WO2019009364A1 - 血小板の製造方法および製造装置、ならびに血小板の製造装置における運転条件の決定方法 - Google Patents

血小板の製造方法および製造装置、ならびに血小板の製造装置における運転条件の決定方法 Download PDF

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浩之 江藤
壮 中村
幸敬 伊東
智大 重盛
好一 加藤
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国立大学法人京都大学
株式会社メガカリオン
佐竹化学機械工業株式会社
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    • C12N2506/00—Differentiation of animal cells from one lineage to another; Differentiation of pluripotent cells
    • C12N2506/45—Differentiation of animal cells from one lineage to another; Differentiation of pluripotent cells from artificially induced pluripotent stem cells

Definitions

  • the present invention relates to a method and an apparatus for producing platelets. Furthermore, the present invention relates to a method of determining operating conditions in a platelet production apparatus.
  • Platelet preparations are administered for the purpose of treatment and prevention of symptoms to patients who exhibit bleeding during surgery or injury, or bleeding tendency associated with thrombocytopenia after anticancer drug treatment. At present, production of platelet preparations is dependent on blood donation, but is safer for infections and a stable supply of platelets is required.
  • methods for producing platelets from in vitro cultured megakaryocytes are being developed today. Applicants have established a method for establishing an immortalized megakaryocyte progenitor cell lines (imMKCL) immortalized using pluripotent stem cells as a source (see, for example, Patent Document 1). Also, studies have been repeated on a method of producing platelets using this immortalized megakaryocyte precursor cell line and an apparatus used for such production (see, for example, Patent Document 2).
  • imMKCL immortalized megakaryocyte progenitor cell lines
  • the immortalized megakaryocyte precursor cell line has many advantages, such as preservation by freezing and promotion of artificial multinucleation. From this immortalized megakaryocyte precursor cell line, on demand, more efficient methods and apparatus for stable and large-scale production of platelets are required.
  • Non-patent Document 1 As an approach for mass production of platelets, it is necessary to consider both different steps such as megakaryopoiesis and platelet shedding.
  • For megakaryocyte proliferation there is an approach of increasing the number of source cells, and one of the methods by the present inventors for producing immortalized megakaryocyte cells (Patent Document 1) is mentioned as one of them.
  • Patent Document 1 On the other hand, it has been suggested that shear force promotes platelet cleavage (Non-patent Document 1).
  • the platelet production mechanism in vivo includes acute platelet production induced by IL-1 alpha and constant platelet production.
  • Acute platelet production produces a large amount of platelets in a short time, but the produced platelets have a high Annexin V positive rate, and have the property that they can not circulate for a long time in vivo.
  • platelets produced by such a mechanism are unsuitable for use as blood products.
  • the present inventors focused on the mechanism of steady-state platelet production and identified the presence of a factor promoting platelet production. Then, the release of the platelet production promoting factor is promoted by applying a predetermined range of turbulent energy or shear stress to the medium containing megakaryocytes in the mature phase using a predetermined device, and a transfusion preparation is obtained. It has been discovered that it is possible to increase the production of suitable healthy platelets, and the present invention has been completed.
  • a method for producing platelets comprising the step of culturing megakaryocyte cells in a platelet production medium,
  • the step of culturing includes a step of stirring the platelet production medium in a container using a stirring blade,
  • the stirring process is as follows: (A) turbulent energy of approximately 0.0005m 2 / s 2 ⁇ about 0.02m 2 / s 2; (B) reciprocating the stirring blade so as to satisfy one or more indicators selected from (c) shear stress of about 0.2 Pa to about 6.0 Pa; and (c) Kolmogorov scale of about 100 ⁇ m to about 600 ⁇ m. , A method of producing platelets.
  • a method for producing platelets comprising the step of culturing megakaryocytes in a platelet producing medium,
  • the culturing step is a stirring wing rotatable about an axis extending vertically, and using the stirring wing in which at least a part of the stirring wing is disposed in the bottom region of the container, the platelet production medium in the container Including the step of stirring
  • the step of stirring includes arranging a plurality of stationary members in the culture medium around the stirring wing in the bottom area so as to generate turbulence in the culture medium as the stirring wing is turned.
  • a method of producing platelets comprising pivoting the stirring blade in a state.
  • [3] Prior to the step of culturing the megakaryocytes, a step of forcibly expressing an oncogene, a polycomb gene, and an apoptosis suppression gene in cells undifferentiated from the megakaryocytes to obtain immortalized megakaryocytes
  • [4] The method according to any one of [1] to [3], which comprises the step of collecting platelets obtained in the step of culturing the megakaryocytes.
  • a container for containing a culture medium containing megakaryocytes An apparatus for producing platelets, comprising: an agitation blade reciprocating within the container; In the said medium: (A) turbulent energy of approximately 0.0005m 2 / s 2 ⁇ about 0.02m 2 / s 2; Said medium by reciprocating said stirrer blade to satisfy one or more indicators selected from (b) a shear stress of about 0.2 Pa to about 6.0 Pa; and (c) a Kolmogorov scale of about 100 ⁇ m to about 600 ⁇ m.
  • a device for producing platelets that produces platelets from the megakaryocytes under agitation.
  • a container for containing a platelet production medium containing megakaryocytes A stirring mechanism for stirring the culture medium to generate turbulent flow in the culture medium;
  • the stirring mechanism is a stirring blade rotatable about a vertically extending axis, the stirring blade having at least a part of the stirring blade disposed in the bottom side area of the container, and the turning of the stirring blade.
  • a plurality of stationary members disposed around the stirring blade in the bottom region to generate the turbulent flow;
  • An apparatus for producing platelets which produces platelets from the megakaryocytes in a state where the culture medium is agitated by swirling the agitation blade in the culture medium.
  • the operating conditions include setting an average speed of reciprocation of the reciprocable stirrer in a range of 50 mm / s to 500 mm / s.
  • platelet production from megakaryocytes can be promoted and platelet production can be increased.
  • the platelets produced by the methods and devices of the present invention have low Annexin V levels, possess properties suitable for use as blood products, and are very useful in the production of blood products.
  • the method according to the present invention provides guidance on the operating conditions in the step of culturing megakaryocytes, in particular the conditions of agitation. Therefore, by performing non-stationary agitation of the culture medium according to this guideline, operating conditions suitable for platelet production for megakaryocytes before separation of platelets in devices of different scales and different types of devices, by performing medium-time agitation. Can be determined and stable production of platelets is possible.
  • FIG. 1 is a longitudinal sectional view schematically showing an apparatus for producing platelets according to a first aspect of one embodiment of the present invention.
  • FIG. 2 is a cross-sectional view taken along line AA of FIG.
  • FIG. 3 is a perspective view schematically showing a container according to a modification of the first embodiment, and first and second stirring blades and a connecting member.
  • FIG. 4 is a longitudinal sectional view schematically showing an apparatus for producing platelets according to a second aspect of the embodiment of the present invention.
  • FIG. 5 is a cross-sectional view taken along the line BB in FIG.
  • FIG. 6 is a graph showing the relationship between agitation speed and turbulent energy when using a reciprocating non-stationary bioreactor and using a one-way rotary bioreactor.
  • FIG. 1 is a longitudinal sectional view schematically showing an apparatus for producing platelets according to a first aspect of one embodiment of the present invention.
  • FIG. 2 is a cross-sectional view taken along line AA of FIG.
  • FIG. 7 is a graph showing the relationship between turbulent energy and platelet production number (% of platelet production number at a stirring speed of 100 mm / s) when using a reciprocating non-stationary bioreactor.
  • FIG. 8 is a graph showing the relationship between shear stress and platelet production number (% of platelet production number at a stirring speed of 100 mm / s) when using a reciprocating non-stationary bioreactor.
  • FIG. 9 is a graph showing the relationship between the Kolmogorov scale and the platelet production number (ratio to the platelet production number at a stirring speed of 150 mm / s) when using a reciprocating non-stationary bioreactor.
  • FIG. 10 shows the results of measuring the physiological activity of platelets in the case of using a 50 L reciprocating non-stationary bioreactor
  • FIG. 10 (A) shows the proportion of normal platelets positive for CD41a and CD42b
  • FIG. ) Shows the percentage of P-selectin positive platelets when platelets were not stimulated
  • FIG. 10 (C) shows the percentage of P-selectin positive platelets when platelets were stimulated with ADP + TRAP6.
  • FIG. 11 shows the results of measuring the physiological activity of platelets in the case of using a 50 L reciprocating non-stationary bioreactor
  • FIG. 11 (A) shows the percentage of annexin V-positive platelets when platelets were not stimulated
  • 11 (B) shows the percentage of annexin V-positive platelets when platelets were stimulated with lonomycin.
  • the present invention relates, according to a first aspect of one embodiment, to a method of producing platelets, more particularly comprising the step of culturing megakaryocyte cells in a platelet producing medium, said culturing step Stirring the platelet production medium in the vessel using a stirring blade, the stirring step comprising the steps of: (A) turbulent energy of approximately 0.0005m 2 / s 2 ⁇ about 0.02m 2 / s 2; (B) reciprocating the stirring blade to satisfy at least one index selected from a shear stress of about 0.2 Pa to about 6.0 Pa; and (c) a Kolmogorov scale of about 100 ⁇ m to about 600 ⁇ m. It relates to the manufacturing method. Furthermore, according to a first aspect of one embodiment, the present invention relates to an apparatus for producing platelets for carrying out the production method.
  • the present invention relates, according to a second aspect of one embodiment, to a method of producing platelets, and more particularly, a method of producing comprising culturing megakaryocyte cells in a platelet producing medium, said culturing comprising A stirring blade rotatable about an axis extending substantially vertically, and stirring the platelet production medium in the container using the stirring blade having at least a part of the stirring blade disposed in the bottom region of the container
  • the stirring step includes, in the culture medium, a plurality of stationary members generating turbulence in the culture medium as the stirring blade pivots in the culture medium.
  • the present invention relates to a manufacturing method including pivoting the stirring blade in a state of being disposed around the periphery.
  • the present invention relates to an apparatus for producing platelets for carrying out the production method.
  • the megakaryocyte to be cultured in the above-mentioned culturing step refers to a megakaryocyte defined as follows.
  • the “megakaryocytes” are the largest cells present in the bone marrow in vivo and are characterized by releasing platelets.
  • it is characterized by cell surface markers CD41a, CD42a, and CD42b positive, and in addition, a marker selected from the group consisting of CD9, CD61, CD62p, CD42c, CD42d, CD49f, CD51, CD110, CD123, CD131, and CD203c. May also be expressed.
  • Megakaryocyte cells have 16 to 32 times the genome of normal cells when they are multinucleated (polyploidized), but in the present specification, when simply referred to as “megakaryocyte cells”, they have the above features. As long as it contains, it includes both multinucleated megakaryocytes and pre-multinuclear megakaryocytes.
  • pre-multinuclear megakaryocytes is also synonymous with the “immature megakaryocytes” or “proliferating megakaryocytes”.
  • Megakaryocyte can be obtained by various known methods, and is not particularly limited, and may be megakaryocyte obtained from any source by any method.
  • an oncogene, a polycomb gene, and an apoptosis suppression gene are forcibly expressed in cells undifferentiated from megakaryocytes prior to the above-mentioned culturing step to obtain immortalized megakaryocyte Including the step of obtaining bulb cells.
  • Non-limiting examples of methods for producing such immortalized megakaryocytes include the methods described in WO 2011/034073. In the same method, it is possible to obtain an immortalized megakaryocyte cell line that proliferates indefinitely by forcibly expressing an oncogene and a polycomb gene in "a cell undifferentiated from megakaryocyte cells". Also, according to the method described in WO 2012/157586, an immortalized megakaryocytes cell line can also be obtained by forcibly expressing an apoptosis-suppressing gene in "a cell undifferentiated from megakaryocytes”. . By releasing forced expression of genes, these immortalized megakaryocyte cell lines promote multinucleation and release platelets. Therefore, the step of culturing in the present invention can also be referred to as the step of releasing the forced expression of the gene and culturing.
  • the methods described in the above-mentioned documents may be combined to obtain megakaryocytes.
  • forced expression of the oncogene, the polycomb gene, and the apoptosis suppression gene may be performed simultaneously or sequentially.
  • the oncogene and the polycomb gene may be forcibly expressed to suppress the forced expression, and then the apoptosis suppression gene may be forcibly expressed to suppress the forced expression to obtain multinucleated megakaryocyte cells.
  • multinucleated megakaryocytes can be obtained by simultaneously forcedly expressing an oncogene, a polycomb gene and an apoptosis suppression gene and simultaneously suppressing the forced expression.
  • oncogenes and polycomb genes may be forcibly expressed, followed by forced expression of an apoptosis suppression gene, and the forced expression may be simultaneously suppressed to obtain multinucleated megakaryocytes.
  • the process of forcibly expressing a gene may be referred to as a growth phase or a state capable of proliferation, and the process of suppressing forced expression may be referred to as a maturation phase.
  • a cell undifferentiated from megakaryocytes means a cell capable of differentiating to megakaryocytes, and cells at various differentiation stages ranging from hematopoietic stem cell lines to megakaryocytes.
  • Non-limiting examples of cells undifferentiated from megakaryocytes include hematopoietic stem cells, hematopoietic progenitor cells, CD34 positive cells, megakaryocytes / erythroblastic progenitor cells (MEP). These cells can be obtained, for example, by being isolated from bone marrow, umbilical cord blood, peripheral blood, or by being induced to differentiate from pluripotent stem cells such as ES cells or iPS cells which are more undifferentiated cells. You can also.
  • oncogene refers to a gene that induces canceration of cells in vivo, for example, MYC family genes (eg, c-MYC, N-MYC, L-MYC), SRC family Examples include genes, RAS family genes, RAF family genes, protein kinase family genes such as c-Kit, PDGFR, and Abl.
  • MYC family genes eg, c-MYC, N-MYC, L-MYC
  • SRC family Examples include genes, RAS family genes, RAF family genes, protein kinase family genes such as c-Kit, PDGFR, and Abl.
  • Polycomb gene is known as a gene that negatively regulates the CDKN2a (INK4a / ARF) gene and functions to avoid cellular senescence (Ogura et al., Regenerative Medicine vol. 6, No. 4, pp26 J. Seusetal., J. seusetal., Nature Reviews Molecular Cell Biology vol. 7, pp 667-677, 2006; Proc. Natl. Acad. Sci. USA vol. 100, pp 211-216, 2003).
  • Non-limiting examples of polycomb genes include BMI1, Mel18, Ring1a / b, Phc1 / 2/3, Cbx2 / 4/6/7/8, Ezh2, Eed, Suz12, HDAC, Dnmt1 / 3a / 3b .
  • the “apoptosis suppressor gene” refers to a gene having a function of suppressing apoptosis of cells, and includes, for example, BCL2 gene, BCL-xL gene, Survivin gene, MCL1 gene and the like.
  • Forced expression of the gene and release of the forced expression can be obtained by the methods disclosed in WO 2011/034073, WO 2012/157586, WO 2014/123242, or Nakamura S et al, Cell Stem Cell. 14, 535-548, It can carry out by the method described in 2014, the other known method, or the method according to it.
  • a drug responsive gene expression induction system such as Tet-on (registered trademark) or Tet-off (registered trademark) system for forced expression of a gene and its release
  • Corresponding agents for example, tetracycline or doxycycline may be contained in the medium, and forced expression may be suppressed by removing them from the medium.
  • the culture conditions of megakaryocytes in carrying out the forced expression of the gene and the suppression (cancellation) of the forced expression can be ordinary conditions.
  • the temperature may be about 35 ° C. to about 42 ° C., about 36 ° C. to about 40 ° C., or about 37 ° C. to about 39 ° C., and may be 5-15% CO 2 and / or 20% O 2 .
  • the step of forcibly expressing the above-mentioned gene in cells undifferentiated from megakaryocytes can be performed according to a routine method of those skilled in the art, for example, vectors expressing these genes, or these genes
  • These cells can be produced by introducing them into undifferentiated cells from megakaryocyte cells in the form of proteins or RNA encoding them. Furthermore, it can be carried out by bringing a low molecular weight compound or the like that induces the expression of these genes into contact with undifferentiated cells rather than megakaryocyte cells.
  • vectors expressing these genes include virus vectors such as retrovirus, lentivirus, adenovirus, adeno-associated virus, herpes virus and Sendai virus, animal cell expression plasmids (eg, pA1-11, pXT1, pRc / CMV, pRc / RSV, pcDNAI / Neo) and the like can be used.
  • virus vectors such as retrovirus, lentivirus, adenovirus, adeno-associated virus, herpes virus and Sendai virus
  • animal cell expression plasmids eg, pA1-11, pXT1, pRc / CMV, pRc / RSV, pcDNAI / Neo
  • it is a retroviral vector or lentiviral vector in that it can be performed by a single transfer.
  • promoters used in expression vectors are EF- ⁇ promoter, CAG promoter, SR ⁇ promoter, SV40 promoter, LTR promoter, CMV (cytomegalovirus) promoter, RSV (rous sarcoma virus) promoter, MoMuLV (Moloney murine leukemia) Viruses) LTR, HSV-TK (herpes simplex virus thymidine kinase) promoter, etc. are used.
  • the expression vector may optionally contain an enhancer, a polyA addition signal, a selectable marker gene, an SV40 replication origin, and the like.
  • Useful selectable marker genes include, for example, dihydrofolate reductase gene, neomycin resistance gene, puromycin resistance gene and the like.
  • the promoter region may be a drug responsive vector having a tetracycline responsive element in order to control expression of the gene by tetracycline or doxycycline.
  • an expression vector may be used in which the loxP sequence is placed so as to sandwich the gene and / or the promoter region with the loxP sequence.
  • a cell in which an apoptosis-suppressing gene is forcibly expressed and cultured is (a) treating with an actomyosin complex function inhibitor, (b) treating with a ROCK inhibitor, It may include at least one. These treatments can promote more stable proliferation and multinucleation.
  • the optimum concentration and the like in the case of treating cells with an actomyosin complex function inhibitor, a ROCK inhibitor and the like can be previously determined by preliminary experiments by those skilled in the art.
  • the period, method, and the like to be processed can be appropriately selected by those skilled in the art.
  • blebbistatin which is a myosin heavy chain II ATPase inhibitor
  • about 2 to 15 ⁇ g / ml or about 5 to 10 ⁇ g / ml is added to the culture solution, and the culture period is, for example, 5 to 10 days
  • the degree, in particular, about 6 to 7 days is preferable.
  • the ROCK inhibitor Y27632 can be used at 5 to 15 ⁇ M, or 8 to 12 ⁇ M, preferably about 10 ⁇ M.
  • the processing time of Y27632 is about 10 to 21 days, preferably about 14 days.
  • ROCK Rho-associated coiled-coil forming kinase / Rho-binding kinase inhibitors
  • examples of ROCK (Rho-associated coiled-coil forming kinase / Rho-binding kinase) inhibitors include [(R)-(+)-trans-N- (4-pyridyl) -4- (1-aminoethyl)- Examples include cyclohexanecarboxamide ⁇ 2HCl ⁇ H 2 O] (Y27632) and the like.
  • an antibody that inhibits Rho kinase activity, or a nucleic acid eg, shRNA etc.
  • a nucleic acid eg, shRNA etc.
  • the megakaryocyte or megakaryocyte precursor cell obtained in the step is cultured in a platelet production medium.
  • a method for suppressing or stopping forced expression in the step of culturing for example, when forced expression is carried out using a drug-responsive vector in the previous step, this is achieved by not contacting the corresponding drug with the cells.
  • forced expression of a gene is performed by doxycycline or tetracycline
  • forced expression can be suppressed by culturing cells in a medium from which these have been removed.
  • Cre recombinase may be achieved by introducing it into the cells.
  • a transient expression vector and RNA or protein transfer it may be achieved by stopping the contact with the vector or the like.
  • the medium used in this step can be performed using the same medium as described above.
  • the platelet production medium used in the step of culturing is not particularly limited, and a known medium suitable for producing platelets from megakaryocytes and a medium equivalent thereto can be appropriately used.
  • a medium used for culturing animal cells can be prepared as a basal medium.
  • a basal medium for example, IMDM medium, Medium 199 medium, Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM) medium, ⁇ MEM medium, Dulbecco's modified Eagle's Medium (DMEM) medium, Ham's F12 medium, RPMI 1640 medium, Fischer's medium, Neurobasal Medium (Life Technologies (Life Technologies) And mixed media of these.
  • the culture medium may contain serum or plasma, or may be serum free. If necessary, the medium is, for example, albumin, insulin, transferrin, selenium, fatty acid, trace element, 2-mercaptoethanol, thiolglycerol, monothioglycerol (MTG), lipid, amino acid (eg, L-glutamine), ascorbic acid It may also contain one or more substances such as heparin, non-essential amino acids, vitamins, growth factors, small molecule compounds, antibiotics, antioxidants, pyruvate, buffers, inorganic salts, cytokines and the like.
  • Cytokines are proteins that promote blood cell lineage differentiation, for example, vascular endothelial cell growth factor (VEGF), thrombopoietin (TPO), various TPO-like agents, Stem Cell Factor (SCF), ITS (insulin-transferrin-selenite) ) Supplements, ADAM inhibitors, etc.
  • a preferred medium in the present invention is IMDM medium containing serum, insulin, transferrin, serine, thiolglycerol, ascorbic acid, TPO. Furthermore, it may contain SCF and may further contain heparin. The concentration of each is also not particularly limited.
  • TPO can be about 10 ng / mL to about 200 ng / mL, or about 50 ng / mL to about 100 ng / mL
  • SCF is about 10 ng / mL to about 200 ng / mL, or about 50 ng / mL
  • heparin can be about 10 U / mL to about 100 U / mL, or about 25 U / mL.
  • a phorbol ester eg, phorbol-12-myristate-13-acetate; PMA may be added.
  • the step of culturing megakaryocytes may be performed under serum free and / or feeder cell free conditions.
  • the method is carried out by culturing megakaryocytes produced according to the method of the present invention in a medium containing TPO.
  • a medium containing TPO In the platelet production process, if serum free and feeder cell free can be performed, the problem of immunogenicity is unlikely to occur when clinically using the obtained platelets.
  • platelets can be produced without using feeder cells, feeder cells need not be attached, and suspension culture can be performed using a flask or the like, which can suppress manufacturing costs and is suitable for mass production.
  • conditioned medium may be used.
  • the conditioned medium is not particularly limited, and can be prepared according to a method known to those skilled in the art or the like, and can be obtained, for example, by appropriately culturing feeder cells and removing feeder cells from the culture with a filter.
  • the culture period can be appropriately determined while monitoring the number of megakaryocytes and the like, but is, for example, about 2 days to 10 days, preferably about 3 days to 7 days. It is desirable to be at least 3 days or more. In addition, it is desirable to pass appropriately during the culture period.
  • a ROCK inhibitor and / or an actomyosin complex function inhibitor is added to the platelet production medium.
  • the ROCK inhibitor and the actomyosin complex function inhibitor the same ones as used in the method for producing multinucleated megakaryocytes described above can be used.
  • a ROCK inhibitor Y27632 is mentioned, for example.
  • the actomyosin complex function inhibitor includes blebbistatin, which is a myosin heavy chain II ATPase inhibitor.
  • the ROCK inhibitor may be added alone, or the ROCK inhibitor and the actomyosin complex function inhibitor may be added alone, or these may be added in combination.
  • the ROCK inhibitor and / or actomyosin complex function inhibitor is preferably added at 0.1 ⁇ M to 30 ⁇ M, and may be, for example, 0.5 ⁇ M to 25 ⁇ M, 5 ⁇ M to 20 ⁇ M or the like.
  • the culture period after the addition of the ROCK inhibitor and / or the actomyosin complex function inhibitor can be 1 day to 15 days, and may be 3 days, 5 days, 7 days, etc. It is possible to further increase the percentage of CD42b positive platelets by adding a ROCK inhibitor and / or an actomyosin complex function inhibitor.
  • the culture step of culturing the megakaryocytes by suppressing forced expression in the platelet production medium is a container using a stirring wing. And stirring the platelet production medium. And for the purpose of minimal commercial production, the process of stirring is as follows: (A) turbulent energy of approximately 0.0005m 2 / s 2 ⁇ about 0.02m 2 / s 2; It is preferable to reciprocate the stirring blade so as to satisfy one or more indexes selected from (b) shear stress of about 0.2 Pa to about 6.0 Pa; and (c) Kolmogorov scale of about 100 ⁇ m to about 600 ⁇ m. .
  • Turbulent energy, shear stress, and Kolmogorov scale in the culture medium in the container which is the target of agitation can be calculated by simulation based on the basic equation of turbulence.
  • FLUENT thermal fluid analysis software
  • the turbulent flow energy is configured to reciprocate the stirring blade, it changes depending on the stroke of the reciprocating motion of the stirring blade, the speed of the reciprocating motion, the frequency of the reciprocating motion, and the like.
  • the number of stirring blades can also be a factor that causes a change.
  • Shear stress and the Kolmogorov scale also change with the modification of similar elements.
  • the indicator comprises turbulent energy of about 0.0005 m 2 / s 2 to about 0.015 m 2 / s 2 ; shear stress of about 0.2 Pa to about 3.6 Pa; and Kolmogorov scale of about 100 ⁇ m to about 600 ⁇ m.
  • the index is approximately 0.001m 2 / s 2 ⁇ about 0.016m 2 / s 2 of the turbulent energy, about a shear stress of 0.3 Pa ⁇ about 4.7Pa; and Kolmogorov scale about 120 [mu] m ⁇ about 440 ⁇ m Or from about 0.001 m 2 / s 2 to about 0.015 m 2 / s 2 ; shear stress of about 0.3 Pa to about 3.6 Pa; and from the Kolmogorov scale of about 120 ⁇ m to about 440 ⁇ m It may be one or more selected.
  • the index is approximately 0.002 m 2 / s 2 to about 0.012 m 2 / s 2 turbulent energy; about 0.5 Pa to about 3.6Pa shear stress; and from about 160 .mu.m to about 320 ⁇ m It may be one or more selected from the Kolmogorov scale. These numerical ranges are merely illustrative and do not limit the present invention. Also, these indicators may be collectively referred to as indicators of turbulence in the following specification.
  • FIGS. 1 to 3 An apparatus for producing platelets for carrying out the production method according to the first aspect of an embodiment of the present invention will be described with reference to FIGS. 1 to 3.
  • the platelet production apparatus comprises a container 1 for containing a medium C containing megakaryocytes and a single stirring blade 21 for stirring the medium C in the container 1. And a stirring mechanism 2.
  • the stirring mechanism 2 is configured to reciprocate the stirring blade 21.
  • the reciprocation direction of the stirring blade 21 is indicated by an arrow R.
  • the stirring mechanism 2 controls the reciprocating motion of the stirring blade 21 so as to generate any one of desired turbulent energy, shear stress, or Kolmogorov scale in the medium C.
  • the stroke of the reciprocating motion of the stirring blade 21, the speed of the reciprocating motion (for example, the average speed of the reciprocating motion, etc.), the frequency of the reciprocating motion, and the like may be controlled.
  • the reciprocating motion of the stirring blade 21 be controlled in a non-stationary pattern.
  • the desired turbulence energy and shear stress can be calculated by simulation as described above.
  • the desired turbulence energy, shear stress, and Kolmogorov scale may be indicators of the numerical ranges as described above (a), (b), (c) or as other embodiments above.
  • the production apparatus produces platelets from megakaryocytes under such conditions.
  • the manufacturing apparatus be configured as follows.
  • the container 1 of the manufacturing apparatus is a hollow body, and in FIGS. 1 and 2, as an example, the container 1 is formed in a substantially cylindrical shape.
  • the container may be formed in a shape other than the substantially cylindrical shape.
  • the container 1 has a peripheral wall extending between the outer peripheral edge of the top wall (or top) 1a and the bottom wall (or bottom) 1b, which are substantially vertically opposed, and the top wall 1a and the bottom wall 1b. (Or circumferential portion) 1c.
  • the container 1 be formed in an elongated shape extending substantially in the vertical direction.
  • the top wall portion 1a is configured as a lid of the container 1 which is separate from the peripheral wall portion 1c, and the medium C is charged into the container 1 with the top wall portion 1a removed. can do.
  • an inlet for introducing a culture medium may be bored in the container, and in this case, the top wall may be integrally formed with the peripheral wall in the container.
  • the container may be formed to open upward, depending on the platelet production conditions, in which case an opening is formed in the top wall, or the container is the top wall. Do not have a part.
  • the volume of the container 1 can be any value as long as it can produce platelets.
  • the volume of the container 1 is about 300 mL or more, about 1 L or more Preferably about 50 L or more, about 200 L or more, about 500 L or more, about 1000 L or more, or about 2000 L or more.
  • the agitating blades 21 of the agitating mechanism 2 of the manufacturing apparatus are disposed along an intersecting plane which intersects with the reciprocation direction at a predetermined intersecting angle ⁇ 1.
  • the crossing angle ⁇ 1 is approximately 90 °.
  • the stirring blades 21 are disposed along the intersecting plane substantially orthogonal to the reciprocation direction.
  • the stirring blade 21 is formed in a substantially flat plate shape.
  • the outer peripheral edge 21a of the stirring blade 21 is formed in a substantially circular shape when viewed from the direction orthogonal to the intersecting plane.
  • the stirring blade 21 is disposed at an interval from the top wall 1a, the bottom wall 1b, and the peripheral wall 1c of the container 1.
  • Such a stirring blade 21 may be called “a stirring blade”.
  • the other shape of the stirring blade 21 and the distance between the peripheral wall portion 1c of the container 1 and the outer peripheral edge 21a of the stirring blade 21 may be determined according to the desired turbulent energy, shear stress, or Kolmogorov scale. .
  • the crossing angle of the stirring blades may be a crossing angle other than about 90 °, depending on the desired turbulent energy, shear stress, or Kolmogorov scale. Such crossing angle may be in the range of about 0 ° to about 180 °.
  • the stirring blade may be formed into a shape other than the substantially flat plate shape according to the desired turbulent energy, shear stress, or Kolmogorov scale, for example, the stirring blade has a substantially hemispherical shell shape, a substantially wedge shape, It may be formed into a substantially curved plate shape, a substantially corrugated plate shape or the like.
  • the outer peripheral edge of the stirring blade may be formed into a shape other than a substantially circular shape as viewed from the direction orthogonal to the intersecting plane, depending on the desired turbulent energy, shear stress or Kolmogorov scale, for example,
  • the outer peripheral edge of the agitating blade is, as viewed from the direction orthogonal to the intersecting plane, substantially semicircular, substantially elliptical, substantially semielliptical, substantially fan-shaped, substantially polygonal such as substantially square, substantially star-shaped polygonal, etc. May be formed.
  • the stirrer blade may also have at least one hole penetrating in its reciprocating direction, the shape, number and location of such holes being determined according to the desired turbulent energy, shear stress or Kolmogorov scale You should be
  • the stirring mechanism 2 has a drive source 22 for reciprocating the stirring blade 21 and a connecting member 23 connecting the stirring blade 21 and the driving source 22.
  • the driving source 22 is configured to reciprocate the stirring blade 21 by reciprocating the connecting member 22.
  • the drive source 22 may be configured to pivot the stirring blade 21 and the connection member 23 around the axis 23 a of the connection member 23.
  • the swing speed, the turning direction, etc. of the stirring blade 21 be controlled. It is preferable to control in a non-stationary pattern.
  • connection member 23 is formed in a substantially shaft shape extending along the axis line 23a.
  • a distal end portion 23b of the connecting member 23 in the longitudinal direction is attached to the stirring blade 21, and a proximal end portion 23c of the connecting member 23 in the longitudinal direction is held by the drive source 22 so as to reciprocate.
  • the tip end 23 b of the connection member 23 is attached at a position substantially coinciding with the center of gravity of the stirring blade 21.
  • the tip of the connecting member may be attached at a position deviated from the center of gravity of the stirring blade depending on the desired turbulent energy, shear stress, or Kolmogorov scale.
  • Such a stirring mechanism 2 is attached to the top wall 1 a of the container 1.
  • an insertion hole 1 d penetrating in the reciprocation direction is formed in the top wall portion 1 a of the container 1, and the stirring mechanism 2 connects the connecting member 23 to the insertion hole 1 d
  • the stirring blade 21 is attached to the top wall 1 a of the container 1 in a state of being housed inside the container 1 while being inserted.
  • the stirring mechanism may be attached to the bottom wall or the peripheral wall of the container by the above-mentioned specific mounting structure of the stirrer.
  • the manufacturing apparatus closes the gap between the periphery of the insertion hole 1 d of the container 1 and the connection member 23 of the stirring mechanism 2 while allowing the reciprocation of the connection member 23.
  • the sealing member 3 may have a flexible structure that can follow the reciprocation of the connection member 23.
  • a flexible structure may be a film structure made of a flexible material such as rubber, or the flexible structure may be a bellows structure made of metal, Teflon (registered trademark) or the like.
  • the seal member may be configured to slidably hold the connection member in the reciprocating direction.
  • the stirring blades 21 of the stirring mechanism 2 reciprocate within a predetermined movable range in the container 1.
  • the movable range is set in the container 1 or in the medium C so that the desired turbulent energy, shear stress, or Kolmogorov scale can be obtained.
  • the length in the reciprocating direction of the movable range that is, the maximum stroke of the reciprocating movement of the stirring blade 21 and the central position in the reciprocating direction of the movable range It may be determined according to the distance from the bottom wall 1b to the liquid surface c1 of the culture medium C, the volume of the container 1, the desired turbulent energy, shear stress, the Kolmogorov scale, or the like.
  • the manufacturing apparatus which concerns on the modification of a 1st aspect is demonstrated.
  • the container 1 is shown by a virtual line.
  • the stirring mechanism 2 of the production device comprises two stirring blades 21, 24 spaced apart from one another in the reciprocating direction.
  • One of the two stirring blades 21 and 24 (hereinafter referred to as “first stirring blade” if necessary) 21 has a plurality of holes 21 b penetrating in the reciprocating direction, and except this point, the first stirring The wing 21 is configured in the same manner as the stirring wing 21 of the first embodiment shown in FIGS. 1 and 2.
  • the other 24 of the two stirring blades 21 and 24 (hereinafter referred to as “second stirring blade” if necessary) is configured in the same manner as the stirring blade 21 of the first aspect except for the following point.
  • the second stirring blade 24 is attached to a longitudinal middle portion 23 d of the connecting member 23.
  • the crossing angle ⁇ 2 of the second stirring blades 24 is an angle other than approximately 90 °.
  • the crossing angle of the second impeller can be in the range of about 0 ° to about 180 °, depending on the desired turbulent energy, shear stress, or Kolmogorov scale.
  • first and second stirring blades 21, 24 have different shapes.
  • the crossing angles ⁇ 1 and ⁇ 2 of the first and second stirring blades 21 and 24 are different from each other, and the second stirring blade 24 is disposed to be inclined with respect to the first stirring blade 21.
  • the outer peripheral edge 24 a of the second stirring blade 24 is smaller than the outer peripheral edge 21 a of the first stirring blade 21.
  • the first and second agitator blades may be configured similarly to one another, except at their attachment locations, provided that they can provide the desired turbulent energy, shear stress, or Kolmogorov scale.
  • the stirring mechanism has a length in the reciprocating direction of the container, from the bottom wall of the container to the liquid surface of the culture medium. Depending on the distance, the volume of the container, etc., it may have three or more stirring blades spaced from one another in the direction of reciprocation.
  • the step of culturing megakaryocytes by suppressing forced expression with a platelet production medium extends substantially vertically.
  • Agitating blades capable of pivoting about an axis comprising a step of stirring the platelet production medium in the container using the stirring blades arranged at least a part of the stirring blades in the bottom region of the container, The step of arranging a plurality of stationary members in the culture medium, arranged around the stirring wing in the bottom area so as to generate turbulence in the culture medium as the stirring blade is turned Rotating the stirring blade.
  • the apparatus for producing platelets comprises: a container 4 for containing a culture medium C containing megakaryocytes; and a culture medium for generating turbulence in the culture medium C in the container 4 And a stirring mechanism 5 configured to stir C.
  • the stirring mechanism 5 has a rotatable stirring blade 51.
  • the turning direction of the stirring blade 51 is indicated by an arrow P.
  • the stirring mechanism 5 is preferably configured to be able to turn the stirring blades 51 on both sides in the turning direction.
  • the stirring mechanism may be configured to be able to turn the stirring blade only on one side of the turning direction.
  • the stirring blade 51 is configured to be pivotable about an axis 51 a extending substantially vertically from the bottom wall 4 b of the container 4.
  • the stirring blade 51 may have a plurality of vane portions 52 extending substantially radially about the axis 51 a.
  • the plurality of blade portions 52 may be spaced apart from one another in a pivoting direction.
  • the stirring blade 51 may be formed in a substantially impeller shape.
  • the stirring mechanism 5 has a plurality of stationary members 53 disposed around the stirring blade 51. Further details of such a stirring blade 51 and the stationary member 53 will be described later.
  • the stirring device 5 In such a manufacturing apparatus, the stirring device 5 generates turbulence by the interaction of the stirring blade 51, which swirls in the medium C, and the stationary member 53, which stands still relative to the stirring blade 51, It is supposed to be stirred. Furthermore, the stirring mechanism 5 controls the turning of the stirring blade 51 so as to generate the desired turbulent energy, shear stress, or Kolmogorov scale in the medium C. In the stirring mechanism 5, it is preferable that the turning speed, the turning direction, and the like of the stirring blade 51 be controlled. In particular, the turning of the stirring blade 51 is preferably controlled in a non-stationary pattern.
  • the desired turbulent energy, shear stress, or Kolmogorov scale can be calculated by the same simulation as that of the first embodiment except for the conditions of the manufacturing apparatus.
  • the production apparatus regenerates platelets from megakaryocytes in a state where the medium C is agitated by the agitation device 5 so as to generate the calculated desired turbulent energy, shear stress, or Kolmogorov scale.
  • the manufacturing apparatus be configured as follows.
  • the container 4 of the manufacturing apparatus has an insertion hole 4 d different from the insertion hole 1 d of the first embodiment as described later, except for this point, the container 4 relates to the container according to the first embodiment It is configured in the same manner as 1.
  • Such a container 4 has a top wall (or top) 4a, a bottom wall (or bottom) 4b, and a circumferential wall (or top) corresponding to the top wall 1a, the bottom wall 1b, and the circumferential wall 1c of the first embodiment. Peripheral part) 4c.
  • an insertion hole 4 d used for mounting the stirring device 5 is formed in the bottom wall 4 b of the container 4.
  • the volume of the container 4 is also the same as the volume of the container 1 which concerns on a 1st aspect.
  • the stirring blade 51 of the stirring mechanism 5 of the manufacturing apparatus is disposed near the bottom 4 b in the container 4.
  • the stirring blade 51 is preferably disposed so as to be entirely housed in the bottom region 4 e of the container 4.
  • the upper portion in the vertical direction of the stirring blade may be located vertically above the bottom region.
  • the bottom side region 4e may be defined as follows.
  • the lower end in the vertical direction of the bottom side area 4 e may substantially coincide with the position in the vertical direction of the bottom wall 4 b.
  • the upper end in the vertical direction of the bottom side region 4e substantially corresponds to a position moved by a predetermined length (that is, the length in the vertical direction of the bottom side region 4e) L1 upward in the vertical direction from the bottom wall portion 4b.
  • the length L1 in the vertical direction of the bottom side region 4e is approximately 1/1 of the length L2 in the vertical direction of the container 4 or the length L3 in the vertical direction from the bottom wall 4b to the liquid surface c1 of the culture medium C. It is good that it is 2 or less.
  • the vertical length L1 of the bottom region 4e is the vertical length L2 of the container 4 or the bottom wall depending on the volume of the container 4, the desired turbulent energy, shear stress, or Kolmogorov scale, etc.
  • the length L3 of the vertical direction from the portion 4b to the liquid surface c1 of the culture medium C may be about 1/2, about 1/3, about 1/4, about 1/5, or about 1/10 it can.
  • the upper end 52a of the blade portion 52 of the stirring blade 51 is lowered in the vertical direction from the axis 51a of the stirring blade 51 toward the outer peripheral end 51b of the stirring blade 51, that is, the outer peripheral end 52b of the blade 52 It is good to incline it.
  • the other shapes and numbers of the blade portions 52 of such agitating blades 51 and the distance between adjacent blade portions 52 may be determined according to the desired turbulent energy, shear stress, or Kolmogorov scale.
  • the plurality of stationary members 53 are arranged to be accommodated in the bottom region 4 e of the container 4 in their entirety.
  • the inner peripheral end 53 a of the stationary member 53 is spaced from the outer peripheral end 51 b of the stirring blade 51, that is, the outer peripheral end 52 b of the blade portion 52.
  • the upper end in the vertical direction of the inner peripheral end 53 a of the stationary member 53 be located above the upper end in the vertical direction of the outer peripheral end 52 b of the blade portion 52 in the vertical direction.
  • the other shapes and numbers of the stationary members 53 and the distance between the adjacent stationary members 53 may be determined according to the desired turbulent energy, shear stress, or Kolmogorov scale.
  • the stirring mechanism 5 has a drive source 54 for turning the stirring blade 51, and a connecting member 55 for connecting the stirring blade 51 and the driving source 54.
  • the drive source 54 is configured to pivot the stirring blade 51 by pivoting the connection member 55.
  • the connecting member 55 is formed in a substantially shaft shape extending along the axis 55a.
  • the axis 55 a of the connecting member 55 coincides with the axis 51 a of the stirring blade 51.
  • the distal end 55b of the connecting member 55 in the longitudinal direction is attached to the stirring blade 51, and the proximal end 55c in the longitudinal direction of the connecting member 55 is rotatably held by the drive source 54.
  • Such a stirring mechanism 5 is attached to the bottom wall 4 b of the container 4.
  • the insertion hole 4d formed in the bottom wall 4b of the container 4 penetrates the bottom wall 4b in the vertical direction, and the stirring mechanism 5
  • the stirring blade 51 is attached to the bottom wall 4 b of the container 4 in a state of being accommodated in the inside of the container 4 while inserting the connecting member 55 into the insertion hole 4 d.
  • the manufacturing apparatus may have a seal member 6 configured to close the gap between the peripheral edge of the insertion hole 4 d of the container 4 and the connection member 55 of the stirring mechanism 5 while allowing the connection member 55 to pivot.
  • the seal member 6 can be a sealed bearing or the like.
  • the culture medium C in the container 4 can be provided with a circulating flow as shown by the arrow F in FIG.
  • the flow from the stationary member 53 proceeds upward along the peripheral wall 4 c of the container 4 by the interaction of the swirling stirring blades 51 of the stirring mechanism 5 and the stationary stationary member 53.
  • the upward flow is swirled to the vicinity of the liquid level c1 of the culture medium C, and then the flow reaching the vicinity of the liquid level c1 of the culture medium C proceeds downward and proceeds downward.
  • the directed flow proceeds so as to swirl toward the axis 51a of the stirring blade 51, and then reaches the stirring blade 51, and again the rotating stirring blade 51 of the stirring mechanism 5 and the stationary stationary member 53 By action, the flow from the stationary member 53 proceeds upward along the peripheral wall 4 c of the container 4.
  • Such circulating flow can promote platelet production from megakaryocytes and increase platelet production.
  • the step of culturing under can also be performed from the start of the step of culturing with suppressed forced expression, that is, from the time when culture is started with a platelet production medium, and is performed 1 to 3 days before the platelet collection step. It can also be done. Although such conditions can be intermittently applied over the culture period, it is preferable to continue application from the start of the step of culture while suppressing forced expression.
  • certain preferred turbulent energy, shear stress, or Kolmogorov scales can be generally constant over the culture period, or can be of variable operation.
  • culturing the megakaryocyte cells in the platelet producing medium under the condition of giving a predetermined turbulent energy or shear stress, or swirling the stirring wing to generate turbulence in the medium according to the second aspect Macrophage migration inhibition factor (MIF), nardirelidine (N-arginine dibasic convertase; also referred to as NRDc, NRD1 protein), insulin-like proliferation by culturing megakaryocytes in platelet production medium under conditions Platelets containing factor binding protein 2 (IGFBP2), thrombospondin 1 (TSP-1), plasminogen activation inhibitor (PAI-1), and CCL5 (RANTES: normalized T cell expressed and secreted)
  • IGFBP2 factor binding protein 2
  • TSP-1 thrombospondin 1
  • PAI-1 plasminogen activation inhibitor
  • CCL5 RANTES: normalized T cell expressed and secreted
  • the amount of these platelet production promoting factors is increased in the culture medium, and physical stimulation in which turbulence energy, shear stress, or Kolmogorov scale fall within the above-mentioned preferable indicators is given to megakaryocytes in the presence of these factors. Feeding and culturing can increase the amount of platelets produced per megakaryocyte.
  • said culturing step generates a predetermined turbulent energy, shear stress, or Kolmogorov scale according to the first aspect, or swirls a stirring blade to generate turbulence in the medium according to the second aspect
  • the step of culturing may include the step of externally adding a platelet production promoting factor containing MIF, NRDc, and IGFBP2 to the megakaryocyte.
  • the externally added platelet production promoting factor is essentially the three factors MIF, NRDc, and IGFBP2, but it is more preferable to be six factors including TSP-1, PAI-1, and CCL5 in addition to these. This is because factor 6 can further enhance platelet production from megakaryocytes.
  • These externally added platelet production promoting factors may be obtained by any method, but for example, it is preferable that they be gene recombinants obtained by gene recombination techniques.
  • the recombinant those commercially available can be used, or those skilled in the art can appropriately produce recombinants according to known genetic information.
  • MIF for MIF, IGFBP2, TSP-1, PAI-1, and CCL5
  • NRDc has been reported for isolation and purification in J. Biol. Chem., 269, 2056, 1994, and the gene sequence in Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 91, 6078, 1994.
  • the concentration of the platelet production promoting factor to be added is not particularly limited, but for example, it is preferable to add about 10 to 500 ng / mL for NRDc, IGFBP2, TSP-1, PAI-1, and CCL5. More preferably, it is added so as to be about 50 to 100 ng / mL.
  • the MIF is preferably added to about 1 to 500 ng / mL, and more preferably about 10 to 100 ng / mL. However, these addition amounts can be appropriately determined by those skilled in the art, and are not limited to the above range.
  • the step of externally adding a platelet production promoting factor can be performed at the time when culture is started with a platelet production medium while suppressing forced expression, but is preferably performed 1 to 3 days before the platelet collection step. Is preferred. This is because even if the platelet production promoting factor is added from the outside, it may be deteriorated before the platelet collection step. Moreover, it is also possible to add several times at a time, instead of adding only once. In any case, when platelets are released from megakaryocytes, it is preferable to add a platelet production promoting factor so that it is present in the medium.
  • the platelet collection step to be carried out collects platelets from the culture medium by a usual method such as FACS.
  • Platelet is one of the cellular components in blood and is characterized by CD41a positive and CD42b positive. Platelets play an important role in thrombus formation and hemostasis, and are also involved in the pathophysiology of tissue regeneration and inflammation after injury.
  • receptors for cell adhesion factor such as Integrin ⁇ II B ⁇ 3 (glycoprotein II b / III a; complex of CD 41 a and CD 61) are expressed on the membrane.
  • Integrin ⁇ II B ⁇ 3 glycoprotein II b / III a; complex of CD 41 a and CD 61
  • platelets are aggregated, and fibrin is coagulated by various blood coagulation factors released from the platelets, thereby forming a thrombus and promoting hemostasis.
  • Platelet function can be measured and evaluated by known methods.
  • the amount of activated platelets can be measured using an antibody against PAC-1 that specifically binds to Integrin ⁇ IIB ⁇ 3 on activated platelet membranes.
  • CD62P P-selectin
  • flow cytometry can be performed by gating with an antibody to the activation-independent platelet marker CD61 or CD41, and then detecting binding of an anti-PAC-1 antibody or an anti-CD62P antibody. These steps may be performed in the presence of adenosine diphosphate (ADP).
  • ADP adenosine diphosphate
  • the platelet function can also be evaluated by examining whether it binds to fibrinogen in the presence of ADP.
  • the binding of platelets to fibrinogen results in the activation of integrins that are required early in thrombus formation.
  • evaluation of platelet function can also be performed by a method of visualizing and observing in vivo thrombus forming ability as shown in FIG. 6 of WO 2011/034073.
  • the platelets obtained by the production method of the present invention can be administered to patients as a preparation.
  • platelets obtained by the method of the present invention are, for example, human plasma, an infusion solution, a citric acid-containing physiological saline solution, a solution mainly containing glucose added acetate ringer solution, PAS (platelet additive solution) (Gulliksson, H. et al., Transfusion, 32: 435-440, (1992)), etc. may be stored and formulated.
  • the storage period is about 3 to 7 days, preferably 4 days.
  • megakaryocytes are produced and platelet producing methods under general culture conditions other than predetermined turbulent energy conditions, shear stress conditions, Kolmogorov scale conditions, and agitation conditions.
  • the invention relates, according to another embodiment, to a method of determining operating conditions in a platelet production device.
  • it relates to a method of determining operating conditions in an apparatus for producing platelets provided with a reciprocating impeller capable of reciprocating like the first aspect of the above-described embodiment, or can be pivotable as in the second aspect of the above-described embodiment
  • the present invention relates to a method of determining operating conditions in a platelet manufacturing apparatus provided with a stirring blade.
  • the method according to the present embodiment is an apparatus for producing platelets equipped with a reciprocating or pivotable stirring blade, wherein one or more indicators selected from turbulent energy, shear stress, and Kolmogorov scale, and platelet production number
  • the method includes the steps of calculating the correlation, and determining the operating condition that gives the index the platelet production number falls within a predetermined range.
  • the method of determining the operating condition according to the present embodiment can be implemented for any device provided with a reciprocating or rotatable stirrer.
  • the conditions regarding the stirring object such as the medium and the number of megakaryocyte cells to be seeded are made constant, the turbulent energy conditions are changed, and the platelet production number obtained under the conditions is Count.
  • the turbulent energy and the platelet production can be obtained by obtaining the platelet production number under conditions that give multiple values, for example, three or more turbulent energy values, for the above-mentioned one or more indicators. Get correlation with number.
  • correlation can be obtained similarly as shear stress or Kolmogorov scale instead of turbulent energy as an index value.
  • the range of turbulent energy, shear stress, or Kolmogorov scale giving a preferable number of platelet production is determined.
  • the determination of the preferable range can be appropriately determined based on the number of platelet production required by one skilled in the art, for example, 50% or more, 60% or more, 70% or more of the maximum platelet production number within the measurement range.
  • Turbulence energy, shear stress, or Kolmogorov scale conditions that give a platelet production number of at least 80%, at least 85%, at least 90%, or at least 95% can be defined as a preferred range. Then, determine the operating conditions that will give turbulent energy, shear stress, or Kolmogorov scale.
  • the speed of reciprocation of the stirring blade for example, the average speed of reciprocation, etc.
  • the cycle of reciprocation for example, the stroke of reciprocation, etc.
  • the average speed of reciprocating motion of the stirring blade can be in the range of 50 mm / s to 500 mm / s.
  • the swirling speed of the stirring blade, the swirling direction, and the like can be mentioned, but it is not limited thereto.
  • the platelet production efficiency has a strong correlation with the turbulent energy or shear stress in the container of the manufacturing apparatus, and the correlation is substantially constant regardless of the scale of the container It is based on the discovery of the present inventors.
  • the method according to the present embodiment is capable of easily determining appropriate operating conditions with high platelet production efficiency when newly introducing a device having a different system or when scaling up the device. It is advantageous.
  • IPS cells [Preparation of multinucleated megakaryocytes] IPS cells (TKDN SeV2: established using Sendai virus) established by the method described in Nakamura et al, Cell Stem Cell. 2014 Apr 3; 14 (4): 535-48.
  • Human fetal dermal fibroblast-derived iPS cells 585A1, 585B1, 606A1, 648B1 and 692D2: Human peripherals established using the episomal vector described in Okita K, et al, Stem Cells 31, 458-66, 2012 The immortalized megakaryocyte precursor cell line Cl-7, which was produced by simultaneously introducing c-MYC, BMI1 and BCL-XL into hematopoietic stem cells derived from blood mononuclear cell-derived iPS cells, as a starting material, 12 of Nakamura et al. Cell culture was performed based on the method described in page, Cell Culture.
  • the Gene ON medium used at this time was Doxycycline (ESC), TPO at the concentration described above in ESC differentiation medium described in Takayama et al, Blood. 2008 Jun 1; 111 (11): 5298-306. 5 ⁇ g / ml of Doxycycline) was added. The cells used in the following experiments were prepared in this way.
  • Platelet production medium is ITS 1x, L-Glu 2 mM, ascorbic acid 50 ⁇ g / mL, MTG 450 ⁇ M, human plasma 5%, Heparin 10 U / mL, human stem cell factor (SCF) 50 ng / ml, TA- 316, 200 ng / mL, GNF-351, 0.5 ⁇ M, ROCK (Rho associated protein kinase) inhibitor Y-39983, 0.5 ⁇ M, ADAM 17 inhibitor, KP457 15 ⁇ M (Hirata et al., Stem Cell Translational Medicine, in press) Used IMDM medium supplemented with For the culture, a reciprocating non-stationary bioreactor (VerMES VMF 3000 manufactured by Satake Chemical Engineering Co., Ltd.), a swinging rotary flas
  • the stirring speed in the one-way rotary bioreactor refers to the peripheral speed of the tip of the stirring blade: circular ratio ⁇ ⁇ rotational speed N (rps) ⁇ blade diameter (mm).
  • Turbulent energy was calculated using thermal fluid analysis software FLUENT (manufactured by ANSYS).
  • the relationship between the stirring speed and the turbulent energy in the reciprocating non-stationary bioreactor and the one-way rotary bioreactor is shown in FIG.
  • the white circles indicate the relationship between the stirring speed and the turbulent energy in the reciprocating non-stationary bioreactor
  • the triangles indicate the relation between the stirring speed and the turbulent energy in the conventionally used rotary bioreactor.
  • the reciprocating non-stationary bioreactor is characterized in that the turbulent energy at the average moving speed of the stirring vanes is extremely low as compared with the rotary bioreactor.
  • the feature that high turbulent energy can be obtained without giving an excessive operation speed is useful for reactor development for industrialization where scale-up is essential.
  • the rotary bioreactor is required to operate at a higher rotational speed, which makes it difficult to control shear action.
  • the relationship between turbulent energy or shear stress and the number of platelets produced was examined using a reciprocating non-stationary bioreactor VerMES of different volumes.
  • the relationship between the Kolmogorov scale and the ratio of platelet production number based on 150 mm / s was examined.
  • the platelet ratio (%) on the basis of 100 mm / s refers to the platelet number when the stirring speed (average moving speed) is 100 mm / s with respect to the platelet count (Platelets / mL) in the culture medium after completion of the 6 days culture step. It is the ratio (%) of the number of platelets in each condition when making 100%.
  • FIG. 10 the physiological activity (agitation speed: 400 mm / s) of platelets was measured using 50 L of reciprocating unsteady bioreactor VerMES. The results are shown in FIG. 10 and FIG. Referring to FIG. 10 (A), the percentage of normal platelets that were CD41a positive and CD42b positive was 90.9%.
  • FIG. 10 (B) shows the proportion of P-selectin-positive platelets when platelets were not stimulated
  • FIG. 10 (C) shows the proportion of P-selectin-positive platelets when platelets were stimulated with ADP + TRAP6.
  • ADP + TRAP6 it was confirmed that platelets increased in PAC-1 positive and P-selectin positive platelets by stimulation compared to no stimulation, and platelets maintained high physiological activity.
  • FIG. 11 (A) shows the percentage of annexin V-positive platelets when platelets are not stimulated
  • FIG. 11 (B) shows the percentage of annexin V-positive platelets when platelets are stimulated with Ionomycin.
  • Sample 2 is a sample cultured using a reciprocating non-stationary bioreactor under agitation conditions such that the turbulent energy is about 0.002 m 2 / s 2 , the shear stress is about 0.64 Pa, and the Kolmogorov scale is about 296 ⁇ m
  • Sample 3 is Sample 4 cultured with a reciprocating non-stationary bioreactor under agitation conditions with a turbulent energy of approximately 0.0047 m 2 / s 2 , a shear stress of approximately 1.42 Pa, and a Kolmogorov scale of approximately 210 ⁇ m.

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Abstract

健康で機能的な血小板を安定的に産生する製造方法および製造装置、ならびに血小板の製造装置における運転条件の決定方法を提供する。本発明は、血小板産生培地中Ｃの巨核球細胞を培養する工程を含み、培養する工程が、撹拌機構２，５を用いて容器１，４内の培地Ｃを撹拌する工程を含む、製造方法に関する。１つの製造方法では、撹拌する工程が、培地Ｃ中にて所定の乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールのいずれかを発生させるように撹拌機構２の撹拌翼２１，２４を往復動させる。別の製造方法では、撹拌する工程が、培地Ｃに乱流を発生させるように、容器４の底側領域４ｅ内にて、撹拌機構５の撹拌翼５１をその周囲に複数の静止部材５３を配置した状態で旋回させることを含む。本発明はまた、当該製造方法を実施する製造装置に関する。本発明はまた、血小板の製造装置における運転条件の決定方法に関する。

Description

血小板の製造方法および製造装置、ならびに血小板の製造装置における運転条件の決定方法
　本発明は、血小板の製造方法および製造装置に関する。さらに、本発明は、血小板の製造装置における運転条件の決定方法に関する。
　血小板製剤は、手術時や傷害時の大量出血、或いは、抗がん剤治療後の血小板減少に伴う出血傾向を呈する患者に対して、その症状の治療および予防を目的として投与される。現在、血小板製剤の製造は、献血に依存しているが、感染症に関してより安全であり、血小板の安定供給が求められている。そのニーズに応えるべく、今日では、in vitroで培養した巨核球細胞から血小板を生産する方法が開発されている。本出願人らは、多能性幹細胞をソースとして不死化した、不死化巨核球前駆細胞株（immortalized megakaryocyte progenitor cell lines：imMKCL）の樹立方法を確立してきた（例えば、特許文献１を参照）。また、この不死化巨核球前駆細胞株を用いた血小板の製造方法並びにこのような製造に用いる装置についても、検討を重ねてきた（例えば、特許文献２を参照）。
　巨核球細胞から血小板が製造される際のメカニズムについては、広く研究がなされてきた。この中で、流れに依存する剪断力により、血小板切断が促進されることが示唆されている（例えば、非特許文献１を参照）。また、ケモカインCCL5が巨核球からの血小板産生を促すことが報告されている（例えば、非特許文献２を参照）。
国際公開第2012/157586号 国際公開第2017/077964号
Science 317 (5845),1767-1770 Blood, 2016; 127(7):921-926
　不死化巨核球前駆細胞株は冷凍による保存が可能であり、人工的な多核化の促進が可能であるなど、多くの利点がある。この不死化巨核球前駆細胞株から、需要に応じて、血小板を安定的、かつ大量に製造するための、より効率的な方法および装置が求められる。
　血小板の大量製造のためのアプローチとして、巨核球増生（Megakaryopoiesis）、血小板切断（platelet shedding）といった異なるステップの両方について考慮する必要がある。巨核球増生については、ソースとなる細胞数を増やすアプローチがあり、本発明者らによる不死化巨核球細胞の製造方法（特許文献１）は、その一つとして挙げられる。一方、剪断力により血小板切断が促進されることが示唆されている（非特許文献１）。また、in vivoにおける血小板の産生メカニズムには、IL-1 alphaにより誘導される急性の血小板の産生と、定常的な血小板の産生とがあることがわかってきた。急性の血小板産生は、短時間で大量の血小板を産生するが、産生された血小板はAnnexin V 陽性率が高く、生体内で長時間循環することができない特性を持っている。すなわち、このようなメカニズムで産生された血小板は血液製剤としての使用には不適である。本発明者らは、定常時の血小板産生のメカニズムに着目し、血小板産生を促進する因子の存在を特定した。そして、成熟期にある巨核球細胞を含む培地に対して、所定の装置を用いて、所定の範囲の乱流エネルギーまたは剪断応力を加えることで血小板産生促進因子の放出を促進し、輸血製剤に適した健康な血小板の産生量を増加することが可能であることを発見し、本発明を完成するに至った。
　すなわち、本発明は次に記載の事項を提供するものである。
　［１］　血小板産生培地中の巨核球細胞を培養する工程を含む血小板の製造方法であって、
　前記培養する工程が、撹拌翼を用いて容器内の前記血小板産生培地を撹拌する工程を含み、
　撹拌する工程が、以下：
（ａ）約0.0005m2/s2～約0.02m2/s2の乱流エネルギー；
（ｂ）約0.2Pa～約6.0Paの剪断応力；及び
（ｃ）約100μm～約600μmのコルモゴロフスケール
　から選択される１以上の指標を充足するように、前記撹拌翼を往復動させることを含む、血小板の製造方法。
　［２］　血小板産生培地中の巨核球細胞を培養する工程を含む血小板の製造方法であって、
　前記培養する工程が、鉛直に延びる軸線を中心として旋回可能な撹拌翼であって、撹拌翼の少なくとも一部を容器の底側領域内に配置した撹拌翼を用いて前記容器内の血小板産生培地を撹拌する工程を含み、
　前記撹拌する工程が、前記培地中にて、複数の静止部材を前記撹拌翼の旋回に伴って前記培地に乱流を発生させるように前記底側領域内にて前記撹拌翼の周囲に配置した状態で、前記撹拌翼を旋回させることを含む、血小板の製造方法。
　［３］　前記巨核球細胞を培養する工程の前に、巨核球細胞より未分化な細胞において、癌遺伝子、ポリコーム遺伝子、及びアポトーシス抑制遺伝子を強制発現させて、不死化巨核球細胞を得る工程を含む、［１］または［２］に記載の方法。
　［４］　前記巨核球細胞を培養する工程で得られた血小板を回収する工程を含む、［１］～［３］のいずれか１項に記載の方法。
　［５］　巨核球細胞を含む培地を収容する容器と、
　前記容器内を往復動する撹拌翼と
　を備える血小板の製造装置であって、
　前記培地中にて以下：
（ａ）約0.0005m2/s2～約0.02m2/s2の乱流エネルギー；
（ｂ）約0.2Pa～約6.0Paの剪断応力；及び
（ｃ）約100μm～約600μmのコルモゴロフスケール
　から選択される１以上の指標を充足するように前記撹拌翼を往復動させることによって前記培地を撹拌した状態で、前記巨核球細胞から血小板を産生する血小板の製造装置。
　［６］　巨核球細胞を含む血小板産生培地を収容する容器と、
　前記培地に乱流を発生させるように前記培地を撹拌する撹拌機構と
　を備え、
　前記撹拌機構が、鉛直に延びる軸線を中心として旋回可能な撹拌翼であって、撹拌翼の少なくとも一部を前記容器の底側領域内に配置した撹拌翼と、前記撹拌翼の旋回に伴って前記乱流を発生させるように前記底側領域内にて前記撹拌翼の周囲に配置される複数の静止部材とを有し、
　前記培地中にて前記撹拌翼を旋回させることによって前記培地を撹拌した状態で、前記巨核球細胞から血小板を産生する血小板の製造装置。
　［７］　往復動可能又は旋回可能な撹拌翼を備えた血小板の製造装置における運転条件の決定方法であって、
　前記製造装置における、乱流エネルギー、剪断応力及びコルモゴロフスケールから選択される１以上の指標と、血小板産生数との相関関係を算出する工程と、
　前記血小板産生数が所定の範囲になる前記指標を与える運転条件を決定する工程と
　を含む方法。
　［８］　前記運転条件が、前記往復動可能な撹拌翼の往復動の平均速度を50mm/s～500mm/sの範囲とすることを含む、［７］に記載の方法。
　［９］　前記撹拌する工程において、MIF、NRDc、及びIGFBP2を含む血小板産生促進因子を外部から添加する工程を含む、［１］～［４］のいずれか１項に記載の方法。
　［１０］　前記外部から添加する血小板産生促進因子が、TSP-1、PAI-1、及びCCL5をさらに含む、［９］に記載の方法。
　本発明に係る方法および装置によれば、巨核球細胞からの血小板の産生を促進し、血小板の産生量を増大させることができる。加えて、本発明の方法および装置により製造される血小板は、Annexin Vレベルが低く、血液製剤として用いるのに適した特性を備えており、血液製剤の製造において非常に有用である。さらに、本発明に係る方法は、巨核球細胞の培養工程における運転条件、特には撹拌の条件の指針を与えるものである。したがって、この指針に沿って、培地の非定常撹拌を行うことで、異なるスケールの装置や、異なる種類の装置においても、血小板の分離前の巨核球細胞に対して、血小板産生に適した運転条件を決定することができ、血小板の安定な生産が可能になる。
図１は、本発明の一実施形態の第１態様に係る血小板の製造装置を概略的に示す縦断面図である。 図２は、図１のＡ－Ａ線横断面図である。 図３は、上記第１態様の変形態様に係る容器と、第１および第２撹拌翼と連結部材とを概略的に示す斜視図である。 図４は、本発明の一実施形態の第２態様に係る血小板の製造装置を概略的に示す縦断面図である。 図５は、図４のＢ－Ｂ線横断面図である。 図６は、往復動非定常バイオリアクタを用いた場合、および一方向回転式バイオリアクタを用いた場合の、撹拌速度と乱流エネルギーとの関係を示すグラフである。 図７は、往復動非定常バイオリアクタを用いた場合の、乱流エネルギーと血小板産生数（撹拌速度１００ｍｍ／ｓにおける血小板産生数に対する割合（％））との関係を示すグラフである。 図８は、往復動非定常バイオリアクタを用いた場合の、剪断応力と血小板産生数（撹拌速度１００ｍｍ／ｓにおける血小板産生数に対する割合（％））との関係を示すグラフである。 図９は、往復動非定常バイオリアクタを用いた場合の、コルモゴロフスケールと血小板産生数（撹拌速度１５０ｍｍ／ｓにおける血小板産生数に対する割合）との関係を示すグラフである。 図１０は、５０Ｌの往復非定常バイオリアクタを用いた場合の、血小板の生理活性を測定した結果を示し、図１０（Ａ）はCD41a陽性及びCD42b陽性である正常血小板の割合、図１０（Ｂ）は血小板を刺激しなかった場合のP-selectin陽性血小板割合、図１０（Ｃ）は血小板をADP+TRAP6で刺激した場合のP-selectin陽性血小板割合を示す。 図１１は、５０Ｌの往復非定常バイオリアクタを用いた場合の、血小板の生理活性を測定した結果を示し、図１１（Ａ）は、血小板を刺激しなかった場合のアネキシンV陽性血小板割合、図１１（Ｂ）は、血小板をIonomycin刺激した場合のアネキシンV陽性血小板割合を示す。
　以下に本発明を、実施態様を示して詳細に説明する。しかしながら、本発明は以下の実施態様に限定されるものではない。
　［血小板の製造方法および製造装置］
　本発明は、一実施形態の第１態様によれば、血小板の製造方法に関し、より詳細には、血小板産生培地中の巨核球細胞を培養する工程を含む製造方法であって、前記培養する工程が、撹拌翼を用いて容器内の前記血小板産生培地を撹拌する工程を含み、前記撹拌する工程が、以下：
（ａ）約0.0005m2/s2～約0.02m2/s2の乱流エネルギー；
（ｂ）約0.2Pa～約6.0Paの剪断応力；及び
（ｃ）約100μm～約600μmのコルモゴロフスケール
　から選択される少なくとも１つの指標を充足するように、前記撹拌翼を往復動させることを含む製造方法に関する。また、本発明は、一実施形態の第１態様によれば、当該製造方法を実施するための血小板の製造装置に関する。
　本発明は、一実施形態の第２態様によれば、血小板の製造方法に関し、より詳細には、血小板産生培地中の巨核球細胞を培養する工程を含む製造方法であって、前記培養する工程が、略鉛直に延びる軸線を中心として旋回可能な撹拌翼であって、撹拌翼の少なくとも一部を容器の底側領域内に配置した撹拌翼を用いて前記容器内の血小板産生培地を撹拌する工程を含み、前記撹拌する工程が、前記培地中にて、複数の静止部材を前記撹拌翼の旋回に伴って前記培地に乱流を発生させるように前記底側領域内にて前記撹拌翼の周囲に配置した状態で、前記撹拌翼を旋回させることを含む、製造方法に関する。また、本発明は、一実施形態の第２態様によれば、当該製造方法を実施するための血小板の製造装置に関する。
　本発明の血小板の製造方法において、上記培養する工程において培養の対象となる巨核球細胞とは、以下に定義される巨核球細胞をいう。「巨核球細胞」とは、生体内においては骨髄中に存在する最大の細胞であり、血小板を放出することを特徴とする。また、細胞表面マーカーCD41a、CD42a、及びCD42b陽性で特徴づけられ、他に、CD9、CD61、CD62p、CD42c、CD42d、CD49f、CD51、CD110、CD123、CD131、及びCD203cからなる群より選択されるマーカーをさらに発現していることもある。「巨核球細胞」は、多核化（多倍体化）すると、通常の細胞の16～32倍のゲノムを有するが、本明細書において、単に「巨核球細胞」という場合、上記の特徴を備えている限り、多核化した巨核球細胞と多核化前の巨核球細胞の双方を含む。「多核化前の巨核球細胞」は、「未熟な巨核球細胞」、又は「増殖期の巨核球細胞」とも同義である。巨核球細胞は、公知の様々な方法で得ることができ、特には限定されず、任意の起源から、任意の方法で得られる巨核球細胞であってよい。
　本発明に係る血小板の製造方法は、好ましくは、上記培養する工程の前に、巨核球細胞より未分化な細胞において、癌遺伝子、ポリコーム遺伝子、及びアポトーシス抑制遺伝子を強制発現させて、不死化巨核球細胞を得る工程を含む。
　このような不死化巨核球細胞の製造方法の非限定的な例として、国際公開第2011/034073号に記載された方法が挙げられる。同方法では、「巨核球細胞より未分化な細胞」において、癌遺伝子とポリコーム遺伝子を強制発現させることにより、無限に増殖する不死化巨核球細胞株を得ることができる。また、国際公開第2012/157586号に記載された方法に従って、「巨核球細胞より未分化な細胞」において、アポトーシス抑制遺伝子を強制発現させることによっても、不死化巨核球細胞株を得ることができる。これらの不死化巨核球細胞株は、遺伝子の強制発現を解除することにより、多核化が進み、血小板を放出するようになる。したがって、本発明における、培養する工程は、遺伝子の強制発現を解除して培養する工程ともいうことができる。
　培養する工程の前に実施することができる不死化巨核球細胞を得る工程では、巨核球細胞を得るために、上記の文献に記載された方法を組み合わせてもよい。その場合、癌遺伝子、ポリコーム遺伝子、及びアポトーシス抑制遺伝子の強制発現は、同時に行ってもよく、順次行ってもよい。例えば、癌遺伝子とポリコーム遺伝子を強制発現させ、当該強制発現を抑制し、次にアポトーシス抑制遺伝子を強制発現させ、当該強制発現を抑制して、多核化巨核球細胞を得てもよい。また、癌遺伝子とポリコーム遺伝子とアポトーシス抑制遺伝子を同時に強制発現させ、当該強制発現を同時に抑制して、多核化巨核球細胞を得ることもできる。まず、癌遺伝子とポリコーム遺伝子を強制発現させ、続いてアポトーシス抑制遺伝子を強制発現させ、当該強制発現を同時に抑制して、多核化巨核球細胞を得ることもできる。本明細書において、遺伝子を強制発現させる工程を増殖期あるいは増殖可能な状態、強制発現を抑制する工程を成熟期ということもある。
　本発明において、「巨核球細胞より未分化な細胞」とは、巨核球への分化能を有する細胞であって、造血幹細胞系から巨核球細胞に至る様々な分化段階の細胞を意味する。巨核球より未分化な細胞の非限定的な例としては、造血幹細胞、造血前駆細胞、CD34陽性細胞、巨核球・赤芽球系前駆細胞（MEP）が挙げられる。これらの細胞は、例えば、骨髄、臍帯血、末梢血から単離して得ることもできるし、さらにより未分化な細胞であるES細胞、iPS細胞等の多能性幹細胞から分化誘導して得ることもできる。
　本発明において、「癌遺伝子」とは、生体内において細胞の癌化を誘導する遺伝子のことをいい、例えば、MYCファミリー遺伝子（例えば、c-MYC、N-MYC、L-MYC）、SRCファミリー遺伝子、RASファミリー遺伝子、RAFファミリー遺伝子、c-Kit、PDGFR、Ablなどのプロテインキナーゼファミリー遺伝子が挙げられる。
　「ポリコーム遺伝子」とは、CDKN2a（INK4a/ARF）遺伝子を負に制御し、細胞老化を回避するために機能する遺伝子として知られている（小倉ら,再生医療 vol. 6, No. 4, pp26-32； Jseusetal., Jseusetal., Nature Reviews Molecular Cell Biology vol. 7, pp667-677, 2006； Proc. Natl. Acad. Sci. USA vol. 100, pp211-216, 2003）。ポリコーム遺伝子の非限定的な例として、BMI1、Mel18、Ring1a/b、Phc1/2/3、Cbx2/4/6/7/8、Ezh2、Eed、Suz12、HDAC、Dnmt1/3a/3bが挙げられる。
　「アポトーシス抑制遺伝子」とは、細胞のアポトーシスを抑制する機能を有する遺伝子をいい、例えば、BCL2遺伝子、BCL－xL遺伝子、Survivin遺伝子、MCL1遺伝子などが挙げられる。
　遺伝子の強制発現及び強制発現の解除は、国際公開第2011/034073号、国際公開第2012/157586号、国際公開第2014/123242、またはNakamura S et al, Cell Stem Cell. 14, 535-548, 2014に記載された方法、その他の公知の方法又はそれに準ずる方法で行うことができる。例えば、遺伝子の強制発現及びその解除のためにTet-on（登録商標）又はTet-off（登録商標）システムのような薬剤応答性の遺伝子発現誘導システムを用いる場合、強制発現する工程においては、対応する薬剤、例えば、テトラサイクリンまたはドキシサイクリンを培地に含有させ、これらを培地から除くことによって強制発現を抑制してもよい。
　遺伝子の強制発現及び強制発現の抑制（解除）を実施する際の巨核球細胞の培養条件は、通常の条件とすることができる。例えば、温度は約35℃～約42℃、約36℃～約40℃、又は約37℃～約39℃とすることができ、5～15% CO2及び／又は20％ O2としてもよい。
　具体的には、上記の遺伝子を巨核球細胞より未分化な細胞において強制発現させる工程は、当業者の常法にしたがって行うことができ、例えば、これらの遺伝子を発現するベクター、またはこれらの遺伝子をコードするタンパク質またはRNAの形態で巨核球細胞より未分化な細胞へ導入することによって成し得る。さらには、これらの遺伝子の発現を誘導する低分子化合物等を巨核球細胞より未分化な細胞と接触させることによって行うことができる。
　これらの遺伝子を発現するベクターとは、例えば、レトロウイルス、レンチウィルス、アデノウイルス、アデノ随伴ウィルス、ヘルペスウイルス及びセンダイウィルスなどのウィルスベクター、動物細胞発現プラスミド（例、pA1-11，pXT1，pRc/CMV，pRc/RSV，pcDNAI/Neo）などが用いられ得る。単回導入により実施し得るという点において、好ましくは、レトロウィルスベクターまたはレンチウィルスベクターである。発現ベクターにおいて使用されるプロモーターの例としては、EF-αプロモーター、CAGプロモーター、SRαプロモーター、SV40プロモーター、LTRプロモーター、CMV（サイトメガロウイルス）プロモーター、RSV（ラウス肉腫ウィルス）プロモーター、MoMuLV（モロニーマウス白血病ウィルス）LTR、HSV-TK（単純ヘルペスウイルスチミジンキナーゼ）プロモーターなどが用いられる。発現ベクターは、プロモーターの他に、所望によりエンハンサー、ポリＡ付加シグナル、選択マーカー遺伝子、SV40複製起点などを含有していてもよい。有用な選択マーカー遺伝子としては、例えば、ジヒドロ葉酸還元酵素遺伝子、ネオマイシン耐性遺伝子、ピューロマイシン耐性遺伝子等が挙げられる。
　本発明の発現ベクターにおいて、テトラサイクリンまたはドキシサイクリンによりその遺伝子の発現を制御するため、プロモーター領域にはテトラサイクリン反応性エレメントを有している薬剤応答性ベクターであってもよい。この他にも、Cre-loxPシステムを使用して、遺伝子をベクターから切り出すため、loxP配列にて遺伝子またはプロモーター領域もしくはその両方をはさむようにloxP配列が設置された発現ベクターを用いてもよい。
　巨核球細胞の製造においては、アポトーシス抑制遺伝子を強制発現させて培養している細胞を、(a)アクトミオシン複合体機能阻害剤で処理する工程、(b)ROCK阻害剤で処理する工程、の少なくとも１つを含んでもよい。これらの処理により、より安定な増殖と多核化を進めることができる。
　アクトミオシン複合体機能阻害剤、ROCK阻害剤等で細胞を処理する場合の至適濃度などは、当業者であれば、予備的な実験によって予め決定することができる。また、処理する期間や方法なども、当業者において適宜選択することができる。例えば、ミオシン重鎖II ATPase阻害剤であるブレビスタチン処理の場合、2～15μg/ml、あるいは、5～10μg/ml程度を培養液中に添加し、培養期間としては、例えば、5～10日間程度、特に、6～7日間程度が好ましい。また、ROCK阻害剤であるY27632は、5～15μM、あるいは、8～12μM、好ましくは10μM程度で使用することができる。Y27632の処理時間としては、10～21日間、好ましくは14日間程度である。
　ROCK（Rho-associated coiled－coil forming kinase／Rho結合キナーゼ）阻害剤としては、例えば、〔（R）－（＋）－トランス－N－（4－ピリジル）－4－（1－アミノエチル）-シクロヘキサンカルボキサミド・2HCl・H2O〕（Y27632）などを挙げることができる。場合によっては、Rhoキナーゼ活性を阻害するような抗体、あるいは、核酸（例えば、shRNAなど）も、ROCK阻害剤として使用することができる。
　強制発現させる工程の後、当該工程で得られた巨核球または巨核球前駆細胞に対して、血小板産生培地で培養する工程を実施する。培養する工程において、強制発現を抑制あるいは停止する方法として、例えば、前工程で薬剤応答性ベクターを用いて強制発現をしている場合には、対応する薬剤と当該細胞と接触させないことによって達成させてもよい。具体的には、ドキシサイクリンやテトラサイクリンにより遺伝子の強制発現を行う場合には、これらを除去した培地において細胞を培養することにより、強制発現を抑制することができる。この他にも、上記のLoxPを含むベクターを用いた場合は、Creリコンビナーゼを当該細胞に導入することによって達成させてもよい。さらに、一過性発現ベクター、およびRNAまたはタンパク質導入を用いた場合は、当該ベクター等との接触を止めることによって達成させてもよい。本工程において用いられる培地は、上記と同一の培地を用いて行うことができる。
　培養する工程において使用する血小板産生培地は特に限定されず、巨核球細胞から血小板が産生されるのに好適な公知の培地やそれに準ずる培地を適宜使用することができる。例えば、動物細胞の培養に用いられる培地を基礎培地として調製することができる。基礎培地としては、例えばIMDM培地、Medium 199培地、Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM)培地、αMEM培地、Dulbecco's modified Eagle's Medium (DMEM)培地、Ham's  F12培地、RPMI 1640培地、Fischer's培地、Neurobasal Medium（ライフテクノロジーズ）およびこれらの混合培地が挙げられる。
　培地には、血清又は血漿が含有されていてもよいし、あるいは無血清でもよい。必要に応じて、培地は、例えば、アルブミン、インスリン、トランスフェリン、セレン、脂肪酸、微量元素、2-メルカプトエタノール、チオールグリセロール、モノチオグリセロール（MTG）、脂質、アミノ酸（例えばL-グルタミン）、アスコルビン酸、ヘパリン、非必須アミノ酸、ビタミン、増殖因子、低分子化合物、抗生物質、抗酸化剤、ピルビン酸、緩衝剤、無機塩類、サイトカインなどの1つ以上の物質も含有し得る。サイトカインとは、血球系分化を促進するタンパク質であり、例えば、血管内皮細胞増殖因子（VEGF）、トロンボポエチン（TPO）、各種TPO様作用物質、Stem Cell Factor（SCF）、ITS（インスリン－トランスフェリン－セレナイト）サプリメント、ADAM阻害剤、などが例示される。本発明において好ましい培地は、血清、インスリン、トランスフェリン、セリン、チオールグリセロール、アスコルビン酸、TPOを含むIMDM培地である。さらにSCFを含んでいてもよく、さらにヘパリンを含んでいてもよい。それぞれの濃度も特に限定されないが、例えば、TPOは、約10ng/mL～約200ng/mL、又は約50ng/mL～約100ng/mLとすることができ、SCFは、約10ng/mL～約200ng/mL、又は約50ng/mLとすることができ、ヘパリンは、約10U/mL～約100U/mL、又は約25U/mLとすることができる。ホルボールエステル（例えば、ホルボール-12-ミリスタート-13-アセタート；PMA）を加えてもよい。
　本発明に係る製造方法では、巨核球細胞の培養工程を、血清フリー及び／又はフィーダー細胞フリーの条件で行ってもよい。好ましくは、TPOを含有する培地で本発明の方法にしたがって製造された巨核球を培養することで行う方法である。血小板産生工程においては、血清フリー且つフィーダー細胞フリーで行うことができれば、得られた血小板を臨床的に用いる場合に免疫原性の問題が生じにくい。また、フィーダー細胞を用いないで血小板を産生させることができれば、フィーダー細胞を接着させる必要がないので、フラスコなどで浮遊培養することができるので、製造コストを抑制できるとともに、大量生産に適している。なお、フィーダー細胞を用いない場合は、conditioned mediumを使用してもよい。conditioned mediumは、特に限定されず、当業者が公知の方法等に従って作製することができるが、例えば、フィーダー細胞を適宜培養し、培養物からフィーダー細胞をフィルターで除去することによって得ることができる。
　培養期間については、巨核球の数などをモニターしながら、適宜決定することが可能であるが、例えば、2日間～10日間、好ましくは3日間～7日間程度である。少なくとも3日以上であることが望ましい。また、培養期間中は、適宜、継代を行うことが望ましい。
　血小板産生培地にROCK阻害剤及び／又はアクトミオシン複合体機能阻害剤を加える。ROCK阻害剤及びアクトミオシン複合体機能阻害剤としては、上述した多核化巨核球の製造方法で使用したものと同じものを使用することができる。ROCK阻害剤としては、例えばY27632が挙げられる。アクトミオシン複合体機能阻害剤としては、ミオシン重鎖II ATPase阻害剤である、ブレビスタチンが挙げられる。ROCK阻害剤を単独で加えてもよく、ROCK阻害剤とアクトミオシン複合体機能阻害剤を単独で加えてもよいし、これらを組み合わせて加えてもよい。
　ROCK阻害剤及び／又はアクトミオシン複合体機能阻害剤は、0.1μM～30μMで加えることが好ましく、例えば0.5μM～25μM、5μM～20μM等としてもよい。ROCK阻害剤及び／又はアクトミオシン複合体機能阻害剤を加えてからの培養期間は1日～15日とすることができ、3日、5日、7日等としてもよい。ROCK阻害剤及び／又はアクトミオシン複合体機能阻害剤を加えることにより、CD42b陽性血小板の割合をさらに増加させることが可能である。
　上述のように、本発明の一実施形態の第１態様に係る血小板の製造方法においては、血小板産生培地で強制発現を抑制して巨核球細胞を培養する培養工程が、撹拌翼を用いて容器内の前記血小板産生培地を撹拌する工程を含む。そして、撹拌する工程が、最低限の商業生産を目的として、以下：
（ａ）約0.0005m2/s2～約0.02m2/s2の乱流エネルギー；
（ｂ）約0.2Pa～約6.0Paの剪断応力；及び
（ｃ）約100μm～約600μmのコルモゴロフスケール
　から選択される１以上の指標を充足するように、前記撹拌翼を往復動させることが好ましい。
　撹拌対象物である容器内の培地における乱流エネルギー、剪断応力、及びコルモゴロフスケールは、乱流の基本方程式に基づき、シミュレーションにより算出することができる。例えば、熱流体解析ソフトFLUENT（ANSYS社製）を用いて計算することができるが、特定のソフトウエアには限定されない。より具体的には、乱流エネルギーは、撹拌翼を往復動させるように構成する場合には、撹拌翼翼の往復動のストローク、往復動の速度、往復動の周波数等により変化する。複数の撹拌翼を用いて構成される場合には、撹拌翼の数も、変化を生じさせる一要素となり得る。剪断応力及びコルモゴロフスケールも、同様の要素の変更により変化する。
　ある実施形態においては、上記指標は、約0.0005m2/s2～約0.015m2/s2の乱流エネルギー；約0.2Pa～約3.6Paの剪断応力；及び約100μm～約600μmのコルモゴロフスケールから選択される１以上であってもよい。別の実施形態において、上記指標は、約0.001m2/s2～約0.016m2/s2の乱流エネルギー；約0.3Pa～約4.7Paの剪断応力；及び約120μm～約440μmのコルモゴロフスケールから選択される１以上、あるいは、約0.001m2/s2～約0.015m2/s2の乱流エネルギー；約0.3Pa～約3.6Paの剪断応力；及び約120μm～約440μmのコルモゴロフスケールから選択される１以上であってもよい。また別の実施形態においては、上記指標は、約0.002m2/s2～約0.012m2/s2の乱流エネルギー；約0.5Pa～約3.6Paの剪断応力；及び約160μm～約320μmのコルモゴロフスケールから選択される１以上であってもよい。なお、これらの数値範囲は例示にすぎず、本発明を限定するものではない。また、これらの指標を、以下の本明細書において、総称して乱流の指標と指称する場合がある。
　ここで、本発明の一実施形態の第１態様に係る製造方法を実施するための血小板の製造装置について、図１～図３を参照して説明する。
　図１および図２に示すように、本態様に係る血小板の製造装置は、巨核球細胞を含む培地Ｃを収容する容器１と、この容器１内の培地Ｃを撹拌する１つの撹拌翼２１を有する撹拌機構２とを備える。撹拌機構２は、撹拌翼２１を往復動させるように構成される。なお、図１において、撹拌翼２１の往復動方向を矢印Ｒにより示す。さらに、撹拌機構２は、培地Ｃ中にて所望の乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールのいずれか１つを発生させるように撹拌翼２１の往復動を制御する。かかる撹拌機構２においては、撹拌翼２１の往復動のストローク、往復動の速度（例えば、往復動の平均速度など）、往復動の周波数などが制御されるとよい。特に、撹拌翼２１の往復動は、非定常的なパターンにて制御されると好ましい。所望の乱流エネルギーおよび剪断応力は、上述のようなシミュレーションによって算出することができる。所望の乱流エネルギー、剪断応力、及びコルモゴロフスケールは、上記の（ａ）、（ｂ）、（ｃ）のとおり、あるいは他の実施形態として先に記載した数値範囲の各指標であってよい。製造装置は、このような条件下で巨核球細胞から血小板を産生する。
　さらに、製造装置は次のように構成されると好ましい。製造装置の容器１は、中空体となっており、図１および図２においては、一例として、容器１は略円筒形状に形成されている。なお、本発明においては、容器は、中空体であれば、略円筒形状以外の形状に形成されてもよい。かかる容器１は、実質的に鉛直方向に対向する頂壁部（または頂部）１ａおよび底壁部（または底部）１ｂと、頂壁部１ａおよび底壁部１ｂの外周縁部間で延びる周壁部（または周部）１ｃとを有する。さらに、容器１は、実質的に鉛直方向に延びる細長形状に形成されると好ましい。
　図１においては、頂壁部１ａは、周壁部１ｃとは別体である容器１の蓋として構成されており、この頂壁部１ａを取り外した状態で、容器１の内部に培地Ｃを投入することができる。なお、本発明において、培地を投入するための投入口が容器に穿設されてもよく、この場合、容器において頂壁部が周壁部と一体に形成されてもよい。さらに、本発明においては、血小板の製造条件に応じて、容器が上方に向かって開口するように形成されてもよく、この場合、頂壁部に開口が形成されるか、または容器が頂壁部を有さないとよい。容器１の容量は、血小板を産生することができれば、あらゆる値とすることができるが、例えば、血小板の産生量を増大させるという観点においては、容器１の容量は、約３００ｍＬ以上、約１Ｌ以上、約５０Ｌ以上、約２００Ｌ以上、約５００Ｌ以上、約１０００Ｌ以上、または約２０００Ｌ以上であると好ましい。
　図１に示すように、製造装置の撹拌機構２の撹拌翼２１は、その往復動方向に対して所定の交差角度θ１にて交差する交差平面に沿って配置される。交差角度θ１は約９０°となっている。言い換えれば、撹拌翼２１は、その往復動方向に対して略直交する交差平面に沿って配置されている。かかる撹拌翼２１は略平板形状に形成されている。撹拌翼２１の外周縁２１ａは、交差平面に直交する方向から見て、略円形状に形成されている。図１および図２に示すように、撹拌翼２１は、容器１の頂壁部１ａ、底壁部１ｂ、および周壁部１ｃと間隔を空けて配置されている。このような撹拌翼２１は「撹拌羽根」と呼ばれることもある。また、撹拌翼２１の他の形状と、容器１の周壁部１ｃ及び撹拌翼２１の外周縁２１ａ間の距離とは、所望の乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールに応じて定められるとよい。
　しかしながら、本発明の撹拌翼について、撹拌翼の交差角度は、所望の乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールに応じて、約９０°以外の交差角度としてもよい。かかる交差角度は、約０°～約１８０°の範囲内にあるとよい。また、撹拌翼は、所望の乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールに応じて、略平板形状以外の形状に形成されてもよく、例えば、撹拌翼は、略半球殻形状、略椀形状、略湾曲板形状、略波付き板形状などに形成されてもよい。さらに、撹拌翼の外周縁は、所望の乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールに応じて、交差平面に直交する方向から見て、略円形状以外の形状に形成されてもよく、例えば、撹拌翼の外周縁は、交差平面に直交する方向から見て、略半円形状、略楕円形状、略半楕円形状、略扇形状、略四角形状などの略多角形状、略星型多角形状などに形成されてもよい。撹拌翼はまた、その往復動方向に貫通する少なくとも１つの孔を有してもよく、かかる孔の形状、数、および位置は、所望の乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールに応じて定められるとよい。
　さらに、図１に示すように、撹拌機構２は、撹拌翼２１を往復動させるための駆動源２２と、撹拌翼２１および駆動源２２を連結する連結部材２３とを有する。駆動源２２は、連結部材２２を往復動させることによって、撹拌翼２１を往復動させるように構成されている。なお、駆動源２２は、かかる往復動に加えて、撹拌翼２１および連結部材２３を連結部材２３の軸線２３ａを中心に旋回させるように構成されてもよい。この場合、撹拌機構２においては、撹拌翼２１の往復動の制御に加えて、撹拌翼２１の旋回速度、旋回方向などが制御されるとよく、特に、撹拌翼２１の往復動および旋回が、非定常的なパターンにて制御されると好ましい。
　また、連結部材２３は、その軸線２３ａに沿って延びる略シャフト形状に形成されている。連結部材２３の長手方向の先端部２３ｂが撹拌翼２１に取り付けられ、連結部材２３の長手方向の基端部２３ｃが往復動可能に駆動源２２に保持されている。図２に示すように、連結部材２３の先端部２３ｂは、撹拌翼２１の重心に略一致する位置に取り付けられている。なお、連結部材の先端部は、所望の乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールに応じて、撹拌翼の重心からズレた位置に取り付けられてもよい。
　このような撹拌機構２は容器１の頂壁部１ａに取り付けられている。撹拌機構２の具体的な取付構造については、容器１の頂壁部１ａには、往復動方向に貫通する挿入孔１ｄが形成されており、撹拌機構２は、連結部材２３を挿入孔１ｄに挿入しながら撹拌翼２１を容器１の内部に収容した状態で容器１の頂壁部１ａに取り付けられている。なお、本発明においては、撹拌機構が、容器の頂壁部の代わりに、上述した撹拌機の具体的な取付構造によって容器の底壁部または周壁部に取り付けられてもよい。
　容器１の密閉性を高めようとする場合、製造装置は、連結部材２３の往復動を許容しながら、容器１の挿入孔１ｄの周縁および撹拌機構２の連結部材２３間の隙間を塞ぐように構成されるシール部材３を有するとよい。例えば、かかるシール部材３は、連結部材２３の往復動に追従可能である柔軟な構造を有するとよい。さらに、かかる柔軟な構造は、ゴムなどの柔軟な材料から成る膜構造であってもよく、または柔軟な構造は、金属、テフロン（登録商標）などから成るべローズ構造であってもよい。なお、本発明において、シール部材は、連結部材を往復動方向にて摺動可能に保持するように構成されてもよい。
　このような製造装置において、撹拌機構２の撹拌翼２１は、容器１内における所定の可動範囲内を往復動する。かかる可動範囲は、所望の乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールを得ることができるように、容器１内または培地Ｃ中にて設定される。特に、可動範囲の往復動方向の長さ、すなわち、撹拌翼２１の往復動の最大ストロークと、可動範囲の往復動方向の中心位置とは、容器１の往復動方向の長さ、容器１の底壁部１ｂから培地Ｃの液面ｃ１までの距離、容器１の容量、所望の乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールなどに応じて定められるとよい。
　さらに、図３を参照して、第１態様の変形態様に係る製造装置について説明する。なお、図３においては、容器１を仮想線により示す。かかる第１態様の変形態様によれば、製造装置の撹拌機構２が、往復動方向に互いに間隔を空けて配置される２つの撹拌翼２１，２４を有する。２つの撹拌翼２１，２４の一方（以下、必要に応じて「第１撹拌翼」という）２１は、往復動方向に貫通する複数の孔２１ｂを有し、この点を除いて、第１撹拌翼２１は、図１および図２に示した第１態様の撹拌翼２１と同様に構成されている。
　２つの撹拌翼２１，２４の他方（以下、必要に応じて「第２撹拌翼」という）２４は、次の点を除いて、第１態様の撹拌翼２１と同様に構成されている。第２撹拌翼２４は、連結部材２３の長手方向の中間部２３ｄに取り付けられている。図３においては、第２撹拌翼２４の交差角度θ２は約９０°以外の角度となっている。しかしながら、本発明において、第２撹拌翼の交差角度は、所望の乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールに応じて約０°～約１８０°の範囲内とすることができる。
　さらに、第１および第２撹拌翼２１，２４は異なる形状を有する。第１および第２撹拌翼２１，２４の交差角度θ１，θ２は互いに異なっており、第２撹拌翼２４は第１撹拌翼２１に対して傾いて配置されている。一例として、図３においては、第２撹拌翼２４の外周縁２４ａが第１撹拌翼２１の外周縁２１ａよりも小さくなっている。
　しかしながら、本発明においては、所望の乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールをもたらすことができれば、第１および第２撹拌翼が、それらの取付位置を除いて、互いに同様に構成されてもよい。また、本発明においては、所望の乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールをもたらすことができれば、撹拌機構が、容器の往復動方向の長さ、容器の底壁部から培地の液面までの距離、容器の容量などに応じて、往復動方向に互いに間隔を空けて配置される３つ以上の撹拌翼を有してもよい。
　次に、上述のように、本発明の一実施形態の第２態様に係る血小板の製造方法においては、血小板産生培地で強制発現を抑制して巨核球細胞を培養する工程が、略鉛直に延びる軸線を中心として旋回可能な撹拌翼であって、撹拌翼の少なくとも一部を容器の底側領域内に配置した撹拌翼を用いて前記容器内の血小板産生培地を撹拌する工程を含み、前記撹拌する工程が、前記培地中にて、複数の静止部材を前記撹拌翼の旋回に伴って前記培地に乱流を発生させるように前記底側領域内にて前記撹拌翼の周囲に配置した状態で、前記撹拌翼を旋回させることを含む。
　さらに、本発明の一実施形態の第２態様に係る製造方法を実施するための血小板の製造装置について、図４および図５を参照して説明する。
　図４および図５に示すように、本態様に係る血小板の製造装置は、巨核球細胞を含む培地Ｃを収容する容器４と、この容器４内の培地Ｃに乱流を発生させるように培地Ｃを撹拌する構成である撹拌機構５とを備える。撹拌機構５は、旋回可能な撹拌翼５１を有する。なお、図４において、撹拌翼５１の旋回方向を矢印Ｐにより示す。撹拌機構５は、撹拌翼５１を旋回方向の両側に旋回可能とするように構成されると好ましい。しかしながら、本発明において、撹拌機構は、撹拌翼を旋回方向の一方側のみに旋回可能とするように構成されてもよい。
　かかる撹拌翼５１は、容器４の底壁部４ｂから略鉛直に延びる軸線５１ａを中心として旋回可能に構成される。撹拌翼５１は、軸線５１ａを中心として略放射状に延びる複数の羽根部分（vane portion）５２を有するとよい。複数の羽根部分５２は、旋回方向に互いに間隔を空けるとよい。特に、撹拌翼５１は、略インペラ形状に形成されるとよい。さらに、撹拌機構５は、撹拌翼５１の周囲に配置される複数の静止部材５３を有する。このような撹拌翼５１および静止部材５３のさらなる詳細は後述する。
　かかる製造装置において、撹拌装置５は、培地Ｃ中にて旋回する撹拌翼５１と、この撹拌翼５１に相対して静止する静止部材５３との相互作用によって乱流を発生させて、培地Ｃを撹拌するようになっている。さらに、撹拌機構５は、培地Ｃ中にて所望の乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールを発生させるように撹拌翼５１の旋回を制御する。かかる撹拌機構５においては、撹拌翼５１の旋回速度、旋回方向などが制御されるとよい。特に、撹拌翼５１の旋回は、非定常的なパターンにて制御されると好ましい。所望の乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールは、製造装置の条件を除いて第１態様と同様のシミュレーションによって算出することができる。製造装置は、算出された所望の乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールを発生させるように撹拌装置５によって培地Ｃを撹拌した状態で、巨核球細胞から血小板を再生する。
　さらに、製造装置は次のように構成されると好ましい。図４に示すように、製造装置の容器４は、後述するように第１態様の挿入孔１ｄと異なる挿入孔４ｄを有するが、この点を除いて、容器４は、第１態様に係る容器１と同様に構成される。かかる容器４は、第１態様の頂壁部１ａ、底壁部１ｂ、および周壁部１ｃにそれぞれ対応する頂壁部（または頂部）４ａ、底壁部（または底部）４ｂ、および周壁部（または周部）４ｃを有する。容器４の底壁部４ｂには、撹拌装置５の取付に用いられる挿入孔４ｄが形成される。また、容器４の容量もまた第１態様に係る容器１の容量と同様である。
　製造装置の撹拌機構５の撹拌翼５１は、容器４内でその底部４ｂ寄りに配置される。特に、撹拌翼５１は、その全体を容器４の底側領域４ｅ内に収容するように配置されると好ましい。なお、本発明において、所望の乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールをもたらすことができれば、撹拌翼の鉛直方向の上側部分が底側領域よりも鉛直方向の上方に位置してもよい。
　なお、底側領域４ｅは次のように定義されるとよい。底側領域４ｅの鉛直方向の下端は底壁部４ｂの鉛直方向の位置に略一致するとよい。底側領域４ｅの鉛直方向の上端は、底壁部４ｂから鉛直方向の上側に所定の長さ（すなわち、底側領域４ｅの鉛直方向の長さ）Ｌ１移動した位置に略一致する。底側領域４ｅの鉛直方向の長さＬ１は、容器４の鉛直方向の長さＬ２、または底壁部４ｂから培地Ｃの液面ｃ１までの鉛直方向の長さＬ３に対して、約１／２以下であるとよい。例えば、底側領域４ｅの鉛直方向の長さＬ１は、容器４の容量、所望の乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールなどに応じて、容器４の鉛直方向の長さＬ２、または底壁部４ｂから培地Ｃの液面ｃ１までの鉛直方向の長さＬ３に対して、約１／２、約１／３、約１／４、約１／５、または約１／１０とすることができる。
　さらに、撹拌翼５１の羽根部分５２の上端縁５２ａは、撹拌翼５１の軸線５１ａから撹拌翼５１の外周側端部５１ｂ、すなわち、羽根部分５２の外周側端部５２ｂに向かうに従って鉛直方向に下がるように傾斜するとよい。また、このような撹拌翼５１の羽根部分５２の他の形状および数と、隣接する羽根部分５２の間隔とは、所望の乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールに応じて定められるとよい。
　さらに、複数の静止部材５３は、それらの全体を容器４の底側領域４ｅ内に収容するように配置される。静止部材５３の内周側端部５３ａは、撹拌翼５１の外周側端部５１ｂ、すなわち、羽根部分５２の外周側端部５２ｂと間隔を空けている。図４に示すように、静止部材５３における内周側端部５３ａの鉛直方向の上端は、羽根部分５２における外周側端部５２ｂの鉛直方向の上端よりも鉛直方向の上方に位置すると好ましい。また、このような静止部材５３の他の形状および数と、隣接する静止部材５３の間隔とは、所望の乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールに応じて定められるとよい。
　さらに、撹拌機構５は、撹拌翼５１を旋回させるための駆動源５４と、撹拌翼５１および駆動源５４を連結する連結部材５５とを有する。駆動源５４は、連結部材５５を旋回させることによって、撹拌翼５１を旋回させるように構成されている。
　連結部材５５は、その軸線５５ａに沿って延びる略シャフト形状に形成されている。連結部材５５の軸線５５ａは撹拌翼５１の軸線５１ａと一致している。かかる連結部材５５の長手方向の先端部５５ｂが撹拌翼５１に取り付けられ、連結部材５５の長手方向の基端部５５ｃが旋回可能に駆動源５４に保持されている。
　このような撹拌機構５は容器４の底壁部４ｂに取り付けられる。撹拌機構５の具体的な取付構造については、上述のように容器４の底壁部４ｂに形成される挿入孔４ｄが、底壁部４ｂを鉛直方向に貫通しており、撹拌機構５は、連結部材５５を挿入孔４ｄに挿入しながら撹拌翼５１を容器４の内部に収容した状態で容器４の底壁部４ｂに取り付けられている。
　製造装置は、連結部材５５の旋回を許容しながら、容器４の挿入孔４ｄの周縁および撹拌機構５の連結部材５５間の隙間を塞ぐように構成されるシール部材６を有するとよい。
例えば、かかるシール部材６は、密閉型のベアリングなどとすることができる。
　このような第２態様に係る製造装置においては、容器４内の培地Ｃに、図４にて矢印Ｆにより示すような循環流をもたらすことができる。循環流について、具体的には、撹拌機構５の旋回する撹拌翼５１および静止する静止部材５３の相互作用によって、静止部材５３からの流れが容器４の周壁部４ｃに沿って上方に向かって進行し、上方に向かった流れが、培地Ｃの液面ｃ１付近まで渦を巻くように進行し、次に、培地Ｃの液面ｃ１付近に到達した流れは、下方に向かって進行し、下方に向かった流れは、撹拌翼５１の軸線５１ａに向かって渦を巻くように進行し、その後、撹拌翼５１に到達し、再び、撹拌機構５の旋回する撹拌翼５１および静止する静止部材５３の相互作用によって、静止部材５３からの流れが容器４の周壁部４ｃに沿って上方に向かって進行する。このような循環流によって、巨核球細胞からの血小板の産生を促進し、血小板の産生量を増大させることができる。
　以上のような第１および第２態様に係る製造方法および製造装置のさらに好ましい条件について以下に説明する。なお、以下においては、図１～図５の符号を用いずに説明する。
　巨核球細胞を上記第１態様による所定の乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールとなる条件下で培養する工程、あるいは第２態様による培地に乱流を発生させるように撹拌翼を旋回させる条件下で培養する工程は、強制発現を抑制して培養する工程の開始時から、すなわち、血小板産生培地により培養を開始した時点から実施することもでき、血小板回収工程の１～３日前に実施することもできる。また、このような条件は、培養期間中にわたって、断続的に与えることも可能であるが、強制発現を抑制して培養する工程の開始時から継続して与え続けることが好ましい。さらに、所定の好ましい乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールは、培養期間にわたって概ね一定とすることもでき、可変運用とすることも可能である。
　第１態様による所定の乱流エネルギーまたは剪断応力を与える条件下で血小板産生培地中の巨核球細胞を培養することで、あるいは第２態様による培地に乱流を発生させるように撹拌翼を旋回させる条件下で血小板産生培地中の巨核球細胞を培養することで、マクロファージ遊走阻止因子（Macrophage migration inhibitory factor：MIF）、ナルディライジン（N-arginine dibasic convertase; NRDc、NRD1タンパクともいう）、インスリン様増殖因子結合タンパク質2（IGFBP2）、トロンボスポンジン１（TSP-1）、プラスミノーゲン活性化抑制因子（PAI-1）、及びCCL5(RANTES: regulated on activation, normal T cell expressed and secreted)を含む血小板産生促進因子の、巨核球細胞からの放出を促進し、培地中のMIF、NRDc、IGFBP2、TSP-1、PAI-1、及びCCL5の量を増加させることができる。これらの血小板産生促進因子の培地中の量を増加させ、かつそれらの因子の存在下で巨核球細胞に乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールが前述の好ましい指標の範囲となる物理的刺激を与えて培養することで、巨核球細胞１個当たりから生産される血小板の量を増加させることができる。
　任意選択的に、上記培養工程であって、第１態様による所定の乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールを発生させる、あるいは第２態様による培地に乱流を発生させるように撹拌翼を旋回させる培養工程において、前記巨核球細胞に、MIF、NRDc、及びIGFBP2を含む血小板産生促進因子を外部から添加する工程を含んでもよい。外部から添加する血小板産生促進因子は、MIF、NRDc、及びIGFBP2の３因子を必須とするが、これらに加え、TSP-1、PAI-1、及びCCL5を含む６因子であることがさらに好ましい。６因子により巨核球細胞からの血小板の産生をより増強することが可能となるためである。
　これらの外部から添加する血小板産生促進因子は、任意の方法で得たものであってよいが、例えば、遺伝子組み換え的手法により得られた遺伝子組換体であることが好ましい。
　遺伝子組換体は、市販されているものを用いることもできるし、公知の遺伝子情報に従って、当業者が適宜作製することもできる。例えば、MIF、IGFBP2、TSP-1、PAI-1、及びCCL5については、広く市販されており、市販されたタンパク質を使用することができる。NRDcは、単離精製が、J. Biol. Chem., 269, 2056, 1994に、遺伝子配列が、Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 91, 6078, 1994に既に報告されている。したがって、これらの文献、あるいはその他の公知文献に開示された情報に基づいて当分野において既知の方法で作製することができる。添加する血小板産生促進因子の濃度は、特には限定されないが、例えば、NRDc、IGFBP2、TSP-1、PAI-1、及びCCL5については、約10～500ng/mLとなるように添加することが好ましく、約50～100ng/mLとなるように添加することがさらに好ましい。MIFについては、約1～500ng/mLとなるように添加することが好ましく、約10～100ng/mLとなるように添加することがさらに好ましい。しかしながら、これらの添加量は、当業者が適宜決定することができ、上記範囲に限定されるものではない。
　血小板産生促進因子を外部から添加する工程は、強制発現を抑制して、血小板産生培地により培養を開始した時点に実施することもできるが、好ましくは、血小板回収工程の１～３日前に実施することが好ましい。血小板産生促進因子を外部から添加しても、血小板の回収工程までの間に劣化するおそれがあるためである。また、１回のみの添加ではなく、時間をおいて複数回添加することもできる。いずれの場合であっても、巨核球細胞から、血小板が放出される時点で、血小板産生促進因子が培地中に存在するように添加することが好ましい。
　次いで実施する血小板回収工程は、培地から、FACSなどの通常の方法で血小板を回収する。「血小板」は、血液中の細胞成分の一つであり、CD41a陽性及びCD42b陽性で特徴づけられる。血小板は、血栓形成と止血において重要な役割を果たすとともに、損傷後の組織再生や炎症の病態生理にも関与する。出血等により血小板が活性化されると、その膜上にIntegrin αIIBβ3（glycoprotein IIb/IIIa; CD41aとCD61の複合体）などの細胞接着因子の受容体が発現する。その結果、血小板同士が凝集し、血小板から放出される各種の血液凝固因子によってフィブリンが凝固することにより、血栓が形成され、止血が進む。
　血小板の機能は、公知の方法により測定し評価することができる。例えば、活性化した血小板膜上のIntegrin αIIBβ3に特異的に結合するPAC-1に対する抗体を用いて、活性化した血小板量を測定することができる。また、同様に血小板の活性化マーカーであるCD62P（P-selectin）を抗体で検出し、活性化した血小板量を測定してもよい。例えば、フローサイトメトリーを用い、活性化非依存性の血小板マーカーCD61又はCD41に対する抗体でゲーティングを行い、その後、抗PAC-1抗体や抗CD62P抗体の結合を検出することにより行うことができる。これらの工程は、アデノシン二リン酸（ADP）存在下で行ってもよい。
　また、血小板の機能の評価は、ADP存在下でフィブリノーゲンと結合するか否かを見て行うこともできる。血小板がフィブリノーゲンと結合することにより、血栓形成の初期に必要なインテグリンの活性化が生じる。
　さらに、血小板の機能の評価は、国際公開第2011/034073号の図６に示されるように、in vivoでの血栓形成能を可視化して観察する方法で行うこともできる。
　本発明の製造方法で得られた血小板は、製剤として患者に投与することができる。投与に当たっては、本発明の方法で得られる血小板は、例えば、ヒト血漿、輸液剤、クエン酸含有生理食塩液、ブドウ糖加アセテートリンゲル液を主剤とした液、PAS（platelet additive solution）（Gulliksson, H. et al., Transfusion, 32：435-440, (1992））等にて保存、製剤化してもよい。保存期間は、3日から7日程度で、好ましくは4日間である。保存条件として、室温（約20～24度）で振盪撹拌して保存することが望ましい。
　なお、本実施形態における血小板の製造方法において、所定の乱流エネルギー条件、剪断応力条件、コルモゴロフスケール条件、及び撹拌条件以外の一般的な培養条件について、巨核球細胞の製造方法及び血小板製造方法の非限定的な例を開示するUS2012/0238023A1（国際公開第2011/034073号）、US2014/0127815A1（国際公開第2012/157586号）、US2016/0002599A1（国際公開第2014/123242号）は、引用することにより本明細書の一部をなすものとする。
　［血小板の製造装置における運転条件の決定方法］
　本発明は、また別の実施形態によれば、血小板の製造装置における運転条件の決定方法に関する。特には、上述した実施形態の第１態様のように往復動可能な撹拌翼を備えた血小板の製造装置における運転条件の決定方法に関し、又は上述した実施形態の第２態様のように旋回可能な撹拌翼を備えた血小板の製造装置における運転条件の決定方法に関する。本実施形態に係る方法は、往復動可能又は旋回可能な撹拌翼を備えた血小板の製造装置における、乱流エネルギー、剪断応力及びコルモゴロフスケールから選択される１以上の指標と、血小板産生数との相関関係を算出する工程と、前記血小板産生数が所定の範囲になる前記指標を与える運転条件を決定する工程とを含む。
　本実施形態による運転条件の決定方法は、往復動可能又は旋回可能な撹拌翼を備えた任意の装置について実施することができる。相関関係を算出する工程では、特定の装置において、培地や播種する巨核球細胞数等の撹拌対象物に関する条件を一定にし、乱流エネルギー条件を変化させて、その条件において得られる血小板産生数をカウントする。前述の１以上の指標について、例えば、乱流エネルギーについて、複数の値、例えば、３以上の乱流エネルギー値を与える条件おいて、それぞれ血小板産生数を得ることで、乱流エネルギーと、血小板産生数との相関関係を得る。あるいは、指標となる値として、乱流エネルギーに代えて剪断応力またはコルモゴロフスケールとしても、同様に相関関係を得ることができる。
　運転条件を決定する工程では、上記工程で得られた相関関係に基づき、好ましい血小板産生数を与える乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールの範囲を決定する。好ましい範囲の決定は、当業者が必要とする血小板産生数に基づいて適宜決定することができるが、例えば、測定範囲内で最大の血小板産生数に対して、５０％以上、６０％以上、７０％以上、８０％以上、８５％以上、９０％以上、あるいは９５％以上の血小板産生数を与える乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールの条件を、好ましい範囲と定義することができる。そして、乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールを与える運転条件を決定する。例えば、往復動可能な撹拌翼を備える血小板の製造装置の運転条件としては、撹拌翼の往復動の速度（例えば、往復動の平均速度など）、往復動の周期、往復動のストロークなどが挙げられるが、これらには限定されない。特には、乱流エネルギー、剪断応力、またはコルモゴロフスケールの条件を、好ましい範囲と定義するためには、前記撹拌翼の往復動の平均速度を50mm/s～500mm/sの範囲とすることができるが、これらには限定されない。例えば、旋回可能な撹拌翼を備える血小板の製造装置の運転条件としては、撹拌翼の旋回速度、旋回方向などが挙げられるが、これらには限定されない。
　本実施形態に係る方法は、血小板の産生効率が、製造装置の容器内における乱流エネルギーまたは剪断応力と強い相関関係をもち、この相関関係は、容器のスケールによらず実質的に一定であるという本発明者らの発見に基づく。本実施形態に係る方法は、方式の異なる装置を新たに導入する場合や、装置のスケールアップを行う場合に、血小板産生効率の高い適切な運転条件の決定を容易に実施することができる点で有利である。
　以下、本発明を、実施例を用いてより詳細に説明する。しかしながら、下記の実施例は、本発明を限定するものではない。
　［多核化巨核球細胞の調製］
　Nakamura et al, Cell Stem Cell. 2014 Apr 3; 14(4): 535-48.及び国際公開第2014/123242号に記載の方法により樹立した、iPS細胞（TKDN　SeV2：センダイウィルスを用いて樹立されたヒト胎児皮膚繊維芽細胞由来iPS細胞、585A1、585B1、606A1、648B1および692D2：Okita K, et al, Stem Cells 31, 458-66, 2012に記載のエピソーマルベクターを用いて樹立されたヒト末梢血単核球由来iPS細胞）由来の造血幹細胞に、c-MYC、BMI1およびBCL-XLを同時に導入して製造した不死化巨核球前駆細胞株Cl-7を出発物質とし、Nakamura et alの12頁、Cell Cultureに記載の方法に基づいて細胞培養を行った。このときに用いたGene ON培地は、Takayama et al, Blood. 2008 Jun 1; 111(11): 5298-306に記載の、ESC differentiation mediumに、SCF、TPOを先に記載の濃度で、ドキシサイクリン（Doxycycline）を5μg/ml加えたものとした。以下の実験で用いる細胞は、この方法で調整した。
　imMKCLをGene(c-MYC, BMI1, BCL-XL)Off後、血小板産生培地を用いて、6日間培養した。血小板産生培地（Gene Off培地）は、ITS　1x、L-Glu　2mM、アスコルビン酸　50μg/mL、MTG　450μM、ヒト血漿5%、Heparin　10U/mL、ヒト stem cell factor(SCF) 50ng/ml, TA-316, 200ng/mL、GNF-351、0.5μM、ROCK (Rho associated protein kinase)阻害剤 Y-39983, 0.5μM、ADAM 17阻害剤、KP457 15μM（Hirata et al., Stem Cell Translational Medicine, in press）を添加したIMDM培地を用いた。培養には、往復動非定常バイオリアクタ（佐竹化学機械工業社製 VerMES VMF3000）、揺動回転式フラスコ（flask）、及び培養皿（Dish）を用いた。
　［往復動非定常バイオリアクタと一方向回転式バイオリアクタの比較］
　往復動非定常バイオリアクタおよび一方向回転式バイオリアクタにおける、撹拌速度と乱流エネルギーの関係を比較した。往復動非定常バイオリアクタは、佐竹化学機械工業社製VerMES VMF3000を用いた。回転式バイオリアクタは、底部に単一の撹拌翼が設けられ、撹拌翼が一方向にのみ回転し、往復動しないリアクタを用いた。往復動非定常バイオリアクタにおける撹拌速度とは、平均移動速度をいい、平均移動速度は上下移動時の撹拌翼が下死点から上死点（若しくはその逆）までの速度と定義される。一方、一方向回転式バイオリアクタにおける撹拌速度とは、撹拌翼の翼先端周速度：円周率π×回転数N(rps)×翼径(mm)をいうものとする。乱流エネルギーは、熱流体解析ソフトFLUENT（ANSYS社製）を用いて計算した。
　往復動非定常バイオリアクタおよび一方向回転式バイオリアクタにおける、撹拌速度と乱流エネルギーの関係を図６に示す。グラフにおいて、往復動非定常バイオリアクタにおける撹拌速度と乱流エネルギーとの関係を白丸で、旧来より用いられてきた回転式バイオリアクタにおける撹拌速度と乱流エネルギーとの関係を三角で表す。往復動非定常バイオリアクタにおいては、回転式バイオリアクタと比較し、撹拌翼の平均移動速度における乱流エネルギーが極めて低いという特徴を有している。過度な運転速度を与えることなく高い乱流エネルギーが得られるという特徴は、スケールアップが必須となる産業化に向けたリアクタ開発に有用である。回転式バイオリアクタではより高い回転数での運用が求められることから、剪断作用のコントロールが難しいといえる。
　［乱流エネルギーまたは剪断応力と、血小板産生数との関係］
　次に、容量の異なる往復動非定常バイオリアクタVerMESを用いて、乱流エネルギー、及び剪断応力と、１００ｍｍ／ｓ基準の血小板産生数割合（％）の関係を調べた。また、コルモゴロフスケールと１５０ｍｍ／ｓ基準の血小板産生数割合の関係を調べた。なお、１００ｍｍ／ｓ基準の血小板割合（％）とは、６日間の培養工程終了後の培地における血小板数（Platelets/mL）について、撹拌速度（平均移動速度）が１００ｍｍ／ｓの場合の血小板数を１００％としたときの、それぞれの条件における血小板数の割合（％）である。バイオリアクタとしては、０．３ＬのVerMESと、２．４ＬのVerMESを用いた。乱流エネルギーの値は上記と同様にして、熱流体解析ソフトFLUENT（ANSYS社製）を用いて計算した。また、剪断応力、コルモゴロフスケールについても、同ソフトを用いて計算した。結果を図７～９に示す。これらの結果から、容量の異なるバイオリアクタVerMESを用いた場合であっても、所定の範囲の乱流エネルギーまたは剪断応力を発生させることにより、血小板の産生効率を保持できることが示唆された。
　次に、５０Lの往復非定常バイオリアクタVerMESを用いた場合の、血小板の生理活性（撹拌速度４００ｍｍ/ｓ）を測定した。結果を図１０及び図１１に示す。図１０（Ａ）を参照すると、CD41a陽性及びCD42b陽性である正常血小板の割合が９０．９％であった。図１０（Ｂ）は血小板を刺激しなかった場合のP-selectin陽性血小板割合、及び図１０（Ｃ）は血小板をADP+TRAP6で刺激した場合のP-selectin陽性血小板割合を示す。血小板をADP+TRAP6で刺激した場合、無刺激に比べて刺激によりPAC-1陽性及びP-selectin陽性血小板が増加し、血小板が高い生理活性を維持していることが確認された。
　図１１（Ａ）は、血小板を刺激しなかった場合のアネキシンV陽性血小板割合、図１１（Ｂ）は、血小板をIonomycin刺激した場合のアネキシンV陽性血小板割合を示す。アネキシンV陽性の粒子数を正常ではない血小板として、無刺激時のアネキシンV陽性率は、11.5%と低く、Ionomycin刺激によりアネキシンV陽性率が89.2%となり、生理活性が高く維持されていた。
　［乱流エネルギーまたは剪断応力と、血小板産生因子との関係］
　上記のとおり、異なる乱流の指標を与える培養条件で6日間培養した培地中のNRDcの分泌量をELISAにて定量した。結果を表１に示す。表中、Sample１は、乱流エネルギーが約0.00013m2/s2、剪断応力が約0.03Pa、コルモゴロフスケールが約948μmとなる撹拌条件にて、往復動非定常バイオリアクタを用いて培養したサンプル、Sample２は、乱流エネルギーが約0.002m2/s2、剪断応力が約0.64Pa、コルモゴロフスケールが約296μmとなる撹拌条件にて、往復動非定常バイオリアクタを用いて培養したサンプル、Sample３は、乱流エネルギーが約0.0047m2/s2、剪断応力が約1.42Pa、コルモゴロフスケールが約210μmとなる撹拌条件にて、往復動非定常バイオリアクタを用いて培養したサンプル、Sample４は、乱流エネルギーが約0.0174m2/s2、剪断応力が約4.25Pa、コルモゴロフスケールが約122μmとなる撹拌条件にて、往復動非定常バイオリアクタを用いて培養したサンプルである。表中の数値は、NRDc濃度（pg/mL）を示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　同様に、異なる培養条件で培養した培地中のMIF、IGFBP2、TSP-1、PAI-1、及びCCL5の濃度を測定した。定量には、Human XL Cytokine ArrayKit (R&D社＃ARY022)を用いた。結果を表２に示す。表中、Sample１～４については、先の表１の条件と同様である。培養皿（Dish）培養では、乱流エネルギー、剪断応力、コルモゴロフスケールとも、ほぼ０である。フラスコ（Flask）培養では、乱流エネルギーが約０．００００２５ｍ２／ｓ２、剪断応力が約０．０１６Ｐａ、コルモゴロフスケールが約３１μｍであった。表中の数値は、それぞれの因子について、培養皿（Dish）培養における濃度を1.00とした場合の、各サンプルの濃度の比率を示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　これらの実験より、所定の範囲の乱流エネルギー、剪断応力、及びコルモゴロフスケールとなる撹拌条件下において、血小板産生因子の分泌量が亢進していることが確認された。
　１　容器、２　撹拌機構、２１　撹拌翼（第１撹拌翼）、２４　第２撹拌翼　４　容器、４ｂ　底壁部（底部）、４ｅ　底側領域、５　撹拌機構、５１　撹拌翼、５１ａ　軸線、５３　静止部材、Ｃ　培地

Claims (10)

  1. 　血小板産生培地中の巨核球細胞を培養する工程を含む血小板の製造方法であって、
    　前記培養する工程が、撹拌翼を用いて容器内の前記血小板産生培地を撹拌する工程を含み、
    　撹拌する工程が、以下：
    （ａ）約0.0005m2/s2～約0.02m2/s2の乱流エネルギー；
    （ｂ）約0.2Pa～約6.0Paの剪断応力；及び
    （ｃ）約100μm～約600μmのコルモゴロフスケール
    　から選択される１以上の指標を充足するように、前記撹拌翼を往復動させることを含む、血小板の製造方法。
  2. 　血小板産生培地中の巨核球細胞を培養する工程を含む血小板の製造方法であって、
    　前記培養する工程が、鉛直に延びる軸線を中心として旋回可能な撹拌翼であって、撹拌翼の少なくとも一部を容器の底側領域内に配置した撹拌翼を用いて前記容器内の血小板産生培地を撹拌する工程を含み、
    　前記撹拌する工程が、前記培地中にて、複数の静止部材を前記撹拌翼の旋回に伴って前記培地に乱流を発生させるように前記底側領域内にて前記撹拌翼の周囲に配置した状態で、前記撹拌翼を旋回させることを含む、血小板の製造方法。
  3. 　前記巨核球細胞を培養する工程の前に、巨核球細胞より未分化な細胞において、癌遺伝子、ポリコーム遺伝子、及びアポトーシス抑制遺伝子を強制発現させて、不死化巨核球細胞を得る工程を含む、請求項１または２に記載の方法。
  4. 　前記巨核球細胞を培養する工程で得られた血小板を回収する工程を含む、請求項１～３のいずれか１項に記載の方法。
  5. 　巨核球細胞を含む培地を収容する容器と、
    　前記容器内を往復動する撹拌翼と
    　を備える血小板の製造装置であって、
    　前記培地中にて以下：
    （ａ）約0.0005m2/s2～約0.02m2/s2の乱流エネルギー；
    （ｂ）約0.2Pa～約6.0Paの剪断応力；及び
    （ｃ）約100μm～約600μmのコルモゴロフスケール
    　から選択される１以上の指標を充足するように前記撹拌翼を往復動させることによって前記培地を撹拌した状態で、前記巨核球細胞から血小板を産生する血小板の製造装置。
  6. 　巨核球細胞を含む血小板産生培地を収容する容器と、
    　前記培地に乱流を発生させるように前記培地を撹拌する撹拌機構と
    　を備え、
    　前記撹拌機構が、鉛直に延びる軸線を中心として旋回可能な撹拌翼であって、撹拌翼の少なくとも一部を前記容器の底側領域内に配置した撹拌翼と、前記撹拌翼の旋回に伴って前記乱流を発生させるように前記底側領域内にて前記撹拌翼の周囲に配置される複数の静止部材とを有し、
    　前記培地中にて前記撹拌翼を旋回させることによって前記培地を撹拌した状態で、前記巨核球細胞から血小板を産生する血小板の製造装置。
  7. 　往復動可能又は旋回可能な撹拌翼を備えた血小板の製造装置における運転条件の決定方法であって、
    　前記製造装置における、乱流エネルギー、剪断応力及びコルモゴロフスケールから選択される１以上の指標と、血小板産生数との相関関係を算出する工程と、
    　前記血小板産生数が所定の範囲になる前記指標を与える運転条件を決定する工程と
    　を含む方法。
  8. 　前記運転条件が、前記往復動可能な撹拌翼の往復動の平均速度を50mm/s～500mm/sの範囲とすることを含む、請求項７に記載の方法。
  9. 　前記撹拌する工程において、MIF、NRDc、及びIGFBP2を含む血小板産生促進因子を外部から添加する工程を含む、請求項１～４のいずれか１項に記載の方法。
  10. 　前記外部から添加する血小板産生促進因子が、TSP-1、PAI-1、及びCCL5をさらに含む、請求項９に記載の方法。
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