WO2023153388A1 - 他家移植方法及び拒絶反応抑制方法 - Google Patents

他家移植方法及び拒絶反応抑制方法 Download PDF

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浩一郎 内田
和由 竹田
繁 宮川
昌郎 中江
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学校法人順天堂
国立大学法人大阪大学
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    • A61P37/02—Immunomodulators
    • A61P37/06—Immunosuppressants, e.g. drugs for graft rejection

Definitions

  • the present invention relates to a method for allotransplantation of regenerated tissue or regenerative cells derived from human pluripotent stem cells and a method for suppressing rejection by allotransplantation.
  • Regenerative medicine is a therapeutic method that restores human tissues and their functions that have been lost mainly due to disease, injury, or disability through tissue reconstruction and cell therapy. This regenerative medicine attracted attention when Shinya Yamanaka was awarded the Nobel Prize for his success in establishing iPS cells. Regenerative medicine using iPS cells is being applied to platelets, cardiomyocytes, nerve cells, retinal cells, etc., but has not yet reached manufacturing approval.
  • regenerated tissue or regenerated cells derived from human pluripotent stem cells such as iPS cells are autologously or xenotransplanted, but rejection occurs in the case of xenotransplantation.
  • immunosuppressants such as azathioprine, cyclosporine, tacrolimus and rapamycin (sirolimus) have been used to suppress this rejection reaction.
  • allograft recipients must receive immunosuppressive drugs for life and are at constant risk of drug-induced side effects such as infections and carcinogenicity.
  • Non-Patent Document 1 a donor-derived peripheral blood mononuclear cell, a recipient-derived plasma, an antibody that specifically binds to CD80 or an antigen-binding fragment thereof and an antibody that specifically binds to CD86 or an antigen-binding fragment thereof, or It has been reported that Tregs can be induced by culturing for one week in the presence of a composition containing an antibody that specifically binds to CD80 and CD86 or an antigen-binding fragment thereof (Patent Document 1).
  • An object of the present invention is to provide an allotransplantation method that clearly suppresses rejection in allotransplantation of regenerated tissue or cells derived from human pluripotent stem cells.
  • the present inventors have developed a means for suppressing rejection when allotransplantation of regenerated tissue or regenerated cells derived from human pluripotent stem cells, and a method that does not cause side effects such as suppression of secretion of angiogenic factors caused by immunosuppressants.
  • As a result of studying to develop allograft means, at least at the time of transplantation of regenerative tissue or regenerative cells derived from the pluripotent stem cells, (1) an antibody or an antigen-binding fragment thereof that specifically binds to CD80 and a specific antibody to CD86 (2) an antibody or antigen-binding fragment thereof that specifically binds to CD80 and CD86; or (3) inhibiting the interaction of CD80 and/or CD86 with CD28.
  • the present inventors have found that administration of an inhibitory factor capable of regulating to a recipient markedly suppresses rejection due to allotransplantation and does not suppress the secretion of angiogenic factors, thereby completing the present invention.
  • the present invention provides the following inventions [1] to [12].
  • [1] A method for allotransplantation of regenerated tissue or regenerated cells derived from human pluripotent stem cells, wherein at least at the time of transplantation of regenerated tissue or regenerated cells derived from the pluripotent stem cells, (1) specifically binding to CD80 and an antibody or antigen-binding fragment thereof that specifically binds to CD86, (2) an antibody or antigen-binding fragment thereof that specifically binds to CD80 and CD86, or (3) CD80 and/or or a method of allotransplantation, which comprises administering to the recipient an inhibitor capable of inhibiting the interaction between CD86 and CD28.
  • an antibody that specifically binds to CD80 or an antigen-binding fragment thereof and an antibody that specifically binds to CD86 or an antigen-binding fragment thereof (2) an antibody that specifically binds to CD80 and CD86 or Administration of an antigen-binding fragment thereof, or (3) an inhibitor capable of inhibiting the interaction of CD80 and/or CD86 with CD28 to the recipient is associated with transplantation of regenerative tissue or regenerative cells derived from human pluripotent stem cells. and 1 to 5 times after transplantation.
  • a method for suppressing rejection by allotransplantation of regenerated tissue or regenerative cells derived from human pluripotent stem cells comprising: (1) CD80 an antibody or antigen-binding fragment thereof that specifically binds to and an antibody or antigen-binding fragment thereof that specifically binds to CD86, (2) an antibody or antigen-binding fragment thereof that specifically binds to CD80 and CD86, or ( 3) A method of suppressing rejection, which comprises administering to a recipient an inhibitor capable of inhibiting the interaction between CD80 and/or CD86 and CD28.
  • human pluripotent stem cell-derived regenerative tissue or regenerative cells (1) an antibody or antigen-binding fragment thereof that specifically binds to CD80 and an antibody or antigen-binding fragment thereof that specifically binds to CD86; (2) an antibody or antigen-binding fragment thereof that specifically binds to CD80 and CD86; or (3) an inhibitory agent capable of inhibiting the interaction of CD80 and/or CD86 with CD28.
  • human pluripotent stem cell-derived regenerative tissue or regenerative cells (1) an antibody or antigen-binding fragment thereof that specifically binds to CD80 and an antibody or antigen-binding fragment thereof that specifically binds to CD86; (2) an antibody or antigen-binding fragment thereof that specifically binds to CD80 and CD86; or (3) an inhibitory agent capable of inhibiting the interaction of CD80 and/or CD86 with CD28.
  • the composition of [10] or [11] which does not reduce the secretion of angiogenic factors.
  • Fig. 3 shows the engraftment status of the transplanted sheets of the control group (Sham).
  • Fig. 2 shows the engraftment status of the transplanted sheets in the anti-CD80/CD86 antibody administration group (Treatment). The engraftment rate of a control group (Sham) and an anti-CD80/CD86 antibody-administered group (Treatment) is shown.
  • Fig. 2 shows the state of lymphocyte infiltration of transplanted sites in a control group (Sham) and an anti-CD80/CD86 antibody-administered group (Treatment).
  • the lymphocyte infiltration rate of transplanted sites in a control group (Sham) and an anti-CD80/CD86 antibody-administered group (Treatment) is shown.
  • CFSE-MLR Shows the FACS analysis results.
  • CFSE-MLR sup IFN ⁇ measurement results are shown.
  • the results of stimulation of cynomolgus monkey spleen cells with LPS under the administration of human anti-CD80 antibody and anti-CD86 antibody are shown. It shows the engraftment state of the physiological saline-administered group at the transplant site.
  • the engraftment state of anti-CD80 antibody- and anti-CD86 antibody-administered groups is shown.
  • Fig. 3 shows the engraftment rate of iPS cell myocardial sheet transplantation sites.
  • 1 shows the effect of anti-CD80/CD86 antibody administration on decreased secretion of angiogenic factors such as VEGF by cyclosporine A administration.
  • One aspect of the present invention is a method for allotransplantation of human pluripotent stem cell-derived regenerated tissue or regenerative cells, wherein at least the human pluripotent stem cell-derived regenerated tissue or regenerative cells are transplanted with (1) CD80 an antibody or antigen-binding fragment thereof that specifically binds to and an antibody or antigen-binding fragment thereof that specifically binds to CD86, (2) an antibody or antigen-binding fragment thereof that specifically binds to CD80 and CD86, or ( 3) A method of allotransplantation, characterized in that an inhibitor capable of inhibiting the interaction of CD80 and/or CD86 with CD28 is administered to the recipient.
  • Another aspect of the present invention is a method for suppressing rejection by allotransplantation of human pluripotent stem cell-derived regenerated tissue or regenerated cells, wherein at least the human iPS cell-derived regenerated tissue or regenerated cells are transplanted.
  • an antibody that specifically binds to CD80 or an antigen-binding fragment thereof and an antibody that specifically binds to CD86 or an antigen-binding fragment thereof (2) an antibody that specifically binds to CD80 and CD86 or an antigen thereof
  • a method for suppressing rejection which comprises administering to a recipient a binding fragment or (3) an inhibitor capable of inhibiting the interaction between CD80 and/or CD86 and CD28.
  • one aspect of the present invention provides regenerative tissue or regenerative cells derived from human pluripotent stem cells, an antibody that specifically binds to CD80 or an antigen-binding fragment thereof and an antibody that specifically binds to CD86 or an antigen-binding ability thereof
  • one aspect of the present invention provides regenerative tissue or regenerative cells derived from human pluripotent stem cells, and (1) an antibody that specifically binds to CD80 or an antigen-binding fragment thereof and an antibody that specifically binds to CD86 or an antibody thereof. (2) an antibody or antigen-binding fragment thereof that specifically binds to CD80 and CD86; or (3) an inhibitor capable of inhibiting the interaction of CD80 and/or CD86 with CD28.
  • the present invention provides a method for allotransplantation of regenerated tissue or regenerated cells derived from human pluripotent stem cells into a recipient, and a method for suppressing rejection in that case.
  • Allotransplantation is the transplantation of cells, tissues, organs, etc., from one individual into another individual other than the self, resulting in a rejection reaction.
  • rejection is an HVG reaction (host versus graft reaction) in which the patient's (host's) immune cells react to the transplanted cells. It is divided into “acute” and "chronic". Hyperacute rejection develops within 24 hours after transplantation.
  • the treatment method of promptly removing the transplanted organ is selected when the disease develops.
  • Specific symptoms are thrombus formation and organ ischemia.
  • Acute rejection develops between one week and three months after transplantation.
  • Chronic rejection develops after 3 months after transplantation.
  • HVG reactions in these hyperacute, acute and chronic rejections can be suppressed, and immune unresponsiveness and immune tolerance can be induced.
  • tissues or cells used for allotransplantation are regenerated tissues or cells derived from human pluripotent stem cells.
  • Pluripotent stem cells include embryonic stem cells, iPS cells, ntES cells and the like, but iPS cells or embryonic stem cells are preferably used, and iPS cells are more preferably used.
  • Human iPS cells can be prepared, for example, from human somatic cells other than the recipient according to the method described in Japanese Patent No. 5098026 and its divisional application. Differentiation of the obtained human iPS cells into various target cells can be achieved by culturing the human iPS cells in the presence of a differentiation-inducing factor.
  • human iPS cell-derived regenerated tissues or cells include nerve cells (including Purkinje cells and retinal ganglion cells), cardiomyocytes, and platelets.
  • Pluripotent stem cell-derived regenerative tissues or regenerative cells are considered not to express HLA Class 2, CD80, and CD86 unless they are antigen-presenting cells.
  • regenerative tissues or regenerative cells derived from these human pluripotent stem cells include regenerative cell suspensions, clumps such as regenerated nerve cell clusters, sheet bodies such as myocardial sheets, and three-dimensional structures of regenerative cells. be done.
  • cardiomyocytes can be produced by sequentially adding Activin, BMP4, and Wnt signal inhibitors.
  • induction to the target tissue includes sheet formation by tissue engineering using a temperature-responsive culture dish.
  • the method of transplanting the regenerated tissue or regenerated cells derived from human pluripotent stem cells into the recipient varies depending on the form of the regenerated tissue or regenerated cells, the site of transplantation, and the like. Intra-tissue injection and the like.
  • an antibody that specifically binds to CD80 or an antigen-binding fragment thereof and an antibody that specifically binds to CD86 or an antigen-binding fragment thereof (2) antibodies or antigen-binding fragments thereof that specifically bind to CD80 and CD86, or (3) inhibitors capable of inhibiting the interaction of CD80 and/or CD86 with CD28 are used.
  • CD80 and CD86 are immune checkpoint molecules expressed on antigen-presenting cells, and are also called B7 family molecules (B7-1, B7-2). In the present invention, it is necessary to inhibit both CD80 and CD86.
  • an antibody that specifically binds to CD80 or an antigen-binding fragment thereof and an antibody that specifically binds to CD86 or an antigen-binding fragment thereof (2) an antibody that specifically binds to CD80 and CD86 or an antibody thereof Administration of an antigen-binding fragment or (3) an inhibitor capable of inhibiting the interaction of CD80 and/or CD86 with CD28 is required.
  • antibodies that specifically bind to CD80, antibodies that specifically bind to CD86, and antibodies that specifically bind to CD80 and CD86 can be used.
  • Hybridomas producing these antibodies are also available from, for example, ATCC.
  • the variable heavy and light chain sequences of these antibodies can also be searched in public databases such as NCBI PubMed.
  • NCBI PubMed These antibodies are available from, for example, Bay Bioscience Co. , Ltd. , Thermo Scientific Pierce Antibodies, Lifespan Biosciences, Inc.; , and BD Biosciences, among others. Although these antibodies may be animal-derived antibodies, it is preferable to use humanized antibodies.
  • Antigen-binding fragments of these antibodies include, for example, Fab fragments, Fab′ fragments, F(ab′)2 fragments, Fv fragments, scFv fragments, single chain binding polypeptides, Fd fragments, variable heavy chains, variable light chains, dAb fragments, AVIMERs, bispecific antibodies, or heavy chain dimers.
  • the heavy chain dimer may be, for example, camel or shark heavy chain constructs.
  • Inhibitory factors capable of inhibiting the interaction between CD80 and/or CD86 and CD28 include, for example, belatacept.
  • an antibody that specifically binds to CD80 or an antigen-binding fragment thereof and an antibody that specifically binds to CD86 or an antigen-binding fragment thereof (2) an antibody that specifically binds to CD80 and CD86 or an antigen-binding fragment thereof, or (3) an inhibitor capable of inhibiting the interaction between CD80 and/or CD86 and CD28 (hereinafter sometimes referred to as an anti-CD80/CD86 antibody, etc.) is at least human pluripotent It is administered to the recipient at the time of transplantation of stem cell-derived regenerative tissue or regenerative cells.
  • the means of administering the anti-CD80/CD86 antibody or the like may be injection into the transplantation site, subcutaneous injection, intramuscular injection, intravenous injection, or the like.
  • the dosage can be appropriately determined depending on the regenerative cells to be transplanted, the regenerative tissue, the weight and age of the recipient, and the like.
  • Administration at the time of transplantation is preferably from 2 hours before the transplantation operation to 2 hours after the transplantation operation, and preferably from 1 hour before the transplantation operation to 1 hour after the transplantation operation.
  • anti-CD80/CD86 antibody or the like may be administered 1 to 5 times after transplantation.
  • the additional administration after transplantation is preferably performed once a day from 1 day after transplantation.
  • 1 day after transplantation is preferably administered once a day from 1 day after transplantation, from 1 day to 2 days after transplantation, from 1 day to 3 days after transplantation, from 1 day to 4 days after transplantation, or from 1 day to 5 days after transplantation.
  • 1 to 5 doses may be administered at intervals of several days such as 4 days after transplantation, 7 days after transplantation, 10 days after transplantation, and the like.
  • the present invention can induce immune unresponsiveness and immune tolerance. It is known that the administration of immunosuppressants such as cyclosporine A as a means of suppressing rejection causes side effects such as suppression of the secretion of angiogenic factors such as VEGF and bFGF. However, the method of the present invention does not reduce the secretion of these angiogenic factors. Therefore, the method of the present invention is a safe allograft procedure that does not cause side effects.
  • immunosuppressants include calcineurin inhibitors (eg, tacrolimus (FK-506), cyclosporin A (CsA), etc.), adriamycin, azathioprine (AZ), busulfan, cyclophosphamide, deoxyspergualin (DSG).
  • calcineurin inhibitors eg, tacrolimus (FK-506), cyclosporin A (CsA), etc.
  • AZ azathioprine
  • DSG deoxyspergualin
  • FTY720 Fingolimod, also known as 2-amino-2-[2-(4-octylphenyl)ethyl]-1,3-propanediol hydrochloride), fludarabine, 5-fluorouracil, leflunomide (LEF); methotrexate, mizoribine (MZ); mycophenolate mofetil (MMF), non-steroidal anti-inflammatory agents, sirolimus (rapamycin), corticosteroids (eg prednisolone and methylprednisolone), agents that block CTLA-4 and/or CD28. , antibodies (eg, muromonab-CD3, alemtuzumab, basiliximab, daclizumab, rituximab, anti-thymocyte globulin, etc.), or combinations thereof.
  • antibodies eg, muromonab-CD3, alemtuzumab, basiliximab, daclizumab, rituximab
  • the tissue or cells used for allotransplantation are regenerated tissue or regenerated cells of mouse iPS cell-derived cardiomyocytes.
  • Mouse iPS cells can be prepared, for example, from somatic cells of mice other than the recipient according to the method described in Japanese Patent No. 5098026 and its divisional application.
  • the mouse iPS cells obtained can be induced to differentiate into cardiomyocytes by sequentially adding Activin, BMP4, and a Wnt signal inhibitor.
  • Cardiomyocyte sheets can be induced by tissue engineering using a temperature-responsive culture dish according to the description of Circulation September 11, 2012.
  • the chimeric antibody anti-CD80 antibody and chimeric antibody anti-CD86 antibody (subclass IgG1) described in paragraph (0122) (Example 6) of Japanese Patent No. 6999809 were used.
  • Example 1 (Study of Allotransplantation to Mouse Model) A C57BL/6-derived miPS-CM sheet (9-10 cm2) was subcutaneously implanted in the back of BALB/c mice (Day 0). Anti-CD80 antibody and anti-CD86 antibody were subcutaneously administered on Day 0, Day 1 and Day 2, respectively, at 250 ⁇ g/day. Physiological saline was administered to controls. The engraftment of the sheets transplanted on Day 1, Day 4, Day 7, Day 10 and Day 14 was evaluated. In addition, on Day 14, the infiltration of lymphocytes in the mouse transplant site was measured. Engraftment evaluation of the transplanted sheet was performed by measuring luciferin luminescence using an In Vivo Imaging System. In addition, lymphocyte infiltration in the graft site was examined by immunostaining for CD3, CD4, CD8, CD25 and Foxp3.
  • FIG. 1 shows the engraftment status of the transplanted sheets in the control group (Sham), and FIG. 2 shows the engraftment status of the anti-CD80/CD86 antibody-administered group (Treatment).
  • Fig. 3 shows the engraftment rate. 1 to 3, long-term engraftment of the transplanted sheets was observed in the anti-CD80/CD86 antibody-administered group.
  • Figures 4 and 5 show the state of lymphocyte infiltration in the graft site. The number of infiltrating CD3-positive lymphocytes was significantly lower in the anti-CD80/CD86 antibody-administered group.
  • Example 2 (Study of allotransplantation to cynomolgus monkeys) C57BL/6-derived miPS-CM sheets (9-10 cm 2 ) were implanted subcutaneously on the back of cynomolgus monkeys (Day 0). Anti-CD80 antibody and anti-CD86 antibody were intravenously administered at 10 mg/kg/day on Day 0, Day 4 and Day 7, respectively. Physiological saline was administered to controls. GFP fluorescence evaluation was performed 2 weeks, 4 weeks, 6 weeks, 8 weeks and 10 weeks after sheet transplantation. Fluorescence evaluation was performed by measuring GFP fluorescence with a fluorescence microscope.
  • FIG. 7 shows the CFSE-MLR sup IFN ⁇ measurement results.
  • FIG. 8 shows the results of stimulation of cynomolgus monkey spleen cells with LPS under the administration of human anti-CD80 antibody and anti-CD86 antibody.
  • the state of engraftment in the transplanted site in the physiological saline-administered group is shown in FIG. 9, and the state of engraftment in the anti-CD80 antibody and anti-CD86 antibody-administered groups is shown in FIG. From these results, long-term engraftment of the transplanted sheet was observed in the anti-CD80/CD86 antibody-administered group also in the cynomolgus monkey allograft model.
  • Example 3 (Effect on human iPS cell myocardial sheet allotransplantation) NOG-dKO (NOG-b2m, IAb double KO mouse) mice were whole body irradiated with 2 Gy radiation, and 1 ⁇ 10 7 cells of human peripheral blood mononuclear cells were intravenously administered. Thereafter, two human iPS cell cardiomyocyte sheets (10 ⁇ 10 6 cells/sheet, 10 mm ⁇ 10 mm) were superimposed and transplanted under the skin of the back (Day 0). As a control, a model in which an iPS cell cardiomyocyte sheet was transplanted to NOG-dKO to which human peripheral blood mononuclear cells were not administered was used.
  • Figures 11 and 12 show that anti-CD80/CD86 antibody administration suppresses rejection in human iPS cell myocardial sheet allotransplantation.
  • Example 4 NOG-dKO (NOG-b2m, IAb double KO mouse) mice were whole body irradiated with 2 Gy radiation, and 1 ⁇ 10 7 cells of human peripheral blood mononuclear cells were intravenously administered. Thereafter, two human iPS cell cardiomyocyte sheets (10 ⁇ 10 6 cells/sheet, 10 mm ⁇ 10 mm) were superimposed and transplanted under the skin of the back (Day 0). On Day0, Day1, Day2 and Day3, human anti-CD80/CD86 antibody was intraperitoneally administered at 100 ⁇ g/day. The engraftment of the sheets transplanted on Day 3, Day 7, Day 10, Day 14, Day 17, Day 21 and Day 24 was evaluated.
  • the engraftment of the transplanted sheet was evaluated by intraperitoneally administering D-Luciferin (375 mg/kg) to the mouse, and 10 minutes after administration, fluorescence intensity (Average) by BLI was measured using IVISR Lumina III In Vivo Imaging System (Caliper Life Sciences). Radiance (photons/sec/cm 2 /sr)) was measured. The results are shown in FIG. FIG. 13 shows that anti-CD80/CD86 antibody administration suppresses the decrease in the secretion of angiogenic factors such as VEGF due to cyclosporin A administration.

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Abstract

本発明の課題は、ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の他家移植において拒絶反応を明確に抑制する他家移植方法を提供することである。　本発明は、ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の他家移植方法であって、少なくとも当該ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の移植時に、（１）ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、（２）ＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は（３）ＣＤ８０及び／又はＣＤ８６とＣＤ２８との相互作用を阻害することができる阻害因子をレシピエントに投与することを特徴とする、他家移植方法に関する。

Description

他家移植方法及び拒絶反応抑制方法
　本発明は、ヒト多能性幹細胞由来（ｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔ　ｓｔｅｍ　ｃｅｌｌ）の再生組織又は再生細胞の他家移植方法及び他家移植による拒絶反応抑制方法に関する。
　再生医療は、主に病気、けが、障害などで失われた人体組織とその機能を組織再建や細胞治療により回復させる治療法である。この再生医療については、山中慎弥氏がｉＰＳ細胞の樹立に成功し、ノーベル賞を受賞したことで注目が集まった。ｉＰＳ細胞を使用した再生医療は、血小板、心筋細胞、神経細胞、網膜細胞などへの応用が進行しているが、いまだ製造承認には至っていない。
　再生医療にあたっては、ｉＰＳ細胞などのヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞を自家又は他家移植されるが、他家移植の場合には拒絶反応が生じる。この拒絶反応抑制には、従来より、アザチオプリン、シクロスポリン、タクロリムス、ラパマイシン（シロリムス）などの免疫抑制剤が使用されてきた。しかし、他家移植を受けたレシピエントは、生涯、免疫抑制剤を投与されなければならず、常に感染症及び発がん性などの薬物により誘発される副作用の危険に晒されることになる。
　また、サプレッサーＴ細胞が免疫寛容を示すことが報告され、ＣＤ４＋ＣＤ２５＋及びＦｏｘＰ３＋などの表現型／マーカーが発見され、調節性Ｔ細胞（Ｔｒｅｇ）とも呼ばれて臓器移植時の拒絶反応抑制剤として注目されている（非特許文献１）。また、ドナー由来の末梢血単核細胞を、レシピエント由来の血漿と、ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、又はＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメントとを含む組成物の存在下で１週間培養することにより、Ｔｒｅｇを誘導できることを報告した（特許文献１）。
特許第６５８４３８７号公報
Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１９９５；１５５（３）：１１５１－１１６４
　本発明の課題は、ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の他家移植において拒絶反応を明確に抑制する他家移植方法を提供することにある。
　そこで本発明者は、ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞を他家移植する際に拒絶反応を抑制する手段、さらに免疫抑制剤で生じる血管新生因子の分泌抑制などの副作用を生じない他家移植手段を開発すべく検討したところ、少なくとも当該多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の移植時に、（１）ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、（２）ＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は（３）ＣＤ８０及び／又はＣＤ８６とＣＤ２８との相互作用を阻害することができる阻害因子をレシピエントに投与すれば、他家移植による拒絶反応が顕著に抑制され、さらに血管新生因子の分泌を抑制しないことを見出し、本発明を完成した。
　すなわち、本発明は、次の発明［１］～［１２］を提供するものである。
［１］ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の他家移植方法であって、少なくとも当該多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の移植時に、（１）ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、（２）ＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は（３）ＣＤ８０及び／又はＣＤ８６とＣＤ２８との相互作用を阻害することができる阻害因子をレシピエントに投与することを特徴とする、他家移植方法。
［２］（１）ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、（２）ＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は（３）ＣＤ８０及び／又はＣＤ８６とＣＤ２８との相互作用を阻害することができる阻害因子のレシピエントへの投与が、ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の移植時、及び移植後１～５回である［１］記載の他家移植方法。
［３］血管新生因子の分泌を低下させない［１］又は［２］記載の他家移植方法。
［４］ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の他家移植による拒絶反応抑制方法であって、少なくとも当該ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の移植時に、（１）ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、（２）ＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は（３）ＣＤ８０及び／又はＣＤ８６とＣＤ２８との相互作用を阻害することができる阻害因子をレシピエントに投与することを特徴とする、拒絶反応抑制方法。
［５］（１）ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、（２）ＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は（３）ＣＤ８０及び／又はＣＤ８６とＣＤ２８との相互作用を阻害することができる阻害因子のレシピエントへの投与が、ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の移植時、及び移植後１～５回である［４］記載の拒絶反応抑制方法。
［６］血管新生因子の分泌を低下させない［４］又は［５］記載の拒絶反応抑制方法。
［７］ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞と、（１）ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、（２）ＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は（３）ＣＤ８０及び／又はＣＤ８６とＣＤ２８との相互作用を阻害することができる阻害因子とを組み合わせてなる、レシピエントへのヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞他家移植用組成物。
［８］少なくとも当該ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の移植時に、前記組み合わせてなる組成物を投与し、必要により、移植後１～５回、前記（１）ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、（２）ＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は（３）ＣＤ８０及び／又はＣＤ８６とＣＤ２８との相互作用を阻害することができる阻害因子を投与するものである［７］記載の組成物。
［９］血管新生因子の分泌を低下させないものである［７］又は［８］記載の組成物。
［１０］ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞と、（１）ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、（２）ＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は（３）ＣＤ８０及び／又はＣＤ８６とＣＤ２８との相互作用を阻害することができる阻害因子とを組み合わせてなる、レシピエントへのヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞他家移植による拒絶反応抑制用組成物。
［１１］少なくとも当該ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の移植時に、前記組み合わせてなる組成物を投与し、必要により、移植後１～５回、前記（１）ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、（２）ＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は（３）ＣＤ８０及び／又はＣＤ８６とＣＤ２８との相互作用を阻害することができる阻害因子を投与するものである［１０］記載の組成物。
［１２］血管新生因子の分泌を低下させないものである［１０］又は［１１］記載の組成物。
　本発明によれば、ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞を他家移植する際に拒絶反応を抑制する手段、さらに免疫抑制剤で生じる血管新生因子の分泌抑制などの副作用を生じない他家移植手段を提供できる。
コントロール群（Ｓｈａｍ）の移植シートの生着状況を示す。 抗ＣＤ８０／ＣＤ８６抗体投与群（Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ）の移植シートの生着状況を示す。 コントロール群（Ｓｈａｍ）及び抗ＣＤ８０／ＣＤ８６抗体投与群（Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ）移植シートの生着率を示す。 コントロール群（Ｓｈａｍ）及び抗ＣＤ８０／ＣＤ８６抗体投与群（Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ）の移植部のリンパ球湿潤状態を示す。 コントロール群（Ｓｈａｍ）及び抗ＣＤ８０／ＣＤ８６抗体投与群（Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ）の移植部のリンパ球湿潤率を示す。 ＣＦＳＥ－ＭＬＲ　ＦＡＣＳ解析結果を示す。 ＣＦＳＥ－ＭＬＲ　ｓｕｐ　ＩＦＮγ測定結果を示す。 ヒト抗ＣＤ８０抗体及び抗ＣＤ８６抗体の投与下において、カニクイザルの脾臓細胞をＬＰＳで刺激した結果を示す。 移植部における生理食塩水投与群の生着状態を示す。 抗ＣＤ８０抗体及び抗ＣＤ８６抗体投与群の生着状態を示す。 ｉＰＳ細胞心筋シート移植部位の生着状況を示す。 ｉＰＳ細胞心筋シート移植部位の生着率を示す。 シクロスポリンＡ投与によるＶＥＧＦなどの血管新生因子の分泌低下に対する、抗ＣＤ８０／ＣＤ８６抗体投与の影響を示す。
　本発明の一態様は、ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の他家移植方法であって、少なくとも当該ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の移植時に、（１）ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、（２）ＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は（３）ＣＤ８０及び／又はＣＤ８６とＣＤ２８との相互作用を阻害することができる阻害因子をレシピエントに投与することを特徴とする、他家移植方法である。
　また本発明の別の一態様は、ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の他家移植による拒絶反応抑制方法であって、少なくとも当該ヒトｉＰＳ細胞由来の再生組織又は再生細胞の移植時に、（１）ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、（２）ＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は（３）ＣＤ８０及び／又はＣＤ８６とＣＤ２８との相互作用を阻害することができる阻害因子をレシピエントに投与することを特徴とする、拒絶反応抑制方法である。
　また本発明の一態様は、ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞と、ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、又はＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメントとを組み合わせてなる、レシピエントへのヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞他家移植用組成物である。
　さらに本発明の一態様は、ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞と、（１）ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、（２）ＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は（３）ＣＤ８０及び／又はＣＤ８６とＣＤ２８との相互作用を阻害することができる阻害因子とを組み合わせてなる、レシピエントへのヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞他家移植による拒絶反応抑制用組成物である。
　本発明は、ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞をレシピエントに他家移植する方法及びその際の拒絶反応抑制方法である。
　他家移植は、ある個体の細胞、組織、器官などを自己以外の別の個体に移植することであり、拒絶反応が生じる。
　拒絶反応とは、骨髄移植以外の場合は、移植した細胞に対し、患者（宿主）の免疫細胞が反応するＨＶＧ反応（宿主対移植片反応）であり、拒絶反応が起こる時期により「超急性」「急性」「慢性」に分けられる。
　超急性拒絶は、移植後２４時間以内に発症する。免疫抑制剤の投与が効かないため、発症した場合は移植した臓器を迅速に摘出する治療法が選択される。具体的な症状は血栓形成、臓器虚血である。急性拒絶は、移植後１週間～３ヶ月の間に発症する。慢性拒絶は、移植後３ヶ月以降に発症する。
　本発明によれば、これらの超急性、急性及び慢性拒絶におけるＨＶＧ反応を抑制することができ、さらに、免疫不応答や免疫寛容を誘導することが出来る。
　本発明において、他家移植に用いられる組織又は細胞は、ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞である。
　多能性幹細胞には、胚性幹細胞、ｉＰＳ細胞、ｎｔＥＳ細胞等が挙げられるが、ｉＰＳ細胞又は胚性幹細胞を用いるのが好ましく、ｉＰＳ細胞を用いるのがより好ましい。
　ヒトｉＰＳ細胞は、例えば、レシピエント以外のヒトの体細胞から特許第５０９８０２６号公報及びその分割出願記載の方法に従って作成することができる。得られたヒトｉＰＳ細胞から種々の目的細胞への分化誘導は、分化誘導因子の存在下にヒトｉＰＳ細胞を培養すればよい。
　ヒトｉＰＳ細胞由来の再生組織又は再生細胞の例としては、神経細胞（プルキンエ細胞、網膜神経節細胞を含む）、心筋細胞、及び血小板などが挙げられる。
　多能性幹細胞由来再生組織又は再生細胞は、抗原提示細胞等でない限り、ＨＬＡのＣｌａｓｓ２やＣＤ８０、ＣＤ８６は発現していないと考えられる。
　これらのヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の形態としては、再生細胞浮遊液、再生神経細胞塊などの塊状体、心筋シートなどのシート体、再生細胞の３次元構造体などが挙げられる。
　例えば、心筋細胞は、Ａｃｔｉｖｉｎ、ＢＭＰ４、Ｗｎｔシグナル阻害剤を順次添加することにより作製することができる。また、目的組織への誘導は、温度応答性培養皿を用いたティッシュエンジニアリングによるシート化などが挙げられる。
　前記ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞のレシピエントへの移植方法は、再生組織又は再生細胞の形態、移植部位などによって異なるが、直視下組織内注入、直視下シート貼付、経カテーテル的組織内注入などが挙げられる。
　本発明においては、他家移植による拒絶反応を抑制するために、（１）ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、（２）ＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は（３）ＣＤ８０及び／又はＣＤ８６とＣＤ２８との相互作用を阻害することができる阻害因子が用いられる。
　ＣＤ８０とＣＤ８６は、抗原提示細胞に発現する免疫チェックポイント分子であり、Ｂ７ファミリー分子（Ｂ７－１、Ｂ７－２）とも呼ばれる。本発明においては、ＣＤ８０とＣＤ８６の両者を阻害することが必要である。そのため、（１）ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、（２）ＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は（３）ＣＤ８０及び／又はＣＤ８６とＣＤ２８との相互作用を阻害することができる阻害因子の投与が必要である。
　これらの成分のうち、（１）ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、又は（２）ＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメントがより好ましい。
　ＣＤ８０に特異的に結合する抗体、ＣＤ８６に特異的に結合する抗体、並びにＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体は、それぞれ市販されているものを使用することができる。また、これらの抗体を産生するハイブリドーマは、例えばＡＴＣＣから入手することもできる。これらの抗体の可変性の重鎖及び軽鎖の配列は、例えばＮＣＢＩ ＰｕｂＭｅｄなどの公開データベースで検索することもできる。これらの抗体は、例えば、Ｂａｙ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ Ｃｏ．，Ｌｔｄ．、Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｐｉｅｒｃｅ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ、Ｌｉｆｅｓｐａｎ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｉｎｃ．、及びＢＤ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓなどから入手することができる。
　また、これらの抗体は、動物由来の抗体でもよいが、ヒト化された抗体を用いるのが好ましい。
　これらの抗体の抗原結合性フラグメントとしては、例えば、Ｆａｂフラグメント、Ｆａｂ'フラグメント、Ｆ（ａｂ'）２フラグメント、Ｆｖフラグメント、ｓｃＦｖフラグメント、単鎖結合ポリペプチド、Ｆｄフラグメント、可変性の重鎖、可変性の軽鎖、ｄＡｂフラグメント、ＡＶＩＭＥＲ、二重特異性抗体、又は重鎖二量体でもよい。重鎖二量体は例えば、ラクダ又はサメの重鎖構成物でもよい。
　ＣＤ８０及び／又はＣＤ８６とＣＤ２８との相互作用を阻害することができる阻害因子としては、例えばベラタセプトなどが挙げられる。
　本発明において、（１）ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、（２）ＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は（３）ＣＤ８０及び／又はＣＤ８６とＣＤ２８との相互作用を阻害することができる阻害因子（以下、抗ＣＤ８０／ＣＤ８６抗体等ということもある）は、少なくともヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の移植時に、レシピエントに投与される。
　ここで、抗ＣＤ８０／ＣＤ８６抗体等の投与手段は、移植部位への注射でもよいし、皮下注射、筋肉注射、静脈内注射などでもよい。投与量は、移植される再生細胞、再生組織、レシピエントの体重、年齢などにより適宜決定することができる。
　また、移植時の投与は、移植操作の２時間前～移植操作の２時間後までの期間の投与が好ましく、移植操作の１時間前～移植操作の１時間後までの期間の投与が好ましい。
　さらに、必要により、移植後１～５回抗ＣＤ８０／ＣＤ８６抗体等を投与してもよい。
　ここで、移植後の追加投与は、移植１日後から１日１回ずつ投与するのが好ましい。例えば移植１日後、移植１日後から２日後まで、移植１日後から３日後まで、移植１日後から４日後まで、又は移植１日後から５日後まで１日１回投与するのが好ましい。また、移植４日後、移植７日後、移植１０日後などのように数日間隔をあけて、１～５回投与してもよい。
　本発明の前記操作により、ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の他家移植による拒絶反応が抑制できる。すなわち、レシピエントの免疫細胞が反応するＨＶＧ反応が抑制できる。さらに、本発明により免疫不応答や免疫寛容を誘導できる。
　シクロスポリンＡなどの免疫抑制剤の投与による拒絶反応抑制手段によれば、ＶＥＧＦ、ｂＦＧＦなどの血管新生因子の分泌が抑制されるという副作用が生じることが知られている。しかし、本発明方法によれば、これらの血管新生因子の分泌を低下させない。従って、本発明方法は、副作用を生じさせない安全な他家移植手段である。
　本発明方法によれば、ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の他家移植による拒絶反応が抑制できるので、免疫抑制剤の投与は必要ないが、通常の免疫抑制剤の投与量より少ない量の免疫抑制剤を投与することもできる。そのような免疫抑制剤としては、カルシニューリン阻害剤（例えば、タクロリムス（ＦＫ－５０６）、シクロスポリンＡ（ＣｓＡ）等）、アドリアマイシン、アザチオプリン（ＡＺ）、ブスルファン、シクロホスファミド、デオキシスパガリン（ＤＳＧ）；ＦＴＹ７２０（フィンゴリモド、化学名：２－アミノ－２－［２－（４－オクチルフェニル）エチル］－１，３－プロパンジオール塩酸塩とも称される）、フルダラビン、５－フルオロウラシル、レフルノミド（ＬＥＦ）；メトトレキサート、ミゾリビン（ＭＺ）；ミコフェノール酸モフェチル（ＭＭＦ）、非ステロイド性抗炎症剤、シロリムス（ラパマイシン）、副腎皮質ステロイド（例えばプレドニゾロンとメチルプレドニゾロン）、ＣＴＬＡ－４及び／又はＣＤ２８を遮断する薬剤、抗体（例えばムロモナブ－ＣＤ３、アレムツズマブ、バシリキシマブ、ダクリズマブ、リツキシマブ、抗胸腺細胞グロブリンなど）、又はそれらの組み合わせが挙げられる。
　次に実施例を挙げて本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
　本発明の実施例において、他家移植に用いられた組織又は細胞は、マウスｉＰＳ細胞由来心筋細胞の再生組織又は再生細胞である。
　マウスｉＰＳ細胞は、例えば、レシピエント以外のマウスの体細胞から特許第５０９８０２６号公報及びその分割出願記載の方法に従って作成することができる。得られたマウスｉＰＳ細胞から心筋細胞への分化誘導は、Ａｃｔｉｖｉｎ、ＢＭＰ４、Ｗｎｔシグナル阻害剤を順次添加することにより作製することができる。また、心筋細胞シートへの誘導は、Ｃｉｒｃｕｌａｔｉｏｎ　Ｓｅｐｔｅｍｂｅｒ　１１，２０１２の記載に従い、温度応答性培養皿を用いたティッシュエンジニアリングによるシート化で行うことができる。
　抗ＣＤ８０抗体及び抗ＣＤ８６抗体は、特許第６９９９８０９号公報の段落（０１２２）（実施例６）記載のキメラ抗体抗ＣＤ８０抗体及びキメラ抗体抗ＣＤ８６抗体（サブクラスＩｇＧ１）を用いた。
実施例１（マウスモデルへの他家移植検討）
　ＢＡＬＢ／ｃマウスの背部皮下にＣ５７ＢＬ／６由来ｍｉＰＳ－ＣＭシート（９～１０ｃｍ２）を移植した（Ｄａｙ０）。Ｄａｙ０、Ｄａｙ１及びＤａｙ２に抗ＣＤ８０抗体及び抗ＣＤ８６抗体を各々２５０μｇ／ｄａｙ皮下投与した。なおコントロールには、生理食塩水を投与した。Ｄａｙ１、Ｄａｙ４、Ｄａｙ７、Ｄａｙ１０及びＤａｙ１４に移植したシートの生着を評価した。また、Ｄａｙ１４にマウスの移植部におけるリンパ球の浸潤を測定した。移植シートの生着評価は、Ｉｎ　Ｖｉｖｏ　Ｉｍａｇｉｎｇ　Ｓｙｓｔｅｍを用いてルシフェリン発光度を測定する事により行った。また、移植部におけるリンパ球浸潤は、ＣＤ３、ＣＤ４、ＣＤ８、ＣＤ２５及びＦｏｘｐ３の免疫染色により検討した。
　コントロール群（Ｓｈａｍ）の移植シートの生着状況を図１に、抗ＣＤ８０／ＣＤ８６抗体投与群（Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ）の移植シートの生着状況を図２に示す。図３に生着率を示す。図１～３より、抗ＣＤ８０／ＣＤ８６抗体投与群で移植シートの長期生着が認められた。
　図４及び５に移植部のリンパ球浸潤状態を示す。抗ＣＤ８０／ＣＤ８６抗体投与群で有意にＣＤ３陽性リンパ球浸潤数が少なかった。
実施例２（カニクザルへの他家移植検討）
　カニクイザルの背部皮下にＣ５７ＢＬ／６由来ｍｉＰＳ－ＣＭシート（９～１０ｃｍ2）を移植した（Ｄａｙ０）。Ｄａｙ０、Ｄａｙ４及びＤａｙ７に抗ＣＤ８０抗体及び抗ＣＤ８６抗体を各々１０ｍｇ／ｋｇ／ｄａｙ静脈内投与した。なおコントロールには、生理食塩水を投与した。シート移植２週後、４週後、６週後、８週後及び１０週後に、ＧＦＰ蛍光評価を行った。蛍光評価は、蛍光顕微鏡によりＧＦＰ蛍光度を測定する事により行った。
　ＣＦＳＥ－ＭＬＲ　ＦＡＣＳ解析結果を図６に示す。ＣＦＳＥ－ＭＬＲ　ｓｕｐ　ＩＦＮγ測定結果を図７に示す。ヒト抗ＣＤ８０抗体及び抗ＣＤ８６抗体の投与下において、カニクイザルの脾臓細胞をＬＰＳで刺激した結果を図８に示す。また、移植部における生理食塩水投与群の生着状態を図９に、抗ＣＤ８０抗体及び抗ＣＤ８６抗体投与群の生着状態を図１０に示す。
　これらの結果から、カニクイザルの他家移植モデルにおいても、抗ＣＤ８０／ＣＤ８６抗体投与群で移植シートの長期生着が認められた。
実施例３（ヒトｉＰＳ細胞心筋シート他家移植に対する効果）
　ＮＯＧ－ｄＫＯ（ＮＯＧ－ｂ２ｍ，ＩＡｂ　ｄｏｕｂｌｅ　ＫＯ　ｍｏｕｓｅ）マウスに２Ｇｙの放射線を全身照射し、１ｘ１０7ｃｅｌｌｓのヒト末梢血単核球細胞を静脈内投与した。その後、背部皮下にヒトｉＰＳ細胞心筋シート（１０ｘ１０6ｃｅｌｌｓ／ｓｈｅｅｔ，１０ｍｍ×１０ｍｍ）を２枚重ねて移植した（Ｄａｙ０）。なおコントロールは、ヒト末梢血単核球細胞を投与していないＮＯＧ－ｄＫＯにｉＰＳ細胞心筋シートを移植したモデルとした。Ｄａｙ３、Ｄａｙ７、Ｄａｙ１０、Ｄａｙ１４、Ｄａｙ１７、及びＤａｙ２１に移植したシートの生着を評価した。移植シートの生着評価は、マウスにＤ－Ｌｕｃｉｆｅｒｉｎ（３７５ｍｇ／ｋｇ）を腹腔内投与し、投与後１０分後にＩＶＩＳＲ　Ｌｕｍｉｎａ　ＩＩＩ　Ｉｎ　Ｖｉｖｏ　Ｉｍａｇｉｎｇ　Ｓｙｓｔｅｍ（Ｃａｌｉｐｅｒ　Ｌｉｆｅ　Ｓｕｃｉｅｎｃｅｓ）を用いてｂｉｏｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｔ　ｉｍａｇｅ（ＢＬＩ）による蛍光度（Ａｖｅｒａｇｅ　Ｒａｄｉａｎｃｅ（ｐｈｏｔｏｎｓ／ｓｅｃ／ｃｍ2／ｓｒ））を測定した。また、Ｄａｙ１４にマウスの移植部におけるリンパ球の浸潤を測定した。移植部におけるリンパ球浸潤は、ＣＤ３、ＣＤ４、ＣＤ８、の免疫染色により検討した。
　結果を図１１及び図１２に示す。図１１及び図１２より、ヒトｉＰＳ細胞心筋シート他家移植における拒絶反応を抗ＣＤ８０／ＣＤ８６抗体投与が抑制していることがわかる。
実施例４
　ＮＯＧ－ｄＫＯ（ＮＯＧ－ｂ２ｍ，ＩＡｂ　ｄｏｕｂｌｅ　ＫＯ　ｍｏｕｓｅ）マウスに２Ｇｙの放射線を全身照射し、１ｘ１０7ｃｅｌｌｓのヒト末梢血単核球細胞を静脈内投与した。その後、背部皮下にヒトｉＰＳ細胞心筋シート（１０ｘ１０6ｃｅｌｌｓ／ｓｈｅｅｔ，１０ｍｍ×１０ｍｍ）を２枚重ねて移植した（Ｄａｙ０）。Ｄａｙ０、Ｄａｙ１、Ｄａｙ２及びＤａｙ３にヒト抗ＣＤ８０／ＣＤ８６抗体を１００μｇ／ｄａｙ腹腔内投与した。Ｄａｙ３、Ｄａｙ７、Ｄａｙ１０、Ｄａｙ１４、Ｄａｙ１７、Ｄａｙ２１、及び、Ｄａｙ２４に移植したシートの生着を評価した。移植シートの生着評価は、マウスにＤ－Ｌｕｃｉｆｅｒｉｎ（３７５ｍｇ／ｋｇ）を腹腔内投与し、投与後１０分後にＩＶＩＳＲ　Ｌｕｍｉｎａ　ＩＩＩ　Ｉｎ　Ｖｉｖｏ　Ｉｍａｇｉｎｇ　Ｓｙｓｔｅｍ（Ｃａｌｉｐｅｒ　Ｌｉｆｅ　Ｓｕｃｉｅｎｃｅｓ）を用いてＢＬＩによる蛍光度（Ａｖｅｒａｇｅ　Ｒａｄｉａｎｃｅ（ｐｈｏｔｏｎｓ／ｓｅｃ／ｃｍ2／ｓｒ））を測定した。
　結果を図１３に示す。図１３より、シクロスポリンA投与によるＶＥＧＦなどの血管新生因子の分泌低下が、抗ＣＤ８０／ＣＤ８６抗体投与により抑制されることがわかる。

Claims (12)

  1. 　ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の他家移植方法であって、少なくとも当該ヒトｉＰＳ細胞由来の再生組織又は再生細胞の移植時に、（１）ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、（２）ＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は（３）ＣＤ８０及び／又はＣＤ８６とＣＤ２８との相互作用を阻害することができる阻害因子をレシピエントに投与することを特徴とする、他家移植方法。
  2. 　（１）ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、（２）ＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は（３）ＣＤ８０及び／又はＣＤ８６とＣＤ２８との相互作用を阻害することができる阻害因子のレシピエントへの投与が、ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の移植時、及び移植後１～５回である請求項１記載の他家移植方法。
  3. 　血管新生因子の分泌を低下させない請求項１又は２記載の他家移植方法。
  4. 　ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の他家移植による拒絶反応抑制方法であって、少なくとも当該ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の移植時に、（１）ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、（２）ＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は（３）ＣＤ８０及び／又はＣＤ８６とＣＤ２８との相互作用を阻害することができる阻害因子をレシピエントに投与することを特徴とする、拒絶反応抑制方法。
  5. 　（１）ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、（２）ＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は（３）ＣＤ８０及び／又はＣＤ８６とＣＤ２８との相互作用を阻害することができる阻害因子のレシピエントへの投与が、ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の移植時、及び移植後１～５回である請求項４記載の拒絶反応抑制方法。
  6. 　血管新生因子の分泌を低下させない請求項４又は５記載の拒絶反応抑制方法。
  7. 　ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞と、（１）ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、（２）ＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は（３）ＣＤ８０及び／又はＣＤ８６とＣＤ２８との相互作用を阻害することができる阻害因子とを組み合わせてなる、レシピエントへのヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞他家移植用組成物。
  8. 　少なくとも当該ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の移植時に、前記組み合わせてなる組成物を投与し、必要により、移植後１～５回、前記（１）ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、（２）ＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は（３）ＣＤ８０及び／又はＣＤ８６とＣＤ２８との相互作用を阻害することができる阻害因子を投与するものである請求項７記載の組成物。
  9. 　血管新生因子の分泌を低下させないものである請求項７又は８記載の組成物。
  10. 　ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞と、（１）ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、（２）ＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は（３）ＣＤ８０及び／又はＣＤ８６とＣＤ２８との相互作用を阻害することができる阻害因子とを組み合わせてなる、レシピエントへのヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞他家移植による拒絶反応抑制用組成物。
  11. 　少なくとも当該ヒト多能性幹細胞由来の再生組織又は再生細胞の移植時に、前記組み合わせてなる組成物を投与し、必要により、移植後１～５回、前記（１）ＣＤ８０に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合性フラグメント、（２）ＣＤ８０及びＣＤ８６に特異的に結合する抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は（３）ＣＤ８０及び／又はＣＤ８６とＣＤ２８との相互作用を阻害することができる阻害因子を投与するものである請求項１０記載の組成物。
  12. 　血管新生因子の分泌を低下させないものである請求項１０又は１１記載の組成物。
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