WO2021116574A1 - Utilisation d'un milieu de culture comprenant de la vinblastine ou de la vincristine seule ou en mélange pour améliorer la croissance in vitro d'une bactérie appartenant au genre treponema - Google Patents

Utilisation d'un milieu de culture comprenant de la vinblastine ou de la vincristine seule ou en mélange pour améliorer la croissance in vitro d'une bactérie appartenant au genre treponema Download PDF

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WO2021116574A1
WO2021116574A1 PCT/FR2020/052300 FR2020052300W WO2021116574A1 WO 2021116574 A1 WO2021116574 A1 WO 2021116574A1 FR 2020052300 W FR2020052300 W FR 2020052300W WO 2021116574 A1 WO2021116574 A1 WO 2021116574A1
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WO
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treponema
acid
culture medium
genus
vinblastine
Prior art date
Application number
PCT/FR2020/052300
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English (en)
Inventor
Didier Raoult
Saber KHELAIFIA
Souad BELKACEMI
Original Assignee
Fondation Mediterranee Infection
Universite D'aix-Marseille
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
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Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/38—Chemical stimulation of growth or activity by addition of chemical compounds which are not essential growth factors; Stimulation of growth by removal of a chemical compound

Definitions

  • the present invention relates to the field of microbiology. More specifically, the present invention relates to the use of a culture medium comprising vinblastine or vincristine alone or as a mixture for improving the in vitro growth of a bacterium belonging to the genus Treponema. It also relates to an in vitro culture medium comprising Vinblastine or vincristine alone or as a mixture of a sample comprising a bacterium belonging to the genus Treponema as well as a method for in vitro culture of a bacterium belonging to the genus Treponema.
  • Bacteria belonging to the genus Treponema are part of the family Spirochaetaceae, within the phylum Spirochaetes (1). These bacteria are Gram-negative and can be microaerophilic or strictly anaerobic (2). Bacteria belonging to the genus Treponema are part of the normal flora, and some species belonging to this genus are pathogens such as Treponema paiiidum, the causative pathogen of syphilis in humans (3). In addition, studies have shown an association of certain bacteria belonging to the genus Treponema with various forms of human oral infections and diseases (4, 5).
  • Bacteria belonging to the genus Treponema are fastidious organisms that are not susceptible to cultures using ordinary media (9).
  • the difficulties in cultivating these microorganisms are related to their complex nutritional requirements, in particular the existence of a divergence of the nutrient requirements to grow between species and their very low tolerance to oxygen (2, 9 , 10).
  • in vitro culture media each specific to a given species of treponemes.
  • Certain culture media allow the cultivation of more than one species of treponemes, for example we can refer to the Omiz-Pat medium (11), or to the medium OTEB (12, 13) or in the middle Spirochaetae medium (14).
  • these in vitro culture media do not correspond to a so-called standard culture medium for all species of treponemes, in the sense that they need to be modified, adapted by adding or removing one or more.
  • Omiz-Pat medium is prepared without lecithin to cultivate Treponema iecithinoiyticm (15).
  • the Omiz-Pat medium is very difficult to prepare since it contains more than a hundred products, some of which must be adapted as indicated above.
  • Vincristine and Vinblastine are toxins extracted from the Madagascar periwinkle (Catharanthus roseus). They are mitotic spindle poisons that inhibit tubulin polymerization and block cell division. These toxins are commonly used medicinally, in cancer chemotherapy treatment. These compounds have also been described as antimicrobial against certain microorganisms (16) and as ineffective as antimicrobials against others (17). On the other hand, the capacity of these compounds within a culture medium to improve the growth of microorganisms has never been described in the prior art and in particular not for the in vitro growth of a bacterium belonging to the genus Treponema.
  • the inventors have noticed that the presence of Vinblastine or vincristine alone or as a mixture within an in vitro culture medium of a bacterium belonging to the Treponema genus made it possible to improve the in vitro growth of a bacterium belonging to the genus Treponema. to the genus Treponema.
  • the present application proposes the use of a culture medium comprising Vinblastine or vincristine alone or as a mixture to improve the in vitro growth of a bacterium belonging to the Treponema genus as well as a culture medium. particular comprising Vinblastine or vincristine alone or as a mixture and a method of in vitro cultivation of a bacterium belonging to the genus Treponema h from a sample comprising or capable of comprising said bacterium.
  • a first object of the invention relates to the use of a culture medium comprising vinblastine or vincristine alone or as a mixture to improve the growth in vitro of a bacterium belonging to the genus Treponema.
  • a second subject of the invention relates to a medium for in vitro culture of a sample comprising a bacterium belonging to the genus Treponema, said medium comprising, in addition to distilled water, the following compounds: 2-methylbutyric acid, valeric acid, glucose, maltose, xylose, arabinose, mannose, isobutyric acid, yeast extract, calf serum, isovaleric acid, L-cysteine hydrochloride, peptone proteose, brain-heart infusion broth, and one or more vitamins selected from vitamin K1, vitamin B12 , biotin, folic acid, folinic acid, nicotinamide, nicotinic, riboflavin, thiamine pyrophosphate, one or more antibiotics without activity against a bacterium belonging to the genus Treponema and Vinblastine or vincristine alone or as a mixture.
  • a third subject of the invention relates to a method of in vitro culture of a bacterium belonging to the Treponema genus from a sample comprising or capable of comprising said bacterium, comprising successively: a) a step in which the sample is inoculated in a culture medium according to one of claims 7 to 10, in liquid form, under an anaerobic atmosphere, at a temperature of 37 ° C and for 4 to 7 days in an upper compartment of a device composed of said compartment and d 'a lower compartment comprising said sterile culture medium, in liquid form, said compartments being separated by a 0.22 ⁇ m micro-filter b) a step of recovery and cascade dilution of the culture medium present in the lower compartment of the device and comprising the bacterium belonging to the genus Treponema.
  • each dilution is inoculated into a culture medium according to one of claims 7 to 10 supplemented with a sufficient quantity of agar so as to be solid and in which the culture is carried out under an anaerobic atmosphere, at a temperature of 37 ° C, for 3 to 5 days
  • a step of sampling each individual colony developed in step c) then transferring each colony into a tube containing the culture medium according to one of claims 7 to 10, in liquid form, so as to obtain pure cultures of bacteria belonging to the genus Treponema, after 5 days of incubation in an anaerobic atmosphere and at a temperature of 37 ° C e) optionally, a step of identifying the species present in each of the tubes by a matrix-assisted laser desorption-ionization analysis.
  • the first object of the present invention relates to the use of a culture medium comprising Vinblastine or vincristine alone or as a mixture to improve the in vitro growth of a bacterium belonging to the Treponema genus.
  • the Applicant has noticed that the presence of vinblastine or vincristine, known in the prior art as antimitotics and in certain isolated cases as antimicrobials, with regard to certain bacteria, alone or as a mixture within a culture medium of a bacterium belonging to the genus Treponema made it possible to improve the in vitro growth of a bacterium belonging to the genus Treponema.
  • the present invention in fact describes for the first time that the presence of these compounds makes it possible to improve bacterial growth, this improvement being able to result in an increase in the growth and / or an increase in the speed of growth of these bacteria. .
  • the term “improving in vitro growth” is understood to mean the capacity of a culture medium comprising Vinblastine or vincristine alone or as a mixture to increase the in vitro growth of a bacterium belonging to the genus Treponema and / or to increase the in vitro growth rate of these bacteria, therefore reducing their growth time.
  • the ability to improve the growth in vitro of a bacterium belonging to the genus Treponema can be evaluated by measuring the cell density of a culture, for example by measuring the optical density by spectrophotometer and by comparing it with McFarland standards.
  • the ability to improve the in vitro growth of a bacterium belonging to the Treponema genus can also be evaluated by measuring the CFUs (colony-forming unit) by the technique of cascade dilutions.
  • a 1 log increase in cell density using a culture medium comprising Vinblastine or vincristine alone or as a mixture in comparison with a culture medium devoid of Vinblastine or vincristine is considered to improve the in vitro growth of a bacterium belonging to the genus Treponema.
  • Vinblastine and vincristine are toxins extracted from the Madagascan periwinkle (Catharanthus roseus). They belong to the class of alkaloids and have the ability to block cell division by inhibiting the polymerization of tubulin. These compounds are used as antimitotics, antineoplastics to treat various cancers. In the context of the present invention, these compounds can be used in the form of a pure extract, or alternatively in the form of a salt, for example in the form of a 97% sulfate salt (Sigma Aldrich, France) or else in the form of a solution for injection (10 mg / 10 ml).
  • These compounds can for example be obtained by extraction using various solvents from the leaves, stems and / or flowers of the Madagascan periwinkle, or for example by biosynthesis from catharanthine and vindoline present in high quantity. in Madagascan periwinkle or by chemical synthesis.
  • Commercial extracts of Vinblastine or vincristine are commercially available (Sigma Aldrich, France).
  • Vinblastine and vincristine are used in the form of a 97% sulfate salt (Sigma Aldrich, France) or else in the form of an injectable solution (10 mg / 10 mL).
  • Treponemes are a genus of bacteria belonging to the Spirochaetaceae family, they are helical in shape, very mobile, their wall is Gram negative, and can be microaerophilic or strictly anaerobic. These bacteria are commensal in humans and animals, and live on mucous membranes, in mucus, in the mouth, intestinal tract and urogenital tract. The introduction of some of them into the body through points of inoculation can be pathogenic, for example Treponema pallidum which is the agent responsible for syphilis. As stated above these bacteria are difficult to cultivate, since their nutrient requirements differ from species to species. This cultivation difficulty explains why there are many species of Treponemes that have not been identified to date, because they have not been cultivated efficiently or at least in insufficient quantities.
  • the present invention applies to all species of Treponemes.
  • the present invention applies to the following species of Treponemes:
  • Treponema pallidum Treponema denticuta, Treponema pectinovorum, Treponema socranskii, Treponema vinventii, Treponema mattophiium, Treponema medium, Treponema amylovorum, Treponema lecithinolyticum, Treponema parvema parvema, Treponema putidum, Treponema phaponema dentedum, Treponema pediponectum, Treponema pediponectenis, Treponema pediponectum, Treponema pedponecta .
  • the present invention applies to the following Treponema species: Treponema pallidum, Treponema denticuta, Treponema pectinovorum, Treponema pedis, more preferably Treponema denticuta, Treponema pectinovorum, Treponema pedis.
  • the present application uses the singular for reasons of clarity, although the present invention relates to the in vitro culture of several bacteria belonging to the genus Treponema present or susceptible. to be in a sample, especially clinical.
  • sample refers to a clinical sample, for example saliva, a smear from the oral cavity, stool, vaginal secretions, sweat, tears, urine, or still oral samples taken from patients with periodontitis or periodontal diseases also called prodontopathic samples.
  • the clinical sample is saliva, or oral samples taken from patients suffering from periodontitis or periodontal diseases.
  • the culture medium can be used in liquid or solid form, for example by adding a sufficient quantity of agar.
  • the culture medium is used in liquid form.
  • Vinblastine or vincristine alone or as a mixture are present in the culture medium at a concentration of at least 20 mg / L.
  • Vinblastine or vincristine alone or as a mixture are present in the culture medium at a concentration of between 20 mg / L and 150 mg / L, more preferably at a concentration of between 20 mg / L and 100 mg / L .
  • Vinblastine or vincristine is used alone in the culture medium.
  • Vinblastine and Vincristine are used together in the culture medium.
  • the culture medium comprises one or more antibiotics, without activity with regard to a bacterium belonging to the genus Treponema.
  • antibiotics are chosen from the following compounds: nalidixic acid, polymyxin B, fosphomycin, rifampicin or a mixture of these.
  • the culture medium used in the context of the present invention also comprises, in addition to distilled water, the following compounds: 2-methylbutyric acid, valeric acid, glucose, maltose, xylose, arabinose, mannose, isobutyric acid, extract of yeast, calf serum, isovaleric acid, L-cysteine hydrochloride, peptone proteose, brain-heart infusion broth.
  • the culture medium used in the context of the present invention comprises, in addition to distilled water, the following compounds: 2-methylbutyric acid, valeric acid, glucose, maltose, xylose, arabinose, mannose, isobutyric acid, yeast extract, calf serum, isovaleric acid, L-cysteine hydrochloride, peptone proteose, brain-heart infusion broth, and one or more vitamins selected from vitamin K1, vitamin B12, biotin, folic acid, folinic acid, nicotinamide, nicotinic, riboflavin, thiamine pyrophosphate.
  • the culture medium used in the context of the present invention comprises the following compounds in the following quantities or volumes for 1 L:
  • -vitamin B12 5 mg -biotin: 5 mg -folic acid: 5 mg -folinic acid: 10 mg -nicotinamide: 5 mg -nicotinic: 10 mg -riboflavin: 1 mg
  • -thiamine pyrophosphate 0.08mg -nalidixic acid: 30 mg -polymyxin B: 5mg -fosphomycin: 100mg -rifampicin: 2mg
  • the culture medium used in the use according to the present invention can also comprise the following compounds: casamino acid, potassium phosphate, ammonium sulphate, calcium chloride, sodium chloride, sodium bicarbonate, sodium thioglycolate , magnesium sulfate, acetic acid, propionic acid, butyric acid, caproic acid, glutathione, uric acid, ascorbic acid, sodium sulfide, fructose, sucrose, ribose, mannitol, arabinose, fucose, threhalose, rhamnose, soluble starch, pectin.
  • the sample is inoculated with a sufficient quantity of the culture medium to ensure the in vitro growth of a bacterium belonging to the genus Treponema. More precisely, after having been inoculated with said quantity of culture medium, the sample is incubated under a microaerophilic or anaerobic, preferably anaerobic, atmosphere at a temperature of 37 ° C. to ensure the growth of said bacterium. Preferably, the sample is incubated for 2 to 7 days in the presence of said culture medium, more preferably for 3 days.
  • the bacterium belonging to the genus Treponema belongs to one or more of the following species of Treponemes:
  • Treponema pallidum Treponema denticula, Treponema pectinovorum, Treponema socranskii, Treponema vinventii, Treponema maitophiium, Treponema medium, Treponema amyiovorum, Treponemalecithinolyticum, Treponema parvum, Treponema putidum, Treponema parvum, Treponponema parvum, Treponponum pedponum, Treponponum pedponum, Treponponum,.
  • the bacterium belongs to one of the following Treponema species: Treponema pallidum, Treponema denticula, Treponema pectinovorum, Treponema pedis, more preferably Treponema denticula, Treponema pectinovorum, Treponema pedis.
  • a second subject of the present invention relates to a medium for in vitro culture of a sample comprising a bacterium belonging to the genus Treponema, said medium comprising, in addition to distilled water, the following compounds: 2-methylbutyric acid, valeric acid, glucose, maltose, xylose, arabinose, mannose, isobutyric acid, yeast extract, calf serum, isovaleric acid, L-cysteine hydrochloride, peptone proteose, brain-heart infusion broth, and one or more vitamins selected from vitamin K1, vitamin B12 , biotin, folic acid, folinic acid, nicotinamide, nicotinic, riboflavin, thiamine pyrophosphate, one or more antibiotics without activity against a bacterium belonging to the genus Treponema and Vinblastine or vincristine alone or as a mixture.
  • the culture medium according to the invention can be in liquid or solid form, for example by adding a sufficient amount of agar.
  • the culture medium according to the invention is in liquid form.
  • vinblastine or vincristine alone or as a mixture is present in said medium at a concentration of at least 20 mg / L.
  • Vinblastine or vincristine alone or as a mixture is present in the culture medium at a concentration of between 20 mg / L and 150 mg / L, more preferably at a concentration of between 20 mg / L and 100 mg / L .
  • Antibiotics without activity against a bacterium belonging to the genus Treponema can, for example, be chosen from the following compounds: nalidixic acid, polymyxin B, fosphomycin, rifampicin or a mixture thereof.
  • the in vitro culture medium according to the invention comprises the following compounds in the following quantities or volumes for 1 L:
  • -xylose 0.4g -arabinose: 0.4g -mannose: 0.4g -isobutyric acid: 0.1 ml -yeast extract: 5.0 g -calf serum: 100 mL -isovaleric acid: 0.1 ml -L-cysteine hydrochloride: 0.5 g - peptone: 5.0 g
  • -brain-heart infusion broth 5.0 g -vitamin Kl: 1 mg -vitamin B12: 5 mg -biotin: 5 mg -folic acid: 5 mg -folinic acid: 10 mg -nicotinamide: 5 mg -nicotinic: 10 mg -riboflavin: 1 mg -thiamine pyrophosphate: 0.08mg -nalidixic acid: 30 mg -polymyxin B: 5mg -fosphomycin: lOOmg
  • -rifampicin 2mg -Vinblastine and / or vincristine: 20 mg -distilled water: QSP
  • the culture medium according to the invention further comprises the following compounds: casamino acid, potassium phosphate, ammonium sulphate, calcium chloride, sodium chloride, sodium bicarbonate, sodium thioglycolate, magnesium sulphate. , acetic acid, propionic acid, butyric acid, caproic acid, glutathione, uric acid, ascorbic acid, sodium sulfide, fructose, sucrose, ribose, mannitol, arabinose, fucose, threhalose, rhamnose, soluble starch, pectin.
  • a third subject of the invention relates to a method of in vitro culture of a bacterium belonging to the Treponema genus from a sample comprising or capable of comprising said bacterium, comprising successively: a) a step in which the sample is inoculated in a culture medium according to one of claims 7 to 10, in liquid form, under an anaerobic atmosphere, at a temperature of 37 ° C and for 4 to 7 days in an upper compartment of a device composed of said compartment and d 'a lower compartment comprising said sterile culture medium, in liquid form, said compartments being separated by a 0.22 ⁇ m micro-filter b) a step of recovery and cascade dilution of the culture medium present in the lower compartment of the device and comprising the bacterium belonging to the genus Treponema c) a step in which each dilution is inoculated into a culture medium according to one of claims 7 to 10 supplemented with p ar a sufficient quantity of agar so as to
  • the culture method according to the invention advantageously makes it possible to isolate the bacteria belonging to the genus Treponema present in a given sample.
  • the sample used in the context of the method according to the present invention comprises one or more species of bacteria belonging to the genus Treponema, preferably chosen from:
  • the bacterium belongs to one of the following Treponema species: Treponema paiiidum, Treponema denticula, Treponema pectinovorum, Treponema pedis, more preferably Treponema denticula, Treponema pectinovorum, Treponema pedis.
  • anaerobic atmosphere refers to an atmosphere comprising a molar proportion of oxygen strictly less than 1%, preferably less than 0.1% and more preferably 0%. This anaerobic atmosphere can be obtained in ovens containing no oxygen or in deoxygenated compartments.
  • the device used in step a) comprises two compartments separated by a 0.22 ⁇ m micro-filter, with i) an upper compartment which comprises the culture medium according to the invention in liquid form inoculated with a sample comprising or capable of comprising a bacterium belonging to the genus Treponema and ii) a lower compartment which comprises the culture medium according to the invention sterile, in liquid form, and intended to collect the bacteria belonging to the genus Treponema initially present in the compartment upper, said bacteria having joined the lower compartment from the upper compartment by passive filtration.
  • This device therefore makes it possible to ensure a culture and a primary isolation of the bacteria belonging to the Treponema genus present in the culture medium according to the invention inoculated with the sample, by passive filtration through the 0.22 ⁇ m filter from the compartment. upper to the lower compartment.
  • the microfilter having openings of 0.22 ⁇ m allows essentially only bacteria belonging to the Treponema genus to pass.
  • the presence of bacteria belonging to the genus Treponema in the lower compartment is evaluated every day by electron microscopy and the culture medium present in the lower compartment is recovered to proceed to step b) as soon as the presence of bacteria belonging to the genus Treponema is detected in the medium.
  • This in fact makes it possible to limit the contamination of the culture medium present in the lower compartment by bacteria not belonging to the genus Treponema.
  • the culture medium present in the lower compartment is recovered after 3 to 7 days of incubation and more preferably after 5 days of incubation.
  • the presence of a bacterium of the genus Treponema can be verified by observation under an optical or electron microscope before step a) in the sample, and / or after step a) in the culture medium. present in the lower compartment.
  • this verification step is carried out by electron microscope.
  • step c) the sufficient amount of agar to solidify the culture medium is determined by the amount of diluted culture medium considered, for example for 25 mL of diluted culture medium considered, 0.35 g / L will preferably be added. agar.
  • the culture of each dilution carried out in step c) is carried out for 3 to 7 days, preferably for 5 days.
  • the optional step of identifying the species present in each of the tubes by a matrix-assisted laser desorption-ionization analysis advantageously makes it possible to identify the species of bacteria present in the sample tested by with a view to improving existing databases, possibly identifying a new species or strain, or even being able to establish a medical diagnosis.
  • This identification step can be carried out conventionally by the MALDI-TOF MS technique and the comparison of the spectrum obtained, with a database comprising all the spectra existing for a species or even a given strain.
  • the present invention also relates to the use of a culture medium according to the present invention for the transport of bacteria belonging to the genus Treponema.
  • Example 1 Method for in vitro culture of a bacterium belonging to the genus Treponema from a sample comprising or capable of comprising said bacterium according to the invention
  • Biological samples were taken from the oral cavity of 23 women and 21 men aged 25 to 38 years. The donors are healthy volunteers who do not show symptoms of gingivitis and / or periodontitis. Oral samples were taken with a sterile toothbrush before morning brushing. After sampling, each toothbrush was placed in a tube containing 10 ml of treponema culture medium according to the invention. Then the tubes are closed and placed in a plastic bag containing an anaerobic generator (Thermo Scientific, Dardilly, France) and the samples are analyzed in the laboratory immediately after receipt.
  • an anaerobic generator Thermo Scientific, Dardilly, France
  • Culture medium A comprises the following compounds in the following quantities or volumes per 1 L:
  • -brain-heart infusion broth 5.0 g -vitamin Kl: 1 mg -vitamin B12: 5 mg -biotin: 5 mg
  • -folic acid 5 mg -folinic acid: 10 mg -nicotinamide: 5 mg -nicotinic: 10 mg -riboflavin: 1 mg
  • -thiamine pyrophosphate 0.08mg -nalidixic acid: 30 mg -polymyxin B: 5mg -fosphomycin: 100mg -rifampicin: 2mg
  • Culture medium B comprises the following compounds in the following quantities or volumes per 1 L:
  • -brain-heart infusion broth 5.0 g -vitamin Kl: 1 mg -vitamin B12: 5 mg -biotin: 5 mg -folic acid: 5 mg -folinic acid: 10 mg -nicotinamide: 5 mg -nicotinic: 10 mg -riboflavin: 1 mg -thiamine pyrophosphate: 0.08mg -nalidixic acid: 30 mg -polymyxin B: 5mg -fosphomycin: 100mg -rifampicin: 2mg -distilled water: QSP
  • Treponema sp. in culture were also imaged by the same method in order to validate the growth. Sampling and microscopic observation were carried out as follows.
  • a table-top scanning electron microscope (SEM) (Hitachi TM4000) measuring approximately two feet high by 33 cm wide was used to assess bacterial structures.
  • This scanning electron microscope has the ability to observe samples at low vacuum pressure (100 Pa to 101 Pa) to reduce the charge on the sample surface by irradiated electrons.
  • the evacuation time after loading the sample into the SEM chamber is about a few minutes, which is much faster than conventional SEMs with a high vacuum condition, installed directly in the floor, because the chamber SEM on the table is smaller than that of the conventional type.
  • Isolation and enrichment in liquid medium was carried out anaerobically in an anaerobic chamber (Don Whitley Scientific Limited, West Yorkshire, UK) under an atmosphere composed of 80% N2, 15% C02 and 5% H2.
  • the culture of the treponemes was carried out using a culture device composed of two compartments separated by a 0.22 ⁇ m micro-filter (Dominique DUTSCHER, Brumath, France). This culture technique is based on a principle of passive filtration allowing mobile microorganisms with a size of less than 0.22 ⁇ m to pass through the filter wall.
  • the cultivation is carried out as follows; under sterile conditions, the lower compartment of the filtration device is completely filled with the sterile liquid culture medium previously prepared and the upper compartment with 100 mL of the same culture medium.
  • the unit prepared above is transferred to an anaerobic chamber making it possible to degas the medium 1 hour before inoculation.
  • each sample is homogenized on a vortex mixer for 10 seconds, the culture medium of the upper compartment of each filtration unit is inoculated with 200 ⁇ L of sample.
  • the inoculated filter units are incubated in the anaerobic chamber at 37 ° C for 4-7 days.
  • the optimal incubation time was determined.
  • the culture was carried out on six filtration units at the same time with a device comprising an upper compartment and a lower compartment separated by a 0.22 ⁇ m filter. Subsequently, a culture unit is closed every 24 hours to check the presence and passage of treponemes by SEM electron microscopy (Hitachi TM4000) as indicated above. This experiment is carried out in triplicate on a sample from the oral cavity positive for treponema and previously cultured and on a determination of the incubation time of the liquid culture by passive filtration.
  • an agar culture was carried out using the same composition of liquid medium prepared in 800 ml of final volume filtered at 0.2 ⁇ m, and supplemented with 7 g / L of agar (Fisher Scientific, Illkirch, France), prepared in 200ml of sterile water.
  • the use of the electron microscope made it possible to observe the presence of bacteria exhibiting the typical morphology of bacteria belonging to the genus Treponema in 14 samples out of 44.
  • the size of the bacteria was determined using the TM4000 software and the bacteria identified presented an average length of 9.15 ⁇ m and a width varying between 383.7 +/- 60 nm.
  • the inoculation technique on a solid culture medium comprising 7 g / L of agar made it possible to observe the presence of colonies on the device. All 14 samples, i.e. 100% positive liquid cultures.
  • Example 2 Evaluation of the growth of a bacterium belonging to the genus Treponema in the presence of different concentrations of Vinblastine and / or vincristine in the culture medium (medium A) or in the absence of Vinblastine and / or vincristine in the culture medium ( middle B).
  • the culture media tested are similar to those used in Example 1, except that in medium A tested in the present example, different concentrations of Vinblastine or Vincristine were tested (20 mg / L, 30 mg / L, 50 mg / L, 100 mg / L, 150 mg / L).
  • the medium B is identical to that used in Example 1, it is devoid of Vinblastine and Vincristine.
  • Tubes containing a pure culture of bacteria belonging to the species T. denticola were considered to study bacterial growth in the presence of medium A with different concentrations of Vinblastine or vincristine (20 mg / L, 30 mg / L, 50 mg / L, 100 mg / L, 150 mg / L) or in the presence of medium B after incubation at 37 ° C.
  • the growth evaluation was carried out by measuring the optical density by spectrophotometer and comparing it with McFarland standards.
  • the two types of media tested namely medium A with the different concentrations of Vinblastine or vincristine tested and medium B not comprising said compounds, made it possible to ensure the growth of the bacterium belonging to the species T. denticola.
  • the measurement of the cell density made it possible to show that there is no significant difference in the bacterial density observed for medium A at the different concentrations of Vinblastine or vincristine, on the other hand a significant difference was observed between the medium. A and the middle B.
  • medium A for each of the concentrations of Vinblastine or vincristine tested made it possible to ensure greater growth of the bacterium belonging to the species T. denticola in comparison to culture medium B.
  • Table 3 Differences in growth of a bacterium belonging to the species T. denti ⁇ la with medium A or medium B
  • Table 4 Differences in the growth of a bacterium belonging to the species T. denti ⁇ la, T. pectinovorum, T. pedis with medium A comprising 20 mg / L of Vinblastine or vincristine or medium B.
  • the growth medium according to the invention comprising 20 mg / L of vincristine or of Vinblastine advantageously makes it possible to significantly increase the bacterial growth of bacteria belonging to the following species T. denti ⁇ la, T. pectinovorum, T. pedis in comparison with the medium B devoid of Vinblastine or Vincristine.
  • C) In order to determine the minimum inhibition concentration (MIC) of Vinblastine or vincristine, different concentrations within medium A were tested (20, 30, 50, 100, 150, 200, 250, 300, 350, 400, 450 and 500 pg / mL) on three treponema species: Treponema denticoia, Treponema pectinovorum, Treponema pedis. Growth is checked by electron microscope (Hitachi TM4000). The results obtained show that the growth of bacteria is not inhibited at all the concentrations tested and that for the three species.
  • the culture medium according to the invention therefore advantageously makes it possible to ensure improved growth of the bacteria belonging to the Treponema genus, without any growth inhibiting effect in the presence of a high concentration of Vinblastine or of vincristine.

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Abstract

La présente invention concerne l'utilisation d'un milieu de culture comprenant de la vinblastine ou de la vincristine seule ou en mélange pour améliorer la croissance in vitro d'une bactérie appartenant au genre Treponema. Elle concerne également un milieu de culture in vitro comprenant de la vinblastine ou de la vincristine seule ou en mélange d'un échantillon comprenant une bactérie appartenant au genre Treponema ainsi qu'un procédé de culture in vitro d'une bactérie appartenant au genre Treponema.

Description

Description
Titre de l'invention : Utilisation d'un milieu de culture comprenant de la Vinblastine ou de la vincristine seule ou en mélange pour améliorer la croissance in vitro d'une bactérie appartenant au genre Treponema.
Domaine Technique
La présente invention est relative au domaine de la microbiologie. Plus précisément, la présente invention concerne l'utilisation d'un milieu de culture comprenant de la Vinblastine ou de la vincristine seule ou en mélange pour améliorer la croissance in vitro d'une bactérie appartenant au genre Treponema. Elle concerne également un milieu de culture in vitro comprenant de la Vinblastine ou de la vincristine seule ou en mélange d'un échantillon comprenant une bactérie appartenant au genre Treponema ainsi qu'un procédé de culture in vitro d'une bactérie appartenant au genre Treponema.
Technique antérieure
Les bactéries appartenant au genre Treponema font partie de la famille des Spirochaetaceae, au sein de l'embranchement des Spirochaetes (1). Ces bactéries sont Gram-négatives et peuvent être micro aérophiles ou strictement anaérobies (2). Les bactéries appartenant au genre Treponema font partie de la flore normale, et certaines espèces appartenant à ce genre sont des pathogènes tels que Treponema paiiidum, l'agent pathogène causal de la syphilis chez l'homme (3). En outre, des études ont montré une association de certaines bactéries appartenant au genre Treponema avec diverses formes d'infections et de maladies bucco-dentaires humaines (4, 5).
Ces bactéries ont une paroi mince, en forme de spirale et sont très mobiles, ce qui permet de les distinguer facilement des autres bactéries par observation microscopique (6), en revanche ces bactéries sont peu sensibles aux colorants habituellement utilisé pour détecter des bactéries (2).
Ainsi, leur détection s'obtient essentiellement par microscopie à fond noir grâce à leur motilité spécifique et à la morphologie cellulaire (7, 8).
Les bactéries appartenant au genre Treponema sont des organismes fastidieux qui ne sont pas sensibles aux cultures en utilisant des milieux ordinaires (9). Les difficultés à cultiver ces microorganismes sont liées à leurs besoins nutritionnels complexes, en particulier l'existence d'une divergence des besoins nutritifs pour croître d'une espèce à l'autre et à leur très faible tolérance à l'oxygène (2, 9, 10).
En conséquence, il existe un nombre important de milieux de culture in vitro chacun étant spécifique d'une espèce donnée de tréponèmes. Certains milieux de cultures permettent de cultiver plus d'une espèce de tréponèmes, on peut par exemple faire référence au milieu Omiz-Pat (11), ou au milieu OTEB (12, 13) ou encore au milieu Spirochaetae medium (14). Cependant, ces milieux de culture in vitro ne correspondent pas à un milieu de culture dit standard pour l'ensemble des espèces de tréponèmes, dans le sens où ils nécessitent d'être modifiés, adaptés par l'ajout ou le retrait d'un ou plusieurs produits en fonction de la ou des espèces de tréponèmes dont la culture in vitro est recherchée. Par exemple le milieu Omiz-Pat est préparé sans lécithine pour cultiver Treponema iecithinoiyticm (15).
De plus, le milieu Omiz-Pat est très difficile à préparer puisqu'il continent plus d'une centaine de produits dont la présence de certains doit être adaptée tel qu'indiqué précédemment.
Enfin, les milieux de culture in vitro existants à ce jour permettent tout au plus la culture de certaines espèces de Tréponèmes mais ne permettent pas d'en améliorer significativement la croissance de ces bactéries de sorte à faciliter leur isolement et éventuellement leur identification en vue du diagnostic d'une pathologie.
Il existe donc un besoin de disposer d'une solution permettant d'améliorer, d'augmenter la croissance in vitro d'une bactérie appartenant au genre Treponema pour améliorer notamment leur identification et in fine la capacité et la précision d'un diagnostic médical. Il existe également un besoin de disposer d'un milieu de culture in vitro qui soit standard, rapide, facile à préparer, peu coûteux, qui soit capable d'assurer la culture de l'ensemble des espèces de bactéries appartenant au genre Treponema présentes dans un échantillon, ou du moins de la majorité d'entre elles tout en améliorant leur croissance in vitro.
La vincristine et la Vinblastine sont des toxines extraites de la pervenche de Madagascar (Catharanthus roseus). Ce sont des poisons du fuseau mitotique inhibant la polymérisation de la tubuline et bloquant la division cellulaire. Ces toxines sont communément utilisées à des fins médicales, dans un traitement de chimiothérapie pour la lutte contre le cancer. Ces composés ont également été décrits comme antimicrobiens à l'égard de certains microorganismes (16) et comme inefficaces en tant qu'antimicrobiens à l'égard d'autres (17). En revanche, la capacité de ces composés au sein d'un milieu de culture à améliorer la croissance de microorganismes n'a jamais été décrite dans l'art antérieur et notamment pas pour la croissance in vitro d'une bactérie appartenant au genre Treponema.
Les inventeurs se sont aperçus que la présence de la Vinblastine ou de la vincristine seule ou en mélange au sein d'un milieu de culture in vitro d'une bactérie appartenant au genre Treponema permettait d'améliorer la croissance in vitro d'une bactérie appartenant au genre Treponema.
A cet effet, la présente demande propose l'utilisation d'un milieu de culture comprenant de la Vinblastine ou de la vincristine seule ou en mélange pour améliorer la croissance in vitro d'une bactérie appartenant au genre Treponema ainsi qu'un milieu de culture particulier comprenant la Vinblastine ou la vincristine seule ou en mélange et un procédé de culture in vitro d'une bactérie appartenant au genre Treponema h partir d'un échantillon comprenant ou susceptible de comprendre ladite bactérie.
Exposé de l'invention
Un premier objet de l'invention concerne l'utilisation d'un milieu de culture comprenant de la Vinblastine ou de la vincristine seule ou en mélange pour améliorer la croissance in vitro d'une bactérie appartenant au genre Treponema.
Un deuxième objet de l'invention concerne un milieu de culture in vitro d'un échantillon comprenant une bactérie appartenant au genre Treponema, ledit milieu comprenant outre de l'eau distillée, les composés suivants : acide 2-méthylbutyrique, acide valérique, glucose, maltose, xylose, arabinose, mannose, acide isobutyrique, extrait de levure, sérum de veau, acide isovalérique, L-cystéine chlorhydrate, protéose peptone, bouillon d'infusion cœur-cervelle, et une ou plusieurs vitamines choisies parmi vitamine Kl, vitamine B12, biotine, acide folique, acide folinique, nicotinamide, nicotinique, riboflavine, pyrophosphate de thiamine, un ou plusieurs antibiotiques sans activité à l'égard d'une bactérie appartenant au genre Treponema et de la Vinblastine ou de la vincristine seule ou en mélange.
Un troisième objet de l'invention concerne un procédé de culture in vitro d'une bactérie appartenant au genre Treponema à partir d'un échantillon comprenant ou susceptible de comprendre ladite bactérie, comprenant successivement: a) une étape dans laquelle l'échantillon est inoculé dans un milieu de culture selon l'une des revendications 7 à 10, sous forme liquide, sous une atmosphère anaérobie, à une température de 37°C et pendant 4 à 7 jours dans un compartiment supérieur d'un dispositif composé dudit compartiment et d'un compartiment inférieur comprenant ledit milieu de culture stérile, sous forme liquide, lesdits compartiments étant séparés par un micro-filtre de 0,22 pm b) une étape de récupération et de dilution en cascade du milieu de culture présent dans le compartiment inférieur du dispositif et comprenant la bactérie appartenant au genre Treponema. c) une étape dans laquelle chaque dilution est inoculée dans un milieu de culture selon l'une des revendications 7 à 10 complété par une quantité suffisante d'agar de sorte à être solide et dans laquelle la culture est effectuée sous une atmosphère anaérobie, à une température de 37°C, pendant 3 à 5 jours d) une étape de prélèvement de chaque colonie individuelle développée à l'étape c) puis de transfert de chaque colonie dans un tube contenant le milieu de culture selon l'une des revendications 7 à 10, sous forme liquide, de sorte à obtenir des cultures pures de bactérie appartenant au genre Treponema, après 5 jours d'incubation sous une atmosphère anaérobie et à une température de 37°C e) optionnellement une étape d'identification de l'espèce présente dans chacun des tubes par une analyse de désorption-ionisation laser assistée par matrice.
Description détaillée
Ainsi, le premier objet de la présente invention concerne l'utilisation d'un milieu de culture comprenant de la Vinblastine ou de la vincristine seule ou en mélange pour améliorer la croissance in vitro d'une bactérie appartenant au genre Treponema.
En effet, la Demanderesse s'est aperçue que la présence de la Vinblastine ou de la vincristine, connues dans l'art antérieur comme antimitotiques et dans certains cas isolés comme antimicrobiens, à l'égard de certaines bactéries, seule ou en mélange au sein d'un milieu de culture d'une bactérie appartenant au genre Treponema permettait d'améliorer la croissance in vitro d'une bactérie appartenant au genre Treponema. La présente invention décrit en effet pour la première fois que la présence de ces composés permet en effet d'améliorer la croissance bactérienne, cette amélioration pouvant se traduire par une augmentation de la croissance et/ou une augmentation de la rapidité de croissance de ces bactéries.
On entend par « améliorer la croissance in vitro », la capacité d'un milieu de culture comprenant de la Vinblastine ou de la vincristine seule ou en mélange à augmenter la croissance in vitro d'une bactérie appartenant au genre Treponema et/ou à augmenter la vitesse de croissance in vitro de ces bactéries, donc à réduire leur temps de croissance.
La capacité à améliorer la croissance in vitro d'une bactérie appartenant au genre Treponema peut être évaluée en mesurant la densité cellulaire d'une culture par exemple en mesurant la densité optique par spectrophotomètre et en la comparant à des standards de McFarland. On peut également évaluer la capacité à améliorer la croissance in vitro d'une bactérie appartenant au genre Treponema en mesurant les CFU (colony-forming unit) par la technique des dilutions en cascade.
Dans le cadre de la présente invention, une augmentation de 1 log de la densité cellulaire en utilisant un milieu de culture comprenant de la Vinblastine ou de la vincristine seule ou en mélange en comparaison à un milieu de culture dépourvu de Vinblastine ou de vincristine, est considérée comme une amélioration de la croissance in vitro d'une bactérie appartenant au genre Treponema.
La Vinblastine et la vincristine sont des toxines extraites de la pervenche de Madagascar (Catharanthus roseus). Elles appartiennent à la classe des alcaloïdes et ont la capacité de bloquer la division cellulaire en inhibant la polymérisation de la tubuline. Ces composés sont utilisés en tant qu'antimitotiques, antinéoplasiques pour traiter différents cancers. Dans le cadre de la présente invention, ces composés peuvent être utilisés sous forme d'extrait pur, ou encore sous forme de sel par exemple sous forme de sel de sulfate à 97% (Sigma Aldrich, France) ou encore sous forme d'une solution injectable (lOmg / 10ml). Ces composés peuvent par exemple être obtenus par extraction à l'aide de différents solvants à partir des feuilles, tiges et/ou fleurs de la pervenche de Madagascar, ou par exemple par biosynthèse à partir de la catharanthine et la vindoline présents en quantité élevée dans la pervenche de Madagascar ou encore par synthèse chimique. Des extraits commerciaux de Vinblastine ou de vincristine sont disponibles dans le commerce (Sigma Aldrich, France). De préférence dans le cadre de la présente invention la Vinblastine et la vincristine sont utilisées sous forme de de sel de sulfate à 97%( Sigma Aldrich, France) ou encore sous forme d'une solution injectable (lOmg / lOmL).
La formule chimique de la Vinblastine et de la vincristine sont reproduites ci-dessous.
[Chem. 1] Vincristine
Figure imgf000006_0001
Les Tréponèmes sont un genre de bactéries appartenant à la famille des Spirochaetaceae, elles sont de forme hélicoïdale, très mobiles, leur paroi est Gram négatif, et peuvent être micro aérophiles ou strictement anaérobies. Ces bactéries sont commensales chez l'Homme et l'animal, et vivent sur les muqueuses, dans les mucus, au niveau de la bouche, du tractus intestinal et de l'appareil urogénital. L'introduction de certaines d'entre elles dans l'organisme par des points d'inoculation peut être pathogène comme par exemple le Treponema pallidum qui est l'agent responsable de la syphilis. Tel qu'énoncé ci-dessus ces bactéries sont difficiles à cultiver, étant donné que leurs besoins nutritifs diffèrent d'une espèce à l'autre. Cette difficulté de culture explique pourquoi il existe de nombreuses espèces de Tréponèmes non identifiées à ce jour, car non cultivées efficacement ou du moins en quantité insuffisantes.
La présente invention s'applique à l'ensemble des espèces de Tréponèmes. En particulier la présente invention s'applique aux espèces de Tréponèmes suivantes :
Treponema pallidum, Treponema denticuta, Treponema pectinovorum, Treponema socranskii, Treponema vinventii, Treponema mattophiium, Treponema medium, Treponema amylovorum, Treponema lecithinolyticum, Treponema parvum, Treponema putidum, Treponema phagedenis, Treponema minutum, Treponema refringens, Treponema denticuta, Treponema pectinovorum, Treponema pedis. De façon préférée, la présente invention s'applique aux espèces de Tréponèmes suivantes : Treponema pallidum, Treponema denticuta, Treponema pectinovorum, Treponema pedis, de préférence encore Treponema denticuta, Treponema pectinovorum, Treponema pedis.
En référence aux bactéries appartenant au genre Treponema présentes ou susceptibles de l'être dans un échantillon, la présente demande utilise le singulier pour des raisons de clarté bien que la présente invention concerne la culture in vitro de plusieurs bactéries appartenant au genre Treponema présentes ou susceptibles de l'être dans un échantillon, notamment clinique.
Dans le cadre de la présente invention, on fait référence par « échantillon » à un échantillon clinique par exemple de la salive, un frottis de la cavité buccale, des selles, des sécrétions vaginales, de la sueur, des larmes, des urines, ou encore des prélèvements bucco-dentaires réalisés sur des patients atteints de parodontite ou de maladies parodontales aussi appelés prélèvements prodontopathiques. De préférence dans le cadre de l'invention l'échantillon clinique est de la salive, ou des prélèvements bucco-dentaires réalisés sur des patients atteints de parodontite ou de maladies parodontales.
Pour l'utilisation selon la présente invention, le milieu de culture peut être mis en oeuvre sous forme liquide ou solide par exemple par l'ajout d'une quantité suffisante d'agar. De préférence le milieu de culture est mis en oeuvre sous forme liquide.
En particulier, pour l'utilisation selon l'invention la Vinblastine ou la vincristine seule ou en mélange sont présentes dans le milieu de culture à une concentration d'au moins 20 mg/L.
De préférence la Vinblastine ou la vincristine seules ou en mélange sont présentes dans le milieu de culture à une concentration comprise entre 20 mg/L et 150 mg/L, de préférence encore à une concentration comprise entre 20 mg/L et 100 mg/L.
Selon un premier mode de réalisation la Vinblastine ou la vincristine est utilisée seule dans le milieu de culture. Selon un autre mode de réalisation la Vinblastine et la vincristine sont utilisées ensemble dans le milieu de culture. En particulier pour l'utilisation selon l'invention, le milieu de culture comprend un ou plusieurs antibiotiques, sans activité à l'égard d'une bactérie appartenant au genre Treponema. De préférence ces antibiotiques sont choisis parmi les composés suivants : acide nalidixique, polymyxine B, fosphomycine, rifampicin ou un mélange de ceux-ci.
Le milieu de culture mis en oeuvre dans le cadre de la présente invention comprend également outre de l'eau distillée, les composés suivants : acide 2-méthylbutyrique, acide valérique, glucose, maltose, xylose, arabinose, mannose, acide isobutyrique, extrait de levure, sérum de veau, acide isovalérique, L-cystéine chlorhydrate, protéose peptone, bouillon d'infusion cœur-cervelle.
Plus particulièrement, le milieu de culture mis en œuvre dans le cadre de la présente invention comprend outre de l'eau distillée, les composés suivants : acide 2-méthylbutyrique, acide valérique, glucose, maltose, xylose, arabinose, mannose, acide isobutyrique, extrait de levure, sérum de veau, acide isovalérique, L-cystéine chlorhydrate, protéose peptone, bouillon d'infusion cœur-cervelle, et une ou plusieurs vitamines choisies parmi vitamine Kl, vitamine B12, biotine, acide folique, acide folinique, nicotinamide, nicotinique, riboflavine, pyrophosphate de thiamine.
Plus particulièrement encore, le milieu de culture mis en œuvre dans le cadre de la présente invention comprend les composés suivants dans les quantités ou volumes suivants pour 1 L :
-acide 2-méthylbutyrique : 0.1 ml
-acide valérique : 0.1 ml
-glucose : 0.4g
-maltose : 0.4g
-xylose : 0.4g
-arabinose : 0.4g
-mannose : 0.4g
-acide isobutyrique : 0.1 ml
-extrait de levure : 5.0 g
-sérum de veau: 100 mL
-acide isovalérique : 0.1 ml
-L-cystéine chlorhydrate : 0.5 g
-peptone : 5.0 g
-bouillon d'infusion cœur-cervelle : 5.0 g -vitamine Kl : 1 mg
-vitamine B12 : 5 mg -biotine : 5 mg -acide folique : 5 mg -acide folinique : 10 mg -nicotinamide : 5 mg -nicotinique : 10 mg -riboflavine : 1 mg
-pyrophosphate de thiamine : 0.08mg -acide nalidixique : 30 mg -polymyxine B : 5mg -fosphomycine : lOOmg -rifampicin : 2mg
-Vinblastine et/ou vincristine : 20 mg -eau distillée : QSP
Le milieu de culture mis en oeuvre dans l'utilisation selon la présente invention peut comprendre en outre les composés suivants : acide casamino, phosphate de potasium, sulfate d'ammonium, chlorure de calcium, chlorure de sodium, bicarbonate de sodium, thioglycolate de sodium, sulfate de magnésium, acide acétique, acide propionique, acide butyrique, acide caproïque, glutathion, acide urique, acide ascorbique, sulfure de sodium, fructose, sucrose, ribose, mannitol, arabinose, fucose, threhalose, rhamnose, amidon soluble, pectine.
En particulier dans l'utilisation selon la présente invention, l'échantillon est inoculé avec une quantité suffisante du milieu de culture pour assurer la croissance in vitro d'une bactérie appartenant au genre Treponema. Plus précisément, après avoir été inoculé avec ladite quantité de milieu de culture, l'échantillon est incubé sous une atmosphère microaérophile ou anaéorobie, de préférence anaérobie, à une température de 37°C pour assurer la croissance de ladite bactérie. De préférence, l'échantillon est incubé pendant 2 à 7 jours en présence dudit milieu de culture, de préférence encore pendant 3 jours. De préférence la bactérie appartenant au genre Treponema appartient à une ou plusieurs des espèces de Tréponèmes suivantes :
Treponema pallidum, Treponema denticula, Treponema pectinovorum, Treponema socranskii, Treponema vinventii, Treponema maitophiium, Treponema medium, Treponema amyiovorum, Treponemalecithinolyticum, Treponema parvum, Treponema putidum, Treponema phagedenis, Treponema minutum, Treponema refringens, Treponema denticula, Treponema pectinovorum, Treponema pedis. De façon préférée, la bactérie appartient à l'une des espèces de Tréponèmes suivantes : Treponema pallidum, Treponema denticula, Treponema pectinovorum, Treponema pedis, de préférence encore Treponema denticula, Treponema pectinovorum, Treponema pedis.
Un second objet de la présente invention concerne un milieu de culture in vitro d'un échantillon comprenant une bactérie appartenant au genre Treponema, ledit milieu comprenant outre de l'eau distillée, les composés suivants : acide 2-méthylbutyrique, acide valérique, glucose, maltose, xylose, arabinose, mannose, acide isobutyrique, extrait de levure, sérum de veau, acide isovalérique, L- cystéine chlorhydrate, protéose peptone, bouillon d'infusion cœur-cervelle, et une ou plusieurs vitamines choisies parmi vitamine Kl, vitamine B12, biotine, acide folique, acide folinique, nicotinamide, nicotinique, riboflavine, pyrophosphate de thiamine, un ou plusieurs antibiotiques sans activité à l'égard d'une bactérie appartenant au genre Treponema et de la Vinblastine ou de la vincristine seule ou en mélange.
Le milieu de culture selon l'invention peut être sous forme liquide ou solide par exemple par l'ajout d'une quantité suffisante d'agar. De préférence le milieu de culture selon l'invention est sous forme liquide
En particulier dans le milieu de culture selon l'invention, la Vinblastine ou la vincristine seule ou en mélange est présente dans ledit milieu à une concentration d'au moins 20 mg/L. De préférence la Vinblastine ou la vincristine seule ou en mélange est présente dans le milieu de culture à une concentration comprise entre 20 mg/L et 150 mg/L, de préférence encore à une concentration comprise entre 20 mg/L et 100 mg/L.
Les antibiotiques sans activité à l'égard d'une bactérie appartenant au genre Treponema peuvent par exemple être sont choisis parmi les composés suivants : acide nalidixique, polymyxine B, fosphomycine, rifampicin ou un mélange de ceux-ci.
Plus particulièrement, le milieu de culture in vitro selon l'invention, comprend les composés suivants dans les quantités ou volumes suivants pour 1 L :
-acide 2-méthylbutyrique : 0.1 ml
-acide valérique : 0.1 ml
-glucose : 0.4g -maltose : 0.4g
-xylose : 0.4g -arabinose : 0.4g -mannose : 0.4g -acide isobutyrique : 0.1 ml -extrait de levure : 5.0 g -sérum de veau: 100 mL -acide isovalérique : 0.1 ml -L-cystéine chlorhydrate : 0.5 g -peptone : 5.0 g
-bouillon d'infusion cœur-cervelle : 5.0 g -vitamine Kl : 1 mg -vitamine B12 : 5 mg -biotine : 5 mg -acide folique : 5 mg -acide folinique : 10 mg -nicotinamide : 5 mg -nicotinique : 10 mg -riboflavine : 1 mg -pyrophosphate de thiamine : 0.08mg -acide nalidixique : 30 mg -polymyxine B : 5mg -fosphomycine : lOOmg
-rifampicin : 2mg -Vinblastine et/ou vincristine : 20 mg -eau distillée : QSP
Plus particulièrement encore, le milieu de culture selon l'invention comprend en outre les composés suivants : acide casamino, phosphate de potasium, sulfate d'ammonium, chlorure de calcium, chlorure de sodium, bicarbonate de sodium, thioglycolate de sodium, sulfate de magnésium, acide acétique, acide propionique, acide butyrique, acide caproïque, glutathion, acide urique, acide ascorbique, sulfure de sodium, fructose, sucrose, ribose, mannitol, arabinose, fucose, threhalose, rhamnose, amidon soluble, pectine.
Un troisième objet de l'invention concerne un procédé de culture in vitro d'une bactérie appartenant au genre Treponema h partir d'un échantillon comprenant ou susceptible de comprendre ladite bactérie, comprenant successivement: a) une étape dans laquelle l'échantillon est inoculé dans un milieu de culture selon l'une des revendications 7 à 10, sous forme liquide, sous une atmosphère anaérobie, à une température de 37°C et pendant 4 à 7 jours dans un compartiment supérieur d'un dispositif composé dudit compartiment et d'un compartiment inférieur comprenant ledit milieu de culture stérile, sous forme liquide, lesdits compartiments étant séparés par un micro-filtre de 0,22 pm b) une étape de récupération et de dilution en cascade du milieu de culture présent dans le compartiment inférieur du dispositif et comprenant la bactérie appartenant au genre Treponema c) une étape dans laquelle chaque dilution est inoculée dans un milieu de culture selon l'une des revendications 7 à 10 complété par une quantité suffisante d'agar de sorte à être solide et dans laquelle la culture est effectuée sous une atmosphère anaérobie, à une température de 37°C, pendant 3 à 5 jours d) une étape de prélèvement de chaque colonie individuelle développée à l'étape c) puis de transfert de chaque colonie dans un tube contenant le milieu de culture selon l'une des revendications 7 à 10, sous forme liquide, de sorte à obtenir des cultures pures de bactérie appartenant au genre Treponema, après 5 jours d'incubation sous une atmosphère anaérobie et à une température de 37°C e) optionnellement une étape d'identification de l'espèce présente dans chacun des tubes par une analyse de désorption-ionisation laser assistée par matrice.
Le procédé de culture selon l'invention permet avantageusement d'isoler les bactéries appartenant au genre Treponema présentes dans un échantillon donné.
De préférence l'échantillon mis en oeuvre dans le cadre du procédé selon la présente invention comprend une ou plusieurs espèces de bactéries appartenant au genre Treponema, de préférence choisies parmi :
Treponema paiiidum, Treponema denticuia, Treponema pectinovorum, Treponema socranskii, Treponema vinventii, Treponema maitophiium, Treponema medium, Treponema amyiovorum, Treponemalecithinolyticum, Treponema parvum, Treponema putidum, Treponema phagedenis, Treponema minutum, Treponema refringens, Treponema denticula, Treponema pectinovorum, Treponema pedis. De façon préférée, la bactérie appartient à l'une des espèces de Tréponèmes suivantes : Treponema paiiidum, Treponema denticula, Treponema pectinovorum, Treponema pedis, de préférence encore Treponema denticula, Treponema pectinovorum, Treponema pedis.
Par « atmosphère anaérobie » on fait référence à une atmosphère comprenant une proportion molaire d'oxygène strictement inférieure à 1%, de préférence inférieure à 0,1% et de préférence encore de 0%. Cette atmosphère anaérobie peut être obtenue dans des étuves ne comportant pas d'oxygène soit dans des compartiments désoxygénés. Plus précisément, le dispositif mis en oeuvre à l'étape a) comprend deux compartiments séparés par un micro-filtre de 0,22 pm, avec i) un compartiment supérieur qui comprend le milieu de culture selon l'invention sous forme liquide inoculé avec un échantillon comprenant ou susceptible de comprendre une bactérie appartenant au genre Treponema et ii) un compartiment inférieur qui comprend le milieu de culture selon l'invention stérile, sous forme liquide, et destiné à collecter les bactéries appartenant au genre Treponema initialement présentes dans le compartiment supérieur, lesdites bactéries ayant rejoint le compartiment inférieur depuis le compartiment supérieur par filtration passive.
Ce dispositif permet donc d'assurer une culture et un isolement primaire des bactéries appartenant au genre Treponema présentes dans le milieu de culture selon l'invention inoculé avec l'échantillon, par filtration passive à travers le filtre de 0,22 pm depuis le compartiment supérieur vers le compartiment inférieur. En effet, le microfiltre présentant des ouvertures de 0,22 pm permet de ne laisser passer essentiellement que les bactéries appartenant au genre Treponema.
De préférence, la présence de bactéries appartenant au genre Treponema dans le compartiment inférieur est évaluée chaque jour par microscopie électronique et le milieu de culture présent dans le compartiment inférieur est récupéré pour procéder à l'étape b) dès que la présence de bactéries appartenant au genre Treponema est détectée dans le milieu. Cela permet en effet de limiter la contamination du milieu de culture présent dans le compartiment inférieur par des bactéries n'appartenant pas au genre Treponema.
De préférence le milieu de culture présent dans le compartiment inférieur est récupéré au bout de 3 à 7 jours d'incubation et de préférence encore au bout de 5 jours d'incubation.
En particulier, la présence d'une bactérie du genre Treponema peut être vérifiée par observation au microscope optique ou électronique avant l'étape a) au sein de l'échantillon, et/ou après l'étape a) au sein du milieu de culture présent dans le compartiment inférieur. De préférence cette étape de vérification est effectuée par microscope électronique.
A l'étape c), la quantité suffisante d'agar pour solidifier le milieu de culture est déterminée par la quantité de milieu de culture dilué considéré, par exemple pour 25 mL de milieu de culture dilué considéré on ajoutera de préférence 0.35g/L d'agar. La culture de chaque dilution réalisée à l'étape c) est effectuée pendant 3 à 7 jours, de préférence pendant 5 jours.
L'étape optionnelle d'identification de l'espèce présente dans chacun des tubes par une analyse de désorption-ionisation laser assistée par matrice (MALDI-TOF MS) permet avantageusement de pouvoir identifier l'espèce de bactérie présente dans l'échantillon testé en vue d'améliorer les bases de données existantes, d'identifier éventuellement une nouvelle espèce, souche, ou encore de pouvoir établir un diagnostic médical.
Cette étape d'identification peut être effectuée classiquement par technique de MALDI-TOF MS et la comparaison du spectre obtenu, à une base de données comprenant l'ensemble des spectres existants pour une espèce voire une souche donnée.
La présente invention concerne également l'utilisation d'un milieu de culture selon la présente invention pour le transport des bactéries appartenant au genre Treponema.
L'invention sera davantage illustrée par les exemples suivants. Cependant, ces exemples ne doivent en aucun cas être interprétés comme limitant la portée de l'invention.
EXEMPLES
Exemple 1 : Procédé de culture in vitro d'une bactérie appartenant au genre Treponema h partir d'un échantillon comprenant ou susceptible de comprendre ladite bactérie selon l'invention
Matériel et méthodes
1) Echantillons
Les échantillons biologiques ont été prélevés dans la cavité buccale de 23 femmes et 21 hommes âgés de 25 à 38 ans. Les donneurs sont des volontaires en bonne santé qui ne présentent pas de symptômes de gingivite et/ou de parodontite. Les échantillons oraux ont été prélevés à l'aide d'une brosse à dents stérile avant le brossage du matin. Après l'échantillonnage, chaque brosse à dents a été placée dans un tube contenant 10 mL de milieu de culture des tréponèmes selon l'invention. Ensuite, les tubes sont fermés et placés dans un sac plastique contenant un générateur anaérobie (Thermo Scientific, Dardilly, France) et les échantillons sont analysés en laboratoire immédiatement après réception.
2) Milieux de culture testés
Milieu de culture A (selon l'invention)
Le milieu de culture A comprend les composés suivants dans les quantités ou volumes suivants pour 1 L :
-acide 2-méthylbutyrique : 0.1 ml -acide valérique : 0.1 ml -glucose : 0.4g -maltose : 0.4g -xylose : 0.4g -arabinose : 0.4g -mannose : 0.4g
-acide isobutyrique : 0.1 ml -extrait de levure : 5.0 g -sérum de veau: 100 mL -acide isovalérique : 0.1 ml -L-cystéine chlorhydrate : 0.5 g -peptone : 5.0 g
-bouillon d'infusion cœur-cervelle : 5.0 g -vitamine Kl : 1 mg -vitamine B12 : 5 mg -biotine : 5 mg
-acide folique : 5 mg -acide folinique : 10 mg -nicotinamide : 5 mg -nicotinique : 10 mg -riboflavine : 1 mg
-pyrophosphate de thiamine : 0.08mg -acide nalidixique : 30 mg -polymyxine B : 5mg -fosphomycine : lOOmg -rifampicin : 2mg
-Vinblastine et/ou vincristine : 20 mg -eau distillée : QSP
Milieu de culture B Le milieu de culture B comprend les composés suivants dans les quantités ou volumes suivants pour 1 L :
-acide 2-méthylbutyrique : 0.1 ml -acide valérique : 0.1 ml -glucose : 0.4g -maltose : 0.4g -xylose : 0.4g -arabinose : 0.4g -mannose : 0.4g -acide isobutyrique : 0.1 ml -extrait de levure : 5.0 g -sérum de veau: 100 mL -acide isovalérique : 0.1 ml -L-cystéine chlorhydrate : 0.5 g -peptone : 5.0 g
-bouillon d'infusion cœur-cervelle : 5.0 g -vitamine Kl : 1 mg -vitamine B12 : 5 mg -biotine : 5 mg -acide folique : 5 mg -acide folinique : 10 mg -nicotinamide : 5 mg -nicotinique : 10 mg -riboflavine : 1 mg -pyrophosphate de thiamine : 0.08mg -acide nalidixique : 30 mg -polymyxine B : 5mg -fosphomycine : lOOmg -rifampicin : 2mg -eau distillée : QSP
3) Préparation d'échantillons pour la microscopie électronique
Les frottis ont été réalisés sur des lames de microscopie directement à partir de chaque échantillon oral. Une goutte de solution fixatrice de glutaraldéhyde à 2,5 % a été ajoutée et l'observation a été réalisée sans coloration supplémentaire.
Les images ont été prises directement par la suite, et 1% d'acide phosphotungstique (PTA) dans une solution aqueuse à (pH 2) pendant 2 minutes a parfois été ajouté, la lame a été délicatement lavée à l'eau, séchée à l'air et examinée au microscope électronique à balayage (SEM) sur ordinateur portable. Cette procédure a été réalisée afin d'augmenter le contraste des images SEM en cas de besoin.
4) Détection directe par microscopie électronique à balayage (MEB)
Chaque échantillon oral est traité directement sous le microscope électronique pour détecter la présence de Treponema sp. Après la détection et l'optimisation de la culture, les Treponema sp. en culture ont également été imagées par le même procédé afin de valider la croissance. L'échantillonnage et l'observation au microscope ont été effectués comme suit.
5) Observation et acquisition d'images
Un microscope électronique à balayage (MEB) de table (Hitachi TM4000) mesurant environ 60 centimètres de haut sur 33 cm de large a été utilisé pour évaluer les structures bactériennes. Ce microscope électronique à balayage a la capacité d'observer des échantillons à basse pression sous vide (100 Pa à 101 Pa) pour réduire la charge sur la surface de l'échantillon par les électrons irradiés. Le temps d'évacuation après le chargement de l'échantillon dans la chambre du MEB est d'environ quelques minutes, ce qui est beaucoup plus rapide que les MEB conventionnels avec une condition de vide élevé, installés directement dans le plancher, car la chambre du MEB sur table est plus petite que celle du type conventionnel. Les conditions d'observation optimisées de la tension d'accélération et du courant du faisceau d'électrons permettent de faire fonctionner facilement et rapidement le MEB de sorte qu'il ne faut que quelques minutes pour trouver et observer les régions d'intérêt, tandis que les MEB conventionnels à haute performance nécessitent des ajustements fins mais complexes de mise au point et de stigmatisation selon les microscopes. Les images SEM ont été obtenues avec un grossissement de 1000 à 10 000 fois. Des électrons rétrodiffusés (ESB) provenant de la surface de l'échantillon ont été détectés par un détecteur ESB à la tension d'accélération de 15 kV. Le vide autour de l'échantillon est d'environ 30 Pa.
6) Etape de culture et d'isolement primaire par filtration passive
L'isolement et l'enrichissement en milieu liquide ont été réalisés en anaérobiose dans une chambre anaérobie (Don Whitley Scientific Limited, West Yorkshire, Royaume-Uni) sous une atmosphère composée de 80% N2, 15% C02 et 5% H2. La culture des tréponèmes a été réalisée à l'aide d'un dispositif de culture composé de deux compartiments séparés par un micro-filtre 0.22pm (Dominique DUTSCHER, Brumath, France). Cette technique de culture est basée sur un principe de filtration passive permettant aux microorganismes mobiles ayant une taille inférieure à 0,22pm de passer à travers la paroi de filtre.
La culture est réalisée comme suit; dans des conditions stériles, le compartiment inférieur du dispositif de filtration est entièrement rempli avec le milieu de culture liquide stérile préalablement préparé et le compartiment supérieur avec 100 mL du même milieu de culture. L'unité préparée précédemment est transférée dans une enceinte anaérobie permettant de dégazer le milieu lh avant l'inoculation. Ensuite chaque échantillon est homogénéisé sur un mélangeur vortex pendant 10 secondes, le milieu de culture du compartiment supérieur de chaque unité de filtration est inoculé avec 200pL d'échantillon. Les unités de filtration inoculées sont incubées dans la chambre anaérobie à 37°C pendant 4 à 7 jours.
7) Détermination du temps d'incubation optimal de la culture liquide par filtration passive
Dans l'objectif de recueillir une culture de tréponèmes fraîche en pleine phase de croissance, et de limiter les contaminations liées à la dégradation du filtre avec la chaleur et le temps d'incubation allongé ou à l'ouverture quotidienne de l'unité de culture pour récupérer une quantité de milieu du compartiment inférieur, le temps d'incubation optimal a été déterminé.
Pour le même spécimen la culture a été réalisée sur six unités de filtration en même temps avec un dispositif comprenant un compartiment supérieur et un compartiment inférieur séparés par un filtre de 0,22 pm. Par la suite, une unité de culture est fermée toutes les 24h pour vérifier la présence et le passage des tréponèmes par microscopie électronique SEM (Hitachi TM4000) comme indiqué précédemment. Cette expérience est réalisée en triplicata sur un prélèvement de la cavité buccale positif au tréponème et préalablement cultivé et sur une détermination de temps d'incubation de la culture liquide par filtration passive.
8) Etape de récupération, de dilution, de culture solide et d'isolement secondaire
Après l'isolement primaire des tréponèmes dans le milieu de culture liquide, une culture en gélose a été réalisée en utilisant le même composition de milieu liquide préparé dans 800 ml de volume final filtré à 0.2pm, et complété par 7 g/L d'agar(Fisher Scientific, Illkirch, France), préparé dans 200ml d'eau stérile.
Apres obtention d'une culture liquide positive aux bactéries appartenant au genre Treponema dans le compartiment inférieur du dispositif mis en oeuvre précédemment, confirmée par microscopie électronique SEM (Hitachi TM4000), des dilutions en cascade allant jusqu'à 10E-10 pour chaque culture liquide positive ont été réalisées dans des conditions stériles. Par la suite la totalité de chaque dilution (900m1_) est inoculée dans un tube contenant 25 mL de milieu de culture supplémenté par 0.35g d'agar, préalablement préparé et maintenu à 56°C. Le mélange a été délicatement homogénéisé manuellement et versé directement dans des boîtes de Pétri. Après solidification, les boîtes de pétri inoculées ont été incubées dans la chambre anaérobie à 37 °C. Ensuite, après un temps d'incubation allant de 4-7 jours des colonies individuelles ont été prélevées dans la gélose à l'aide d'une pipette pasteur stérile (Biosegama, Brumath, France) et transférées dans des tubes Hungate contenant un milieu liquide afin d'obtenir des cultures pures de de bactéries appartenant au genre Treponema après une incubation à 37 °C.
9) Analyse MALDI-TOF MS
Pour une identification directe depuis le milieu de culture, 2mL de milieu de culture liquide a été centrifugé à 13000 rpm pendant 5 minutes. Le surnageant a été écarté et le culot comprenant les bactéries a été récupéré. Douze points ont ensuite été faits pour chaque culot bactérien et recouverts de lpL de solution de matrice, avant d'être analysé par désorption-ionisation laser assistée par matrice (MALDITOF MS). Après analyse du profil protéique de chaque isolat de Treponema, les spectres générés par MALDI-TOF MS sans identification initiale ont été récupérés pour contrôler leur qualité. Ensuite, après validation des spectres par le logiciel Bruker, le logiciel MALDI Biotyper 3.0 a été utilisé pour construire des dendrogrammes permettant la comparaison des différents isolats. Puis, un isolat de chaque échantillon a été retenu pour le séquençage de son génome. Grâce à cette procédure, seuls cinq isolats différents par analyse MALDI ont vu leur génome séquencé et analysé pour établir une identification basée sur la comparaison de chaque blast obtenu à partir de chaque séquence du gène ARNr 16s avec ceux présents sur la base de données NCBI.
Après l'identification de l'ARNr 16S, les spectres ont été ajoutés à notre base de données MALDI-TOF MS.
Résultats
1) Détection, observation et acquisition d'image par microscopie électronique
L'utilisation du microscope électronique a permis d'observer la présence de bactérie présentant la morphologie typique des bactéries appartenant au genre Treponema dans 14 échantillons sur 44. La taille des bactéries a été déterminée à l'aide du logiciel TM4000 et les bactéries identifiées présentaient une longueur moyenne de 9,15 pm et une largeur variant entre 383.7 +/-60 nm.
2) Détermination du temps d'incubation optimal de la culture liquide par filtration passive
La filtration a été interrompue le plus tôt possible après le premier passage des bactéries appartenant au genre Treponema et avant l'apparition d'une turbidité.
Figure imgf000020_0002
Tableau 1
Figure imgf000020_0001
au genre Treponema au sein du compartiment inférieur du dispositif, au fil des jours d'incubation
Figure imgf000020_0003
compartiment inférieur du dispositif, au fil des jours d'incubation La période d'incubation optimale a été estimée à la 4ème journée d'incubation. Cette période d'incubation a donné les meilleures cultures fraîches de bactéries appartenant au genre Treponema e. t non contaminées.
3) Culture solide et isolement secondaire
Après l'isolement primaire des tréponèmes dans le milieu de culture liquide au sein du compartiment inférieur du dispositif, la technique d'inoculation sur un milieu de culture solide comprenant 7g/L d'agar a permis d'observer la présence de colonies sur l'ensemble des 14 échantillons, c'est-à-dire 100% des cultures liquides positives.
4) Analyse MALDI-TOF MS Après l'identification par ARN 16S, la base de données a été complétée avec 10 spectres correspondant à des bactéries appartenant à l'espèce T.pectinovorum, 5 spectres correspondant à des bactéries appartenant à l'espèce T.dentiœla, et d'autres spectres correspondant à des bactéries appartenant à l'espèce T. brennaborense, T. maltophilum, T.parvum, T.pedis, T.zuelzerae, T. succinifaciens, T.stenostreptum, T. saccharophilum, T.ruminis, T. rectale, T. caldarium et T.bryantii.
Conclusion : Les deux milieux de culture testés ont permis d'assurer la croissance des bactéries appartenant au genre Treponema.
Exemple 2 : Evaluation de la croissance d'une bactérie appartenant au genre Treponema en présence de différentes concentrations de Vinblastine et/ou vincristine dans le milieu de culture (milieu A) ou en absence de Vinblastine et/ou vincristine dans le milieu de culture (milieu B).
Les milieux de culture testés sont similaires à ceux mis en oeuvre dans l'exemple 1, mis à part que dans le milieu A testé dans le présent exemple, différentes concentrations de Vinblastine ou vincristine ont été testées (20 mg/L, 30 mg/L, 50 mg/L, 100 mg/L, 150 mg/L). Le milieu B est identique à celui mis en oeuvre dans l'exemple 1, il est dépourvu de Vinblastine et vincristine.
A) Des tubes contenant une culture pure de bactéries appartenant à l'espèce T.denticola ont été considérés pour étudier la croissance bactérienne en présence du milieu A avec différentes concentrations de Vinblastine ou vincristine (20 mg/L, 30 mg/L, 50 mg/L, 100 mg/L, 150 mg/L) ou en présence du milieu B après une incubation à 37 °C.
Après incubation de trois jours en anaérobiose et à 37°C, l'évaluation de la croissance a été réalisée en mesurant la densité optique par spectrophotomètre et en la comparant à des standards de McFarland.
Les deux types de milieux testés à savoir le milieu A avec les différentes concentrations de Vinblastine ou vincristine testées et le milieu B ne comprenant pas lesdits composés, ont permis d'assurer la croissance de la bactérie appartenant à l'espèce T.denticola.
Il a été observé, l'apparition d'un trouble plus important en présence du milieu A en comparaison avec le milieu B n'en comprenant pas.
La mesure de la densité cellulaire a permis de montrer qu'il n'y a pas de différence significative de la densité bactérienne observée pour le milieu A aux différentes concentrations de Vinblastine ou de vincristine, par contre une différence significative a été observée entre le milieu A et le milieu B.
En effet, le milieu A pour chacune des concentrations de Vinblastine ou de vincristine testée a permis d'assurer une croissance plus importante de la bactérie appartenant à l'espèce T.denticola en comparaison au milieu de culture B.
On note en particulier une augmentation de la croissance d'1 log avec le milieu A de Vinblastine ou vincristine en comparaison avec le milieu B, après 3 jours d'incubation.
Figure imgf000022_0001
Tableau 3 : Différences de croissance d'une bactérie appartenant à l'espèce T.dentiœla avec le milieu A ou le milieu B
B) Cette même étude a été réalisée à partir de tube contenant une culture pure de bactéries appartenant à l'espèce T.dentiœla, ou T. pectinovorum ou T.pedis pour étudier la croissance bactérienne en présence du milieu A comprenant 20 mg/L de Vinblastine ou de vincristine et en présence du milieu B après une incubation à 37 °C en anaérobiose après 3 jours d'incubation.
Figure imgf000022_0002
Tableau 4 : Différences de croissance d'une bactérie appartenant à l'espèce T.dentiœla, T. pectinovorum, T.pedis avec le milieu A comprenant 20 mg/L de Vinblastine ou de vincristine ou le milieu B.
Le milieu de croissance selon l'invention comprenant 20mg/L de vincristine ou de Vinblastine permet avantageusement d'augmenter de façon significative la croissance bactérienne des bactéries appartenant aux espèces suivantes T.dentiœla, T. pectinovorum, T.pedis en comparaison avec le milieu B dépourvu de Vinblastine ou de vincristine. C) Afin de déterminer la concentration minimale d'inhibition (CMI) de Vinblastine ou de vincristine différentes concentrations au sein du milieu A ont été testées (20, 30, 50, 100, 150, 200, 250, 300, 350, 400, 450 et 500 pg/mL) sur trois espèces de tréponèmes : Treponema denticoia, Treponema pectinovorum, Treponema pedis. La croissance est vérifiée par microscope électronique (Hitachi TM4000). Les résultats obtenus montrent que la croissance des bactéries n'est pas inhibée sur toutes les concentrations testées et cela pour les trois espèces.
Le milieu de culture selon l'invention permet donc avantageusement d'assurer une croissance améliorée des bactéries appartenant au genre Treponema et ce, sans effet inhibiteur de la croissance en présence d'une concentration élevée de Vinblastine ou de vincristine.
REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES
1. Garrity GM, Holt JG. 2001. The Road Map to the Manual, p. 119-166. In Boone, DR, Castenholz, RW, Garrity, GM (eds.), Bergey's Manual® of Systematic Bacteriology: Volume One : The Archaea and the Deeply Branching and Phototrophic Bacteria. Springer New York, New York, NY.
2. Schink (auth.) B, Dr MDP, Falkow S, Rosenberg E, Schleifer K-H, Stackebrandt (eds.) E. 2006. The Prokaryotes: Volume 7: Proteobacteria: Delta, Epsilon Subclass, 3rd ed. Springer New York.
3. White B, Avery OT. 1909. THE TREPONEMA PALLIDUM: OBSERVATIONS ON ITS OCCURRENCE AND DEMONSTRATION IN SYPHILITIC LESIONS. Arch Intern Med 111:411-421.
4. Naginyte M, Do T, Meade J, Devine DA, Marsh PD. 2019. Enrichment of periodontal pathogens from the biofilms of healthy adults. Sci Rep 9.
5. Dabu B, Mironiuc-Cureu M, Jardan D, Szmal C, Dumitriu S. 2012. Identification of four Treponema species in subgingival samples by nested-PCR and their corrélation with clinical diagnosis. Roum Arch Microbiol Immunol 71:43—17.
6. Masuda K, Kawata T. 1982. Isolation, properties, and reassembly of outer sheath carrying a polygonal array from an oral treponeme. J Bacteriol 150:1405-1413.
7. Wyss C, Choi BK, Schüpbach P, Guggenheim B, Gobel UB. 1997. Treponema amylovorum sp. nov., a saccharolytic spirochète of medium size isolated from an advanced human periodontal lésion. Int J Syst Bacteriol 47:842-845.
8. Edmondson DG, Hu B, Norris SJ. 2018. Long-Term In Vitro Culture of the Syphilis Spirochète Treponema pallidum subsp. pallidum. mBio 9:e01153-18.
9. Wardle HM. 1997. The challenge of growing oral spirochaetes. J Med Microbiol 46:104-116.
10. Lai Y, Chu L. 2008. Novel Mechanism for Conditional Aérobic Growth of the Anaérobie Bacterium Treponema denticola. Appl Environ Microbiol 74:73-79.
11. Wyss C, Choi BK, Schüpbach P, Guggenheim B, Gobel UB. 1996. Treponema maltophilum sp. nov., a small oral spirochète isolated from human periodontal lésions. Int J Syst Bacteriol 46:745- 752.
12. Evans NJ, Brown JM, Demirkan I, Murray RD, Birtles RJ, Hart CA, Carter SD. 2009. Treponema pedis sp. nov., a spirochaete isolated from bovine digital dermatitis lésions. Int J Syst Evol Microbiol 59:987-991.
13. Hungate RE. 1969. Chapter IV A Roll Tube Method for Cultivation of Strict Anaerobes, p. 117—
132. In Norris, JR, Ribbons, DW (eds.), Methods in Microbiology. Academie Press. 14. Leschine SB, Canale-Parola E. 1980. Rifampin as a sélective agent for isolation of oral spirochètes. J Clin Microbiol 12:792-795.
15. Wyss, C., B. K. Choi, P. Schüpbach, A. Moter, B. Guggenheim, et U. B. Gobel. 1999. Treponema Lecithinolyticum Sp. Nov., a Small Saccharolytic Spirochaete with Phospholipase A and C Activities Associated with Periodontal Diseases. International Journal of Systematic Bacteriology 49 Pt 441329 39.
16. Shanmugaraju V, Bhakyaraj R. 2016. Antimicrobial potential activity of leaf extracts of Catharanthus roseus against human pathogens under laboratory conditions. 17.
17. Safhi MM, Ali M, Sivakumar SM, Jabeen A. 2013. Antibacterial studies of Catharanthus roseus of Jazan province against the selected bacterial strains 4.

Claims

Revendications
[Revendication 1] Utilisation d'un milieu de culture comprenant de la Vinblastine ou de la vincristine seule ou en mélange pour améliorer la croissance in vitro d'une bactérie appartenant au genre Treponema.
[Revendication 2] Utilisation selon la revendication 1, dans laquelle la Vinblastine ou la vincristine seule ou en mélange sont présentes dans ledit milieu à une concentration d'au moins 20 mg/L.
[Revendication 3] Utilisation selon l'une des revendications 1 ou 2, dans laquelle le milieu de culture comprend un ou plusieurs antibiotiques, sans activité à l'égard d'une bactérie appartenant au genre Treponema.
[Revendication 4] Utilisation selon l'une des revendications précédentes, dans laquelle le milieu de culture comprend outre de l'eau distillée, les composés suivants : acide 2-méthylbutyrique, acide valérique, glucose, maltose, xylose, arabinose, mannose, acide isobutyrique, extrait de levure, sérum de veau, acide isovalérique, L-cystéine chlorhydrate, protéose peptone, bouillon d'infusion cœur-cervelle, et une ou plusieurs vitamines choisies parmi vitamine Kl, vitamine B12, biotine, acide folique, acide folinique, nicotinamide, nicotinique, riboflavine, pyrophosphate de thiamine.
[Revendication 5] Utilisation selon l'une des revendications précédentes, dans laquelle le milieu de culture comprend les composés suivants dans les quantités ou volumes suivants pour 1 L :
- acide 2-méthylbutyrique : 0.1 ml
- acide valérique : 0.1 ml
- glucose : 0.4g
- maltose : 0.4g
- xylose : 0.4g
- arabinose : 0.4g
- mannose : 0.4g
- acide isobutyrique : 0.1 ml
- extrait de levure : 5.0 g
- sérum de veau: 100 mL
- acide isovalérique : 0.1 ml - L-cystéine chlorhydrate : 0.5 g
- peptone : 5.0 g
- bouillon d'infusion cœur-cervelle : 5.0 g
- vitamine Kl : 1 mg - vitamine B12 : 5 mg
- biotine : 5 mg
- acide folique : 5 mg
- acide folinique : 10 mg
- nicotinamide : 5 mg - nicotinique : 10 mg
- riboflavine : 1 mg
- pyrophosphate de thiamine : 0.08mg
- acide nalidixique : 30 mg
- polymyxine B : 5mg - fosphomycine : lOOmg
- rifampicin : 2mg
- Vinblastine et/ou vincristine : 20 mg
- eau distillée : QSP
[Revendication 6] Utilisation selon l'une des revendications précédentes, dans laquelle l'échantillon est inoculé avec une quantité suffisante du milieu de culture pour assurer la croissance in vitro d'une bactérie appartenant au genre Treponema.
[Revendication 7] Milieu de culture in vitro d'un échantillon comprenant une bactérie appartenant au genre Treponema, ledit milieu comprenant outre de l'eau distillée, les composés suivants : acide 2-méthylbutyrique, acide valérique, glucose, maltose, xylose, arabinose, mannose, acide isobutyrique, extrait de levure, sérum de veau, acide isovalérique, L-cystéine chlorhydrate, protéose peptone, bouillon d'infusion cœur-cervelle, et une ou plusieurs vitamines choisies parmi vitamine Kl, vitamine B12, biotine, acide folique, acide folinique, nicotinamide, nicotinique, riboflavine, pyrophosphate de thiamine, un ou plusieurs antibiotiques sans activité à l'égard d'une bactérie appartenant au genre Treponema et de la Vinblastine ou de la vincristine seule ou en mélange.
[Revendication 8] Milieu de culture selon la revendication 7, dans lequel la Vinblastine ou la vincristine seules ou en mélange sont présentes dans ledit milieu à une concentration d'au moins 20 mg/L.
[Revendication 9] Milieu de culture selon l'une des revendications 7 ou 8, comprenant les composés suivants dans les quantités ou volumes suivants pour 1 L :
- acide 2-méthylbutyrique : 0.1 ml
- acide valérique : 0.1 ml - glucose : 0.4g
- maltose : 0.4g
- xylose : 0.4g
- arabinose : 0.4g
- mannose : 0.4g - acide isobutyrique : 0.1 ml
- extrait de levure : 5.0 g
- sérum de veau: 100 mL
- acide isovalérique : 0.1 ml
- L-cystéine chlorhydrate : 0.5 g - peptone : 5.0 g
- bouillon d'infusion cœur-cervelle : 5.0 g
- vitamine Kl : 1 mg
- vitamine B12 : 5 mg
- biotine : 5 mg - acide folique : 5 mg
- acide folinique : 10 mg
- nicotinamide : 5 mg
- nicotinique : 10 mg
- riboflavine : 1 mg - pyrophosphate de thiamine : 0.08mg
- acide nalidixique : 30 mg
- polymyxine B : 5mg
- fosphomycine : lOOmg
- rifampicin : 2mg - Vinblastine et/ou vincristine : 20 mg
- eau distillée : QSP
[Revendication 10] Milieu de culture selon l'une des revendications 7 à 9 comprenant en outre les composés suivants : acide casamino, phosphate de potasium, sulfate d'ammonium, chlorure de calcium, chlorure de sodium, bicarbonate de sodium, thioglycolate de sodium, sulfate de magnésium, acide acétique, acide propionique, acide butyrique, acide caproïque, glutathion, acide urique, acide ascorbique, sulfure de sodium, fructose, sucrose, ribose, mannitol, arabinose, fucose, threhalose, rhamnose, amidon soluble, pectine.
[Revendication 11] Procédé de culture in vitro d'une bactérie appartenant au genre Treponema à partir d'un échantillon comprenant ou susceptible de comprendre ladite bactérie, comprenant successivement: a) une étape dans laquelle l'échantillon est inoculé dans un milieu de culture selon l'une des revendications 7 à 10, sous forme liquide, sous une atmosphère anaérobie, à une température de 37°C et pendant 4 à 7 jours dans un compartiment supérieur d'un dispositif composé dudit compartiment et d'un compartiment inférieur comprenant ledit milieu de culture stérile, sous forme liquide, lesdits compartiments étant séparés par un micro-filtre de 0,22 pm b) une étape de récupération et de dilution en cascade du milieu présent dans le compartiment inférieur du dispositif et comprenant la bactérie appartenant au genre Treponema c) une étape dans laquelle chaque dilution est inoculée dans un milieu de culture selon l'une des revendications 7 à 10 complété par une quantité suffisante d'agar de sorte à être solide et dans laquelle la culture est effectuée sous une atmosphère anaérobie, à une température de 37°C, pendant 3 à 5 jours d) une étape de prélèvement de chaque colonie individuelle développée à l'étape c) puis de transfert de chaque colonie dans un tube contenant le milieu de culture selon l'une des revendications 7 à 10, sous forme liquide selon l'une des revendications 7 à 10, de sorte à obtenir des cultures pures de bactérie appartenant au genre Treponema, après 5 jours d'incubation sous une atmosphère anaérobie et à une température de 37°C e) optionnellement une étape d'identification de l'espèce présente dans chacun des tubes par une analyse de désorption-ionisation laser assistée par matrice.
[Revendication 12] Procédé selon la revendication 11 dans lequel l'échantillon comprend une ou plusieurs espèces de bactéries appartenant au genre Treponema, de préférence choisies parmi : Treponema paiiidum, Treponema denticuia, Treponema pectinovorum, Treponema socranskii, Treponema vinventii, Treponema maitophiium, Treponema medium, Treponema amyiovorum, Treponemaiecithinoiyticum, Treponema parvum, Treponema putidum, Treponema phagedenis, Treponema minutum, Treponema refringens, Treponema pedis de préférence Treponema denticuia, Treponema pectinovorum. [Revendication 13] Procédé selon la revendication 11 dans lequel la présence d'une bactérie du genre Treponema peut être vérifiée par observation au microscope optique ou électronique avant l'étape a) au sein de l'échantillon, et/ou après l'étape a) au sein du milieu de culture présent dans le compartiment inférieur.
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PCT/FR2020/052300 WO2021116574A1 (fr) 2019-12-09 2020-12-07 Utilisation d'un milieu de culture comprenant de la vinblastine ou de la vincristine seule ou en mélange pour améliorer la croissance in vitro d'une bactérie appartenant au genre treponema

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Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20150005248A1 (en) * 2011-09-30 2015-01-01 Advanced Laboratory Services, Inc. Compositions and Methods for Culturing Spirochetes

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20150005248A1 (en) * 2011-09-30 2015-01-01 Advanced Laboratory Services, Inc. Compositions and Methods for Culturing Spirochetes

Non-Patent Citations (21)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
"The Prokaryotes", vol. 7, 2006, SPRINGER, article "Proteobacteria: Delta, Epsilon Subclass"
DABU BMIRONIUC-CUREU MJARDAN DSZMAL CDUMITRIU S: "Identification of four Treponema species in subgingival samples by nested-PCR and their corrélation with clinical diagnosis", ROUM ARCH MICROBIOL IMMUNOL, vol. 71, 2012, pages 43 - 47
DIANE G. EDMONDSON ET AL: "Long-Term In Vitro Culture of the Syphilis Spirochete Treponema pallidum subsp. pallidum", AMERICAN SOCIETY FOR MICROBIOLOGY MBIO, vol. 9, no. 3, 26 June 2018 (2018-06-26), pages 1 - 18, XP055705473, DOI: 10.1128/mBio.01153-18 *
EDMONDSON DGHU BNORRIS SJ: "Long-Term In Vitro Culture of the Syphilis Spirochete Treponema pallidum subsp. pallidum", MBIO, vol. 9, 2018, pages e01153 - 18
EVANS NJBROWN JMDEMIRKAN IMURRAY RDBIRTLES RJHART CACARTER SD: "Treponema pedis sp. nov., a spirochaete isolated from bovine digital dermatitis lésions", INT J SYST EVOL MICROBIOL, vol. 59, 2009, pages 987 - 991
GARRITY GMHOLT JG: "Bergey's Manual® of Systematic Bacteriology: Volume One: The Archaea and the Deeply Branching and Phototrophic Bacteria", 2001, SPRINGER, article "The Road Map to the Manual", pages: 119 - 166
HUNGATE RE: "Methods in Microbiology", 1969, ACADEMIC PRESS, article "A Roll Tube Method for Cultivation of Strict Anaerobes", pages: 117 - 132
LAI YCHU L: "Novel Mechanism for Conditional Aerobic Growth of the Anaerobic Bacterium Treponema denticola", APPL ENVIRON MICROBIOL, vol. 74, 2008, pages 73 - 79, XP055361936, DOI: 10.1128/AEM.01972-07
LESCHINE SBCANALE-PAROLA E: "Rifampin as a selective agent for isolation of oral spirochetes", J CLIN MICROBIOL, vol. 12, 1980, pages 792 - 795
MASUDA KKAWATA T: "Isolation, properties, and reassembly of outer sheath carrying a polygonal array from an oral treponeme", J BACTERIOL, vol. 150, 1982, pages 1405 - 1413
NAGINYTE MDO TMEADE JDEVINE DAMARSH PD: "Enrichment of periodontal pathogens from the biofilms of healthy adults", SCI REP, vol. 9, 2019
PETER J FERGUSON ET AL: "Differential Activity of Vincristine and Vinblastine against Cultured Cells", CANCER RESEARCH, 1 August 1984 (1984-08-01), pages 3307 - 3312, XP055705966, Retrieved from the Internet <URL:https://cancerres.aacrjournals.org/content/44/8/3307.full-text.pdf> [retrieved on 20200617] *
SAFHI MMALI MSIVAKUMAR SMJABEEN A, ANTIBACTERIAL STUDIES OF CATHARANTHUS ROSEUS OF JAZAN PROVINCE AGAINST THE SELECTED BACTERIAL STRAINS, vol. 4, 2013
SHANMUGARAJU VBHAKYARAJ R, ANTIMICROBIAL POTENTIAL ACTIVITY OF LEAF EXTRACTS OF CATHARANTHUS ROSEUS AGAINST HUMAN PATHOGENS UNDER LABORATORY CONDITIONS, vol. 17, 2016
WARDLE HM: "The challenge of growing oral spirochaetes", J MED MICROBIOL, vol. 46, 1997, pages 104 - 116
WHITE BAVERY OT: "THE TREPONEMA PALLIDUM: OBSERVATIONS ON ITS OCCURRENCE AND DEMONSTRATION IN SYPHILITIC LESIONS", ARCH INTERN MED, vol. 111, 1909, pages 411 - 421
WWW DARSHANPUBLISHERS COM ET AL: "Antimicrobial potential activity of leaf extracts of Catharanthus roseus against human pathogens under laboratory conditions", INT. J. CURR. RES. BIOL. MED, 1 January 2016 (2016-01-01), pages 35 - 51, XP055706397, Retrieved from the Internet <URL:http://darshanpublishers.com/ijcrbm/pdfcopy/2016/apr2016/ijcrbm4.pdf> [retrieved on 20200618] *
WYSS C. ET AL.: "Treponema maltophilum sp. nov., a small oral spirochete isolatedfrom human periodontal lesions", INT. J. SYST. BACTERIOL, 1 January 1996 (1996-01-01), pages 745 - 752, XP055705811, Retrieved from the Internet <URL:https://www.zora.uzh.ch/id/eprint/1661/1/Wyss1996.pdf> [retrieved on 20200617] *
WYSS CCHOI BKSCHÜPBACH PGUGGENHEIM BGÔBEL UB: "Treponema amylovorum sp. nov., a saccharolytic spirochete of médium size isolated from an advanced human periodontal lésion", INT J SYST BACTERIOL, vol. 47, 1997, pages 842 - 845
WYSS CCHOI BKSCHÜPBACH PGUGGENHEIM BGÔBEL UB: "Treponema maltophilum sp. nov., a small oral spirochete isolated from human periodontal lésions", INT J SYST BACTERIOL, vol. 46, 1996, pages 745 - 752
WYSS, C.B. K. CHOIP. SCHÜPBACHA. MOTERB. GUGGENHEIMU. B. GÔBEL: "Treponema Lecithinolyticum Sp. Nov., a Small Saccharolytic Spirochaete with Phospholipase A and C Activities Associated with Periodontal Diseases", INTERNATIONAL JOURNAL OF SYSTEMATIC BACTERIOLOGY, vol. 49, 1999, pages 39

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