WO2023234034A1 - 被覆金属基材およびその製造方法、被覆金属基材を含む複合体、ならびに被覆金属基材を製造するための高分子 - Google Patents

被覆金属基材およびその製造方法、被覆金属基材を含む複合体、ならびに被覆金属基材を製造するための高分子 Download PDF

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由枝 小松
文久 北脇
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Phcホールディングス株式会社
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    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C08ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08GMACROMOLECULAR COMPOUNDS OBTAINED OTHERWISE THAN BY REACTIONS ONLY INVOLVING UNSATURATED CARBON-TO-CARBON BONDS
    • C08G75/00Macromolecular compounds obtained by reactions forming a linkage containing sulfur with or without nitrogen, oxygen, or carbon in the main chain of the macromolecule
    • C08G75/02Polythioethers
    • C08G75/0204Polyarylenethioethers
    • C08G75/025Preparatory processes
    • C08G75/0268Preparatory processes using disulfides
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N21/00Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
    • G01N21/62Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light
    • G01N21/63Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light optically excited
    • G01N21/64Fluorescence; Phosphorescence
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
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    • G01N33/551Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals the carrier being inorganic
    • G01N33/553Metal or metal coated

Definitions

  • the present invention relates to a coated metal base material, a method for producing the same, a composite including the coated metal base material, and a polymer for producing the coated metal base material.
  • a biosensor specifically reacts a specific test substance to be detected with a specific specific binding substance to form a complex, and detects the test substance using a signal resulting from the specific binding in the complex.
  • the complex comprises, for example, a test substance, a specific binding substance, a fluorescent substance, and a metal particle.
  • surface plasmon resonance is induced in the metal particles within the complex, and a near field is formed near the surface of the metal particles. This near field increases the fluorescence intensity of the fluorescent substance.
  • molecular chains containing hydrophobic alkyl groups are arranged in a brush-like manner, so they are effective at adsorbing non-specifically adsorbed substances that contribute to noise components (non-specific adsorption or non-specific adsorption). There is a possibility that it cannot be suppressed.
  • the main object of the present invention is to provide a polymer that can reduce the film thickness, sufficiently shorten the distance between the metal substrates in the composite, and increase the detection sensitivity.
  • Another main object of the present invention is to provide a coated metal base material in which a polymer film is formed using such a polymer, a method for producing the same, and a composite body containing the coated metal base material.
  • the polymer according to one embodiment of the present invention is It has a hydrophilic group at the end of the side chain that is bonded via a disulfide group.
  • the coated metal base material according to one embodiment of the present invention is A metal base material that is a metal nanoparticle and/or a metal thin film, a polymer film that covers the surface of the metal base material, and a first hydrophilic group that suppresses nonspecific adsorption to the surface of the metal base material. It consists of The first hydrophilic group is bonded to the surface of the metal base material,
  • the polymer film includes a bonding site via a sulfur atom with the surface of the metal base material.
  • a complex according to an embodiment of the present invention includes: comprising two or more nanoparticle bodies containing the metal nanoparticles,
  • the two or more nanoparticle bodies include a first nanoparticle body and a second nanoparticle body,
  • the first nanoparticle body and the second nanoparticle body are bonded via the test substance.
  • a complex according to an embodiment of the present invention includes: comprising a nanoparticle body containing the metal nanoparticles and a coated metal thin film containing the metal thin film,
  • the first hydrophilic group is bonded to at least one of the surface of the metal nanoparticle and the surface of the metal thin film,
  • the nanoparticles and the coated metal thin film are bonded via a test substance.
  • a method for manufacturing a coated metal base material according to an embodiment of the present invention includes: The method comprises the step of bringing the polymer into contact with the surface of a metal base material, bonding the hydrophilic group to the surface of the metal base material, and forming a polymer film on the surface of the metal base material. .
  • the present invention can provide a polymer that can reduce the thickness of the polymer membrane, sufficiently reduce the distance between metal substrates in a composite, and increase detection sensitivity. Further, it is possible to provide a coated metal base material in which a polymer film is formed using such a polymer, a method for producing the same, and a composite body containing the coated metal base material.
  • FIG. 1 is a cross-sectional view schematically showing a coated metal base material according to a second embodiment ((a) nanoparticle body and (b) coated metal thin film).
  • FIG. 2 is an enlarged schematic diagram of section A in FIG. 1(a).
  • FIG. 3 is a cross-sectional view schematically showing a composite body according to a third embodiment.
  • FIG. 4 is a diagram schematically showing a measuring device that detects a test substance using a complex according to a third embodiment.
  • FIG. 5 is a cross-sectional view schematically showing a composite body according to a fourth embodiment.
  • FIG. 6 is a diagram showing absorption spectra in each step of polymer synthesis.
  • FIG. 7 is a diagram showing reactions related to the method for forming a polymer film of Example 1.
  • FIG. 1 is a cross-sectional view schematically showing a coated metal base material according to a second embodiment ((a) nanoparticle body and (b) coated metal thin film).
  • FIG. 2 is an
  • FIG. 8 is a SEM image of the polymer-coated hydrophilic group-labeled silver nanoparticles of Example 1.
  • FIG. 9 is a diagram showing the distribution of the ratio of scattered light intensity to zeta potential for the polymer-coated hydrophilic group-labeled silver nanoparticles of Example 1.
  • FIG. 10 is a distribution of the scattered light intensity ratio to the particle diameter for the polymer-coated hydrophilic group-labeled silver nanoparticles of Example 1.
  • FIG. 11 is a diagram showing a SEM image of polymer-coated hydrophilic group-labeled silver nanoparticles of Example 2.
  • FIG. 12 is a diagram showing the distribution of the ratio of scattered light intensity to zeta potential for the polymer-coated hydrophilic group-labeled silver nanoparticles of Example 2.
  • Numerical ranges referred to herein are intended to include the lower and upper limits themselves, unless specific terms such as “less than,” “greater than,” and “less than” are used. For example, if a numerical range of 1 nm to 50 nm is taken as an example, the numerical range is interpreted to include the lower limit “1 nm” and the upper limit “50 nm” unless a special term is added.
  • the term "metal base material” refers to a base material that is substantially made of metal and includes a metal thin film (or also referred to as a metal plate or metal film) and metal nanoparticles. Metal nanoparticles and metal thin films differ mainly in shape.
  • the expression that the target member is substantially made of a specific material or that the target member is made of a specific material means that the target member is 95% by mass or more, 97% by mass or more, 99% by mass or more, or 100% by mass. Contains a specific material in a proportion of .
  • the metal base material being substantially composed of metal means that the metal base material contains metal in a proportion of 95% by mass or more, 97% by mass or more, 99% by mass or more, or 100% by mass.
  • metal nanoparticles are particles that are substantially made of metal, whose size is on the order of nanometers (for example, several nm to 100 nm), and whose shape is spherical or approximately spherical. refers to the particles of “Metal nanoparticles” cause localized surface plasmon resonance with other metal nanoparticles upon interaction with light (eg, visible light).
  • a “metal thin film” is a thin film that is substantially made of metal and whose original thickness is on the order of nanometers (eg, several nm to 100 nm). The "metal thin film” causes localized surface plasmon resonance with metal nanoparticles through interaction with light (eg, visible light and near-infrared light).
  • the polymer according to the first embodiment has a hydrophilic group bonded via a disulfide group (disulfide bond) (-SS-) at the end of a side chain.
  • the polymer according to the first embodiment can contact the surface of the metal base material to form a polymer film and a hydrophilic group on the surface of the metal base material. Thereby, a coated metal base material (described in detail in the second embodiment) can be manufactured.
  • the complex having a polymer membrane formed from a polymer according to the first embodiment has excellent detection sensitivity. Although not bound by any particular theory, the reason is assumed to be as follows.
  • the polymer according to the present embodiment has, for example, general formula (1): (In general formula (1), X represents a hydrophilic group, L represents, for example, an amide bond, and n represents the number of repeating units)
  • the polymer having a hydrophilic group bonded via a disulfide group at the end of the side chain (hereinafter, the polymer represented by general formula (1) is also referred to as "polymer (1)" in the first embodiment). (also referred to as "polymer 3B" in the second embodiment and subsequent embodiments).
  • the present inventors believe that by cleaving the disulfide group, one of the S atoms contributes to reducing the film thickness of the polymer membrane, and the other S atom contributes to improving the ease of exposure of the hydrophilic group.
  • the present inventor has devised that the following two embodiments can be realized by cleavage of the disulfide group; (First aspect): An embodiment in which one S atom attached to the end of a side chain branching from the polymer main chain is bonded to a predetermined location on the surface of the metal base material, and (second embodiment): An embodiment in which the S atom connected to the other hydrophilic group X is connected at a location different from the predetermined location on the surface of the metal base material.
  • the present invention as described above, it is possible to "reduce the thickness of the polymer membrane” and “improve the ease with which hydrophilic groups are exposed.”
  • the polymer (1) when the polymer (1) is brought into contact with a metal base material, at least a portion of the bonds between the sulfur atoms of the disulfide group are cleaved, and a bonding site via the sulfur atoms is formed on the surface of the metal base material. .
  • the polymers constituting the polymer film are bonded to the metal base material at the ends of side chains.
  • a polymer film has a structure that covers the surface of a metal base material in a two-dimensional manner such that the main chain of the polymer that constitutes the film is approximately parallel to the surface of the metal base material, so for example, as shown in Patent Document 1, Compared to a polymer film formed by arranging one-dimensional polymers substantially perpendicular to the surface of a metal base material, the thickness of the polymer film can be reduced. Thereby, the distance between the metal base materials in the composite can be made sufficiently small.
  • the main chain of a polymer is a hydrocarbon chain (for example, an alkylene chain) that forms the main skeleton of the polymer, and is a chain in which multiple repeating units constituting the polymer are bonded to each other and extended. Parallel hydrocarbon chains in the same direction.
  • the hydrocarbon chain may have divalent groups containing heteroatoms, such as ether groups, amide bonds and ester bonds.
  • the side chain of a polymer refers to a hydrocarbon chain branched from the main chain.
  • the side hydrocarbon chain may also have a divalent group containing a hetero atom, similar to the main hydrocarbon chain.
  • the formed polymer film can have a structure in which hydrophilic groups are easily exposed. Thereby, non-specific adsorption can be suppressed and, for example, the signal-to-noise ratio (S/N ratio) in plasmon excitation fluorescence analysis can be improved. From the above, the complex having the polymer membrane formed of the polymer according to the first embodiment has excellent detection sensitivity.
  • n indicating the number of repeating units is, for example, a number such that the weight average molecular weight Mw of the polymer (1) is greater than 12,000.
  • Hydrophilic groups include polar groups and/or chargeable groups.
  • the polar group includes, for example, at least one selected from the group consisting of a carboxyl group, a hydroxyl group, an amino group, a sulfonyl group, a phosphoric acid group, and an alkylene oxide group.
  • the chargeable group includes, for example, at least one selected from the group consisting of a group in which a polar group is charged and a zwitterion group.
  • the zwitterionic group includes, for example, at least one selected from the group consisting of a phosphorylcholine group and a betaine group.
  • hydrophilic sites are effective in suppressing non-specific adsorption to polymer membranes. They have also found that non-specific adsorption can be effectively suppressed when the hydrophilic site can be exposed from the formed polymer membrane. Based on these technical findings, a polymer (1) having a hydrophilic group bonded to the end of the side chain via a disulfide bond was derived.
  • the present inventors have discovered that, in addition to hydrophilic groups, introducing a hydrophilic site into the main chain skeleton of a polymer constituting a polymer membrane is effective in suppressing nonspecific adsorption.
  • the main chain skeleton of the polymer (1) preferably contains an amide bond.
  • the main chain skeleton of the polymer (1) preferably has a structure derived from one or more amino acids.
  • amino acids include, for example, at least one selected from the group consisting of lysine, histidine, arginine, glutamic acid, aspartic acid, glutamine, asparagine, serine, and threonine.
  • the main chain skeleton of the polymer (1) preferably contains a biocompatible polymer as a block polymer.
  • biocompatible polymers include, for example, polymethyl methacrylate.
  • the polymer (1) may further include a positively chargeable group in the side chain. This side chain does not have a disulfide group.
  • the formed polymer film can form an electrostatic bond with the surface of the metal base material. This fixes the polymer membrane more firmly.
  • the polymer (1) may further include a hydrophobic group in the side chain. This side chain does not have a disulfide bond.
  • a hydrophobic group is at least one type selected from the group consisting of an aromatic cyclic group, an aliphatic cyclic group, and an aliphatic chain group.
  • the method for producing a polymer includes, for example, a step of introducing a disulfide group into a side chain (disulfide group introduction step) and a step of introducing a hydrophilic group (hydrophilicity introduction step).
  • -Disulfide group introduction step- As shown in Scheme 1, in the disulfide group introduction step, for example, a polymer having a functional site Z in a side chain (a polymer represented by formula (3) (hereinafter also referred to as polymer (3))), A compound having a disulfide group (a compound represented by formula (4) (hereinafter also referred to as a compound having a disulfide group (4))) is reacted to form a polymer having a disulfide group (represented by formula (2)). A polymer (hereinafter also referred to as polymer (2)) is obtained.
  • the functional sites Z and T are different from each other and are reactive substituents such as amino groups, carboxyl groups, and ester bonds.
  • This reaction is, for example, a nucleophilic substitution reaction in which an amino group attacks a carboxyl group or an ester bond to form an amide bond.
  • the reaction temperature is, for example, room temperature (20° C. to 25° C.), and the reaction time is, for example, 1 hour or more and 4 hours or less.
  • Examples of the functional site Z in the polymer (3) include an amino group, a carboxyl group, and an ester group.
  • Examples of the polymer (3) include: can be mentioned.
  • Examples of the compound (4) having a disulfide group include: can be mentioned.
  • thiol compound represented by formula (5) (hereinafter also referred to as thiol compound (5))) is reacted with the polymer (2) to form a hydrophilic group.
  • a polymer (1) having the following is obtained.
  • This reaction is a thiol nucleophilic reaction in which a thiol group attacks the disulfide bond of the polymer (2).
  • the reaction temperature is, for example, 35 to 40° C. (especially 0.degree. C.), and the reaction time is, for example, 30 minutes or more to 2 hours or more (especially 1 hour or more).
  • the thiol compound (5) for example,
  • the coating film (ie, polymer film) of the coated metal base material according to the second embodiment may be formed of the polymer according to the first embodiment. That is, the polymer constituting the polymer membrane may be derived from the polymer according to the first embodiment. Note that in the second embodiment, the same reference numerals as those in the first embodiment have the same configurations as in the first embodiment, so the description thereof will be omitted.
  • the coated metal base material according to the second embodiment includes a metal base material, a polymer film that covers the surface of the metal base material, and a first hydrophilic group that suppresses nonspecific adsorption to the surface of the metal base material. It consists of The first hydrophilic group is bonded to the surface of the metal base material, The polymer membrane includes bonding sites via sulfur atoms with the surface of the metal base material.
  • the coated metal base material according to the second embodiment can increase detection sensitivity. Although not bound by any particular theory, the reason is assumed to be as follows.
  • the coated metal base material according to this embodiment includes a first hydrophilic group bonded to the surface of the metal base material. Since the first hydrophilic group suppresses non-specific adsorption to the coated metal substrate, a decrease in the S/N ratio is suppressed in detection of the test substance, and detection sensitivity is improved. Further, the coated metal base material according to the present embodiment includes a polymer film that includes a bonding site via a sulfur atom with the surface of the metal base material in addition to the first hydrophilic group.
  • the thickness of the polymer membrane can be reduced. This makes it possible to reduce the distance between the coated metal substrates in the complex formed during detection of the test substance. From the above, it is thought that the coated metal base material according to the second embodiment can improve detection sensitivity.
  • FIG. 1 is a cross-sectional view schematically showing a coated metal base material according to a second embodiment.
  • the coated metal base material 1 includes a nanoparticle body 1A and a coated metal thin film 1B.
  • the nanoparticles 1A are attached to the metal base material 2, which is the metal nanoparticles 2A, to the polymer film 3 that covers the surface of the metal base material 2, and to the surface of the metal base material 2.
  • the first hydrophilic group 7A (not shown in FIG. 1(a)) suppresses non-specific adsorption of.
  • the nanoparticle body 1A may further include a fluorescent substance 6 and/or a specific binding substance 4.
  • the metal nanoparticles 2A cause localized surface plasmon resonance (or localized surface plasmon resonance; hereinafter also simply referred to as "plasmon resonance") by irradiation with excitation light.
  • the polymer film 3 covers the surface of the metal nanoparticles 2A, and includes bonding sites with the surface of the metal base material 2 via sulfur atoms.
  • the first hydrophilic group 7 is bonded to the surface of the metal base material 2.
  • the coated metal thin film 1B includes a metal base material 2, which is the metal thin film 2B, a polymer film 3 that covers the surface of the metal base material 2, and a coating on the surface of the metal base material 2.
  • the first hydrophilic group 7 (not shown in FIG. 1(b)) suppresses non-specific adsorption.
  • the coated metal thin film 1B may further include a specific binding substance 4.
  • the metal thin film 2B causes localized surface plasmon resonance by irradiation with excitation light.
  • the polymer film 3 covers the surface of the metal thin film 2B and includes bonding sites with the surface of the metal base material 2 via sulfur atoms.
  • the first hydrophilic group 7 is bonded to the surface of the metal base material 2.
  • the coated metal base material 1 can be used for plasmon excitation fluorescence analysis. Stated another way, the coated metal substrate 1 can be used for surface plasmon excitation enhanced fluorescence spectroimmunoassay.
  • the coated metal substrate 1 captures the test substance in the specimen, and forms a complex (detailed in the third and fourth embodiments) containing, for example, two coated metal substrates 1 and one test substance. can do.
  • plasmon resonance occurs and a near field is formed. This near field increases the fluorescence intensity. In other words, an electric field enhancement effect can be obtained.
  • the coated metal substrate 1 may also have non-specific binding sites blocked with a blocking agent.
  • the blocked coated metal substrate 1 suppresses the formation of non-specific binding of the specific binding substance 4 to substances other than the detection target (i.e., substances other than the test substance), reducing background and false positive signals.
  • the S/N ratio can be improved.
  • detection sensitivity can be further improved.
  • Blocking agents include, for example, bovine serum albumin (BSA), proteins such as skim milk and casein, and chemically synthesized polymers.
  • the dispersion of the nanoparticles 1A may further contain a dispersant for the purpose of improving the dispersibility of the nanoparticles 1A.
  • a dispersant for the purpose of improving the dispersibility of the nanoparticles 1A.
  • examples of such dispersants include heparin sodium.
  • the surface of the metal base material 2 is coated with a polymer film 3.
  • the metal substrate 2 preferably contains gold or silver, and more preferably contains silver.
  • the metal base material 2 includes metal nanoparticles 2A and a metal thin film 2B.
  • the metal nanoparticles 2A interact with light having a specific wavelength, which varies depending on the type of metal constituting the metal nanoparticles 2A, and cause localized surface plasmon resonance.
  • Silver nanoparticles nanoparticles made essentially of silver
  • gold nanoparticles nanoparticles made essentially of gold
  • silver nanoparticles with a particle diameter of 20 nm resonate with light having a wavelength of 405 nm.
  • Nanoparticles made of gold and having a diameter of 20 nm resonate with light having a wavelength of 524 nm.
  • the particle size (average primary particle size) of the metal nanoparticles 2 is, for example, 5 nm to 100 nm.
  • the particle size of the metal nanoparticles 2 is determined by capturing an image of the metal nanoparticles 2 using a scanning electron microscope (SEM) or a transmission electron microscope (TEM), and measuring the particle size of the metal nanoparticles 2 in the image. It can be obtained by calculating the average value of a plurality of particle diameters (number of measurements: for example, at least 10 or more).
  • the metal thin film 2B interacts with light having a specific wavelength (for example, visible light) and causes localized surface plasmon resonance with the metal nanoparticles, although this varies depending on the type of metal constituting the metal thin film 2B.
  • a specific wavelength for example, visible light
  • the polymer film 3 covers the surface of the metal base material 2 .
  • the polymer film 3 functions as a metal quenching film.
  • the polymer film 3 can space the fluorescent substance 6 from the surface of the metal base material 2 by at least the thickness of the polymer film 3 . Therefore, it is possible to suppress the excited fluorescent substance 6 from coming into contact with the surface of the metal base material 2 and being quenched, thereby suppressing a decrease in detection sensitivity.
  • the presence of the polymer film 3 can be confirmed by taking an image of the nanoparticle body 1 using SEM or TEM and observing the coated metal base material 1 in the image.
  • FIG. 2 is an enlarged view of part A in FIG. 1(a), and is a schematic enlarged view of the vicinity of the interface between the polymer film 3 of the nanoparticle body 1A and the surface of the metal nanoparticle 2A. Since the polymer film 3 of the nanoparticle body 1A has substantially the same configuration as the polymer film 3 of the coated metal thin film 1B, the polymer film 3 of the nanoparticle body 1A will be described below.
  • the polymer membrane 3 includes a bonding site 3a via a sulfur atom with the surface of the metal nanoparticle 2 (that is, the polymer 3A constituting the polymer membrane 3 is connected to the metal base material 2 (the metal nanoparticle 2A ) contains a bonding site 3a via a sulfur atom between the surface of
  • the polymer membrane 3 may further include at least one selected from the group consisting of positively charged groups 3b and hydrophobic groups 3c (for example, the polymer 3A constituting the polymer membrane 3 is
  • the side chain may further include at least one selected from the group consisting of positively charged group 3b and hydrophobic group 3c.This side chain does not have a disulfide group.) More specifically, in this side chain, in addition to a bonding site 3a via a sulfur atom between the polymer film 3 and the surface of the metal nanoparticle 2, primary ammonium as a positively charged group 3b is added to the side chain.
  • the bonding site 3a bonds between the surface of the metal nanoparticle 2 and the polymer film 3 via a sulfur atom.
  • the positively chargeable group 3b forms an electrostatic bond (ionic bond) b with the surface of the negatively chargeable metal nanoparticle 2.
  • the hydrophobic group 3c forms a hydrophobic bond c with the surface of the metal nanoparticle 2.
  • polymer 3A the polymer forming the polymer membrane 3
  • polymer 3B the polymer as a raw material from which the polymer membrane 3 is formed by reaction
  • the polymer membrane 3 is stably fixed to the surface of the metal nanoparticles 2 by the binding sites 3a. Furthermore, the polymer membrane 3 can be more stably fixed to the surface of the metal nanoparticles 2 by the hydrophobic bonds c and the electrostatic bonds b by the positively charged groups 3b. In this way, the polymer film 3 is stably fixed to the surface of the metal nanoparticles 2, so that the fluorescent substance 6 and the surface of the metal nanoparticles 2 can be stably separated by a predetermined distance. Therefore, in this embodiment, quenching of the excited fluorescent substance 6 is suppressed, and a decrease in detection sensitivity can be suppressed.
  • the polymer membrane 3 can be configured to include the polymer 3A, it is easier to chemically modify and has less need for surface modification etc. than a silica layer. Thereby, the film thickness can be made smaller than that of the silica layer, and the distance between the metal nanoparticles 2A in the composite can be appropriately reduced. Therefore, a near field is formed more efficiently, and detection sensitivity can be further improved.
  • the polymer 3A that can constitute the polymer membrane 3 has a bonding site 3a with the surface of the metal nanoparticle 2 via a sulfur atom, as well as a positively charged group 3b and a hydrophobic group. At least one selected from the group consisting of 3c.
  • the presence of the bonding site 3a via the sulfur atom, the positively charged group 3b and the hydrophobic group 3c can be used for infrared spectroscopy, energy dispersive X-ray spectroscopy (TEM-EDS), X-ray photoelectron spectroscopy (XPS), This can be confirmed by measuring signals derived from time-of-flight secondary ion mass spectrometry (TOF-SIMS) and nuclear magnetic resonance spectroscopy.
  • TEM-EDS energy dispersive X-ray spectroscopy
  • XPS X-ray photoelectron spectroscopy
  • the polymer 3A constituting the polymer membrane 3 can include one or more second hydrophilic groups 7B bonded to the side chain of the polymer 3A via a disulfide group per molecular chain of the polymer 3A. Since the polymer 3A constituting the polymer membrane 3 includes the second hydrophilic group 7B, non-specific adsorption to the polymer membrane 3 can be suppressed.
  • the second hydrophilic group 7B is a hydrophilic group that binds to a disulfide bond that remains unreacted during the formation of a polymer membrane. For example, it originates from some of the hydrophilic groups bonded via disulfide bonds in the polymer 3B (the polymer according to the first embodiment) as a raw material.
  • the polymer 3A containing the second hydrophilic group 7B can be produced by easing the reaction conditions in the method for forming the polymer membrane 3 (for example, reaction conditions such as lower reaction temperature and/or shorter reaction time). It can be prepared. Mild reaction conditions include, for example, a reaction time shorter than 12-36 hours and/or a reaction temperature lower than 20-30°C.
  • the second hydrophilic group 7B includes a polar group and/or a chargeable group.
  • the polar group includes, for example, at least one selected from the group consisting of a carboxyl group, a hydroxyl group, an amino group, a sulfonyl group, a phosphoric acid group, and an alkylene oxide group.
  • the chargeable group includes, for example, at least one polar group selected from the group consisting of a charged group and a zwitterionic group, and the zwitterionic group is selected from the group consisting of a phosphorylcholine group and a betaine group. Contains at least one.
  • the polymer 3A constituting the polymer membrane 3 preferably includes an amide bond in the main chain skeleton of the polymer 3A.
  • the polymer 3A has hydrophilicity, so non-specific adsorption to the polymer membrane 3 composed of the polymer 3A is suppressed, further improving detection sensitivity. do.
  • the polymer 3A includes a structure derived from one or more amino acids in the main chain skeleton.
  • amino acids include, for example, at least one selected from the group consisting of lysine, histidine, arginine, glutamic acid, glutamine aspartate, asparagine, serine, and threonine.
  • the polymer 3A has hydrophilicity, which suppresses nonspecific adsorption to the polymer membrane 3 composed of the polymer 3A. This further improves detection sensitivity.
  • the polymer 3A constituting the polymer membrane 3 preferably includes a biocompatible polymer as a block polymer in the main chain skeleton of the polymer 3A.
  • the polymer 3A has hydrophilicity, so non-specific adsorption to the polymer membrane 3 composed of the polymer 3A is suppressed, and detection is possible. Sensitivity is further improved.
  • biocompatible polymers include, for example, polymethacrylic acrylate.
  • the polymer 3A constituting the polymer film 3 can cover the surface of the metal base material 2 in a two-dimensional manner such that the main chain of the polymer 3A is approximately parallel to the surface of the metal base material 2. .
  • Such a coating mode with the polymer 3A can be realized by bonding the terminals of a plurality of side chains of the polymer 3A to the surface of the metal base material 2 via sulfur atoms.
  • the polymer chains have a brush-like shape.
  • the film thickness of the polymer film 3 can be reduced compared to a polymer film formed in such an arrangement (prior art: International Publication No. 2001/086301).
  • the bonding site 3a via a sulfur atom is formed, for example, by mixing a polymer having a site containing a disulfide bond as a side chain and the metal base material 2 (metal nanoparticles 2A).
  • the positively chargeable group 3b can form a relatively strong electrostatic bond b with the surface of the metal base material 2 (metal nanoparticle 2A).
  • the positively chargeable group 3b is a completely positively ionized group having a valence of one or more.
  • pKa is an electrically neutral group contained in the polymer 3A constituting the polymer membrane 3, and if it is positively charged, it is a positively charged group (more specifically, Indicates the pKa of a group that can be a primary ammonium group (-NH 3 + ), etc. (hereinafter also referred to as an electrically neutral group) (more specifically, a primary amino group (-NH 2 ), etc.).
  • pH indicates the pH of the environment in which the test substance is detected (more specifically, the sample, etc.)
  • B indicates the electrically neutral group contained in the polymer 3A
  • BH + indicates the electrically neutral group contained in the polymer 3A.
  • the positively charged group 3b is present in an environment where the electrically neutral group and the positively charged group 3b of the polymer 3A constituting the polymer membrane 3 detect the test substance (for example, a sample with a pH of approximately 6 to 8). So, the following chemical equilibrium equation (2): When forming an equilibrium state expressed by say.
  • the hydrophobic group 3c can form a hydrophobic bond c with the surface of the metal base material 2 (metal nanoparticle 2A).
  • the hydrophobic group 3c is, for example, at least one selected from the group consisting of an aromatic cyclic group, an aliphatic cyclic group, and an aliphatic chain group.
  • aromatic cyclic group examples include aromatic carbocyclic groups and aromatic heterocyclic groups.
  • An aromatic carbocyclic group is a group that does not contain an aromatic heterocycle but contains an aromatic ring whose ring member atoms are all carbon atoms.
  • Examples of the aromatic carbocyclic group include an aryl group (more specifically, a phenyl group, etc.) and an arylalkyl group (more specifically, a benzyl group, etc.).
  • An aromatic heterocyclic group is a group containing an aromatic ring in which at least one of the ring member atoms is a heteroatom (more specifically, an oxygen atom, a sulfur atom, a nitrogen atom, etc.).
  • aromatic heterocyclic group examples include a nitrogen-containing aromatic heterocyclic group (more specifically, a pyridyl group (pyridinyl group), etc.), a sulfur-containing aromatic heterocyclic group, and an oxygen-containing aromatic heterocyclic group. It will be done.
  • An aliphatic cyclic group is a group that does not contain an aromatic ring but contains a cyclic group consisting of a non-aromatic ring.
  • Examples of the aliphatic cyclic group include an aliphatic carbocyclic group and an aliphatic heterocyclic group.
  • the aliphatic carbocyclic group is a group containing a non-aromatic ring in which all ring member atoms are carbon atoms, and includes, for example, a cycloalkyl group.
  • An aliphatic heterocyclic group is a group containing a non-aromatic ring in which at least one of the ring member atoms is a heteroatom.
  • the aliphatic chain group is a chain (more specifically, linear and branched) group that does not contain an aromatic ring or a non-aromatic ring.
  • Examples of the aliphatic chain group include aliphatic carbon chain groups (more specifically, alkyl groups, alkylene groups, etc.) and aliphatic hetero chain groups.
  • An example of the alkyl group is a butyl group.
  • the alkylene group is, for example, an n-butylene group.
  • the thickness of the polymer film 3 is preferably 1 nm to 50 nm, more preferably 1 nm to 10 nm.
  • the separation distance (separation distance) is such that a near field is efficiently formed in the space between the two metal nanoparticles 2, so that the detection sensitivity is further improved.
  • the thickness of the polymer film 3 is 1 nm or more, the metal nanoparticles 2 and the fluorescent substance are arranged with a predetermined distance between them, which suppresses the quenching of the fluorescent substance excited during measurement, further increasing the detection sensitivity. improves.
  • the separation distance (separation distance) refers to the minimum distance (shortest distance) between the surfaces of metal nanoparticles contained in two nanoparticle bodies that are bonded via a test substance in a complex. say.
  • the first hydrophilic group 7A is bonded to the surface of the metal base material 2. More specifically, the first hydrophilic group 7A includes a bonding site with the surface of the metal base material 2 via a sulfur atom. Such a bonding site can be formed, for example, by mixing the metal base material 2 (metal nanoparticles 2A) as a starting material with the polymer 3B or a compound having a disulfide bond (see the first embodiment). I can do it.
  • the first hydrophilic group 7A includes a polar group and/or a chargeable group.
  • the polar group includes, for example, at least one selected from the group consisting of a carboxyl group, a hydroxyl group, an amino group, a sulfonyl group, a phosphoric acid group, and an alkylene oxide group
  • the chargeable group includes, for example, at least one polar group selected from the group consisting of a charged group and a zwitterionic group, and the zwitterionic group is selected from the group consisting of a phosphorylcholine group and a betaine group. Contains at least one.
  • the first hydrophilic group 7A is preferably exposed from the polymer membrane 3. In such a case, non-specific adsorption to the polymer membrane 3 is further suppressed.
  • the fluorescent substance 6 is labeled on the surface of the metal base material 2 and/or the polymer film 3.
  • the fluorescent substance 6 is preferably labeled on the surface of the metal substrate 2 via a linker portion (for example, an alkylene group containing an amide group, etc.).
  • a linker portion for example, an alkylene group containing an amide group, etc.
  • the linker part is located between the fluorescent substance 6 and the surface of the metal base material 2, and the excited fluorescent substance 6 is attached to the metal base material 2. It is easy to prevent contact with the surface of the material 2. This is thought to further suppress fluorescence quenching.
  • the fluorescent substance 6 is excited by a light wavelength that causes plasmon resonance and emits fluorescence.
  • fluorescent substances include complexes of metals (metal complexes) such as europium and ruthenium.
  • metal complexes such as europium and ruthenium.
  • ruthenium complex examples include tris(bipyridine)ruthenium(II), which may have a counter anion.
  • the fluorescent material 6 has a large Stokes shift.
  • the Stokes shift is the difference between the absorption peak wavelength (maximum excitation wavelength) in the absorption spectrum of the fluorescent substance 6 and the fluorescence peak wavelength (maximum fluorescence wavelength) in the fluorescence spectrum of the fluorescent substance 6.
  • the Stokes shift of the fluorescent substance 6 is large, the absorption spectrum and the fluorescence spectrum are less likely to overlap, and excitation light (scattered light) is less likely to enter the detected fluorescence, making it possible to measure the fluorescence intensity more accurately.
  • the fluorescent substance 6 has a sharp fluorescence spectrum.
  • the fluorescence spectrum is sharp, it is difficult to overlap with the absorption spectrum of the fluorescent substance 6, so that excitation light (scattered light thereof) is difficult to enter into the detected fluorescence, and more accurate fluorescence intensity can be measured.
  • the specific binding substance 4 is a nano-sized substance (3 to 15 nm in length) that specifically binds to a test substance in a sample (described in detail in the third embodiment).
  • the test substance is, for example, a test substance derived from a specimen such as blood, plasma, urine, or saliva.
  • the specific binding substance 4 is, for example, at least one selected from the group consisting of antibodies (hereinafter referred to as nanoantibodies), ligands, enzymes, and nucleic acid chains (more specifically, DNA chains and RNA chains).
  • the coated metal base material 1 to which such a specific binding substance 4 is bound has superior detection sensitivity.
  • the nano-antibody as the specific binding substance 4 specifically binds to the antigen as the test substance at its tip (antigen-binding site) to form a complex through an antigen-antibody reaction.
  • the ligand as the specific binding substance 4 forms a complex with the protein as the test substance through a specific protein-ligand bond through a ligand-receptor reaction.
  • the nucleic acid strand as the specific binding substance 4 forms a pair (double strand) of a complementary nucleic acid strand and a nucleic acid strand based on the complementarity of base pairs.
  • the enzyme as the specific binding substance 4 forms an enzyme-substrate complex with the substrate as the test substance based on the substrate specificity (stereospecificity) at its active site (active center). These specific bonds are non-covalent, for example hydrogen bonds, as well as bonds due to intermolecular forces, hydrophobic interactions and charge interactions.
  • the nanoantibody is, for example, at least one selected from the group consisting of VHH (variable domain of heavy chain antibody) antibodies, fragmented antibodies (more specifically, Fab (Fragment Antigen Binding) antibodies, etc.), and variants thereof. It is one.
  • VHH antibodies are single domain antibodies.
  • a variant is an antibody whose amino acid sequence has been partially recombined or a substituent has been introduced within the range that has specific binding to the antigen.
  • nano-antibody is at least one selected from the group consisting of VHH antibodies, fragmented antibodies, and variants thereof
  • these nano-antibodies have a relatively small volume, so that, for example, two metal groups in the complex
  • narrowing the distance (separation distance) between the materials 2 a near field can be formed more efficiently, and the fluorescence intensity can be further increased.
  • the molecular mass of the nanoantibody is preferably 60,000 Da or less, more preferably 30,000 Da or less, and even more preferably 20,000 Da or less.
  • the volume of the nanoantibody is relatively small, which narrows the separation distance in the complex and makes the near field more efficient. can be formed to further increase the fluorescence intensity.
  • Methods for measuring molecular mass include electrophoresis (SDS-PAGE), gel filtration chromatography, and static light scattering.
  • the specific binding substance 4 may be directly bonded to the polymer membrane 3, and may be bonded directly to the polymer membrane 3 using a linker portion derived from a crosslinking agent (more specifically, SM (PEG) n (where n is 4, 6, or 8))) may be indirectly bonded to the polymer membrane 3.
  • a crosslinking agent more specifically, SM (PEG) n (where n is 4, 6, or 8)
  • crosslinking agents include amino group-sulfhydryl group crosslinking agents (more specifically, NHS-maleimide group crosslinking agents, etc.).
  • the method for manufacturing the coated metal base material 1 according to the second embodiment includes contacting the surface of the metal base material 2 with a polymer 3B having a hydrophilic group 7 bonded via a disulfide bond at the end of the side chain.
  • the method includes a step of bonding the hydrophilic groups 7 to the surface of the metal base material 2 and forming a polymer film 3 on the surface of the metal base material 2 (polymer film forming step).
  • bonding of the hydrophilic group 7 to the metal base material 2 and formation of the polymer film can be performed in parallel in one step. In this way, since it can be simplified compared to the conventional technology, costs can be further reduced.
  • the polymer as a starting material in the method for producing a coated metal substrate is the polymer according to the first embodiment.
  • the reaction time is, for example, 12 to 36 hours.
  • the reaction temperature is, for example, 20 to 30°C.
  • this reaction can also be carried out under stirring conditions.
  • the first side chain length from the disulfide group to the hydrophilic group 7 is longer than the second side chain length from the disulfide group to the main chain of the polymer 3B.
  • the second side chain length is the length of the side chain bonded to the surface of the metal base material 2 (that is, the length of the side chain bonded to the surface of the metal base material 2 via a sulfur atom). (the length of the side chain from the binding site to the main chain of the polymer 3 constituting the polymer membrane 3).
  • the first side chain length corresponds to the length from the surface of the metal base material 2 and the bonding site via the sulfur atom to the tip of the first hydrophilic group 7A. Therefore, in such a case, the first hydrophilic group 7A becomes easily exposed from the polymer membrane 3. Therefore, non-specific adsorption to the polymer membrane 3 can be further suppressed.
  • ⁇ Third embodiment complex>
  • a complex in which two nanoparticles are bonded via a test substance will be described as an example.
  • the same reference numerals as those in the first embodiment and the second embodiment have the same configurations as in the first embodiment and the second embodiment, respectively, so the description thereof will be omitted in principle.
  • the complex (composite nanoparticle body) according to the third embodiment captures the test substance so that the coated metal base material (nanoparticle body) according to the second embodiment sandwiches the test substance. It can be formed by The composite is composed of two or more nanoparticles.
  • the composite according to the third embodiment includes two or more nanoparticles.
  • the coated metal base material 1 capable of forming a composite according to the third embodiment is a nanoparticle body 1A containing metal nanoparticles 2A as the metal base material 2, and a first nanoparticle body as the nanoparticle body 1A.
  • the first hydrophilic group 7A is bonded to at least one of the surface of the metal nanoparticle 2A of the first nanoparticle body and the surface of the second metal nanoparticle of the second nanoparticle body.
  • This is a coated metal substrate 1 in which a first nanoparticle body and a second nanoparticle body are bonded via a test substance to form a composite.
  • FIG. 3 is a cross-sectional view schematically showing a composite body according to a third embodiment.
  • a composite body 40A according to the third embodiment includes two nanoparticle bodies 1A containing metal nanoparticles 2A, and the two nanoparticle bodies 1A include a first nanoparticle body 10A and a second nanoparticle body 20A.
  • the first nanoparticle body 10A and the second nanoparticle body 20A are bonded via the test substance 30.
  • the complex 40A includes the test substance 30 to be detected and two nanoparticle bodies 10A and 20A.
  • the two nanoparticle bodies 10A and 20A are combined via the test substance 30 in the complex 40A.
  • the composite body 40A according to the third embodiment can be formed by bonding the nanoparticle bodies 1A according to the second embodiment via the test substance 30.
  • the two nanoparticle bodies 10A and 20A one is referred to as a first nanoparticle body 10A, and the other nanoparticle body is referred to as a second nanoparticle body 20A.
  • the composite body 40A includes the first nanoparticle body 10A and the second nanoparticle body 20A as the nanoparticle body 1.
  • the first nanoparticle body 10A includes a first metal nanoparticle 12A as a metal nanoparticle, a first polymer film 13A as a polymer membrane, and a first hydrophilic group 7A (not shown in FIG. 3). ). That is, in the composite 40A, the first nanoparticle body 10A includes the first metal nanoparticle 12A, the first polymer film 13A covering the surface of the first metal nanoparticle 12A, and the surface of the first metal nanoparticle 12A.
  • the first hydrophilic group 7A is bonded to the surface of the first metal nanoparticle 12A, and the first polymer film 13A is A bond is included between the surface of the metal nanoparticle 12A and the surface of the metal nanoparticle 12A via a sulfur atom.
  • the first nanoparticle body 10A further includes a first specific binding substance 14A bound to the first polymer film 13A, and a first fluorescent substance 16A bound to the first specific binding substance 14A.
  • the second nanoparticle body 20A includes a second metal nanoparticle 22A as a metal nanoparticle, a second polymer film 23A as a polymer membrane, and a first hydrophilic group 7A (not shown in FIG. 3). ). That is, in the composite 40A, the second nanoparticle body 20A includes the first metal nanoparticle 22A, the second polymer film 23A that covers the surface of the second metal nanoparticle 22A, and the surface of the second metal nanoparticle 22A.
  • the first hydrophilic group 7A is bonded to the surface of the second metal nanoparticle 22A, and the second polymer film 23A is A bond is included between the surface of the metal nanoparticle 22A and the surface of the metal nanoparticle 22A via a sulfur atom.
  • the second nanoparticle body 20A further includes a second specific binding substance 24A bound to a second polymer film 23A, and a second fluorescent substance 26A bound to the second specific binding substance 24A.
  • the separation distance L is small within a range in which the excited fluorescent substances 16A, 26A are not easily quenched. More specifically, in a preferred embodiment, the two nanoparticle bodies 10A and 20A in the composite 40A are close to each other. In a more preferred embodiment, the two nanoparticle bodies 10A, 20A are close to each other. In a further preferred embodiment, at least one of the first polymer membrane 13A of the first nanoparticle body 10A and the second polymer membrane 23A of the second nanoparticle body 20A in the composite body 40A contracts. The two nanoparticle bodies 10A and 20A are brought close to each other so as to be in contact with each other.
  • the test substance 30 and the test substance it is considered that at least one of the specific binding substances 14A, 24A that bind to 30 and the fluorescent substances 16A, 26A can be introduced into the polymer membranes 13A, 23A.
  • the polymer membranes 13A and 23A are in contact with each other, for example, in the complex 40A shown in FIG. It is considered that at least one of the specific binding substances 14A, 24A and the fluorescent substances 16A, 26A can be introduced into the polymer membranes 13A, 23A.
  • the films covering the surfaces of the metal nanoparticles 12A and 22A are the polymer films 13A and 23A, the fluorescence intensity can be increased.
  • the reason is assumed to be as follows.
  • the membranes that cover the surfaces of the metal nanoparticles 12A, 22A are polymer membranes 13A, 23A, and the polymer membranes 13A, 23A have relatively high flexibility compared to inorganic membranes containing inorganic oxides.
  • the polymer membranes 13A and 23A can contract, and as a result, the two metal nanoparticles 12A and 22A are separated by two thicknesses of the polymer membrane (thickness of the polymer membrane 13A + It becomes possible to get closer than the distance corresponding to the film thickness of the polymer film 23A). That is, since the membranes that cover the surfaces of the metal nanoparticles 12A, 22A are the polymer membranes 13A, 23A, the separation distance L can be less than two thicknesses of the polymer membranes. This makes it easier to obtain a plasmon enhancement effect and further increases the fluorescence intensity.
  • the film thickness of the polymer film in "two film thicknesses of the polymer film” is not the film thickness of the polymer film 13A, 23A at the contracted part that is the target of the separation distance, This is the film thickness of the polymer films 13A and 23A in the uncontracted portions that are not to be separated.
  • the polymer 3A constituting the polymer membranes 13A, 23A has a sulfur atom interposed between its side chain (more specifically, the end of the side chain) and the surface of the metal nanoparticles 12A, 22A. It contains a binding site 3a. This allows the fluorescence intensity to be further increased. Although not bound by any particular theory, the reason is assumed to be as follows. In such a case, since the binding site 3a forms a bond with the surface of the metal nanoparticles 12A, 22A, the polymer 3A is considered to have a network structure and cover the surfaces of the metal nanoparticles 12A, 22A in a network shape. Since the polymer 3A has a network structure in this way, it also has relatively high flexibility.
  • the polymer membranes 13A and 23A can further contract, thereby bringing the two metal nanoparticles 12A and 22A closer together than the distance corresponding to two thicknesses of the polymer membranes. It becomes possible to do so. Therefore, in this embodiment, the separation distance L can be less than two film thicknesses of the polymer membrane, and the plasmon enhancement effect is further obtained, and the fluorescence intensity is further increased.
  • the polymer 3A constituting the polymer membranes 13A, 23A has a sulfur atom interposed between its side chain (more specifically, the end of the side chain) and the surface of the metal nanoparticles 12A, 22A.
  • it further includes at least one selected from the group consisting of a positively charged group 3b and a hydrophobic group 3c. This further increases the fluorescence intensity.
  • the polymer 3A has a network structure, It is thought that the surfaces of the metal nanoparticles 12A and 22A are coated in a mesh pattern. Since the polymer 3A has a network structure in this way, it also has relatively high flexibility. Therefore, in the composite 40A, the polymer membranes 13A and 23A can further contract, thereby bringing the two metal nanoparticles 12A and 22A closer together than the distance corresponding to two thicknesses of the polymer membranes. It becomes possible to do so. Therefore, in this embodiment, the separation distance L can be less than two film thicknesses of the polymer membrane, and the plasmon enhancement effect is further obtained, and the fluorescence intensity is further increased.
  • the separation distance L between the first nanoparticle body 10A and the second nanoparticle body 20A is, for example, 12 nm to 52 nm, preferably 12 nm to 27 nm.
  • the separation distance L is the distance between the first metal nanoparticle 12A and the second metal nanoparticle 22A, and is the distance between the first point P1 on the surface of the first nanoparticle body 10A and the second metal nanoparticle body 20A. This is the distance at which the line segment connected to the second point P2 on the surface is the minimum.
  • the separation distance L is 52 nm or less, when the excitation light is irradiated to the composite 40A, a near field is generated more efficiently in the space near the surface between the first and second metal nanoparticles 12A and 22A. , the fluorescence intensity can be further increased.
  • the membranes that cover the surfaces of the metal nanoparticles 12A, 22A are polymer membranes 13A, 23A, and the polymer membranes 13A, 23A have bonding sites 3a via sulfur atoms between them and the surfaces of the metal nanoparticles 12A, 22A. include. Therefore, as described above, the separation distance L can be closer than the distance equivalent to two film thicknesses of the polymer film covering the surfaces of the two metal nanoparticles 12A and 22A in the composite 40A. . For example, when the thickness of the polymer films 13A and 23A is 5 nm, the separation distance L can be less than 10 nm (more specifically, 2 to 9 nm, 3 to 8 nm, 4 to 7 nm, etc.).
  • the fluorescent substances 16A and 26A are preferably positioned at least between the first metal nanoparticles 12A and the second metal nanoparticles 22A in the composite 40A. This is because the space between the metal nanoparticles 12A and 22A is a space in which a near field is efficiently generated, so that the fluorescence intensity is likely to be increased by positioning the fluorescent substances 16A and 26A in the space between the metal nanoparticles 12A and 22A.
  • the test substance 30 is a substance to be detected that is contained in a specimen.
  • the test substance 30 include antigens, proteins, substrates, and nucleic acid chains.
  • the test substance 30 specifically binds to the specific binding substances 14A and 24A.
  • the antigen has at least two antigenic determinants, and the antigenic determinants form specific bonds with the first and second specific binding substances 14A, 24A.
  • Antigens are, for example, proteins such as c-reactive protein, myoglobin, troponin T, troponin I, and BNP, and antigenic proteins of viruses such as influenza virus, respiratory syncytial virus, and the like.
  • the test substance 30 is, for example, a test substance derived from a specimen such as blood, plasma, urine, or saliva. That is, examples of specimens containing the test substance 30 include blood, plasma, serum, urine, and saliva.
  • the specimen further includes solvents and buffers (more specifically, such as phosphate-buffered saline (PBS), Tris buffer, HEPES buffer, MOPS buffer, and MES buffer). But that's fine.
  • PBS phosphate-buffered saline
  • Tris buffer Tris buffer
  • HEPES buffer Tris buffer
  • MOPS buffer MOPS buffer
  • MES buffer MES buffer
  • Nanoparticles 1A according to the second embodiment are dispersed in a specimen, and the test substance 30 contained in the specimen is captured to form a complex 40A.
  • SPFS Surface Plasmon-field enhanced Fluorescence Spectroscopy
  • FIG. 4 is a diagram schematically showing a measuring device that detects a test substance using a complex according to a third embodiment.
  • the measuring device 100 includes an excitation light source 110, an excitation light irradiation optical system 120, a reagent container 130, a light receiving optical system 140, and a light receiving element 150.
  • the excitation light source 110 emits excitation light 112.
  • the excitation light source 110 is, for example, a laser.
  • the excitation light irradiation optical system 120 performs adjustment of the cross-sectional diameter, etc., like focusing the excitation light 112, and outputs the incident excitation light 122.
  • the excitation light irradiation optical system 120 includes a lens 124 and a polarizing element ( ⁇ /2 plate) 126.
  • the incident excitation light 122 output from the excitation light irradiation optical system 120 enters the reagent container 130 and irradiates the measurement sample within the reagent container 130.
  • the reagent container 130 is, for example, a removable container (more specifically, a cell, a preparation, etc.) and a microchannel chip.
  • a microchannel chip is a chip that has minute channels.
  • the measurement sample irradiated with the incident excitation light 122 emits fluorescence (detection light 132).
  • the light receiving optical system 140 is arranged in a direction perpendicular to the traveling direction of the excitation light 122 incident on the reagent container 130.
  • the light receiving optical system 140 can adjust the cross-sectional diameter of the detection light 132 emitted from the measurement sample, remove scattered light of the incident excitation light 122, or adjust the amount of light.
  • the light receiving optical system 140 includes a lens 144 and an optical filter 146.
  • the optical filter 146 is, for example, a bandpass filter or a dichroic mirror.
  • the fluorescence 142 that has passed through the light receiving optical system 140 is detected by the light receiving element 150.
  • the light receiving element 150 is, for example, a PD, APD, PMT, CCD camera, or spectrometer.
  • the light receiving element 150 is capable of measuring the amount of fluorescence of a single wavelength, measuring a fluorescence spectrum, and creating a two-dimensional plane fluorescence image.
  • the composite (metal thin film with nanoparticles) according to the fourth embodiment is composed of different types of coated metal bases (coated metal thin film and nanoparticles), and the same kind of coated metal bases (nanoparticles). ) is different from the complex according to the third embodiment.
  • the same reference numerals as in the first to third embodiments have the same configurations as in the first to third embodiments, respectively, and therefore the description thereof will be omitted in principle.
  • the complex according to the fourth embodiment is such that the coated metal base material (coated metal thin film and two or more nanoparticles) according to the second embodiment sandwiches the test substance when detecting the test substance. can be captured and formed.
  • the composite according to the fourth embodiment includes a coated metal thin film 1B and (one or more) nanoparticles 1A.
  • a coated metal base material 1 capable of forming a composite according to the fourth embodiment includes a nanoparticle body 1A containing metal nanoparticles 2A as a metal base material 2, and a coated metal base material containing a metal thin film 2B as a metal base material 2.
  • the first hydrophilic group 7A is bonded to at least one of the surface of the metal nanoparticle 2A and the surface of the metal thin film 2B, and the coated metal thin film 1B and the nanoparticle body 1A are bonded to the test substance. These are coated metal substrates 1 that form a composite bonded via.
  • the composite includes a nanoparticle body 1A according to the second embodiment shown in FIG. 1(a) and a coated metal thin film 1B according to the third embodiment shown in FIG. 1(b). and the coated metal thin film 1B are bonded via the test substance 30.
  • the first hydrophilic group 7A is bonded to at least one of the surface of the metal nanoparticle 2A and the surface of the metal thin film 2B.
  • FIG. 5 is a cross-sectional view schematically showing a composite body according to a fourth embodiment.
  • the complex 40B includes the test substance 30 to be detected, two or more third nanoparticle bodies 10B, and one first coated metal substrate 20B.
  • the third nanoparticle body 10B and the first coated metal base material 20B are bonded via the test substance 30 in the composite body 40B. That is, the composite body 40B according to the fourth embodiment can be formed by combining the nanoparticle body 1A according to the second embodiment and the coated metal thin film 1B via the test substance 30.
  • the third nanoparticle body 10B includes a third metal nanoparticle 12B as a metal nanoparticle, a third polymer membrane 13B as a polymer membrane, and a first hydrophilic group 7A (not shown in FIG. 5). ). That is, in the composite 40B, the third nanoparticle body 10B includes the third metal nanoparticle 12B, the third polymer film 13B that covers the surface of the third metal nanoparticle 12B, and the surface of the third metal nanoparticle 12B.
  • the first hydrophilic group 7A (not shown in FIG. 5) suppresses nonspecific adsorption to the third metal nanoparticle 12B, and the first hydrophilic group 7A is bonded to the surface of the third metal nanoparticle 12B.
  • the polymer film 13B includes bonds with the surface of the third metal nanoparticles 12B via sulfur atoms.
  • the third nanoparticle body 10B further includes a third specific binding substance 14B bound to a third polymer film 13B, and a third fluorescent substance 16B bound to the third specific binding substance 14B.
  • the first coated metal base material 20B includes a first metal thin film 22B as a metal base material, a fourth polymer film 23B as a polymer film, and a first hydrophilic group 7A (not shown in FIG. 5). ). That is, in the composite 40B, the first coated metal base material 20B includes the first metal thin film 22B, the fourth polymer film 23B that covers the surface of the first metal thin film 22B, and the first metal thin film 22B that covers the surface of the first metal thin film 22B.
  • the first hydrophilic group 7A (not shown in FIG.
  • the first coated metal substrate 20B further includes a fourth specific binding substance 24B bound to a fourth polymer film 23B.
  • a measuring device shown in FIG. 4 is used.
  • the first coated metal base material 20B is placed in the reagent container 130 with the fourth polymer film 23B exposed so as to be in contact with the test substance 30 and the third nanoparticle body 10B, which will be described later.
  • a dispersion containing the test substance 30 is flowed into the reagent container 130 and brought into contact with the fourth polymer membrane 23B. Thereby, the test substance 30 is specifically bound to the fourth specific binding substance 24B bound to the fourth polymer membrane 23B.
  • the dispersion containing the third nanoparticles 10B is flowed into the reagent container 130 and brought into contact with the fourth polymer film 23B.
  • the third nanoparticle body 10B is specifically bound to the test substance 30 bound to the fourth specific binding substance 24B of the first coated metal base material 20B.
  • a complex 40B is formed. Fluorescence is measured in the same manner as the measurement method in the third embodiment. This detects the test substance.
  • the present invention is not limited to the above-described embodiments, and the design can be changed without departing from the gist of the present invention, and at least two of the first to fourth embodiments may be combined.
  • a composite (metal thin film with nanoparticles) 40B is a combination of one nanoparticle 10B and a metal thin film 22B coated with a polymer film 23B via one test substance 30. was formed, but is not limited to this.
  • the composite (metal thin film with composite nanoparticles) may be formed by, for example, combining one composite 40A with one metal thin film 22B coated with a polymer film 23B via one test substance 30. good.
  • the present invention is not limited thereto.
  • the numbers of fluorescent substances 16A, 26A and specific binding substances 14A, 24A (FIG. 3) in the complex 40A according to the third embodiment are also the same.
  • the number of fluorescent substances 16B and specific binding substances 14B and 24B in the complex 40B according to the fourth embodiment is also the same.
  • the fluorescent substance is bound to a specific binding substance, but the present invention is not limited thereto.
  • a fluorescent material may be attached to a polymeric membrane.
  • the light receiving optical system 140 in the measuring device 100 is arranged in a direction perpendicular to the traveling direction of the excitation light 122 incident on the reagent container 130, but the present invention is not limited thereto.
  • the light receiving optical system 140 may be arranged, for example, in a direction parallel to the traveling direction of the incident excitation light 122, or at an acute angle or an obtuse angle with respect to the traveling direction of the incident excitation light 122. .
  • the concentration of metal nanoparticles in a dispersion liquid may be expressed in terms of absorbance.
  • Example 1 [Preparation of polymer]
  • the polymer of Example 1 was produced as follows.
  • reaction formula (r-1) As shown in , this is a nucleophilic substitution reaction in which the primary amino group of poly-L-lysine attacks the NHS ester group of 3-(2-pyridyldithio)propionamide-PEG4-NHS.
  • the synthesized (1-1) betaine-introduced polymer had a hydrophobic group (n-butylene group) and a positively chargeable group (primary ammonium group).
  • This synthesis reaction is represented by reaction formula (r-2): As shown in (5j-1), this is a thiol nucleophilic reaction in which the thiol group of the thiol compound having a hydrophilic group attacks the disulfide group of the polymer having (2-1) a disulfide group.
  • FIG. 6 is a diagram showing absorption spectra in each step of polymer synthesis.
  • the solid line shows the absorption spectrum after reaction (r-1), the broken line shows the absorption spectrum after reaction (r-2), and the one-dot chain line shows the absorption spectrum after ultrafiltration treatment was performed after reaction (r-2).
  • the absorption peak near 280 nm in the absorption spectrum was assigned to the pyridyl group of the polymer having (2-1) disulfide group.
  • the absorption peak near 343 nm in the absorption spectrum has the following resonance structure: It was assigned to 3-mercaptopyridine with 3-Mercaptopyridine is a by-product produced in reaction (r-2).
  • the absorption spectrum did not have a maximum peak in the visible range. From these results, it was confirmed that the above reactions (r-1) and (r-2) proceeded to produce (1-1) PPL-SS-betaine.
  • Example 7 (a diagram showing the reaction related to the method of forming a polymer film in Example 1), betaine as a hydrophilic substance was labeled on the surface of silver nanoparticles via sulfur atoms, and The film is bonded to the silver nanoparticle surface via sulfur atoms.
  • labeling of hydrophilic groups and formation of a polymer film proceeded in parallel.
  • SEM image A SEM image (magnification: 300K) of the obtained hydrophilic group-labeled polymer-coated silver nanoparticles of Example 1 was taken using a scanning electron microscope ("Regulus 8220" manufactured by Hitachi High-Technology Corporation).
  • FIG. 8 shows a SEM image of hydrophilic group-labeled polymer-coated silver nanoparticles of Example 1. In the SEM image obtained as shown in FIG. 8, it was confirmed that the silver nanoparticles were covered with a polymer film.
  • FIG. 9 is a diagram showing the distribution of the ratio of scattered light intensity to zeta potential (zeta potential distribution) for the polymer-coated hydrophilic group-labeled silver nanoparticles of Example 1. 1 of the distributions).
  • the distribution of the ratio of scattered light intensity to zeta potential was such that the peaks existed between -5.77 and -2.33 mV.
  • the polymer-coated hydrophilic group-labeled silver nanoparticles were slightly negatively charged overall.
  • FIG. 10 is a diagram showing the distribution (particle size distribution) of the ratio of scattered light intensity to the particle size for the polymer-coated hydrophilic group-labeled silver nanoparticles of Example 1 (in detail, the distribution obtained by measuring three times). ).
  • the distribution of the scattered light intensity ratio to the particle diameter was 97.93 nm (expected value M) ⁇ 0.163 nm (Polydispersity Index (PDI)).
  • the thiol compound having a hydrophilic group in reaction (r-2) is a thiol compound having a phosphorocholine group represented by (5j-1) to (5k-1) (product code: MCP- manufactured by Medical Science and Pharmaceutical Co., Ltd.) 03-0001-PC”): (5k-1) (2-1)
  • a polymer having a disulfide group (PLL-SS-PC) was obtained in the same manner as in Example 1, except for changing to . An absorption spectrum similar to that of Example 1 was obtained.
  • FIG. 11 shows a SEM image of the hydrophilic group-labeled polymer-coated silver nanoparticles of Example 2. From FIG. 11, it was confirmed that the silver nanoparticles were covered with a polymer film.
  • the hydrophilic group-labeled polymer-coated silver nanoparticles of Example 2 were measured using time-of-flight secondary ion mass spectrometry (TOF-SIMS). As a result, it was possible to confirm the presence of phosphoric acid in the region where silver nanoparticles were present.
  • TOF-SIMS time-of-flight secondary ion mass spectrometry
  • FIG. 12 shows the zeta potential distribution of the polymer-coated hydrophilic group-labeled silver nanoparticles of Example 2 (specifically, this is one distribution obtained from three measurements). The zeta potential distribution showed that these peaks existed between +20 and +27 mV. The polymer-coated hydrophilic group-labeled silver nanoparticles were slightly positively charged overall. Table 1: The expected value M and the polydispersity index PDI regarding the particle size distribution of the hydrophilic group-labeled polymer-coated silver nanoparticles of Example 2 are shown in FIG.
  • Comparative Example 1 was the same as Example 1 except that the polymer for coating the silver nanoparticles was changed from (1-1) PLL-SS-Betaine to PLL ("3075" manufactured by Peptide Institute Co., Ltd.). Polymer-coated silver nanoparticles were prepared in the same manner.
  • the zeta potential distribution was measured in the same manner as in Example 1. The zeta potential distribution of Comparative Example 1 was such that the peak was present around +50 mV. The polymer-coated silver nanoparticles were entirely positively charged.
  • Comparative Example 2 In Comparative Example 2, the particle size distribution and The zeta potential distribution was measured. The zeta potential distribution of Comparative Example 2 had a peak around -50 mV. The silver nanoparticles were entirely negatively charged.
  • hydrophilic group-labeled polymer-coated silver nanoparticles are dispersed in the state of primary particles. This is thought to be due to the presence of hydrophilic groups on the surface of the metal base material. From the above, it is considered that adsorption of non-specifically adsorbed substances that contribute to noise components can be effectively suppressed.
  • Embodiments of the coated metal base material, the method for producing the same, the composite body including the coated metal base material, and the polymer for producing the coated metal base material according to the present disclosure are as follows.
  • a metal base material that is a metal nanoparticle and/or a metal thin film, a polymer film that covers the surface of the metal base material, and a first hydrophilic group that suppresses nonspecific adsorption to the surface of the metal base material. It consists of The first hydrophilic group is bonded to the surface of the metal base material, A coated metal base material, wherein the polymer film includes a bonding site via a sulfur atom between the polymer film and the surface of the metal base material.
  • the polymer forming the polymer film includes the bonding site via the sulfur atom in a side chain of the polymer with the surface of the metal base material, according to ⁇ 1> or ⁇ 2>.
  • the polymer constituting the polymer membrane contains one or more second hydrophilic groups bonded via a disulfide group to the side chain of the polymer per molecular chain of the polymer, ⁇ 1> to ⁇
  • the coated metal base material according to any one of 3>.
  • the polymer further includes the second hydrophilic group in a side chain of the polymer, the first hydrophilic group and the second hydrophilic group each independently include a polar group and/or a chargeable group
  • the polar group includes at least one selected from the group consisting of a carboxyl group, a hydroxyl group, an amino group, a sulfonyl group, a phosphoric acid group, and an alkylene oxide group
  • the chargeable group includes at least one polar group selected from the group consisting of a charged group and a zwitterion group, and the zwitterion group is selected from the group consisting of a phosphorylcholine group and a betaine group.
  • the coated metal base material according to ⁇ 4> containing at least one.
  • ⁇ 6> The coated metal base material according to any one of ⁇ 1> to ⁇ 5>, wherein the polymer constituting the polymer membrane contains an amide bond in the main chain skeleton of the polymer.
  • the polymer constituting the polymer membrane further includes a positively charged group in a side chain of the polymer, The side chain does not have a disulfide bond,
  • the coated metal base material according to any one of ⁇ 1> to ⁇ 6> which is at least one type of coated metal base material.
  • the polymer constituting the polymer membrane further includes a hydrophobic group in a side chain of the polymer, The side chain does not have a disulfide bond,
  • Metal base material is any one of ⁇ 1> to ⁇ 6>, which is at least one type of coated metal base material.
  • the polymer includes a structure derived from one or more amino acids in the main chain skeleton, The amino acid according to any one of ⁇ 3> to ⁇ 8>, wherein the amino acid includes at least one selected from the group consisting of lysine, histidine, arginine, glutamic acid, glutamine aspartate, asparagine, serine, and threonine. Coated metal substrate. ⁇ 10> The coated metal substrate according to any one of ⁇ 1> to ⁇ 9>, wherein the polymer constituting the polymer membrane contains a biocompatible polymer as a block polymer in the main chain skeleton of the polymer.
  • ⁇ 11> The coated metal substrate according to any one of ⁇ 1> to ⁇ 10>, further comprising a specific binding substance that specifically binds to a fluorescent substance and/or a test substance in a specimen.
  • ⁇ 12> The coated metal substrate according to ⁇ 11>, wherein the specific binding substance is a nanoantibody.
  • ⁇ 13> The coated metal substrate according to any one of ⁇ 1> to ⁇ 12>, wherein the polymer film has a thickness of 1 nm to 10 nm.
  • ⁇ 17> comprising a nanoparticle body containing the metal nanoparticles as the metal base material, and a coated metal thin film containing the metal thin film as the metal base material, The first hydrophilic group is bonded to at least one of the surface of the metal nanoparticle and the surface of the metal thin film,
  • the coated metal base material according to any one of ⁇ 1> to ⁇ 16>, wherein the coated metal thin film and the nanoparticles are bonded via a test substance to form a composite.
  • the test substance is a test substance derived from a specimen that is blood, plasma, urine, or saliva.
  • the molecules constituting the polymer film cover the surface of the metal base material in a two-dimensional manner such that the main chain of the polymer is substantially parallel to the surface of the metal base material, ⁇ 1> ⁇
  • ⁇ 20> Comprising two or more nanoparticle bodies containing the metal nanoparticles according to any one of ⁇ 1> to ⁇ 19>,
  • the two or more nanoparticle bodies include a first nanoparticle body and a second nanoparticle body, A complex in which the first nanoparticle body and the second nanoparticle body are bonded via a test substance.
  • the hydrophilic group includes a polar group and/or a chargeable group
  • the polar group includes at least one selected from the group consisting of a carboxyl group, a hydroxyl group, an amino group, a sulfonyl group, a phosphoric acid group, and an alkylene oxide group
  • the chargeable group includes at least one polar group selected from the group consisting of a charged group and a zwitterion group, and the zwitterion group is selected from the group consisting of a phosphorylcholine group and a betaine group.
  • the side chain of the polymer further includes a positively charged group, The side chain does not have a disulfide bond,
  • ⁇ 25> further comprising a hydrophobic group in the side chain of the polymer,
  • the side chain does not have a disulfide bond
  • ⁇ 26> The polymer according to any one of ⁇ 22> to ⁇ 25>, wherein the main chain skeleton of the polymer contains an amide bond.
  • the main chain skeleton of the polymer has a structure derived from one or more amino acids, The amino acid according to any one of ⁇ 22> to ⁇ 26>, wherein the amino acid includes at least one selected from the group consisting of lysine, histidine, arginine, glutamic acid, aspartic acid, glutamine, asparagine, serine, and threonine. polymer.
  • ⁇ 28> The polymer according to any one of ⁇ 22> to ⁇ 27>, wherein the main chain skeleton of the polymer contains a biocompatible polymer as a block polymer.
  • ⁇ 29> The polymer according to any one of ⁇ 22> to ⁇ 28> is brought into contact with the surface of a metal base material to bond the hydrophilic group to the surface of the metal base material, and the metal base material
  • a method for producing a coated metal substrate comprising the step of forming a polymer film on the surface of the metal substrate.
  • a method for manufacturing a metal base material A method for manufacturing a metal base material.

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Abstract

金属ナノ粒子および/または金属薄膜である金属基材と、金属基材の表面を被覆する高分子膜と、金属基材の表面への非特異吸着を抑制する第1親水性基とを含んで成り、第1親水性基は、金属基材の表面に結合しており、高分子膜が、金属基材の表面との間に硫黄原子を介した結合部位を含む、被覆金属基材。

Description

被覆金属基材およびその製造方法、被覆金属基材を含む複合体、ならびに被覆金属基材を製造するための高分子
 本発明は、被覆金属基材およびその製造方法、被覆金属基材を含む複合体、ならびに被覆金属基材を製造するための高分子に関する。
 バイオセンサーは、検出対象である特定の被験物質を特定の特異結合物質に特異的に反応させて複合体を形成し、複合体における特異的な結合に起因する信号によって、被験物質を検出する。
 プラズモン励起蛍光分析では、複合体は、例えば、被験物質、特異結合物質、蛍光物質、および金属粒子を含んで成る。励起光が複合体に照射されると、複合体内の金属粒子で表面プラズモン共鳴が誘起され、金属粒子の表面近傍での近接場が形成される。この近接場によって蛍光物質の蛍光強度が増大される。
 検出対象である特定の被験物質を特定の特異結合物質に特異的に反応させて複合体を形成し被検物質を分析する場合、金属粒子表面への非特異的な吸着による信号ノイズ比(SN比)悪化の問題がある。金属粒子を用いたプラズモン励起蛍光分析においても例外ではなく、金属粒子表面への非特異吸着はSN比を悪化させる虞があるため、例えば、特許文献1に記載のように、金属ナノ粒子表面に、一次元状の高分子(高分子鎖)の末端を結合させて、高分子膜を形成する。複数の高分子鎖を金属基材表面と略垂直となるように金属基材表面に配列させることで、高分子鎖がブラシ状に配列した高分子膜を形成する。
国際公開第2001/086301号
 ところで、特許文献1に記載の高分子では、本発明者らが鋭意検討した結果、検出感度をさらに改善する余地があることが分かった。具体的には、特許文献1に記載の高分子を用いると、一次元状の高分子鎖がブラシ状に配列した高分子膜となるため、金属基材表面に形成する高分子膜の膜厚を十分に薄くすることができない虞がある。これにより、被験物質を捕捉した複合体において金属基材間の離間距離を十分に小さくできず、蛍光を効果的に増強できなかった。
 また、高分子膜では、疎水性のアルキル基を含む分子鎖がブラシ状に配列しているため、ノイズ成分に寄与する非特異的吸着物質の吸着(非特異的吸着または非特異吸着)を効果的に抑制できない虞がある。
 本発明はかかる課題に鑑みて為されてものである。すなわち、本発明は、膜厚を低減して複合体における金属基材間の離間距離を十分に小さくし、かつ検出感度を高めることのできる高分子を提供することを主たる目的とする。また、そのような高分子を用いて高分子膜を形成した被覆金属基材およびその製造方法、ならびに被覆金属基材を含む複合体を提供することを主たる目的とする。
 本発明の一実施形態に係る高分子は、
 ジスルフィド基を介して結合する親水性基を側鎖の末端に有する。
 本発明の一実施形態に係る被覆金属基材は、
 金属ナノ粒子および/または金属薄膜である金属基材と、該金属基材の表面を被覆する高分子膜と、前記金属基材の表面への非特異吸着を抑制する第1親水性基とを含んで成り、
 前記第1親水性基は、前記金属基材の表面に結合しており、
 前記高分子膜が、前記金属基材の表面との間に硫黄原子を介した結合部位を含む。
 本発明の一実施形態に係る複合体は、
 前記金属ナノ粒子を含むナノ粒子体を2以上含んで成り、
 前記2以上のナノ粒子体が第1ナノ粒子体と第2ナノ粒子体とを含み、
 前記第1ナノ粒子体と前記第2ナノ粒子体とが前記被験物質を介して結合されている。
 本発明の一実施形態に係る複合体は、
 前記金属ナノ粒子を含むナノ粒子体と、前記金属薄膜を含む被覆金属薄膜とを含んで成り、
 第1親水性基は、前記金属ナノ粒子の表面および前記金属薄膜の表面の少なくとも一方に結合しており、
 前記ナノ粒子体と前記被覆金属薄膜とが被験物質を介して結合されている。
 本発明の一実施形態に係る被覆金属基材の製造方法は、
 前記高分子を、金属基材の表面に接触させて、前記親水性基を前記金属基材の表面に結合させつつ、かつ前記金属基材の表面に高分子膜を形成する工程を含んで成る。
 本発明は、高分子膜の膜厚を低減して複合体における金属基材間の離間距離を十分に小さくし、かつ検出感度を高めることのできる高分子を提供することができる。また、そのような高分子を用いて高分子膜を形成した被覆金属基材およびその製造方法、ならびに被覆金属基材を含む複合体を提供することができる。
図1は、第2実施形態に係る被覆金属基材を模式的に示す断面図((a)ナノ粒子体および(b)被覆金属薄膜)である。 図2は、図1(a)のA部拡大模式図である。 図3は、第3実施形態に係る複合体を模式的に示す断面図である。 図4は、第3実施形態に係る複合体を用いて被験物質を検出する測定装置を模式的に示す図である。 図5は、第4実施形態に係る複合体を模式的に示す断面図である。 図6は、高分子合成の各工程における吸収スペクトルを示す図である。 図7は、実施例1の高分子膜の形成方法に関する反応を示す図である。 図8は、実施例1の高分子被覆親水性基標識銀ナノ粒子のSEM画像である。 図9は、実施例1の高分子被覆親水性基標識銀ナノ粒子についてのゼータ電位に対する散乱光強度比の分布を示す図である。 図10は、実施例1の高分子被覆親水性基標識銀ナノ粒子についての粒子径に対する散乱光強度比の分布である。 図11は、実施例2の高分子被覆親水性基標識銀ナノ粒子のSEM画像を示す図である。 図12は、実施例2の高分子被覆親水性基標識銀ナノ粒子についてのゼータ電位に対する散乱光強度比の分布を示す図である。
 以下、本発明の実施形態であるナノ粒子体およびその製造方法、複合体ならびに測定装置を図示の実施の形態により詳細に説明する。なお、図面は模式的なものを含み、実際の寸法や比率を反映していない場合がある。
 本明細書で言及する数値範囲は、「未満」、「より大きい」および「より小さい」のような特段の用語が付されない限り、下限値および上限値そのものも含むことを意図している。例えば、1nm~50nmといった数値範囲を例にとれば、特段の用語が付されない限り、その数値範囲は下限値「1nm」および上限値「50nm」を含むものとして解釈される。
 本明細書において、「金属基材」とは、実質的に金属から構成され、金属薄膜(または金属プレートまたは金属膜とも称する)および金属ナノ粒子を包含する基材をいう。金属ナノ粒子と金属薄膜とは主に、形状の点で相違する。本明細書において、対象部材が実質的に特定の材料から構成されるまたは対象部材が特定の材料からなるとは、対象部材が95質量%以上、97質量%以上、99質量%以上、100質量%の割合で特定の材料を含むことをいう。例えば、金属基材が実質的に金属から構成されるとは、金属基材が95質量%以上、97質量%以上、99質量%以上、100質量%の割合で金属を含むことをいう。
 本明細書において、「金属ナノ粒子」とは、実質的に金属から構成される粒子であって、そのサイズがナノメートルオーダー(例えば、数nm~100nm)であり、その形状が球状または略球状の粒子をいう。「金属ナノ粒子」は、光(例えば、可視光)との相互作用により、他の金属ナノ粒子との間で局在表面プラズモン共鳴を引き起こす。
 本明細書において、「金属薄膜」とは、実質的に金属から構成される薄膜であって、素の膜厚がナノメートルオーダー(例えば、数nm~100nm)である薄膜である。「金属薄膜」は、光(例えば、可視光および近赤外光)との相互作用により、金属ナノ粒子との間で局在表面プラズモン共鳴を引き起こす。
<第1実施形態:高分子>
 第1実施形態に係る高分子は、ジスルフィド基(ジスルフィド結合)(-S-S-)を介して結合する親水性基を側鎖の末端に有する。
 第1実施形態に係る高分子は、金属基材の表面と接触して、高分子膜および親水性基を金属基材の表面に形成することができる。これにより、被覆金属基材(第2実施形態で詳述する)を製造することができる。
[作用機序]
 第1実施形態に係る高分子で形成した高分子膜を有する複合体は、検出感度に優れる。特定の理論に拘束されるわけではないが、その理由は以下のように推測される。本実施形態に係る高分子は、例えば、一般式(1):
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
(一般式(1)中、Xは親水性基を示し、Lは例えば、アミド結合を示し、nは繰り返し単位の数を示す)
で表すように、ジスルフィド基を介して結合する親水性基を側鎖の末端に有する(以下、一般式(1)で表される高分子を第1実施形態では「高分子(1)」とも称し、第2実施形態以降では「高分子3B」とも称する)。本発明者らは、ジスルフィド基を開裂させることで、その一方のS原子を高分子膜の膜厚低減に寄与させ、その他方のS原子を親水性基の露出し易さ向上に寄与させるということを案出した。より具体的には、本発明者は、ジスルフィド基の開裂により、下記の2つの態様が実可能となり得ることを案出した;
(第1態様):
 高分子主鎖から分岐する側鎖末端についた一方のS原子を金属基材表面の所定箇所に結合させる態様、ならびに
(第2態様):
 他方の親水性基Xと接続したS原子を、上記金属基材表面の所定箇所とは異なる箇所にて接続させる態様。
 以上により、本発明では、上述のように、「高分子膜の膜厚低減」および「親水性基の露出し易さ向上」が可能となる。
 詳しくは、高分子(1)を金属基材と接触させると、ジスルフィド基の硫黄原子間の結合のうちの少なくとも一部が開裂し、金属基材の表面に硫黄原子を介する結合部位を形成する。これにより、形成される高分子膜では、高分子膜を構成する高分子が側鎖の末端で金属基材と結合する。高分子膜は、その構成する高分子の主鎖が金属基材表面に対して略平行となるように金属基材表面を二次元状に覆う構造を有するため、例えば、特許文献1に示すような一次元状の高分子が金属基材の表面に対して略垂直に配列して形成される高分子膜に比べ、高分子膜の膜厚を低減することができる。これにより複合体における金属基材間の離間距離を十分に小さくすることができる。
 なお、本明細書において、高分子の主鎖とは、高分子の主たる骨格を成す炭化水素鎖(例えば、アルキレン鎖)であって、高分子を構成する複数の繰り返し単位が互いに結合して延在する方向な平行な炭化水素鎖をいう。この炭化水素鎖は、例えば、エーテル基、アミド結合およびエステル結合のようなヘテロ原子を含む2価の基を有してもよい。
 また、本明細書において、高分子の側鎖とは、主鎖から分岐した炭化水素鎖をいう。側鎖の炭化水素鎖も主鎖の炭化水素鎖と同様にヘテロ原子を含む2価の基を有してもよい。
 また、ジスルフィド基の硫黄原子間の結合の開裂では、金属基材の表面への硫黄原子を介する結合部位の形成と並行して、金属基材の表面に硫黄原子を介して親水性基を結合させる。これにより、形成される高分子膜では、親水性基が露出しやすい構造をとり得る。これにより、非特異的吸着を抑制し、例えば、プラズモン励起蛍光分析における信号-ノイズ比(S/N比)を向上することができる。
 以上から、第1実施形態に係る高分子で形成した高分子膜を有する複合体は、検出感度に優れる。
 一般式(1)中、繰り返し単位の数を示すnは、例えば、高分子(1)の重量平均分子量Mwが12,000より大きくなるような数である。
(親水性基)
 親水性基は、極性基および/または帯電性基を含む。極性基としては、例えば、カルボキシル基、ヒドロキシル基、アミノ基、スルホニル基、リン酸基、およびアルキレンオキシド基からなる群より選択される少なくとも1つを含む。帯電性基は、例えば、極性基が帯電した基および双性イオン基からなる群より選択される少なくとも1つを含む。双性イオン基は、例えば、ホスホリルコリン基およびベタイン基からなる群より選択される少なくとも1つを含む。
 本発明者らは、非特異吸着物質は疎水的部位を含むため、高分子膜への非特異的な吸着を抑制するためには、親水性部位が有効であることを見出した。そして、親水性部位が形成される高分子膜から露出し得る場合に、非特異吸着を有効に抑制できることを見出した。これらの技術的知見に基づいて、側鎖末端にジスルフィド結合を介して結合する親水性基を有する高分子(1)を導き出した。
 本発明者らは、親水性基に加え、高分子膜を構成する高分子の主鎖骨格に親水性部位を導入することが非特異吸着の抑制に有効であることを見出した。
 非特異吸着をさらに抑制する観点から、好ましくは、高分子(1)の主鎖骨格にアミド結合を含む。
 非特異吸着をさらに抑制する観点から、好ましくは、高分子(1)の主鎖骨格に1または複数のアミノ酸に由来する構造を有する。このようなアミノ酸は、例えば、リジン、ヒスチジン、アルギニン、グルタミン酸、アスパラギン酸、グルタミン、アスパラギン、セリン、およびスレオニンからなる群より選択される少なくとも1つを含む。
 非特異吸着をさらに抑制する観点から、好ましくは、高分子(1)の主鎖骨格にブロックポリマーとして生体適合性ポリマーを含む。このような生体適合性ポリマーとしては、例えば、ポリメチルメタクリレートが挙げられる。
 用語「1または複数の」は、本明細書において、より具体的には「1または2以上の」を示し、「1もしくは複数の」(より具体的には「1もしくは2以上の」)も同義である。
 高分子(1)は側鎖に正帯電性基をさらに含んでもよい。この側鎖には、ジスルフィド基を有さない。このような正帯電性基は、第1級アンモニウム基、第2級アンモニウム基、第3級アンモニウム基、第4級アンモニウム基およびグアニジル基(-NHC(=NH )NH)からなる群より選択される少なくとも1種である。
 高分子(1)はこのような正帯電性基を含む場合、形成される高分子膜は、金属基材の表面と静電結合を形成できる。これにより、高分子膜はより強固に固定される。
 高分子(1)は側鎖に疎水性基をさらに含んでもよい。この側鎖には、ジスルフィド結合を有さない。このような疎水性基は、芳香族環状基、脂肪族環状基および脂肪族鎖状基からなる群より選択される少なくとも1種である。高分子(1)はこのような疎水性基を含む場合、形成される高分子膜は、金属基材の表面と疎水結合を形成できる。これにより、当該高分子膜はより強固に固定される。
(高分子の製造方法)
 高分子の製造方法の一例を説明する。高分子の製造方法は、例えば、ジスルフィド基を側鎖に導入する工程(ジスルフィド基導入工程)と、親水性基を導入する工程(親水性導入工程)とを含んで成る。
 以下のスキーム1:
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
(スキーム1中、Xは親水性基を示し、Yは、例えば、ピリジル基を示し、ZおよびTは官能部位を示し、Lは、例えば、2価の結合部位を示し、nは繰り返し単位の数を示し、ZとTとは互いに異なり、互いに結合しLを形成する)
を参照して高分子(1)の製造方法を説明する。スキーム1は、高分子(1)の製造法を説明するための反応式を示す。なお、スキーム1におけるL、Xおよびnは、一般式(1)におけるL、Xおよびnとそれぞれ同義である。
-ジスルフィド基導入工程-
 スキーム1に示すように、ジスルフィド基導入工程は、例えば、側鎖に官能部位Zを有する高分子(式(3)で表される高分子(以下、高分子(3)とも称する))に、ジスルフィド基を有する化合物(式(4)で表される化合物(以下、ジスルフィド基を有する化合物(4)とも称する))を反応させて、ジスルフィド基を有する高分子(式(2)で表される高分子(以下、高分子(2)とも称する))を得る。官能部位ZおよびTは、互いに異なり、例えば、アミノ基、カルボキシル基、およびエステル結合のような反応性置換基である。この反応は、例えば、アミノ基がカルボキシル基またはエステル結合を攻撃してアミド結合を形成する求核置換反応である。反応温度は、例えば、室温(20℃~25℃)であり、反応時間は、例えば、1時間以上4時間以下である。
 高分子(3)における官能部位Zとしては、例えば、アミノ基、カルボキシル基、およびエステル基が挙げられる。高分子(3)としては、例えば、
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000003
が挙げられる。
 ジスルフィド基を有する化合物(4)としては、例えば、
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000004
が挙げられる。
-親水性導入工程-
 親水性導入工程では、高分子(2)に親水性基を有するチオール化合物(式(5)で表されるチオール化合物(以下、チオール化合物(5)とも称する))を反応させて、親水性基を有する高分子(1)を得る。この反応は、高分子(2)のジスルフィド結合にチオール基が攻撃するチオール求核反応である。反応温度は、例えば、35~40℃(特に℃)であり、反応時間は、例えば、30分以上~2時間以上(特に1時間以上)である。チオール化合物(5)としては、例えば、
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000005
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000006
が挙げられる。
<第2実施形態:被覆金属基材>
 第2実施形態に係る被覆金属基材の被覆膜(すなわち、高分子膜)は、第1実施形態に係る高分子によって形成され得る。つまり、高分子膜を構成する高分子は、第1実施形態に係る高分子に由来し得る。なお、第2実施形態において、第1実施形態と同一の符号は、第1実施形態と同じ構成であるため、その説明を省略する。
 第2実施形態に係る被覆金属基材は、金属基材と、金属基材の表面を被覆する高分子膜と、金属基材の表面への非特異吸着を抑制する第1親水性基とを含んで成り、
 第1親水性基は、金属基材の表面に結合しており、
 高分子膜が、金属基材の表面との間に硫黄原子を介した結合部位を含む。
[作用機序]
 第2実施形態に係る被覆金属基材は、検出感度を高めることができる。特定の理論に拘束されるわけではないが、その理由は以下のように推測される。本実施形態に係る被覆金属基材は、金属基材の表面に結合した第1親水性基を含む。第1親水性基は、被覆金属基材への非特異吸着を抑制するため、被験物質の検出においてS/N比の低下が抑制され、検出感度が向上する。
 また、本実施形態に係る被覆金属基材は、第1親水性基に加え、金属基材の表面との間に硫黄原子を介した結合部位を含む高分子膜を含んで成る。このように、高分子膜に非特異吸着抑制機能を持たせなくてもよいため、高分子膜の膜厚を薄くすることができる。これにより、被験物質の検出において形成される複合体において被覆金属基材の間の距離を小さくすることができる。
 以上から、第2実施形態に係る被覆金属基材は、検出感度を高めることができると考えられる。
[被覆金属基材の基本構成]
 図1を参照して被覆金属基材を説明する。図1は、第2実施形態に係る被覆金属基材を模式的に示す断面図である。被覆金属基材1としては、ナノ粒子体1Aと、被覆金属薄膜1Bとがある。
 図1(a)に示すように、ナノ粒子体1Aは、金属ナノ粒子2Aである金属基材2と、金属基材2の表面を被覆する高分子膜3と、金属基材2の表面への非特異吸着を抑制する第1親水性基7A(図1(a)では不図示)とを含んで成る。ナノ粒子体1Aは、蛍光物質6および/または特異結合物質4を、さらに含んで成り得る。
 金属ナノ粒子2Aは、励起光照射により局在表面プラズモン共鳴(または局在型表面プラズモン共鳴;Localized Surface Plasmon Resonance:LSPR、以下、単に「プラズモン共鳴」とも称する)を引き起こす。高分子膜3は、金属ナノ粒子2Aの表面を被覆し、金属基材2の表面との間に硫黄原子を介した結合部位を含む。第1親水性基7は、金属基材2の表面に結合している。
 図1(b)に示すように、被覆金属薄膜1Bは、金属薄膜2Bである金属基材2と、金属基材2の表面を被覆する高分子膜3と、金属基材2の表面への非特異吸着を抑制する第1親水性基7(図1(b)では不図示)とを含んで成る。被覆金属薄膜1Bは、特異結合物質4を、さらに含んで成り得る。
 金属薄膜2Bは、励起光照射により局在表面プラズモン共鳴を引き起こす。高分子膜3は、金属薄膜2Bの表面を被覆し、金属基材2の表面との間に硫黄原子を介した結合部位を含む。第1親水性基7は、金属基材2の表面に結合している。
 被覆金属基材1は、プラズモン励起蛍光分析に用いることができる。別の表現をすれば、被覆金属基材1は、表面プラズモン励起増強蛍光分光免疫測定法に用いることができる。被覆金属基材1は、検体中の被験物質を捕捉し、例えば、2つの被覆金属基材1と1つの被験物質とを含む複合体(第3、第4実施形態で詳述する)を形成することができる。複合体に励起光を照射すると、プラズモン共鳴を起こし近接場を形成する。この近接場によって、蛍光強度が増大する。つまり、電場増強効果が得られる。
 被覆金属基材1はまた、非特異的な結合部位をブロッキング剤によってブロッキングされてもよい。ブロッキングされた被覆金属基材1は、検出対象以外の物質(すなわち、被験物質以外の物質)への特異結合物質4の非特異的な結合の形成が抑制され、バックグラウンドおよび偽陽性信号を低減し、S/N比を向上させることができる。かかる場合、検出感度をより向上させることができる。ブロッキング剤としては、例えば、ウシ血清アルブミン(BSA)、スキムミルクおよびカゼインのようなタンパク質、ならびに化学合成ポリマーである。
 ナノ粒子体1Aが溶媒中に存在する場合、ナノ粒子体1Aの分散液は、ナノ粒子体1Aの分散性を向上させる目的で、分散剤をさらに含んでもよい。このような分散剤としては、例えば、ヘパリンナトリウムが挙げられる。
(金属基材)
 金属基材2は、その表面を高分子膜3で被覆されている。金属基材2は、好ましくは金または銀を含んで成り、より好ましくは銀を含んで成る。金属基材2は、金属ナノ粒子2Aおよび金属薄膜2Bである。
-金属ナノ粒子-
 金属ナノ粒子2Aは、金属ナノ粒子2Aを構成する金属の種類によって異なるが、特定の波長を有する光と相互作用し、局在表面プラズモン共鳴を起こす。銀ナノ粒子(銀から実質的になるナノ粒子)では400nm~530nmに、金ナノ粒子(金から実質的になるナノ粒子)では510nm~580nmに局在表面プラズモン共鳴のピークがある。これは金属ナノ粒子2Aの粒子径により異なる。例えば、粒子径が20nmの銀ナノ粒子は、波長405nmの光と共鳴する。粒子径が20nmの金からなるナノ粒子は、波長524nmの光と共鳴する。金属ナノ粒子2の粒子径(平均一次粒子径)は、例えば、5nm~100nmである。金属ナノ粒子2の粒子径は、走査型電子顕微鏡(SEM)または透過型電子顕微鏡(TEM)を用いて、金属ナノ粒子2の画像を撮像し、画像での金属ナノ粒子2の粒子径を測長し、複数の粒子径の平均値(測定数:例えば、少なくとも10以上)を算出することにより得ることができる。
-金属薄膜-
 金属薄膜2Bは、金属薄膜2Bを構成する金属の種類によって異なるが、特定の波長を有する光(例えば、可視光)と相互作用し、金属ナノ粒子との間で局在表面プラズモン共鳴を起こす。
(高分子膜)
 高分子膜3は金属基材2の表面を被覆する。高分子膜3は、金属消光膜として機能する。複合体においては、高分子膜3は、少なくとも高分子膜3の厚み分、金属基材2の表面から蛍光物質6を離間して配置させることができる。このため、励起した蛍光物質6が金属基材2の表面に接触して消光することを抑制し、検出感度の低下を抑制できる。高分子膜3の存在は、SEMまたはTEMを用いて、ナノ粒子体1の画像を撮像し、画像での被覆金属基材1を観察し、確認することができる。
 図2を参照して、高分子膜3を詳細に説明する。図2は、図1(a)のA部拡大図であり、ナノ粒子体1Aの高分子膜3と金属ナノ粒子2Aの表面との界面付近の拡大模式図である。なお、ナノ粒子体1Aの高分子膜3は、被覆金属薄膜1Bの高分子膜3と実質的に同じ構成であるため、以下、ナノ粒子体1Aの高分子膜3について説明する。
 高分子膜3は、金属ナノ粒子2の表面との間に硫黄原子を介した結合部位3aを含む(つまり、高分子膜3を構成する高分子3Aは、金属基材2(金属ナノ粒子2A)の表面との間に硫黄原子を介した結合部位3aを含む)。高分子膜3は、正帯電性基3bおよび疎水性基3cからなる群より選択される少なくとも1つをさらに含んでもよい(例えば、高分子膜3を構成する高分子3Aは、高分子3Aの側鎖に正帯電性基3bおよび疎水性基3cからなる群より選択される少なくとも1つをさらに含んでもよい。この側鎖はジスルフィド基を有しない。)。この側鎖には、より具体的には、高分子膜3は、金属ナノ粒子2の表面との間に硫黄原子を介した結合部位3aに加え、正帯電性基3bとしての第1級アンモニウム基(-NH )と、疎水性基3cとをさらに含んでもよい。結合部位3aは、硫黄原子を介して金属ナノ粒子2の表面と高分子膜3との間を結合する。正帯電性基3bは、負帯電性の金属ナノ粒子2の表面との間に静電結合(イオン結合)bを形成する。疎水性基3cは、金属ナノ粒子2の表面と疎水結合cを形成する。
 なお、本明細書では、高分子膜3を構成する高分子を「高分子3A」とも称し、高分子膜3を反応により形成する、原料としての高分子を「高分子3B」とも称する。これらの2つの高分子の表記を分けることで、区別しやすくするためである。
 上記3つの結合はいずれも金属ナノ粒子2の表面と比較的強い結合である。高分子膜3は、結合部位3aによって金属ナノ粒子2の表面に安定的に固定される。さらに、高分子膜3は、疎水結合cおよび正帯電性基3bによる静電結合bによって、さらに安定的に金属ナノ粒子2の表面に固定され得る。このように高分子膜3は、金属ナノ粒子2の表面に安定的に固定されるため、蛍光物質6と金属ナノ粒子2の表面とを所定の距離で安定して隔てることができる。よって、本実施形態では、励起した蛍光物質6の消光が抑制され、検出感度の低下を抑制し得る。
 さらに、高分子膜3は、高分子3Aを含んで構成され得るため、シリカ層に比べ、化学修飾しやすく、表面改質等の必要性が低い。これにより、シリカ層に比べ膜厚を小さくして、複合体における金属ナノ粒子2A間距離を適度に減少させることができる。よって、より効率的に近接場が形成され、検出感度をより向上させることができる。
 高分子膜3を構成し得る高分子3Aは、図2に示すように、金属ナノ粒子2の表面との間に硫黄原子を介した結合部位3aに加え、正帯電性基3bおよび疎水性基3cからなる群より選択される少なくとも1つを含むことができる。硫黄原子を介した結合部位3a、正帯電性基3bおよび疎水性基3cの存在は、赤外分光法、エネルギー分散型X線分光法(TEM-EDS)、X線光電子分光法(XPS)、飛行時間型二次イオン質量分析法(TOF―SIMS)および核磁気共鳴分光法を用いて、それらに由来する信号を測定することで、確認することができる。
 高分子膜3を構成する高分子3Aは、高分子3Aの側鎖に、ジスルフィド基を介して結合する第2親水性基7Bを高分子3Aの1分子鎖当たり1または複数含むことができる。高分子膜3を構成する高分子3Aが第2親水性基7Bを含むことで、高分子膜3への非特異吸着を抑制することができる。第2親水性基7Bは、高分子膜の形成において反応しきれずの残ったジスルフィド結合に結合する親水性基である。例えば、原料としての高分子3B(第1実施形態に係る高分子)中のジスルフィド結合を介して結合する親水性基の一部に由来する。第2親水性基7Bを含む高分子3Aは、高分子膜3の形成方法における反応条件を緩やかにすること(例えば、より低い反応温度、および/またはより短い反応時間のような反応条件)で調製することができる。緩やかな反応条件としては、例えば、12~36時間より短い反応時間、および/または20~30℃より低い反応温度である。
 第2親水性基7Bは、極性基および/または帯電性基を含む。極性基は、例えば、カルボキシル基、ヒドロキシル基、アミノ基、スルホニル基、リン酸基、およびアルキレンオキシド基からなる群より選択される少なくとも1つを含む。帯電性基は、例えば、極性基が帯電した基および双性イオン基からなる群より選択される少なくとも1つを含み、前記双性イオン基が、ホスホリルコリン基およびベタイン基からなる群より選択される少なくとも1つを含む。
 高分子膜3を構成する高分子3Aは、好ましくは高分子3Aの主鎖骨格にアミド結合を含む。高分子3Aがその主鎖骨格にアミド結合を有すると、高分子3Aは親水性を有するため、高分子3Aで構成される高分子膜3への非特異吸着が抑制され、検出感度がさらに向上する。
 高分子3Aは、主鎖骨格に1または複数のアミノ酸に由来する構造を含む。このようなアミノ酸は、例えば、リジン、ヒスチジン、アルギニン、グルタミン酸、アスパラギン酸グルタミン、アスパラギン、セリン、およびスレオニンからなる群より選択される少なくとも1つを含む。高分子3Aがその主鎖骨格に1または複数のアミノ酸に由来する構造を有すると、高分子3Aは親水性を有するため、高分子3Aで構成される高分子膜3への非特異吸着が抑制され、検出感度がさらに向上する。
 高分子膜3を構成する高分子3Aは、好ましくは高分子3Aの主鎖骨格にブロックポリマーとして生体適合性ポリマーを含む。高分子3Aの主鎖骨格にブロックポリマーとして生体適合性ポリマーを含むと、高分子3Aは親水性を有するため、高分子3Aで構成される高分子膜3への非特異吸着が抑制され、検出感度がさらに向上する。このような生体適合性ポリマーとしては、例えば、ポリメタクリルアクリレートが挙げられる。
 高分子膜3を構成する高分子3Aは、高分子3Aの主鎖が金属基材2の表面に対して略平行となるように、金属基材2の表面を二次元状に覆うことができる。このような高分子3Aによる被覆態様は、高分子3Aの複数の側鎖の末端が硫黄原子を介して金属基材2の表面に結合することで実現され得る。また、高分子膜3は、高分子3Aの主鎖が金属基材2の表面に対して略平行となるように高分子3Aが金属基材2の表面を覆うため、高分子鎖がブラシ状に配列して形成された高分子膜(先行技術:国際公開第2001/086301号)に比べ、高分子膜3の膜厚を低減できる。
-硫黄原子を介した結合部位-
 硫黄原子を介した結合部位3aは、例えば、側鎖としてジスルフィド結合を含む部位を有する高分子と、金属基材2(金属ナノ粒子2A)とを混合することで形成される。
-正帯電性基-
 正帯電性基3bは、金属基材2(金属ナノ粒子2A)の表面と比較的強い静電結合bを形成することができる。正帯電性基3bは、本明細書において、1価以上の価数を有し、完全に正に電離した基である。高分子膜3を構成する高分子に含まれる複数の正帯電性基3bを考慮した場合、正帯電性基3bは、下記の数式(1):
Figure JPOXMLDOC01-appb-M000007
[数式(1)中、pKaは高分子膜3を構成する高分子3Aに含まれる電気的に中性な基であって、正に帯電すれば、正帯電性基(より具体的には、第1級アンモニウム基(-NH )等)3bとなり得る基(以下、電気的中性基とも称する)(より具体的には、第1アミノ基(-NH)等)のpKaを示し、pHは被験物質を検出する環境(より具体的には、検体等)のpHを示し、Bは高分子3Aに含まれる電気的中性基を示し、BHは高分子3Aに含まれる正帯電性基3bを示す]
で表されるpKaが7以上である基をいう。つまり、正帯電性基3bは、高分子膜3を構成する高分子3Aの電気的中性基および正帯電性基3bが被験物質を検出する環境(例えば、pHおおよそ6~8の検体)中で、下記の化学平衡式(2):
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000008
で表される平衡状態を形成している場合であって、正帯電性基3bの濃度([BH])が電気的中性基の濃度([B])に比べ10倍以上大きい基をいう。
 正帯電性基3bは、好ましくは第1級アンモニウム基、第2級アンモニウム基、第3級アンモニウム基、第4級アンモニウム基およびグアニジル基(-NHC(=NH )NH)からなる群より選択される少なくとも1種である。
-疎水性基-
 疎水性基3cは、金属基材2(金属ナノ粒子2A)の表面との間で疎水結合cを形成することができる。
 疎水性基3cは、例えば、芳香族環状基、脂肪族環状基および脂肪族鎖状基からなる群より選択される少なくとも1種である。
 芳香族環状基としては、例えば、芳香族炭素環基および芳香族複素環基が挙げられる。芳香族炭素環基は、芳香族複素環を含まず、環員原子がすべて炭素原子である芳香族環を含む基である。芳香族炭素環基としては、例えば、アリール基(より具体的には、フェニル基等)およびアリールアルキル基(より具体的には、ベンジル基等)が挙げられる。芳香族複素環基は、環員原子の少なくとも1つがヘテロ原子(より具体的には、酸素原子、硫黄原子および窒素原子等)である芳香族環を含む基である。芳香族複素環基としては、例えば、含窒素芳香族複素環基(より具体的には、ピリジル基(ピリジニル基)等)、含硫黄芳香族複素環基および含酸素芳香族複素環基が挙げられる。
 脂肪族環状基は、芳香族環を含まず、非芳香族環からなる環状基を含む基である。脂肪族環状基としては、例えば、脂肪族炭素環基および脂肪族複素環基が挙げられる。脂肪族炭素環基は、環員原子がすべて炭素原子である非芳香族環を含む基であり、例えば、シクロアルキル基が挙げられる。脂肪族複素環基は、環員原子の少なくとも1つがヘテロ原子である非芳香族環を含む基である。
 脂肪族鎖状基は、芳香族環および非芳香族環を含まない鎖状(より具体的には、直鎖状および分岐鎖状)の基である。脂肪族鎖状基としては、例えば、脂肪族炭素鎖基(より具体的には、アルキル基およびアルキレン基等)および脂肪族ヘテロ鎖基が挙げられる。アルキル基としては、例えば、ブチル基である。アルキレン基としては、例えば、n-ブチレン基である。
 高分子膜3の膜厚は、好ましくは1nm~50nmであり、より好ましくは1nm~10nmである。高分子膜3の膜厚が50nm以下であると、2つの金属ナノ粒子2間の空間に近接場が効率的に形成される離間距離(離隔距離)となるため、検出感度がさらに向上する。また、高分子膜3の厚みが1nm以上であると、金属ナノ粒子2と蛍光物質が所定の距離を設けて配置されるため、測定において励起した蛍光物質の消光が抑制され、検出感度がさらに向上する。
 なお、本明細書において、離間距離(離隔距離)とは、複合体において被験物質を介して結合する2つのナノ粒子体にそれぞれ含まれる金属ナノ粒子表面間の距離の最小値(最短距離)をいう。
(第1親水性基)
 第1親水性基7Aは、金属基材2の表面に結合している。より具体的には、第1親水性基7Aは、金属基材2の表面との間に硫黄原子を介した結合部位を含む。このような結合部位は、例えば、出発物質として金属基材2(金属ナノ粒子2A)と、高分子3Bまたはジスルフィド結合を有する化合物(第1実施形態参照)とを混合させることで、形成することができる。
 第1親水性基7Aは、極性基および/または帯電性基を含む。
 極性基は、例えば、カルボキシル基、ヒドロキシル基、アミノ基、スルホニル基、リン酸基、およびアルキレンオキシド基からなる群より選択される少なくとも1つを含み、
 帯電性基は、例えば、極性基が帯電した基および双性イオン基からなる群より選択される少なくとも1つを含み、前記双性イオン基が、ホスホリルコリン基およびベタイン基からなる群より選択される少なくとも1つを含む。
 第1親水性基7Aは、好ましくは、高分子膜3から露出する。かかる場合、高分子膜3への非特異吸着をさらに抑制する。
(蛍光物質)
 蛍光物質6は、金属基材2の表面および/または高分子膜3に標識されている。
 蛍光物質6は、蛍光消光を抑制する観点から、リンカー部(例えば、アミド基を含むアルキレン基等)を介して金属基材2の表面に標識されていることが好ましい。蛍光物質6がリンカー部を介して金属基材2の表面に標識されている場合、リンカー部が蛍光物質6と金属基材2の表面との間に位置し、励起した蛍光物質6が金属基材2の表面に接触することを防止しやすい。これにより、蛍光消光がさらに抑制されると考えられる。
 蛍光物質6は、プラズモン共鳴する光波長で励起され、蛍光を発する。蛍光物質は、例えば、ユーロピウムおよびルテニウムのような金属の錯体(金属錯体)が挙げられる。ルテニウム錯体としては、例えば、カウンターアニオンを有し得るトリス(ビピリジン)ルテニウム(II)が挙げられる。
 蛍光物質6は、ストークスシフトが大きいことが好ましい。ここで、ストークスシフトは、蛍光物質6の吸収スペクトルにおける吸収ピーク波長(最大励起波長)と、蛍光物質6の蛍光スペクトルにおける蛍光ピーク波長(最大蛍光波長)との差である。蛍光物質6のストークスシフトが大きい場合、吸収スペクトルと蛍光スペクトルとが重なりにくく、検出する蛍光に励起光(の散乱光)が入りにくく、より正確な蛍光強度を測定することができる。
 蛍光物質6の蛍光スペクトルは、シャープであることが好ましい。蛍光スペクトルがシャープであると、蛍光物質6の吸収スペクトルとの重なりにくいため、検出する蛍光に励起光(の散乱光)が入りにくく、より正確な蛍光強度を測定することができる。
(特異結合物質)
 特異結合物質4は、検体中の被験物質(第3実施形態にて詳細に説明する)と特異的に結合するナノサイズ(最長が3~15nmであるサイズ)の物質である。被験物質としては、例えば、血液、血漿、尿、または唾液である検体に由来する被験物質である。
 特異結合物質4は、例えば、抗体(以下、ナノ抗体と称する)、リガンド、酵素ならびに核酸鎖(より具体的には、DNA鎖およびRNA鎖)からなる群より選択される少なくとも1つである。本実施形態では、このような特異結合物質4を結合させた被覆金属基材1は、検出感度により優れる。例えば、特異結合物質4としてのナノ抗体は、抗原抗体反応により、その先端部(抗原結合部位)で、被験物質としての抗原と特異的に結合して複合体を形成する。特異結合物質4としてのリガンドは、被験物質としてのタンパク質と、リガンド・レセプター反応によって特異的なタンパク質-リガンド結合して複合体を形成する。特異結合物質4としての核酸鎖は、塩基対の相補性に基づいて、相補的な関係にある核酸鎖と核酸鎖の対(二本鎖)を形成する。特異結合物質4としての酵素は、その活性部位(活性中心)で基質特異性(立体特異性)に基づいて被験物質としての基質と酵素-基質複合体を形成する。これらの特異的結合は、非共有結合であり、例えば、水素結合、ならびに分子間力、疎水的相互作用および電荷的相互作用に起因する結合である。
 ナノ抗体は、例えば、VHH(variable domain of heavy chain antibody)抗体、断片化抗体(より具体的には、Fab(Fragment Antigen Binding)抗体等)およびそれらの変異体からなる群より選択される少なくとも1つである。VHH抗体は、単一ドメイン抗体である。変異体は、抗原に対する特異結合性を有する範囲内で、アミノ酸配列の一部を組み換えた抗体または置換基を導入した抗体である。ナノ抗体がVHH抗体、断片化抗体、およびそれらの変異体からなる群より選択される少なくとも1つであると、これらのナノ抗体は比較的体積が小さいため、例えば、複合体における2つの金属基材2間の距離(離隔距離)を狭め、近接場をより効率的に形成し、蛍光強度をさらに増大させることができる。
 ナノ抗体の分子質量は、好ましくは60,000Da以下であり、より好ましくは30,000Da以下であり、さらに好ましくは20,000Da以下である。分子質量が60,000Da以下(特に、30,000Da以下、または20,000Da以下)であると、ナノ抗体の体積が比較的小さいため、複合体における離隔距離を狭め、近接場をより効率的に形成し、蛍光強度をさらに増大させることができる。分子質量の測定方法は、電気泳動(SDS-PAGE)、ゲルろ過クロマトグラフィー、および静的光散乱法などである。
 特異結合物質4は、高分子膜3に直接的に結合してもよく、架橋剤に由来するリンカー部(より具体的には、SM(PEG)(ここで、nは、4,6および8等))を介して高分子膜3に間接的に結合してもよい。このような架橋剤としては、例えば、アミノ基-スルフヒドリル基間架橋剤(より具体的には、NHS-マレイミド基架橋剤等)が挙げられる。
[被覆金属基材の製造方法]
 第2実施形態に係る被覆金属基材1の製造方法は、ジスルフィド結合を介して結合する親水性基7を側鎖の末端に有する高分子3Bを、金属基材2の表面に接触させて、親水性基7を金属基材2の表面に結合させつつ、かつ金属基材2の表面に高分子膜3を形成する工程(高分子膜形成工程)を含んで成る。高分子膜形成工程では、1の工程で、金属基材2への親水性基7の結合と、高分子膜形成とを並行して実施できる。このように、従来技術に対して簡素化できるため、コストをより低減することができる。被覆金属基材の製造方法における出発物質としての高分子は、第1実施形態に係る高分子である。
 高分子3Bを金属基材2の表面に接触させる反応では、反応時間は、例えば、12~36時間である。反応温度は、例えば、20~30℃である。また、この反応は攪拌条件下で行うこともできる。
 好適な態様では、側鎖において、ジスルフィド基から親水性基7までの第1側鎖長は、ジスルフィド基から高分子3Bの主鎖までの第2側鎖長に比べ長い。かかる場合、高分子膜3を構成する高分子3Aにおいて、第2側鎖長は、金属基材2の表面と結合する側鎖の長さ(つまり、金属基材2の表面と硫黄原子を介した結合部位から高分子膜3を構成する高分子3の主鎖までの側鎖の長さ)に相当する。第1側鎖長は、金属基材2の表面と硫黄原子を介した結合部位から第1親水性基7Aの先端までの長さに相当する。よって、かかる場合、第1親水性基7Aは高分子膜3から露出しやすくなる。このため、高分子膜3への非特異吸着をさらに抑制することができる。
<第3実施形態:複合体>
 第3実施形態では、2つのナノ粒子体が被験物質を介して結合する複合体を例に挙げて説明する。第3実施形態において、第1実施形態および第2実施形態と同一の符号は、それぞれ第1実施形態および第2実施形態と同じ構成であるため、原則としてその説明を省略する。
 なお、第3実施形態に係る複合体(複合ナノ粒子体)は、被験物質を検出する際に、第2実施形態に係る被覆金属基材(ナノ粒子体)が被験物質を挟み込むように捕捉して形成され得る。複合体は、2以上のナノ粒子体を含んで構成される。
 第3実施形態に係る複合体は、2以上のナノ粒子体を含んで構成される。第3実施形態に係る複合体を形成することができる被覆金属基材1は、金属基材2として金属ナノ粒子2Aを含むナノ粒子体1Aであって、ナノ粒子体1Aとして第1ナノ粒子体と第2ナノ粒子体とが含まれ、第1親水性基7Aは、第1ナノ粒子体の金属ナノ粒子2Aの表面および第2ナノ粒子体の第2金属ナノ粒子の表面の少なくとも一方に結合しており、第1ナノ粒子体と第2ナノ粒子体とが被験物質を介して結合された複合体を形成する被覆金属基材1である。
 図3を参照して、複合体を説明する。図3は、第3実施形態に係る複合体を模式的に示す断面図である。第3実施形態に係る複合体40Aは、金属ナノ粒子2Aを含むナノ粒子体1Aを2つ含んで成り、2つのナノ粒子体1Aが第1ナノ粒子体10Aと第2ナノ粒子体20Aとを含み、第1ナノ粒子体10Aと第2ナノ粒子体20Aとが被験物質30を介して結合されている。
 詳しくは、複合体40Aは、検出対象である被験物質30と、2つのナノ粒子体10A,20Aとを含んで成る。2つのナノ粒子体10A,20Aは、複合体40Aにおいて、被験物質30を介して結合されている。つまり、第3実施形態に係る複合体40Aは、第2実施形態に係るナノ粒子体1Aが被験物質30を介して結合されて形成され得る。2つのナノ粒子体10A,20Aのうち、一方を第1ナノ粒子体10Aと称し、もう一方のナノ粒子体を第2ナノ粒子体20Aと称する。このように複合体40Aは、ナノ粒子体1として第1ナノ粒子体10Aと第2ナノ粒子体20Aとを含む。
 複合体40Aにおいて、第1ナノ粒子体10Aは、金属ナノ粒子としての第1金属ナノ粒子12Aと、高分子膜としての第1高分子膜13Aと、第1親水性基7A(図3では不図示)とを含んで成る。つまり、複合体40Aにおいて、第1ナノ粒子体10Aは、第1金属ナノ粒子12Aと、第1金属ナノ粒子12Aの表面を被覆する第1高分子膜13Aと、第1金属ナノ粒子12Aの表面への非特異吸着を抑制する第1親水性基7Aとを含んで成り、第1親水性基7Aが第1金属ナノ粒子12Aの表面に結合しており、第1高分子膜13Aが第1金属ナノ粒子12Aの表面との間に硫黄原子を介した結合を含む。第1ナノ粒子体10Aは、第1高分子膜13Aに結合した第1特異結合物質14Aと、第1特異結合物質14Aに結合した第1蛍光物質16Aとをさらに含んで成る。
 複合体40Aにおいて、第2ナノ粒子体20Aは、金属ナノ粒子としての第2金属ナノ粒子22Aと、高分子膜としての第2高分子膜23Aと、第1親水性基7A(図3では不図示)とを含んで成る。つまり、複合体40Aにおいて、第2ナノ粒子体20Aは、第1金属ナノ粒子22Aと、第2金属ナノ粒子22Aの表面を被覆する第2高分子膜23Aと、第2金属ナノ粒子22Aの表面への非特異吸着を抑制する第1親水性基7Aとを含んで成り、第1親水性基7Aが第2金属ナノ粒子22Aの表面に結合しており、第2高分子膜23Aが第2金属ナノ粒子22Aの表面との間に硫黄原子を介した結合を含む。第2ナノ粒子体20Aは、第2高分子膜23Aに結合した第2特異結合物質24Aと、第2特異結合物質24Aに結合した第2蛍光物質26Aとをさらに含んで成る。
 蛍光強度をより増大させる観点から、励起した蛍光物質16A,26Aが消光されにくい範囲で、離隔距離Lが小さい方が好ましい。より具体的には、好適な態様では、複合体40Aにおける2つのナノ粒子体10A,20Aが互いに近接する。より好適な態様では、複合体40Aにおける第1ナノ粒子体10Aの第1高分子膜13Aと第2ナノ粒子体20Aの第2高分子膜23Aとが接触するように2つのナノ粒子体10A,20Aが互いに近接する。さらに好適な態様では、複合体40Aにおける第1ナノ粒子体10Aの第1高分子膜13Aおよび第2ナノ粒子体20Aの第2高分子膜23Aのうちの少なくともいずれかの高分子膜が収縮して接触するように2つのナノ粒子体10A,20Aが互いに近接する。
 さらに好適な態様において、高分子膜13A,23Aのうちの少なくともいずれかの高分子膜が収縮して互いに接触する場合、例えば、図3に記載の複合体40Aでは、被験物質30と、被験物質30に結合する特異結合物質14A,24Aと、蛍光物質16A,26Aとのうちの少なくとも1つを、高分子膜13A,23A中に入り込ませることができると考えられる。また、より好適な態様において、高分子膜13A,23Aが互いに接触する場合、例えば、図3に記載の複合体40Aでは、さらに好適な態様と同様に被験物質30と、被験物質30に結合する特異結合物質14A,24Aと、蛍光物質16A,26Aとのうちの少なくとも1つを、高分子膜13A,23A中に入り込ませることができると考えられる。
 本実施形態では、金属ナノ粒子12A,22Aの表面を被覆する膜が高分子膜13A,23Aであるため、蛍光強度を増大させることができる。その理由は以下のように推測される。金属ナノ粒子12A,22Aの表面を被覆する膜が高分子膜13A,23Aであり、高分子膜13A,23Aは、無機酸化物を含む無機膜に比べ、比較的高い柔軟性を有する。このため、複合体40Aにおいて、高分子膜13A,23Aが収縮することができ、これにより2つの金属ナノ粒子12A,22Aが高分子膜の膜厚2つ分(高分子膜13Aの膜厚+高分子膜23Aの膜厚)に相当する距離よりも近接することが可能となる。つまり、金属ナノ粒子12A,22Aの表面を被覆する膜が高分子膜13A,23Aであるため、離隔距離Lは、高分子膜の膜厚2つ分未満となり得る。これにより、プラズモン増強効果が得やすく、蛍光強度がより増大する。なお、本明細書において、「高分子膜の膜厚2つ分」における高分子膜の膜厚とは、離隔距離の対象となる収縮した部分の高分子膜13A,23Aの膜厚ではなく、離隔対象とならない収縮していない部分の高分子膜13A,23Aの膜厚である。
 本実施形態では、高分子膜13A,23Aを構成する高分子3Aが、その側鎖(より具体的には、側鎖末端)に金属ナノ粒子12A,22Aの表面との間に硫黄原子を介した結合部位3aを含む。これにより、蛍光強度がさらに増大させることができる。特定の理論に拘束されるわけではないが、その理由は以下のように推測される。かかる場合、結合部位3aは金属ナノ粒子12A,22Aの表面と結合を形成するため、高分子3Aは網目状構造を有し、金属ナノ粒子12A,22Aの表面を網目状に被覆すると考えられる。このように高分子3Aは網目状構造を有するため、さらに比較的高い柔軟性を有する。このため、複合体40Aにおいて、高分子膜13A,23Aがさらに収縮することができ、これにより2つの金属ナノ粒子12A,22Aが高分子膜の膜厚2つ分に相当する距離よりもさらに近接することが可能となる。よって、本実施形態では、離隔距離Lは、高分子膜の膜厚2つ分未満となり得、プラズモン増強効果がさらに得られ、蛍光強度がさらに増大する。
 好適な態様では、高分子膜13A,23Aを構成する高分子3Aが、その側鎖(より具体的には、側鎖末端)に金属ナノ粒子12A,22Aの表面との間に硫黄原子を介した結合部位3aに加え、正帯電性基3bおよび疎水性基3cからなる群より選択される少なくとも1つをさらに含む。これにより、蛍光強度がさらに増大する。特定の理論に拘束されるわけではないが、その理由は以下のように推測される。かかる場合、正帯電性基3bおよび疎水性基3cからなる群より選択される少なくとも1つは金属ナノ粒子12A,22Aの表面と結合を形成するため、高分子3Aは網目状構造を有し、金属ナノ粒子12A,22Aの表面を網目状に被覆すると考えられる。このように高分子3Aは網目状構造を有するため、さらに比較的高い柔軟性を有する。このため、複合体40Aにおいて、高分子膜13A,23Aがさらに収縮することができ、これにより2つの金属ナノ粒子12A,22Aが高分子膜の膜厚2つ分に相当する距離よりもさらに近接することが可能となる。よって、本実施形態では、離隔距離Lは、高分子膜の膜厚2つ分未満となり得、プラズモン増強効果がさらに得られ、蛍光強度がさらに増大する。
 第1ナノ粒子体10Aと第2ナノ粒子体20Aとの間の離隔距離Lは、例えば、12nm~52nmであり、好ましくは12nm~27nmである。離隔距離Lは、第1金属ナノ粒子12Aと第2金属ナノ粒子22Aとの間の距離であって、第1ナノ粒子体10Aの表面上の第1点P1と、第2ナノ粒子体20Aの表面上の第2点P2とで結ばれる線分が最小となる距離である。離隔距離Lが52nm以下である場合、複合体40Aに励起光が照射されると、第1,第2金属ナノ粒子12A,22A間の表面近傍の空間でより効率的に近接場が発生するため、蛍光強度をより増大させることができる。
 金属ナノ粒子12A,22Aの表面を被覆する膜が高分子膜13A,23Aであり、高分子膜13A,23Aが金属ナノ粒子12A,22Aの表面との間に硫黄原子を介した結合部位3aを含む。このため、離隔距離Lは、上述のように、複合体40Aにおける2つの金属ナノ粒子12A,22Aの表面を被覆する高分子膜の膜厚2つ分に相当する距離よりも近接することができる。例えば、高分子膜13A,23Aの厚みが5nmである場合、離隔距離Lは、10nm未満(より具体的には、2~9nm、3~8nmおよび4~7nm等)となり得る。
(蛍光物質)
 蛍光物質16A,26Aは、図3に示すように、複合体40Aにおいて第1金属ナノ粒子12Aと第2金属ナノ粒子22Aとの間に少なくとも位置づけられていることが好ましい。金属ナノ粒子12A,22A間では近接場が効率的に生じる空間であるため、金属ナノ粒子12A,22A間の空間に蛍光物質16A,26Aが位置づけられることで蛍光強度が増大されやすいからである。
(被験物質)
 被験物質30は、検体に含まれる検出対象となる物質である。被験物質30としては、例えば、抗原、タンパク質、基質、および核酸鎖が挙げられる。被験物質30は、特異結合物質14A,24Aと特異的に結合する。例えば、抗原は、少なくとも2つの抗原決定基を有し、抗原決定基で第1,第2特異結合物質14A,24Aと特異的結合を形成する。抗原は、例えば、c反応性タンパク質、ミオグロビン、トロポニンT、トロポニンI、およびBNP等のようなタンパク質、ならびにインフルエンザウイルス、およびRSウイルス等のようなウイルスの抗原タンパク質である。被験物質30は、例えば、血液、血漿、尿、または唾液のような検体に由来する被験物質である。つまり、被験物質30を含む検体としては、例えば、血液、血漿、血清、尿、および唾液である。検体は、溶媒および緩衝液(より具体的には、リン酸緩衝生理食塩水(phosphate-buffered saline:PBS)、Tris緩衝液、HEPES緩衝液、MOPS緩衝液、およびMES緩衝液など)をさらに含んでもよい。
(複合体を用いた被験物質の検出方法)
 第3実施形態に係る複合体を用いた被験物質の検出方法の一例を説明する。
 第2実施形態に係るナノ粒子体1Aを検体に分散させて、検体中に含まれる被験物質30を捕捉して複合体40Aを形成する。
 表面プラズモン励起増強蛍光分光法(Surface Plasmon-field enhanced Fluorescence Spectroscopy:SPFS)において、複合体40Aに励起光を照射すると、局在表面プラズモン共鳴が起き、金属ナノ粒子12A,22Aの表面近傍(特に、2つの金属ナノ粒子12A,22A間の表面近傍)で効率的に近接場が形成される。近接場および双極子-双極子機構によって、複合体40Aの蛍光物質16A,26Aが効率的に励起され、蛍光が増強する。蛍光光量を測定することによって、検体中の被験物質を検出することができる。
(複合体を用いて被験物質を検出する測定装置)
 図4を参照して、第3実施形態に係る複合体40Aを用いて被験物質を検出する測定方法の一例を説明する。図4は、第3実施形態に係る複合体を用いて被験物質を検出する測定装置を模式的に示す図である。図4に示すように、測定装置100は、励起用光源110と、励起光照射光学系120と、試薬容器130と、受光光学系140と、受光素子150とを備える。
 励起用光源110は、励起光112を照射する。励起用光源110は、例えば、レーザーである。励起光照射光学系120は、励起光112の集光のように断面径の調整等を行い、入射励起光122を出力する。励起光照射光学系120は、レンズ124および偏光素子(λ/2板)126である。励起光照射光学系120から出力した入射励起光122は、試薬容器130に入射し、試薬容器130内の測定試料に照射される。試薬容器130は、例えば、着脱可能な容器(より具体的には、セル、およびプレパラート等)、およびマイクロ流路チップである。マイクロ流路チップは、微小な流路を有するチップである。試薬容器130がマイクロ流路チップである場合、例えば、第1実施形態に係るナノ粒子体(試薬)と検体とを混合して連続的に供給することができる。このため、あらかじめ測定試料を混合して調製する必要がなく、連続的に測定することが可能となる。
 入射励起光122が照射された測定試料は、蛍光(検出光132)を発する。受光光学系140は、試薬容器130への入射励起光122の進行方向に対して直角方向に配置される。受光光学系140は、測定試料から発せられた検出光132の断面径等を調整し、入射励起光122の散乱光を取り除く、もしくは光量を調整することが出来る。受光光学系140は、レンズ144および光学フィルタ146である。光学フィルタ146は、例えば、バンドパスフィルタ、およびダイクロイックミラーである。
 受光光学系140を通過した蛍光142は、受光素子150で検出される。受光素子150は、例えば、PD、APD、PMT、CCDカメラ、および分光器である。受光素子150は、単一波長の蛍光量の測定、蛍光スペクトルの測定、および2次元平面の蛍光イメージング作成が可能である。
<第4実施形態:複合体>
 第4実施形態に係る複合体(ナノ粒子体付き金属薄膜)は、異種の被覆金属基材(被覆金属薄膜とナノ粒子体)で構成される点で、同種の被覆金属基材(ナノ粒子体)で構成される第3実施形態に係る複合体と異なる。第4実施形態において、第1実施形態~第3実施形態と同一の符号は、第1実施形態~第3実施形態とそれぞれ同じ構成であるため、原則としてその説明を省略する。
 なお、第4実施形態に係る複合体は、被験物質を検出する際に、第2実施形態に係る被覆金属基材(被覆金属薄膜と、2以上のナノ粒子体)が被験物質を挟み込むように捕捉して形成され得る。
 第4実施形態に係る複合体は、被覆金属薄膜1Bと(1以上の)ナノ粒子体1Aとを含んで構成される。第4実施形態に係る複合体を形成することができる被覆金属基材1は、金属基材2として金属ナノ粒子2Aを含むナノ粒子体1Aと、金属基材2として金属薄膜2Bを含む被覆金属薄膜1Bとを含んで成り、第1親水性基7Aは、金属ナノ粒子2Aの表面および金属薄膜2Bの表面の少なくとも一方に結合しており、被覆金属薄膜1Bとナノ粒子体1Aとが被験物質を介して結合された複合体を形成する被覆金属基材1である。
 複合体は、図1(a)に示す第2実施形態に係るナノ粒子体1Aと、図1(b)に示す第3実施形態に係る被覆金属薄膜1Bとを含んで成り、ナノ粒子体1Aおよび被覆金属薄膜1Bが被験物質30を介して結合している。第1親水性基7Aは、金属ナノ粒子2Aの表面および金属薄膜2Bの表面の少なくとも一方に結合している。
 図5を参照して、複合体を説明する。図5は、第4実施形態に係る複合体を模式的に示す断面図である。詳しくは、複合体40Bは、検出対象である被験物質30と、2以上の第3ナノ粒子体10Bおよび1つの第1被覆金属基材20Bとを含んで成る。第3ナノ粒子体10Bと第1被覆金属基材20Bとは、複合体40Bにおいて、被験物質30を介して結合されている。つまり、第4実施形態に係る複合体40Bは、第2実施形態に係るナノ粒子体1Aと被覆金属薄膜1Bとが被験物質30を介して結合されて形成され得る。
 複合体40Bにおいて、第3ナノ粒子体10Bは、金属ナノ粒子としての第3金属ナノ粒子12Bと、高分子膜としての第3高分子膜13Bと、第1親水性基7A(図5では不図示)とを含んで成る。つまり、複合体40Bにおいて、第3ナノ粒子体10Bは、第3金属ナノ粒子12Bと、第3金属ナノ粒子12Bの表面を被覆する第3高分子膜13Bと、第3金属ナノ粒子12Bの表面への非特異吸着を抑制する第1親水性基7A(図5では不図示)とを含んで成り、第1親水性基7Aが第3金属ナノ粒子12Bの表面に結合しており、第3高分子膜13Bが第3金属ナノ粒子12Bの表面との間に硫黄原子を介した結合を含む。第3ナノ粒子体10Bは、第3高分子膜13Bに結合した第3特異結合物質14Bと、第3特異結合物質14Bに結合した第3蛍光物質16Bとをさらに含んで成る。
 複合体40Bにおいて、第1被覆金属基材20Bは、金属基材としての第1金属薄膜22Bと、高分子膜としての第4高分子膜23Bと、第1親水性基7A(図5では不図示)とを含んで成る。つまり、複合体40Bにおいて、第1被覆金属基材20Bは、第1金属薄膜22Bと、第1金属薄膜22Bの表面を被覆する第4高分子膜23Bと、第1金属薄膜22Bの表面への非特異吸着を抑制する第1親水性基7A(図5では不図示)とを含んで成り、第1親水性基7Aが第1金属薄膜22Bの表面に結合しており、第4高分子膜23Bが第1金属薄膜22Bの表面との間に硫黄原子を介した結合を含む。第1被覆金属基材20Bは、第4高分子膜23Bに結合した第4特異結合物質24Bをさらに含んで成る。
(複合体を用いた被験物質の検出方法)
 第4実施形態に係る複合体を用いた被験物質の検出方法の一例を説明する。
 図4に示す測定装置を用いる。試薬容器130に、後述する被験物質30および第3ナノ粒子体10Bと接触するように、第4高分子膜23Bを露出させて第1被覆金属基材20Bを設置する。試薬容器130に被験物質30を含む分散液をフローして、第4高分子膜23Bに接触させる。これにより、第4高分子膜23Bに結合した第4特異結合物質24Bに被験物質30を特異的に結合させる。次いで、第3ナノ粒子体10Bを含む分散液を試薬容器130にフローして、第4高分子膜23Bに接触させる。これにより、第1被覆金属基材20Bの第4特異結合物質24Bに結合した被験物質30に、第3ナノ粒子体10Bを特異的に結合させる。その結果、複合体40Bが形成する。
 第3実施形における測定方法と同様にして、蛍光を測定する。これにより、被験物質を検出する。
 本発明は上述の実施形態に限定されず、本発明の要旨を逸脱しない範囲で設計変更可能であり、第1~第4実施形態のうちの少なくとも2つを組み合わせてもよい。
 第4実施形態では、複合体(ナノ粒子体付き金属薄膜)40Bは、1の被験物質30を介して1のナノ粒子体10Bと、高分子膜23Bで被覆された金属薄膜22Bとが結合して形成されたが、これに限定されない。複合体(複合ナノ粒子体付き金属薄膜)は、例えば、1の被験物質30を介して1の複合体40Aと、高分子膜23Bで被覆された金属薄膜22Bとが結合して形成されてもよい。
 第2実施形態では、ナノ粒子体1A、および被覆金属薄膜1Bに標識されている蛍光物質6は、図1に示すように、それぞれ3つおよび2つ標識されていたが、これに限定されない。特異結合物質4の数(図1)も同様である。また、第3実施形態に係る複合体40Aにおける蛍光物質16A,26Aおよび特異結合物質14A,24Aの数(図3)も同様である。さらに第4実施形態に係る複合体40Bにおける蛍光物質16Bおよび特異結合物質14B,24Bの数(図5)も同様である。
 第2~4実施形態では、蛍光物質は、特異結合物質に結合させていたが、これに限定されない。例えば、蛍光物質は、高分子膜に結合させてもよい。
 第3実施形態では、測定装置100における受光光学系140は、試薬容器130への入射励起光122の進行方向に対して直角方向に配置されているが、これに限定されない。受光光学系140は、例えば、入射励起光122の進行方向に対して平行方向に配置されてもよく、または入射励起光122の進行方向に対して鋭角もしくは鈍角となる方向に配置されてもよい。
 以下、本発明について実施例を用いてさらに詳細に説明する。なお、本発明は、以下の実施例によって何ら限定されるものではない。また、特に明記しない限り、実施例における部および%は質量基準である。
 また、実施例では、金属ナノ粒子の分散液中での濃度を吸光度で表記することもある。吸光度は、紫外可視分光光度計(TECANジャパン株式会社製「infinite M200 PRO」)を用いて、測定された。なお、吸光度の表記ОDに下付きに付された数字は、吸収波長を示す。例えば、OD455=0.1は、波長455nmでの吸光度が0.1であることを示す。
<実施例1>
[高分子の調製]
 以下のようにして実施例1の高分子を作製した。
(高分子へのジスルフィド結合の導入:ジスルフィド基導入工程)
 (3a-1)側鎖に官能部位を有する高分子としてのポリ-L-リシン(株式会社ペプチド研究所製「3075」、重量平均分子量Mw>12,000、以下「PLL」とも称する)と、(4-1)ジスルフィド基を有する化合物としての3-(2-ピリジルジチオ)プロピオンアミド-PEG4-NHS(Thermo Fisher Scientific社製、製造番号「26128」、「NHS-PEG4-SPDP」)とを、室温および4時間の条件で、小型回転培養器(タイテック株式会社製「RT-30mini)を用いて攪拌し、混合した。その結果、(2-1)側鎖にSPDPリンカーおよびジスルフィド結合を介してピリジル基(ピリジニル基)を有する高分子(以下、「ジスルフィド基を有する高分子」とも称する)を得た。この合成反応は、反応式(r-1):
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000009

で示すように、ポリ-L-リシンの第1級アミノ基が3-(2-ピリジルジチオ)プロピオンアミド-PEG4-NHSのNHSエステル基に攻撃する求核置換反応である。
(高分子への親水性基の導入:親水性基導入工程)
 (2-1)ジスルフィド基を有する高分子、および(5j-1)親水性基を有するチオール化合物(sulfobetaine 3-undecanetiol 同仁化学「S350」)を37℃および1時間の条件で攪拌および混合した。その結果、(1-1)側鎖にSPDPリンカーおよびジスルフィド結合を介してベタインが結合した高分子(以下、「ベタイン導入高分子」(PLL-S-S-ベタイン)とも称する)を得た。合成した(1-1)ベタイン導入高分子は、疎水性基(n-ブチレン基)と、正帯電性基(第1アンモニウム基)とを有していた。この合成反応は、反応式(r-2):
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000010

に示すように、(5j-1)親水性基を有するチオール化合物のチオール基が(2-1)ジスルフィド基を有する高分子のジスルフィド基に攻撃するチオール求核反応である。
 図6を参照して、(1-1)PLL-S-S-ベタインの同定を説明する。図6は、高分子合成の各工程における吸収スペクトルを示す図である。実線が、反応(r-1)後の吸収スペクトル、破線が反応(r-2)後の吸収スペクトル、一点鎖線が反応(r-2)後に限外濾過処理を行った吸収スペクトルを示す。
 吸収スペクトル(実線)の280nm付近の吸収ピークは、(2-1)ジスルフィド基を有する高分子のピリジル基に帰属された。吸収スペクトル(破線)の343nm付近の吸収ピークは、以下の共鳴構造:
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000011
を有する3-メルカプトピリジンに帰属された。3-メルカプトピリジンは、反応(r-2)で生成する副生物である。吸収スぺクトル(1点鎖線)は、可視域に極大ピークを有しなかった。これらの結果から、上記反応(r-1)および反応(r-2)が進行して、(1-1)PPL-S-S-ベタインが生成していることを確認した。
[高分子膜の形成および親水性基の金属ナノ粒子表面への標識]
 得られた(1-1)PLL-S-S-ベタインを金属ナノ粒子としての銀ナノ粒子(nanocomposix製「AGCB80-1M」,直径80nm,OD455=0.1)の分散液1mLに、添加し、室温およびオーバーナイトの条件で、小型回転培養器(タイテック株式会社製「RT-30mini」)を用いて攪拌し、混合した。その結果、高分子膜で被覆され、かつ親水性物質(ベタイン)で標識された銀ナノ粒子(以下、「親水性基標識高分子被覆銀ナノ粒子」とも称する)の分散液を得た。この反応では、銀の還元作用によって、(1-1)親水性基を有する高分子のジスルフィド基が開裂する。開裂によって生じたポリLリジン部分と、親水性基とがそれぞれ銀ナノ粒子の表面と硫黄原子を介して結合する。その結果、図7(実施例1の高分子膜の形成方法に関する反応を示す図)に示すように、親水性物質としてのベタインが硫黄原子を介して銀ナノ粒子表面に標識され、かつ高分子膜が硫黄原子を介して銀ナノ粒子表面に結合する。つまり、本工程は親水性基の標識と、高分子膜の形成とが並行して進行するものであった。
[評価方法]
(SEM画像)
 走査型電子顕微鏡(株式会社日立ハイテク製「Regulus8220」)を用いて、得られた実施例1の親水性基標識高分子被覆銀ナノ粒子のSEM画像(倍率300K倍)を撮像した。図8は、実施例1の親水性基標識高分子被覆銀ナノ粒子のSEM画像を示す。図8に示すように得られたSEM画像において、銀ナノ粒子が高分子膜で被覆されていることを確認した。
(ゼータ電位および粒度分布による測定評価)
 ゼータ電位測定装置(MALVERN社製「ZETA SIZER Nanoseries nano-ZS」)を用いて、実施例1の親水性基標識高分子被覆銀ナノ粒子のゼータ電位および粒度分布を測定した(それぞれ測定数n=3)。図9を参照してゼータ電位の測定結果を説明する。図9は、実施例1の高分子被覆親水性基標識銀ナノ粒子についてのゼータ電位に対する散乱光強度比の分布(ゼータ電位分布)を示す図である(詳しくは、3回測定して得た分布のうち1の分布である)。ゼータ電位に対する散乱光強度比の分布は、それらのピークが-5.77~-2.33mVに存在する分布であった。高分子被覆親水性基標識銀ナノ粒子は、全体的にわずかに負帯電していた。
 図10を参照して粒度分布の測定結果を説明する。図10は、実施例1の高分子被覆親水性基標識銀ナノ粒子についての粒子径に対する散乱光強度比の分布(粒度分布)を示す図である(詳しくは、3回測定して得た分布ののうち1の分布である)。粒子径に対する散乱光強度比の分布では、97.93nm(期待値M)±0.163nm(多分散性指数Polydispersity Index(PDI))であった。
<実施例2>
 反応(r-2)における親水性基を有するチオール化合物を(5j-1)から(5k-1)で表されるホスホルコリン基を有するチオール化合物(医科学創薬株式会社製「商品コード;MCP-03-0001―PC」):
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000012
(5k-1)
に変更した以外は実施例1と同様にして(2-1)ジスルフィド基を有する高分子(PLL-S-S-PC)を得た。実施例1と同様の吸収スペクトルが得られた。
 実施例2の親水性基標識高分子被覆銀ナノ粒子のSEM画像(倍率300K倍)を撮像し、ゼータ電位分布および粒度分布を得た。図11に、実施例2の親水性基標識高分子被覆銀ナノ粒子のSEM画像を示す。図11から銀ナノ粒子が高分子膜で被覆されていることを確認した。実施例2の親水性基標識高分子被覆銀ナノ粒子について、飛行時間型二次イオン質量分析法(TOF―SIMS)を用いて測定した。その結果、銀ナノ粒子が存在する領域にリン酸の存在を確認することができた。このリン酸は、銀ナノ粒子表面に結合したホスホルコリン基に由来するフラグメントであると結論づけた。図12に、実施例2の高分子被覆親水性基標識銀ナノ粒子についてのゼータ電位分布を示す(詳しくは、3回測定して得た分布のうちの1の分布である)。ゼータ電位分布から、それらのピークが+20~+27mVに存在する分布であった。高分子被覆親水性基標識銀ナノ粒子は、全体的にわずかに正帯電していた。表1:
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000013
に実施例2の親水性基標識高分子被覆銀ナノ粒子の粒度分布に関する期待値Mおよび多分散性指数PDIを示す。
<比較例1>
 比較例1では、銀ナノ粒子を被覆するための高分子を(1-1)PLL-S-S-ベタインからPLL(株式会社ペプチド研究所製「3075」)に変更した以外は、実施例1と同様に高分子被覆銀ナノ粒子を作製した。比較例1では、実施例1と同様に、ゼータ電位分布を測定した。比較例1のゼータ電位分布は、そのピークが+50mV付近に存在する分布であった。高分子被覆銀ナノ粒子は、全体的に正帯電していた。
<比較例2>
 比較例2では、高分子被覆親水性基標識銀ナノ粒子の代わりに銀ナノ粒子(nanocomposix製「AGCB80-1M」,直径80nm)を使用した以外は、実施例1と同様にして、粒度分布およびゼータ電位分布を測定した。比較例2のゼータ電位分布は、そのピークが-50mV付近に存在する分布であった。銀ナノ粒子は、全体的に負帯電していた。
(実施例1~2および比較例1~2の比較)
 実施例1~2のゼータ電位分布では、ピーク位置のゼータ電位の絶対値が、比較例1~2のピーク位置のゼータ電位の絶対値に比べ小さかった。通常、ゼータ電位が0mV付近に近づくと凝集し、一次粒子状態で分散するのは困難である。それにもかかわらず、実施例1~2の粒度分布の結果では、期待値が銀ナノ粒子の粒径(80nm)よりわずかに大きいだけであった。この増加分は、高分子膜の膜厚分であると考えられる。また、PDIもそれほど大きくはなかった。これらを考慮すると、親水性基標識高分子被覆銀ナノ粒子(被覆金属基材)が一次粒子状態で分散しているものと考えられる。これは、金属基材の表面に親水性基が存在することによるものと考えてられる。以上から、ノイズ成分に寄与する非特異的吸着物質の吸着を効果的に抑制できるものと考えられる。
 本開示に係る被覆金属基材およびその製造方法、被覆金属基材を含む複合体、ならびに被覆金属基材を製造するための高分子の態様は、以下の通りである。
<1>
 金属ナノ粒子および/または金属薄膜である金属基材と、該金属基材の表面を被覆する高分子膜と、前記金属基材の表面への非特異吸着を抑制する第1親水性基とを含んで成り、
 前記第1親水性基は、前記金属基材の表面に結合しており、
 前記高分子膜が、前記金属基材の表面との間に硫黄原子を介した結合部位を含む、被覆金属基材。
<2>
 前記第1親水性基は、前記金属基材の表面との間に硫黄原子を介した結合部位を含む、<1>に記載の被覆金属基材。
<3>
 前記高分子膜を形成する高分子が、該高分子の側鎖に前記金属基材の表面との間に前記硫黄原子を介した前記結合部位を含む、<1>または<2>に記載の被覆金属基材。
<4>
 前記高分子膜を構成する高分子が、該高分子の側鎖に、ジスルフィド基を介して結合する第2親水性基を該高分子の1分子鎖当たり1または複数含む、<1>~<3>のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
<5>
 前記高分子が、該高分子の側鎖に前記第2親水性基をさらに含み、
 前記第1親水性基および前記第2親水性基が、各々独立に、極性基および/または帯電性基を含み、
 前記極性基が、カルボキシル基、ヒドロキシル基、アミノ基、スルホニル基、リン酸基、およびアルキレンオキシド基からなる群より選択される少なくとも1つを含み、
 前記帯電性基が、前記極性基が帯電した基および双性イオン基からなる群より選択される少なくとも1つを含み、前記双性イオン基が、ホスホリルコリン基およびベタイン基からなる群より選択される少なくとも1つを含む、<4>に記載の被覆金属基材。
<6>
 前記高分子膜を構成する高分子は、該高分子の主鎖骨格にアミド結合を含む、<1>~<5>のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
<7>
 前記高分子膜を構成する高分子が、該高分子の側鎖に正帯電性基をさらに含み、
 前記側鎖は、ジスルフィド結合を有さず、
 前記正帯電性基は、第1級アンモニウム基、第2級アンモニウム基、第3級アンモニウム基、第4級アンモニウム基およびグアニジル基(-NHC(=NH )NH)からなる群より選択される少なくとも1種である、<1>~<6>のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
<8>
 前記高分子膜を構成する高分子が、該高分子の側鎖に疎水性基をさらに含み、
 前記側鎖は、ジスルフィド結合を有さず、
 前記疎水性基は、芳香族環状基、脂肪族環状基および脂肪族鎖状基からなる群より選択される少なくとも1種である、<1>~<7>のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
<9>
 前記高分子は、主鎖骨格に1または複数のアミノ酸に由来する構造を含み、
 前記アミノ酸は、リジン、ヒスチジン、アルギニン、グルタミン酸、アスパラギン酸グルタミン、アスパラギン、セリン、およびスレオニンからなる群より選択される少なくとも1つを含む、<3>~<8>のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
<10>
 前記高分子膜を構成する高分子は、該高分子の主鎖骨格にブロックポリマーとして生体適合性ポリマーを含む、<1>~<9>のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
<11>
 蛍光物質および/または検体中の被験物質と特異的に結合する特異結合物質をさらに含んで成る、<1>~<10>のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
<12>
 前記特異結合物質が、ナノ抗体である、<11>に記載の被覆金属基材。
<13>
 前記高分子膜の膜厚は、1nm~10nmである、<1>~<12>のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
<14>
 プラズモン励起蛍光分析に用いる被覆金属基材である、<1>~<13>のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
<15>
 前記金属基材が金または銀を含んで成る、<1>~<14>のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
<16>
 前記金属基材として前記金属ナノ粒子を含むナノ粒子体であって、
 前記ナノ粒子体として第1ナノ粒子体と第2ナノ粒子体とが含まれ、
 前記第1親水性基は、前記第1ナノ粒子体の前記金属ナノ粒子の表面および前記第2ナノ粒子体の前記金属ナノ粒子の表面の少なくとも一方に結合しており、
 前記第1ナノ粒子体と前記第2ナノ粒子体とが被験物質を介して結合された複合体を形成する、<1>~<15>のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
<17>
 前記金属基材として前記金属ナノ粒子を含むナノ粒子体と、前記金属基材として前記金属薄膜を含む被覆金属薄膜とを含んで成り、
 前記第1親水性基は、前記金属ナノ粒子の表面および前記金属薄膜の表面の少なくとも一方に結合しており、
 前記被覆金属薄膜と前記ナノ粒子体とが被験物質を介して結合された複合体を形成する、<1>~<16>のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
<18>
 前記被験物質が、血液、血漿、尿、または唾液である検体に由来する被験物質である、<16>または<17>に記載の被覆金属基材。
<19>
 前記高分子膜を構成する分子は、該高分子の主鎖が前記金属基材の表面に対して略平行となるように、前記金属基材の表面を二次元状に覆う、<1>~<18>のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
<20>
 <1>~<19>のいずれか1項に記載の金属ナノ粒子を含むナノ粒子体を2以上含んで成り、
 前記2以上のナノ粒子体が第1ナノ粒子体と第2ナノ粒子体とを含み、
 前記第1ナノ粒子体と前記第2ナノ粒子体とが被験物質を介して結合されている、複合体。
<21>
 <1>~<19>のいずれか1項に記載の金属ナノ粒子を含むナノ粒子体と、<1>~<19>のいずれか1項に記載の金属薄膜を含む被覆金属薄膜とを含んで成り、
 前記第1親水性基は、前記金属ナノ粒子の表面および前記金属薄膜の表面の少なくとも一方に結合しており、
 前記ナノ粒子体と前記被覆金属薄膜とが被験物質を介して結合されている、複合体。
<22>
 ジスルフィド基を介して結合する親水性基を側鎖の末端に有する、高分子。
<23>
 前記親水性基が、極性基および/または帯電性基を含み、
 前記極性基が、カルボキシル基、ヒドロキシル基、アミノ基、スルホニル基、リン酸基、およびアルキレンオキシド基からなる群より選択される少なくとも1つを含み、
 前記帯電性基が、前記極性基が帯電した基および双性イオン基からなる群より選択される少なくとも1つを含み、前記双性イオン基が、ホスホリルコリン基およびベタイン基からなる群より選択される少なくとも1つを含む、<22>に記載の高分子。
<24>
 前記高分子の側鎖に正帯電性基をさらに含み、
 前記側鎖は、ジスルフィド結合を有さず、
 前記正帯電性基は、第1級アンモニウム基、第2級アンモニウム基、第3級アンモニウム基、第4級アンモニウム基およびグアニジル基(-NHC(=NH )NH)からなる群より選択される少なくとも1種である、<22>または<23>に記載の高分子。
<25>
 前記高分子の側鎖に疎水性基をさらに含み、
 前記側鎖は、ジスルフィド結合を有さず、
 前記疎水性基は、芳香族環状基、脂肪族環状基および脂肪族鎖状基からなる群より選択される少なくとも1種である、<22>~<24>のいずれか1項に記載の高分子。
<26>
 前記高分子の主鎖骨格にアミド結合を含む、<22>~<25>のいずれか1項に記載の高分子。
<27>
 前記高分子の主鎖骨格に1または複数のアミノ酸に由来する構造を有し、
 前記アミノ酸は、リジン、ヒスチジン、アルギニン、グルタミン酸、アスパラギン酸、グルタミン、アスパラギン、セリン、およびスレオニンからなる群より選択される少なくとも1つを含む、<22>~<26>のいずれか1項に記載の高分子。
<28>
 前記高分子の主鎖骨格にブロックポリマーとして生体適合性ポリマーを含む、<22>~<27>のいずれか1項に記載の高分子。
<29>
 <22>~<28>のいずれか1項に記載の高分子を、金属基材の表面に接触させて、前記親水性基を前記金属基材の表面に結合させつつ、かつ前記金属基材の表面に高分子膜を形成する工程を含んで成る、被覆金属基材の製造方法。
<30>
 前記側鎖において、前記ジスルフィド基から前記親水性基までの第1側鎖長は、前記ジスルフィド基から前記高分子の主鎖までの第2側鎖長に比べ長い、<29>に記載の被覆金属基材の製造方法。
 1 ・・・被覆金属基材
 1A ・・・ナノ粒子体
 1B ・・・被覆金属薄膜
 2 ・・・金属基材
 2A ・・・金属ナノ粒子
 2B ・・・金属薄膜
 3 ・・・高分子膜
 3A ・・・(高分子膜を構成する)高分子
 3B ・・・(高分子膜を形成する)高分子
 4 ・・・特異結合物質
 6 ・・・蛍光物質
 7 ・・・親水性基
 7A ・・・第1親水性基
 7B ・・・第2親水性基
 10A ・・・第1ナノ粒子体
 10B ・・・第3ナノ粒子体
 12A ・・・第1金属ナノ粒子
 12B ・・・第3金属ナノ粒子
 13A ・・・第1高分子膜
 13B ・・・第3高分子膜
 14A ・・・第1特異結合物質
 14B ・・・第3特異結合物
 16A ・・・第1蛍光物質
 16B ・・・第3蛍光物質
 20A ・・・第2ナノ粒子体
 20B ・・・第1被覆金属基材
 22A ・・・第2金属ナノ粒子
 22B ・・・第1金属薄膜
 23A ・・・第2高分子膜
 23B ・・・第4高分子膜
 24A ・・・第2特異結合物質
 24B ・・・第4特異結合物質
 26A ・・・第2蛍光物質
 30 ・・・被験物質
 40A,40B 複合体
 L ・・・離隔距離(離間距離)

Claims (30)

  1.  金属ナノ粒子および/または金属薄膜である金属基材と、該金属基材の表面を被覆する高分子膜と、前記金属基材の表面への非特異吸着を抑制する第1親水性基とを含んで成り、
     前記第1親水性基は、前記金属基材の表面に結合しており、
     前記高分子膜が、前記金属基材の表面との間に硫黄原子を介した結合部位を含む、被覆金属基材。
  2.  前記第1親水性基は、前記金属基材の表面との間に硫黄原子を介した結合部位を含む、請求項1に記載の被覆金属基材。
  3.  前記高分子膜を形成する高分子が、該高分子の側鎖に前記金属基材の表面との間に前記硫黄原子を介した前記結合部位を含む、請求項1または2に記載の被覆金属基材。
  4.  前記高分子膜を構成する高分子が、該高分子の側鎖に、ジスルフィド基を介して結合する第2親水性基を該高分子の1分子鎖当たり1または複数含む、請求項1~3のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
  5.  前記高分子が、該高分子の側鎖に前記第2親水性基をさらに含み、
     前記第1親水性基および前記第2親水性基が、各々独立に、極性基および/または帯電性基を含み、
     前記極性基が、カルボキシル基、ヒドロキシル基、アミノ基、スルホニル基、リン酸基、およびアルキレンオキシド基からなる群より選択される少なくとも1つを含み、
     前記帯電性基が、前記極性基が帯電した基および双性イオン基からなる群より選択される少なくとも1つを含み、前記双性イオン基が、ホスホリルコリン基およびベタイン基からなる群より選択される少なくとも1つを含む、請求項4に記載の被覆金属基材。
  6.  前記高分子膜を構成する高分子は、該高分子の主鎖骨格にアミド結合を含む、請求項1~5のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
  7.  前記高分子膜を構成する高分子が、該高分子の側鎖に正帯電性基をさらに含み、
     前記側鎖は、ジスルフィド結合を有さず、
     前記正帯電性基は、第1級アンモニウム基、第2級アンモニウム基、第3級アンモニウム基、第4級アンモニウム基およびグアニジル基(-NHC(=NH )NH)からなる群より選択される少なくとも1種である、請求項1~6のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
  8.  前記高分子膜を構成する高分子が、該高分子の側鎖に疎水性基をさらに含み、
     前記側鎖は、ジスルフィド結合を有さず、
     前記疎水性基は、芳香族環状基、脂肪族環状基および脂肪族鎖状基からなる群より選択される少なくとも1種である、請求項1~7のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
  9.  前記高分子は、主鎖骨格に1または複数のアミノ酸に由来する構造を含み、
     前記アミノ酸は、リジン、ヒスチジン、アルギニン、グルタミン酸、アスパラギン酸グルタミン、アスパラギン、セリン、およびスレオニンからなる群より選択される少なくとも1つを含む、請求項3~8のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
  10.  前記高分子膜を構成する高分子は、該高分子の主鎖骨格にブロックポリマーとして生体適合性ポリマーを含む、請求項1~9のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
  11.  蛍光物質および/または検体中の被験物質と特異的に結合する特異結合物質をさらに含んで成る、請求項1~10のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
  12.  前記特異結合物質が、ナノ抗体である、請求項11に記載の被覆金属基材。
  13.  前記高分子膜の膜厚は、1nm~10nmである、請求項1~12のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
  14.  プラズモン励起蛍光分析に用いる被覆金属基材である、請求項1~13のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
  15.  前記金属基材が金または銀を含んで成る、請求項1~14のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
  16.  前記金属基材として前記金属ナノ粒子を含むナノ粒子体であって、
     前記ナノ粒子体として第1ナノ粒子体と第2ナノ粒子体とが含まれ、
     前記第1親水性基は、前記第1ナノ粒子体の前記金属ナノ粒子の表面および前記第2ナノ粒子体の前記金属ナノ粒子の表面の少なくとも一方に結合しており、
     前記第1ナノ粒子体と前記第2ナノ粒子体とが被験物質を介して結合された複合体を形成する、請求項1~15のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
  17.  前記金属基材として前記金属ナノ粒子を含むナノ粒子体と、前記金属基材として前記金属薄膜を含む被覆金属薄膜とを含んで成り、
     前記第1親水性基は、前記金属ナノ粒子の表面および前記金属薄膜の表面の少なくとも一方に結合しており、
     前記被覆金属薄膜と前記ナノ粒子体とが被験物質を介して結合された複合体を形成する、請求項1~16のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
  18.  前記被験物質が、血液、血漿、尿、または唾液である検体に由来する被験物質である、請求項16または17に記載の被覆金属基材。
  19.  前記高分子膜を構成する分子は、該高分子の主鎖が前記金属基材の表面に対して略平行となるように、前記金属基材の表面を二次元状に覆う、請求項1~18のいずれか1項に記載の被覆金属基材。
  20.  請求項1~19のいずれか1項に記載の金属ナノ粒子を含むナノ粒子体を2以上含んで成り、
     前記2以上のナノ粒子体が第1ナノ粒子体と第2ナノ粒子体とを含み、
     前記第1ナノ粒子体と前記第2ナノ粒子体とが被験物質を介して結合されている、複合体。
  21.  請求項1~19のいずれか1項に記載の金属ナノ粒子を含むナノ粒子体と、請求項1~19のいずれか1項に記載の金属薄膜を含む被覆金属薄膜とを含んで成り、
     前記第1親水性基は、前記金属ナノ粒子の表面および前記金属薄膜の表面の少なくとも一方に結合しており、
     前記ナノ粒子体と前記被覆金属薄膜とが被験物質を介して結合されている、複合体。
  22.  ジスルフィド基を介して結合する親水性基を側鎖の末端に有する、高分子。
  23.  前記親水性基が、極性基および/または帯電性基を含み、
     前記極性基が、カルボキシル基、ヒドロキシル基、アミノ基、スルホニル基、リン酸基、およびアルキレンオキシド基からなる群より選択される少なくとも1つを含み、
     前記帯電性基が、前記極性基が帯電した基および双性イオン基からなる群より選択される少なくとも1つを含み、前記双性イオン基が、ホスホリルコリン基およびベタイン基からなる群より選択される少なくとも1つを含む、請求項22に記載の高分子。
  24.  前記高分子の側鎖に正帯電性基をさらに含み、
     前記側鎖は、ジスルフィド結合を有さず、
     前記正帯電性基は、第1級アンモニウム基、第2級アンモニウム基、第3級アンモニウム基、第4級アンモニウム基およびグアニジル基(-NHC(=NH )NH)からなる群より選択される少なくとも1種である、請求項22または23に記載の高分子。
  25.  前記高分子の側鎖に疎水性基をさらに含み、
     前記側鎖は、ジスルフィド結合を有さず、
     前記疎水性基は、芳香族環状基、脂肪族環状基および脂肪族鎖状基からなる群より選択される少なくとも1種である、請求項22~24のいずれか1項に記載の高分子。
  26.  前記高分子の主鎖骨格にアミド結合を含む、請求項22~25のいずれか1項に記載の高分子。
  27.  前記高分子の主鎖骨格に1または複数のアミノ酸に由来する構造を有し、
     前記アミノ酸は、リジン、ヒスチジン、アルギニン、グルタミン酸、アスパラギン酸、グルタミン、アスパラギン、セリン、およびスレオニンからなる群より選択される少なくとも1つを含む、請求項22~26のいずれか1項に記載の高分子。
  28.  前記高分子の主鎖骨格にブロックポリマーとして生体適合性ポリマーを含む、請求項22~27のいずれか1項に記載の高分子。
  29.  請求項22~28のいずれか1項に記載の高分子を、金属基材の表面に接触させて、前記親水性基を前記金属基材の表面に結合させつつ、かつ前記金属基材の表面に高分子膜を形成する工程を含んで成る、被覆金属基材の製造方法。
  30.  前記側鎖において、前記ジスルフィド基から前記親水性基までの第1側鎖長は、前記ジスルフィド基から前記高分子の主鎖までの第2側鎖長に比べ長い、請求項29に記載の被覆金属基材の製造方法。
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