WO2025205447A1 - 細胞培養デバイス、細胞培養デバイスの使用方法 - Google Patents
細胞培養デバイス、細胞培養デバイスの使用方法Info
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- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
Definitions
- the present invention relates to a cell culture device, and in particular to a cell culture device used for culturing multiple cells in contact with each other.
- the present invention also relates to a method for using the cell culture device.
- FIG 17 is a cross-sectional view showing the structure of a conventional cell culture device disclosed in Patent Document 1.
- cell culture device 80 is composed of an upper plate 80a and a lower plate 80b joined together.
- Cell culture device 80 has multiple wells (81, 82) made up of through-holes that penetrate upper plate 80a, and a microchannel 83 that connects wells 81 and 82.
- the width and height of microchannel 83 are approximately 100 ⁇ m to 200 ⁇ m.
- the required culture period for each cell varies. For example, it is assumed that culturing of neuron 91 begins in well 81, and then, a certain period of time has passed, culturing of cell 92 begins in well 82. However, because well 82 is connected to well 81 via microchannel 83, it is conceivable that when cell 92 is placed in well 82, the culture medium for neuron 91 and the physiologically active substances released by neuron 91 will have diffused into well 82. Even if culturing of neuron 91 and cell 92 begins simultaneously, it is difficult for an operator to simultaneously add each cell and culture medium to each well.
- the opening and closing section can be opened to connect the first well and the second well.
- the opening/closing portion may have a partition plate inserted into the slit.
- the above configuration prevents neurons from invading the microchannel when they are cultured in the first or second well. Meanwhile, neurites growing from the neurons can be introduced into the microchannel.
- This configuration is advantageous in that it makes it easier to evaluate the junction between the cells and neurites growing from the neurons.
- the above configuration makes it possible to evaluate interactions between cells in more complex systems. For example, when evaluating interactions between multiple cells, such as in systems within the brain, it becomes more important to set culture conditions appropriate for each individual cell. In other words, the more complex the system, the more susceptible the culture conditions of a cell are to being affected by the culture conditions of other cells. In contrast, the above configuration is advantageous in that it makes it possible to set culture conditions appropriate for each individual cell by adjusting the aperture of the microchannel.
- the microchannel of the cell culture device is composed of a plurality of grooves formed on the bottom,
- the step (d) may include a step of infiltrating neurites into each of the plurality of grooves.
- FIG. 1 is a perspective view of a cell culture device according to a first embodiment.
- 2 is a cross-sectional view taken along line AA in FIG. 1.
- 2B is a view in which the opening and closing portion is omitted from FIG. 2A.
- FIG. 2C is a plan view of FIG. 2B as viewed in the ⁇ Z direction.
- 2C is a diagram of the microchannel as viewed from the first well in the state of FIG. 2B.
- FIG. 10 is a perspective view showing how the partition plate is inserted into the slit.
- 2B is a diagram showing a state in which the position of the partition plate is changed from the state of FIG. 2A.
- 10 is a diagram showing a state in which cells that are nerve cells are placed in a first well.
- FIG. 2B is a cross-sectional view of a cell culture device according to a third embodiment, similar to FIG. 2A.
- FIG. FIG. 13B is an enlarged view of the vicinity of the hinge in FIG. 13A.
- FIG. 10 is a perspective view showing a configuration example of a cell culture device according to a fourth embodiment.
- FIG. 14B is a schematic diagram showing the positional relationship between each well of the cell culture device shown in FIG. 14A and a microchannel.
- FIG. 10 is a schematic diagram showing another configuration example of the cell culture device according to the fourth embodiment.
- FIG. 15B is a schematic diagram showing the positional relationship between each well of the cell culture device shown in FIG. 15A and a microchannel.
- FIG. 10 is a perspective view showing yet another configuration example of the cell culture device according to the fourth embodiment.
- FIG. 16B is a schematic diagram showing the positional relationship between each well of the cell culture device shown in FIG. 16A and a microchannel.
- FIG. 1 is a cross-sectional view showing the structure of a conventional cell culture device.
- the main body 3 is bonded to the main surface 2a of the bottom 2. As shown in Figure 2A, the bonding of the bottom 2 and the main body 3 forms a bonding surface 15.
- the first well 11 and the second well 12 are configured as through-holes that penetrate the main body 3 in the Z direction.
- the first well 11 and the second well 12 both expose the main surface 2a of the bottom 2 when viewed from the +Z side to the -Z direction.
- FIG. 3 is a plan view of FIG. 2B when viewed in the -Z direction. As with FIG. 2B, the opening/closing portion 6 is not shown in FIG. 3.
- the first well 11 and the second well 12 have a rectangular shape when viewed in the -Z direction.
- the shape of the first well 11 and the second well 12 is arbitrary, and they may have a circular shape when viewed in the -Z direction, for example.
- FIG. 2A the first well 11 and the second well 12 are connected to each other in the X direction by a microchannel 4.
- the microchannel 4 is formed in part of the joining surface 15 between the bottom portion 2 and the main body portion 3.
- Figure 4 is a diagram of the microchannel 4 as viewed from the first well 11 side in the state of Figure 2B.
- the width (dimension in the Y direction) of the microchannel 4 is set to be equal to the width of the first well 11 in the Y direction.
- the height H1 (dimension in the Z direction) of the microchannel 4 is shown schematically.
- a cell culture method using the cell culture device 1 will be described. As an example, a method will be described below in which nerve cells are placed in the first well 11 and cells that constitute skeletal muscle are placed in the second well 12, and these cells are cultured in a state where they are in contact with each other.
- Step S1 Closing of microchannel 4
- the position of the partition plate 20 in the Z direction is changed so that the partition plate 20 is in contact with the main surface 2a of the bottom portion 2, thereby closing the microchannel 4 (see FIG. 6).
- Step S1 corresponds to process (a).
- Step S2 Culturing cells 31
- cells are placed in the first well 11 together with a predetermined culture solution.
- Figure 7 is a diagram showing the state in which cells 31, which are nerve cells, have been placed in the first well 11. Specifically, a culture solution 32 containing cells 31 is injected into the first well 11, so that the cells 31 are seeded on the bottom surface of the first well 11. Thereafter, the cells 31 are cultured in the first well 11 for a predetermined period (e.g., several days), so that neurites 31a grow from the cells 31.
- the cells 31 correspond to "first cells.”
- the microchannel 4 is blocked by a partition plate 20. Therefore, while the cells 31 are being cultured, the culture medium 32 and the physiologically active substances released by the cells 31 are prevented from diffusing into the second well 12.
- the "closed state" in which the microchannel 4 is blocked does not only refer to a state in which the partition plate 20 is in contact with the bottom 2, but also includes a state in which the partition plate 20 is close to the bottom 2 and the microchannel 4 is substantially blocked.
- substantially blocked may also mean that the distance between the partition plate 20 and the bottom 2 is 1.0 ⁇ m or less. In consideration of the surface tension of the liquid, a distance of 1.0 ⁇ m or less between the partition plate 20 and the bottom 2 prevents the culture medium, etc., from passing through the microchannel 4.
- Step S2 corresponds to process (b).
- Step S3 Culturing cells 33
- target cells to be contacted with the cells 31 are placed together with a predetermined culture solution.
- Fig. 8 is a diagram showing the state in which the cells 33 are placed in the second well 12. Specifically, a culture solution 34 containing the cells 33 is injected into the second well 12, so that the cells 33 are seeded on the bottom surface of the second well 12. Thereafter, the cells 33 are cultured in the second well 12 for a predetermined period (e.g., several days). The cells 33 correspond to "second cells.”
- cell 31 is a nerve cell, and neurite 31a binds to cell 33, bringing cell 31 and cell 33 into contact, but both cell 31 and cell 33 may be nerve cells.
- the cell culture device 1 is not limited to an example in which cells come into contact with each other via neurite 31a.
- the film 21 can be deformed, thereby changing the position of the film 21 in the Z direction.
- the fluid L1 is a liquid
- the microchannel 4 can be opened by lowering the height of the liquid fluid L1 below the liquid level of the culture medium.
- the opening degree of the microchannel 4 can be adjusted by adjusting the relationship between the height of the fluid L1 and the liquid level of the culture medium. In other words, the opening degree of the microchannel 4 is adjusted by changing the pressure in the space A1.
- the fluid L1 functions as an opening degree adjustment mechanism that adjusts the opening degree of the microchannel 4.
- film 21 is preferably made of a material that is flexible when formed into a film.
- film 21 may be made of a material such as silicone resin, styrene butadiene copolymer resin, polyethylene terephthalate, or cycloolefin polymer (COP).
- the thickness of film 21 (dimension in the Z direction) is 5 ⁇ m to 15 ⁇ m. The thickness of film 21 can be adjusted as appropriate in consideration of the material that makes up film 21 and the height H1 of microchannel 4.
- the microchannel 4 is composed of multiple grooves 8 (see Figure 11A)
- the multiple grooves 8 can be substantially blocked, as described with reference to Figure 11B.
- the hinge 25 has a base portion 25a, a movable plate 25b, and an axis 25c that rotates the movable plate 25b relative to the base portion 25a.
- the hinge 25 has a shape that extends in the Y direction, and spans the entire area of the microchannel 4 in the Y direction.
- the opening degree of the microchannel 4 can be adjusted by changing the open/close state of the movable plate 25b relative to the base portion 25a.
- the microchannel 4 is closed by bringing the movable plate 25b into contact with the main surface 2a of the bottom portion 2. Furthermore, by changing the position of the movable plate 25b in the Z direction and moving the movable plate 25b away from the main surface 2a, the microchannel 4 is opened.
- the hinge 25 corresponds to the "opening/closing portion 6."
- One method for changing the open/closed state of the hinge 25 is to use magnetic force.
- a magnet (not shown) may be placed on part of the movable plate 25b, and another magnet (not shown) may be placed on the -Z side of the bottom 2, thereby attracting the movable plate 25b by attractive force and bringing it into contact with the main surface 2a of the bottom 2.
- a repulsive force may be generated to move the movable plate 25b away, opening the microchannel 4.
- the movable plate 25b may be made of a metal material, and an opening penetrating the main body 3 may be formed on the +Z side of the hinge 25. In this case, the open/closed state of the movable plate 25b can be changed by appropriately placing a magnet on the -Z side of the bottom 2 or on the +Z side of the hinge 25 via the opening.
- the opening degree of the microchannels (4a, 4b) may be adjusted by deforming the film 21, for example, as described in the second embodiment.
- Figure 15A is a schematic diagram showing another example configuration of the cell culture device 1 according to the fourth embodiment
- Figure 15B is a schematic diagram showing the positional relationship between each well and microchannel of the cell culture device 1 according to Figure 15A.
- a second well 12a may be formed on the +X side of the first well 11, and a second well 12b may be formed on the +Y side.
- a third well 13 may be formed on the +Y side of the second well 12a, and the second wells (12a, 12b) may be connected to the third well 13 by microchannels (5a, 5b).
- FIG. 16A is a perspective view showing yet another example configuration of a cell culture device 1 according to the fourth embodiment
- FIG. 16B is a schematic diagram showing the positional relationship between each well and microchannel in the cell culture device according to FIG. 16A.
- the first well 11 and the third well 13 may be connected to each other by a microchannel 4c.
- the third well 13 corresponds to the second well 12c connected to the first well 11.
- second well 12a and second well 12b may be interconnected by a microchannel.
- microchannel 4c merges with this microchannel, so it has an X-shape when viewed in the Z direction.
- Microchannel 4c is configured so that its opening can be adjusted, for example, by inserting a partition plate 20 also having an X-shape into X-shaped slit 7 (see Figure 16A).
- a film 21 in the formation area of each microchannel, the opening of each microchannel can be adjusted, as described in the second embodiment.
- the opening degree of microchannels 4a-4c and microchannels 5a-5b is adjusted by the partition plate 20.
- the opening degree of each microchannel may be adjusted by the film 21.
- the opening degree of each microchannel may be adjusted by the hinge 25.
- Cell culture device 2 Bottom 3: Main body 4, 4a to 4c, 5a, 5b: Microchannel 6: Opening/closing section 7: Slit 8: Groove 11: First well 12, 12a to 12c: Second well 13: Third well 15: Bonding surface 20: Partition plate 21: Film 22: Fluid supply section 22a: Pipe 25: Hinge 25a: Base 25b: Movable plate 25c: Axis 31, 33: Cell 31a: Neurite 32, 34: Culture solution 80: Cell culture device 81, 82: Well 83: Microchannel 91, 92: Cell
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Abstract
複数の細胞を接触させる前に、それぞれの細胞に適した培養条件を設定できる細胞培養デバイス、及び細胞培養デバイスの使用方法を提供する。 細胞培養デバイスは、底部と前記底部に接合された本体部とを含む細胞培養デバイスであって、前記本体部を貫通する貫通孔からなり、前記底部の主面に平行な方向に関して相互に隣り合う位置に形成された、第一ウェル及び第二ウェルと、前記底部と前記本体部との接合面の一部に形成され、前記第一ウェルと前記第二ウェルとを相互に連絡するマイクロ流路と、前記底部の主面に直交する方向に関する位置を変更可能に構成され、前記マイクロ流路の開度を調整する開閉部と、を備える。
Description
本発明は、細胞培養デバイスに関し、特に複数の細胞を接触させた状態で培養する用途に利用される細胞培養デバイスに関する。また、本発明は、細胞培養デバイスの使用方法に関する。
生体内では、神経細胞から成長した神経突起が、心筋、骨格筋、又は皮膚細胞等の他の細胞と接触している。これらの細胞の相互作用を観察するために、in vitro(体外)で神経細胞と他の細胞とを接触させた状態で培養する方法が知られている(下記特許文献1参照)。
従来、特許文献1に代表されるように、神経細胞と他の細胞とを接触させた状態で培養することを目的として、複数のウェルと、複数のウェルを互いに連絡する流路を備えた細胞培養デバイスが提案されている。
しかし、本発明者は、従来の細胞培養デバイスでは、細胞同士を接触させる前に、それぞれの細胞に適した培養条件を設定するのが困難であることに気が付いた。それぞれの細胞に適した培養条件を設定できなければ、各細胞を所望の状態に培養することが困難になる。このような細胞同士を接触させて培養しても、細胞間の相互作用が再現できず、観察の精度が低下してしまう。
本発明は、上記課題に鑑み、複数の細胞を接触させる前に、それぞれの細胞に適した培養条件を設定できる細胞培養デバイス、及び細胞培養デバイスの使用方法を提供することを目的とする。
本発明に係る細胞培養デバイスは、
底部と前記底部に接合された本体部とを含む細胞培養デバイスであって、
前記本体部を貫通する貫通孔からなり、前記底部の主面に平行な方向に関して相互に隣り合う位置に形成された、第一ウェル及び第二ウェルと、
前記底部と前記本体部との接合面の一部に形成され、前記第一ウェルと前記第二ウェルとを相互に連絡するマイクロ流路と、
前記底部の主面に直交する方向に関する位置を変更可能に構成され、前記マイクロ流路の開度を調整する開閉部と、を備えることを特徴とする。
底部と前記底部に接合された本体部とを含む細胞培養デバイスであって、
前記本体部を貫通する貫通孔からなり、前記底部の主面に平行な方向に関して相互に隣り合う位置に形成された、第一ウェル及び第二ウェルと、
前記底部と前記本体部との接合面の一部に形成され、前記第一ウェルと前記第二ウェルとを相互に連絡するマイクロ流路と、
前記底部の主面に直交する方向に関する位置を変更可能に構成され、前記マイクロ流路の開度を調整する開閉部と、を備えることを特徴とする。
本明細書において、「主面」とは、板状の物体を構成する表面のうち、他の面よりもはるかに面積が大きい面を指す。
図17は、特許文献1に開示された従来の細胞培養デバイスの構造を示す断面図である。図17に示すように、細胞培養デバイス80は、上板80aと下板80bとが接合されて構成される。細胞培養デバイス80は、上板80aを貫通する貫通孔からなる複数のウェル(81,82)と、ウェル81とウェル82を互いに連絡するマイクロ流路83を有する。一例として、マイクロ流路83の幅及び高さは100μm~200μm程度とされる。
細胞を培養する際には、神経細胞91がウェル81の底面に配置されると共に、神経細胞91を覆うように培養液がウェル81に投入される。また、ウェル82では、神経細胞91と接触される対象の細胞92が底面に配置されると共に、細胞92を覆うように培養液がウェル82に投入される。神経細胞91が培養されることで、神経細胞91から神経突起91aが成長する。神経突起91aはマイクロ流路83を介してウェル82に到達し、細胞92と結合する。これにより、神経細胞91と細胞92とを接触させた状態で、これらの細胞の相互作用を観察することができる。
しかし、本発明者は、図17に示す構造の細胞培養デバイスでは、以下の課題が存在することに気が付いた。
神経細胞91と細胞92を接触させる前に、神経細胞91及び細胞92を所望の状態に培養する必要がある。ここで、個々の細胞によって、要求される培養条件は異なる。ところが、細胞培養デバイス80では、ウェル81とウェル82がマイクロ流路83で連絡されているため、神経細胞91と細胞92が互いに接触する前の状態において、神経細胞91が放出する生理活性物質がウェル82内に拡散して、細胞92の培養に影響を及ぼしてしまう。また、同様に、細胞92が放出する生理活性物質は、ウェル81内に拡散して、神経細胞91の培養に影響を及ぼす。
また、個々の細胞によって成長速度が異なるため、それぞれの細胞に要求される培養期間は異なる。例えば、ウェル81で神経細胞91の培養を開始してから、所定期間が経過した後に、ウェル82で細胞92の培養を開始することが想定される。しかし、ウェル82はマイクロ流路83でウェル81と連絡されているため、細胞92をウェル82に配置する際に、ウェル82内に神経細胞91の培養液、及び神経細胞91が放出する生理活性物質が拡散していることが考えられる。神経細胞91と細胞92の培養を同時に開始する場合でも、作業者が同時にそれぞれの細胞及び培養液を各ウェルに投入するのは困難である。
このように、細胞培養デバイス80では、細胞同士が接触する前の状態において、それぞれの細胞に適した培養条件を設定するのが困難であった。それぞれの細胞に適した培養条件を設定できなければ、各細胞を所望の状態に培養することが困難になる。
なお、それぞれの細胞を別個に培養してから、細胞をピペットなどで移動させて、細胞同士を接触させることも考えられる。しかし、細胞をピペットで出し入れする際に、細胞が損傷する懸念があり、観察の精度という観点から妥当な方法とはいえない。
本発明者は、上記課題を解決すべく鋭意検討を重ねた結果、本発明を案出するに至った。
上記構成によれば、開閉部によって、マイクロ流路の開度を調整することが可能である。詳細は後述するが、開閉部を閉状態とすることで、マイクロ流路を閉塞しながら、第一ウェル及び第二ウェルのそれぞれにおいて細胞を培養することが可能である。つまり、マイクロ流路が閉塞されることで、第一ウェルと第二ウェルとの間の培養液等の拡散が抑制される。これにより、第一ウェル及び第二ウェルにおいて、個々の細胞に適した培養条件を設定することができる。
また、それぞれの細胞の培養が完了した後、開閉部を開状態とすることで、第一ウェルと第二ウェルを連絡することができる。上記構成によれば、細胞同士を接触させる際に、例えばピペット等で細胞を取り出す必要が無く、細胞を損傷しにくい。
上記細胞培養デバイスは、
前記本体部側から見たときに、前記第一ウェルと前記第二ウェルに挟まれた位置に形成され、開度調整機構を導入可能なスリットを有しても構わない。
前記本体部側から見たときに、前記第一ウェルと前記第二ウェルに挟まれた位置に形成され、開度調整機構を導入可能なスリットを有しても構わない。
上記細胞培養デバイスにおいて、
前記開閉部は、前記スリットに挿入された仕切り板を有しても構わない。
前記開閉部は、前記スリットに挿入された仕切り板を有しても構わない。
また、上記細胞培養デバイスは、
前記スリット内に流体を導入又は排出する流体供給部をさらに備え、
前記開閉部は、前記スリットの前記底部側の開口を覆うフィルムを有しても構わない。
前記スリット内に流体を導入又は排出する流体供給部をさらに備え、
前記開閉部は、前記スリットの前記底部側の開口を覆うフィルムを有しても構わない。
開閉部の詳細な構造については、「発明を実施するための形態」の項で詳述される。
上記細胞培養デバイスにおいて、
前記マイクロ流路の高さは、神経細胞の径より小さく、神経突起の径よりも大きくても構わない。
前記マイクロ流路の高さは、神経細胞の径より小さく、神経突起の径よりも大きくても構わない。
上記構成によれば、第一ウェル又は第二ウェル内で神経細胞を培養する場合において、マイクロ流路内に神経細胞が侵入することが抑制される。一方で、神経細胞から成長した神経突起は、マイクロ流路に導入可能である。上記構成は、神経細胞から成長した神経突起と細胞との接合部分の評価が容易になるという点で好適である。
上記細胞培養デバイスにおいて、
前記マイクロ流路は、前記底部に形成された複数の溝から構成されても構わない。
前記マイクロ流路は、前記底部に形成された複数の溝から構成されても構わない。
神経細胞からは、複数の神経突起が成長する。上記構成によれば、神経細胞から成長した神経突起を、それぞれの溝に対して侵入させることができる。これにより、神経突起の観察が容易になる。
上記細胞培養デバイスは、
複数の前記第二ウェルを備え、
前記第一ウェルと複数の前記第二ウェルとは、それぞれ異なる前記マイクロ流路で連絡されても構わない。
複数の前記第二ウェルを備え、
前記第一ウェルと複数の前記第二ウェルとは、それぞれ異なる前記マイクロ流路で連絡されても構わない。
上記構成によれば、より複雑な系における細胞同士の相互作用を評価することができる。例えば、脳内の系のように、複数の細胞の相互作用を評価する場合には、個々の細胞に適した培養条件を設定することがより重要になる。すなわち、系が複雑化するほど、細胞の培養条件は、他の細胞の培養条件に影響を受けやすくなる。これに対し、上記構成は、マイクロ流路の開度を調整することで、個々の細胞に適した培養条件を設定することができるという点で好適である。
本発明に係る細胞培養デバイスの使用方法は、
前記開閉部を操作して、前記流路が閉塞された閉状態にする工程(a)と、
前記工程(a)の後に、前記第一ウェルに培養液と共に第一細胞を配置して培養する工程(b)と、
前記工程(b)と同時、又は前記工程(b)の後に、前記第二ウェルに培養液と共に第二細胞を配置して培養する工程(c)と、
前記開閉部を操作することで前記流路を開状態にして、前記第一細胞と前記第二細胞とを接触させる工程(d)と、を有する。
前記開閉部を操作して、前記流路が閉塞された閉状態にする工程(a)と、
前記工程(a)の後に、前記第一ウェルに培養液と共に第一細胞を配置して培養する工程(b)と、
前記工程(b)と同時、又は前記工程(b)の後に、前記第二ウェルに培養液と共に第二細胞を配置して培養する工程(c)と、
前記開閉部を操作することで前記流路を開状態にして、前記第一細胞と前記第二細胞とを接触させる工程(d)と、を有する。
上記使用方法において、
前記第一細胞及び前記第二細胞のうち、少なくとも一方は神経細胞であり、
前記工程(d)は、神経突起によって前記第一細胞と前記第二細胞とを接触させる工程を含んでも構わない。
前記第一細胞及び前記第二細胞のうち、少なくとも一方は神経細胞であり、
前記工程(d)は、神経突起によって前記第一細胞と前記第二細胞とを接触させる工程を含んでも構わない。
また、上記使用方法において、
前記細胞培養デバイスの前記マイクロ流路は、前記底部に形成された複数の溝から構成されており、
前記工程(d)は、前記複数の溝のそれぞれに対して、神経突起を侵入させる工程を含んでも構わない。
前記細胞培養デバイスの前記マイクロ流路は、前記底部に形成された複数の溝から構成されており、
前記工程(d)は、前記複数の溝のそれぞれに対して、神経突起を侵入させる工程を含んでも構わない。
本発明によれば、複数の細胞を接触させる前に、それぞれの細胞に適した培養条件を設定できる細胞培養デバイス、及び細胞培養デバイスの使用方法が提供される。
本発明に係る細胞培養デバイス及び細胞培養方法につき、図面を参照して説明する。なお、以下の各図面はあくまで模式的に図示されたものである。すなわち、図面上の寸法比と実際の寸法比とは必ずしも一致しておらず、また、各図面間においても寸法比は必ずしも一致していない。
[第一実施形態]
(細胞培養デバイスの構造)
第一実施形態の細胞培養デバイスについて、図面を参照して説明する。図1は、本実施形態の細胞培養デバイスの斜視図である。また、図2Aは、図1のA-A断面図である。
(細胞培養デバイスの構造)
第一実施形態の細胞培養デバイスについて、図面を参照して説明する。図1は、本実施形態の細胞培養デバイスの斜視図である。また、図2Aは、図1のA-A断面図である。
図1に示すように、細胞培養デバイス1は、底部2と、底部2の上面に接合された本体部3と、後述する開閉部6を備える。
底部2は、一例として、矩形状の基板で構成される。底部2は、図2Aに示すように、+Z側の主面2aにおいて本体部3と接合される。
以下の説明では、底部2の主面2aに直交する方向をZ方向とし、主面2aに平行な面をX-Y平面とするX-Y-Z座標系が適宜参照される(図1等参照)。また、以下の説明において、方向を表現する際に正負の向きを区別する場合には、「+X方向」、「-X方向」のように、正負の符号を付して記載される。また、正負の向きを区別せずに方向を表現する場合には、単に「X方向」と記載される。すなわち、本明細書において、単に「X方向」と記載されている場合には、「+X方向」と「-X方向」の両者が含まれる。Y方向及びZ方向についても同様である。
本体部3は、底部2の主面2aと接合される。図2Aに示すように、底部2と本体部3とが接合されることで接合面15が形成される。
図2Bは、図2Aから開閉部6の図示を除いた図面である。本体部3は、図2A及び図2Bに示すように、第一ウェル11と、第一ウェル11に対してX方向に離間して隣り合う位置に形成された第二ウェル12と、スリット7を有する。
第一ウェル11及び第二ウェル12は、図2Bに示すように、Z方向に本体部3を貫通する貫通孔から構成されている。これにより、第一ウェル11及び第二ウェル12は、いずれも+Z側から-Z方向に見て、底部2の主面2aを露出させている。
図3は、図2Bを-Z方向に見たときの平面図である。図3では、図2Bと同様に、開閉部6の図示が除かれている。本実施形態では、第一ウェル11及び第二ウェル12は、-Z方向に見たときに矩形状を呈する。しかし、第一ウェル11及び第二ウェル12の形状は任意であり、例えば-Z方向に見たときに円形状を呈しても構わない。
第一ウェル11と第二ウェル12は、図2Aに示すように、マイクロ流路4によって、X方向に関して相互に連絡される。マイクロ流路4は、底部2と本体部3との接合面15の一部に形成される。図4は、図2Bの状態において、第一ウェル11側からマイクロ流路4を見たときの図面である。図4に示すように、本実施形態では、マイクロ流路4の幅(Y方向に係る寸法)は第一ウェル11のY方向に係る幅と同等とされる。図4等の各図面では、マイクロ流路4の高さH1(Z方向に係る寸法)が模式的に示されている。
スリット7は、図3に示すように、第一ウェル11と第二ウェル12に挟まれた位置に形成される。スリット7は、図2Bに示すように、Z方向に本体部3を貫通する。
本実施形態では、スリット7は、仕切り板20を導入可能に構成される(図2A参照)。仕切り板20は、図2Aに示すように、スリット7に挿入され、Z方向に関する位置を変更可能である。図5は、仕切り板20をスリット7に挿入する様子を示す斜視図である。また、図6は、図2Aの状態から、仕切り板20の位置を変更した状態を示す図面である。
図2A及び図6に示すように、仕切り板20がZ方向に関して移動されることで、マイクロ流路4のY方向に関する断面積が変更される。つまり、仕切り板20は、マイクロ流路4の開度を調整する開度調整機構として機能する。本実施形態では、仕切り板20が「開閉部6」に対応する。
(細胞培養デバイスの使用方法)
次に、細胞培養デバイス1を使用した細胞培養方法について説明する。以下では、一例として、第一ウェル11に神経細胞を配置し、第二ウェル12に骨格筋を構成する細胞を配置して、これらの細胞を接触させた状態で培養する方法を説明する。
次に、細胞培養デバイス1を使用した細胞培養方法について説明する。以下では、一例として、第一ウェル11に神経細胞を配置し、第二ウェル12に骨格筋を構成する細胞を配置して、これらの細胞を接触させた状態で培養する方法を説明する。
(ステップS1:マイクロ流路4の閉塞)
まず、仕切り板20が底部2の主面2aに接するように、仕切り板20のZ方向に関する位置を変更して、マイクロ流路4を閉状態とする(図6参照)。
まず、仕切り板20が底部2の主面2aに接するように、仕切り板20のZ方向に関する位置を変更して、マイクロ流路4を閉状態とする(図6参照)。
ステップS1が工程(a)に対応する。
(ステップS2:細胞31の培養)
次に、所定の培養液と共に、第一ウェル11に細胞を配置する。図7は、第一ウェル11に神経細胞である細胞31を配置した状態を示す図面である。具体的には、第一ウェル11に細胞31を含む培養液32が注入されることで、第一ウェル11の底面で細胞31が播種される。その後、所定期間(例えば数日間)にわたって第一ウェル11内で細胞31が培養されることで、細胞31から神経突起31aが成長する。細胞31が「第一細胞」に対応する。
次に、所定の培養液と共に、第一ウェル11に細胞を配置する。図7は、第一ウェル11に神経細胞である細胞31を配置した状態を示す図面である。具体的には、第一ウェル11に細胞31を含む培養液32が注入されることで、第一ウェル11の底面で細胞31が播種される。その後、所定期間(例えば数日間)にわたって第一ウェル11内で細胞31が培養されることで、細胞31から神経突起31aが成長する。細胞31が「第一細胞」に対応する。
ここで、図7に示すように、マイクロ流路4は、仕切り板20によって閉塞されている。したがって、細胞31を培養している間に、培養液32や、細胞31が放出する生理活性物質が第二ウェル12に拡散することが抑制される。
なお、マイクロ流路4が閉塞された「閉状態」とは、仕切り板20が底部2に接触する態様のみならず、仕切り板20が底部2に近接し、マイクロ流路4が実質的に閉塞した状態を含む。ここで、「実質的に閉塞する」とは、仕切り板20と底部2との離間距離が1.0μm以下であることをいうものとして構わない。液体の表面張力等に鑑みれば、仕切り板20と底部2との離間距離が1.0μm以下となることで、培養液等がマイクロ流路4を通過することが抑制される。
ステップS2が工程(b)に対応する。
(ステップS3:細胞33の培養)
第二ウェル12では、所定の培養液と共に、細胞31と接触される対象の細胞が配置される。図8は、第二ウェル12に細胞33を配置した状態を示す図面である。具体的には、第二ウェル12に細胞33を含む培養液34が注入されることで、第二ウェル12の底面で細胞33が播種される。その後、所定期間(例えば数日間)にわたって第二ウェル12内で細胞33が培養される。細胞33が「第二細胞」に対応する。
第二ウェル12では、所定の培養液と共に、細胞31と接触される対象の細胞が配置される。図8は、第二ウェル12に細胞33を配置した状態を示す図面である。具体的には、第二ウェル12に細胞33を含む培養液34が注入されることで、第二ウェル12の底面で細胞33が播種される。その後、所定期間(例えば数日間)にわたって第二ウェル12内で細胞33が培養される。細胞33が「第二細胞」に対応する。
前述の通り、マイクロ流路4が仕切り板20によって閉塞されているため、細胞31を培養している間に、培養液32等が第二ウェル12に拡散することが抑制されている。このため、例えば細胞31を第一ウェル11に播種してから数日間、あるいは数週間後に、第二ウェル12に細胞33を播種する場合でも、細胞31の培養条件が、細胞33の培養条件に影響を及ぼすことが抑制される。
また、マイクロ流路4が仕切り板20によって閉塞されていることで、第一ウェル11と第二ウェル12との間での培養液(32,34)等の拡散が抑制される。これにより、第一ウェル11及び第二ウェル12において、それぞれの細胞(31,33)に適した培養条件を設定することができる。
なお、上記においては、細胞31をある程度培養してから、第二ウェル12において細胞33を播種するものとして説明したが、この例に限られない。例えば、細胞31と細胞33の培養を同時に開始する場合においても、マイクロ流路4が仕切り板20で閉塞されることで、それぞれの細胞(31,33)に適した培養条件を設定することができる。
ステップS3が、工程(c)に対応する。
(ステップS4:細胞31と細胞33との接触)
ステップS2及びステップS3が実行され、細胞31及び細胞33が所望の状態まで培養された後、仕切り板20を+Z方向に移動して、マイクロ流路4を開状態とする。この状態で、神経細胞である細胞31の培養が進行することで、神経突起31aがマイクロ流路4を介して第二ウェル12に到達する。そして、神経突起31aが細胞33と結合し、細胞31と細胞33とが接触した状態となる。これにより、細胞31と細胞33とを接触させた状態で培養することが可能である。図9は、細胞31と細胞33とが接触した状態を示す図面である。
ステップS2及びステップS3が実行され、細胞31及び細胞33が所望の状態まで培養された後、仕切り板20を+Z方向に移動して、マイクロ流路4を開状態とする。この状態で、神経細胞である細胞31の培養が進行することで、神経突起31aがマイクロ流路4を介して第二ウェル12に到達する。そして、神経突起31aが細胞33と結合し、細胞31と細胞33とが接触した状態となる。これにより、細胞31と細胞33とを接触させた状態で培養することが可能である。図9は、細胞31と細胞33とが接触した状態を示す図面である。
仕切り板20は、例えば、ピンセット等で把持しながら、Z方向に移動させることができる。
ステップS4が、工程(d)に対応する。
また、細胞培養デバイス1によれば、細胞31と細胞33とを接触させた状態において、仕切り板20を移動させて、マイクロ流路4の開度を調整することも可能である。これにより、例えば、各細胞から放出された生理活性物質が、第一ウェル11と第二ウェル12との間で拡散する量を調整できる。つまり、マイクロ流路4の開度を調整することで、細胞間の生理活性物質の授受の条件を異ならせても構わない。これにより、様々な条件下で、細胞同士の相互作用を観察することができる。
さらに、意図的に仕切り板20を神経突起31aに接触させることで、神経突起31aの一部を損傷させて、神経突起31aを含む各細胞(31,33)の経過を観察することも可能である。
上記においては、細胞31が神経細胞とされ、神経突起31aが細胞33と結合することで、細胞31と細胞33とを接触させるものとして説明したが、細胞31と細胞33の両者が神経細胞とされても構わない。また、細胞培養デバイス1は、神経突起31aによって、細胞同士を接触させる例に限定されない。
図10は、図9とは異なる例を示す図面である。図10に示すように、マイクロ流路4を開状態とした後(ステップS4)、第一ウェル11に配置された細胞31を遊走させても構わない。これにより、細胞31が第二ウェル12内に移動して、細胞31と細胞33とが接触した状態となる。一例として、細胞31は免疫細胞であり、細胞33はがん細胞である。つまり、細胞培養デバイス1の使用方法において、細胞31が神経細胞であるか否かには限定されない。
次に、細胞培養デバイス1の製造方法の一例について、以下において説明する。
(板状部材の準備)
細胞培養デバイス1を構成する、底部2及び本体部3を準備する。この時点では、例えば、両者はいずれも矩形平板状の部材である。底部2及び本体部3の寸法は任意であるが、例えば、X方向に係る寸法が10mm~50mmであり、Y方向に係る寸法が5mm~30mmである。底部2の厚み(Z方向に係る寸法)は、例えば0.1mm~2mmである。本体部3の厚みは、例えば2mm~20mmである。
細胞培養デバイス1を構成する、底部2及び本体部3を準備する。この時点では、例えば、両者はいずれも矩形平板状の部材である。底部2及び本体部3の寸法は任意であるが、例えば、X方向に係る寸法が10mm~50mmであり、Y方向に係る寸法が5mm~30mmである。底部2の厚み(Z方向に係る寸法)は、例えば0.1mm~2mmである。本体部3の厚みは、例えば2mm~20mmである。
(本体部3の形状加工)
本体部3に対して、第一ウェル11、第二ウェル12、及びスリット7の形成予定箇所に、切削加工、射出成形等の方法で貫通孔を形成する。一例として、第一ウェル11は、-Z方向に見たときに矩形状を呈し、X方向及びY方向に係る寸法が2mm~10mmである。また、第一ウェル11が、-Z方向に見たときに円形状を呈する場合において、第一ウェル11の直径は2mm~10mmであっても構わない。第二ウェル12の形状について、第一ウェル11と同様の議論が可能である。
本体部3に対して、第一ウェル11、第二ウェル12、及びスリット7の形成予定箇所に、切削加工、射出成形等の方法で貫通孔を形成する。一例として、第一ウェル11は、-Z方向に見たときに矩形状を呈し、X方向及びY方向に係る寸法が2mm~10mmである。また、第一ウェル11が、-Z方向に見たときに円形状を呈する場合において、第一ウェル11の直径は2mm~10mmであっても構わない。第二ウェル12の形状について、第一ウェル11と同様の議論が可能である。
また、スリット7は、一例として、-Z方向に見たときに矩形状を呈し、X方向に係る寸法が0.5mm~2mmであり、Y方向に係る寸法が2mm~10mmである。
次に、リソグラフィ技術を利用し、マイクロ流路4の形成予定領域に対して、微細な深さでエッチングを行う。例えば、本体部3の-Z側の面において、底部2との接合が予定された領域を基準に、マイクロ流路4の形成予定領域が+Z方向に後退するようにエッチングされる。このエッチング深さは、マイクロ流路4の高さH1に応じて設定される。その後、底部2の+Z側の面に本体部3が接合されることで、マイクロ流路4が形成される。
マイクロ流路4の高さH1は、1μm~100μmであるのが好ましく、5μm~10μmであるのがより好ましい。また、マイクロ流路4の長さ(X方向に係る寸法)は、1mm~10mmであるのが好ましく、マイクロ流路4の幅(Y方向に係る寸法)は、0.01mm~1mmであるのが好ましい。
神経突起31aと細胞33との接合部分の相互作用を評価することを主目的とするに際しては、マイクロ流路4の高さH1は、神経細胞の径より小さく、神経突起の径よりも大きいことが好適である。これにより、細胞31を第一ウェル11内に留めながら、神経突起31aを第二ウェル12に到達させることができる(図9参照)。
神経細胞の径は、典型的には、10μm~100μmである。また、神経突起は、神経細胞の種類によっては、直径が0.5μm~20μmとされている。上記に鑑みると、マイクロ流路4の高さH1は、1μmより大きく、10μmより小さいことが好ましい。
また、細胞31を遊走させて、細胞33と接触させる場合には(図10参照)、マイクロ流路4の高さH1は、細胞31の径よりも大きいことが好ましい。細胞31の径にもよるが、典型的には、マイクロ流路4の高さH1が10μm以上であれば、細胞31を遊走させることが可能である。
前述の通り、スリット7に対して、例えば仕切り板20が挿入されて、マイクロ流路4の開度が調整される。ここで、例えば底部2側からの、マイクロ流路4の観察を容易にする観点から、マイクロ流路4の長さ(X方向に係る寸法)に対する、スリット7のX方向に係る寸法の割合は、1:0.1~1:0.9であることが好ましい。また、マイクロ流路4のY方向に係る寸法に対する、スリット7のY方向に係る寸法の割合は、1:1~1:20であることが好ましい。
また、開閉部6により、マイクロ流路4の開度が調整可能な点に鑑みると、製造時において、マイクロ流路4の高さH1は比較的大きくされても構わない。例えば、マイクロ流路4の高さH1より低い位置に仕切り板20を配置した状態で、第一ウェル11と第二ウェル12とを連絡することもできる。一例として、マイクロ流路4の高さH1は、50μm以上とされても構わない。つまり、開閉部6によって、マイクロ流路4の加工に要求される精度が緩和されるといえる。
(底部2と本体部3の接合)
底部2と本体部3の接合方法としては、光やプラズマを使った表面改質を利用した接合、熱接合、接着剤を使った接着、溶剤を使った接合などを利用することができる。一例として、底部2及び本体部3の接合が予定された領域に対して、紫外線を照射する方法が利用できる。より詳細には、当該紫外線として、波長200nm以下の真空紫外線(VUV)が利用可能である。紫外線光源としては、ピーク波長が172nm近傍を示すXeエキシマランプ等を好適に用いることができる。そして、紫外線が照射された領域を介して、底部2及び本体部3が接触された状態で、プレス機等を利用して押圧することで、両者を接合することができる。
底部2と本体部3の接合方法としては、光やプラズマを使った表面改質を利用した接合、熱接合、接着剤を使った接着、溶剤を使った接合などを利用することができる。一例として、底部2及び本体部3の接合が予定された領域に対して、紫外線を照射する方法が利用できる。より詳細には、当該紫外線として、波長200nm以下の真空紫外線(VUV)が利用可能である。紫外線光源としては、ピーク波長が172nm近傍を示すXeエキシマランプ等を好適に用いることができる。そして、紫外線が照射された領域を介して、底部2及び本体部3が接触された状態で、プレス機等を利用して押圧することで、両者を接合することができる。
例えば、底部2及び本体部3は、ポリメチルメタクリレート(PMMA)、ポリカーボネート(PC)、シクロオレフィンコポリマー(COC)、シクロオレフィンポリマー(COP)、及びポリスチレン(PS)等の熱可塑性樹脂で構成される。培養された細胞の観察を容易にする観点から、底部2及び本体部3は、透明な材料で構成されることが典型的である。また、上記材料のうち、医療用グレード樹脂として指定されているCOPが特に好ましい。COPは、高透明性、低自家蛍光性、及び低薬剤吸着性を示す熱可塑性樹脂である。
仕切り板20は、底部2及び本体部3で述べたのと同様の材料で構成できる。また、仕切り板20は、柔軟性を有する部材で構成されるのが好ましい。例えば、仕切り板20は、フッ素樹脂、又はスチレンブタジエン共重合体樹脂等の材料から構成してもよい。
仕切り板20は、一例として、矩形平板状を呈するものとされる。仕切り板20の寸法は、-Z方向に見たときのスリット7の寸法と略同一に構成されることが好ましい。これにより、仕切り板20をスリット7に挿入することで、スリット7を閉塞でき、マイクロ流路4からスリット7内に培養液等が漏れ出ることを抑制できる。スリット7の高さ(Z方向に係る寸法)は、ピンセット等による操作を容易にする観点から、本体部3の高さより大きくされることが好ましい。
また、スリット7と仕切り板20との間に、例えばシリコーンオイル等の充填剤が配置されても構わない。
上記においては、本体部3の-Z側の面がエッチングされることで、マイクロ流路4が形成されるものとして説明した。しかし、底部2における、第一ウェル11、第二ウェル12、及びマイクロ流路4の形成予定領域に対してエッチングが実行されて、底部2と本体部3とが接合されることで、マイクロ流路4が形成されても構わない。
図11Aは、マイクロ流路4の別構成例を示す図面である。図11Aでは、図4と同様に、第一ウェル11からマイクロ流路4を見たときの状態が示されている。図11Aでは、マイクロ流路4が、X方向に延伸する複数の溝8から構成される例が示されている。なお、マイクロ流路4が複数の溝8から構成されるかは任意である。
図11Aに示すマイクロ流路4は、底部2の+Z側の面(主面2a)において、本体部3との接合が予定された領域を基準に、第一ウェル11、第二ウェル12、及び複数の溝8の形成予定領域が-Z方向に後退するようにエッチングされることで形成される。このエッチング深さは、マイクロ流路4の高さH1に応じて設定される。
そして、底部2と本体部3とを接合することにより、第一ウェル11と第二ウェル12を、複数の溝8を介して連絡することができる。例えば、細胞31から成長した神経突起31aを(図7等参照)、複数の溝8のそれぞれに対して侵入させることで、神経突起31aの観察が容易になる。
図11Bは、図11Aに係るマイクロ流路4が閉状態とされたときの図面である。図11Bでは、便宜上、第一ウェル11の+X側に係る内壁面の図示が省略されている。図11Bに示すように、マイクロ流路4に対して、仕切り板20が配置されることで、複数の溝8が閉塞される。この際、複数の溝8を閉塞しやすくする観点から、仕切り板20は、柔軟性を有する部材で構成されることが好ましい。これにより、図11Bに示すように、仕切り板20が底部2に対して押し付けられた際に、仕切り板20が変形して溝8に入り込み、溝8を実質的に閉塞しやすくなる。
上記に鑑みると、特に、図11A~図11Bの例では、仕切り板20はフッ素樹脂等の材料から構成されることが好ましい。
[第二実施形態]
細胞培養デバイス1の第二実施形態につき、第一実施形態と異なる部分を中心に説明する。
細胞培養デバイス1の第二実施形態につき、第一実施形態と異なる部分を中心に説明する。
図12Aは、第二実施形態に係る細胞培養デバイス1の斜視図である。また、図12Bは、図2Aに倣って、第二実施形態に係る細胞培養デバイス1の断面を示す図面である。本実施形態において、本体部3が、Z方向に本体部3を貫通する第一ウェル11、第二ウェル12、及びスリット7を有する点は第一実施形態と同様である。一方で、本実施形態では、図12Bに示すように、細胞培養デバイス1が、スリット7の-Z側に係る開口を閉塞するフィルム21を有する点で、第一実施形態と異なる。
本実施形態では、スリット7のフィルム21より+Z側の空間A1に対して、水や空気等の流体が供給される。流体を供給して空間A1内の圧力を高めることで、フィルム21を変形させて、マイクロ流路4を閉塞することが可能である。図12Cは、図12Bの状態から、マイクロ流路4を閉塞した状態を示す図面である。図12Cに示すように、任意の流体供給部22から空間A1に対して流体L1が供給される。流体供給部22は、例えば、ポンプ等で構成可能である。
流体L1が供給されて空間A1の圧力が高まることで、フィルム21は-Z側に凸形状を示すように変形する。そして、流体L1の供給を続け、フィルム21を底部2の主面2aと接触させることにより、マイクロ流路4を閉塞することができる。本実施形態では、フィルム21が「開閉部6」に対応する。
流体L1は、空間A1の圧力を高められる限りにおいて任意である。例えば、流体L1は、水であっても構わないし、空気であっても構わない。なお、図示は省略するが、空間A1の圧力を高めやすくする観点から、スリット7の+Z側に係る開口が閉塞された状態で、空間A1に配管22aが引き込まれ、配管22aを介して流体L1が空間A1に供給されても構わない。
また、例えば不図示の配管を介して、空間A1内の流体L1を空間A1から排出することで、フィルム21を変形させて、Z方向に関するフィルム21の位置を変更できる。具体的には、流体L1が液体である場合において、液体である流体L1の高さを培養液の液面より低くすることで、マイクロ流路4を開状態とすることができる。また、流体L1の高さと培養液の液面の高さとの関係を調整することで、マイクロ流路4の開度を調整できる。つまり、空間A1の圧力を変更することで、マイクロ流路4の開度が調整される。本実施形態では、流体L1がマイクロ流路4の開度を調整する開度調整機構として機能する。
空間A1内の圧力の変化による変形を容易にする観点から、フィルム21はフィルム状としたときに柔軟性を有する部材で構成されることが好ましい。例えば、フィルム21は、シリコーン樹脂、スチレンブタジエン共重合体樹脂、ポリエチレンテレフタレート、シクロオレフィンポリマー(COP)等の材料から構成される。また、一例として、フィルム21の厚み(Z方向に係る寸法)は、5μm~15μmである。フィルム21の厚みは、フィルム21の構成材料や、マイクロ流路4の高さH1に鑑みて適宜調整可能である。
また、例えば、マイクロ流路4が複数の溝8から構成される場合でも(図11A参照)、フィルム21が柔軟性を有する部材で構成されることで、図11Bを参照して述べたのと同様に、複数の溝8を実質的に閉塞することができる。
一例として、フィルム21は、底部2と本体部3とを接合する前に、本体部3の-Z側の面におけるマイクロ流路4の形成予定領域に対して接合される。本体部3とフィルム21の接合方法は、光等による表面改質を利用した接合であっても構わないし、熱接合等であっても構わない。
第二実施形態に係る細胞培養デバイス1の使用方法について、ステップS1及びステップS4で、空間A1内の圧力変化によりマイクロ流路4の開度が調整される点を除き、第一実施形態で述べたのと同様の議論が可能である。
[第三実施形態]
次に、細胞培養デバイス1の第三実施形態につき、第一実施形態及び第二実施形態と異なる部分を中心に説明する。
次に、細胞培養デバイス1の第三実施形態につき、第一実施形態及び第二実施形態と異なる部分を中心に説明する。
図13Aは、図2Aに倣って、第三実施形態に係る細胞培養デバイス1の断面を示す図面である。本実施形態では、図13Aに示すように、マイクロ流路4を形成する本体部3の-Z側の面において、ヒンジ25が配置される点が異なる。図13Bは、図13Aのヒンジ25近傍の拡大図である。
図13Bに示すように、ヒンジ25は、ベース部25aと、可動板25bと、可動板25bをベース部25aに対して回転する軸25cを有する。ヒンジ25は、Y方向に関して延伸する形状を呈し、Y方向に関して、マイクロ流路4の全域に亘るものとされる。
ベース部25aに対する可動板25bの開閉状態を変更することで、マイクロ流路4の開度を調整することが可能である。可動板25bを底部2の主面2aに接触させることで、マイクロ流路4が閉塞される。また、Z方向に関する可動板25bの位置が変更され、可動板25bが主面2aから離れることで、マイクロ流路4が開状態とされる。本実施形態では、ヒンジ25が「開閉部6」に対応する。
ヒンジ25の開閉状態の変更方法として、例えば、磁力を利用する方法が挙げられる。具体的には、可動板25bの一部に磁石(不図示)を配置しておき、底部2の-Z側に磁石(不図示)を配置することで、引力により可動板25bを引き寄せて底部2の主面2aに接触させても構わない。また、底部2の-Z側に配置された磁石を反転することで、斥力により可動板25bを遠ざけて、マイクロ流路4を開状態とすることができる。別の例として、可動板25bを金属材料で構成すると共に、ヒンジ25の+Z側に本体部3を貫通する開口を形成しても構わない。この場合、底部2の-Z側の面、又は当該開口を介してヒンジ25の+Z側の面に適宜磁石を配置することで、可動板25bの開閉状態を変更できる。
ヒンジ25は、例えば、3Dプリンターを用いた微細加工や、MEMS(Micro Electro Mechanical Systems)を用いた微細加工により形成可能である。ヒンジ25の構成材料は、加工方法等に鑑みて任意に選択できるが、一例として、光硬化エポキシ製永久フォトレジストSU-8、アクリル樹脂、シリコン、シリコーン樹脂等が採用できる。ヒンジ25は、底部2と本体部3とを接合する前に、本体部3の-Z側の面におけるマイクロ流路4の形成予定領域に対して接合される。本体部3とヒンジ25の接合方法は、本体部3の構成材料とヒンジ25の構成材料に鑑みて、上述した接合方法から適宜選択される。
[第四実施形態]
上記においては、第一ウェル11に対し、マイクロ流路4によって一つの第二ウェル12が連絡されるものとして説明した。しかし、第一ウェル11は、複数の第二ウェル12と連絡されても構わない。
上記においては、第一ウェル11に対し、マイクロ流路4によって一つの第二ウェル12が連絡されるものとして説明した。しかし、第一ウェル11は、複数の第二ウェル12と連絡されても構わない。
図14Aは、第四実施形態に係る細胞培養デバイス1の構成例を示す斜視図である。図14Aに示すように、第一ウェル11の+X側に第二ウェル12aが形成されると共に、-X側に第二ウェル12bが形成されても構わない。第一ウェル11と第二ウェル(12a,12b)との間にスリット7が形成され、それぞれのスリット7に仕切り板20が挿入される点について、第一実施形態で述べたのと同様の議論が可能である。
図14Bは、図14Aに係る細胞培養デバイス1のそれぞれのウェルとマイクロ流路の位置関係を示す模式図である。図14Bに示すように、第一ウェル11と第二ウェル(12a,12b)は、それぞれ異なるマイクロ流路(4a,4b)で連絡される。マイクロ流路(4a,4b)の開度は、仕切り板20のZ方向に関する位置を変更することで、調整可能である(図14A参照)。
また、マイクロ流路(4a,4b)の開度は、例えば第二実施形態で述べたように、フィルム21の変形によって調整されても構わない。
また、図15Aは、第四実施形態に係る細胞培養デバイス1の別構成例を示す模式図であり、図15Bは、図15Aに係る細胞培養デバイス1のそれぞれのウェルとマイクロ流路の位置関係を示す模式図である。図15A及び図15Bに示すように、第一ウェル11の+X側に第二ウェル12aが形成され、+Y側に第二ウェル12bが形成されても構わない。さらに、第二ウェル12aの+Y側に第三ウェル13が形成され、第二ウェル(12a,12b)が、第三ウェル13とマイクロ流路(5a,5b)により連絡されても構わない。
図16Aは、第四実施形態に係る細胞培養デバイス1のさらに別の構成例を示す斜視図であり、図16Bは、図16Aに係る細胞培養デバイスのそれぞれのウェルとマイクロ流路の位置関係を示す模式図である。図16Bに示すように、図15Bの例において、第一ウェル11と第三ウェル13とがマイクロ流路4cで相互に連絡されても構わない。つまり、図16A及び図16Bの例では、第三ウェル13は、第一ウェル11に連絡された第二ウェル12cに対応する。
また、図16Bに示すように、第二ウェル12aと第二ウェル12bとがマイクロ流路で相互に連絡されても構わない。この場合、マイクロ流路4cは、当該マイクロ流路と合流するため、Z方向に見たときにX字状を呈する。マイクロ流路4cは、例えばX字状を呈するスリット7に対し、同じくX字状を呈する仕切り板20を挿入することで、開度を調整可能に構成される(図16A参照)。また、各マイクロ流路の形成領域に対して、フィルム21を形成することによって、第二実施形態で述べたように、各マイクロ流路の開度を調整しても構わない。
上記第四実施形態に係る細胞培養デバイス1によれば、第一ウェル11及び複数の第二ウェル(12a,12b,12c)において細胞を培養することで、例えば第一実施形態と比較してより複雑な系における細胞同士の相互作用を評価することができる。例えば、図16Aの例において、脳内の系を想定して、第一ウェル11に脳幹由来の細胞、第二ウェル12aに小脳由来の細胞、第二ウェル12bに中脳由来の細胞、第二ウェル12cに視床由来の細胞をそれぞれ培養して、互いに接触させることができる。
仕切り板20によって、マイクロ流路4a~4cの開度を適宜調整することで、それぞれの細胞に適した培養を実行可能な点について、第一実施形態で述べたのと同様の議論が可能である。
なお、上記においては、マイクロ流路4a~4c及びマイクロ流路5a~5bの開度が仕切り板20によって調整されるものとして説明した。しかし、各構成例において、前述の通り、フィルム21によって各マイクロ流路の開度が調整されても構わない。同様に、第三実施形態で述べたように、ヒンジ25によって各マイクロ流路の開度が調整されても構わない。
また、マイクロ流路4a~4c及びマイクロ流路5a~5bは、それぞれ複数の溝8から構成されても構わない(図11A参照)。
[変形例]
以下、細胞培養デバイス1の変形例について説明する。
以下、細胞培養デバイス1の変形例について説明する。
〈1〉 上記においては、細胞培養デバイス1は、第一ウェル11と第一ウェル11に連絡された第二ウェル12を一組有するものとして説明した。しかし、細胞培養デバイス1は、X-Y平面上に、複数組の第一ウェル11及び第二ウェル12を有しても構わない。この点は、第一ウェル11に対して複数の第二ウェル(12a~12c)が連絡される場合においても同様である。
〈2〉 細胞31及び細胞33の活動をより詳細に観察するために、底部2の主面2aに対して、MEA(Multi-Electrode-Array)センサが配置されても構わない。これにより、例えば、神経突起31aの活動電位を電気信号として検出することができる。
〈3〉 上述した各実施形態の構成は、適宜組み合わせて実現することができる。
〈4〉 上述した細胞培養デバイス1の構成は、あくまで一例であり、本発明は、図示された各構成に限定されない。
1 : 細胞培養デバイス
2 : 底部
3 : 本体部
4,4a~4c,5a,5b : マイクロ流路
6 : 開閉部
7 : スリット
8 : 溝
11 : 第一ウェル
12,12a~12c : 第二ウェル
13 : 第三ウェル
15 : 接合面
20 : 仕切り板
21 : フィルム
22 : 流体供給部
22a : 配管
25 : ヒンジ
25a : ベース部
25b : 可動板
25c : 軸
31,33 : 細胞
31a : 神経突起
32,34 : 培養液
80 : 細胞培養デバイス
81,82 : ウェル
83 : マイクロ流路
91,92 :細胞
2 : 底部
3 : 本体部
4,4a~4c,5a,5b : マイクロ流路
6 : 開閉部
7 : スリット
8 : 溝
11 : 第一ウェル
12,12a~12c : 第二ウェル
13 : 第三ウェル
15 : 接合面
20 : 仕切り板
21 : フィルム
22 : 流体供給部
22a : 配管
25 : ヒンジ
25a : ベース部
25b : 可動板
25c : 軸
31,33 : 細胞
31a : 神経突起
32,34 : 培養液
80 : 細胞培養デバイス
81,82 : ウェル
83 : マイクロ流路
91,92 :細胞
Claims (10)
- 底部と前記底部に接合された本体部とを含む細胞培養デバイスであって、
前記本体部を貫通する貫通孔からなり、前記底部の主面に平行な方向に関して相互に隣り合う位置に形成された、第一ウェル及び第二ウェルと、
前記底部と前記本体部との接合面の一部に形成され、前記第一ウェルと前記第二ウェルとを相互に連絡するマイクロ流路と、
前記底部の主面に直交する方向に関する位置を変更可能に構成され、前記マイクロ流路の開度を調整する開閉部と、を備える細胞培養デバイス。 - 前記本体部側から見たときに、前記第一ウェルと前記第二ウェルに挟まれた位置に形成され、開度調整機構を導入可能なスリットを有することを特徴とする、請求項1に記載の細胞培養デバイス。
- 前記開閉部は、前記スリットに挿入された仕切り板を有することを特徴とする、請求項2に記載の細胞培養デバイス。
- 前記スリット内に流体を導入又は排出する流体供給部をさらに備え、
前記開閉部は、前記スリットの前記底部側の開口を覆うフィルムを有することを特徴とする、請求項2に記載の細胞培養デバイス。 - 前記マイクロ流路の高さは、神経細胞の径より小さく、神経突起の径よりも大きいことを特徴とする、請求項1~4のいずれか一項に記載の細胞培養デバイス。
- 前記マイクロ流路は、前記底部に形成された複数の溝から構成されたことを特徴とする、請求項1~4のいずれか一項に記載の細胞培養デバイス。
- 複数の前記第二ウェルを備え、
前記第一ウェルと複数の前記第二ウェルとは、それぞれ異なる前記マイクロ流路で連絡されたことを特徴とする、請求項1~4のいずれか一項に記載の細胞培養デバイス。 - 請求項1~4のいずれか一項に記載の細胞培養デバイスの使用方法であって、
前記開閉部を操作して、前記マイクロ流路が閉塞された閉状態にする工程(a)と、
前記工程(a)の後に、前記第一ウェルに培養液と共に第一細胞を配置して培養する工程(b)と、
前記工程(b)と同時、又は前記工程(b)の後に、前記第二ウェルに培養液と共に第二細胞を配置して培養する工程(c)と、
前記開閉部を操作することで前記マイクロ流路を開状態にして、前記第一細胞と前記第二細胞とを接触させる工程(d)と、を有する細胞培養デバイスの使用方法。 - 前記第一細胞及び前記第二細胞のうち、少なくとも一方は神経細胞であり、
前記工程(d)は、神経突起によって前記第一細胞と前記第二細胞とを接触させる工程を含むことを特徴とする、請求項8に記載の細胞培養デバイスの使用方法。 - 前記細胞培養デバイスの前記マイクロ流路は、前記底部に形成された複数の溝から構成されており、
前記工程(d)は、前記複数の溝のそれぞれに対して、神経突起を侵入させる工程を含むことを特徴とする、請求項8に記載の細胞培養デバイスの使用方法。
Applications Claiming Priority (2)
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|---|---|---|---|
| JP2024-055880 | 2024-03-29 | ||
| JP2024055880A JP2025153405A (ja) | 2024-03-29 | 2024-03-29 | 細胞培養デバイス、細胞培養デバイスの使用方法 |
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| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| WO2025205447A1 true WO2025205447A1 (ja) | 2025-10-02 |
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ID=97219882
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|---|---|---|---|
| PCT/JP2025/011083 Pending WO2025205447A1 (ja) | 2024-03-29 | 2025-03-21 | 細胞培養デバイス、細胞培養デバイスの使用方法 |
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|---|---|
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| WO (1) | WO2025205447A1 (ja) |
Citations (2)
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|---|---|---|---|---|
| WO2017187696A1 (ja) * | 2016-04-28 | 2017-11-02 | 一般財団法人生産技術研究奨励会 | 神経細胞を培養する装置、神経細胞を培養する方法、培養された神経細胞、軸索束内のプロテインを解析及び同定する方法並びに神経細胞の使用方法 |
| WO2019167951A1 (ja) * | 2018-02-28 | 2019-09-06 | 国立大学法人横浜国立大学 | 培養装置、2種類以上の細胞構造体を構築する方法及びオンチップ臓器デバイス |
-
2024
- 2024-03-29 JP JP2024055880A patent/JP2025153405A/ja active Pending
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2025
- 2025-03-21 WO PCT/JP2025/011083 patent/WO2025205447A1/ja active Pending
Patent Citations (2)
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| WO2017187696A1 (ja) * | 2016-04-28 | 2017-11-02 | 一般財団法人生産技術研究奨励会 | 神経細胞を培養する装置、神経細胞を培養する方法、培養された神経細胞、軸索束内のプロテインを解析及び同定する方法並びに神経細胞の使用方法 |
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| NETO ESTRELA, LEITÃO LUÍS, SOUSA DANIELA M., ALVES CECÍLIA J., ALENCASTRE INÊS S., AGUIAR PAULO, LAMGHARI MERIEM: "Compartmentalized Microfluidic Platforms: The Unrivaled Breakthrough of In Vitro Tools for Neurobiological Research", THE JOURNAL OF NEUROSCIENCE, SOCIETY FOR NEUROSCIENCE, US, vol. 36, no. 46, 16 November 2016 (2016-11-16), US , pages 11573 - 11584, XP055978973, ISSN: 0270-6474, DOI: 10.1523/JNEUROSCI.1748-16.2016 * |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JP2025153405A (ja) | 2025-10-10 |
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