WO2021182905A1 - 연속적 탈분지 및 재결정화 처리를 이용한 난소화성 덱스트린의 제조방법 - Google Patents

연속적 탈분지 및 재결정화 처리를 이용한 난소화성 덱스트린의 제조방법 Download PDF

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WO2021182905A1
WO2021182905A1 PCT/KR2021/003064 KR2021003064W WO2021182905A1 WO 2021182905 A1 WO2021182905 A1 WO 2021182905A1 KR 2021003064 W KR2021003064 W KR 2021003064W WO 2021182905 A1 WO2021182905 A1 WO 2021182905A1
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WO
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starch
indigestible dextrin
recrystallization
debranching
dextrin
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PCT/KR2021/003064
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English (en)
French (fr)
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임승택
이동진
김준모
해아준
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고려대학교 산학협력단
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14—Hydrolases (3)
    • C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12N9/2405—Glucanases
    • C12N9/2451—Glucanases acting on alpha-1,6-glucosidic bonds
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00—Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/18—Preparation of compounds containing saccharide radicals produced by the action of a glycosyl transferase, e.g. alpha-, beta- or gamma-cyclodextrins

Definitions

  • the present invention relates to a method for producing indigestible dextrin, and more particularly, to a method for producing indigestible dextrin in nano size by performing continuous debranching and recrystallization processes on starch particles. .
  • Starch contains amylose, a flexible polymer with almost linear D-glucose units linked by ⁇ -1,4-D-glycosidic linkage, and linear chains linked by ⁇ -1,6-D-glycosidic linkage. It is made up of two types of polysaccharide molecules: the polymerized polymer amylopectin.
  • starch is a carbohydrate present in plants, used as a major energy source for humans, and is released and absorbed as glucose by being decomposed by digestive enzymes and acids in the human body in the mouth, stomach, and intestines.
  • RDS fast digesting starch
  • SDS slow digesting starch
  • RS resistant starch
  • indigestible starch which plays a role almost similar to that of dietary fiber, was known in the early 1980s, and in 1990, EURESTA in Europe defined enzyme-resistant starch and conducted full-scale research.
  • Resistant starch refers to starch or degradation products of starch that are not absorbed in the human small intestine.
  • resistant starch is not degraded and absorbed by digestive enzymes in the body, but is degraded by microbial fermentation in the large intestine similar to dietary fiber to produce short-chain fatty acids, lowering the pH of the large intestine, as well as inhibiting the growth of harmful bacteria and proliferation of beneficial bacteria It is known to help improve the intestinal environment, such as increasing feces and preventing colon cancer.
  • RS type 1 refers to starch that is difficult to meet enzymes
  • RS type 2 refers to natural starch with type B crystallinity such as potato, banana, and high amylose corn starch. Since this is lost, it cannot be used for foods that are heat-treated, such as cooked or processed foods.
  • RS type 3 is an aged starch gelatinized by heating, and it is known that the higher the amylose content, the higher the RS yield.
  • RS type 4 is a starch made by chemical denaturation and has resistance to enzymes.
  • Chemical modification may be accomplished through cross-linking, esterification, etherification, lintnerization, conversion, or the like.
  • Studies have been reported to increase the content of resistant starch in grains containing starch as well as starch, but commercial availability is declining due to several problems. For example, it is difficult to utilize commercially because of various problems such as acid and thermal stability, enzyme activity, and yield of the prepared resistant starch.
  • Patent Document 1 KR1999-009598 A
  • the present invention is to solve the problems of the prior art described above, and one aspect of the present invention is to break the a-1,6 glycosidic linkage of starch amylopectin through continuous enzymatic treatment (debranching) to produce straight-chain amylose, , to provide a method for producing indigestible dextrin inducing self-assembly through recrystallization of amylose chains.
  • another aspect of the present invention is to provide a method for preparing nano-sized indigestible dextrin through hydrolysis through acid treatment or enzymatic treatment in addition to the continuous debranching enzyme and recrystallization treatment.
  • the method for preparing indigestible dextrin comprises the steps of (a) preparing a starch solution in which starch is dispersed; (b) gelatinizing the starch solution; (c) cooling the gelatinized starch solution; (d) debranching by adding a debranching enzyme that removes ⁇ -1,6 glycosidic linkage of the starch to the cooled starch solution; and (e) recrystallizing the debranched starch solution by leaving the debranched starch solution at a predetermined reaction temperature so that the straight-chain amylose produced by the debranching process is self-assembled into a double helix structure and recrystallized. includes ;
  • the starch solution in step (a), may be prepared by dispersing starch in a buffer solution having a pH of 3.5 to 6.0.
  • the starch may be dispersed at a concentration of 0.1 to 40% (w/w).
  • the starch solution in step (b), may be heated to 80 to 140° C. to gelatinize it.
  • step (c) the starch solution may be cooled to 30 to 70°C.
  • the debranching enzyme may include at least one selected from the group consisting of isoamylase and pullulanase.
  • the debranching enzyme in step (d), may be added at a concentration of 0.1 to 50% (w/w).
  • the reaction temperature may be 4 ⁇ 90 °C.
  • the starch solution in step (e), may be left standing for at least 24 hours.
  • drying the washed dextrin by heating it to a temperature of 40 to 60° C. may further include.
  • (h) adding the washed dextrin to an acidic solution and hydrolyzing it; may further include.
  • the step (h) may be hydrolyzed at a temperature of 30 to 50° C. for 6 to 24 hours.
  • (h) reacting the washed dextrin with alpha-amylase to hydrolyze it may further include.
  • step (h) the alpha-amylase is added in an amount of 3 to 7% of the starch, and hydrolyzed at a temperature of 30 to 50° C. for 3 to 12 hours. can be disassembled.
  • indigestible dextrin having high resistance starch (RS) content, excellent thermal and enzyme stability, and high crystallinity can be prepared in high yield through continuous debranching enzyme and recrystallization treatment of starch chain. have.
  • RS resistance starch
  • the indigestible dextrin prepared according to the present invention is expected to be effectively utilized in various fields such as pharmaceuticals, cosmetics, new food materials, food additives and chemical products such as dietary fiber, fat substitute, coating agent, and reinforcing agent.
  • 1A to 1B are flowcharts of a method for producing indigestible dextrin according to the present invention.
  • Example 2 is an HPSEC-RI chromatogram of indigestible dextrin obtained by successive debranching enzyme and recrystallization treatments according to Example 1 (DE-WMS: fully debranched waxy cornstarch, DE/RE-D3: waxy corn indigestible dextrin with enzyme and recrystallization for 3 days, DE/RE-D5: waxy corn indigestible dextrin with enzyme and recrystallization for 5 days, DE/RE-D7: waxy corn indigestible dextrin after enzyme and recrystallization for 7 days ).
  • DE-WMS fully debranched waxy cornstarch
  • DE/RE-D3 waxy corn indigestible dextrin with enzyme and recrystallization for 3 days
  • DE/RE-D5 waxy corn indigestible dextrin with enzyme and recrystallization for 5 days
  • DE/RE-D7 waxy corn indigestible dextrin after enzyme and recrystallization for 7 days ).
  • Example 3 shows the crystallinity using X-ray diffraction analysis (XRD) of indigestible starch dextrin obtained by successive debranching enzyme and recrystallization treatment according to Example 1 (DE/RE-3D: enzyme for 3 days) and recrystallized waxy corn indigestible dextrin, DE/RE-5D: 5 days enzyme and recrystallized waxy corn indigestible dextrin, DE/RE-7D: 7 days enzyme and recrystallized waxy corn indigestible dextrin).
  • XRD X-ray diffraction analysis
  • FIG. 5 shows the digestive properties (RDS, SDS, and RS) of indigestible dextrin obtained by continuous debranching enzyme and recrystallization treatment according to Example 1.
  • FIG. 5b shows the result when the sample + buffer solution was not heat treated.
  • Example 6 shows the particle morphology of continuous debranching enzyme and recrystallized indigestible dextrin using a scanning electron microscope (SEM) according to Example 1 (A: natural waxy corn starch, B: DE/RE-3D-3 Daily enzyme and recrystallized waxy corn indigestible dextrin, C: DE/RE-5D - 5 days enzyme and recrystallized waxy corn indigestible dextrin, D: DE/RE-7D - 7 days enzyme and recrystallized waxy corn indigestible dextrin).
  • SEM scanning electron microscope
  • Figure 7 shows the HPSEC-RI chromatogram of indigestible dextrin according to the debranching enzyme and recrystallization time according to Example 2.
  • Example 8 shows the debranching enzyme concentration and the crystallinity of indigestible dextrin according to the recrystallization treatment according to Example 3 (NWRS: crystallinity of natural glutinous rice starch, 1.0% DR50: continuous debranching enzyme ( Crystallinity of indigestible dextrin treated with 1%) and recrystallization (50° C.), 2.5% DR50: Crystallinity of indigestible dextrin treated with continuous debranching enzyme (2.5%) and recrystallization (50° C.) of glutinous rice starch ).
  • Example 9 shows the thermal properties of indigestible dextrin according to the debranching enzyme concentration and recrystallization treatment according to Example 3 (Native WRS: natural glutinous rice starch, 1%-50°C: glutinous rice starch with continuous debranching enzyme ( Crystallinity of indigestible dextrin treated with 1%) and recrystallization (50° C.), 2.5%-50° C.: of indigestible dextrin treated with continuous debranching enzyme (2.5%) and recrystallization (50° C.) of glutinous rice starch crystallinity).
  • Example 10 shows the crystallinity of indigestible dextrin according to the debranching enzyme, recrystallization treatment time and drying conditions according to Example 3 (A: drying at 50° C., B: freeze-drying after rapid cooling with liquid nitrogen).
  • Example 11 shows the crystallinity of indigestible dextrin according to Example 4 according to acid and enzyme treatment time (NWM: natural waxy corn starch, RE: indigestible dextrin, RE-AH6, AH12, AH 18, AH24: 6 , 12, 18, 24 hours acid-treated indigestible dextrin, RE-EH3, EH6, EH9, EH12: 3, 6, 9, 12 hours enzyme-treated indigestible dextrin).
  • NWM natural waxy corn starch
  • RE indigestible dextrin
  • RE-AH6, AH12, AH 18, AH24 6 , 12, 18, 24 hours acid-treated indigestible dextrin
  • RE-EH3, EH6, EH9, EH12 3, 6, 9, 12 hours enzyme-treated indigestible dextrin
  • 12a to 12j show the particle size of indigestible dextrin according to Example 4 according to acid and enzyme treatment time (NWM: natural waxy corn starch, RE: indigestible dextrin, RE-AH6, AH12, AH 18, AH24: acid-treated indigestible dextrin for 6, 12, 18, 24 hours; RE-EH3, EH6, EH9, EH12: enzyme-treated indigestible dextrin for 3, 6, 9, 12 hours).
  • NWM natural waxy corn starch
  • RE indigestible dextrin
  • RE-AH6, AH12, AH 18, AH24 acid-treated indigestible dextrin for 6, 12, 18, 24 hours
  • RE-EH3, EH6, EH9, EH12 enzyme-treated indigestible dextrin for 3, 6, 9, 12 hours.
  • FIG 13 shows the particle shape of indigestible dextrin according to Example 4 according to acid and enzyme treatment time (A, E: natural waxy corn starch, B, F: indigestible dextrin, C, G: acid-treated indigestibility Dextrin, D, H: enzyme-treated indigestible dextrin).
  • Example 14 shows the digestive properties of indigestible dextrin according to Example 4 according to acid and enzyme treatment time (NWM: natural waxy corn starch, RE: indigestible dextrin, RE-AH6, AH12, AH 18, AH24: 6 , 12, 18, 24 hours acid-treated indigestible dextrin, RE-EH3, EH6, EH9, EH12: 3, 6, 9, 12 hours enzyme-treated indigestible dextrin).
  • NWM natural waxy corn starch
  • RE indigestible dextrin
  • RE-AH6, AH12, AH 18, AH24 6 , 12, 18, 24 hours acid-treated indigestible dextrin
  • RE-EH3, EH6, EH9, EH12 3, 6, 9, 12 hours enzyme-treated indigestible dextrin
  • 1A to 1B are flowcharts of a method for producing indigestible dextrin according to the present invention.
  • the method for preparing indigestible dextrin according to the present invention comprises the steps of preparing a starch solution in which starch is dispersed (S100), gelatinizing the starch solution (S200), and preparing the starch solution.
  • a step of cooling (S300) a step of debranching by adding a debranching enzyme that removes ⁇ -1,6 glycosidic linkage of starch to the cooled starch solution (S400), and debranching
  • a step of recrystallizing the debranched starch solution by leaving the debranched starch solution at a predetermined reaction temperature so that the resulting linear amylose is self-assembled into a double helix structure and recrystallized ( S500 ).
  • the present invention relates to a method for producing indigestible dextrin using a continuous enzymatic treatment (debranching) and recrystallization of starch chains, and specifically, it is possible to remove the ⁇ -1,6-D-glycosidic linkage of starch.
  • Indigestible dextrin that continuously induces recrystallization of starch chains while producing linear amylose by using a debranching enzyme.
  • the method for preparing indigestible dextrin according to the present invention comprises a starch solution preparation step (S100), a gelatinization step (S200), a cooling step (S300), a debranching treatment step (S400), and a recrystallization treatment step (S500).
  • S100 starch solution preparation step
  • S200 gelatinization step
  • S300 cooling step
  • S400 debranching treatment step
  • S500 recrystallization treatment step
  • the starch is general corn starch, waxy corn starch, high amylose corn starch, rice starch, glutinous rice starch, high amylose rice starch, potato starch, potato starch, sweet potato starch, barley starch, barley starch, soybean starch, wheat It may be selected from the group consisting of starch, chamomile starch, sago starch, amaranth starch, tapioca starch, sorghum starch, waxy sorghum starch, banana starch, mung bean starch, eastern starch, and couscous starch.
  • a starch solution is prepared by dispersing such starch in a buffer solution or aqueous solution, and the pH of the buffer solution may be 3.5 to 6.0. In addition, the concentration of starch in the starch solution may be 0.1 to 40% (w/w).
  • the gelatinization step (S200) is a process of heating the starch solution to change its properties or structure.
  • the starch solution can be heated to 80 ⁇ 140 °C to gelatinization.
  • the cooling step ( S300 ) is a process of cooling the heated starch solution, and for example, the starch solution may be cooled to 30 to 70°C.
  • the debranching treatment step (S400) is a process of adding a debranching enzyme to the gelatinized and cooled starch solution.
  • a debranching enzyme By the addition of the debranching enzyme, the ⁇ -1,6 glycosidic linkage of starch, particularly amylopectin, which is a main component thereof, is removed, thereby producing a linear structure of amylose.
  • the debranching enzyme may include at least one selected from the group consisting of isoamylase, and pullulanase.
  • the debranching enzyme may be added at a concentration of 0.1 to 50% (w/w).
  • the enzymatic hydrolysis reaction according to the addition of the debranching enzyme may take approximately 1 hour to 72 hours.
  • the recrystallization treatment step ( S500 ) is a process for inducing recrystallization of amylose having a linear structure produced by debranching.
  • the debranched starch solution is left at a predetermined reaction temperature.
  • the reaction temperature may be 4 ⁇ 90 °C.
  • the recrystallization treatment period is suitable for at least 24 hours or more, preferably from 1 day to 30 days.
  • the recrystallization treatment period means the time left for the starch solution after the addition of the debranching enzyme.
  • the straight-chain amyloses are self-assembled into a double helix structure and recrystallized.
  • the period of debranching and recrystallization treatment affects the yield of dextrin, and the longer the period, the higher the yield.
  • the crystallinity increases as the straight-chain amyloses self-assemble into a double helix structure tightly at a predetermined reaction temperature, and can reach crystallinity similar to that of the raw material starch of the original starch solution.
  • the self-assembled recrystallization may be generated as a thermally stable crystal and have high thermal stability and enthalpy of gelatinization.
  • indigestible dextrin with high resistance starch (RS) content excellent thermal and enzyme stability, and high crystallinity in high yield through continuous debranching enzyme and recrystallization treatment of starch chains can be manufactured.
  • RS resistance starch
  • the method for preparing indigestible dextrin according to the present invention may further include a dextrin separation step (S600) and a washing step (S700) after the recrystallization treatment step.
  • the dextrin separation step (S600) is a process of separating dextrin from the recrystallized starch solution.
  • the dextrin can be separated by a method such as centrifugation.
  • the washing step ( S700 ) is a process of washing the dextrin separated from the starch solution, and the starch chains that do not participate in recrystallization, debranching enzymes, and the like are removed.
  • the dextrin may be washed several times using distilled water.
  • a drying step may be additionally performed.
  • the drying method include hot air drying, freeze drying, drying under reduced pressure, natural drying, vacuum drying, buried drying, spray drying, and the like.
  • the recrystallization time to reach the final crystallinity of the dextrin that is, the crystallinity of the starch material in the starch solution, may vary depending on the drying method.
  • the recrystallization time can be shortened by drying (heat drying method).
  • the drying method is not necessarily limited to the heat drying method.
  • the average particle size of the indigestible dextrin produced through this process is 550 to 650 nm, and has a nano size.
  • the particle size of the indigestible dextrin prepared by the debranching enzyme and recrystallization treatment may be further reduced by performing an acid treatment or an enzyme treatment step between the washing and drying steps. Due to the additional performance of the acid treatment to the enzymatic treatment step, it is possible to produce indigestible dextrin having an average size of 150 to 440 nm. In addition, the crystallinity, thermal stability, enthalpy, and RS content of the indigestible dextrin are also increased.
  • the acid treatment step is a process of hydrolyzing the washed dextrin by adding it to an acidic solution.
  • the dextrin may be hydrolyzed with an acidic solution at 30 to 50° C. for 6 to 24 hours.
  • the acidic solution include, but are not limited to, sulfuric acid solution.
  • it can be washed by adjusting the pH using NaOH.
  • the pH may be adjusted to 5.5 to 6.5, and after washing several times with distilled water, it may be dried by the above drying method.
  • the enzyme treatment step is a process of hydrolyzing the washed dextrin by reacting with alpha-amylase.
  • alpha-amylase may be added in an amount of 3 to 7% compared to starch, and hydrolyzed at a temperature of 30 to 50° C. for 3 to 12 hours.
  • the washed dextrin may be heated to 80-120° C. for 5-15 minutes, and the pH may be adjusted using NaOH. At this time, the pH may be adjusted to 6.0 to 7.5.
  • washing and drying steps may be performed on the dextrin.
  • Indigestible dextrin was prepared by successive enzymatic treatment (debranching) and recrystallization treatment using various starches. Isoamylase (megazyme) and flulanase (pullulanase) were used for continuous enzymatic treatment.
  • waxy maize starch (samyang genex, korea) was prepared as a slurry with 100 mL of 0.01 M sodium acetate buffer solution having a pH of 4.5.
  • the slurry was gelatinized at a temperature of 100°C.
  • the gelatinized slurry was subjected to an enzymatic reaction in a shaking water bath at 50°C.
  • Debranching and recrystallization were performed for 7 days by adding 0.5% (75 Unit/mL) of isoamylase based on the weight of starch.
  • the starch solution debranched and recrystallized for 3 days, 5 days and 7 days was centrifuged at 3500 rpm for 15 minutes, and washed 3 times with distilled water to remove starch chains and debranching enzymes that did not participate in recrystallization. After that, the samples were freeze-dried, and after freeze-drying, finely ground using a mortar and sieve was obtained.
  • test example 1-1 debranching Enzyme and recrystallization treatment indigestibility Yield of dextrin
  • Example 1 The yield of indigestible dextrin treated with debranching enzyme (isoamylase) and recrystallization was expressed as a dry weight value based on 20 g of natural starch based on the dry weight obtained according to the enzyme and recrystallization time.
  • debranching enzyme isoamylase
  • the yield of indigestible dextrin obtained by successive debranching enzyme and recrystallization treatment is shown in Table 1. There was a difference in yield depending on the debranching enzyme and recrystallization treatment time. As the number of days of debranching enzyme and recrystallization treatment increased, the yield showed a tendency to increase, showing 39.28% on the 3rd day, 51.24% on the 5th day, and 70.43% on the 7th day. It is thought that the yield increases over time as the straight-chain amyloses debranched by the continuous debranching enzymatic reaction are self-assembled and combined (recrystallized) into a double helix structure.
  • DE/RE-3D waxy corn indigestible dextrin after enzyme and recrystallization for 3 days
  • DE/RE-5D waxy corn indigestible dextrin after enzyme and recrystallization for 5 days
  • DE/RE-7D Indigestible dextrin from waxy corn that has been enzymatically and recrystallized for 7 days
  • test example 1-2 debranching Enzyme and recrystallization indigestibility Changes in the chain structure of dextrin
  • Example 1 The chain structure change of indigestible dextrin treated with debranching enzyme and recrystallization for 3, 5 and 7 days was confirmed using HPSEC-RI (Agilent 1260).
  • the column was TSK gel 3000, and the mobile phase was 0.15M NaNO 3 was used to flow at a rate of 0.5 mL/min.
  • the column temperature was 50°C and the RI detector temperature was 35°C for separation and analysis.
  • pullulan Pullulan standard, 47,300, 22,800, 11,800, 5,900, 667 was used.
  • Fr.I portion was similar to the completely debranched waxy corn starch, indicating that the debranching was completely progressed, and the low molecular weight portion of Fr.II and Fr.III increased. It seems that low molecular weight starch chains (debranched dextrin) slowly self-assembled and participated in recrystallization. As the distribution of Fr.II and Fr.III increased according to the continuous enzyme and recrystallization treatment time, the yield also increased, and the participation of low-molecular straight-chain amyloses debranched by the continuous enzyme treatment resulted in the yield. was also found to have an effect.
  • Test Example 1-3 Crystallinity of indigestible dextrin by debranching enzyme and recrystallization
  • Example 1 Debranching enzyme and recrystallization treatment
  • the crystallinity of indigestible dextrin was measured using X-ray diffraction analysis (XRD). Measurements were made from 5° to 35° at a rate of 1.5°C/min under the conditions of 40kV and 30mA.
  • the crystallinity of the indigestible dextrin obtained according to waxy corn starch and successive debranching enzymes and recrystallization treatment time was confirmed.
  • the crystallinity of natural waxy corn starch showed typical A-type crystallinity, and the samples treated with debranching enzyme and recrystallization showed A-type crystallinity like waxy corn starch.
  • the crystallinity of indigestible dextrin prepared by continuous enzymatic and recrystallization treatment was higher than the relative crystallinity of waxy corn starch, and it showed a tendency to increase with treatment time.
  • test example 1-4 debranching Enzyme and recrystallization indigestibility dextrin thermal properties
  • Example 1 Thermal properties of indigestible dextrin treated with debranching enzyme and recrystallization were measured using differential scanning calorimetry (DSC, seico). 3.0 mg of the sample was placed in a DSC pan, and then 7.0 mg of distilled water was added thereto and sealed. The sealed pan was left in a refrigerator at 4° C. for more than 12 hours to achieve equilibrium between moisture and the sample. DSC analysis conditions were 20 ⁇ 150 °C, 5 °C / min.
  • ⁇ H enthalpy of gelatinization
  • waxy corn starch 7.97, 18.92, and 20.64 J/g for indigestible dextrin treated with debranching enzyme and recrystallization for 3, 5, and 7 days, respectively. It showed higher gelatinization enthalpy than waxy corn starch. It seems that straight-chain amylose self-assembled into a double helix structure by successive debranching enzymes and recrystallization processes generate thermally stable crystals and have high thermal stability and gelatinization enthalpy.
  • test example 1-5 debranching Enzyme and recrystallization indigestibility Digestive properties of dextrin
  • the sample was dispersed in a buffer solution, and the dispersion was analyzed for both heat treatment and non-heat treatment at 100° C. for 15 minutes.
  • the starch dispersion heat-treated at 100° C. for 15 minutes and the non-heat-treated starch dispersion solution were digested in a constant temperature water bath at 37° C. using pancreatin and amyloglucosidase for a total of 120 minutes.
  • ethanol was added to inactivate the digestive enzymes.
  • the glucose (D-glucose) concentration of the solution was measured using a GOD-POD kit.
  • RDS is the glucose content released after 20 minutes digestion
  • SDS the glucose content released during 20-120 minutes
  • RS stands for total sugar-RDS-SDS.
  • FIG. 5A to 5B and Tables 3 to 4 show the results of measuring in vitro digestibility according to continuous debranching enzymes and recrystallization time.
  • Digestive properties of starch (FIG. 5A, Table 3) and non-heat-treated starch (FIG. 5B, Table 4) were measured for samples prepared according to the debranching enzyme and recrystallization time at 100° C. for 15 minutes.
  • the RS content increased from 25.05% on the 3rd day to 42.99% on the 7th day, which was increased by 33.3% compared to the natural waxy corn starch. Compared with the non-heat-treated sample, the RS content was somewhat lower. It is thought that the reactivity of digestive enzymes increases due to the gelatinization of some indigestible dextrin during the 100°C heat treatment process, so the content of RDS and SDS increases and the content of RS decreases. The increase in RS content over time for continuous debranching and recrystallization is considered to be due to increased resistance to digestive enzymes due to the increase in heat stability and crystallinity.
  • test example 1-6 debranching Enzyme and recrystallization indigestibility Particle form of dextrin
  • Example 1 The particle morphology of the debranching enzyme and recrystallized indigestible dextrin was observed using a scanning electron microscope (SEM), and the results are shown in FIG. 6 . It was confirmed that the shape of the prepared indigestible dextrin particles was changed according to the debranching enzyme and the recrystallization time compared to the case of natural waxy corn starch. In the case of the 3rd day sample, it was confirmed that the surface morphology had a round and smooth surface similar to that of natural waxy corn starch, and as the debranching enzyme and recrystallization treatment time passed, the surface was non-uniform and the particles were angular.
  • SEM scanning electron microscope
  • waxy maize starch (samyang genex, korea) was added to distilled water to prepare a 20% (w/v) starch slurry.
  • HCl was added to the prepared starch slurry to adjust the pH to 4.5, and gelatinization was performed at a temperature of 100°C.
  • the gelatinized starch solution was subjected to a debranching enzymatic reaction in a shaking water bath at 50°C.
  • pullulanase was added in an amount of 0.1% to 50% (25 Unit/mL to 12500 Unit/mL) based on the weight of starch, and debranching and recrystallization were performed for 7 days.
  • the debranching enzyme and recrystallized starch solution were centrifuged at 3500 rpm for 15 minutes for 3 days, 5 days and 7 days, and washed 3 times with distilled water to remove starch chains and debranching enzymes that did not participate in recrystallization. Thereafter, the samples were freeze-dried, and after freeze-drying, finely ground using a mortar and sieve was obtained.
  • Test Example 2-1 Yield of indigestible dextrin by debranching enzyme and recrystallization
  • Example 2 The yield of indigestible dextrin treated with debranching enzyme and recrystallization was expressed as a dry weight value based on 20 g of natural starch obtained according to the debranching enzyme and recrystallization time.
  • the yield of indigestible dextrin obtained by successive debranching enzyme (pullulanase) and recrystallization treatment is shown in Table 5.
  • the yield showed a difference according to the concentration of the debranching enzyme and the recrystallization treatment time.
  • the yield showed a tendency to increase as the concentration of debranching enzyme and the number of days of recrystallization treatment increased. It is thought that the amount of indigestible dextrin obtained increases as time increases as straight-chain amyloses debranched by a continuous debranching enzymatic reaction self-assemble into a double helix structure and recrystallize.
  • test example 2-2 debranching Enzyme and recrystallization indigestibility Changes in the chain structure of dextrin
  • a slurry of 10 g of waxy rice starch was prepared with 100 mL of a 0.01 M sodium acetate buffer solution having a pH of 4.5.
  • the slurry was gelatinized at a temperature of 100°C.
  • the gelatinized slurry was subjected to a debranching enzymatic reaction in a shaking constant temperature water bath at 50°C.
  • Debranching and recrystallization were performed for 21 days by adding 1% to 2.5% (150 to 375 Unit/mL) of isoamylase based on the weight of starch.
  • Test Example 3-1 Drying method after continuous debranching enzyme and recrystallization
  • Example 3 Drying after debranching enzyme and recrystallization in Example 3 was performed by 1) drying the whole starch solution at 50° C. and 2) freeze-drying by rapid freezing with liquid nitrogen. After drying, it was obtained by using a sieve to grind finely using a mortar.
  • test example 3-2 continuous debranching Enzyme and recrystallization indigestibility Dextrin crystallinity
  • the crystallinity of the debranching enzyme and recrystallization-treated indigestible dextrin prepared according to Example 3 was measured using an X-ray diffraction analyzer (XRD). Measurements were made from 5° to 35° at a rate of 1.5°C/min under the conditions of 40kV and 30mA.
  • XRD X-ray diffraction analyzer
  • the crystallinity of the indigestible dextrin obtained by recrystallization according to the concentration of glutinous rice starch and continuous debranching enzyme was confirmed.
  • the crystallinity of natural glutinous rice starch showed a typical A-type crystallinity, and the crystallinity showed a tendency to increase as the debranching enzyme concentration increased.
  • concentration of the enzyme increased, debranching was accelerated to rapidly produce straight-chain amyloses, and at a constant temperature (50°C), it self-assembled tightly into a double helix structure, resulting in increased crystallinity and improved A-type crystallinity. confirmed to be visible.
  • the crystallinity showed a tendency to increase with successive debranching enzyme and recrystallization treatment time.
  • the crystallinity of the sample prepared by heat drying at 50°C showed typical A-type crystallinity from the second day of recrystallization, and the crystallinity showed a tendency to increase as the continuous debranching enzyme and recrystallization time increased.
  • the crystallinity of the sample lyophilized after rapid cooling using liquid nitrogen showed A-type crystallinity on the 21st day of debranching enzyme and recombination, and B-type crystallinity with many amorphous parts until the 10th day showed
  • test example 3-3 continuous debranching Enzyme and recrystallization indigestibility Thermal properties of dextrin
  • the thermal properties of the debranching enzyme and recrystallization-treated indigestible dextrin prepared according to Example 3 were measured using a differential scanning calorimeter (DSC, seico). 3.0 mg of the sample was placed in a DSC pan, and then 7.0 mg of distilled water was added thereto and sealed. The sealed pan was left in a refrigerator at 4° C. for more than 12 hours to achieve equilibrium between moisture and the sample. DSC analysis conditions were 20 ⁇ 150 °C, 5 °C / min.
  • Example 4 continuous debranching enzyme And after recrystallization, production of nano-sized indigestible dextrin by acid and enzyme treatment
  • waxy maize starch (samyang genex, korea) was prepared as a slurry with 100 mL of 0.01 M sodium acetate buffer solution having a pH of 4.5.
  • the slurry was gelatinized at a temperature of 100°C.
  • the gelatinized slurry was subjected to an enzymatic reaction in a shaking water bath at 50°C.
  • Debranching and recrystallization were carried out for 7 days by adding 0.5% to 10% (75 to 1500 Unit/mL) of starch based on the weight of the flulanase (pullulanase).
  • the starch solution debranched and recrystallized for 3 days, 5 days and 7 days was centrifuged at 3500 rpm for 15 minutes, and washed 3 times with distilled water to remove starch chains and debranching enzymes that did not participate in recrystallization. Then, samples were prepared using 1) acid treatment and 2) enzyme treatment to prepare indigestible dextrin in nano size. 1) The washed indigestible dextrin was hydrolyzed with a 3.16M sulfuric acid solution at 40°C for 6 to 24 hours. After that, the pH was adjusted to 6.0 using NaOH and washed 3 times with distilled water. The washed samples were freeze-dried and used for experiments.
  • test example 4-1 continuous debranching enzyme and the yield of nano-sized indigestible dextrin by acid and enzyme treatment after recrystallization
  • Example 4 The yield of indigestible dextrin treated with debranching enzyme and recrystallization was expressed as a dry weight value of 20 g of natural starch obtained according to the debranching enzyme and recrystallization time.
  • test example 4- continuous debranching enzyme and thermal properties of nano-sized indigestible dextrin by acid and enzyme treatment after recrystallization
  • Example 4 The thermal properties of indigestible dextrin of nano size treated with debranching enzyme and recrystallization treated with acid and enzyme were measured using differential scanning calorimetry (DSC, seico). 3.0 mg of the sample was placed in a DSC pan, and then 7.0 mg of distilled water was added thereto and sealed. The sealed pan was left in a refrigerator at 4° C. for more than 12 hours to achieve equilibrium between moisture and the sample. DSC analysis conditions were 20 ⁇ 150 °C, 5 °C / min.
  • Table 7 shows the thermal properties of indigestible dextrin of nano size treated with acid and enzyme.
  • indigestible dextrin RE
  • it showed high thermal stability compared to natural waxy corn starch.
  • the thermal stability slightly increased compared to RE, and the enthalpy increased as the acid and enzyme treatment time increased. showed a tendency to This is thought to be due to the increase in the crystalline portion of the indigestible dextrin by removing the amorphous portion through acid or enzyme treatment of the indigestible dextrin (RE) as mentioned in the yield above.
  • test example 4-3 continuous debranching enzyme and crystallinity of nano-sized indigestible dextrin by acid and enzyme treatment after recrystallization
  • Example 4 The crystallinity of the acid- and enzyme-treated debranching enzyme and recrystallization-treated nano-sized indigestible dextrin was measured using an X-ray diffraction analyzer (XRD). Measurements were made from 5° to 35° at a rate of 1.5°C/min under the conditions of 40kV and 30mA.
  • XRD X-ray diffraction analyzer
  • the X-ray diffraction analysis of the nano-sized indigestible dextrin obtained by treatment with the acid and enzyme prepared in FIG. 11 is shown. All samples showed type A crystallinity, and RE samples showed high crystallinity compared to natural waxy corn starch. In addition, it was confirmed that the crystallinity of RE-AH and RE-EH samples also increased as the acid and enzyme treatment time increased. This is considered to be the result meaning that the crystalline portion is increased through the removal of the amorphous portion of the indigestible dextrin by acid and enzyme treatment.
  • test example 4-4 continuous debranching enzyme And particle size and particle shape of nano-sized indigestible dextrin by acid and enzyme treatment after recrystallization
  • Example 4 The prepared in Example 4 using a particle analyzer (Malvern instrument Ltd. Worceatershire, UK.) The particle size of indigestible dextrin of nano-sized debranching enzyme and recrystallization treated with acid and enzyme was measured, and prepared using a scanning electron microscope (SEM). The particle morphology of indigestible dextrin of nano-sized debranching enzyme and recrystallization treated with acid and enzyme was observed.
  • Acid- and enzyme-treated debranching enzyme and recrystallization-treated nano-sized indigestible dextrin were stained with uranyl acetate and then observed.
  • indigestible dextrin was measured to be about 600 nm and was gradually reduced by acid treatment (RE-AH) and enzyme treatment (RE-EH). It gradually decreased as the acid and enzyme treatment time increased, and the size was measured to be about 150 ⁇ 400 nm.
  • test example 4-5 continuous debranching enzyme and digestion properties of nano-sized indigestible dextrin by acid and enzyme treatment after recrystallization
  • the sample was dispersed in a buffer solution, and the dispersion was analyzed for both heat treatment and non-heat treatment at 100° C. for 15 minutes.
  • the starch dispersion heat-treated at 100° C. for 15 minutes and the non-heat-treated starch dispersion solution were digested in a constant temperature water bath at 37° C. using pancreatin and amyloglucosidase for a total of 120 minutes.
  • ethanol was added to inactivate the digestive enzymes.
  • the glucose (D-glucose) concentration of the solution was measured using a GOD-POD kit.
  • RDS is the glucose content released after 20 minutes digestion
  • SDS the glucose content released during 20-120 minutes
  • RS is the total sugar-RDS-SDS.
  • the indigestible dextrin prepared by the present invention can be usefully used in various fields such as pharmaceuticals, cosmetics, new food materials, food additives and chemical products such as dietary fiber, fat substitute, coating agent, and reinforcing agent.

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Abstract

본 발명은 난소화성 덱스트린을 제조하는 방법에 관한 것으로, 보다 상세하게는 전분 입자에 대한 연속적 탈분지(debranching) 및 재결정화(recrystallization) 공정을 수행하여 나노 크기의 난소화성 덱스트린을 제조하는 방법에 관한 것이다. 본 발명에 따르면, 연속적인 탈분지 효소 및 전분 사슬의 재결정화처리를 통하여 고수율로 저항 전분(RS) 함량이 높고, 열 및 효소 안정성이 우수하며, 고결정성을 갖는 난소화성 덱스트린을 제조할 수 있다. 또한, 연속적인 탈분지 효소 및 재결정화 처리 후, 추가적인 산 처리 내지 효소 처리를 통해 매우 작은 나노 크기의 난소화성 덱스트린을 제조할 수 있다. 나아가, 본 발명에 따라 제조한 난소화성 덱스트린은 식이섬유, 지방대체제, 코팅제, 보강제 등 의약, 화장품, 식품 신소재, 식품 첨가물 및 화학제품 등 다양한 분야에서 효과적으로 활용될 것으로 기대된다.

Description

연속적 탈분지 및 재결정화 처리를 이용한 난소화성 덱스트린의 제조방법
본 발명은 난소화성 덱스트린의 제조방법에 관한 것으로서, 보다 상세하게는 전분 입자에 대한 연속적 탈분지(debranching) 및 재결정화(recrystallization) 공정을 수행하여 나노 크기의 난소화성 덱스트린을 제조하는 방법에 관한 것이다.
전분은 α-1,4-D-glycosidic linkage에 의해 연결된 D-glucose 단위가 거의 선형이며 유연한 폴리머인 아밀로즈(amylose), 및 α-1,6-D-glycosidic linkage에 의해 연결된 선형 사슬이 가지화된 폴리머인 아밀로펙틴(amylopectin)의 두 가지 유형의 다당체(polysaccharide) 분자로 구성된다.
또한, 전분은 식물체에 존재하는 탄수화물로, 인간에게는 주요 에너지 공급원으로 이용되며, 입, 위, 장에서 인체 내 소화 효소 및 산에 의해 분해되어 포도당으로 방출 및 흡수된다. 이러한 전분은 입, 위, 장관에서 흡수되는 속도에 따라 빠르게 소화되는 전분(RDS), 천천히 소화되는 전분(SDS) 및 소화 효소에 의해 소화되지 않는 저항 전분(RS)으로 나뉜다.
최근, 특정 영양소의 과잉섭취로 인한 비만과 순환계 관련 성인병이 급속하게 증가하면서 이를 예방하는 기능성 소재에 대한 연구가 활발히 진행되고 있다. 그 중 1980년 초에 식이섬유와 거의 비슷한 역할을 하는 난소화성 전분이 알려졌고, 1990년 유럽의 EURESTA에서는 효소 저항 전분에 대한 정의를 내리고 본격적인 연구가 진행되어오고 있다. 저항 전분이란 인간의 소장에서 흡수되지 않는 전분이나 전분의 분해산물을 의미한다. 저항 전분은 특히, 체내 소화 효소에 의해 분해 및 흡수가 되지 않고 식이섬유와 유사하게 대장에서 미생물 발효에 의해 분해되어 단쇄 지방산을 생성하고, 대장의 pH를 낮출 뿐 아니라 유해균의 증식 억제 및 유익균의 증식에 도움을 주어 분변량 증가 및 대장암 예방 등 장내 환경을 개선한다고 알려져 있다.
현재까지 전분 내 저항 전분(RS)의 함량을 높이기 위해 화학적, 물리적, 효소적 처리를 이용한 연구들이 보고되고 있다. 현재까지 저항 전분의 종류는 5가지로 분류되고 있다. RS type 1은 효소와 만나기 어려운 전분, RS type 2는 감자, 바나나, 고아밀로즈 옥수수전분과 같은 B type의 결정성을 가진 천연전분을 의미하며, 입자 형태를 유지하고 있지만 가열하면 효소에 대한 저항성이 소실되므로 조리나 가공 식품과 같이 가열 처리하는 식품에 사용할 수 없는 형태이다. 반면 RS type 3은 가열에 의해 호화된 전분이 노화된 것으로 아밀로즈 함량이 높을수록 RS의 수율이 증가한다고 알려져 있다. RS type 4는 화학적 변성에 의해 만들어진 전분으로 효소에 대한 저항성을 가진다. 화학적 변성은 가교결합(Cross-linking), 에스테르화(Esterification), 에테르화(Eterification), 린트너리제이션(Lintnerization), 컨버젼(Conversion)등의 처리를 통해 이루어질 수 있다. 전분 뿐 아니라 전분을 포함하는 곡물 내의 저항 전분의 함량을 증가시키기 위한 연구들이 보고되고 있지만, 여러 문제로 인해 상업적 이용가능성이 떨어지고 있다. 예를 들면, 제조된 저항 전분의 산 및 열 안정성, 효소활성, 수율 등 여러 문제점으로 인해 상업적으로 활용이 어려운 상황이다.
또한, 소비자들의 식품 소재에 대한 이해가 높아짐에 따라 화학적 처리에 대한 거부감이 증가하고 있어, 물리적 처리 또는 효소적 처리를 활용한 연구가 활발하게 진행되고 있다. 물리적 처리는 처리방법이 비교적 간단하고 특별한 첨가물이 없으며, 효소적 처리는 친환경적이고 원하는 특이적 반응 수행이 가능하며 부산물이 적고 처리 후 사용을 위한 정제가 용이한 장점이 있다. 그러나 물리적 처리와 효소적 처리를 각각 단독으로 사용하는 경우에는 지소화성, 난소화성 전분을 증진시키는 효과가 충분하지 못한 단점을 가지고 있다.
이에 종래 저항 전분 함량 증진 기술의 문제점을 해결하기 위한 방안이 절실히 요구되고 있다.
(특허문헌 1) KR1999-009598 A
본 발명은 전술한 종래기술의 문제점을 해결하기 위한 것으로, 본 발명의 일측면은 연속적인 효소처리(탈분지)를 통하여 전분 아밀로펙틴의 a-1,6 glycosidic linkage를 끊어 직쇄상 아밀로즈로 생성하고, 아밀로즈 사슬의 재결정화 처리를 통해 자가조립(self-assembly)을 유도하는 난소화성 덱스트린의 제조방법을 제공하는데 있다.
또한, 본 발명의 다른 측면은 상기 연속적인 탈분지 효소 및 재결정화 처리에 더해 산 처리 내지 효소 처리를 통한 가수분해를 통해 나노 크기의 난소화성 덱스트린의 제조방법을 제공하고자 한다.
본 발명에 따른 난소화성 덱스트린 제조방법은 (a) 전분이 분산된 전분 용액을 준비하는 단계; (b) 상기 전분 용액을 호화시키는 단계; (c) 호화된 상기 전분 용액을 냉각시키는 단계; (d) 냉각된 상기 전분 용액에, 상기 전분의 α-1,6 글리코시드 결합(glycosidic linkage)을 제거하는 탈분지 효소를 첨가하여 탈분지 처리하는 단계; 및 (e) 탈분지 처리되어 생성된 직쇄 구조의 아밀로즈(amylose)가 이중 나선구조로 자가조립되어 재결정화되도록, 탈분지 처리된 상기 전분 용액을 소정의 반응 온도에서 방치하여 재결정화 처리하는 단계;를 포함한다.
또한, 본 발명에 따른 난소화성 덱스트린 제조방법에 있어서, 상기 (a) 단계는, pH 3.5 ~ 6.0의 완충 용액에 전분을 분산시켜 상기 전분 용액을 제조할 수 있다.
또한, 본 발명에 따른 난소화성 덱스트린 제조방법에 있어서, 상기 전분은, 0.1 ~ 40%(w/w)의 농도로 분산될 수 있다.
또한, 본 발명에 따른 난소화성 덱스트린 제조방법에 있어서, 상기 (b) 단계는, 상기 전분 용액을 80 ~ 140℃로 가열하여 호화시킬 수 있다.
또한, 본 발명에 따른 난소화성 덱스트린 제조방법에 있어서, 상기 (c) 단계는, 상기 전분 용액을 30 ~ 70℃로 냉각할 수 있다.
또한, 본 발명에 따른 난소화성 덱스트린 제조방법에 있어서, 상기 탈분지 효소는, 이소아밀라아제(isoamylase), 및 풀루라나아제(pullulanase)로 구성된 군으로부터 선택되는 적어도 하나 이상을 포함할 수 있다.
또한, 본 발명에 따른 난소화성 덱스트린 제조방법에 있어서, 상기 (d) 단계에서, 상기 탈분지 효소는, 0.1 ~ 50%(w/w)의 농도로 첨가될 수 있다.
또한, 본 발명에 따른 난소화성 덱스트린 제조방법에 있어서, 상기 (e) 단계에서, 상기 반응 온도는, 4 ~ 90℃일 수 있다.
또한, 본 발명에 따른 난소화성 덱스트린 제조방법에 있어서, 상기 (e) 단계는, 적어도 24시간 이상 상기 전분 용액을 방치할 수 있다.
또한, 본 발명에 따른 난소화성 덱스트린 제조방법에 있어서, (f) 재결정화 처리된 상기 전분 용액으로부터, 덱스트린을 분리하는 단계; 및 (g) 분리된 상기 덱스트린을 세척하는 단계;를 더 포함할 수 있다.
또한, 본 발명에 따른 난소화성 덱스트린 제조방법에 있어서, (h) 세척된 상기 덱스트린을 40 ~ 60℃의 온도로 가열하여 건조하는 단계;를 더 포함할 수 있다.
또한, 본 발명에 따른 난소화성 덱스트린 제조방법에 있어서, (h) 산성 용액에, 세척된 상기 덱스트린을 첨가하여 가수분해하는 단계;를 더 포함할 수 있다.
또한, 본 발명에 따른 난소화성 덱스트린 제조방법에 있어서, 상기 (h) 단계는, 30 ~ 50℃의 온도에서, 6 ~ 24시간 동안 가수분해할 수 있다.
또한, 본 발명에 따른 난소화성 덱스트린 제조방법에 있어서, (h) 세척된 상기 덱스트린과 알파아밀라아제를 반응시켜 가수분해하는 단계;를 더 포함할 수 있다.
또한, 본 발명에 따른 난소화성 덱스트린 제조방법에 있어서, 상기 (h) 단계는, 상기 알파아밀라아제를 상기 전분 대비 3 ~ 7%로 첨가하고, 30 ~ 50℃의 온도에서, 3 ~ 12시간 동안 가수분해할 수 있다.
본 발명의 특징 및 이점들은 첨부도면에 의거한 다음의 상세한 설명으로 더욱 명백해질 것이다.
이에 앞서 본 명세서 및 청구범위에 사용된 용어나 단어는 통상적이고 사전적인 의미로 해석되어서는 아니 되며, 발명자가 그 자신의 발명을 가장 최선의 방법으로 설명하기 위해 용어의 개념을 적절하게 정의할 수 있다는 원칙에 입각하여 본 발명의 기술적 사상에 부합하는 의미와 개념으로 해석되어야만 한다.
본 발명에 따르면, 연속적인 탈분지 효소 및 전분 사슬의 재결정화처리를 통하여 고수율로 저항 전분(RS) 함량이 높고, 열 및 효소 안정성이 우수하며, 고결정성을 갖는 난소화성 덱스트린을 제조할 수 있다.
또한, 연속적인 탈분지 효소 및 재결정화 처리 후, 추가적인 산 처리 내지 효소 처리를 통해 매우 작은 나노 크기의 난소화성 덱스트린을 제조할 수 있다.
나아가, 본 발명에 따라 제조한 난소화성 덱스트린은 식이섬유, 지방대체제, 코팅제, 보강제 등 의약, 화장품, 식품 신소재, 식품 첨가물 및 화학제품 등 다양한 분야에서 효과적으로 활용될 것으로 기대된다.
도 1a 내지 도 1b는 본 발명에 따른 난소화성 덱스트린의 제조방법의 순서도이다.
도 2는 실시예 1에 따라 연속적인 탈분지 효소 및 재결정화 처리하여 수득한 난소화성 덱스트린의 HPSEC-RI 크로마토그램이다(DE-WMS: 완전히 탈분지화된 찰옥수수전분, DE/RE-D3: 3일간 효소 및 재결정화한 찰옥수수 난소화성 덱스트린, DE/RE-D5: 5일간 효소 및 재결정화한 찰옥수수 난소화성 덱스트린, DE/RE-D7: 7일간 효소 및 재결정화한 찰옥수수 난소화성 덱스트린).
도 3은 실시예 1에 따라 연속적인 탈분지 효소 및 재결정화 처리하여 수득한 난소화성 전분 덱스트린의 X-선 회절 분석기(XRD)를 이용한 결정성을 나타낸 것이다(DE/RE-3D: 3일간 효소 및 재결정화한 찰옥수수 난소화성 덱스트린, DE/RE-5D: 5일간 효소 및 재결정화한 찰옥수수 난소화성 덱스트린, DE/RE-7D: 7일간 효소 및 재결정화한 찰옥수수 난소화성 덱스트린).
도 4는 실시예 1에 따라 연속적인 탈분지 효소 및 재결정화 처리하여 수득한 난소화성 덱스트린의 시차주사열량계(DSC)를 이용한 열적특성을 나타낸 것이다(DE/RE-D3: 3일간 효소 및 재결정화한 찰옥수수 난소화성 덱스트린, DE/RE-D5: 5일간 효소 및 재결정화한 찰옥수수 난소화성 덱스트린, DE/RE-D7: 7일간 효소 및 재결정화한 찰옥수수 난소화성 덱스트린).
도 5는 실시예 1에 따라 연속적인 탈분지 효소 및 재결정화 처리하여 수득한 난소화성 덱스트린의 소화특성(RDS, SDS 및 RS)을 나타낸 것으로, 도 5a는 시료+완충용액를 100℃에서 15분간 처리시의 결과, 도 5b는 시료+완충용액을 열처리하지 않은 경우의 결과를 나타낸다.
도 6은 실시예 1에 따라 주사전자현미경(SEM)을 이용한 연속적인 탈분지 효소 및 재결정화 난소화성 덱스트린의 입자 형태를 나타낸 것이다(A: 천연찰옥수수전분, B: DE/RE-3D - 3일간 효소 및 재결정화한 찰옥수수 난소화성 덱스트린, C: DE/RE-5D - 5일간 효소 및 재결정화한 찰옥수수 난소화성 덱스트린, D: DE/RE-7D - 7일간 효소 및 재결정화한 찰옥수수 난소화성 덱스트린).
도 7은 실시예 2에 따라 탈분지 효소 및 재결정화 시간에 따른 난소화성 덱스트린의 HPSEC-RI 크로마토그램을 나타낸 것이다.
도 8은 실시예 3에 따라 탈분지 효소 농도 및 재결정화처리에 따른 난소화성 덱스트린의 결정성을 나타낸 것이다(NWRS: 천연 찹쌀 전분의 결정성, 1.0% DR50: 찹쌀 전분을 연속적인 탈분지 효소(1%) 및 재결정화(50℃) 처리한 난소화성 덱스트린의 결정성, 2.5% DR50: 찹쌀 전분을 연속적인 탈분지 효소(2.5%) 및 재결정화(50℃) 처리한 난소화성 덱스트린의 결정성).
도 9는 실시예 3에 따라 탈분지 효소 농도 및 재결정화처리에 따른 난소화성 덱스트린의 열적특성을 나타낸 것이다(Native WRS: 천연 찹쌀전분, 1%-50℃: 찹쌀 전분을 연속적인 탈분지 효소(1%) 및 재결정화(50℃) 처리한 난소화성 덱스트린의 결정성, 2.5%-50℃: 찹쌀 전분을 연속적인 탈분지 효소(2.5%) 및 재결정화(50℃) 처리한 난소화성 덱스트린의 결정성).
도 10은 실시예 3에 따라 탈분지 효소, 재결정화 처리 시간 및 건조조건에 따른 난소화성 덱스트린의 결정성을 나타낸 것이다(A: 50℃ 건조, B: 액체질소 급속냉각 후 동결건조).
도 11은 실시예 4에 따라 난소화성 덱스트린을 산 및 효소처리 시간에 따른 결정성을 나타낸 것이다(NWM:천연찰옥수수전분, RE: 난소화성 덱스트린, RE-AH6, AH12, AH 18, AH24: 6, 12, 18, 24시간 산처리한 난소화성 덱스트린, RE-EH3, EH6, EH9, EH12: 3, 6, 9, 12시간 효소처리한 난소화성 덱스트린).
도 12a 내지 도 12j는 실시예 4에 따라 난소화성 덱스트린을 산 및 효소처리 시간에 따른 입자크기를 나타낸 것이다(NWM:천연찰옥수수전분, RE: 난소화성 덱스트린, RE-AH6, AH12, AH 18, AH24: 6, 12, 18, 24시간 산처리한 난소화성 덱스트린, RE-EH3, EH6, EH9, EH12: 3, 6, 9, 12시간 효소처리한 난소화성 덱스트린).
도 13은 실시예 4에 따라 난소화성 덱스트린을 산 및 효소처리 시간에 따른 입자형태를 나타낸 것이다(A,E: 천연 찰옥수수전분, B,F: 난소화성 덱스트린, C,G: 산처리 난소화성 덱스트린, D,H: 효소처리 난소화성 덱스트린).
도 14는 실시예 4에 따라 난소화성 덱스트린을 산 및 효소처리 시간에 따른 소화특성을 나타낸 것이다(NWM:천연찰옥수수전분, RE: 난소화성 덱스트린, RE-AH6, AH12, AH 18, AH24: 6, 12, 18, 24시간 산처리한 난소화성 덱스트린, RE-EH3, EH6, EH9, EH12: 3, 6, 9, 12시간 효소처리한 난소화성 덱스트린).
다른 식으로 정의되지 않는 한, 본 명세서에서 사용된 모든 기술적 및 과학적 용어들은 본 발명이 속하는 기술 분야에서 숙련된 전문가에 의해서 통상적으로 이해되는 것과 동일한 의미를 가진다. 일반적으로, 본 명세서에서 사용된 명명법은 본 기술 분야에서 잘 알려져 있고 통상적으로 사용되는 것이다.
도 1a 내지 도 1b는 본 발명에 따른 난소화성 덱스트린의 제조방법의 순서도이다.
도 1a 내지 도 1b에 도시된 바와 같이, 본 발명에 따른 난소화성 덱스트린 제조방법은 전분이 분산된 전분 용액을 준비하는 단계(S100), 전분 용액을 호화시키는 단계(S200), 호화된 전분 용액을 냉각시키는 단계(S300), 냉각된 전분 용액에, 전분의 α-1,6 글리코시드 결합(glycosidic linkage)을 제거하는 탈분지 효소를 첨가하여 탈분지 처리하는 단계(S400), 및 탈분지 처리되어 생성된 직쇄 구조의 아밀로즈(amylose)가 이중 나선구조로 자가조립되어 재결정화되도록, 탈분지 처리된 전분 용액을 소정의 반응 온도에서 방치하여 재결정화 처리하는 단계(S500)를 포함한다.
본 발명은 연속적인 효소처리(탈분지) 및 전분 사슬의 재결정화 과정을 이용하여 난소화성 덱스트린을 제조하는 방법에 관한 것으로, 구체적으로 전분의 α-1,6-D-glycosidic linkage를 제거할 수 있는 탈분지 효소를 이용하여 단쇄형 아밀로즈(linear amylose)를 생성함과 동시에 연속적으로 전분 사슬의 재결정화를 유도하는 난소화성 덱스트린을 제조한다.
구체적으로, 본 발명에 따른 난소화성 덱스트린 제조방법은 전분 용액 준비 단계(S100), 호화 단계(S200), 냉각 단계(S300), 탈분지 처리 단계(S400), 및 재결정화 처리 단계(S500)를 포함한다.
전분 용액 준비 단계(S100)에서는 전분이 분산된 전분 용액을 준비한다. 여기서, 전분은 일반 옥수수 전분, 찰옥수수 전분, 고아밀로즈 옥수수 전분, 쌀 전분, 찹쌀 전분, 고아밀로즈 쌀 전분, 감자 전분, 찰감자 전분, 고구마 전분, 보리 전분, 찰보리 전분, 콩 전분, 밀 전분, 찰밀 전분, 사고 전분, 아마란스 전분, 타피오카 전분, 수수 전분, 찰수수 전분, 바나나 전분, 녹두 전분, 동부 전분 및 쿠즈 전분으로 이루어진 군으로부터 선택될 수 있다. 이러한 전분을 완충 용액 또는 수용액에 분산시켜 전분 용액을 제조하는데, 완충 용액의 pH는 3.5 ~ 6.0일 수 있다. 또한, 전분 용액에서 전분의 농도는 0.1 ~ 40%(w/w)일 수 있다.
호화 단계(S200)는 전분 용액을 가열하여 그 성질 내지 구조를 변화시키는 공정이다. 여기서, 전분 용액을 80 ~ 140℃로 가열하여 호화시킬 수 있다.
냉각 단계(S300)는 가열된 상기 전분 용액을 냉각시키는 공정으로서, 일례로 전분 용액을 30 ~ 70℃로 냉각할 수 있다.
탈분지 처리 단계(S400)는 호화되고 냉각된 전분 용액에 탈분지 효소를 첨가하는 공정이다. 탈분지 효소의 첨가에 의해 전분, 특히 그 주요 성분인 아밀로펙틴(amylopectin)의 α-1,6 글리코시드 결합(glycosidic linkage)이 제거되고, 이에 의해 직쇄 구조의 아밀로즈(amylose)가 생성된다. 이러한 탈분지 효소는 이소아밀라아제(isoamylase), 및 풀루라나아제(pullulanase)로 구성된 군으로부터 선택되는 적어도 하나 이상을 포함할 수 있다. 또한, 탈분지 효소는 0.1 ~ 50%(w/w)의 농도로 첨가될 수 있다. 탈분지 효소의 첨가에 따른 효소가수분해 반응은 대략 1시간 내지 72시간이 소요될 수 있다.
재결정화 처리 단계(S500)는 탈분지 처리되어 생성된 직쇄 구조의 아밀로즈의 재결정을 유도하는 공정이다. 여기서, 탈분지 처리된 전분 용액을 소정의 반응 온도에서 방치한다. 이때, 반응 온도는 4 ~ 90℃일 수 있다. 또한, 재결정화 처리 기간은 적어도 24시간 이상, 바람직하게는 1일 내지 30일이 적합하다. 여기서, 재결정화 처리 기간은 탈분지 효소 첨가 이후 전분 용액을 방치하는 시간을 의미한다. 이러한 과정에서, 상기 직쇄 구조의 아밀로즈들이 이중 나선구조로 자기조립되어 재결정화된다. 탈분지 및 재결정화 처리 기간은 덱스트린의 수율에 영향을 미치는데, 그 기간이 길수록 수율이 증가한다. 또한, 직쇄 구조의 아밀로즈들이 소정의 반응 온도에서 이중 나선구조로 단단하게 자기조립되면서 결정성이 증가하는데, 본래 전분 용액의 소재 전분과 유사한 결정성에 다다를 수 있다. 또한, 자가조립된 재결정은 열에 안정한 형태의 결정으로 생성되어, 높은 열 안정성과 호화 엔탈피를 가질 수 있다.
종합적으로, 본 발명에 따르면, 연속적인 탈분지 효소 및 전분 사슬의 재결정화처리를 통하여 고수율로 저항 전분(RS) 함량이 높고, 열 및 효소 안정성이 우수하며, 고결정성을 갖는 난소화성 덱스트린을 제조할 수 있다.
한편, 도 1b를 참고로, 본 발명에 따른 난소화성 덱스트린 제조방법은, 재결정화 처리 단계 이후에, 덱스트린 분리 단계(S600), 및 세척 단계(S700)를 더 포함할 수 있다.
덱스트린 분리 단계(S600)는 재결정화 처리된 전분 용액으로부터 덱스트린을 분리하는 공정이다. 여기서, 원심분리 등의 방법으로 덱스트린을 분리해낼 수 있다.
세척 단계(S700)는 전분 용액으로부터 분리된 덱스트린을 세척하는 공정으로서, 재결정화에 참여하지 않은 전분 사슬, 및 탈분지 효소 등을 제거한다. 일례로, 증류수를 이용해 수회에 걸쳐 덱스트린을 세척할 수 있다.
한편, 세척 후에는, 건조 단계를 추가적으로 진행할 수 있다. 건조 방법의 예로, 열풍건조, 동결건조, 감압건조, 자연건조, 진공건조, 매몰건조, 스프레이건조법 등을 들 수 있다. 전조 방법에 특별한 제한은 없지만, 건조 방법에 따라 덱스트린의 최종 결정성, 즉 전분 용액의 소재 전분의 결정성에 도달하는 재결정화 시간이 달라질 수 있는바, 세척된 덱스트린을 40 ~ 60℃의 온도로 가열하여 건조(가열건조법)함으로써, 재결정화 시간을 단축할 수 있다. 다만, 그 건조 방법이 반드시 상기 가열건조법에 한정되는 것은 아니다. 이러한 과정을 거쳐 제조되는 난소화성 덱스트린의 입자 크기는 평균 550 ~ 650 ㎚로서, 나노 크기를 가진다.
한편, 상기 탈분지 효소 및 재결정화 처리에 의해 제조된 난소화성 덱스트린의 입자 크기는, 상기 세척 후 건조 단계 사이에, 산 처리 내지 효소 처리 단계를 수행하여, 더 감소될 수 있다. 산 처리 내지 효소 처리 단계의 추가적 수행으로 인해, 평균 150 ~ 440 ㎚ 크기의 난소화성 덱스트린의 제조가 가능하다. 또한, 난소화성 덱스트린의 결정성, 열 안정성, 엔탈피, RS 함량도 증대된다.
여기서, 산 처리 단계는 세척된 상기 덱스트린을 산성 용액에 첨가하여 가수분해하는 공정이다. 이때, 덱스트린을 산성 용액으로 30 ~ 50℃에서 6 ~ 24시간 동안 가수분해시킬 수 있다. 산성 용액의 일례로는 황산용액을 들 수 있지만, 반드시 이에 한정되는 것은 아니다. 이후, NaOH를 이용하여 pH를 조정하여 세척할 수 있다. 이때, pH는 5.5 ~ 6.5로 조정될 수 있고, 증류수를 이용해 수차례 세척한 후, 상기 건조 방법으로 건조할 수 있다.
한편, 효소 처리 단계는 세척된 상기 덱스트린과 알파아밀라아제를 반응시켜 가수분해하는 공정이다. 이때, 알파아밀라아제를 전분 대비 3 ~ 7%로 첨가하고, 30 ~ 50℃의 온도에서, 3 ~ 12시간 동안 가수분해할 수 있다. 여기서, 가수분해 전에, 세척된 덱스트린을 5 ~ 15분 동안 80 ~ 120℃로 가열하고, NaOH를 이용하여 pH를 조정할 수 있다. 이때, pH는 6.0 ~ 7.5로 조정될 수 있다. 알파아밀라아제 반응 후, 덱스트린에 대해 세척 및 건조 단계를 수행할 수 있다.
이하에서는 실시예 및 실험예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 예시하기 위한 것으로, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되는 것으로 해석되지 않는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에게 있어서 자명할 것이다. 따라서 본 발명의 실질적인 범위는 첨부된 청구항들과 그것들의 등가물에 의하여 정의된다고 할 것이다.
실시예. 탈분지 효소 및 재결정화처리를 통한 난소화성 덱스트린의 제조
다양한 전분을 사용하여 연속적인 효소 처리(탈분지화) 및 재결정화 처리하여 난소화성 덱스트린을 제조하였다. 연속적인 효소처리에 이소아밀라아제(isoamylase, megazyme) 및 플루라나아제(pullulanase)를 사용하였다.
실시예 1.
찰옥수수전분 (waxy maize starch, samyang genex, korea) 20g을 pH가 4.5인 0.01M의 아세트산나트륨완충용액 100mL으로 슬러리를 제조하였다. 상기 슬러리를 100℃의 온도에서 호화시켰다. 호화된 슬러리는 50℃로 진탕항온수조에서 효소반응을 진행하였다. 이소아밀라아제(isoamylase)는 전분중량대비 0.5% (75 Unit/mL) 첨가하여 탈분지화 및 재결정화를 7일간 진행하였다. 3일, 5일 및 7일간 탈분지 및 재결정화한 전분 용액은 3500rpm에서 15분간 원심분리하고, 재결정화에 참여하지 않은 전분 사슬 및 탈분지 효소의 제거를 위해 증류수로 3번 세척하였다. 이후 시료들은 동결건조하였고, 동결 건조 후 막자사발을 이용하여 곱게 갈아 채를 이용하여 수득하였다.
시험예 1-1. 탈분지 효소 및 재결정화처리 난소화성 덱스트린의 수율
실시예 1에 따라 제조된 탈분지 효소(isoamylase) 및 재결정화 처리 난소화성 덱스트린의 수율은 효소 및 재결정화 시간에 따라 수득된 건물 중량을 천연전분 20g에 대한 건물 중량값으로 수율을 나타내었다.
Figure PCTKR2021003064-appb-img-000001
연속적인 탈분지 효소 및 재결정화 처리하여 얻은 난소화성 덱스트린의 수율은 표 1에 나타내었다. 탈분지 효소 및 재결정화 처리 시간에 따라 수율에서 차이를 보였다. 탈분지 효소 및 재결정화 처리 일수가 증가함에 따라 수율이 증가하는 경향을 보였고, 3일차에 39.28%, 5일차에 51.24%, 7일차에 70.43%를 나타내었다. 연속적인 탈분지 효소반응에 의해 탈분지화된 직쇄형 아밀로즈들이 자가조립하여 이중나선구조로 결합(재결정화)되어 시간이 지남에 따라 수율이 증가하는 것으로 사료된다.
Samples Yields (%)
DE/RE-3D 39.28 ± 1.16 a
DE/RE-5D 51.24 ± 0.88 b
DE/RE-7D 70.43 ± 1.11 c
DE/RE-3D : 3일간 효소 및 재결정화한 찰옥수수 난소화성 덱스트린DE/RE-5D : 5일간 효소 및 재결정화한 찰옥수수 난소화성 덱스트린
DE/RE-7D : 7일간 효소 및 재결정화한 찰옥수수 난소화성 덱스트린
시험예 1-2. 탈분지 효소 및 재결정화에 따른 난소화성 덱스트린의 사슬구조 변화
실시예 1에 따라 제조된 탈분지 효소 및 재결정화 3, 5 및 7일 처리한 난소화성 덱스트린의 사슬구조 변화는 HPSEC-RI(Agilent 1260)를 이용하여 확인하였다. 컬럼은 TSK gel 3000을 사용하였고, 이동상은 0.15M NaNO 3 를 사용하여 0.5mL/min의 속도로 흘려주었다. 컬럼의 온도는 50도, RI detector의 온도는 35도에서 분리, 분석하였다. 분자량 측정을 위해 사용한 표준물질로는 풀루란(Pullulan standard, 47,300, 22,800, 11,800, 5,900, 667)을 사용하였다.
연속적인 탈분지 효소 및 재결정화 처리한 난소화성 덱스트린의 분자량 측정은 도 2에 나타내었다. 완전히 탈분지화된 찰옥수수전분과 비교하였을 때, 탈분지 및 재결정화처리 시간이 증가할수록 저분자화된 전분 사슬의 분포가 증가하는 것으로 확인하였다. 연속적인 탈분지 효소 및 재결정화 처리 3일차의 시료에 대한 전분 사슬의 분포를 보면 Fr.I 부분이 많은 것으로 보아 탈분지화되지 않은 부분이 많이 보였다. 5일차에는 3일차의 시료보다는 Fr.I의 부분이 감소하고 Fr.II 및 Fr.III 부분이 증가한 것으로 보아 탈분지화는 3일차보다 많이 진행되었다. 7일차 시료의 경우에는 Fr.I의 부분이 완전히 탈분지화된 찰옥수수전분과 비슷한 것으로 보아 탈분지화는 완전히 진행된 것으로 보이고, Fr.II 및 Fr.III의 저분자화된 부분이 증가하였다. 이는 저분자화된 전분 사슬(탈분지 덱스트린)이 천천히 자가조립하여 재결정화에 참여한 것으로 보인다. 연속적인 효소 및 재결정화 처리시간에 따라 Fr.II와 Fr.III의 분포가 증가함에 따라 수율도 같이 증가하여, 연속적인 효소처리에 의해 탈분지화된 저분자의 직쇄형의 아밀로즈들의 참여가 수율에도 영향을 미치는 것으로 확인하였다.
시험예 1-3. 탈분지 효소 및 재결정화에 따른 난소화성 덱스트린의 결정성
실시예 1에 따라 제조된 탈분지 효소 및 재결정화처리 난소화성 덱스트린을 X-선 회절 분석기(XRD)를 이용하여 결정성을 측정하였다. 40kV, 30mA 의 조건에서 1.5℃/min 의 속도로 5°에서 35°까지 측정하였다.
도 3에서 찰옥수수전분 및 연속적인 탈분지 효소 및 재결정화처리 시간에 따라 수득된 난소화성 덱스트린의 결정성을 확인하였다. 천연 찰옥수수전분의 결정성은 전형적인 A-type의 결정성을 보였으며, 탈분지 효소 및 재결정화 처리한 시료의 경우에도 찰옥수수전분과 같은 A-type의 결정성을 나타내었다. 또한, 찰옥수수전분의 결정성(relative crystallinity)보다 연속적인 효소 및 재결정화처리에 의해 제조된 난소화성 덱스트린의 결정성이 높아졌으며, 처리 시간에 따라 증가하는 경향을 보였다. 이는 탈분지 효소처리된 직쇄형 아밀로즈들이 일정 온도(50℃)에서 이중나선구조로 단단하게 자가조립되면서 결정성의 증가와 A-type의 결정성을 보이는 것으로 확인하였다. 또한, 결정성의 증가는 Fr.II 및 Fr.III의 저분자화된 전분 사슬의 이중결합 재결정화(자가조립)와 관련이 있는 것으로 확인하였다.
시험예 1-4. 탈분지 효소 및 재결정화에 따른 난소화성 덱스트린의 열적특성
실시예 1에 따라 제조된 탈분지 효소 및 재결정화처리한 난소화성 덱스트린의 열적특성은 시차주사열량계(DSC, seico)를 이용하여 측정하였다. 시료 3.0mg을 DSC 팬(pan)에 담은 후 증류수 7.0mg을 가하여 밀봉하였다. 밀봉된 팬은 4℃ 냉장고에서 12시간 이상 방치하여 수분과 시료 사이에 평형을 이루게 하였다. DSC 분석 조건은 20 ~ 150℃, 5℃/min 이었다.
도 4 및 표 2에서는 연속적인 탈분지 효소 및 재결정화처리한 난소화성 덱스트린의 열적특성을 나타내었다. 찰옥수수전분의 경우 To(호화개시온도) 57.40℃, Tp(호화피크온도) 68.97℃ 및 Tc(호화종결온도) 79.27℃로 측정되었다. 탈분지 효소 및 재결정화처리한 시료의 경우에는 찰옥수수전분보다 더 높은 호화개시온도(86.97 ~ 89.87℃), 호화피크온도(110.93 ~ 113.50℃) 및 호화종결온도(133.23 ~ 134.83℃)를 보였다. ΔH(호화엔탈피)의 경우에도 찰옥수수의 경우 12.84 J/g이었고, 탈분지 효소 및 재결정화 3일, 5일 및 7일 처리한 난소화성 덱스트린의 경우, 각각 17.97, 18.92, 20.64 J/g으로 찰옥수수전분보다 높은 호화엔탈피를 보였다. 이는 연속적인 탈분지 효소 및 재결정화처리에 의해 이중나선구조로 자가조립된 직쇄형 아밀로즈들이 열에 안정한 형태의 crystal을 생성하여 높은 열 안정성과 호화엔탈피를 가지는 것으로 보인다.
Figure PCTKR2021003064-appb-img-000002
시험예 1-5. 탈분지 효소 및 재결정화에 따른 난소화성 덱스트린의 소화특성
실시예 1에 따라 제조된 탈분지 효소 및 재결정화 처리한 난소화성 덱스트린의 소화특성은 Englyst 등의 방법 (Classification and measurement of nutritionally inportant starch fraction, Eur J Clin Nutr. 1992, 46, Suppl 2:S33-50)을 약간 수정하여 RDS, SDS, RS 함량을 측정하였다. 전분의 호화는 소화율에 큰 영향을 미치기 때문에 호화되지 않은 시료(효소 및 재결정화 처리하여 제조된 난소화성 덱스트린)의 소화율과 호화한 후의 소화율을 분석하였다. 실험을 위해 시료를 완충용액에 분산하였고, 상기 분산액을 100℃에서 15분간 열처리한 것과 열처리하지 않은 것 모두 분석하였다. 상기 100℃에서 15분간 열처리한 전분 분산액과 열처리하지 않은 전분 분산액을 37℃ 항온 수조에서 판크레아틴(pancreatin)과 아밀로글루코시다아제(amyloglucosidase)를 사용하여 총 120분까지 소화시켰다. 소화과정 중 20분, 120분에 일정량의 시료를 취한 후 에탄올을 첨가하여 소화효소를 불활성화시켰다. GOD-POD kit을 사용하여 상기 용액의 포도당(D-glucose) 농도를 측정하였다. RDS는 20분 소화 후 방출되는 포도당 함량, SDS: 20~120분 동안 방출되는 포도당 함량, RS는 총당-RDS-SDS을 의미한다.
도 5a 내지 도 5b 및 표 3 내지 표 4에 연속적인 탈분지 효소 및 재결정화 시간에 따른 in vitro 소화율을 측정한 결과이다. 탈분지 효소 및 재결정화 시간에 따라 제조된 시료를 100℃에서 15분간 열처리한 전분(도 5a, 표 3)과 열처리 하지 않은 전분(도 5b, 표 4)의 소화특성을 측정하였다.
열처리하지 않은 경우 RS 함량이 3일차 72.04%에서 7일차 83.24%로 효소 및 재결정화 시간이 증가함에 따라 소화효소에 대한 저항이 증가하여 RS 함량이 증가하였고, 반면, RDS 및 SDS의 함량은 감소하였다. 이러한 경향은 탈분지 효소 및 재결정화 시간이 증가함에 따라 XRD의 결정성 및 DSC 열적특성과도 비슷한 경향을 보였다. XRD 결정성이 증가하면서 시료 내 소화효소에 저항을 가지는 결정성 부분의 증가하고, 또한 DSC 열적특성에서도 호화엔탈피의 증가로 인해 시료 내 열 및 효소에 저항을 가지는 crystal이 증가하여 RS의 함량이 증가한 것으로 사료된다.
열처리한 경우 RS 함량이 3일차 25.05%에서 7일차 42.99%로 높아지는 것을 확인하였으며, 이는 천연 찰옥수수전분과 비교하여 33.3% 증가하였다. 열처리하지 않은 시료와 비교했을 때, 다소 낮은 RS의 함량을 보였다. 이는 100°C의 열처리 과정 중 일부 난소화성 덱스트린의 호화에 의해 소화효소의 반응성이 높아져 RDS 및 SDS의 함량이 증가하고, RS의 함량은 감소한 것으로 사료된다. 연속적인 탈분지 효소 및 재결정화 시간이 지남에 따라 RS 함량이 높아진 것은 열에 대한 안정성 및 결정성의 증가로 인해 소화효소에 저항성이 증가한 것으로 사료된다.
Sample RDS (%) SDS (%) RS (%)
Waxy maize starch 69.33 ± 2.44 a 20.98 ± 2.78 a 9.69 ± 0.47 c
DE/RE-3D 48.78± 1.24 b 26.16 ± 1.62 a 25.05 ± 0.65 b
DE/RE-5D 42.30± 2.31 c 26.60 ± 7.47 a 31.11 ± 5.21 b
DE/RE-7D 47.73± 1.64 b 9.28 ± 1.36 b 42.99 ± 0.81 a
Sample RDS (%) SDS (%) RS (%)
Waxy maize starch 38.95 ± 2.00 a 26.84 ± 3.54 a 34.21± 1.76 d
DE/RE-3D 15.61 ± 1.48 b 12.35 ± 1.30 b 72.04 ± 1.70 c
DE/RE-5D 9.93 ± 0.88 c 11.11± 2.16 b 78.96 ± 1.87 b
DE/RE-7D 6.58 ±0.84 d 10.18± 205 b 83.24 ± 1.56 a
시험예 1-6. 탈분지 효소 및 재결정화에 따른 난소화성 덱스트린의 입자 형태
실시예 1에 따라 제조된 탈분지 효소 및 재결정화 난소화성 덱스트린의 입자 형태 관찰은 주사전자현미경 (SEM)을 이용하여 확인하였으며, 그 결과는 도 6에 나타내었다. 천연 찰옥수수전분의 경우와 비교하였을 때, 탈분지 효소 및 재결정화처리 시간에 따라 제조된 난소화성 덱스트린 입자의 형태가 변하는 것을 확인하였다. 3일차 시료의 경우 표면 형태는 천연 찰옥수수 전분과 유사하게 둥글고 매끄러운 표면을 가지는 것으로 확인하였고, 탈분지 효소 및 재결정화 처리시간이 지남에 따라 표면이 불균일하고 입자가 각진 형태를 보였다. 또한, 7일차의 시료의 경우 기공이 많이 보이며, 매우 불균일한 형태의 입자가 관찰되었다. 탈분지 효소 및 재결정화 처리 시간에 따른 형태의 변화가 제조된 난소화성 덱스트린의 결정성, 열 안정성 및 효소저항성이 증가하는 것으로 사료된다.
실시예 2.
찰옥수수전분 (waxy maize starch, samyang genex, korea) 20g을 증류수에 넣어 20%(w/v)의 전분 슬러리를 제조하였다. 제조한 전분 슬러리에 HCl을 첨가하여 pH를 4.5로 제조하여 100℃의 온도에서 호화시켰다. 호화된 전분 용액은 50℃로 진탕항온수조에서 탈분지 효소반응을 진행하였다. 탈분지 효소는 풀루라나아제(pullulanase)를 전분중량대비 0.1% 내지 50% (25 Unit/mL 내지 12500 Unit/mL) 첨가하여 탈분지 및 재결정화를 7일간 진행하였다. 3일, 5일 및 7일간 탈분지 효소 및 재결정화한 전분 용액은 3500rpm에서 15분간 원심분리하고, 재결정화에 참여하지 않은 전분 사슬 및 탈분지 효소의 제거를 위해 증류수로 3번 세척하였다. 이후 시료들은 동결건조하였고, 동결건조 후 막자사발을 이용하여 곱게 갈아 채를 이용하여 수득하였다.
시험예 2-1. 탈분지 효소 및 재결정화에 따른 난소화성 덱스트린의 수율
실시예 2에 따라 제조된 탈분지 효소 및 재결정화 처리 난소화성 덱스트린의 수율은 탈분지 효소 및 재결정화 시간에 따라 수득된 건물 중량을 천연전분 20g에 대한 건물 중량값으로 수율을 나타내었다.
Figure PCTKR2021003064-appb-img-000003
연속적인 탈분지 효소(pullulanase) 및 재결정화 처리하여 얻은 난소화성 덱스트린의 수율은 표 5에 나타내었다. 탈분지 효소의 농도 및 재결정화 처리 시간에 따라 수율에서 차이를 보였다. 탈분지 효소 농도 및 재결정화 처리 일수가 증가함에 따라 수율이 증가하는 경향을 보였다. 이는 연속적인 탈분지 효소반응에 의해 탈분지화된 직쇄형 아밀로즈들이 이중나선구조로 자가조립하여 재결정화되어 시간이 증가함에 따라 수득되는 난소화성 덱스트린의 양이 증가하는 것으로 생각된다.
Figure PCTKR2021003064-appb-img-000004
시험예 2-2. 탈분지 효소 및 재결정화에 따른 난소화성 덱스트린의 사슬구조 변화
실시예 2에 따라 제조된 탈분지 효소 및 재결정화 3, 5 및 7일 처리한 난소화성 덱스트린의 사슬구조 변화는 HPSEC-RI (Agilent 1260)를 이용하여 확인하였다. 컬럼은 TSK gel 3000을 사용하였고, 이동상은 0.15M NaNO 3 를 사용하여 0.5mL/min의 속도로 흘려주었다. 컬럼의 온도는 50도 RI detector의 온도는 35도에서 분리, 분석하였다. 분자량 측정을 위해 사용한 표준물질로는 풀루란(Pullulan standard, 47,300, 22,800, 11,800, 5,900, 667)을 사용하였다.
연속적인 탈분지 효소 및 재결정화 처리한 난소화성 덱스트린의 분자량 측정은 도 7에 나타내었다. 완전히 탈분지화된 찰옥수수전분과 비교하였을 때, 탈분지 효소 농도가 증가함에 따라 저분자화된 전분사슬(탈분지 덱스트린)의 분포가 증가하는 것으로 확인하였다.
실시예 3.
찹쌀전분 (waxy rice starch) 10g을 pH가 4.5인 0.01M의 아세트산나트륨완충용액 100mL으로 슬러리를 제조하였다. 상기 슬러리를 100℃의 온도에서 호화시켰다. 호화된 슬러리는 50℃로 진탕항온수조에서 탈분지 효소반응을 진행하였다. 이소아밀라아제는 전분중량대비 1% 내지 2.5% (150 내지 375 Unit/mL) 첨가하여 탈분지화 및 재결정화를 21일간 진행하였다.
시험예 3-1. 연속적인 탈분지 효소 및 재결정화 후 건조방법
상기 실시예 3에서 탈분지 효소 및 재결정화 후 건조는 전체 전분 용액을 1) 50℃에서 건조 및 2) 액체질소로 급속냉동하여 동결건조하는 방법을 이용하여 건조시켰다. 건조 후 막자사발을 이용하여 곱게 갈아 채를 이용하여 수득하였다.
시험예 3-2. 연속적인 탈분지 효소 및 재결정화에 따른 난소화성 덱스트린의 결정성
실시예 3에 따라 제조된 탈분지 효소 및 재결정화처리 난소화성 덱스트린을 X-선 회절 분석기(XRD)를 이용하여 결정성을 측정하였다. 40kV, 30mA 의 조건에서 1.5℃/min 의 속도로 5°에서 35°까지 측정하였다.
도 8에서 찹쌀전분과 연속적인 탈분지 효소 농도에 따라 재결정화처리하여 수득된 난소화성 덱스트린의 결정성을 확인하였다. 천연 찹쌀전분의 결정성은 전형적인 A-type의 결정성을 보였으며, 탈분지 효소 농도가 증가함에 따라 결정성이 증가하는 경향을 보였다. 이는 효소 농도가 증가함에 따라 탈분지화의 가속화가 일어나 빠르게 직쇄형 아밀로즈들을 생성하였고, 일정 온도(50℃)에서 이중나선구조로 단단하게 자가조립되면서 결정성의 증가와 A-type의 결정성을 보이는 것으로 확인하였다.
도 10에서는 연속적인 탈분지 효소 및 재결정화 처리시간 및 건조방법에 따라 결정성의 변화를 나타내었다. 연속적인 탈분지 효소 및 재결정화 처리시간에 따라 결정성이 증가하는 경향을 보였다. 50℃ 가열건조법을 통해 제조된 시료의 결정성은 재결정화 2일차부터 전형적인 A-type의 결정성을 보였으며, 연속적인 탈분지 효소 및 재결정화 시간이 증가함에 따라 결정성도 증가하는 경향을 보였다. 액체질소를 이용하여 급속냉각 후 동결건조한 시료의 결정성은 탈분지 효소 및 재결성화 21일차에 A-type의 결정성을 나타내었으며, 10일차 시료까지는 무정형(amorphous) 부분이 많은 B-type의 결정성을 보였다.
시험예 3-3. 연속적인 탈분지 효소 및 재결정화에 따른 난소화성 덱스트린의 열적특성
실시예 3에 따라 제조된 탈분지 효소 및 재결정화처리 난소화성 덱스트린의 열적특성은 시차주사열량계(DSC, seico)를 이용하여 측정하였다. 시료 3.0mg을 DSC 팬(pan)에 담은 후 증류수 7.0mg을 가하여 밀봉하였다. 밀봉된 팬은 4℃ 냉장고에서 12시간 이상 방치하여 수분과 시료 사이에 평형을 이루게 하였다. DSC 분석 조건은 20 ~ 150℃, 5℃/min 이었다.
도 9에서는 연속적인 탈분지 효소 농도에 따라 재결정화처리한 시료의 열적특성을 나타내었다. 천연 찹쌀전분의 경우 탈분지 효소 농도에 따라 재결정화 처리한 시료보다 낮은 열 안정성을 나타내었다. 탈분지 효소 농도가 증가함에 따라 재결정화되어 생성된 시료의 열 안정성이 높아지는 경향을 보였다. 이는 탈분지 효소의 농도 증가에 따라 탈분지화를 가속화하여 직쇄상의 아밀로즈를 더 빠르게 생성하였고, 따라서 직쇄상 아밀로즈의 이중나선구조 자가조립으로 재결정화 처리가 더 가속화되어 높은 열 안정성을 가지는 것으로 사료된다.
실시예 4. 연속적인 탈분지효소 및 재결정화 후 산 및 효소처리에 의한 나노사이즈 난소화성 덱스트린의 제조
찰옥수수전분 (waxy maize starch, samyang genex, korea) 20g을 pH가 4.5인 0.01M의 아세트산나트륨완충용액 100mL으로 슬러리를 제조하였다. 상기 슬러리를 100℃의 온도에서 호화시켰다. 호화된 슬러리는 50℃로 진탕항온수조에서 효소반응을 진행하였다. 플루라나아제(pullulanase)는 전분중량대비 0.5% 내지 10% (75 내지 1500 Unit/mL) 첨가하여 탈분지화 및 재결정화를 7일간 진행하였다. 3일, 5일 및 7일간 탈분지 및 재결정화한 전분 용액은 3500rpm에서 15분간 원심분리하고, 재결정화에 참여하지 않은 전분 사슬 및 탈분지효소의 제거를 위해 증류수로 3번 세척하였다. 이후 시료들은 1) 산처리 2) 효소처리를 이용하여 나노사이즈의 난소화성 덱스트린을 제조하였다. 1) 세척한 난소화성 덱스트린을 3.16M의 황산용액으로 40도에서 6시간 내지 24시간 동안 가수분해시켰다. 이 후 NaOH를 이용하여 pH 6.0으로 조정하여 증류수로 3번 세척하였다. 세척한 시료는 동결건조하여 실험에 사용하였다. 2) 세척한 난소화성 덱스트린을 10분간 100℃에서 가열하고 NaOH를 이용하여 pH 6.9로 조정하였다. 이 후 알파아밀라아제를 전분대비 5% 첨가한뒤 37℃에서 3시간 내지 12시간동안 가수분해하였다. 가수분해 후 증류수로 3번 세척하고 동결건조하여 실험에 사용하였다.
시험예 4-1. 연속적인 탈분지효소 및 재결정화 후 산 및 효소처리에 의한 나노사이즈 난소화성 덱스트린의 수율
실시예 4에 따라 제조된 탈분지효소 및 재결정화 처리 난소화성 덱스트린의 수율은 탈분지효소 및 재결정화 시간에 따라 수득된 건물 중량을 천연전분 20g에 대한 건물 중량값으로 수율을 나타내었다.
Figure PCTKR2021003064-appb-img-000005
연속적인 탈분지효소(pullulanase) 및 재결정화 처리하여 얻은 난소화성 덱스트린의 수율은 표 6에 나타내었다.
연속적인 탈분지효소 및 재결정화를 통해 7일간 제조된 RE의 경우에는 79.28%로 높은 수율을 나타내었다. 하지만, 7일간 제조된 RE를 산처리한 RE-AH 시료의 경우 가수분해 시간이 증가함에 따라 수율이 낮아짐을 확인하였고, 7일간 제조된 RE를 효소처리한 RE-EH 시료 또한 같은 경향을 나타내었다. 이는 산처리 및 효소처리에 의해 7일간의 탈분지효소 및 재결정화를 통해 제조된 RE(난소화성 덱스트린)의 비결정성(amorphous) 부분이 제거되어 수율이 낮아지는 것으로 사료된다.
Samples Hydrolyzed time (hr) Yields (%)
RE - 79.28 ± 1.39 a
RE-AH 6 71.29 ± 2.38 c
12 65.83 ± 0.56 d
18 60.86 ± 1.83 e
24 58.43 ± 0.94 e
RE-EH 3 75.87 ± 0.24 b
6 71.62 ± 0.60 c
9 68.25 ± 0.75 d
12 67.37 ± 1.42 d
시험예 4-2. 연속적인 탈분지효소 및 재결정화 후 산 및 효소처리에 의한 나노사이즈 난소화성 덱스트린의 열적특성
실시예 4에 따라 제조된 산 및 효소처리한 탈분지효소 및 재결정화처리 나노사이즈의 난소화성 덱스트린의 열적특성은 시차주사열량계(DSC, seico)를 이용하여 측정하였다. 시료 3.0mg을 DSC 팬(pan)에 담은 후 증류수 7.0mg을 가하여 밀봉하였다. 밀봉된 팬은 4℃ 냉장고에서 12시간 이상 방치하여 수분과 시료 사이에 평형을 이루게 하였다. DSC 분석 조건은 20 ~ 150℃, 5℃/min 이었다.
표 7에서는 산 및 효소처리한 나노사이즈의 난소화성 덱스트린의 열적 특성을 나타내었다. 난소화성 덱스트린 (RE)의 경우에 천연 찰옥수수전분에 비하여 높은 열안정성을 나타내었다. 난소화성 덱스트린을 산처리(RE-AH) 및 효소처리(RE-EH)하여 열적특성을 처리한 결과 열 안정성이 RE에 비해 조금 상승하였고, 엔탈피의 경우에 산 및 효소 처리시간이 증가함에 따라 증가하는 경향을 나타내었다. 이는 앞서 수율에서도 언급한 것과 같이 난소화성 덱스트린(RE)을 산 또는 효소처리를 통하여 비결정성(amorphous) 부분이 제거되어 난소화성 덱스트린의 결정성(crystalline) 부분이 증가한 것으로 생각된다.
Samples Hydrolyzed times (h) Melting temperatures (°C) ΔH (J/g)
To Tp Tc
NWM - 58.10 ± 0.67 d 68.77 ± 0.48 e 79.27 ± 0.65 e 12.48 ± 0.36 g
RE - 81.51 ± 1.27 c 112.77 ± 1.04 cd 129.41 ± 1.16 d 21.73 ± 1.10 f
RE-AH 6 82.07 ± 0.62 bc 113.53 ± 1.33 bcd 130.86 ± 1.47 cd 25.80 ± 0.21 de
12 83.28 ± 1.66 abc 114.10 ± 0.69 abc 131.42 ± 0.23 bcd 28.90 ± 0.20 bc
18 82.49 ± 0.74 abc 115.27 ± 0.61 ab 132.09 ± 0.80 bc 30.51 ± 0.66 b
24 83.25 ± 0.87 abc 116.17 ± 0.96 a 134.72 ± 1.54 a 32.63 ± 1.41 a
RE-EH 3 83.73 ± 0.98 ab 111.52 ± 0.57 d 130.85 ± 0.81 cd 24.49 ± 0.52 e
6 82.98 ± 0.74 abc 111.33 ± 0.97 d 131.16 ± 1.04 cd 26.13 ± 0.80 de
9 84.14 ± 0.80 ab 112.75 ± 1.82 cd 133.01 ± 0.08 abc 27.21 ± 0.85 cd
12 84.42 ± 0.64 a 112.96 ± 0.44 cd 133.42 ± 0.53 ab 28.94 ± 1.00 bc
시험예 4-3. 연속적인 탈분지효소 및 재결정화 후 산 및 효소처리에 의한 나노사이즈 난소화성 덱스트린의 결정성
실시예 4에 따라 제조된 산 및 효소처리한 탈분지효소 및 재결정화처리 나노사이즈의 난소화성 덱스트린을 X-선 회절 분석기(XRD)를 이용하여 결정성을 측정하였다. 40kV, 30mA 의 조건에서 1.5℃/min 의 속도로 5°에서 35°까지 측정하였다.
도 11에서 제조된 산 및 효소처리하여 수득한 나노사이즈의 난소화성 덱스트린의 X-선 회절분석을 나타내었다. 모든 시료에서 A타입의 결정성을 나타내었으며, RE 시료의 경우 천연 찰옥수수전분과 비교하였을 때, 높은 결정성을 나타내었다. 또한, RE-AH 및 RE-EH 시료들 또한 산 및 효소처리 시간이 증가함에 따라 결정성이 높아짐을 확인하였다. 이는 산 및 효소처리에 의해서 난소화성 덱스트린의 비결정성 부분의 제거를 통해 결정성 부분이 증가함을 의미하는 결과로 생각된다.
시험예 4-4. 연속적인 탈분지효소 및 재결정화 후 산 및 효소처리에 의한 나노사이즈 난소화성 덱스트린의 입자크기 및 입자형태
입자 분석기 (Malvern instrument Ltd. Worceatershire, UK.)를 이용하여 실시예 4에서 제조된 산 및 효소처리한 탈분지효소 및 재결정화처리 나노사이즈의 난소화성 덱스트린의 입자 사이즈를 측정하였고, 주사전자현미경 (SEM)을 이용하여 제조된 산 및 효소처리한 탈분지효소 및 재결정화처리 나노사이즈의 난소화성 덱스트린의 입자 형태를 관찰하였다. 상기 실시예 4에 따라 제조된 제조된 산 및 효소처리한 탈분지효소 및 재결정화처리 나노사이즈의 난소화성 덱스트린을 우라닐 아세테이트로 염색한 후 관찰하였다.
도 12 및 도 13에 제조된 산 및 효소처리한 탈분지효소 및 재결정화처리 나노사이즈의 난소화성 덱스트린의 입자 형태 및 입자 크기를 나타내었다. 난소화성 덱스트린(RE)의 입자 크기는 약 600nm 정도로 측정되었으며 산처리(RE-AH) 및 효소처리(RE-EH)에 의해 점차 감소하였다. 산 및 효소처리 시간이 증가함에 따라 점점 감소하여 150 ~ 400 nm 정도의 크기로 측정되었다.
시험예 4-5. 연속적인 탈분지효소 및 재결정화 후 산 및 효소처리에 의한 나노사이즈 난소화성 덱스트린의 소화특성
실시예 4에 따라 제조된 산 및 효소처리한 탈분지효소 및 재결정화처리 나노사이즈의 난소화성 덱스트린의 소화특성은 Englyst 등의 방법 (Classification and measurement of nutritionally inportant starch fraction, Eur J Clin Nutr. 1992, 46, Suppl 2:S33-50)을 약간 수정하여 RDS, SDS, RS 함량을 측정하였다. 전분의 호화는 소화율에 큰 영향을 미치기 때문에 호화되지 않은 시료(효소 및 재결정화 처리하여 제조된 난소화성 덱스트린)의 소화율과 호화한 후의 소화율을 분석하였다. 실험을 위해 시료를 완충용액에 분산하였고, 상기 분산액을 100℃에서 15분간 열처리한 것과 열처리하지 않은 것 모두 분석하였다. 상기 100℃에서 15분간 열처리한 전분 분산액과 열처리하지 않은 전분 분산액을 37℃ 항온 수조에서 판크레아틴(pancreatin)과 아밀로글루코시다아제(amyloglucosidase)를 사용하여 총 120분까지 소화시켰다. 소화과정 중 20분, 120분에 일정량의 시료를 취한 후 에탄올을 첨가하여 소화효소를 불활성화시켰다. GOD-POD kit을 사용하여 상기 용액의 포도당(D-glucose) 농도를 측정하였다. RDS는 20분 소화 후 방출되는 포도당 함량, SDS: 20~120분 동안 방출되는 포도당 함량, RS는 총당-RDS-SDS을 의미한다.
도 14에 산 및 효소처리한 탈분지효소 및 재결정화처리 나노사이즈의 난소화성 덱스트린의 in vitro 소화율을 측정한 결과이다. 산 및 효소처리한 탈분지효소 및 재결정화처리 나노사이즈의 난소화성 덱스트린을 100℃에서 15분간 열처리 (Cooked) 및 비열처리(Non-Cooked)의 소화특성을 측정하였다. 난소화성 덱스트린(RE)의 RS함량은 천연전분보다 높은 함량을 나타내었고, 산 및 효소처리에 의해 RS함량은 처리시간이 증가함에 따라 상승하는 경향을 나타내었다. 이는 XRD 및 DSC 결과에서 결정성 부분의 증가로 소화효소들이 작용하지 못하여 RS의 함량이 증가하는 것으로 사료된다.
이상으로 본 발명 내용의 특정한 부분을 상세히 기술하였는바, 당업계의 통상의 지식을 가진 자에게 있어서 이러한 구체적 기술은 단지 바람직한 실시형태일 뿐이며, 이에 의해 본 발명의 범위가 제한되는 것이 아닌 점은 명백할 것이다. 따라서, 본 발명의 실질적인 범위는 첨부된 청구항들과 그것들의 등가물에 의하여 정의된다고 할 것이다.
본 발명에 의해 제조된 난소화성 덱스트린은 식이섬유, 지방대체제, 코팅제, 보강제 등 의약, 화장품, 식품 신소재, 식품 첨가물 및 화학제품 등 다양한 분야에서 유용하게 활용될 수 있다.

Claims (15)

  1. (a) 전분이 분산된 전분 용액을 준비하는 단계;
    (b) 상기 전분 용액을 호화시키는 단계;
    (c) 호화된 상기 전분 용액을 냉각시키는 단계;
    (d) 냉각된 상기 전분 용액에, 상기 전분의 α-1,6 글리코시드 결합(glycosidic linkage)을 제거하는 탈분지 효소를 첨가하여 탈분지 처리하는 단계; 및
    (e) 탈분지 처리되어 생성된 직쇄 구조의 아밀로즈(amylose)가 이중 나선구조로 자가조립되어 재결정화되도록, 탈분지 처리된 상기 전분 용액을 소정의 반응 온도에서 방치하여 재결정화 처리하는 단계;를 포함하는 난소화성 덱스트린 제조방법.
  2. 청구항 1에 있어서,
    상기 (a) 단계는,
    pH 3.5 ~ 6.0의 완충 용액에 전분을 분산시켜 상기 전분 용액을 제조하는 난소화성 덱스트린 제조방법.
  3. 청구항 2에 있어서,
    상기 전분은,
    0.1 ~ 40%(w/w)의 농도로 분산되는 난소화성 덱스트린 제조방법.
  4. 청구항 1에 있어서,
    상기 (b) 단계는,
    상기 전분 용액을 80 ~ 140℃로 가열하여 호화시키는 난소화성 덱스트린 제조방법.
  5. 청구항 1에 있어서,
    상기 (c) 단계는,
    상기 전분 용액을 30 ~ 70℃로 냉각하는 난소화성 덱스트린 제조방법.
  6. 청구항 1에 있어서,
    상기 탈분지 효소는,
    이소아밀라아제(isoamylase), 및 풀루라나아제(pullulanase)로 구성된 군으로부터 선택되는 적어도 하나 이상을 포함하는 난소화성 덱스트린 제조방법.
  7. 청구항 1에 있어서,
    상기 (d) 단계에서, 상기 탈분지 효소는,
    0.1 ~ 50%(w/w)의 농도로 첨가되는 난소화성 덱스트린 제조방법.
  8. 청구항 1에 있어서,
    상기 (e) 단계에서, 상기 반응 온도는,
    4 ~ 90℃인 난소화성 덱스트린 제조방법.
  9. 청구항 1에 있어서,
    상기 (e) 단계는,
    적어도 24시간 이상 상기 전분 용액을 방치하는 난소화성 덱스트린 제조방법.
  10. 청구항 1에 있어서,
    (f) 재결정화 처리된 상기 전분 용액으로부터, 덱스트린을 분리하는 단계; 및
    (g) 분리된 상기 덱스트린을 세척하는 단계;를 더 포함하는 난소화성 덱스트린 제조방법.
  11. 청구항 10에 있어서,
    (h) 세척된 상기 덱스트린을 40 ~ 60℃의 온도로 가열하여 건조하는 단계;를 더 포함하는 난소화성 덱스트린 제조방법.
  12. 청구항 10에 있어서,
    (h) 산성 용액에, 세척된 상기 덱스트린을 첨가하여 가수분해하는 단계;를 더 포함하는 난소화성 덱스트린 제조방법.
  13. 청구항 12에 있어서,
    상기 (h) 단계는,
    30 ~ 50℃의 온도에서, 6 ~ 24시간 동안 가수분해하는 난소화성 덱스트린 제조방법.
  14. 청구항 10에 있어서,
    (h) 세척된 상기 덱스트린과 알파아밀라아제를 반응시켜 가수분해하는 단계;를 더 포함하는 난소화성 덱스트린 제조방법.
  15. 청구항 14에 있어서,
    상기 (h) 단계는,
    상기 알파아밀라아제를 상기 전분 대비 3 ~ 7%로 첨가하고, 30 ~ 50℃의 온도에서, 3 ~ 12시간 동안 가수분해하는 난소화성 덱스트린 제조방법.
PCT/KR2021/003064 2020-03-12 2021-03-12 연속적 탈분지 및 재결정화 처리를 이용한 난소화성 덱스트린의 제조방법 WO2021182905A1 (ko)

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