WO2023042714A1 - 子宮内膜症を診断するためにフソバクテリウム属細菌を検出する方法 - Google Patents

子宮内膜症を診断するためにフソバクテリウム属細菌を検出する方法 Download PDF

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彩子 村岡
豊 近藤
俊佑 郭
貴香 松井
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国立大学法人東海国立大学機構
栄研化学株式会社
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    • G01N33/569—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
    • G01N33/56911—Bacteria

Definitions

  • the present invention relates to a method for detecting Fusobacterium for diagnosing endometriosis, a therapeutic drug for endometriosis, and a method for treating endometriosis.
  • Endometriosis is a disease in which endometrial tissue proliferates in parts of the body other than the uterus (ovaries, peritoneum, etc.). Endometriosis is a disease that causes chronic pelvic pain, infertility, canceration, etc., and significantly impairs the quality of life (QOL) of women throughout their lives.
  • QOL quality of life
  • Non-Patent Documents 1 and 2 suggest a relationship between Gram-negative bacteria and endometriosis, no specific causative bacteria have been identified.
  • the purpose of the present invention is to enable diagnosis of endometriosis by detecting causative bacteria of endometriosis.
  • the present invention has the following aspects.
  • a step of detecting Fusobacterium in a sample collected from a subject wherein the detection of the presence of Fusobacterium in the sample indicates that the subject has or is likely to have endometriosis.
  • a method for detecting Fusobacterium spp. for diagnosing endometriosis, which is indicative of high sexuality.
  • the Fusobacterium bacterium may be Fusobacterium nucleatum.
  • the sample may be blood, plasma, serum, urine, endometrial cells, vaginal swab, or menstrual blood.
  • a therapeutic agent for endometriosis containing an antibacterial agent against Fusobacterium as an active ingredient.
  • a method for treating endometriosis which comprises the step of administering an antibacterial agent to a subject whose endometrium is infected with Fusobacterium spp.
  • the step of detecting Fusobacterium in a sample collected from a subject and confirming whether or not the endometrium of the subject is infected with Fusobacterium may be performed before the step of administering the antibacterial agent.
  • Administration of antibiotics may be vaginal.
  • the present invention further has the following aspects.
  • endometriosis it is possible to easily diagnose endometriosis by detecting causative bacteria of endometriosis. Since even minute amounts of bacteria can be detected, it can be expected to detect early stages of endometriosis that cannot be detected by diagnostic imaging. Moreover, according to the present invention, endometriosis can be treated by sterilizing causative bacteria of endometriosis or suppressing their proliferation. Such treatment can be expected to be effective in preventing the recurrence of endometriosis.
  • FIG. 1 shows the proportion of Fusobacterium 16S rRNA in total 16S rRNA in normal human endometrial tissue and endometrial tissue of endometriosis patients.
  • FIG. 2 shows FISH images of normal human endometrial tissue and endometriosis patient endometrial and ovarian tissue using EUB338, FUSO, and FUS664 as probes.
  • FIG. 3A shows endometriotic lesions in mice inoculated intraperitoneally with bacterially infected endometrium.
  • FIG. 3B shows the number of lesions and
  • FIG. 3C shows the total weight of lesions.
  • FIG. 3 shows FISH images of endometriotic lesions in mice inoculated intraperitoneally with bacterially infected endometrium using EUB338 and FUSO as probes.
  • FIG. 5(A) shows endometriotic lesions in mice intraperitoneally inoculated with endometrial tissue from donor mice that received antibiotics.
  • FIG. 5B shows the number of lesions and
  • FIG. 5C shows the total weight of lesions.
  • FIG. 2 shows FISH images of endometriotic lesions in mice intraperitoneally inoculated with endometrial tissue from antibiotic-treated donor mice using EUB338 and FUSO as probes.
  • FIG. 7A shows endometriotic lesions in endometriotic mice treated with antibiotics.
  • FIG. 7B shows the number of lesions and
  • FIG. 7C shows the total weight of lesions.
  • a method for detecting Fusobacterium for diagnosing endometriosis includes the step of detecting Fusobacterium in a sample collected from a subject.
  • a sample collected from a subject When the presence of Fusobacterium is detected in the sample collected from the subject, it is highly probable that the endometrium of the subject is infected with Fusobacterium, so the presence of Fusobacterium is detected in the sample. This indicates that the subject has or is likely to have endometriosis. This result can be used by a physician as an indicator for diagnosing endometriosis.
  • the Fusobacterium bacterium is not particularly limited, and may be, for example, Fusobacterium nucleatum.
  • the subject is not particularly limited as long as it has a uterus.
  • the subject can be, for example, a human subject, and can be a human subject suspected of having or suspected of having endometriosis.
  • the sample is not limited as long as it can detect Fusobacterium bacteria infected with the endometrium, for example, blood, plasma, serum, urine, endometrial cells, vaginal swab, menstrual blood, cervical cells, or ovarian tissue.
  • the sample is preferably blood, plasma, serum, urine, endometrial cells, vaginal swab, or menstrual blood. From the viewpoint of specific detection of endometrial infection, the sample is more preferably endometrial cells, vaginal swab, or menstrual blood.
  • the method for detecting Fusobacterium bacteria in a sample is not particularly limited.
  • nucleic acid amplification such as PCR (polymerase chain reaction) method and LAMP (loop-mediated isothermal amplification) method using primers specific to Fusobacterium bacteria.
  • PCR polymerase chain reaction
  • LAMP loop-mediated isothermal amplification
  • Conventionally known bacteria detection methods such as genetic testing by the method can be used.
  • the step of detecting Fusobacterium in a sample collected from a subject includes a step of performing a nucleic acid amplification reaction on DNA derived from the sample using primers specific to Fusobacterium (nucleic acid amplification step). and may further comprise detecting an amplification product of the nucleic acid amplification reaction. Detection of amplification products may be performed after the nucleic acid amplification step or may be performed in real time during the nucleic acid amplification step. If the presence of an amplification product is detected, it can be said that Fusobacterium is present in the sample.
  • DNA derived from a sample may be DNA extracted and/or isolated from a sample by a known method.
  • a Fusobacterium-specific primer means one or more primers capable of amplifying a Fusobacterium-specific DNA region.
  • the method for detecting amplification products is not particularly limited, and known techniques can be used.
  • Amplification products can be detected, for example, by using a labeled probe such as a fluorescently labeled probe or a fluorescent intercalator, or by subjecting the reaction solution to electrophoresis.
  • a labeled probe such as a fluorescently labeled probe or a fluorescent intercalator
  • the reaction solution can be subjected to electrophoresis.
  • magnesium ions when magnesium ions are contained in the reaction solution for the nucleic acid amplification reaction, the amplification product can also be detected by measuring the turbidity of the reaction solution.
  • one aspect of the present invention can be said to be a method of collecting data for diagnosing endometriosis, which includes the step of detecting Fusobacterium in a sample collected from a subject.
  • the details of the step of detecting Fusobacterium in a sample collected from a subject are as described above.
  • Data on the results of detection of Fusobacterium bacteria in samples can be used by physicians to diagnose endometriosis.
  • a method for collecting data for diagnosing endometriosis is based on the detection result of Fusobacterium bacterium (presence or absence of Fusobacterium bacterium) to determine whether the subject has or is likely to have endometriosis. It may further include the step of determining. In such a step, the subject is determined to have or is likely to have endometriosis if the presence of Fusobacterium is detected in the sample. The determination data thus obtained can be used by doctors to diagnose endometriosis.
  • a therapeutic drug for endometriosis contains an antibacterial drug against Fusobacterium genus bacteria as an active ingredient.
  • the therapeutic agent for endometriosis may specifically be a therapeutic agent for use in the treatment of endometriosis caused by Fusobacterium infection.
  • Yet another aspect of the invention is the use of an antibacterial agent in the manufacture of a medicament for treating endometriosis caused by Fusobacterium infection.
  • the details of Fusobacterium bacteria are as described above.
  • the antibacterial agent is not particularly limited as long as it is an antibacterial agent capable of sterilizing or inhibiting the growth of Fusobacterium bacteria, and examples thereof include metronidazole antibacterial agents and chloramphenicol antibacterial agents. .
  • a method for treating endometriosis includes the step of administering an antibacterial drug to a subject whose endometrium is infected with Fusobacterium spp.
  • a method for treating endometriosis comprises the steps of detecting Fusobacterium in a sample collected from a subject; and administering the drug.
  • the details of the antibacterial drug are as described above.
  • the method of administration of the antimicrobial may be, for example, oral administration or vaginal administration. From the viewpoint of reducing the influence of the antibacterial drug on other parts of the body, the administration method is preferably transvaginal administration.
  • the dosage of the antibacterial agent is not particularly limited as long as it is a therapeutically effective amount, and can be determined according to the type of antibacterial agent.
  • mice used in the following test examples were collected from patients at Nagoya University Hospital and its affiliated hospitals. All mice used in the following test examples are female BALB/c mice (Japan SLC, Inc.). Fusobacterium nucleatum and Lactobacillus iners (indigenous bacteria in the vagina) that infected mice were obtained from the Center for the Conservation of Microbial Genetic Resources, Institute for Research Promotion and Social Collaboration, Gifu University. F. used in Test Example 5 Nucleatum subspecies nucleatum (ATCC25586 strain) was obtained from RIKEN, a national research and development agency. 17 ⁇ -estradiol administered to mice is manufactured by Fuji Pharma. Metronidazole (MZ) administered to mice was manufactured by Fujifilm Wako Pure Chemical Industries, Ltd., and chloramphenicol (CP) was manufactured by Sigma.
  • MZ Metronidazole
  • CP chloramphenicol
  • FISH fluorescence in situ hybridization
  • the nucleatum targeting probe FUS664 was used. Sequences of FISH probes were obtained from probeBase (http://probebase.csb.univie.ac.at/) (accession numbers: pB-159, pB-782, and pB-1346). Slides were washed with wash buffer (0.9 M NaCl, 20 mM Tris-HCl, pH 7.2) for 20 minutes at 58°C. Tissue sections were counterstained with 4',6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) and mounted on glass slides.
  • DAPI 4',6-diamidino-2-phenylindole
  • Co-immunostaining with anti-TAGLN antibody and FISH probe was performed using Opal Multi-plex IHC Detection Kit (manufactured by PerkinElmer) according to the manufacturer's protocol. Fluorescence images were acquired using an inverted microscope Leica DMI6000B (manufactured by Leica Microsystems).
  • EUB338 specific for eubacteria FUSO specific for Fusobacterium spp.
  • F. FISH was performed using FUS664, which is specific to nucleatum, as a probe. Fluorescent images are shown in FIG. 2 (scale bar is 100 ⁇ m). Fluorescence of EUB338, FUSO, and FUS664 was observed in endometrial and ovarian tissues of endometriosis patients, and these tissues were identified by F. It was shown to be infected with Nucleatum.
  • FISH Fluorescence-in-FISH
  • ⁇ Test Example 2 Induction of endometriosis in mice Six-week-old donor mice were ovariectomized and intravaginally injected with 10 7 CFU (colony forming units)/10 ⁇ L PBS/day four times a week. nucleatum or L. Inert was applied to infect donor mice with bacteria. PBS (phosphate buffered saline) was applied to the control group. Two weeks after ovariectomy, endometrial tissue from donor mice was inoculated intraperitoneally into recipient mice to induce endometriosis. Subcutaneous administration of 100 ⁇ g/kg/week of 17 ⁇ -estradiol was initiated in donor mice after ovariectomy and in recipient mice after endometrial tissue inoculation. Four weeks after intraperitoneal inoculation, the peritoneal endometriotic lesions of recipient mice were excised and the number and total weight of lesions were determined.
  • CFU colony forming units
  • FIG. 3 shows the excised lesion.
  • FIG. 3B shows the number of lesions and
  • F Recipient mice inoculated with nucleatum-infected endometrial tissue had significantly higher number and total weight of lesions.
  • FISH was performed on the lesion using EUB338 and FUSO as probes. Fluorescent images are shown in FIG. 4 (scale bar is 100 ⁇ m). F. Fusobacterium was detected in endometriotic lesions of recipient mice inoculated with nucleatum-infected endometrial tissue.
  • ⁇ Test Example 3> Administration of Antibacterial Agent to Donor Mice Six-week-old donor mice were ovariectomized and intravaginally injected with 10 7 CFU/10 ⁇ L PBS/day four times a week. Nucleatum was applied to the donor mice to F. infected with nucleatum. One week after ovariectomy, antibiotics were administered vaginally daily for 5 days, including 17 ⁇ g/day of metronidazole (MZ) or 7 ⁇ g/day of chloramphenicol (CP). PBS was administered to the control group. Three weeks after ovariectomy, endometrial tissue harvested from donor mice was inoculated intraperitoneally into recipient mice to induce endometriosis.
  • MZ metronidazole
  • CP chloramphenicol
  • Subcutaneous administration of 100 ⁇ g/kg/week of 17 ⁇ -estradiol was initiated in donor mice after ovariectomy and in recipient mice after endometrial tissue inoculation. Three weeks after intraperitoneal inoculation, the peritoneal endometriotic lesions of recipient mice were excised and the number and total weight of lesions were determined.
  • FIG. 5 shows the excised lesion.
  • FIG. 5B shows the number of lesions and
  • FISH FISH was performed on the lesion using EUB338 and FUSO as probes. Fluorescent images are shown in FIG. 6 (scale bar is 100 ⁇ m). Fusobacterium spp. was detected in the control group inoculated with endometrial tissue from donor mice not administered antibiotics, whereas in recipient mice inoculated with endometrial tissue from donor mice administered with antibiotics. No Fusobacterium was detected.
  • ⁇ Test Example 4> Administration of Antibacterial Agent to Recipient Mice Six-week-old donor mice were ovariectomized and intravaginally injected with 10 7 CFU/10 ⁇ L PBS/day four times a week. Nucleatum was applied to the donor mice to F. infected with nucleatum. Two weeks after ovariectomy, endometrial tissue from donor mice was inoculated intraperitoneally into recipient mice to induce endometriosis. Subcutaneous administration of 100 ⁇ g/kg/week of 17 ⁇ -estradiol was initiated in donor mice after ovariectomy and in recipient mice after endometrial tissue inoculation.
  • recipient mice were orally administered antibiotics containing 17 ⁇ g/day of metronidazole or 7 ⁇ g/day of chloramphenicol daily for 5 days. Twenty-one days after the end of administration, the peritoneal endometriotic lesions of the recipient mice were excised, and the number and total weight of the lesions were measured.
  • FIG. 7 shows the excised lesion (scale bar is 1 cm).
  • antibiotic-treated endometriotic mice showed no significant change in the number of lesions, but a significant reduction in total lesion weight.
  • F. 10 ⁇ L of bacterial solution of nucleatum subspecies nucleatum ATCC25586 strain
  • DNA was extracted from 500 ⁇ L of the obtained menstrual blood sample using QIAamp DNA Microbiome Kit.
  • the F. LAMP reactions were performed using nucleatum subspecies nucleatum-specific primer sets. The reaction was carried out at 65°C for 120 minutes.
  • Amplification products were detected by monitoring the fluorescence intensity of SYTO (trademark) 63 Red Fluorescent Nucleic Acid Stain (manufactured by Thermo Fisher Scientific). The time until the moving average value of the fluorescence intensity reached the threshold a certain number of times was measured, and the first time when the threshold was exceeded was taken as the Tt value.
  • 10 ⁇ L of physiological saline was added to 490 ⁇ L of Fusobacterium-negative menstrual blood, and using the obtained menstrual blood sample, DNA extraction and LAMP reaction were performed in the same manner as described above. Tt values are shown in Table 2.

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Abstract

本発明の一側面に係る子宮内膜症を診断するためにフソバクテリウム属細菌を検出する方法は、対象から採取した試料中のフソバクテリウム属細菌を検出する工程を含み、試料中にフソバクテリウム属細菌の存在が検出されることは、対象が子宮内膜症に罹患している又は罹患する可能性が高いことを示す。本発明によれば、子宮内膜症の原因菌を検出することにより、子宮内膜症の簡便な診断が可能となる。

Description

子宮内膜症を診断するためにフソバクテリウム属細菌を検出する方法
　本発明は、子宮内膜症を診断するためにフソバクテリウム属細菌を検出する方法、子宮内膜症治療薬、及び子宮内膜症の治療方法に関する。
　子宮内膜症は、子宮内膜組織が体内の子宮以外の部位（卵巣、腹膜など）で増殖する病気である。子宮内膜症は、慢性骨盤とう痛、不妊症、癌化などを引き起こし、生涯にわたり女性のＱＯＬ（クオリティ・オブ・ライフ）を大きく損なう病気であるが、その原因の詳細は不明であり、根本的な治療法もない。対症療法としてホルモン治療による偽閉経療法が用いられているが、副作用の問題があり、また、妊娠を希望する女性には適用できない。手術で病巣を除去する治療も行われているが、術後に高い再発率を示すことがある。
　子宮内膜症の原因について、非特許文献１及び２ではグラム陰性細菌と子宮内膜症との関連が示唆されているものの、具体的な原因菌の特定には至っていない。
Ｈｕｍａｎ　Ｒｅｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ，Ｖｏｌ．１７，Ｎｏ．７，ｐ．１７０４－１７０８，２００２ 日本エンドメトリオーシス学会会誌，３３，ｐ．６２－６７，２０１２
　本発明は、子宮内膜症の原因菌を検出することにより、子宮内膜症の診断を可能とすることを目的とする。
　本発明者らは鋭意研究した結果、子宮内膜がフソバクテリウム属細菌に感染することが子宮内膜症の発症に関与することを見いだし、本発明を完成するに至った。
　本発明は以下の側面を有する。
　［１］対象から採取した試料中のフソバクテリウム属細菌を検出する工程を含み、試料中にフソバクテリウム属細菌の存在が検出されることは、対象が子宮内膜症に罹患している又は罹患する可能性が高いことを示す、子宮内膜症を診断するためにフソバクテリウム属細菌を検出する方法。フソバクテリウム属細菌はフソバクテリウム・ヌクレアタム（Ｆｕｓｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ　ｎｕｃｌｅａｔｕｍ）であってよい。試料は、血液、血漿、血清、尿、子宮内膜細胞、腟ぬぐい液、又は月経血であってよい。
　［２］フソバクテリウム属細菌に対する抗菌薬を有効成分として含有する、子宮内膜症治療薬。
　［３］子宮内膜がフソバクテリウム属細菌に感染した対象に抗菌薬を投与する工程を含む、子宮内膜症の治療方法。対象から採取した試料中のフソバクテリウム属細菌を検出して、対象の子宮内膜がフソバクテリウム属細菌に感染しているか否かを確認する工程を、抗菌薬を投与する工程の前に行ってもよい。抗菌薬の投与は経腟投与であってよい。
　本発明はさらに以下の側面を有する。
［４］対象から採取した試料中のフソバクテリウム属細菌を検出する工程を含む、子宮内膜症の診断のためのデータを収集する方法。
［５］フソバクテリウム属細菌の感染を原因とする子宮内膜症を治療するための医薬の製造における抗菌薬の使用。
　本発明によれば、子宮内膜症の原因菌を検出することにより、子宮内膜症の簡便な診断が可能となる。細菌は微量であっても検出することができるため、画像診断では捉えられない初期の子宮内膜症の発見も期待できる。また、本発明によれば、子宮内膜症の原因菌を殺菌し、又はその増殖を抑制することにより、子宮内膜症を治療することが可能となる。かかる治療は、子宮内膜症の再発予防にも効果を発揮することが期待できる。
正常なヒト子宮内膜組織及び子宮内膜症患者の子宮内膜組織における、全１６Ｓ　ｒＲＮＡ中のフソバクテリウム属の１６Ｓ　ｒＲＮＡの割合を示す。 ＥＵＢ３３８、ＦＵＳＯ、及びＦＵＳ６６４をプローブとして用いた、正常なヒト子宮内膜組織、並びに子宮内膜症患者の子宮内膜組織及び卵巣組織のＦＩＳＨ画像を示す。 図３の（Ａ）は、細菌に感染した子宮内膜を腹腔内接種したマウスにおける、子宮内膜症病変を示す。図３の（Ｂ）は病変の数を示し、図３の（Ｃ）は病変の総重量を示す。 ＥＵＢ３３８及びＦＵＳＯをプローブとして用いた、細菌に感染した子宮内膜を腹腔内接種したマウスの子宮内膜症病変のＦＩＳＨ画像を示す。 図５の（Ａ）は、抗菌薬を投与したドナーマウスの子宮内膜組織を腹腔内接種したマウスにおける、子宮内膜症病変を示す。図５の（Ｂ）は病変の数を示し、図５の（Ｃ）は病変の総重量を示す。 ＥＵＢ３３８及びＦＵＳＯをプローブとして用いた、抗菌薬を投与したドナーマウスの子宮内膜組織を腹腔内接種したマウスの子宮内膜症病変のＦＩＳＨ画像を示す。 図７の（Ａ）は、抗菌薬を投与した子宮内膜症マウスにおける子宮内膜症病変を示す。図７の（Ｂ）は病変の数を示し、図７の（Ｃ）は病変の総重量を示す。
　本発明の一側面に係る子宮内膜症を診断するためにフソバクテリウム属細菌を検出する方法は、対象から採取した試料中のフソバクテリウム属細菌を検出する工程を含む。対象から採取した試料中にフソバクテリウム属細菌の存在が検出された場合、対象の子宮内膜がフソバクテリウム属細菌に感染している可能性が高いため、試料中にフソバクテリウム属細菌の存在が検出されることは、対象が子宮内膜症に罹患している又は罹患する可能性が高いことを示す。この結果は、医師が子宮内膜症の診断を下すための指標として利用し得る。
　フソバクテリウム属細菌は特に限定されず、例えば、フソバクテリウム・ヌクレアタム（Ｆｕｓｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ　ｎｕｃｌｅａｔｕｍ）であってよい。
　対象は、子宮を有する対象であれば特に限定されない。対象は、例えばヒト対象であってよく、子宮内膜症に罹患する可能性のある、又は子宮内膜症に罹患している疑いのあるヒト対象であってよい。
　試料は、子宮内膜が感染したフソバクテリウム属細菌を検出できる試料であれば限定されず、例えば、血液、血漿、血清、尿、子宮内膜細胞、腟ぬぐい液、月経血、子宮頸部細胞、又は卵巣組織であってよい。侵襲を伴わずに又は最小限の侵襲で試料を採取する観点から、試料は、好ましくは血液、血漿、血清、尿、子宮内膜細胞、腟ぬぐい液、又は月経血である。子宮内膜の感染を特異的に検出する観点から、試料は、より好ましくは子宮内膜細胞、腟ぬぐい液、又は月経血である。
　試料中のフソバクテリウム属細菌を検出する方法は特に限定されず、例えば、フソバクテリウム属細菌に特異的なプライマーを用いた、ＰＣＲ（ポリメラーゼ連鎖反応）法、ＬＡＭＰ（ループ媒介等温増幅）法等の核酸増幅法による遺伝子検査等、従来公知の細菌検出法が利用できる。
　例えば、対象から採取した試料中のフソバクテリウム属細菌を検出する工程は、フソバクテリウム属細菌に特異的なプライマーを用いて、試料に由来するＤＮＡに対して核酸増幅反応を行う工程（核酸増幅工程）を含んでよく、核酸増幅反応の増幅産物を検出する工程をさらに含んでよい。増幅産物の検出は、核酸増幅工程の後に行ってもよく、核酸増幅工程中にリアルタイムで行ってもよい。増幅産物の存在が検出された場合、試料中にフソバクテリウム属細菌が存在するといえる。
　試料に由来するＤＮＡは、公知の手法により試料から抽出及び／又は単離されたＤＮＡであってよい。フソバクテリウム属細菌に特異的なプライマーとは、フソバクテリウム属細菌に特異的なＤＮＡ領域を増幅可能な１種以上のプライマーを意味する。
　増幅産物を検出する方法は特に限定されず、公知の技術を利用できる。増幅産物は、例えば、蛍光標識プローブ等の標識プローブ若しくは蛍光性インターカレーターを用いることにより、又は反応液に対して電気泳動を行うことにより、検出することができる。あるいは、核酸増幅反応の反応液中にマグネシウムイオンが含まれる場合、反応液の濁度を測定することで増幅産物を検出することもできる。
　本発明の上記側面に係る方法によれば、子宮内膜症の診断を補助するデータを得ることができる。したがって、本発明の一側面は、対象から採取した試料中のフソバクテリウム属細菌を検出する工程を含む、子宮内膜症の診断のためのデータを収集する方法であるといえる。対象から採取した試料中のフソバクテリウム属細菌を検出する工程の詳細は、上述のとおりである。試料中のフソバクテリウム属細菌の検出結果のデータは、医師による子宮内膜症の診断に利用することができる。
　子宮内膜症の診断のためのデータを収集する方法は、フソバクテリウム属細菌の検出結果（フソバクテリウム属細菌の有無）に基づいて、対象が子宮内膜症に罹患している又は罹患する可能性を判定する工程をさらに含んでよい。かかる工程では、試料中にフソバクテリウム属細菌の存在が検出された場合に、対象が子宮内膜症に罹患している又は罹患する可能性が高いと判定する。このように得られた判定データは、医師による子宮内膜症の診断に利用することができる。
　本発明の一側面に係る子宮内膜症治療薬は、フソバクテリウム属細菌に対する抗菌薬を有効成分として含有する。子宮内膜症治療薬は、具体的には、フソバクテリウム属細菌の感染を原因とする子宮内膜症の治療における使用のための治療薬であってよい。また、本発明の別の側面は、フソバクテリウム属細菌の感染を原因とする子宮内膜症を治療するための医薬の製造における抗菌薬の使用である。
　フソバクテリウム属細菌の詳細は上述のとおりである。抗菌薬は、フソバクテリウム属細菌を殺菌し、又はその増殖を抑制することが可能な抗菌薬であれば特に限定されず、例えば、メトロニダゾール系抗菌薬及びクロラムフェニコール系抗菌薬が例として挙げられる。
　本発明の一側面に係る子宮内膜症の治療方法は、子宮内膜がフソバクテリウム属細菌に感染した対象に抗菌薬を投与する工程を含む。
　対象の子宮内膜がフソバクテリウム属細菌に感染しているか否かは、上述のとおり、対象から採取した試料中にフソバクテリウム属細菌が検出されるか否かに基づいて確認することができる。すなわち、一実施形態において、子宮内膜症の治療方法は、対象から採取した試料中のフソバクテリウム属細菌を検出する工程と、試料中にフソバクテリウム属細菌の存在が検出された場合に、対象に抗菌薬を投与する工程と、を含んでよい。
　抗菌薬の詳細は上述のとおりである。抗菌薬の投与方法は、例えば経口投与又は経腟投与であってよい。抗菌薬による体の他の部位への影響を軽減する観点から、投与方法は、好ましくは経腟投与である。抗菌薬の投与量は、治療上有効な量であれば特に限定されず、抗菌薬の種類に応じて決定できる。
＜材料＞
　以下の試験例において使用した子宮内膜及び卵巣の組織は、名古屋大学医学部附属病院及びその関連病院の患者から採取した。以下の試験例において使用したマウスは、いずれも雌のＢＡＬＢ／ｃマウス（日本エスエルシー株式会社）である。マウスに感染させたフソバクテリウム・ヌクレアタム及びラクトバチルス・イナース（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｉｎｅｒｓ）（腟内常在菌）は、岐阜大学研究推進・社会連携機構微生物遺伝資源保存センターから取得した。試験例５において用いたＦ．ヌクレアタム亜種ヌクレアタム（ＡＴＣＣ２５５８６株）は、国立研究開発法人理化学研究所から取得した。マウスに投与した１７β－エストラジオールは富士製薬工業株式会社製である。マウスに投与したメトロニダゾール（ＭＺ）は富士フイルム和光純薬株式会社製であり、クロラムフェニコール（ＣＰ）はシグマ社製である。
＜ＦＩＳＨ＞
　以下の試験例において、蛍光ｉｎ　ｓｉｔｕハイブリダイゼーション（ＦＩＳＨ）による解析は次のように行った。まず、ホルマリン固定パラフィン包埋組織切片のスライドを脱パラフィンし、０．２Ｍ　ＨＣｌで２０分間処理し、次いで、ハイブリダイゼーション緩衝液（０．９Ｍ　ＮａＣｌ、２０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、ｐＨ７．２、０．１％ドデシル硫酸ナトリウム）中、１０ｎｇ／μＬのＦＩＳＨプローブと５６℃で一晩ハイブリダイズさせた。ＦＩＳＨプローブとしては、５’ＦＡＭ標識真正細菌ユニバーサルプローブＥＵＢ３３８、５’Ｃｙ３標識フソバクテリウム属細菌特異的プローブＦＵＳＯ、及び５’Ｃｙ５標識Ｆ．ヌクレアタム標的プローブＦＵＳ６６４を用いた。ＦＩＳＨプローブの配列は、ｐｒｏｂｅＢａｓｅ（ｈｔｔｐ：／／ｐｒｏｂｅｂａｓｅ．ｃｓｂ．ｕｎｉｖｉｅ．ａｃ．ａｔ／）から取得した（アクセッション番号：ｐＢ－１５９、ｐＢ－７８２、及びｐＢ－１３４６）。洗浄緩衝液（０．９Ｍ　ＮａＣｌ、２０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、ｐＨ７．２）を用いて、５８℃で２０分間、スライドを洗浄した。組織切片を４’，６－ジアミジノ－２－フェニルインドール（ＤＡＰＩ）で対比染色し、スライドガラスにマウントした。Ｏｐａｌ　Ｍｕｌｔｉ－ｐｌｅｘ　ＩＨＣ　Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ　Ｋｉｔ（パーキンエルマー社製）を用いて、製造元のプロトコルに従って、抗ＴＡＧＬＮ抗体及びＦＩＳＨプローブによる共免疫染色を行った。倒立顕微鏡Ｌｅｉｃａ　ＤＭＩ６０００Ｂ（ライカマイクロシステムズ社製）を用いて蛍光画像を取得した。
＜試験例１＞子宮内膜組織におけるフソバクテリウム属細菌の検出
　ＱＩＡａｍｐ　ＤＮＡ　Ｍｉｃｒｏｂｉｏｍｅ　Ｋｉｔ（キアゲン社製）を用いて、正常なヒト子宮内膜組織（ｎ＝９）及び子宮内膜症患者の子宮内膜組織（ｎ＝９）からゲノムＤＮＡを抽出した。フソバクテリウム属細菌に対する特異的なプライマーを用いてｑＰＣＲ（定量的ポリメラーゼ連鎖反応）を行い、全１６Ｓ　ｒＲＮＡ中のフソバクテリウム属の１６Ｓ　ｒＲＮＡの割合をΔＣＴ法により算出した。結果を図１に示す。フソバクテリウム属の１６Ｓ　ｒＲＮＡは、正常なヒト子宮内膜組織では検出されなかったが、子宮内膜症患者の子宮内膜組織では検出された（＊Ｐ＜０．０５）。
　次に、正常なヒト子宮内膜組織、並びに子宮内膜症患者の子宮内膜組織及び卵巣組織に対して、真正細菌に特異的なＥＵＢ３３８、フソバクテリウム属細菌に特異的なＦＵＳＯ、及びＦ．ヌクレアタムに特異的なＦＵＳ６６４をプローブとして、ＦＩＳＨを行った。図２に蛍光画像を示す（スケールバーは１００μｍ）。子宮内膜症患者の子宮内膜組織及び卵巣組織では、ＥＵＢ３３８、ＦＵＳＯ、及びＦＵＳ６６４の蛍光が観察され、これらの組織がＦ．ヌクレアタムに感染していることが示された。
　次に、子宮内膜症でない患者と子宮内膜症患者の子宮内膜組織におけるフソバクテリウム属細菌の陽性率をＦＩＳＨにより調べた。ＦＵＳＯの蛍光は、子宮内膜症に罹患していない患者４２名中３名（陽性率：７％）で観察され、子宮内膜症患者４２名中２７名（陽性率：６４％）で観察された。
＜試験例２＞マウスにおける子宮内膜症の誘発
　６週齢のドナーマウスの卵巣を摘出し、腟内に１週間で４回、１０７ＣＦＵ（コロニー形成ユニット）／１０μＬ　ＰＢＳ／日のＦ．ヌクレアタム又はＬ．イナースを適用して、ドナーマウスを細菌に感染させた。コントロール群にはＰＢＳ（リン酸緩衝生理食塩水）を適用した。卵巣の摘出から２週間後、ドナーマウスから採取した子宮内膜組織をレシピエントマウスに腹腔内接種して、子宮内膜症を誘発した。ドナーマウスには卵巣摘出後から、レシピエントマウスには子宮内膜組織接種後から、１００μｇ／ｋｇ／週の１７β－エストラジオールの皮下投与を開始した。腹腔内接種から４週間後、レシピエントマウスの腹膜子宮内膜症病変を摘出し、病変の数及び総重量を測定した。
　図３の（Ａ）は摘出した病変を示す。図３の（Ｂ）は病変の数を示し、図３の（Ｃ）は病変の総重量を示す（＊Ｐ＜０．０５、各群についてｎ＝３）。これらの図に示されるように、Ｆ．ヌクレアタムに感染した子宮内膜組織を接種したレシピエントマウスでは、病変の数及び総重量が有意に高かった。
　病変に対して、ＥＵＢ３３８及びＦＵＳＯをプローブとしてＦＩＳＨを行った。図４に蛍光画像を示す（スケールバーは１００μｍ）。Ｆ．ヌクレアタムに感染した子宮内膜組織を接種したレシピエントマウスの子宮内膜症病変では、フソバクテリウム属細菌が検出された。
＜試験例３＞ドナーマウスへの抗菌薬の投与
　６週齢のドナーマウスの卵巣を摘出し、腟内に１週間で４回、１０７ＣＦＵ／１０μＬ　ＰＢＳ／日のＦ．ヌクレアタムを適用して、ドナーマウスをＦ．ヌクレアタムに感染させた。卵巣の摘出から１週間後、１７μｇ／日のメトロニダゾール（ＭＺ）又は７μｇ／日のクロラムフェニコール（ＣＰ）を含む抗菌薬を５日間毎日経腟投与した。コントロール群にはＰＢＳを投与した。卵巣の摘出から３週間後、ドナーマウスから採取した子宮内膜組織をレシピエントマウスに腹腔内接種して、子宮内膜症を誘発した。ドナーマウスには卵巣摘出後から、レシピエントマウスには子宮内膜組織接種後から、１００μｇ／ｋｇ／週の１７β－エストラジオールの皮下投与を開始した。腹腔内接種から３週間後、レシピエントマウスの腹膜子宮内膜症病変を摘出し、病変の数及び総重量を測定した。
　図５の（Ａ）は摘出した病変を示す。図５の（Ｂ）は病変の数を示し、図５の（Ｃ）は病変の総重量を示す（＊＊Ｐ＜０．０１、各群についてｎ＝３）。これらの図に示されるように、抗菌薬を投与したドナーマウスの子宮内膜組織を接種したレシピエントマウスでは、病変の数及び総重量が有意に減少した。
　病変に対して、ＥＵＢ３３８及びＦＵＳＯをプローブとしてＦＩＳＨを行った。図６に蛍光画像を示す（スケールバーは１００μｍ）。抗菌薬を投与しなかったドナーマウスの子宮内膜組織を接種したコントロール群ではフソバクテリウム属細菌が検出されたのに対し、抗菌薬を投与したドナーマウスの子宮内膜組織を接種したレシピエントマウスではフソバクテリウム属細菌が検出されなかった。
＜試験例４＞レシピエントマウスへの抗菌薬の投与
　６週齢のドナーマウスの卵巣を摘出し、腟内に１週間で４回、１０７ＣＦＵ／１０μＬ　ＰＢＳ／日のＦ．ヌクレアタムを適用して、ドナーマウスをＦ．ヌクレアタムに感染させた。卵巣の摘出から２週間後、ドナーマウスから採取した子宮内膜組織をレシピエントマウスに腹腔内接種して、子宮内膜症を誘発した。ドナーマウスには卵巣摘出後から、レシピエントマウスには子宮内膜組織接種後から、１００μｇ／ｋｇ／週の１７β－エストラジオールの皮下投与を開始した。腹腔内接種から３週間後、１７μｇ／日のメトロニダゾール又は７μｇ／日のクロラムフェニコールを含む抗菌薬を、レシピエントマウスに５日間毎日経口投与した。投与終了から２１日後、レシピエントマウスの腹膜子宮内膜症病変を摘出し、病変の数及び総重量を測定した。
　図７の（Ａ）は摘出した病変を示す（スケールバーは１ｃｍ）。図７の（Ｂ）は病変の数を示し、図７の（Ｃ）は病変の総重量を示す（＊Ｐ＜０．０５、ｎ．ｓ．：有意差なし、各群についてｎ＝３）。これらの図に示されるように、抗菌薬を投与した子宮内膜症マウスでは、病変の数に有意な変化は見られなかったものの、病変の総重量は有意に減少した。
　病変に対して、ＥＵＢ３３８及びＦＵＳＯをプローブとしてＦＩＳＨを行ったところ、抗菌薬を投与した子宮内膜症マウスでは、フソバクテリウム属細菌の量が劇的に減少していた（図示せず）。
＜試験例５＞月経血におけるフソバクテリウム属細菌の検出
　フソバクテリウム属細菌陰性の月経血４９０μＬにＦ．ヌクレアタム亜種ヌクレアタム（ＡＴＣＣ２５５８６株）の菌液を１０μＬ添加し、得られた月経血試料５００μＬから、ＱＩＡａｍｐ　ＤＮＡ　Ｍｉｃｒｏｂｉｏｍｅ　Ｋｉｔを用いてＤＮＡを抽出した。得られたＤＮＡに対して、表１に示すＦ．ヌクレアタム亜種ヌクレアタム特異的プライマーセットを用いてＬＡＭＰ反応を行った。反応は６５℃で１２０分行った。増幅産物の検出は、ＳＹＴＯ（商標）　６３　Ｒｅｄ　Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ　Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃｉｄ　Ｓｔａｉｎ（サーモフィッシャーサイエンティフィック社製）の蛍光強度をモニタリングすることにより行った。蛍光強度の移動平均値が閾値を一定回数達するまでの時間を測定し、閾値を超えた最初の時間をＴｔ値とした。コントロールとして、フソバクテリウム属細菌陰性の月経血４９０μＬに生理食塩水を１０μＬ添加し、得られた月経血試料を用いて、上記同様にＤＮＡ抽出及びＬＡＭＰ反応を行った。Ｔｔ値を表２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　Ｆ．ヌクレアタム亜種ヌクレアタムを含まない月経血試料（コントロール）ではＬＡＭＰ反応による増幅産物が検出されなかったのに対し、Ｆ．ヌクレアタム亜種ヌクレアタムを含む月経血試料では増幅産物が検出された。したがって、月経血中に子宮内膜由来のフソバクテリウム属細菌が存在する場合、該細菌を核酸増幅法により検出することができることが示された。

Claims (7)

  1. 　対象から採取した試料中のフソバクテリウム属細菌を検出する工程を含み、
    　試料中にフソバクテリウム属細菌の存在が検出されることは、対象が子宮内膜症に罹患している又は罹患する可能性が高いことを示す、
    　子宮内膜症を診断するためにフソバクテリウム属細菌を検出する方法。
  2. 　フソバクテリウム属細菌がフソバクテリウム・ヌクレアタム（Ｆｕｓｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ　ｎｕｃｌｅａｔｕｍ）である、請求項１に記載の方法。
  3. 　試料が、血液、血漿、血清、尿、子宮内膜細胞、腟ぬぐい液、又は月経血である、請求項１又は２に記載の方法。
  4. 　フソバクテリウム属細菌に対する抗菌薬を有効成分として含有する、子宮内膜症治療薬。
  5. 　子宮内膜がフソバクテリウム属細菌に感染した対象に抗菌薬を投与する工程を含む、子宮内膜症の治療方法。
  6. 　対象から採取した試料中のフソバクテリウム属細菌を検出して、対象の子宮内膜がフソバクテリウム属細菌に感染しているか否かを確認する工程を、抗菌薬を投与する工程の前に行う、請求項５に記載の方法。
  7. 　抗菌薬の投与が経腟投与である、請求項５又は６に記載の方法。
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