱相对于其中总的生物碱含量的百分比少于90％，70％，50％，30％，10％，理想地少于5％，4％，3％，2％，1.5％，1％，并且更理想地少于0.75％，0.5％，0.25％，或0.1％。在另一个理想的实施方案中，亚硝胺是N’-亚硝基去甲烟碱(NNN)，并且N’-NNN的含量理想地是少于5mg/g，4.5mg/g，4.0mg/g，3.5mg/g，3.0mg/g，更理想地少于2.5mg/g，2.0mg/g，1.5mg/g，1.0mg/g，更理想地少于750μg/g，500μg/g，250μg/g，100μg/g，甚至更理想地少于75μg/g，50μg/g，25μg/g，10μg/g，7.0μg/g，5.0μg/g，4.0μg/g，并且甚至更理想地少于2.0μg/g，1.0μg/g，0.5μg/g，0.4μg/g，0.2μg/g，0.1μg/g，0.05μg/g，或0.01μg/g，或其中次要生物碱相对于其包含的总生物碱含量的百分比是少于90％，70％，50％，30％，10％，理想地少于5％，4％，3％，2％，1.5％，1％，并且更理想地少于0.75％，0.5％，0.25％，或0.1％。在本发明的该方面的另一个理想的实施方案中，所述加工处理的烟草植物或植物组分是深色烟草(dark tobacco)、白莱烟(Burley tobacco)、烟熏烟(flue-cured tobacco)、深色晾烟(air-cured tobacco)或东方型烟草(oriental tobacco)。

此外，本发明的加工处理的烟草植物或植物组分理想地包括重组烟碱脱甲基酶基因，例如包含SEQ ID NO：1或SEQ ID NO：3的序列，或其片段的基因。理想地，在加工处理的烟草植物或植物成分中，内源烟碱脱甲基酶基因的表达被沉默。

本发明的另一个方面的特征是包含加工处理的烟草植物或植物组分的烟草产品，其包括(i)烟碱脱甲基酶的减少的表达或(ii)具有改变活性的烟碱脱甲基酶，和减少量的亚硝胺。理想地，所述烟草产品是无烟烟草、湿或干鼻烟、嚼烟、卷烟、雪茄烟、小雪茄烟、pipe tobacco或bidis。具体而言，本发明的该方面的烟草产品可以包含深色烟草、研磨过的烟草(milled tobacco)，或包括加香成分。

本发明的特征还在于制备烟草产品，例如无烟烟草产品的方法，所述产品包含(i)烟碱脱甲基酶的减少的表达或(ii)具有改变(例如减少的)酶活性的烟碱脱甲基酶，和减少量的亚硝胺。该方法包括提供加工处理的烟草植物或植物组分，和从所述加工处理的烟草植物或植物成分中制备烟草产品，所述加工处理的烟草植物或植物组分包含(i)减少水平的烟碱脱甲基酶或(ii)具有改变的酶活性的烟碱脱甲基酶和减少量的亚硝胺。

定义

“酶活性”指包括，但不限于脱甲基作用，羟基化作用，环氧化作用，N-氧化作用，硫代氧化作用，N-、S-、和O-脱烷基化，脱硫作用，脱氨作用和偶氮、硝基和N-氧化物和其它这样的酶促反应性化学基团的还原作用。改变的酶活性指相对于对照酶(例如，野生型烟草植物烟碱脱甲基酶)的活性减少酶活性(例如，烟草烟碱脱甲基酶的减少酶活性)达至少10-20％，优选地至少25-50％，和更优选地至少55-95％或更多。烟草烟碱脱甲基酶的活性可以使用本领域标准方法，诸如本文所述的通过酵母表达的微粒体测量放射性烟碱的脱甲基作用进行测定。

术语“核酸”指单链或双链形式存在的，或有义或反义的脱氧核糖核苷酸或核糖核苷酸聚合物，并且除非另外限定，涵盖天然核苷酸的已知类似物，其以类似于天然存在的核苷酸的方式与核酸杂交。除非另外指出，特定的核酸序列包括其互补序列。术语“可操纵地连接”，“以可操纵的组合”和“以可操纵的顺序”指在核酸表达控制序列(诸如启动子、信号序列或转录因子结合位点的阵列)和第二核酸序列之间的功能连接，其中所述表达控制序列影响对应于第二序列的核酸的转录和/或翻译。

当关于细胞使用时，术语“重组”指出细胞复制异源核酸，表达所述核酸或表达肽，异源肽，或由异源核酸编码的蛋白质。重组细胞可以表达在细胞的天然(native)(非重组)形式中未发现的有义或反义形式的基因或基因片段或能够诱导RNA干扰(RNAi)的RNA分子。重组细胞也可以表达在细胞的天然形式中发现的基因，但是其中所述基因被以人工方式进行修饰并再次引入细胞中。

“结构基因”是包括编码蛋白质、多肽或其部分的DNA片段的基因的部分，并且不包括，例如，驱动转录起始的5′序列或3′UTR。所述结构基因可以备选地编码不可翻译的产物。所述结构基因可以是通常在细胞中发现的基因或在细胞或其被引入的细胞定位中通常未发现的基因，在该种情况下其被称为“异源基因”。异源基因可以完全或部分来自本领域已知的任何来源，包括细菌基因组或游离基因(episome)，真核生物的核或质粒DNA，cDNA，病毒DNA或化学合成的DNA。结构基因可以包含可以影响生物学活性或其特征、表达产物的生物学活性或化学结构，表达的速率或表达控制的方式的一个或多个修饰。这些修饰包括，但不限于，一个或多个核苷酸的突变、插入、缺失和置换。

结构基因可以由不间断的编码序列构成或其可以包括一个或多个由适合的剪接点结合的内含子。所述结构基因可以是可翻译或不可翻译的，包括反义或能够诱导RNA干扰(RNAi)的RNA分子。结构基因可以是来自多个来源和来自多个基因序列(天然存在或合成的，其中合成的指化学合成的DNA)的片段的组合物。

关于核酸序列用于本文时，“外显子”指基因的核酸序列的部分，其中外显子的核酸序列编码基因产物的至少一个氨基酸。外显子典型地邻近于非编码DNA片段诸如内含子。理想地，外显子编码SEQ ID NO：2的烟草烟碱脱甲基酶氨基酸序列的部分，诸如SEQ ID NO：2序列的氨基酸1-313和/或314-517。

关于核酸序列用于本文时，“内含子”指位于编码区侧翼的基因的非编码区。内含子典型地是基因的非编码区，其被转录为RNA分子，但是接着在产生信使RNA或其它功能性结构RNA的过程中通过RNA剪接被切除。理想地，内含子包括SEQ ID NO：5的序列，或其片段。

关于核酸序列用于本文时，“3′UTR”指邻近于外显子的终止密码子的非编码核酸序列。理想地，3′UTR包括SEQ ID NO：7的序列，或其片段。

“衍生自”用于指取自、获自、接受自、发现自、复制自或遗传自某一来源(化学和/或生物的)。衍生物可以通过原始来源的化学或生物操作(包括，但不限于，置换、添加、插入、缺失、提取、分离、突变和复制)而进行制备。

与DNA序列相关的“化学合成”指将组成核苷酸的部分在体外装配。DNA的手动化学合成可以使用公知的方法来完成(Caruthers，Methodology of DNA and RNA Sequencing，(1983)，Weissman(ed.)，Praeger Publishers，纽约，第一章)；自动化学合成可以使用许多商购机械之一来进行。

进行比较的序列的优化排比可以，例如通过Smith和Waterman，Adv.Appl.Math.2：482(1981)的局部同源性算法，Needleman和Wunsch，J.Mol.Biol.48：443(1970)的同源性排比算法，通过Pearson和Lipman Proc.Natl.Acad.Sci.(U.S.A.)85：2444(1988)的进行相似性方法的搜索，通过这些算法的计算机执行(在Wisconsin遗传软件包中的GAP，BESTFIT，FASTA，和TFASTA，Genetics Computer Group，575 Science Dr.，Madison，Wis.)，或通过目测进行。

NCBI基本局部排比搜索工具(BLAST)(Altschul等，1990)获自几种来源，包括生物信息国家中心(National Center for Biological Information)(NCBI，Bethesda，Md.)和在互联网上，与序列分析程序blastp，blastn，blastx，tblastn，和tblastx组合使用。其可以在http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/上进行评估。关于怎样使用该程序确定序列同一性的描述在http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/blast help.html可获得。

用于氨基酸序列并且用于本文时，术语“基本的氨基酸同一性”或“基本的氨基酸序列同一性”指多肽的特征，其中所述肽包括与SEQ ID NOS：2和/或4的蛋白质序列比较，具有至少70％序列同一性，优选地80％氨基酸序列同一性，更优选地90％氨基酸序列同一性，和最优选地至少99到100％的序列同一性。理想地，对于烟碱脱甲基酶而言，序列比较理想地用于细胞色素p450基序(GXRXCX(G/A)；SEQ ID NO：29)到翻译肽的终止密码子的区域的比较。

用于核酸序列和用于本文时，术语“基本的核酸同一性”或“基本的核酸序列同一性”指多核苷酸序列的特征，其中所述多核苷酸包含这样的序列，其与SEQ ID NOS：1，3，5，6，和/或7比较，具有至少50％，优选地60％，65％，70％，或75％的序列同一性，更优选地81％或91％的核酸序列同一性，和最优选地至少95％，99％或甚至100％的序列同一性。理想地，对于烟碱脱甲基酶核酸序列而言，比较理想地用于编码从细胞色素p450基序(GXRXCX(G/A)；SEQ ID NO：29)到翻译肽的终止密码子的区域的比较。

核苷酸序列是基本上相同的另一个指示是两个分子是否在严谨条件下彼此杂交。严谨条件是序列依赖型的并且将在不同的情况下是不同的。一般而言，在限定的离子强度和pH上，对于具体序列选择的严谨条件是低于热熔点(Tm)约5℃到约20℃，通常是约10℃到约15℃。Tm是这样的温度(在限定的离子强度和pH)，其中靶序列的50％与匹配的探针杂交。典型地，严谨条件将是其中盐浓度在pH 7是约0.02摩尔并且温度是至少约60℃的那些。例如，在标准的DNA杂交方法中，严谨条件将包括于42℃在6xSSC中的开始的洗涤，随后在至少约55℃、典型地约60℃，通常约65℃的温度上在0.2xSSC中进行的一次或多次另外的洗涤。

出于本发明的目的，当所述核苷酸序列编码基本上相同的多肽和/或蛋白质时，核苷酸序列也是基本上相同的。因此，当一个核酸序列编码基本上与第二个核酸序列相同的多肽时，所述两个核酸序列是基本上相同的，即使它们由于遗传密码所容许的简并性在严谨条件下不杂交(见，Darnell等.(1990)Molecular Cell Biology，Second Edition Scientific American BooksW.H.Freeman and Company New York for an explanation of codondegeneracy and the genetic code)。蛋白质纯度或均一性可以通过许多本领域众所周知的方式来指示，所述方式诸如蛋白质样品的聚丙烯酰胺凝胶电泳，随后通过染色进行观察。对于某些目的而言，可能需要高分辨率，并且可以使用HPLC或类似的用于纯化的方式。

所谓“特异性结合”或“特异性识别”烟草烟碱脱甲基酶的抗体意为相对于等量的任何其它蛋白质，增加亲和性的烟草烟碱脱甲基酶的抗体。例如，特异性结合包含SEQ ID NO：2的氨基酸序列的烟草烟碱脱甲基酶的抗体理想地对于其抗原具有这样的亲和性，所述亲和性与等量的任何其它抗原，包括相关抗原相比，大于至少2倍、5倍、10倍、30倍或100倍。抗体与抗原，例如烟草烟碱脱甲基酶的结合可以通过许多本领域标准的方法例如，蛋白质印迹分析、ELISA或共免疫沉淀进行确定。

用于本文时，术语“载体”指将DNA片段传递给细胞的核酸分子使用。载体可以作用于复制DNA并且可以独立地在宿主细胞中增殖。术语“媒介物”有时与“载体”交互使用。用于本文时，术语“表达载体”指这样的重组DNA分子，其包含需要的编码序列和在具体宿主生物中表达可操纵连接的编码序列所必需的适合的核酸序列。在原核生物中用于表达必需的核酸序列通常包括启动子、操纵子(任选)和核糖体结合位点，经常还伴随其它序列。理想地，所述启动子包括驱动转录的SEQ ID NO：6的序列，或其片段。此外，理想的是与SEQ ID NO：6的序列具有至少50％，60％，75％，80％，90％，95％，或甚至99％序列同一性并且驱动转录的启动子序列。已知真核生物细胞使用启动子、增强子和终止子以及多腺苷酸化信号，诸如SEQ ID NO：7的3′UTR序列。在某些情形中，已经观察到植物表达载体需要植物来源的内含子，诸如具有SEQ IDNO：5的序列的内含子的存在以具有稳定的表达。同样，SEQ ID NO：5的序列，或具有适合的RNA剪接点的任何其它内含子可以如本文进一步描述进行使用。

出于再生具有根的全遗传改造的植物的目的，可以将核酸插入植物细胞中，例如通过任何技术诸如体内接种或通过任何已知的体外组织培养技术以产生可以再生为全植物的转化的植物细胞。因此，例如，插入植物细胞可以通过由致病性或非致病性的A.tumefaciens的体外接种来进行。还可以使用其它这样的组织培养技术。

“植物组织”，“植物组分”或“植物细胞”包括植物的分化和未分化的组织，包括，但不限于，培养的根、茎、叶、花粉、种子、肿瘤组织和各种形式的细胞，诸如单细胞、原生质体、胚和胼胝体组织。所述植物组织可以是在植物中或以器官、组织或细胞培养物存在。

用于本文时，“植物细胞”包括在植物中的植物细胞和培养的植物细胞和原生质体。“cDNA”或“互补的DNA”通常指具有这样的核苷酸序列的单链DNA分子，所述核苷酸序列互补于包含内含子的未加工的RNA分子，或缺乏内含子的加工的mRNA。通过在RNA模板上的酶逆转录酶的作用来形成cDNA。

用于本文时，“烟草”包括烟熏烟、弗吉尼亚烟(Virginia)、白莱烟、深色烟、东方型烟和在烟草属中的其它类型的植物。烟草属的种子容易以烟草的形式商购获得。

“制品”或“烟草产品”包括产品诸如湿和干鼻烟、嚼烟、卷烟、雪茄烟、小雪茄烟、pipe tobacco、bidis和类似的烟草来源的产品。

至于“基因沉默”指相对于对照植物(例如，野生型烟草植物)的水平，在基因表达(例如，编码烟草烟碱脱甲基酶的基因的表达)水平中的减少达至少30-50％，优选地至少50-80％，和更优选地至少80-95％或更大。这种表达水平的减少可以通过使用本领域已知的标准方法或通过使用标准突变发生技术，诸如本文描述的那些进行突变基因的产生来完成，所述标准方法包括，但不限于，RNA干扰、三链干扰、核酶、同源重组、病毒诱导的基因沉默、反义和共抑制技术、显性失活基因产物的表达。按照任何标准技术监测烟草烟碱脱甲基酶多肽或转录物，或两者的水平，所述标准技术包括，但不限于，RNA印迹、核糖核酸酶保护或免疫印迹。

用于本文时，“烟草烟碱脱甲基酶”或“烟碱脱甲基酶”指，基本上与SEQ ID NO：2的序列相同的多肽。理想地，烟草烟碱脱甲基酶能够将烟碱(C₁₀H₁₄N₂，还称为3-(1-甲基-2-吡咯烷基)吡啶)转化为去甲烟碱(C₉H₁₂N₂)。如本文所述，可以使用本领域标准的方法来评估烟草烟碱脱甲基酶的活性，所述本领域标准方法诸如通过测量酵母表达的微粒体进行的对放射性烟碱的脱甲基作用来进行。

至于烟草烟碱脱甲基酶氨基酸序列的“片段”或“部分”指SEQ ID NO：2的氨基酸序列的至少例如20，15，30，50，75，100，250，300，400，或500个连续氨基酸。示范性的理想的片段是SEQ ID NO：2的序列的氨基酸1-313和SEQ ID NO：2的序列的氨基酸314-517。此外，关于烟草烟碱脱甲基酶核酸序列的片段或部分，理想的片段包括SEQ ID NO：1的核酸序列的至少100，250，500，750，1000，或1500个连续的核酸。示范性的理想的片段是SEQ ID NO：1的序列的核酸1-2009，2010-2949，2950-3946，3947-4562，4563-6347，和4731-6347。其它理想的片段包括SEQ ID NO：5，的核酸1-100，101-250，251-500，501-750，和751-998，SEQ ID NO：6的核酸1-398，1-1400，1401-2009，1840-2009，1940-2009，399-1240，和1241-2009，和SEQ ID NO：7的核酸1-100，101-250，251-500，501-750，751-1000，1001-1250，1251-1500，和1501-1786。

至于“基本纯的多肽”指已经从天然伴随其的大多数成分中分离的烟草烟碱脱甲基酶；然而，也将这样的其它蛋白质认为是基本纯的多肽，所述其它蛋白质见于与制备物相关的微粒体部分中，具有至少8.3pKat/mg蛋白质，9pKat/mg蛋白质，9.5pKat/mg蛋白质，10pKat/mg蛋白质，10.5pKat/mg，或10.8pKat/mg蛋白质的烟碱脱甲基酶活性。典型地，当去除了至少60重量％的与其天然相关的蛋白质和天然存在的有机分子时，所述多肽是基本纯的。优选地，所述制备物是至少75重量％，更优选地至少90重量％和最优选地至少99重量％的烟草烟碱脱甲基酶。可以通过，例如从天然来源(例如，烟草植物细胞)中提取；通过编码烟草烟碱脱甲基酶的重组核酸的表达；或通过蛋白质的化学合成来获得基本纯的烟草烟碱脱甲基酶。可以通过任何适合的方法，例如柱色谱法、聚丙烯酰胺凝胶电泳，或通过HPLC分析来测量纯度。

至于“分离的核酸分子”指去除了天然位于生物的基因组的核酸分子序列侧翼的核酸序列的核酸序列。

至于“转化的细胞”指其中(或其祖先中)已经通过重组DNA技术引入DNA分子，例如编码烟草烟碱脱甲基酶的DNA分子的细胞。

如本文提供的，术语“细胞色素p450”和“p450”交替使用。

附图简述

图1是烟草烟碱脱甲基酶基因的基因组结构的示意图。

图2-1到2-3是基因组烟草烟碱脱甲基酶核酸序列(SEQ ID NO：1)和其翻译产物(SEQ ID NO：2)。

图3是烟草烟碱脱甲基酶编码区的核酸序列(SEQ ID NO：3)(也称为D121-AA8)和其翻译产物(SEQ ID NO：4)。

图4是在烟草烟碱脱甲基酶基因组序列中存在的内含子的核酸序列(SEQ ID NO：5)。

图5是烟草烟碱脱甲基酶启动子区的核酸序列(SEQ ID NO：6)。

图6是烟草烟碱脱甲基酶基因的3′UTR的核酸序列(SEQ ID NO：7)。

详细描述

编码烟草烟碱脱甲基酶的基因组克隆的鉴定

按照本发明，从转化体(converter)和非转化体烟草属品系的烟草属组织中提取RNA。接着，将提取的RNA用于产生cDNA。接着，使用两种策略来产生本发明的核酸序列。

在第一个策略中，从植物组织中提取富聚腺苷酸的RNA，并且通过反转录PCR来制备cDNA。接着，使用简并引物加寡d(T)反向引物，将单链cDNA用于产生p450特异性PCR群。引物设计基于其它植物细胞色素p450基因序列的高度保守基序进行。特异性简并引物的实例在US2004/0103449A1和US 2004/0111759A1专利申请出版物中的图1中提出，将它们并入本文作为参考。将来自包含适合大小的插入片段的质粒的片段的序列进行进一步分析。根据所用的引物，这些大小的插入片段典型地在从约300到约800核苷酸。

在第二个策略中，开始构建cDNA文库。使用简并引物加在质粒上的T7引物作为反向引物将质粒中的cDNA用于产生p450特异性PCR群。如在第一个策略中，对来自包含适合大小的插入片段的质粒的片段的序列进行进一步分析。

可以将已知产生高水平的去甲烟碱的烟草属植物品系(转化体)和具有低水平去甲烟碱的植物品系用作原材料。接着可以从植物中去除叶子，并且用乙烯进行处理以激活本文定义的p450酶活性。使用本领域已知的技术来提取总的RNA。接着，可以使用以寡d(T)引物进行的PCR(RT-PCR)来产生cDNA片段。接着，可以如在本文实施例中所更充分的描述来构建cDNA文库。

将p450型酶保守区用作简并引物的模板。使用简并引物，通过PCR来扩增p450特异性条带。通过DNA测序来鉴定指示p450样酶的带。使用BLAST搜索，排比或其它工具来对PCR片段进行特征以鉴定适合的候选物。

将来自鉴定的片段的序列信息用于开发PCR引物。将这些引物与cDNA文库中的质粒引物组合以用于克隆全长p450基因。进行大规模Southern反向分析来检查获得的所有的片段克隆和在某些情形中的全长克隆的差异表达。在本发明的该方面中，可以使用来自不同组织的标记的总cDNAs作为探针与克隆的DNA片段进行杂交来进行这些大规模的反向Southern测定从而筛选所有的克隆的插入片段。还将非放射性和放射性(P³²)RNA印迹法用于表征克隆的p450片段和全长克隆。

通过衍生它们的氨基酸序列和选择具备抗原性且相对于其它克隆是独特的肽区域来制备肽特异性抗体。制备兔抗体以合成与载体蛋白缀合的肽。使用这些抗体，在植物组织上进行蛋白质印迹分析或其它免疫方法。此外，通过衍生它们的氨基酸序列和选择具有潜在抗原性并且相对于其它克隆是独特的肽区域来制备针对数种全长克隆的肽特异性抗体。制备兔抗体以合成与载体蛋白缀合的肽。使用这些抗体，进行蛋白质印迹分析。

烟草烟碱脱甲基酶的下调

按照标准基因沉默方法来产生具有减少的烟草烟碱脱甲基酶的表达的植物。(至于综述，见Arndt和Rank，Genome 40：785-797，1997；Turner和Schuch，Journal of Chemical Technology and Biotechnology 75：869-882，2000；和Klink和Wolniak，Journal of Plant Growth Regulation 19(4)：371-384，2000.)具体而言，可以将烟草烟碱脱甲基酶基因启动子(例如，SEQ IDNO：6)，结构基因(SEQ ID NO：3)，内含子(SEQ IDNO：5)，或3′UTR(SEQ IDNO：7)或整个基因组克隆(SEQ ID NO：1)用于改变烟草表型或烟草代谢物，例如在任何烟草属物种中的去甲烟碱。烟草烟碱脱甲基酶基因的减少的表达可以使用，例如RNA干扰(RNAi)(Smith et al.，Nature 407：319-320，2000；Fire et al.，Nature 391：306-311，1998；Waterhouse et al.，PNAS95：13959-13964，1998；Stalberg et al.，Plant Molecular Biology 23：671-683，1993；Brignetti et al.，EMBO J. 17：6739-6746，1998；Allen et al.，NatureBiotechnology 22：1559-1566，2004)；病毒诱导的基因沉默(″VIGS″)(Baulcombe，Current Opinions in Plant Biology，2：109-113，1999；Cogoni和Macino，Genes Dev 10：638-643，2000；Ngelbrecht et al.，PNAS91：10502-10506，1994)；通过在有义方向传递植物内源基因来使目标基因沉默(Jorgensen et al.，Plant Mol Biol 31：957-973，1996)；反义基因的表达；同源重组(Ohl et al.，Homologous Recombination and Gene Silencing inPlants(Kluwer，Dordrecht，The Netherlands，1994)；Cre/lox系统(Qin et al.，PNAS 91：1706-1710，1994；Koshinsky et al.，The Plant Journal 23：715-722，2000；Chou，et al.，Plant and Animal Genome VII Conference Abstracts.SanDiego，CA，17-211999年1月)；基因捕获和T-DNA标记(Burns et al.，GenesDev.8：1087-1105，1994；Spradling，et al.，PNAS 92：10824-10830，1995；Skarnes et al.，Bio/Technology 8，827-831，1990；Sundaresan，et al.，Genes Dev.9：1797-1810，1995)；和任何其它可能的基因沉默系统进行，所述基因沉默系统可在沉默区获得，其导致烟草烟碱脱甲基酶的表达的下调或在其酶活性中的减少。在下面更详细地描述示例性方法。

RNA干扰

RNA干扰(″RNAi″)是通常在许多生物包括植物中用于诱导有效的和特异性的翻译后基因沉默的可应用的方法(见，例如，Bosher et al.，Nat.CellBiol.2：E31-36，2000；和Tavernarakis et al.，Nat.Genetics 24：180-183，2000)。RNAi包括将具有部分或全长双链特征的RNA引入细胞或引入细胞外环境中。抑制是特异性的，因为选择来自目标基因(例如烟草烟碱脱甲基酶)的部分的核苷酸序列来产生抑制RNA。选择的部分通常包括目标基因的外显子，但是选择的部分还可以包括非翻译区(UTRs)，以及内含子(例如SEQ ID NO：5或7的序列)。

例如，为了构建产生能够形成双链体的RNAs的转化载体，可以将一个在有义方向，另一个在反义方向的两个烟草烟碱脱甲基酶核酸序列可操纵地进行连接，并且将其置于强病毒启动子的控制下，所述强病毒启动子诸如CaMV 35S，或从木薯棕色条纹病毒(CBSV)中分离的启动子。然而，使用内源启动子，诸如具有SEQ ID NO：6的序列的烟草烟碱脱甲基酶启动子，或驱动转录的其片段也可以是理想的。包括在这种构建体中的烟草烟碱脱甲基酶核酸序列的长度理想地是至少25个核苷酸，但是可以包括这样的序列，其包括直到全长烟草烟碱脱甲基酶基因。

可以通过土壤杆菌介导的转化(Chuang et al.，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 97：4985-4990，2000)将产生能够形成双链体的RNAs的构建体引入植物诸如烟草植物的基因组，导致烟草烟碱脱甲基酶中的特异性和可遗传的遗传干扰。还可以将双链RNA直接引入细胞(即，细胞内地)或细胞外地引入，例如通过将种子、幼苗或植物浸浴在包含双链RNA的溶液中来进行。

根据递送的双链RNA物质的剂量，所述RNAi可以提供目标基因的功能的部分或完全的损失。可以在至少99％的目标细胞中获得基因表达的减少或损失。通常，被注射物质的更低的剂量和在施用dsRNA后的更长时间导致更少部分的细胞的抑制。

在RNAi中所用的RNA可以包括聚合的核糖核苷酸的一条或多条链；其可以包括对磷酸-糖主链或核苷的改变。双链结构可以通过单一自我互补的RNA链或通过两条互补的RNA链来形成，并且RNA双链体形成可以起始于细胞的内部或外部。可以以容许每个细胞递送至少一个拷贝的量来引入RNA。然而，更高的剂量(例如，每个细胞至少5，10，100，500或1000个拷贝)的双链物质可以产生更有效的抑制。抑制是序列特异性的，因为遗传抑制针对对应于RNA的双链体区的核苷酸序列。对于抑制，优选包含与目标基因的部分相同的核苷酸序列的RNA。相对于目标序列具有插入、缺失和单点突变的RNA序列对于抑制也可以是有效的。因此，可以通过本领域已知的排比算法和在核苷酸序列之间计算百分比差异来优化序列同一性。备选地，可以将RNA的双链体区在功能上定义为能够与目标基因转录物的部分杂交的核苷酸序列。

此外，用于RNAi的RNA可以在体内或体外进行合成。例如，在细胞中的内源RNA聚合酶可以介导体内转录，或可以将克隆的RNA聚合酶用于体内或体外转录。对于从体内的转基因或表达的构建体中进行转录，可以将调节区用于翻译RNA一条链(或多条链)。

三链干扰

内源烟草烟碱脱甲基酶基因表达还可以通过靶向互补于烟草烟碱脱甲基酶基因的调节区(例如，启动子或增强子区)的脱氧核糖核苷酸序列以形成三股螺旋结构来进行下调，所述三股螺旋结构阻止靶细胞中的烟草烟碱脱甲基酶基因的转录(通常见，Helene，Anticancer Drug Des.6：569-584，1991；Helene et al.，Ann.N.Y. Acad.Sci.660：27-36，1992；和Maher，Bioassays 14：807-815，1992.)。

用于转录的抑制的在三股螺旋形成中所用的核酸分子优选地是单链的并且由脱氧核糖核苷酸组成。这些寡核苷酸的碱基组成应该以Hoogsteen碱基配对法则来促进三股螺旋形成，其通常需要相当大的嘌呤或嘧啶的一段序列存在于双链体的一条链上。核苷酸序列可以是基于嘧啶的，其将导致穿过得到的三股螺旋的三条相关链的TAT和CGC三联体。富含嘧啶的分子以与该链平行的方向提供对于所述双链体的单链的富含嘌呤区的碱基互补性。此外，可以选择富含嘌呤的核酸分子，例如包含G残基的一段序列。这些分子将与富含GC对的DNA双链体形成三股螺旋，其中大部分的嘌呤残基位于目标双链体的单链上，导致穿过在三股螺旋中的三条链的CGC三联体。

或者，对于三股螺旋形成可以被靶向的可能序列可以通过产生“转向”核酸分子得以增加。转向分子以交替的5′-3′，3′-5′方式进行合成，从而使得它们与双链体的第一条链碱基配对，接着与另一条链碱基配对，消除了存在于双链体的一条链上的嘌呤或嘧啶的相当大的一段序列的必要性。

核糖核酸酶

核糖核酸酶是这样的RNA分子，其充当酶起作用并且可以被改造以裂解其它的RNA分子。可以对核糖核酸酶进行设计以特异性地与实际上任何目标RNA配对并且裂解在特定位点的磷酸二酯主链，由此在功能上使目标RNA失活。在此过程中，核糖核酸酶本身没有消耗，并且可以在催化上起作用来裂解多拷贝的mRNA目标分子。因此，还可以将核糖核酸酶用作下调烟草烟碱脱甲基酶的表达的工具。目标RNA-特异性核糖核酸酶的设计和使用描述在Haseloff et al.(Nature 334：585-591，1988)中。优选地，核糖核酸酶在核糖核酸酶的活性位点的每一侧上包括互补于目标序列(例如，烟草烟碱脱甲基酶)的至少约20个连续的核苷酸。

此外，核糖核酸酶序列还可以被包括在反义RNA中以赋予在反义RNA上的RNA-裂解活性并且因此增加反义构建体的有效性。

同源重组

基因替代技术是下调给定基因，例如烟草烟碱脱甲基酶的表达的另一种理想的方法。基因替代技术基于同源重组(见，Schnable et al.，Curr.Opinions Plant Biol.1：123-129，1998)。可以通过突变发生(例如，插入、缺失、复制或替代)来操纵目标酶诸如烟草烟碱脱甲基酶的核酸序列以减少酶的功能。接着，可以将改变的序列引入基因组中通过同源重组以替代现存的，例如野生型的基因(Puchta et al.，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 93：5055-5060，1996；和Kempin et al.，Nature 389：802-803，1997)。

共抑制

使基因表达沉默的另一种理想的方法是共抑制(还称为有义抑制)。包括引入以有义方向构造的核酸的该技术已经显示对目标基因的转录的有效的阻碍(见，例如，Napoli et al.，Plant Cell，2：279-289，1990和Jorgensen etal.，美国专利号5,034,323)。

一般而言，有义抑制包括被引入序列的转录。然而，共抑制还可以发生在被引入的序列本身包含非编码序列的时候，但是仅有内含子(例如SEQID NO：5的序列)或非翻译序列诸如SEQ ID NO：7或基本上与存在于内源基因的初级转录物中的序列相同的其它这样的序列将被抑制。被引入的序列通常基本上与被靶向抑制的内源基因相同。这样的同一性典型地大于约50％，但是优选更高的同一性(例如，80％或甚至95％)因为它们导致更有效的抑制。共抑制的效果还可以被应用于在显示同源性或基本的同源性的基因的类似家族中的其它蛋白质。可以将来自一种植物的基因的片段直接使用，例如，以抑制在不同植物种类中的同源基因的表达。

在有义抑制中，要求更少绝对同一性的被引入序列，相对于初级转录产物或充分加工的mRNA，不需要是全长的。在短于全长的序列中的更高程度的序列同一性弥补更少同一性的更长序列。此外，被引入的序列不需要具有相同的内含子或外显子模式，并且非编码片段的同一性可以是一样有效的。优选至少50个碱基对的序列，其中更优选更长长度的被引入序列(见，例如，描述在Jorgensen et al.，美国专利号5,034,323中的方法)。

反义抑制

在反义技术中，克隆来自需要的植物的基因的核酸片段，诸如在SEQID NOS：1，3，5，6，或7中发现的片段，并且将其与表达控制区可操纵地连接从而合成RNA的反义链。接着，将构建体转化到植物中并且产生RNA的反义链。在植物细胞中，已经显示反义RNA抑制基因表达。

在反义抑制中被引入的核酸片段通常基本上与被抑制的内源一个或多个基因的至少一部分相同，但是不需要是相同的。本文公开的烟草烟碱脱甲基酶的核酸序列可以被包括在设计的载体中从而使抑制作用应用于显示与目标基因同源或基本同源的基因的家族中的其它蛋白质。可以将来自一种植物的基因的片段直接使用，例如，以抑制在不同烟草属物种中的同源基因的表达。

相对于初级转录产物或充分加工的mRNA，被引入的序列也不需要是全长的。一般而言，可以将更高的同源性用于弥补更短序列的使用。而且，被引入的序列不需要具有相同的内含子或外显子模式，并且非编码片段的同源性将是一样的有效。通常，这样的反义序列在长度上将通常是至少15个碱基对，优选地是约15-200个碱基对，并且更优选地是200-2,000个碱基对或更长。反义序列可以互补于待抑制基因的全部或部分(例如，烟草烟碱脱甲基酶启动子(SEQ ID NO：6)，外显子，内含子(SEQ ID NO：5)，或UTR(SEQ ID NO：7)，并且如本领域技术那些技术人员所理解，根据需要抑制的程度和反义序列的独性状，反义序列结合的特定一个或多个位点以及反义序列的长度将会变化。表达植物负调节物反义核苷酸序列的转录构建体在转录的方向上包括，启动子，编码有义链上的反义RNA的序列，和转录终止区。可以构建反义序列并且将其如例如在van der Krol et al.(Gene 72：45-50，1988)；Rodermel et al.(Cell 55：673-681，1988)；Mol et al.(FEBS Lett.268：427-430，1990)；Weigel和Nilsson(Nature 377：495-500，1995)；Cheung et al.，(Cell 82：383-393，1995)；和Shewmaker et al.(美国专利号5,107,065)中所述进行表达。

显性负调控

可以在人工环境或在田间来测定转基因植物，从而证实所述转基因在转基因植物中赋予下调烟草烟碱脱甲基酶，所述转基因植物表达编码烟草烟碱脱甲基酶的显性负调控基因产物的转基因。按照本领域已知的方法来构建显性负调控转基因。典型地，显性负调控基因编码烟草烟碱脱甲基酶的突变的负调节物多肽，其当过量表达时，干扰野生型酶的活性。

突变体

还可以使用标准的突变发生的方法来产生具有减少的烟草烟碱脱甲基酶的表达或酶活性的植物。这些突变发生的方法包括，但不限于，用甲基硫酸乙酯处理种子(Hildering和Verkerk，In，The use of induced mutationsin plant breeding.Pergamon press，pp 317-320，1965)或UV-辐射，X-射线，和快中子辐射(见，例如，Verkerk，Neth.J.Agric.Sci.19：197-203，1971；和Poehlman，Breeding Field Crops，Van Nostrand Reinhold，New York(3.sup.rded)，1987)，使用转座子(Fedoroff et al.，1984；美国专利号4,732,856和美国专利号5,013,658)，以及T-DNA插入方法(Hoekema et al.，1983；美国专利号5,149,645)。可以存在于烟草烟碱脱甲基酶基因中的突变的类型，包括，例如点突变、缺失、插入、复制和倒位。这些突变理想地存在于烟草烟碱脱甲基酶基因的编码区中；然而，在烟草烟碱脱甲基酶基因的启动子区，和内含子，或非翻译区中的突变也可以是理想的。

例如，可以将T-DNA插入突变发生用于在烟草烟碱脱甲基酶基因中产生插入突变以下调所述基因的表达。在理论上，对于在任何给定基因中获得插入片段的95％的可能性，需要约100,000个独立的T-DNA插入片段(McKinnet，Plant J.8：613-622，1995；和Forsthoefel et al.，Aust.J.PlantPhysiol.19：353-366，1992)。可以使用聚合酶链式反应(PCR)分析来筛选植物的T-DNA标记的品系。例如，可以设计用于T-DNA的一端的引物，并且可以设计用于目标基因的另一种引物，两种引物都可以用在PCR分析中。如果没有获得PCR产物，那么在目标基因中没有插入片段。相反，如果获得PCR产物，那么在目标基因中有插入片段。

可以按照标准方法(例如，在本文中所述的那些)来评估突变的烟草烟碱脱甲基酶的表达，并且任选地可以与未突变酶的表达进行比较。当与未突变植物进行比较时，具有减少的编码烟草烟碱脱甲基酶的基因的表达的突变植物是本发明的理想实施方案。

植物启动子

按照本发明的有用植物启动子的实例是具有SEQ ID NO：6的序列的烟碱脱甲基酶启动子，或驱动转录的其片段。另一种理想的启动子是花椰菜花叶病毒启动子，例如花椰菜花叶病毒(CaMV)启动子或木薯叶脉花叶病毒(CsVMV)启动子。这些启动子在大多数植物组织中赋予高水平的表达，并且这些启动子的活性不依赖于病毒编码的蛋白质。CaMV是35S和19S启动子两者的来源。使用这些启动子的植物表达构建体的实例是本领域已知的。在转基因植物的大多数组织中，所述CaMV 35S启动子是强启动子。所述CaMV启动子在单子叶植物中也是具有高度活性的。而且，该启动子的活性可以通过CaMV 35S启动子的复制进一步增加(即，在2-10倍之间)。

其它有用的植物启动子包括，但不限于，胭脂氨酸合成酶(NOS)启动子，章鱼碱合酶启动子，玄参(figwort)花叶病毒(FMV)启动子，稻肌动蛋白启动子，和遍在蛋白启动子系统。

示例性的单子叶植物启动子包括，但不限于，鸭跖草黄斑驳病毒(commelina yellow mottle virus)启动子，甘蔗badna病毒启动子，水稻tungro杆状病毒启动子，玉米条纹病毒元件，和小麦矮缩病毒启动子。

对于某些应用而言，可能理想的是以适合的水平，或在适合的发育时间，在适合的组织中产生烟草烟碱脱甲基酶，诸如显性负调控突变的烟草烟碱脱甲基酶。对此目的，存在各类基因启动子，每种具有体现在其调节序列中的本身的独特的性状，响应于可诱导的信号诸如环境、激素和/或发育信息时显示被调节。这些包括，但不限于，负责热调节的基因表达，光调节的基因表达的基因启动子(例如，豌豆rbcS-3A；玉米rbcS启动子；发现于豌豆中的叶绿素a/b结合蛋白质基因；或Arabssu启动子)，激素调节的基因表达(例如，来自小麦Em基因的脱落酸(ABA)反应序列；ABA诱导的HVAl和HVA22，和大麦和拟南芥(Arabidopsis)的rd29A启动子；和创伤诱导的基因表达(例如，wunI的)，器官特异性基因表达(例如，块茎特异性的贮存蛋白质基因的器官特异性基因表达；来自所述的玉米的23-kDa玉米蛋白基因的器官特异性基因表达；或法国菜豆β-菜豆蛋白基因的器官特异性基因表达)，或病原体诱导的启动子(例如，PR-1，prp-1，或β-1，3-葡聚糖酶启动子，小麦的真菌诱导的wirla启动子，和线虫诱导的启动子，分别为烟草和芹菜的TobRB7-54和Hmg-1))。

植物表达载体

典型地，植物表达载体包括(1)在5′和3′调节序列(例如烟草烟碱脱甲基酶启动子(SEQ ID NO：6)和3′UTR区(SEQ ID NO：7))的转录控制下克隆的植物基因(例如，烟草烟碱脱甲基酶基因)和(2)显性可选择的标志物。如果需要，这样的植物表达载体还可以包含，启动子调节区(例如赋予可诱导的或组成性的，病原体或创伤诱导的，环境或发育调节的，或细胞或组织特异性的表达的启动子调节区)，转录开始起始位点，核糖体结合位点，RNA加工信号，转录终止位点和/或多腺苷酸化信号。

植物表达载体还可以任选地包含RNA加工信号，例如内含子，其已经显示对于有效的RNA合成和累积是重要的。RNA剪接序列的定位可以大大影响植物中转基因表达的水平。鉴于该事实，内含子可以位于转基因中的烟草烟碱脱甲基酶编码序列的上游或下游以改变基因表达的水平。

除了上述5′调节控制序列之外，表达载体还可以包含调节控制区，其通常存在于植物基因的3′区中。例如，3′终止子区(例如，SEQ ID NO：7的序列)可以被包括在表达载体中以增加mRNA的稳定性。一个这样的终止子区可以来自马铃薯的PI-II终止子区。此外，其它常用的终止子来自章鱼氨酸或胭脂氨酸合成酶信号。

植物表达载体也典型地包含显性可选择的标志物基因，所述标志物基因用于鉴定已经被转化的那些细胞。用于植物系统的有用的可选择的基因包括转座子Tn5(Aph II)的氨基糖苷磷酸转移酶基因，编码抗生素抗性基因的基因，例如编码对于潮霉素、卡那霉素、博来霉素、新霉素G418、链霉素或大观霉素的抗性的那些。光合作用所需的基因还可以用作光合作用缺陷型品系的可选择的标志物。最后，编码除草剂抗性的基因可以用作可选择的标志物；有用的除草剂抗性基因包括编码酶膦丝菌素乙酰转移酶且赋予对广谱除草剂Basta(Bayer Cropscience Deutschland GmbH，Langenfeld，德国)的抗性的bar基因。其它的可选择的标志物包括提供对于其它这样的除草剂诸如草甘膦等，和咪唑啉酮，磺酰脲，三唑并嘧啶除草剂，诸如chlorosulfron，bromoxynil，dalapon等的抗性的基因。此外，编码二氢叶酸还原酶的基因可以与分子诸如methatrexate组合使用。

通过确定植物细胞对特定可选择试剂的敏感性和确定有效杀死大多数，如果不是全部的，被转化细胞的该试剂的浓度来促进可选择标志物的有效使用。用于烟草转化的一些有用的抗生素浓度包括，例如20-100μg/ml(卡那霉素)，20-50μg/ml(潮霉素)，或5-10μg/ml(博来霉素)。用于选择除草剂抗性的转化体的有用策略由，例如Vasil描述(Cell Culture and Somatic CellGenetics of Plants，Vol I，II，III Laboratory Procedures and Their ApplicationsAcademic Press，New York，1984)。

除了可选择的标志物之外，可能理想的是使用报道基因。在某些情形中，可以使用报道基因，而不用可选择的标志物。报道基因是这样的基因，其典型地在受体生物或组织中不存在或表达。报道基因典型地编码提供一些表型变化或酶性质的蛋白质。这些基因的实例在Weising等(Ann.Rev.Genetics 22：421，1988)中进行提供，将其并入本文作为参考。优选的报道基因包括，但不限于葡糖醛酸糖苷酶(GUS)基因和GFP基因。

在构建植物表达载体后，可以使用一些标准的方法将载体引入植物宿主中，由此产生转基因植物。这些方法包括(1)土壤杆菌介导的转化(A.tumefaciens或A.rhizogenes)(见，例如，Lichtenstein和Fuller In：GeneticEngineering，vol 6，PWJ Rigby，ed，London，Academic Press，1987；和Lichtenstein，C.P.，和Draper，J，.In：DNA Cloning，Vol II，D.M.Glover，ed，Oxford，IRI Press，1985；美国专利号4,693,976，4,762,785，4,940,838，5,004,863，5,104,310，5,149,645，5,159,135，5,177,010，5,231,019，5,463,174，5,469,976，和5,464,763；和欧洲专利申请号0131624B1，0159418B1，0120516，0176112，0116718，0267159，0290799，0292435，0320500，0604622，和0627752)，(2)颗粒递送系统(见，例如美国专利号4,945,050和5,141,131)，(3)微注射方法，(4)聚乙二醇(PEG)方法，(5)脂质体介导的DNA吸收，(6)电穿孔方法(见，例如WO87/06614，WO 92/09696，和WO 93/21335；和美国专利号5,384,253和5,472,869，(7)涡旋方法，或(8)所谓的whiskers方法(见，例如，Coffee et al.，美国专利号5,302,523和5,464,765)。可以用表达载体转化的植物组织的类型包括胚胎组织，I型和II型胼胝体组织，下胚轴，分生组织等。

一旦被引入植物组织中，结构基因的表达可以通过任何本领域已知方式进行测定，并且表达可以测量为转录的mRNA，合成的蛋白质，或基因沉默的量，其通过对烟草中的次级生物碱进行化学分析的代谢物监测进行测定(如本文所述；还见美国专利号5,583,021，将其并入本文作为参考)。已知用于植物组织的体外培养的技术，并且在许多情形中，已知用于再生为完整植物的技术(见，例如美国专利号5,595,733和5,766,900)。将引入的表达复合体传递到商用栽培品种中的方法是本领域那些技术人员已知的。

一旦获得了表达需要水平的烟碱脱甲基酶(或去甲烟碱或NNN或两者)的植物细胞，可以使用本领域众所周知的方法和技术从其中再生植物组织和完整植物。接着，通过常规方式来繁殖再生的植物并且通过常规植物育种技术可以将被引入的基因递送到其它品系和栽培品种中。

转基因烟草植物可以以不同的方向结合基因组基因的任何部分的核酸，所述方向或者用于下调，例如以反义方向结合或以某种形式来诱导RNAi，或用于过量表达，例如以有义方向结合。对于在烟草属品系中增加烟碱脱甲基酶的表达，编码全长烟草烟碱脱甲基酶基因的氨基酸序列的完整或功能部分的核酸序列的过量表达是理想的。

烟草烟碱脱甲基酶的转录或翻译水平的确定

烟草烟碱脱甲基酶的表达可以例如，使用烟草烟碱脱甲基酶(或cDNA片段)作为杂交探针，通过标准RNA印迹分析来进行测量(Ausubel et al.，Current Protocols in Molecular Biology，John Wiley & Sons，New York，NY，(2001)，和Sambrook et al.，Molecular Cloning：A Laboratory Manual，ColdSpring Harbor Laboratory，N.Y.，(1989))。RNA表达水平的确定还可以通过反转录PCR(rtPCR)来协助，所述反转录PCR(rtPCR)包括定量rtPCR(见，例如Kawasaki et al.，in PCR Technology：Principles and Applications ofDNA Amplification(H.A.Erlich，Ed.)Stockton Press(1989)；Wang et al.inPCR Protocols：A Guide to Methods and Applications(M.A.Innis，et al.，Eds.)Academic Press(1990)；和Freeman et al.，Biotechniques 26：112-122和124-125，1999)。用于确定烟草烟碱脱甲基酶基因的表达的另外的众所周知的技术包括原位杂交，和荧光原位杂交(见，例如，Ausubel et al.，CurrentProtocols in Molecular Biology，John Wiley & Sons，New York，NY，(2001))。上述标准技术还可以用于比较植物之间，例如在烟草烟碱脱甲基酶基因中具有突变的植物和对照植物之间来比较表达水平。

如果需要，烟草烟碱脱甲基酶基因的表达可以在烟草烟碱脱甲基酶蛋白质制备的水平上，使用相同的通用方法和标准蛋白质分析技术包括Bradford测定、分光光度测定和免疫检测技术，诸如蛋白质印迹或用烟草烟碱脱甲基酶-特异性抗体进行的免疫沉淀来测量(Ausubel et al.，CurrentProtocols in Molecular Biology，John Wiley & Sons，New York，NY，(2001)，和Sambrook et al.，Molecular Cloning：A Laboratory Manual，Cold SpringHarbor Laboratory，N.Y.，(1989))。

烟草烟碱脱甲基酶调节剂的鉴定

烟草烟碱脱甲基酶cDNA的分离还有利于增加或减少烟草烟碱脱甲基酶的表达的分子的鉴定。按照一种方法，将候选分子以不同的浓度加入表达烟草烟碱脱甲基酶mRNA的细胞(例如，原核生物细胞诸如大肠杆菌或真核生物细胞诸如酵母、哺乳动物、昆虫或植物细胞)的培养基中。接着，使用标准方法诸如在本文中提到的那些，在存在和缺乏候选分子的情况下测量烟草烟碱脱甲基酶的表达。

候选的调节剂可以是纯化(或基本纯)的分子或可以是化合物的混合物的一种成分。在混合的化合物测定中，针对越来越小的候选化合物库的子集(例如，通过标准纯化技术，例如HPLC而产生)来测试烟草烟碱脱甲基酶的表达直到证实单一化合物或最少化合物混合物改变烟草烟碱脱甲基酶基因的表达。认为促进烟草烟碱脱甲基酶的表达的减少的分子在本发明中是特别有用的。可以认定发现在烟草烟碱脱甲基酶的表达或活性水平上有效的调节剂在植物中有效的。

对于农业应用，使用本文公开的方法鉴定的分子、化合物或试剂可以用作化学品，所述化学品被用作在植物的叶子上的喷雾剂或粉剂。所述分子、化合物或试剂还可以与另一种分子组合应用于植物，所述另一种分子对植物提供某种益处。

烟碱脱甲基酶基因启动子和非翻译区的使用

本文所述的烟碱脱甲基酶基因的启动子区是可乙烯诱导的或与植物衰老相关的。因此，该启动子可以用于驱动任何理想的基因产物的表达以改善农作物质量或增加具体的性状。因为烟草烟碱脱甲基酶启动子(例如SEQ ID NO：6)是可诱导并且在植物生活周期的特定时期表达，包含该启动子的构建体可以被引入植物以表达独特的基因，所述基因涉及香味和由次级代谢物导致的芳香产物的生物合成。这些化合物的实例是在类萜途径中的化合物，其它生物碱，植物激素，黄酮类化合物或含糖的部分。烟草烟碱脱甲基酶启动子还可以用于增加或改变结构性糖或蛋白质的表达，其影响最终使用性质。此外，烟草烟碱脱甲基酶启动子还可以与异源基因组合，所述异源基因包括涉及营养产物、药剂或工业物质的生物合成的基因。所述启动子可以用于驱动烟草内源的基因的下调，所述基因包括烟碱脱甲基酶或其它涉及生物碱生物合成和或在其它途径中的基因。

而且，烟草烟碱脱甲基酶基因的启动子区(例如，SEQ ID NO：6)或烟草烟碱脱甲基酶基因的3′UTR(例如，SEQ ID NO：7)还可以用在任何定点基因沉默方法诸如T-DNA标记，基因捕获和同源重组中以改变目标基因的表达模式，如本文所述。还可以将启动子基序，用于鉴定与烟草烟碱脱甲基酶相关或调节其表达的因子，所述启动子基序可以使用本领域标准方法，容易地在启动子序列，诸如SEQ IDNO：6的序列中进行鉴定。理想地，将烟草烟碱脱甲基酶启动子区或其它转录调节区用于改变化学性质诸如植物中的去甲烟碱含量和亚硝胺水平。

此外，可以将烟草烟碱脱甲基酶基因的任何部分用作遗传标志物以分离相关基因、启动子或调节区，或用于在其它烟草或烟碱物种中筛选脱甲基酶基因。

产物

按照本领域已知的标准方法，使用本文所述的任何烟草植物材料，制备具有减少量的亚硝胺含量的烟草产品。在一个实施方案中，使用获自遗传修饰的加工处理的烟草的植物材料来制备烟草产品，所述加工处理的烟草植物具有少于约5mg/g，4.5mg/g，4.0mg/g，3.5mg/g，3.0mg/g，2.5mg/g，2.0mg/g，1.5mg/g，1.0mg/g，750μg/g，500μg/g，250μg/g，100μg/g，75μg/g，50μg/g，25μg/g，10μg/g，7.0μg/g，5.0μg/g，4.0μg/g，2.0μg/g，1.0μg/g，0.5μg/g，0.4μg/g，0.2μg/g，0.1μg/g，0.05μg/g，或0.01μg/g的减少量的去甲烟碱或NNN，或其中相对于包含在其中的总生物碱含量，次级生物碱的百分比少于90％，70％，50％，30％，10％，5％，4％，3％，2％，1.5％，1％，0.75％，0.5％，0.25％，或0.1％。即，所述加工处理的烟草制备自遗传修饰的烟草植物。短语“减少的量”倾向于指与在天然存在的烟草植物、烟草或以相同方式处理的来自相同种类的烟草的烟草产品中发现的相比，在转基因烟草植物、烟草或烟草产品中存在的去甲烟碱或NNN或两者的量较少，所述天然存在的烟草植物、烟草或以相同方式处理的来自相同种类的烟草的烟草产品没有被制成具有减少的去甲烟碱或NNN的转基因材料。因此，在某些情形中，以相同方式加工的相同种类的天然存在的烟草被用作对照，通过其测量是否已经通过本文所述的方法获得去甲烟碱或NNN的减少。按照烟草领域众所周知的方法来测量去甲烟碱和NNN的水平。

下列实施例举例说明了实施本发明的方法并且应当被理解为对于本发明范围的例证而非限制，所述范围在后附的权利要求书中进行限定。

实施例1

植物组织的发育和乙烯处理

植物的生长

将植物种在盆中并于温室中生长4周。将4周龄的幼苗移植入单个盆中并于温室中生长2个月。在生长过程中将植物用含有150ppm NPK肥料的水一天浇水2次。将展开的绿叶从植物上分离进行下述的乙烯处理。

细胞系78379

将烟草品系78379用作植物材料来源，所述烟草品系78379是由肯塔基大学给出的白莱烟烟草品系。按照为生长烟草领域的标准培养一百株植物，移植，并用不同数字(1-100)进行标记。根据推荐地那样进行受精和田间管理。

所述100株植物中的四分之三将20和100％之间的烟碱转化为去甲烟碱。所述100株植物中的四分之一将少于5％的烟碱转化为去甲烟碱。87号植物具有最少的转化(2％)而21号植物具有100％的转化。将转化少于3％的植物归类为非转化体。制备87号植物和21号植物的自花传粉种子，以及杂交(21×87和87×21)种子来研究遗传和表型差异。来自自交21的植物为转化体，而99％的来自87的自交株为非转化体。来自87的植物的另外1％显示低转化(5-15％)。来自反交的植物全部为转化体。

细胞系4407

将烟草属品系4407用作植物材料的来源，所述烟草品系4407为白莱烟品系。选择一致和代表性的植物(100)并进行标记。100株植物的97株为非转化体而三株为转化体。56号植物具有最少的转化量(1.2％)而58号植物具有最高的转化水平(96％)。用这两种植物制备自花传粉种子和杂交种子。

来自自交58的植物以3∶1转化体对非转化体的比例分离。植物58-33和58-25分别被鉴定为纯合的转化体和非转化体植物品系。通过其后代的分析确认了58-33的稳定转化。

细胞系PBLB01

PBLB01是由ProfiGen，Inc.开发的白莱烟品系并被用作植物材料的来源。转化体植物选自PBLB01的起始种子。

乙烯处理方法

将绿叶从2-3个月温室培养的植物上取下并喷以0.3％乙烯溶液(Prep brand Ethephon(Rhone-Poulenc))。将每片喷过的叶子悬挂于处理架上，所述处理架装备了增湿器并覆以塑料。在处理过程中，用乙烯溶液周期性地喷样品叶子。在乙烯处理后的大约24-48个小时，收集叶子进行RNA抽提。取另一份小样进行代谢组分分析以测定叶代谢物和更加具体的目标组分如多种生物碱的浓度。

作为实例，可以如下进行生物碱分析。将样品(0.1g)于150rpm与0.5ml 2N NaOH和5ml抽提溶液一起进行摇动，所述抽提溶液包含作为内标的喹啉和甲基叔丁醚。在配备了FID检测器的HP 6890 GC上分析样品。对于检测器和注射器使用250℃的温度。在以每分钟10℃的110-185℃的温度梯度上使用由熔融的硅石组成的HP柱(30m-0.32nm-1mm)，所述熔融的硅石交联了5％的苯酚和95％的聚甲基硅氧烷(methyl silicon)。于100℃以1.7cm³min^-1的流速，以40∶1的裂解比率，以2∶1的注射体积利用氦作为载气来操作所述柱。

实施例2

RNA分离

为了进行RNA提取，如上述用乙烯处理来自两个月龄的温室生长植物的中叶。将0和24-48小时的样品用于RNA抽提。在一些情况下，从除去花头后10天的植物上取处于衰老过程的叶子样品。也将这些样品用于抽提。根据生产商的方案利用Rneasy Plant Mini Kit(Qiagen，Inc.，Valencia，California)分离总RNA。

利用DEPC处理的研体和研杵将组织样品在液氮下研磨成精细粉末。将大约100毫克的研磨组织转移入无菌的1.5ml Eppendorf管中。将此样品管置于液氮中直到收集了所有样品。随后，将如试剂盒中提供的450μ1缓冲液RLT(加入巯基乙醇)加入到每只单个管中。剧烈涡旋样品并于56℃温育3分钟。随后将裂解物应用到置于2ml收集管中的QIAshredder

离心柱上，并以最大速度离心2分钟。收集流过物并将0.5体积的乙醇加入到清除的裂解物中。充分混合样品并转移到置于2ml收集管中的Rneasy微型离心柱上。于10,000rpm将样品离心1分钟。接下来，将700μl的缓冲液RW1吸移到Rneasy

柱上并于10,000rpm离心1分钟。将缓冲液RPE吸移到在新收集管中的Rneasy

柱上并于10,000rpm离心1分钟。再次将缓冲液RPE加入到Rneasy

离心柱上并以最大速度离心2分钟以干燥所述膜。为了除去任何残余的乙醇，将膜置于单独的收集管中并以最大速度再离心1分钟。将Rneasy

柱转移入新的1.5ml收集管中，并将40μl不含RNA酶的水直接吸移到Rneasy

膜上。将此最终洗脱管于10,000rpm离心1分钟。通过变性甲醛凝胶和分光光度计分析总RNA的质与量。

遵照生产商的方案使用Oligotex

聚A+RNA纯化试剂盒(QiagenInc.)分离聚(A)RNA。使用250μl最大体积中的大约200μg总RNA。将250μl体积的缓冲液OBB和15μl的Oligotex

混悬液加入到250μl的总RNA中。通过吸移将组分充分混合并在加热模块上于70℃温育3分钟。随后将样品置于室温大约20分钟。通过以最大速度离心2分钟将Oligotex

：mRNA复合物沉淀。除了50μl上清液之外将全部物质从微量离心管中除去。用OBB缓冲液进一步处理样品。通过涡旋将Oligotex

：mRNA沉淀重悬于400μl的缓冲液OW2中。将此混合物转移到置于新管中的小离心柱上并以最大速度离心1分钟。将离心柱转移到新的管中并向柱中加入另外400μl的缓冲液OW2。随后以最大速度将所述管离心1分钟。将所述离心柱转移到最终的1.5ml微量离心管中。用60μl的热(70℃)缓冲液OEB洗脱样品。通过变性甲醛凝胶和分光光度分析来分析聚腺苷酸产物。

实施例3

反转录PCR

按照生产商的方案使用SuperScript反转录酶(Invitrogen，Carlsbad，California)制备第一链cDNA。富含聚A+的RNA/寡dT引物混合物由少于5μg的总RNA，1μl的10mM dNTP混合物，1μl的寡d(T)_12-18(0.5μg/μl)，和多达10μl的DEPC处理的水组成。将每个样品于65℃温育5分钟，随后置于冰上至少1分钟。反应混合物通过顺序加入每种下列组分进行制备：2μl 10X RT缓冲液，4μl的25mM MgCl₂，2μl的0.1M DTT，和1μl的RNA酶OUT重组RNA酶抑制剂。将另外9μl的反应混合物吸移到每种RNA/引物混合物中并轻轻混合。将其于42℃温育2分钟并将1μl的Super ScriptII RT加入到每管中。将所述管于42℃温育50分钟。于70℃终止反应15分钟并于冰上冷却。通过离心收集样品并将1μl的RNA酶H加入到每管中并于37℃温育20分钟。用200pmoles的正向引物和100pmoles反向引物(后带1个随机碱基的18nt寡d(T)的混合物)进行第二次PCR。

反应条件为94℃2分钟和随后在94℃1分钟，45℃-60℃2分钟，72℃3分钟的40个PCR循环，于72℃再延伸10min。利用1％的琼脂糖凝胶通过电泳分析10微升的扩增样品。将正确大小的片段从琼脂糖凝胶上纯化出来。

实施例4

PCR片段群的生成

按照生产商的说明书将来自实施例3的PCR片段连接入pGEM-TEasy载体(Promega，Madison，Wisconsin)。将连接产物转化入JM109感受态细胞中并接种于LB培养基板上进行蓝/白筛选。选择菌落并于37℃过夜生长于具有1.2ml LB培养基的96孔板中。对于所有选择的菌落都制成冷冻的贮存母液。以Wizard SV Miniprep试剂盒(Promega)利用Beckman′s Biomeck 2000小量制备机器人由板中纯化质粒DNA。用100μl水洗脱质粒DNA并保存于96孔板中。通过EcoR1消化质粒并利用1％的琼脂糖凝胶进行分析以确定DNA量和插入片段的大小。利用CEQ 2000测序仪(Beckman，Fullerton，California)对包含400-600bp插入片段的质粒进行测序。通过BLAST搜索将序列与GenBank数据库进行比对。鉴定p450相关片段并进一步进行分析。或者，将p450片段从消减式文库中分离。也如上所述对这些片段进行分析。

实施例5

cDNA文库构建

如下通过由乙烯处理的叶子制备总RNA来构建cDNA文库。首先，利用改进的酸苯酚和氯仿抽提方法由乙烯处理的烟草品系58-33叶子中抽提总RNA。改进所述方法以使用一克组织，所述组织进行过研磨并随后在5ml抽提缓冲液(100mM Tris-HCl，pH 8.5；200mM NaCl；10mM EDTA；0.5％SDS)中进行涡旋，向其中加入5ml苯酚(pH5.5)和5ml氯仿。将抽提样品离心并保留上清液。将此抽提步骤重复2-3次直到上清液看起来清亮。加入大约5ml的氯仿以去除痕量的苯酚。通过加入3倍体积的乙醇和1/10体积的3M NaOAc(pH5.2)将RNA由合并的上清液级分中沉淀并于-20℃保存1小时。在转移到Corex玻璃容器中后将RNA级分于9,000RPM于4℃离心45分钟。用70％乙醇洗涤沉淀物并于9,000RPM于4℃离心5分钟。干燥沉淀后，将沉淀的RNA溶解于0.5ml不含RNA酶的水中。分别通过变性甲醛凝胶和分光光度计分析总RNA的质与量。

通过下列方案利用寡(dT)纤维素方法(Invitrogen)和微量离心柱(Invitrogen)将得到的总RNA用于分离聚A+RNA。将大约20mg的总RNA进行两次纯化以获得高质量的聚A+RNA。通过进行变性甲醛凝胶和随后的已知全长基因的RT-PCR来分析聚A+RNA产物以确保高质量的mRNA。

接下来，采用cDNA合成试剂盒，ZAP-cDNA合成试剂盒，和ZAP-cDNA Gigapack III gold克隆试剂盒(Stratagene，La Jolla，California)将聚A+RNA用作模板来产生cDNA文库。所述方法包括遵循指定的生产商方案。将大约8μg的聚A+RNA用来构建cDNA文库。初级文库的分析揭示了大约2.5×10⁶-1×10⁷pfu。利用IPTG和X-gal通过互补测定完成文库质量背景测试，其中重组斑以高于背景反应的超过100倍进行表达。

通过随机PCR进行的更加定量的文库分析显示插入cDNA的平均大小为大约1.2kb。该方法使用两步PCR法。对于第一步，基于获自p450片段的初步序列信息设计反向引物。利用设计的反向引物和T3(正向)引物由cDNA文库扩增相应的基因。将PCR反应进行琼脂糖电泳并切除相应的高分子量条带，纯化，克隆和测序。在第二步中，由5′UTR或p450的起始编码区设计作为正向引物的新引物与反向引物(由p450的3′UTR设计)一起用于随后的PCR中来获得全长p450克隆。

除了反向引物之外，如实施例3中所述，通过PCR扩增由构建的cDNA文库生成p450片段。将位于cDNA插入片段质粒下游的T7引物用作反向引物。如实施例4中所述对PCR片段进行分离，克隆和测序。

通过这种PCR方法由构建的的cDNA文库分离全长p450基因。使用基因特异性反向引物(由p450片段下游序列设计)和正向引物(在文库质粒上的T3)克隆全长基因。对PCR片段进行分离，克隆和测序。如果必要的话，应用第二个PCR步骤。在第二个步骤中，由克隆的p450s的5′UTR设计的新的正向引物与由p450克隆的3′UTR设计的反向引物一起用于随后的PCR反应中来获得全长p450克隆。随后对克隆进行测序。

实施例6

克隆片段的特征鉴定-反向DNA印迹分析

对于在以上实施例中鉴定的所有p450克隆进行非放射性大规模反向DNA印迹测定以检测差异表达。观察到在不同p450簇之间表达水平非常不同。对于具有高度表达的那些进行进一步的实时检测。

如下进行非放射性DNA印迹操作。

1)如实施例2中所述使用Qiagen Rnaeasy试剂盒由乙烯处理的和未处理的转化体(58-33)和非转化体(58-25)叶子抽提总RNA。

2)通过生物素尾端标记单链cDNA产生探针，所述单链cDNA衍生自以上步骤中生成的富含聚A+的RNA。如实施例3中所述通过转化体和非转化体总RNA(Invitrogen)的RT-PCR生成这种经标记的单链cDNA，除了使用生物素化的寡dT作为引物(Promega)。这些被用作与克隆DNA杂交的探针。

3)用限制性酶EcoR1消化质粒DNA并在琼脂糖凝胶上进行电泳。同时将凝胶干燥并转移到两个尼龙膜上(Biodyne B)。将一个膜与转化体探针杂交而另一个与非转化体探针杂交。杂交前将膜进行UV-交联(自动交联装置，254nm，Stratagene，Stratalinker)。

或者，利用位于p-GEM质粒两条臂上的序列T3和SP6作为引物，由每个质粒PCR扩增插入片段。通过在96孔预运行(Ready-to-run)琼脂糖凝胶上进行电泳来分析PCR产物。将确认的插入片段点在两个尼龙膜上。将一个膜与转化体探针杂交而另一个与非转化体探针杂交。

4)根据生产商的说明书(Enzo MaxSence kit，Enzo Diagnostics，Inc，Farmingdale，NY)，对洗涤严谨性进行改进，对膜进行杂交和洗涤。将膜于42℃与杂交缓冲液(2x SSC缓冲的甲酰胺，含有去污剂和杂交增强剂)预杂交30min并与10μl变性探针于42℃过夜杂交。随后将膜在室温于1X杂交洗涤缓冲液中洗涤1次持续10min并于68℃洗涤4次持续15min。所述膜可以用于检测操作。

5)如生产商的检测方法(Enzo Diagnostics，Inc.)中所述通过碱性磷酸酶标记随后进行NBT/BCIP colometric检测对经洗涤的膜进行检测。用1x封闭溶液于室温将膜封闭1小时，用1X检测试剂洗涤3次达10min，用1X预显色反应缓冲液洗涤2次达5min，并且随后在显色溶液中将斑点显色30-45min直到斑点显现。所有试剂都由生产商提供(Enzo Diagnostics，Inc)。此外，还利用KPL DNA杂交和检测试剂盒根据生产商的说明书(KPL，Gaithersburg，Maryland)进行大规模反向DNA测定。

实施例7

克隆的特征鉴定-RNA印迹分析

作为DNA印迹分析的备选，如在RNA印迹测定的实施例中所述对一些膜进行杂交和检测。如下利用RNA杂交来检测在烟草属中差异表达的mRNA。

利用一种随机引导方法来由克隆的p450制备探针(Megaprime DNALabelling Systems，Amersham Biosciences)。混合下列组分：25ng变性的DNA模板；4μl每种未标记的dTTP，dGTP和dCTP；5μl的反应缓冲液；P³²-标记的dATP和2μl的Klenow I；和H₂O，使反应达到50μl。将混合物于37℃温育1-4小时，并以2μl的0.5M EDTA终止。使用前通过于95℃温育5分钟将探针变性。

由乙烯处理和未处理的数对烟草品系的新鲜叶制备RNA样品。在一些情况下使用富含聚A+的RNA。用DEPC H₂O(5-10μl)将大约15μg总RNA或1.8μg mRNA(如实施例5中所述的RNA和mRNA抽提方法)达到等同体积。加入相同体积的加样缓冲液(1x MOPS；18.5％甲醛；50％甲酰胺；4％Ficoll400；溴酚蓝)和0.5μl EtBr(0.5μg/μl)。随后将样品在制备中变性用来通过电泳分离RNA。

用1X MOP缓冲液(0.4M吗啉代丙烷磺酸；0.1M醋酸钠-3xH2O；10mM EDTA；用NaOH调节至pH 7.2)将样品在甲醛凝胶(1％琼脂糖，1x MOPS，0.6M甲醛)上进行电泳。通过毛细管法在10X SSC缓冲液(1.5M NaCl；0.15M柠檬酸钠)中将RNA转移到Hybond-N+膜上(Nylon，Amersham Pharmacia Biotech)24小时。在杂交前将具有RNA样品的膜进行UV交联(自动交联装置，254nm，Stratagene，Stratalinker)。

将膜在42℃与5-10ml预杂交缓冲液(5x SSC；50％甲酰胺；5xDenhardt′s-溶液；1％SDS；100μg/ml热变性剪切的非同源性DNA)预杂交1-4小时。弃去旧的预杂交缓冲液，加入新的预杂交缓冲液和探针。于42℃过夜进行杂交。用2x SSC于室温洗涤膜达15分钟，随后用2x SSC洗涤。

在获自转化体和非转化体白莱烟品系的烟草属组织上利用全长克隆进行RNA印迹分析，所述转化体和非转化体白莱烟品系都通过乙烯处理进行诱导。目的是鉴定那些相对于乙烯诱导的转化体品系相对于乙烯诱导的非转化体白莱烟品系在乙烯诱导的转化体品系中显示表达升高的全长克隆。通过这样做，全长克隆的功能性关系可以通过比较转化体和非转化体品系之间叶组分的生化差异进行确定。

实施例8

由克隆的基因编码的p450s的免疫检测

由三个p450克隆选择对应于20-22个氨基酸长的肽区，其1)与其它克隆具有较低的或没有同源性和2)具有良好的亲水性和抗原性。下面列出选自各个p450克隆的肽区的氨基酸序列。将合成的肽与KHL缀合并随后注射入兔体内。第4次注射后2和4周收集抗血清(Alpha Diagnostic Intl.Inc.San Antonio，TX)。

D234-AD1 DIDGSKSKLVKAHRKIDEILG(SEQ ID NO：8)

D90a-BB3 RDAFREKETFDENDVEELNY(SEQ ID NO：9)

D89-AB1 FKNNGDEDRHFSQKLGDLADKY(SEQ ID NO：10)

通过蛋白质印迹分析对抗血清检查与来自烟草植物组织的目标蛋白的交叉反应性。粗制蛋白提取物获自乙烯处理的(0-40小时)转化体和非转化体品系的中叶。根据生产商的方案使用RC DC蛋白质测定试剂盒(BIO-RAD)测定提取物的蛋白质浓度。

将两毫克蛋白质加载到每个泳道上并利用Laemmli SDS-PAGE系统在10％-20％的梯度凝胶上分离蛋白质。用Trans-Blot Semi-Dry细胞(BIO-RAD)将蛋白质由凝胶转移到PROTRAN硝化纤维素转移膜(Schleicher & Schuell)上。用ECL Advance Western Blotting检测试剂盒(Amersham Biosciences)检测并显现目标p450蛋白。在兔体内制备抗合成性KLH缀合物的一抗。与过氧化物酶偶联的抗兔IgG的二抗购自Sigma。一抗和二抗都以1∶1000稀释使用。抗体显示对于蛋白质印迹上单一条带的强烈反应性，提示抗血清对于目标靶肽是单特异性的。抗血清还与缀合到KLH上的合成肽具有交叉反应性。

实施例9

分离的核酸片段的核酸同一性和结构相关性

结合RNA印迹分析对超过100个克隆的p450片段进行测序以确定它们的结构关系。该方法使用基于位于p450基因羧基末端附近的两个共同p450基序中任一个的正向引物。所述正向引物对应于细胞色素p450基序FXPERF(SEQ ID NO：11)或GRRXCP(A/G)(SEQ ID NO：12)。反向引物使用来自质粒的标准引物，位于pGEM质粒两臂上的SP6或T7，或者来自聚腺苷酸尾巴的标准引物。下面描述所用的方法。

根据生产商的方案(Beckman Coulter)利用分光光度法评估起始双链DNA的浓度。将模板用水稀释到合适的浓度，通过于95℃加热2分钟进行变性，随后置于冰上。利用0.5-10μl的变性DNA模板，2μl的1.6pmol的正向引物，8μl的DTCS Quick Start Master Mix在冰上制备测序反应物，并用水使总体积达到20μl。热循环程序由30个循环的下列循环组成：96℃20秒，50℃20秒，和60℃4分钟，随后保持于4℃。

通过加入5μl的终止缓冲液(等体积的3M NaOAc和100mM EDTA和1μl的20mg/ml糖原)终止测序反应。用60μl的冷95％乙醇沉淀样品并于6000xg离心6分钟。弃去乙醇。用200μl的冷70％乙醇洗涤沉淀物两次。在沉淀干燥后，加入40μl的SLS溶液并重悬沉淀。覆盖一层矿物油。随后将样品置于CEQ 8000自动测序仪上作进一步分析。

为了确证核酸序列，使用p450基因的FXPERF(SEQ ID NO：11)或GRRXCP(A/G)(SEQ IDNO：12)区的正向引物或质粒或聚腺苷酸尾巴的反向引物在两个方向上对核酸序列进行重新测序。所有的测序都在两个方向上至少进行两次。

将细胞色素p450片段的核酸序列彼此相比较，从对应于编码GRRXCP(A/G)(SEQ ID NO：12)基序区之后的第一个核酸的编码区一直到终止密码子。将此区选作p450蛋白之间遗传多样性的指征。在70个过量基因中，观察到大量遗传上不同的p450基因，类似于其它植物物种的情况。在比较核酸序列之后，发现基于它们的序列同一性可以将基因插入不同的序列组。发现p450成员的最佳独特组被确定为具有75％或更大核酸同一性的那些序列。(见例如，US 2004/0162420专利申请出版物中的表1，将其并入本文作为参考)。减少百分比同一性导致明显更大的组。观察到优选的组为具有81％或更大核酸同一性的那些序列，更加优选的组为具有91％或更大核酸同一性，和最优选的组为具有99％或更大核酸同一性的那些序列。大多数组包含至少两个成员并经常包含三个或更多的成员。未反复发现其它的，提示所采用的方法能够在所用的组织中分离低和高表达的mRNA。

利用基因芯片技术鉴定在转化体对非转化体烟草品系中差异表达的基因，测定D121-AA8具有在乙烯处理的转化体品系中的可复制的诱导。基于这些结果，D121-AA8基因(其cDNA序列是SEQ ID NO：3的序列；图3)被鉴定为烟草烟碱脱甲基酶目标基因。

考虑到p450命名规则，烟草烟碱脱甲基酶基因是新的并属于CYP82E类(The Arabidopsis Genome Initiative(AGI)and The Arabidopsis InformationResource(TAIR)；Frank，Plant Physiol.110：1035-1046，1996；Whitbred et al.，Plant Physiol.124：47-58，2000)；Schopfer和Ebel，Mol.Gen.Genet.258：315-322，1998；和Takemoto等，Plant Cell Physiol.40：1232-1242，1999)。

实施例10

烟草烟碱脱甲基酶的生化分析

生化分析，例如，如并入本文作为参考的先前提交的申请中所述，确定了SEQ ID NO：3的序列编码烟草烟碱脱甲基酶(SEQ ID NO：4；图3)。

特别地，通过如下测定酵母细胞中异源表达的p450的酶活性，确定候选克隆(D121-AA8)的功能为烟碱脱甲基酶的编码基因。

1.酵母表达载体的构建

将烟草烟碱脱甲基酶编码cDNA(D121-AA8)的推定蛋白质编码序列克隆入酵母表达载体pYeDP60。通过包含这些序列的PCR引物在翻译起始密码子(ATG)的上游或终止密码子(TAA)的下游导入合适的BamHI和MfeI位点(下面下划线的)。扩增的PCR产物上的Mfel与载体上的EcoRI位点相容。用来扩增cDNA的引物是5′-TAGCTACGCGGATCCATGCTTTCTCCCATAGAAGCC-3′(SEQ IDNO：27)和5′-CTGGATCACAATTGTTAGTGATGGTGATGGTGATGCGATCCTCTATAAAGCTCAGGTGCCAGGC-3′(SEQ ID NO：28)。将编码蛋白质C末端九个额外氨基酸，包括六个组氨酸的序列片段，并入反向引物中以利于诱导后6-His标记的p450的表达。酶消化后在参照GAL10-CYC1启动子的有义方向上将PCR产物连接入pYeDP60载体中。通过限制性酶切分析和DNA测序确认酵母表达载体的正确构建。

2.酵母转化

将改进来表达拟南芥NADPH-细胞色素p450还原酶ATR1的WAT11酵母品系用pYeDP60-p450cDNA质粒进行转化。将50微升的WAT11酵母细胞混悬液与～1μg质粒DNA在具有0.2cm电极隙的比色杯中混合。Eppendorf电穿孔仪(Model 2510)应用2.0kV的脉冲。将细胞铺到SGI板上(5g/L bactocasamino acids，6.7g/L无氨基酸的酵母氮碱(nitrogen base)，20g/L葡萄糖，40mg/L DL-色氨酸，20g/L琼脂)。通过直接在随机选择的集落上进行的PCR分析确认转化体。

3.在转化的酵母细胞中的p450表达

利用单一酵母菌落接种30mL SGI培养基(5g/L bactocasamino acids，6.7g/L无氨基酸的酵母氮碱，20g/L葡萄糖，40mg/L DL-色氨酸)并于30℃生长大约24小时。将等分试样的这种培养物以1∶50稀释到1000mL的YPGE培养基中(10g/L酵母提取物，20g/L细菌培养用蛋白胨，5g/L葡萄糖，30ml/L乙醇)并培养直到葡萄糖被完全耗尽，如通过Diastix尿分析试剂条(Bayer，Elkhart，IN)的比色变化所示。通过加入DL-半乳糖到终浓度2％来起始克隆P450的诱导。在使用前将培养物再培养20小时进行体内活性测定或进行微粒体制备。

使用表达pYeDP60-CYP71D20(催化烟草中5-epi-aristolochene和1-deoxycapsidiol的羟基化作用的p450)的WAT11酵母细胞作为p450表达和酶活性测定的对照。

为了更加详细地评估p450的酵母表达的有效性，进行简化的CO差异光谱分析。简化的CO光谱在450nm上显现来自所有四种p450转化的酵母品系的蛋白质的峰。在对照酵母或载体对照酵母的微粒体中没有观察到类似的峰。所述结果显示p450蛋白在具有pYeDP60-CYP 450的酵母品系中得以有效表达。酵母微粒体中表达的p450蛋白的浓度为从45到68nmole/mg总蛋白。

4.体内酶测定

通过对酵母培养物饲以DL-烟碱(吡咯烷-2-¹⁴C)来测定转化酵母细胞中烟碱脱甲基酶的活性。将¹⁴C标记的烟碱(54mCi/mmol)加入到75μl的半乳糖诱导的培养物中达到最终浓度55μM。在14ml聚丙烯试管中以摇动将测定培养物温育6小时，并以900μl甲醇进行抽提。离心后，以rp-HPLC分离20μl的甲醇提取物并通过LSC对去甲烟碱级分进行量化。

WAT11(pYeDP60-CYP71D20)的对照培养物并未将烟碱转变成去甲烟碱，显示WAT11酵母株并不包含能够催化烟碱生物转化成去甲烟碱的步骤的内源酶活性。相反，表达烟草烟碱脱甲基酶基因的酵母生产出可检测量的去甲烟碱，显示SEQ ID NO：3翻译产物的烟碱脱甲基酶活性。

5.酵母微粒体制备

半乳糖诱导20小时后，通过离心收集酵母细胞并用TES-M缓冲液(50mM Tris-HCl，pH 7.5，1mM EDTA，0.6M山梨糖醇，10mM 2-巯基乙醇)洗涤两次。将沉淀物重悬于抽提缓冲液中(50mM Tris-HCl，pH 7.5，1mM EDTA，0.6M山梨糖醇，2mM 2-巯基乙醇，1％牛血清白蛋白，1片/50ml的蛋白酶抑制剂混合物(Roche))。随后用玻璃珠(直径0.5mm，Sigma)破裂细胞并将细胞提取物以20,000xg离心20min以除去细胞碎片。将上清液于100,000xg进行超速离心60min，得到的沉淀物包含微粒体级分。将所述微粒体级分以1mg/mL的蛋白质浓度悬浮于TEG-M缓冲液中(50mM Tris-HCl，pH 7.5，1mM EDTA，20％甘油和1.5mM 2-巯基乙醇)。将微粒体制备物保存于液氮冷冻库中待用。

6.酵母微粒体制备物中的酶活性测定

用酵母微粒体制备物进行烟碱脱甲基酶活性的测定。特别地，DL-烟碱(吡咯烷-2-¹⁴C)获自Moravek Biochemicals并具有54mCi/mmol的特异性活性。氯丙嗪(CPZ)和氧化的细胞色素C(cyt.C)，二者都是P450抑制剂，购自Sigma。还原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸(NADPH)是细胞色素P450通过NADPH：细胞色素P450还原酶的典型电子供体。在对照温育中不存在NADPH。常规酶测定包括微粒体蛋白(约1mg/ml)，6mMNADPH，和55μM ¹⁴C标记的烟碱。在使用时，CPZ和Cyt.C的浓度分别为1mM和100μM。反应在25℃进行1小时并通过加入300μl甲醇到每个25μl反应混合物中进行终止。离心后，使用来自Varian的InertsilODS-33μ(150×4.6mm)色谱柱以反相高效液相色谱(HPLC)系统(Agilent)分离20μl的甲醇提取物。恒溶剂(isocratic)流动相是甲醇和50mM磷酸钾缓冲液，pH 6.25的混合物，比率是60∶40(v/v)并且流速是1ml/min。收集去甲烟碱峰并以2900tri-carb液体闪烁计数器(LSC)(Perkin Elmer)进行量化，所述去甲烟碱峰是通过与真实可信的未标记去甲烟碱相比较而确定的。在1小时温育后基于¹⁴C标记的去甲烟碱的产生来计算烟碱脱甲基酶的活性。

来自表达CYP71D20的对照酵母细胞的微粒体制备物并不具有任何可检测的微粒体烟碱脱甲基酶活性。相反，获自表达烟草烟碱脱甲基酶基因的酵母细胞的微粒体样品显示显著水平的烟碱脱甲基酶活性。烟碱脱甲基酶活性需要NADPH并显示被p450特异性抑制剂所抑制，这与作为p450的烟草烟碱脱甲基酶相一致。如由放射性强度和蛋白质浓度所计算的，烟草烟碱脱甲基酶(D121-AA8)的酶活性大约为10.8pkat/mg蛋白质。对于酵母细胞所获得的一组典型酶测定结果显示于表1中。

表1：在表达D121-AA8和对照P450的酵母细胞的微粒体中的脱甲基酶活性

样品	微粒体	微粒体+1mM氯丙嗪	微粒体+100μM细胞色素C	微粒体-NADPH
					D121-AA8	10.8±1.2^*pkat/mg蛋白质	1.4±1.3pkat/mg蛋白质	2.4±0.7pkat/mg蛋白质	0.4±0.1pkat/mg蛋白质
对照(CYP71D20)	未检测到	未检测到	未检测到	未检测到

^*3次重复的平均结果

这些实验在一起证明克隆的全长烟草烟碱脱甲基酶(SEQ ID NO：3；D121-AA8)编码细胞色素p450蛋白，当在酵母中表达时其催化烟碱向去甲烟碱的转化。

实施例11

分离的核酸片段的相关氨基酸序列同一性

推断由实施例8获得的细胞色素p450片段的核酸序列的氨基酸序列。推断区对应于紧接GXRXCP(A/G)(SEQ ID NO：13)序列基序之后的氨基酸到羧基末端的结尾，或终止密码子。在比较片段的序列同一性之后，观察到具有70％或更大氨基酸同一性的那些序列的独特组。观察到优选的组为具有80％或更大氨基酸同一性的那些序列，更加优选的组为具有90％或更大氨基酸同一性，和最优选的组为具有99％或更大氨基酸同一性的那些序列。发现几个独特的核酸序列与其它片段具有完全的氨基酸同一性，所以只报道了具有相同氨基酸的一个成员。

对于使用植物的基因克隆和功能性研究选择了每个氨基酸同一性组的至少一个成员。此外，对于基因克隆和功能性研究选择了组成员，所述成员通过如RNA和DNA分析评估，受乙烯处理或其它生物学差异的不同影响。为了有助于基因克隆，表达研究和整体植物评估，可以基于序列同一性和不同序列制备肽特异性抗体。

实施例12

全长克隆的相关氨基酸序列同一性

对实施例5中克隆的全长烟草属基因的核酸序列推断它们完整的氨基酸序列。通过三个保守的p450结构域基序的存在鉴定细胞色素p450基因，所述三个保守的p450结构域基序对应于羧基末端上的UXXRXXZ(SEQ ID NO：14)，PXRFXF(SEQ ID NO：15)或GXRXC(SEQ ID NO：16)，其中U是E或K，X是任何氨基酸，Z是P，T，S或M。利用BLAST程序将它们的全长序列彼此和与已知的烟草基因相比较来对所有的p450基因氨基酸同一性进行表征。所述程序使用NCBI特别的BLAST工具(比对两种序列(b12seq)，http://www.ncbi.nlm.nih.gov/blast/b12seq/b12.html)。在没有对于核酸序列的滤器的BLASTN和对于氨基酸序列的BLASTP之下比对两种序列。基于它们的百分比氨基酸同一性，将每种序列归类到同一性组中，其中所述组包含与另一成员共有至少85％同一性的成员。观察到优选的组为具有90％或更大氨基酸同一性的那些序列，更加优选的组为具有95％或更大氨基酸同一性，和最优选的组为具有99％或更大氨基酸同一性的那些序列。推断全长烟碱脱甲基酶基因的氨基酸序列具有SEQ IDNO：4中提供的序列(图3)。

实施例13

缺乏一种或多种烟草P450特异性结构域的烟草属细胞色素P450克隆

四个克隆具有高度核酸同源性，范围从90％到99％的核酸同源性。不过，由于核苷酸移码，这些基因并不包含三个C-末端细胞色素p450结构域的其中一个或多个并且被排除在同一性组之外。

实施例14

烟草属细胞色素P450片段和克隆在烟草质量的变化调控中的应用

烟草p450核酸片段或完整基因的应用在鉴定和选择那些具有变化的烟草表型或烟草组分，更重要的是，变化的代谢物的植物中是有用的。通过多种转化系统生成转基因烟草植物，所述转化系统在下调方向，例如反义方向，或过量表达例如有义方向上等结合了选自本文所报告的那些的核酸片段或全长基因。对于全长基因的过量表达，任何编码本发明中所述全长基因的完整或功能性部分或氨基酸序列的核酸序列都是有利的。这些核酸序列理想地对于提高某种酶的表达是有效的并且因此导致烟草属内的表型效应。通过一系列回交获得纯合的烟草属品系并评估表型变化，包括但不限于，利用本领域普通技术人员常规可获得的技术进行内源性p450RNA，转录物，p450表达肽和植物代谢物浓度的分析。烟草植物中呈现的变化提供了对于目标选定基因的功能性作用信息或者用作优选烟草属植物物种的信息。

实施例15

来自转化体白莱烟烟草的基因组烟草烟碱脱甲基酶的克隆

如以上实施例中所述(还见生产商的方法)利用Qiagen Plant Easy试剂盒由转化体白莱烟烟草植物品系4407-33(烟草品种4407品系)提取基因组DNA。

基于在前实施例中克隆的5′启动子和3′UTR区设计引物。正向引物为5′-GGC TCT AGA TAA ATC TCT TAA GTT ACT AGG TTC TAA-3′(SEQID NO：17)和5′-TCT CTA AAG TCC CCT TCC-3′(SEQ ID NO：25)而反向引物为5′-GGC TCT AGA AGT CAA TTA TCT TCT ACA AAC CTT TATATA TTA GC-3′(SEQ ID NO：18)，和5′-CCA GCA TTC CTC AAT TTC-3′(SEQ ID NO：26)。用100μl反应混合物将PCR应用于4407-33基因组DNA。使用Pfx高保真酶进行PCR扩增。在电泳后将PCR产物在1％琼脂糖凝胶上进行观察。观察到分子量大约为3.5kb的单一条带并从凝胶上将其切下。利用凝胶纯化试剂盒(Qiagen；基于生产商的方法)纯化得到的条带。通过酶Xba I(NEB；根据生产商的说明书使用)消化纯化的DNA。利用相同方法通过Xba I消化pBluescript质粒。将片段进行凝胶纯化并连接入pBluescript质粒中。将连接混合物转化入感受态细胞GM1O9中并接种到包含100mg/l氨苄青霉素的LB平板上，伴随以蓝/白筛选。挑取白色菌落并培养在包含氨苄青霉素的10ml LB液体培养基中。通过小量制备提取DNA。利用CEQ 2000测序仪(Beckman，Fullerton，California)基于生产商的方法对包含插入片段的质粒DNA进行测序。使用T3和T7引物以及8种其它内部引物进行测序。对序列进行组合和分析，由此提供基因组序列(SEQ ID NO：1；图2-1到2-3)。

将SEQ ID NO：1的序列与SEQ ID NO：3的序列相比较能够确定基因编码部分内的单一内含子(鉴定为SEQ ID NO：5的序列；图4)。如图1中所示，烟草烟碱脱甲基酶的基因组结构包括在单一内含子侧面的两个外显子。第一个外显子跨越SEQ ID NO：1的核苷酸2010-2949，其编码SEQID NO：2的氨基酸1-313，第二个外显子跨越SEQ ID NO：1的核苷酸3947-4562，其编码SEQ ID NO：2的氨基酸314-517。因此，所述内含子跨越SEQ ID NO：1的核苷酸2950-3946。内含子序列提供在图4中并且是SEQ ID NO：5的序列。基因组DNA序列的翻译产物作为SEQ ID NO：2的序列提供在图2-1中。烟草烟碱脱甲基酶氨基酸序列包含内质网膜锚定基序。

实施例16

由转化体烟草克隆5′侧翼序列(SEO ID NO：6)和3′UTR(SEQ ID NO：7)

A.来自转化体烟草叶组织的总DNA的分离

从转化体烟草4407-33的叶中分离基因组DNA。根据生产商的方案使用来自Qiagen，Inc.(Valencia，Ca)公司的DNeasy Plant Mini试剂盒进行DNA的分离。在此将生产商的手册Dneasy′Plant Mini and DNeasy PlantMaxi Handbook，Qiagen January 2004并入作为参考。DNA制备方法包括下列步骤：在液氮下，将烟草叶组织(大约20mg干重)研磨成精细粉末，进行1分钟。将组织粉末转移入1.5ml管中。将缓冲液AP1(400μl)和4μl的RNA酶贮存溶液(100mg/ml)加入到最大100mg的研磨叶组织中并进行剧烈涡旋。将混合物于65℃温育10min并在温育期间通过倒转试管将其混合2-3次。随后将缓冲液AP2(130μl)加入到裂解物中。将混合物混合并在冰上温育5min。将裂解物应用到QIAshredder Mini离心柱上并离心2min(14,000rpm)。将流过物级分转移到新的管中，不扰动细胞碎片沉淀。随后将缓冲液AP3/E(1.5体积)加入到澄清的裂解物中并通过抽吸进行混合。将来自在前步骤的包括任何沉淀物的混合物(650μl)应用到DNeasy Mini离心柱上。将混合物于＞6000xg(＞8000rpm)离心1min并弃去流过物。用剩余样品对此进行重复并弃去流过物和收集管。将DNeasyMini离心柱置于新的2ml收集管中。随后将缓冲液AW(500μl)加入到DNeasy柱上并离心1min(＞8000rpm)。弃去流过物。在接下来的步骤中重新使用该收集管。随后将缓冲液AW(500μl)加到DNeasy柱上并离心2min(＞14,000rpm)以便干燥膜。将DNeasy柱转移到1.5ml管中。随后将缓冲液AE(100μl)吸取到DNeasy膜上。将混合物于室温(15-25℃)温育5min并随后离心1min(＞8000rpm)来洗脱。

通过在琼脂糖凝胶上将样品进行电泳来评估DNA的质与量。

B.结构基因5′侧翼序列的克隆

使用改进的反向PCR方法克隆来自SEQ ID NO：1的结构基因的5’侧翼序列的750个核苷酸。首先，基于已知序列片段中的限制性位点和5’侧翼序列下游的限制性位点间距来选择合适的限制性酶。基于这种已知的片段设计两条引物。正向引物位于反向引物的下游。反向引物位于已知片段的3’部分。

克隆方法包括下列步骤：

用20-40个单位的合适的限制性酶(EcoRI和SpeI)在50μl反应混合物中消化纯化的基因组DNA(5μg)。用1/10体积的反应混合物进行琼脂糖凝胶电泳以确定DNA是否消化完全。在完全消化后通过于4℃过夜连接进行直接连接。将200μl包含10μl消化DNA和0.2μl T4 DNA连接酶(NEB)的反应混合物于4℃过夜连接。在获得人工小环状基因组之后进行连接反应物的PCR。用10μl连接反应物和来自已知片段的2条引物在两个不同方向上于50μl反应混合物中进行PCR。应用梯度PCR程序，退火温度为45-56℃。

进行琼脂糖凝胶电泳以检查PCR反应。从凝胶上切下的所需的条带并使用来自QIAGEN的QIAquick凝胶纯化试剂盒来纯化所述条带。按照生产商的说明书将纯化的PCR片段连接入pGEM-T Easy载体(Promega，Madison，WI)中。按照生产商的说明书利用SV小量制备试剂盒(Promega，Madison，WI)通过小量制备来抽提转化的DNA质粒。利用CEQ 2000测序仪(Beckman，Fullerton，CA)对包含插入片段的质粒DNA进行测序。通过上述方法克隆大约758nt的5’侧翼序列(SEQ ID NO：1的核苷酸1241-2009)。

C.结构基因的较长5′侧翼序列(SEQ ID NO：6；图5)的克隆

根据生产商的用户手册，使用BD基因组步移(genome walker)通用试剂盒(Clontech laboratories，Inc.，PaloAlto，CA)来克隆结构基因，D121-AA8另外的5′侧翼序列。在此将生产商的手册BD GenomeWalker August，2004并入作为参考。通过将样品在0.5％琼脂糖凝胶上进行电泳来测试烟草基因组DNA的大小和纯度。对烟草33文库基因组步移构建设立总共4次平端反应(DRA I，STU I，ECOR V，PVU II)。在被消化DNAs的纯化之后，将消化的基因组DNAs连接到基因组步移接头上。通过利用接头引物AP1和来自D121-AA8的基因特异性引物(CTCTATTGATACTAGCTGGTTTTGGAC；SEQ ID NO：19)对四种消化的DNAs进行初步PCR反应。将初步PCR产物直接用作模板进行嵌套PCR。在PCR反应中使用试剂盒提供的接头嵌套引物和来自已知克隆D121-AA8(SEQ ID NO：3)的嵌套引物(GGAGGGAGAGTATAACTTACGGATTC；SEQ ID NO：20)。通过进行凝胶电泳检测PCR产物。从凝胶上切下所需的条带，利用来自QIAGEN的QIAquick凝胶纯化试剂盒纯化PCR片段。根据生产商的说明书将纯化的PCR片段连接入pGEM-T Easy载体(Promega，Madison，WI)中。利用SV小量制备试剂盒(Promega，Madison，WI)并按照生产商的说明书通过小量制备抽提转化的DNA质粒。利用CEQ 2000测序仪(Beckman，Fullerton，CA)对包含插入片段的质粒DNA进行测序。通过上述方法克隆另一种大约853nt的5’侧翼序列，包括SEQ ID NO：1的核苷酸399-1240。

按照相同的方法进行第二轮的基因组步移，其中不同在于使用下列引物GWR1A(5′-AGTAACCGATTGCTCACGTTATCCTC-3′)(SEQ ID NO：21)和GWR2A(5′-CTCTATTCAACCCCACACGTAACTG-3′)(SEQ ID NO：22)。通过该方法克隆另外的约398nt的侧翼序列，包括SEQ ID NO：1的核苷酸1-398。

对调节元件的搜索揭示，除了“TATA”盒，“CAAT”盒，和“GAGA”盒之外，数种MYB-样识别位点和器官特异性元件存在于烟草烟碱脱甲基酶启动子区。使用相同的方法鉴定的推定导出(elicitor)反应性元件和氮调节的元件也出现在启动子区中。

D.结构基因的3′侧翼序列的克隆

按照生产商的使用手册，将BD基因组步移通用试剂盒(Clontechlaboratories，Inc.，PaloAlto，CA)用于克隆结构基因D121-AA8的3′侧翼序列。克隆的方法与本实施例前述部分C所述相同，除了所用的基因特异性引物之外。设计的第一条引物接近D121-AA8结构基因的末端(5′-CTAAAC TCT GGT CTG ATC CTG ATA CTT-3′)(SEQ ID NO：23)。进一步设计的嵌套引物在D121-AA8结构基因的引物1的下游(CTA TAC GTA AGGTAA ATC CTG TGG AAC)(SEQ ID NO：24)。通过凝胶电泳来检查最终PCR产物。从凝胶上切除需要的带。使用来自QIAGEN的QIAquick凝胶纯化试剂盒来纯化PCR片段。按照生产商的说明书，将纯化的PCR片段连接到pGEM-T Easy载体(Promega，Madison，WI)中。按照生产商的说明书，使用SV小量制备试剂盒(Promega，Madison，WI)通过小量制备来提取转化的DNA质粒。使用CEQ 2000测序仪(Beckman，Fullerton，CA)来对包含插入片段的质粒DNA进行测序。通过上述方法来克隆约1617个核苷酸的另外的3′侧翼序列(SEQ ID NO：1的核苷酸4731-6347)。将3′UTR区的核酸序列显示于图6中。

WO 03/078577，WO 2004/035745，PCT/US/2004/034218，和PCT/US/2004/034065和所有本文参考的其它参考文献、专利、专利申请出版物、和专利申请结合入本文作为参考，其程度如同这些参考文献、专利、专利申请出版物和专利申请的每一个被单独并入本文作为参考。

预期本领域那些技术人员在考虑本发明的前述详细的描述后，在本发明的实践上作出各种修改和改进。因此，意欲将这些修改和改进包括在下列权利要求的范围内。

序列表

<110>美国无烟烟草公司

<120>烟草烟碱脱甲基酶基因组克隆及其应用

<130>07678/141WO13

<150>11/xxx,xxx

<151>2005-04-19

<150>60/665,451

<151>2005-03-24

<150>60/665,097

<151>2005-03-24

<150>60/646,764

<151>2005-01-25

<150>60/607,357

<151>2004-09-03

<150>60/566,235

<151>2004-04-29

<150>10/934,944

<151>2004-09-03

<150>10/943,507

<151>2004-09-17

<150>PCT/US04/034218

<151>2004-10-15

<150>PCT/US04/034065

<151>2004-10-15

<160>29

<170>PatentIn version 3.3

<210>1

<211>6347

<212>DNA

<213>烟草(Nicotiana tabacum)

<400>1

tctctaaagt ccccttccac tttatcttag ctgtgtgatt tctttcagac aaccttattt 60

ttattcagac tcttatttgt attattctag aagctcgtgt acttgtgaca ccagttctgg 120

gatggtattt agatatcgct attattttgg cttattcact tcagttcaga ttttattcca 180

gttatttgat ttctttatta ttaatcaaat tgaattgtta aaaatggtta aaattactcc 240

aatgttggct ttcctagtaa gcgaaatatc aggcgccatc acggtacccg aaggtgagaa 300

tttcagatcg tgacagccgc atctcaaggg gtgtgatgta aacagtttac gatggtgcaa 360

gcattagtgg ctgcttcgac gacttaaatc cgtaacttat agatcacacg aatacaactt 420

tactatttta acacccagca aattcctgat aaaaacaatt ctaacatagc acatcaaaat 480

gtaaatgatt gaagaaaaag atgactttta tagacagaga aaaaaacagt tacgtgtggg 540

gttgaataga gattgtggct atgctatttc taatattgaa attcaccgac ttttttagtt 600

caatacgaaa agagtaagtg aaaaggtctg aaaaggaaaa ggacaatgcc taaaaggaca 660

cattcagaac acatacactg aatgattcta atttctagtc cgaagatttc tagttcgagg 720

ataacgtgag caatcggtta cttcccatta gcaattgcca actggatgtt tgactattta 780

tgtttctggc caatagagga gaggaatact acgttacgta tggagtttga acccttcaca 840

tcaacttatt aagtgagtta tccctcaatc acgattcaac tatgattccg ctaacttcaa 900

agaatattga gttaattatt caaatgatta gtccaaaatt atttaataaa gttatactat 960

ttcttttatt tgtaacatac atcttttgtt tacatattta gttaaatctt agcccaaccc 1020

tatcgttggt tcgacttttt ttcttttaat tttgatttat tctgttcggt aatttcgctt 1080

tgtttggctt gaataataac tagtgcataa agtcatatac tctaatattt ttaattgaag 1140

tactcacaaa tacaaaaata aaaaacattc taagctcaca tgatagttga caaaatcttt 1200

atccaaaaca agaggcggag ccaggatttg aaacttatgg gttcagaatt ctaaatctct 1260

taagttacta ggttctaaat taataattta tacatgttca atgaatttct taagacaaat 1320

acatagtttg aacgaaagct actgggttcg gccgaatccg taagttatac tctccctccg 1380

ccccggtcca aaaccagcta gtatcaatag agagagagag agagagagag agataataaa 1440

tttgaccatt gacaatggct tattacttgc ttagagttaa ttggtgaact tagagaatat 1500

aataaggaat atttaaacag atacgtcatc aatccacgag taacgaagta agaaataccc 1560

taaaatcgta gaaacattac gttaaattgc ttgacagcct atctagtaag agtcaaaatc 1620

tactatctat cttgttccgc cattttctta aagaagtaca tgagctttat catccacctc 1680

aacatgaatg caaaagaaaa ttattgtgca acttaatatg ttataatcaa tgatatgtgt 1740

cttgtgtaac aaagtatata tttcgatacg atattaatat gtaggtgtta tatttttaaa 1800

tatcaaatat catacttaac accgattttt taaaaactta ggccaattac cctaccaact 1860

aaaatactgt atatcaaaca ctaatgtttt ctatttcggt acgacagttc tctatttacc 1920

atattatgga attatgccca tcctacagtt acctataaaa aggaagttgc cgatagttat 1980

attctcaact tcttatctaa aaatccataa tgctttctcc catagaagcc attgtaggac 2040

tagtaacctt cacatttctc ttcttcttcc tatggacaaa aaaatctcaa aaaccttcaa 2100

aacccttacc accgaaaatc cccggaggat ggccggtaat cggccatctt ttccacttca 2160

atgacgacgg cgacgaccgt ccattagctc gaaaactcgg agacttagct gacaaatacg 2220

gccccgtttt cacttttcgg ctaggccttc cccttgtctt agttgtaagc agttacgaag 2280

ctgtaaaaga ctgtttctct acaaatgacg ccattttttc caatcgtcca gcttttcttt 2340

acggcgatta ccttggctac aataatgcca tgctattttt ggccaattac ggaccttact 2400

ggcgaaaaaa tcgaaaatta gttattcagg aagttctctc cgctagtcgt ctcgaaaaat 2460

tcaaacacgt gagatttgca agaattcaag cgagcattaa gaatttatat actcgaattg 2520

atggaaattc gagtacgata aatttaactg attggttaga agaattgaat tttggtctga 2580

tcgtgaagat gatcgctgga aaaaattatg aatccggtaa aggagatgaa caagtggaga 2640

gatttaagaa agcgtttaag gattttatga ttttatcaat ggagtttgtg ttatgggatg 2700

catttccaat tccattattt aaatgggtgg attttcaagg gcatgttaag gctatgaaaa 2760

ggacttttaa agatatagat tctgtttttc agaattggtt agaggaacat attaataaaa 2820

gagaaaaaat ggaggttaat gcagaaggga atgaacaaga tttcattgat gtggtgcttt 2880

caaaaatgag taatgaatat cttggtgaag gttactctcg tgatactgtc attaaagcaa 2940

cggtgtttgt aagttcatct gtcatttttc atttattcac ttttattttg aggagcagac 3000

atgttaataa taatttggag caactgtaaa gttatctatg tgtacaggtt cgagcctcag 3060

gtgcaaccac taatgcttgt attagattat gttgtctgca tcatacccct aattggagtg 3120

tggctcttcc cgaaccctgc aatgctggat gctggatgct ttatgtatca gactgacctt 3180

tttgttaaac tatctaaata ctaaggatga tttaataaaa atatagaatg gtaaacagaa 3240

aaagatgaga ttatttttgg ggctatatgg attcgcccgg gctttgggag gtaaaacggt 3300

atctaccagt tgagacttta ctccagaact ttatctcgag agctctgaat aaaaatgaaa 3360

tagtatttac cactccaaaa tctttgatgg taaaaagatg agatataacc tcttataatt 3420

gattgaacca cgttgataga ataaaacttc tttactccca ttcagcataa gaaaaatgaa 3480

accaaacgga attcttctct tttttagggg gaaattcctt aattgcttgt tgaatataga 3540

ttcatgtcgt tattctattt ttaataatga tgaaaatcaa tatagtcaaa gttaatactt 3600

atgtcatttg gtttgcggac aagttatatt ggaactatat aatacgtcta ttatagaata 3660

gtgattattt agaggatata catttttttt ggataaatat ttgatttatt ggattaaaaa 3720

tagaatatac aggtaaggtc taaaacgtgt gtttgctttt acactaaata aacttgacct 3780

cgtacaattc taagaaaata tttgaaataa atgaattatt ttattgttaa tcaattaaaa 3840

aaatcatagt atagatgaga tgtgtgcata cttgacaata actatactaa ctaaaacaag 3900

gtatgtgaat aattgatatt ccttttttaa ttattctttt ttccagagtt tggtcttgga 3960

tgcagcagac acagttgctc ttcacataaa ttggggaatg gcattattga taaacaatca 4020

aaaggccttg acgaaagcac aagaagagat agacacaaaa gttggtaagg acagatgggt 4080

agaagagagt gatattaagg atttggtata cctccaagct attgttaaag aagtgttacg 4140

attatatcca ccaggacctt tgttagtacc acacgaaaat gtagaagatt gtgttgttag 4200

tggatatcac attcctaaag ggacaagatt attcgcaaac gtcatgaaac tgcaacgtga 4260

tcctaaactc tggtctgatc ctgatacttt cgatccagag agattcattg ctactgatat 4320

tgactttcgt ggtcagtact ataagtatat cccgtttggt tctggaagac gatcttgtcc 4380

agggatgact tatgcattgc aagtggaaca cttaacaatg gcacatttga tccaaggttt 4440

caattacaga actccaaatg acgagccctt ggatatgaag gaaggtgcag gcataactat 4500

acgtaaggta aatcctgtgg aactgataat agcgcctcgc ctggcacctg agctttatta 4560

aaacctaaga tctttcatct tggttgatca ttgtataata ctcctaaatg gatattcatt 4620

taccttttat caattaattg tcagtacgag tttttctaat ttggtacatt tgtaataata 4680

agtaaagaat aattgtgcta atatataaag gtttgtagaa gataattgac tggttgtacc 4740

acaatctcca gtgaaagtgt taattattta cttgatccac agcttattct atgtttgaaa 4800

tttgcctagt gtcatgatat tactccatca aattcaagaa ataatcattt ccaacttttg 4860

ctggactgga cgatctttca ataataaagg atctttaatt tgccaaagtt gagatcaaaa 4920

tactggtcgc tttaccaata agaatgaaat gtgatggaaa ttatgtacgt tgggataagg 4980

gaacacaact atcaaggaga ctaaaaggta cgtaaaggaa aagaaaaaat ttgccattga 5040

ttgctactaa gtaacctaac aaaatctttc agaaaagaat cacttgtata agtcggggtt 5100

gaaagttttg gtgtctcttt tcttatgtat tgttgtcttt agacagtatt gtacttagtt 5160

atttcagaat tttattttcg tattagagct caagactctg tatttattag ttctgggaga 5220

attatcatgt attttcagtc ttttgttatt tctgtaaatt ccgctatttt ggttctttat 5280

tgctatgttc ggctttccta gaaaatgtgt taggcgctat cacgactgat tgagattttg 5340

tatcgtgact gataattaca cggtttagta aattttgata ttttcaaaaa gagttttttt 5400

aataaaatat gcaacttcag tcaaaacata caacgttttg ttgtataaat ccgatcaaaa 5460

catataactt acataaaact tgcgtatgaa ttttttgttg tataaacatt tggttaaaac 5520

atataactta catataattt gcatacaact tacataaaac ttgcatataa acaatttatt 5580

tatgtctttg tttttgagta tcaatttgaa attccaacaa aaacaaactc taatttttac 5640

caaactctct caaaattgag ttatagattt caaaagatat ccttaatcgt ttgcaattgt 5700

aacaatccga tcggccgttt tgagatctag cgtgttgttt ggcggtttga gaccttgagt 5760

aacttcactt tatgttgtat gacttgtata tgtggtcgga attaaatttc gggaagttca 5820

gagttgattc ggatgaaaaa ttctaatttc ggaagtttta agatggaatg attgactaag 5880

gattgacgtt tgagtaaacg atctcggaat cgagatttga aggttccaat aggttcgtat 5940

gatgatttca gacttgagcg tatgtttggg ttgagtatcg ggtggtccgg gagcatttca 6000

acgctgatta tagaaaattg gcatcttaaa ggttttagaa tttcataagt ttggtttgaa 6060

gtggattttg atattatcgg tgtccatttg gagtttcgag ccttggaata ggttcgtatc 6120

gtaaattttg actttagtgt aaagttcggc gtcattccgg agtgttttga taagattctg 6180

atgcgttcgt cgaagtttgg aagtttgaaa gttgaaaaga agatttttaa taggcgattc 6240

atgattttga tgttatttgt gtcgagcctt tggataagtt tgtgtgaggt atgggacttg 6300

ttggtatgaa tggacgagct ctacgggggc ctcgagtaag tttcgga 6347

<210>2

<211>517

<212>PRT

<213>烟草(Nicotiana tabacum)

<400>2

Met Leu Ser Pro Ile Glu Ala Ile Val Gly Leu Val Thr Phe Thr Phe

1 5 10 15

Leu Phe Phe Phe Leu Trp Thr Lys Lys Ser Gln Lys Pro Ser Lys Pro

20 25 30

Leu Pro Pro LysIle Pro Gly Gly Trp Pro Val Ile Gly His Leu Phe

35 40 45

His Phe Asn Asp Asp Gly Asp Asp Arg Pro Leu Ala Arg Lys Leu Gly

50 55 60

Asp Leu Ala Asp Lys Tyr Gly Pro Val Phe Thr Phe Arg Leu Gly Leu

65 70 75 80

Pro Leu Val Leu Val Val Ser Ser Tyr Glu Ala Val Lys Asp Cys Phe

85 90 95

Ser Thr Asn Asp Ala Ile Phe Ser Asn Arg Pro Ala Phe Leu Tyr Gly

100 105 110

Asp Tyr Leu Gly Tyr Asn Asn Ala Met Leu Phe Leu Ala Asn Tyr Gly

151 201 25

Pro Tyr Trp Arg Lys Asn Arg Lys Leu Val Ile Gln Glu Val Leu Ser

130 135 140

Ala Ser Arg Leu Glu Lys Phe Lys His Val Arg Phe Ala Arg Ile Gln

145 150 155 160

Ala Ser Ile Lys Asn Leu Tyr Thr Arg Ile Asp Gly Asn Ser Ser Thr

165 170 175

Ile Asn Leu Thr Asp Trp Leu Glu Glu Leu Asn Phe Gly Leu Ile Val

180 185 190

Lys Met Ile Ala Gly Lys Asn Tyr Glu Ser Gly Lys Gly Asp Glu Gln

195 200 205

Val Glu Arg Phe Lys Lys Ala Phe Lys Asp Phe Met Ile Leu Ser Met

210 215 220

Glu Phe Val Leu Trp Asp Ala Phe Pro Ile Pro Leu Phe Lys Trp Val

225 230 235 240

Asp Phe Gln Gly His Val Lys Ala Met Lys Arg Thr Phe Lys Asp Ile

245 250 255

Asp Ser Val Phe Gln Asn Trp Leu Glu Glu His Ile Asn Lys Arg Glu

260 265 270

Lys Met Glu Val Asn Ala Glu Gly Asn Glu Gln Asp Phe Ile Asp Val

275 280 285

Val Leu Ser Lys Met Ser Asn Glu Tyr Leu Gly Glu Gly Tyr Ser Arg

290 295 300

Asp Thr Val Ile Lys Ala Thr Val Phe Ser Leu Val Leu Asp Ala Ala

305 310 315 320

Asp Thr Val Ala Leu His Ile Asn Trp Gly Met Ala Leu Leu Ile Asn

325 330 335

Asn Gln Lys Ala Leu Thr Lys Ala Gln Glu Glu Ile Asp Thr Lys Val

340 345 350

Gly Lys Asp Arg Trp Val Glu Glu Ser Asp Ile Lys Asp Leu Val Tyr

355 360 365

Leu Gln Ala Ile Val Lys Glu Val Leu Arg Leu Tyr Pro Pro Gly Pro

370 375 380

Leu Leu Val Pro His Glu Asn Val Glu Asp Cys Val Val Ser Gly Tyr

385 390 395 400

His Ile Pro Lys Gly Thr Arg Leu Phe Ala Asn Val Met Lys Leu Gln

405 410 415

Arg Asp Pro Lys Leu Trp Ser Asp Pro Asp Thr Phe Asp Pro Glu Arg

420 425 430

Phe Ile Ala Thr Asp Ile Asp Phe Arg Gly Gln Tyr Tyr Lys Tyr Ile

435 440 445

Pro Phe Gly Ser Gly Arg Arg Ser Cys Pro Gly Met Thr Tyr Ala Leu

450 455 460

Gln Val Glu His Leu Thr Met Ala His Leu Ile Gln Gly Phe Asn Tyr

465 470 475 480

Arg Thr Pro Asn Asp Glu Pro Leu Asp Met Lys Glu Gly Ala Gly Ile

485 490 495

Thr Ile Arg Lys Val Asn Pro Val Glu Leu Ile Ile Ala Pro Arg Leu

500 505 510

Ala Pro Glu Leu Tyr

515

<210>3

<211>1554

<212>DNA

<213>烟碱脱甲基酶基因编码序列

<400>3

atgctttctc ccatagaagc cattgtagga ctagtaacct tcacatttct cttcttcttc 60

ctatggacaa aaaaatctca aaaaccttca aaacccttac caccgaaaat ccccggagga 120

tggccggtaa tcggccatct tttccacttc aatgacgacg gcgacgaccg tccattagct 180

cgaaaactcg gagacttagc tgacaaatac ggccccgttt tcacttttcg gctaggcctt 240

ccccttgtct tagttgtaag cagttacgaa gctgtaaaag actgtttctc tacaaatgac 300

gccatttttt ccaatcgtcc agcttttctt tacggcgatt accttggcta caataatgcc 360

atgctatttt tggccaatta cggaccttac tggcgaaaaa atcgaaaatt agttattcag 420

gaagttctct ccgctagtcg tctcgaaaaa ttcaaacacg tgagatttgc aagaattcaa 480

gcgagcatta agaatttata tactcgaatt gatggaaatt cgagtacgat aaatttaact 540

gattggttag aagaattgaa ttttggtctg atcgtgaaga tgatcgctgg aaaaaattat 600

gaatccggta aaggagatga acaagtggag agatttaaga aagcgtttaa ggattttatg 660

attttatcaa tggagtttgt gttatgggat gcatttccaa ttccattatt taaatgggtg 720

gattttcaag ggcatgttaa ggctatgaaa aggactttta aagatataga ttctgttttt 780

cagaattggt tagaggaaca tattaataaa agagaaaaaa tggaggttaa tgcagaaggg 840

aatgaacaag atttcattga tgtggtgctt tcaaaaatga gtaatgaata tcttggtgaa 900

ggttactctc gtgatactgt cattaaagca acggtgttta gtttggtctt ggatgcagca 960

gacacagttg ctcttcacat aaattgggga atggcattat tgataaacaa tcaaaaggcc 1020

ttgacgaaag cacaagaaga gatagacaca aaagttggta aggacagatg ggtagaagag 1080

agtgatatta aggatttggt atacctccaa gctattgtta aagaagtgtt acgattatat 1140

ccaccaggac ctttgttagt accacacgaa aatgtagaag attgtgttgt tagtggatat 1200

cacattccta aagggacaag attattcgca aacgtcatga aactgcaacg tgatcctaaa 1260

ctctggtctg atcctgatac tttcgatcca gagagattca ttgctactga tattgacttt 1320

cgtggtcagt actataagta tatcccgttt ggttctggaa gacgatcttg tccagggatg 1380

acttatgcat tgcaagtgga acacttaaca atggcacatt tgatccaagg tttcaattac 1440

agaactccaa atgacgagcc cttggatatg aaggaaggtg caggcataac tatacgtaag 1500

gtaaatcctg tggaactgat aatagcgcct cgcctggcac ctgagcttta ttaa 1554

<210>4

<211>517

<212>PRT

<213>烟草烟碱脱甲基酶基因

<400>4

Met Leu Ser Pro Ile Glu Ala Ile Val Gly Leu Val Thr Phe Thr Phe

1 5 10 15

Leu Phe Phe Phe Leu Trp Thr Lys Lys Ser Gln Lys Pro Ser Lys Pro

20 25 30

Leu Pro Pro Lys Ile Pro Gly Gly Trp Pro Val Ile Gly His Leu Phe

35 40 45

His Phe Asn Asp Asp Gly Asp Asp Arg Pro Leu Ala Arg Lys Leu Gly

50 55 60

Asp Leu Ala Asp Lys Tyr Gly Pro Val Phe Thr Phe Arg Leu Gly Leu

65 70 75 80

Pro Leu Val Leu Val Val Ser Ser Tyr Glu Ala Val Lys Asp Cys Phe

85 90 95

Ser Thr Asn Asp Ala Ile Phe Ser Asn Arg Pro Ala Phe Leu Tyr Gly

100 105 110

Asp Tyr Leu Gly Tyr Asn Asn Ala Met Leu Phe Leu Ala Asn Tyr Gly

115 120 125

Pro Tyr Trp Arg Lys Asn Arg Lys Leu Val Ile Gln Glu Val Leu Ser

130 135 140

Ala Ser Arg Leu Glu Lys Phe Lys His Val Arg Phe Ala Arg Ile Gln

145 150 155 160

Ala Ser Ile Lys Asn Leu Tyr Thr Arg Ile Asp Gly Asn Ser Ser Thr

165 170 175

Ile Asn Leu Thr Asp Trp Leu Glu Glu Leu Asn Phe Gly Leu Ile Val

180 185 190

Lys Met Ile Ala Gly Lys Asn Tyr Glu Ser Gly Lys Gly Asp Glu Gln

195 200 205

Val Glu Arg Phe Lys Lys Ala Phe Lys Asp Phe Met Ile Leu Ser Met

210 215 220

Glu Phe Val Leu Trp Asp Ala Phe Pro Ile Pro Leu Phe Lys Trp Val

225 230 235 240

Asp Phe Gln Gly His Val Lys Ala Met Lys Arg Thr Phe Lys Asp Ile

245 250 255

Asp Ser Val Phe Gln Asn Trp Leu Glu Glu His Ile Asn Lys Arg Glu

260 265 270

Lys Met Glu Val Asn Ala Glu Gly Asn Glu Gln Asp Phe Ile Asp Val

275 280 285

Val Leu Ser Lys Met Ser Asn Glu Tyr Leu Gly Glu Gly Tyr Ser Arg

290 295 300

Asp Thr Val Ile Lys Ala Thr Val Phe Ser Leu Val Leu Asp Ala Ala

305 310 315 320

Asp Thr Val Ala Leu His Ile Asn Trp Gly Met Ala Leu Leu Ile Asn

325 330 335

Asn Gln Lys Ala Leu Thr Lys Ala Gln Glu Glu Ile Asp Thr Lys Val

340 345 350

Gly Lys Asp Arg Trp Val Glu Glu Ser Asp Ile Lys Asp Leu Val Tyr

355 360 365

Leu Gln Ala Ile Val Lys Glu Val Leu Arg Leu Tyr Pro Pro Gly Pro

370 375 380

Leu Leu Val Pro His Glu Asn Val Glu Asp Cys Val Val Ser Gly Tyr

385 390 395 400

His Ile Pro Lys Gly Thr Arg Leu Phe Ala Asn Val Met Lys Leu Gln

405 410 415

Arg Asp Pro Lys Leu Trp Ser Asp Pro Asp Thr Phe Asp Pro Glu Arg

420 425 430

Phe Ile Ala Thr Asp Ile Asp Phe Arg Gly Gln Tyr Tyr Lys Tyr Ile

435 440 445

Pro Phe Gly Ser Gly Arg Arg Ser Cys Pro Gly Met Thr Tyr Ala Leu

450 455 460

Gln Val Glu His Leu Thr Met Ala His Leu Ile Gln Gly Phe Asn Tyr

465 470 475 480

Arg Thr Pro Asn Asp Glu Pro Leu Asp Met Lys Glu Gly Ala Gly Ile

485 490 495

Thr Ile Arg Lys Val Asn Pro Val Glu Leu Ile Ile Ala Pro Arg Leu

500 505 510

Ala Pro Glu Leu Tyr

515

<210>5

<211>998

<212>DNA

<213>烟草烟碱脱甲基酶基因内含子

<400>5

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aataatttgg agcaactgta aagttatcta tgtgtacagg ttcgagcctc aggtgcaacc 120

actaatgctt gtattagatt atgttgtctg catcataccc ctaattggag tgtggctctt 180

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actatctaaa tactaaggat gatttaataa aaatatagaa tggtaaacag aaaaagatga 300

gattattttt ggggctatat ggattcgccc gggctttggg aggtaaaacg gtatctacca 360

gttgagactt tactccagaa ctttatctcg agagctctga ataaaaatga aatagtattt 420

accactccaa aatctttgat ggtaaaaaga tgagatataa cctcttataa ttgattgaac 480

cacgttgata gaataaaact tctttactcc cattcagcat aagaaaaatg aaaccaaacg 540

gaattcttct cttttttagg gggaaattcc ttaattgctt gttgaatata gattcatgtc 600

gttattctat ttttaataat gatgaaaatc aatatagtca aagttaatac ttatgtcatt 660

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ttagaggata tacatttttt ttggataaat atttgattta ttggattaaa aatagaatat 780

acaggtaagg tctaaaacgt gtgtttgctt ttacactaaa taaacttgac ctcgtacaat 840

tctaagaaaa tatttgaaat aaatgaatta ttttattgtt aatcaattaa aaaaatcata 900

gtatagatga gatgtgtgca tacttgacaa taactatact aactaaaaca aggtatgtga 960

ataattgata ttcctttttt aattattctt ttttccag 998

<210>6

<211>2009

<212>DNA

<213>烟草烟碱脱甲基酶基因启动子

<400>6

tctctaaagt ccccttccac tttatcttag ctgtgtgatt tctttcagac aaccttattt 60

ttattcagac tcttatttgt attattctag aagctcgtgt acttgtgaca ccagttctgg 120

gatggtattt agatatcgct attattttgg cttattcact tcagttcaga ttttattcca 180

gttatttgat ttctttatta ttaatcaaat tgaattgtta aaaatggtta aaattactcc 240

aatgttggct ttcctagtaa gcgaaatatc aggcgccatc acggtacccg aaggtgagaa 300

tttcagatcg tgacagccgc atctcaaggg gtgtgatgta aacagtttac gatggtgcaa 360

gcattagtgg ctgcttcgac gacttaaatc cgtaacttat agatcacacg aatacaactt 420

tactatttta acacccagca aattcctgat aaaaacaatt ctaacatagc acatcaaaat 480

gtaaatgatt gaagaaaaag atgactttta tagacagaga aaaaaacagt tacgtgtggg 540

gttgaataga gattgtggct atgctatttc taatattgaa attcaccgac ttttttagtt 600

caatacgaaa agagtaagtg aaaaggtctg aaaaggaaaa ggacaatgcc taaaaggaca 660

cattcagaac acatacactg aatgattcta atttctagtc cgaagatttc tagttcgagg 720

ataacgtgag caatcggtta cttcccatta gcaattgcca actggatgtt tgactattta 780

tgtttctggc caatagagga gaggaatact acgttacgta tggagtttga acccttcaca 840

tcaacttatt aagtgagtta tccctcaatc acgattcaac tatgattccg ctaacttcaa 900

agaatattga gttaattatt caaatgatta gtccaaaatt atttaataaa gttatactat 960

ttcttttatt tgtaacatac atcttttgtt tacatattta gttaaatctt agcccaaccc 1020

tatcgttggt tcgacttttt ttcttttaat tttgatttat tctgttcggt aatttcgctt 1080

tgtttggctt gaataataac tagtgcataa agtcatatac tctaatattt ttaattgaag 1140

tactcacaaa tacaaaaata aaaaacattc taagctcaca tgatagttga caaaatcttt 1200

atccaaaaca agaggcggag ccaggatttg aaacttatgg gttcagaatt ctaaatctct 1260

taagttacta ggttctaaat taataattta tacatgttca atgaatttct taagacaaat 1320

acatagtttg aacgaaagct actgggttcg gccgaatccg taagttatac tctccctccg 1380

ccccggtcca aaaccagcta gtatcaatag agagagagag agagagagag agataataaa 1440

tttgaccatt gacaatggct tattacttgc ttagagttaa ttggtgaact tagagaatat 1500

aataaggaat atttaaacag atacgtcatc aatccacgag taacgaagta agaaataccc 1560

taaaatcgta gaaacattac gttaaattgc ttgacagcct atctagtaag agtcaaaatc 1620

tactatctat cttgttccgc cattttctta aagaagtaca tgagctttat catccacctc 1680

aacatgaatg caaaagaaaa ttattgtgca acttaatatg ttataatcaa tgatatgtgt 1740

cttgtgtaac aaagtatata tttcgatacg atattaatat gtaggtgtta tatttttaaa 1800

tatcaaatat catacttaac accgattttt taaaaactta ggccaattac cctaccaact 1860

aaaatactgt atatcaaaca ctaatgtttt ctatttcggt acgacagttc tctatttacc 1920

atattatgga attatgccca tcctacagtt acctataaaa aggaagttgc cgatagttat 1980

attctcaact tcttatctaa aaatccata 2009

<210>7

<211>1786

<212>DNA

<213>烟草烟碱脱甲基酶基因3′UTR

<400>7

aacctaagat ctttcatctt ggttgatcat tgtataatac tcctaaatgg atattcattt 60

accttttatc aattaattgt cagtacgagt ttttctaatt tggtacattt gtaataataa 120

gtaaagaata attgtgctaa tatataaagg tttgtagaag ataattgact ggttgtacca 180

caatctccag tgaaagtgtt aattatttac ttgatccaca gcttattcta tgtttgaaat 240

ttgcctagtg tcatgatatt actccatcaa attcaagaaa taatcatttc caacttttgc 300

tggactggac gatctttcaa taataaagga tctttaattt gccaaagttg agatcaaaat 360

actggtcgct ttaccaataa gaatgaaatg tgatggaaat tatgtacgtt gggataaggg 420

aacacaacta tcaaggagac taaaaggtac gtaaaggaaa agaaaaaatt tgccattgat 480

tgctactaag taacctaaca aaatctttca gaaaagaatc acttgtataa gtcggggttg 540

aaagttttgg tgtctctttt cttatgtatt gttgtcttta gacagtattg tacttagtta 600

tttcagaatt ttattttcgt attagagctc aagactctgt atttattagt tctgggagaa 660

ttatcatgta ttttcagtct tttgttattt ctgtaaattc cgctattttg gttctttatt 720

gctatgttcg gctttcctag aaaatgtgtt aggcgctatc acgactgatt gagattttgt 780

atcgtgactg ataattacac ggtttagtaa attttgatat tttcaaaaag agttttttta 840

ataaaatatg caacttcagt caaaacatac aacgttttgt tgtataaatc cgatcaaaac 900

atataactta cataaaactt gcgtatgaat tttttgttgt ataaacattt ggttaaaaca 960

tataacttac atataatttg catacaactt acataaaact tgcatataaa caatttattt 1020

atgtctttgt ttttgagtat caatttgaaa ttccaacaaa aacaaactct aatttttacc 1080

aaactctctc aaaattgagt tatagatttc aaaagatatc cttaatcgtt tgcaattgta 1140

acaatccgat cggccgtttt gagatctagc gtgttgtttg gcggtttgag accttgagta 1200

acttcacttt atgttgtatg acttgtatat gtggtcggaa ttaaatttcg ggaagttcag 1260

agttgattcg gatgaaaaat tctaatttcg gaagttttaa gatggaatga ttgactaagg 1320

attgacgttt gagtaaacga tctcggaatc gagatttgaa ggttccaata ggttcgtatg 1380

atgatttcag acttgagcgt atgtttgggt tgagtatcgg gtggtccggg agcatttcaa 1440

cgctgattat agaaaattgg catcttaaag gttttagaat ttcataagtt tggtttgaag 1500

tggattttga tattatcggt gtccatttgg agtttcgagc cttggaatag gttcgtatcg 1560

taaattttga ctttagtgta aagttcggcg tcattccgga gtgttttgat aagattctga 1620

tgcgttcgtc gaagtttgga agtttgaaag ttgaaaagaa gatttttaat aggcgattca 1680

tgattttgat gttatttgtg tcgagccttt ggataagttt gtgtgaggta tgggacttgt 1740

tggtatgaat ggacgagctc tacgggggcc tcgagtaagt ttcgga 1786

<210>8

<211>21

<212>PRT

<213>人工序列

<220>

<223>合成的肽

<400>8

Asp Ile Asp Gly Ser Lys Ser Lys Leu Val Lys Ala His Arg Lys Ile

1 5 10 15

Asp Glu Ile Leu Gly

20

<210>9

<211>20

<212>PRT

<213>人工序列

<220>

<223>合成的肽

<400>9

Arg Asp Ala Phe Arg Glu Lys Glu Thr Phe Asp Glu Asn Asp Val Glu

1 5 10 15

Glu Leu Asn Tyr

20

<210>10

<211>22

<212>PRT

<213>人工序列

<220>

<223>合成的肽

<400>10

Phe Lys Asn Asn Gly Asp Glu Asp Arg His Phe Ser Gln Lys Leu Gly

1 5 10 15

Asp Leu Ala Asp Lys Tyr

20

<210>11

<211>6

<212>PRT

<213>人工序列

<220>

<223>共有序列保守的p450基序

<220>

<221>MISC_FEATURE

<222>(2)..(2)

<223>Xaa＝任何氨基酸

<400>11

Phe Xaa Pro Glu Arg Phe

1 5

<210>12

<211>7

<212>PRT

<213>人工序列

<220>

<223>共有序列保守的p450基序

<220>

<221>MISC_FEATURE

<222>(4)..(4)

<223>Xaa＝任何氨基酸

<220>

<221>MISC_FEATURE

<222>(7)..(7)

<223>Xaa＝Al a或Gly

<400>12

Gly Arg Arg Xaa Cys Pro Xaa

1 5

<210>13

<211>7

<212>PRT

<213>人工序列

<220>

<223>共有序列保守的p450基序

<220>

<221>MISC_FEATURE

<222>(2)..(2)

<223>Xaa＝任何氨基酸

<220>

<221>MISC_FEATURE

<222>(4)..(4)

<223>Xaa＝任何氨基酸

<220>

<221>MISC_FEATURE

<222>(7)..(7)

<223>Xaa＝Ala或Gly

<400>13

Gly Xaa Arg Xaa Cys Pro Xaa

1 5

<210>14

<211>7

<212>PRT

<213>人工序列

<220>

<223>共有序列保守的p450基序

<220>

<221>MISC_FEATURE

<222>(1)..(1)

<223>Xaa＝Glu或Lys

<220>

<221>MISC_FEATURE

<222>(2)..(3)

<223>Xaa＝任何氨基酸

<220>

<221>MISC_FEATURE

<222>(5)..(6)

<223>Xaa＝任何氨基酸

<220>

<221>MISC_FEATURE

<222>(7)..(7)

<223>Xaa＝Pro，Thr，Ser，或，Met

<400>14

Xaa Xaa Xaa Arg Xaa Xaa Xaa

1 5

<210>15

<211>6

<212>PRT

<213>人工序列

<220>

<223>共有序列保守的p450基序

<220>

<221>MISC_FEATURE

<222>(2)..(2)

<223>Xaa＝任何氨基酸

<220>

<221>MISC_FEATURE

<222>(5)..(5)

<223>Xaa＝任何氨基酸

<400>15

Pro Xaa Arg Phe Xaa Phe

1 5

<210>16

<211>5

<212>pRT

<213>人工序列

<220>

<223>共有序列保守的p450基序

<220>

<221>MISC_FEATURE

<222>(2)..(2)

<223>Xaa＝任何氨基酸

<220>

<221>MISC_FEATURE

<222>(4)..(4)

<223>Xaa＝任何氨基酸

<400>16

Gly Xaa Arg Xaa Cys

1 5

<210>17

<211>36

<212>DNA

<213>人工序列

<220>

<223>引物

<400>17

ggctctagat aaatctctta agttactagg ttctaa 36

<210>18

<211>44

<212>DNA

<213>人工序列

<220>

<223>引物

<400>18

ggctctagaa gtcaattatc ttctacaaac ctttatatat tagc 44

<210>19

<211>27

<212>DNA

<213>人工序列

<220>

<223>引物

<400>19

ctctattgat actagctggt tttggac 27

<210>20

<211>26

<212>DNA

<213>人工序列

<220>

<223>引物

<400>20

ggagggagag tataacttac ggattc 26

<210>21

<211>26

<212>DNA

<213>人工序列

<220>

<223>引物

<400>21

agtaaccgat tgctcacgttatcctc 26

<210>22

<211>25

<212>DNA

<213>人工序列

<220>

<223>引物

<400>22

ctctattcaa ccccacacgt aactg 25

<210>23

<211>27

<212>DNA

<213>人工序列

<220>

<223>引物

<400>23

ctaaactctg gtctgatcctgatactt 27

<210>24

<211>27

<212>DNA

<213>人工序列

<220>

<223>引物

<400>24

ctatacgtaa ggtaaatcct gtggaac 27

<210>25

<211>18

<212>DNA

<213>人工序列

<220>

<223>引物

<400>25

tctctaaagtccccttcc 18

<210>26

<211>18

<212>DNA

<213>人工序列

<220>

<223>引物

<400>26

ccagcattcd tcaatttc 18

<210>27

<211>36

<212>DNA

<2l3>人工序列

<220>

<223>引物

<400>27

tagctacgcg gatccatgct ttctcccata gaagcc 36

<210>28

<211>64

<212>DNA

<213>人工序列

<220>

<223>引物

<400>28

ctggatcaca attgttagtg atggtgatgg tgatgcgatc ctctataaag ctcaggtgcc 60

aggc 64

<210>29

<211>7

<212>PRT

<213>人工序列

<220>

<223>保守的p450基序的共有序列

<220>

<221>MISC_FEATURE

<222>(2)..(2)

<223>Xaa＝任何氨基酸

<220>

<221>MISC_FEATURE

<222>(4)..(4)

<223>Xaa＝任何氨基酸

<220>

<221>MISC_FEATURE

<222>(6)..(6)

<223>Xaa＝任何氨基酸

<220>

<221>MISC_FEATURE

<222>(7)..(7)

<223>Xaa＝Gly或Ala

<400>29

Gly Xaa Arg Xaa Cys Xaa Xaa

1 5

Claims

1.一种由下述组成的分离DNA：(a)SEQ ID NO：1，(b)与SEQ ID NO：5，SEQ ID NO：6，或SEQ ID NO：7的200个连续碱基对相同的200个连续的碱基对，或(c)SEQ ID NO：5，SEQ ID NO：6，或SEQ ID NO：7的20个连续的碱基对。

2.由SEQ ID NO：6组成的分离的DNA。

3.权利要求2的分离的DNA，其与异源核酸可操纵地连接。

4.由SEQ ID NO：5组成的分离的DNA。

5.权利要求4的分离的DNA，其与异源核酸序列可操纵地连接。

6.由SEQ ID NO：7组成的分离的DNA。

7.权利要求6的分离的DNA，其与异源核酸序列可操纵地连接。

8.一种烟草植物的细胞，其具有由SEQ ID NO：1的编码的烟碱脱甲基酶的减少的表达或改变的酶活性，其中所述减少的表达或改变的酶活性减少所述植物中的去甲烟碱或N’-亚硝基去甲烟碱的水平。

9.权利要求8的烟草植物细胞，其中所述烟碱脱甲基酶包含SEQ ID NO：2的氨基酸序列。

10.权利要求8的烟草植物细胞，其中所述植物是转基因植物。

11.权利要求10的烟草植物细胞，其中所述转基因植物包含转基因，当所述转基因在所述转基因植物中表达时，使内源烟草烟碱脱甲基酶的基因表达沉默。

12.权利要求10的烟草植物细胞，其中所述转基因植物包含表达烟草烟碱脱甲基酶的反义分子的转基因。

13.权利要求10的烟草植物细胞，其中所述转基因植物包含编码烟草烟碱脱甲基酶的双链RNA分子的转基因。

14.权利要求10的烟草植物细胞，其中所述转基因植物包含转基因，当所述转基因在所述转基因植物中表达时，共抑制烟草烟碱脱甲基酶的表达。

15.权利要求10的烟草植物细胞，其中所述转基因植物包含编码显性负调控基因产物的转基因。

16.权利要求15的烟草植物细胞，其中所述显性负调控基因产物包含编码SEQ ID NO：2的氨基酸序列的突变形式的基因。

17.权利要求16的烟草植物细胞，其中所述植物包含编码SEQ ID NO：2的氨基酸序列的基因中的点突变。

18.权利要求10的烟草植物细胞，其中所述植物包含在编码烟草烟碱脱甲基酶的基因中的缺失。

19.源于具有权利要求8的烟草植物细胞的烟草之叶或茎。

20.权利要求19的叶或茎，其中所述叶或茎是加工处理的。

21.权利要求20的叶或茎，其中去甲烟碱的含量少于4.0μg/g。

22.权利要求20的叶或茎，其中相对于总生物碱含量，次级生物碱的含量少于3％。

23.权利要求20的叶或茎，其中N′-亚硝基去甲烟碱的含量少于4.0μg/g。

24.权利要求20的叶或茎，其中所述的烟草的叶或茎是白莱(Burley)类型或深色(dark)类型的叶和茎。

25.一种烟草产品，其包含权利要求20-24中任一项的植物加工处理的叶或茎。

26.权利要求25的烟草产品，其中所述烟草产品是卷烟(cigarette)，雪茄烟，无烟烟草产品。

27.一种产生烟草烟碱脱甲基酶的方法，所述方法包括下列步骤：

(a)提供用权利要求1的DNA转化的细胞；

(b)在表达所述DNA的条件下培养所述转化的细胞；和

(c)回收所述烟草烟碱脱甲基酶。

28.按照权利要求27的方法制备的重组烟草烟碱脱甲基酶。