WO2017220875A2 - Procede de detection electrique de peptides, proteines et autres macromolecules - Google Patents

Procede de detection electrique de peptides, proteines et autres macromolecules Download PDF

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    • G01N33/48707—Physical analysis of biological material of liquid biological material by electrical means
    • G01N33/48721—Investigating individual macromolecules, e.g. by translocation through nanopores

Definitions

  • the technical sector of the present invention is that of the electrical detection of molecules in a mixture.
  • nanopore which may be a protein channel or a nanotube inserted into a lipid membrane or a nanometric hole pierced in a solid membrane.
  • the membrane is subjected to a potential difference that induces an ionic current through the nanopore in the presence of an electrolyte solution.
  • the depth of this current drop and its duration depend, in particular, on the conformation, the size, the sequence and the chemical nature of the molecule.
  • Another very promising application concerns the possibility of determining the size or the mass of a molecule or a mixture of molecules, thus making mass spectrometry using a nanopore coupled with an ultrasensitive electrical detection system. .
  • the inventors have therefore imagined the use of an aerolysin protein channel, under precise physicochemical conditions, in order to isolate the small chains of a few monomers without resorting to expensive and complex chemical modifications of the aerolysin nanopore.
  • the invention therefore relates to the use of an aerolysin nanopore or nanotube for the electrical detection of peptides, proteins that are distinct from at least one amino acid and other macromolecules such as polysaccharides or polymers.
  • synthetic or natural present in a preparation where the said nanopore or nanotube is inserted into a lipid membrane that is subjected to a potential difference greater than -160mV, in a reaction medium comprising an alkali metal halide electrolyte solution having a concentration below 6M and a temperature below 40 ° C, and wherein said use is intended to differentiate said peptides, proteins, and other molecules according to their length and mass.
  • the alkali metal halide is an alkali metal chloride and is represented by LiCl, KCl or NaCl.
  • the concentration of the electrolyte solution is between 0.5 and 5M.
  • the concentration of the reaction medium in LiCl is equal to 1M or According to yet another characteristic of the invention, the potential difference applied to the membrane is between about -80 and -10 mV, advantageously -29 mV.
  • the temperature of the reaction medium is between 3 and 33 ° C.
  • a particularly advantageous use of the invention lies in the characterization of the enzymatic degradation of a sample of peptides, proteins, polysaccharides or synthetic polymers by determining the degradation products.
  • the use is aimed at separating the different sequences of peptides or proteins.
  • Another particularly advantageous use of the invention lies in the characterization of natural or synthetic chemical modifications of native molecules such as a protein, a peptide, a metabolite or a drug.
  • Yet another particularly advantageous use of the invention lies in the characterization of the specific enzymatic and molar activity of an enzyme in a single prokaryotic or eukaryotic cell.
  • a particularly advantageous use of the invention lies in the characterization to identify and quantify molecules called "metabolites" belonging to metabolic pathways or cell signaling.
  • the invention also relates to the peptide product obtained by using a nanopore consisting of a single peptide such as the peptide RR10.
  • a first advantage of the invention lies in the high sensitivity and high resolution of the technique which makes it possible to differentiate molecules very close to one another, different from a monomer.
  • Another advantage of the use according to the invention lies in the separation of the different sequences of peptides or proteins.
  • Peptides, proteins, polysaccharides or synthetic polymers are present in a preparation presented as a complex, biological or pure commercial mixture.
  • the invention allows a resolution up to an amino acid, a sugar or a monomer of difference between two molecules.
  • Another advantage of the invention lies in the fact that this high sensitivity makes it possible to perform an analysis from a sample in a very small quantity.
  • Another advantage of the present invention lies in the many applications offered such as carrying out a sequencing of the peptides.
  • Another advantage of the invention lies in the possibility of carrying out a 100% pure quality certification of a synthesized peptide or molecule.
  • Another advantage of the invention lies in the ability to identify and quantify drugs in all biological fluids, in a single cell.
  • Yet another advantage of the invention is the ability to identify a peptide for biological medical diagnosis.
  • Yet another advantage of the invention lies in the possibility of keeping a peptide or a mixture of peptides for a very long time, a protein by lyophilization to obtain a powder.
  • This powder can then be inserted by protecting it with a film for use as a molecular code for marking in order to identify it with certainty to show its origin or uniqueness, such as the origin of production of a product, the certification of origin .... Then, the control will be done by putting the powder in a buffer solution.
  • the storage at room temperature of a solution is from a few days to a few months, for example at 4 ° C the duration is several months, at -20 ° C the duration is several years.
  • a well-defined peptide mixture is understood to mean a mixture containing, for example, 95% of a peptide with 10 AA and 5% with 8 AA.
  • Each batch of these peptides can be chemically modified (phosphorylation, halogenation, etc.), mixture being a preparation presented as a complex, biological or pure commercial mixture.
  • FIG. 1 represents an exemplary embodiment of a device for implementing the invention
  • FIG. 2 represents the variation of the potential difference as a function of the elution time corresponding to the detection of a peptide
  • FIG. 3 represents the analysis of a mixture of six peptides
  • FIG. 4 represents the analysis results of a sample of commercial peptides
  • FIG. 5 illustrates the enzymatic degradation of a sample of peptides of 10 amino acids by trypsin.
  • FIG. 6 illustrates the detection of peptides as a function of the variation of the potential difference
  • FIG. 7 shows the discrimination of peptides 10 amino acids long, having different sequences
  • FIG. 8 shows the detection of an enzymatic activity from a single cell or vesicle
  • FIG. 9 represents a variant of the process according to FIG. 7.
  • Figure 1 there is described an embodiment of a device 1 for sequencing a commercial product or other type of proteins, polysaccharides or synthetic or natural polymers present in a preparation. It goes without saying that for each product category the operating conditions are adapted according to the search criteria.
  • the device 1 comprises, for example, four series compartments 2, 3, 4 and 5 separated from each other by three lipid membranes 6, 7 and 8 in which the aerolysin napores or respective nanotubes 9, 10 and 11 are inserted.
  • each membrane 6, 7 and 8 are subjected to an electric current with the respective circuits 12, 13 and 14.
  • each membrane can be subjected to a current level according to the operating conditions.
  • the device 1 according to the invention thus makes it possible to follow in real time the translocation of the molecules in the different compartments 2 to 5.
  • each electrical circuit 12, 13 or 14 is respectively connected to an electrical detector to represent the passage of each molecule contained in the product to be analyzed.
  • it is a sample of peptides.
  • the membrane 6 makes it possible to draw the three respective pictograms 15, 16 and 17.
  • the pictogram 15 makes it possible to identify three peaks corresponding to 3 peptides, the pictogram 16 two interesting peaks of two peptides and the pictogram 17 a peak single peptide.
  • the translocation to the compartment 5 is stopped by the opening of the electric circuit 14 to take the pure peptide present in this compartment.
  • the pictograms 15, 16 and 17 shown in FIG. 1 correspond to the analysis of a peptide product whose precise experimental conditions are given below. It goes without saying that the device 1 is operational when one proceeds to the analysis of a product consisting of proteins, polysaccharides or synthetic or natural polymers. It goes without saying that the number of peaks depends on the nature of the starting product.
  • a lipid membrane for example membrane 6 containing the aerolysin nanopore 9
  • a reaction medium with a lithium chloride concentration of 4M at a temperature of 5 ° C.
  • the membrane is subjected to potential difference of -29mV. Thanks to an extremely sensitive electrical detector, the electric current flowing through the pores is measured.
  • the potential difference causes the ions of the electrolyte to flow between the two sides of the membrane, for example in the compartments 2 and 3, which creates a measurable current.
  • molecules pass through the nanotube they interrupt the current. These interruptions are proportional to the size of the molecules, and vary depending on the concentration, pH and temperature conditions of the reaction medium.
  • FIG. 2 shows the starting current 10 when the ions flow without obstacle and the current Ib when a blockage of the nanopore is in progress.
  • the current drops corresponding to the different peptides composing the mixture presented as pure can clearly be seen. It is seen that these impurities are by-products of the synthesis of the peptide RR10, incomplete peptides each having a specific passage time as well as a characteristic characteristic drop spread as previously indicated from 30 to 68 pA.
  • nanopore according to the invention makes it possible to reach a very high sensitivity which reveals the presence of quantifiable peptide fragments (of the order of 1% of the total number of molecules detected, ie a few tens of molecules) in a sample sold 96% pure. Until now, it was impossible to identify these fragments by conventional mass spectrometry analysis and by HPLC chromatographic analysis of the composition supplied by the seller of this sample.
  • the results obtained are represented by varying the temperature and the electrolyte concentration.
  • the current blocking time is plotted as a function of Ib which is the intensity of the blocked channel current of the aerolysin nanopore and the intensity of the current of the same empty channel of the nanopore.
  • the temperature is of the order of 20 ° C and the electrolyte concentration of 2M.
  • the temperature is about 20 ° C. and the electrolyte concentration is 4M.
  • the temperature is 5 ° C and the electrolyte concentration of 4M.
  • the concentration of the electrolyte solution could be between 0.5 and 5M and that a concentration of 1 M is a good compromise, for example with the electrolyte LiCl.
  • electrolytes for example LiCl, NaCl, KCl or KBr, RbCl, CsCl, KF or ammonium chloride, tetramethylammonium chloride, have been used.
  • the results obtained are generally of the same order, irrespective of the electrolyte.
  • the high concentration of electrolyte makes it possible to study molecules of lower molecular mass, of the order of two amino acids, and surprisingly a single amino acid.
  • the signal-to-noise ratio is better and the values of Ib / 10 are shifted to the left of the spectrogram.
  • This shift to the left induces a margin to the right of the spectrogram thus favoring the detection of peptides whose length is less than three amino acids. Given the right margin of the spectrogram and the high salt concentration, the detection of a single amino acid is accessible.
  • the study of the three diagrams in FIG. 4 shows that the position of the peptides varies on the ordinate and that it is more advantageous to prefer a temperature of 5 ° C. and a concentration of 4M. So we improve the resolution.
  • the temperature of the reaction medium may be between 3 and 33 ° C.
  • the potential difference applied to the aerolysin nanopore membrane does not seem to have any effect on the position of the lines appearing on the graphs of FIG. 4. However, by passing for example from -10 mV to -80 mV, it has been found that the average duration of current capping depends on the voltage for the RR10 peptide sample. The choice of a current value will therefore depend on the resolution desired by the user. A potential difference applied to the membrane of -29 mV makes it possible to obtain an excellent resolution.
  • nanopore or nanotube of the cyclodextrin type can be used in the process according to the invention by adapting without difficulty the conditions of use, namely the temperature, the salt concentration and the nature of the electrolyte.
  • the analysis conditions of the peptide sample described above are applicable to the other protein samples as regards the nature of the electrolyte and its concentration, as regards the temperature of the reaction medium and the level of the current applied to the nanopore. or nanotube. It goes without saying that these conditions are adapted according to the nature of these molecules and the skilled person has the necessary elements to define by simple tests those applicable to proteins, oligosaccharides or synthetic or natural polymers. By way of illustration, it has been determined that the longer the molecule concerned, the longer this length induces an Ib / IO ratio approaching 0.
  • Another advantage of the invention lies in the enzymatic reactions. Many enzymatic reactions are known to be important for determining a product that is important for the diagnosis of a disease or for an industrial process. According to the invention, it is therefore possible to follow the enzymatic degradation of a peptide, for example by trypsin, and the kinetic constants have been well determined. Of course, those skilled in the art will be able to conduct a degradation of a protein, a polysaccharide or a synthetic or natural polymer by carrying out adaptations and some tests.
  • FIG. 5 illustrates the results obtained by carrying out an analysis according to the invention before (graph d) and after (graph e) enzymatic degradation by measuring the intensity Ib of the current of the blocked channel and the intensity 10 of the current of the same channel. of the sample given 96% pure.
  • the leftmost line represents the peptide RR10, the other peptides being in trace form.
  • a nanopore or a nanotube thus makes it possible to visualize the degradation of the peptide RR10 by trypsin, into shorter peptides: RR9, RR8, RR7, RR6 and RR5. Therefore, the same method can be used to follow other processes of enzymatic degradation of proteins, polysaccharides, synthetic or natural polymers or other macromolecules likely to interest a user (drugs, industrial products or other).
  • peptides RR10, RR9, RR8, RR7, RR6 and RR5 are clearly distinguishable. It is therefore possible to differentiate peptides having only one amino acid of difference. This feature of the invention allows extremely fine and specific monitoring of chemical processes.
  • a peptide of 10 amino acids in length is cited, but it goes without saying that the invention can be used with longer peptides: 20, 50 or 100 amino acids, as well as on macromolecules of other types (proteins, polysaccharides, synthetic or natural polymers).
  • FIG. 6 there are shown histograms illustrating the effect of voltage on the discrimination of arginine peptides of different lengths. These histograms represent the Ib / 10 blocking current values in the case of the interaction of the aerolysin nanopore with an equimolar mixture of arginine peptides of different lengths (5, 6, 7, 8, 9 and 10 amino acids). ) at -25 mV (a) at -40 mV (b) . , -50 mV (c), -60 mV (d) and -80 mV (e). The measurements are carried out in KCl 4M medium, at pH 7.5 and at 20 ° C.
  • the invention can be applied to the study of samples comprising several peptides of the same length, but of different sequences, as shown in FIG.
  • the graph n represents the typical blockage created by these three peptides over time.
  • the invention can therefore also discriminate between peptides of the same length, peptides of different sequences, which opens new perspectives for biological and medical analysis.
  • the invention finds a particularly important application in metabolomics and enzymology.
  • the biological medical diagnosis must evolve today to allow working on valuable and rare samples containing only a few cells or microvesicles of interest or even small sample volumes such as those collected in the mouse.
  • a nanopore according to the invention it is also possible to use a nanopore according to the invention to separate different sequences of peptides or proteins.
  • the sequence of a peptide conditions its physico-chemical properties, which themselves condition its passage in a nanopore. Indeed, the nature of the amino acids determines the conformation of the peptides. Different forms of protein pass through nanopores at different speeds.
  • the other properties of the proteins charge, hydrophobicity, etc.
  • each protein creates its specific signature in terms of specific current blocking duration and current blocking amplitude, thus having particular properties of duration, intensity and moment.
  • nanopore it is also possible to use a nanopore according to the invention to characterize the natural or synthetic chemical modifications of native molecules such as a protein, a peptide, a metabolite or a drug.
  • the nanopore aerolysine technology developed in the invention allows the determination of the activity of a small number of enzyme copies in a single cell, according to an industrial process, making it possible to quantify the enzymatic activity of a small number of enzymes. enzyme molecules that are released after lysis of the original one.
  • FIG. 8 illustrates the example of a possible industrial process making it possible to quantify the enzymatic activity of a small number of enzyme molecules which would have been released after lysis of the original one.
  • This specific detection and quantification system thus makes it possible to make on a single cell dosages hitherto impossible to achieve. Its use in health opens up a very wide field of application, particularly that of personalized medicine.
  • FIG. 8 shows a block diagram of the microfluidic system for the assay of a specific enzymatic activity where the enzyme is brought to the pore entry by microfluidic guidance.
  • the cell is lysed in a conventional manner to release its enzymatic content.
  • the single cell may be of the prokaryotic or eukaryotic type
  • the molecules of the enzyme of interest and other molecules from the contents of the lysed cell are entrained by the flow of a buffer solution into the tubing of the microfluidic system (a system for handling fluids whose volume is 1CT 9 to
  • the molecules of the enzyme of interest are captured and fixed on a support by specific probes which may be antibodies, aptamer probes, specific peptides, etc.
  • the continuous flow of the buffer makes it possible to overcome the phenomenon of diffusion.
  • the other molecules are removed by diffusion.
  • the specific substrate of the enzyme of interest is then injected and captured by the enzymes of interest fixed on the support. These enzymes transform the substrate into product which in turn diffuses into the buffer. Excess substrate is captured by specific downstream probes.
  • each passage is detected and allows to count each molecule and to deduce the concentration and the enzymatic activity.
  • the enzyme concentration is determined by an electronic system.
  • a cell lysate is treated to identify its composition.
  • Enzymatic substrates or ligands peculiar to the biological process studied make it possible to detect only the molecules involved in the processes in question.
  • metabolites are generally produced by enzymes belonging to cellular biochemical pathways such as the KREBS cycle, the pentose phosphate pathway, etc. These metabolites are often ⁇ turn substrates and products of enzymatic reactions that are linked to each other in cellular metabolic pathways.
  • these metabolites are, for example, glucose-6 phosphate, 6-phosphoglucnate or glyceraldehyde-3-phosphate.
  • the metabolites are, for example, citrate, succinate or alphaketoglutarate.
  • concentration of these metabolites varies according to the cellular homeostasis and more particularly in case of pathology.
  • these metabolites are in undetectable quantities by existing assay techniques.
  • our invention also allows the determination of hormones, neuromediators, neurotransmitters, molecules present in cellular or messenger signaling pathways such as ATP, ADP, cAMP, IP3, arachidonic acid.
  • FIG. 9 shows an alternative embodiment of the system illustrated in FIG. 8.
  • the electronic detection and quantification system of the enzyme molecules at 8 can be replaced by the nanopores after eluting all the molecules of substrate in excess and counted all product molecules.
  • Several cycles of washing / rinsing will be performed in a controlled manner so as not to elute the enzyme molecules attached to their specific probes in 4 with the substrate and product molecules.
  • the capillary micro rinsed the elution of the enzyme molecules fixed in 4 is carried out. These enzyme molecules are then counted by the nanopores that have previously been used to count the product molecules.
  • the excess substrate is rinsed in a buffer stream.
  • the transfer current in the nanopores is cut off.
  • the conditions of elution and rinsing are such that they allow the enzyme molecules to remain attached to their specific probes.
  • the elution conditions are more drastic and allow the enzyme molecules to leave their specific probes and diffuse through nanopores after the flow of flow has been reestablished.

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Abstract

L'invention concerne l'utilisation d'un nanopore d' aérolysine ou d'un nanotube pour la détection électrique de peptides, de protéines distincts d'au moins un acide aminé et d'autres macromolécules comme les polysaccharides ou les polymères synthétiques ou naturels présents dans une préparation où le dit nanopore ou nanotube est inséré dans une membrane lipidique que l'on soumet à une différence de potentielle supérieure à -160mV, dans un milieu réactionnel comprenant une solution d' électrolyte halogénure de métal alcalin ayant une concentration inférieure à 6M et une température inférieure à 40°C, et où la dite utilisation a pour objectif de différencier les dits peptides, protéines, et autres molécules en fonction de leur longueur et leur masse. Application au séquençage de peptides et autres molécules pour les différencier en fonction de leur longueur et de leur masse avec une résolution allant d'un acide aminé ou d'un monomère et au diagnostique médical.

Description

PROCEDE DE DETECTION ELECTRIQUE DE PEPTIDES , PROTEINES AUTRES MACROMOLECULES
Le secteur technique de la présente invention est celui de la détection électrique de molécules en mélange.
Le principe de la détection électrique du transport de molécules à travers un nanopore qui peut être un canal protéique ou un nanotube inséré dans une membrane lipidique ou un trou nanométrique percé dans une membrane solide est bien connu.
La membrane est soumise à une différence de potentiel qui induit un courant ionique à travers le nanopore en présence d'une solution d' électrolytes . Le passage d'une molécule à travers le nanopore, ou l'interaction de la molécule avec le nanopore, induit une chute du courant mesurable. La profondeur de cette chute de courant et sa durée dépendent, en particulier, de la conformation, de la taille, de la séquence et de la nature chimique de la molécule.
Cette sensibilité a été utilisée pour faire du séquençage ultra-rapide d'ADN (Branton et al, 2008, Nat . Biotech ou Karlsson et al, 2015, Scientific reports) .
Une autre application très prometteuse concerne la possibilité de déterminer la taille ou la masse d'une molécule ou d'un mélange de molécules donc de faire de la spectrométrie de masse à l'aide d'un nanopore couplé à un système de détection électrique ultrasensible.
Il a été montré la séparation d'un mélange de polymères synthétiques (Roberston et al, 2007, PNAS ; Reiner et al, 2010, PNAS ; Baaken et al, 2011, ACS Nano ; Baaken et al, 2014, ACS Nano) dont une taille de chaîne correspond à une signature électrique de blocage de courant. Il a été également observé récemment la séparation de nucléotides entre 2 et 10 monomères, pour seulement un polydésoxyadénosine pure, à travers un nanopore d' aérolysine (Cao et al, 2016, Nat. nanotech) .
L'utilisation du nanopore aérolysine est bien connue et Wilmsen et al 1990 ont montré que l' aérolysine forme un canal sensible au courant électrique dans une bicouche lipidique. Dans le document Stefureac et al, 2006, on s'est intéressé au transport de peptides à travers des pores d' aérolysine . On a observé des peptides de différentes longueurs, la différence de temps de blocage de courant mais sans aboutir à une résolution fine à l'échelle d'un acide aminé .
Dans les documents Pastoriza-Gallego et al, JACS 2011 et Payet et al, Anal. Chem. 2012, on s'est intéressé à la dynamique des protéines non repliées (conformations) à travers un nanopore d' aérolysine . Cette étude a porté essentiellement sur la détermination des conformations de grandes protéines (>370 acides aminés) avec l' aérolysine associées à des durées différentes de blocage de courant. Mais, aucune résolution fine n'a été proposée pour distinguer deux peptides ou deux protéines ne différant que par un seul acide aminé.
L'examen de l'abondante littérature disponible dans ce domaine montre que des difficultés existent pour séparer soit des petites chaînes soit des grandes chaînes polypeptidiques, séparation qui n'a pas été résolue à ce jour. La seule résolution fine pour visualiser les énantiomères aromatiques (Tryptophane, Phénylalanine, Tyrosine) a été possible après modification chimique d'un pore d' alpha-hemolysine (Boersma and Bayley, 2012, Angew. Chem. Int. Ed) .
Les inventeurs ont donc imaginé l'utilisation d'un canal protéique aérolysine, dans des conditions physico-chimiques précises, afin d'isoler les petites chaînes de quelques monomères sans recourir à des modifications chimiques coûteuses et complexes du nanopore d' aérolysine .
Concernant les peptides ou protéines, de nombreux travaux ont été publiés sur la détermination macroscopique de la taille d'une protéine en utilisant le temps de transport (durée de blocage de courant) ou la profondeur de blocage de courant avec des nanopores solides (Han et al, 2006, APL ; Fologea et al, 2007, APL ; Cressiot et al, 2011, ACS Nano ; Plesa et al, 2013, NanoLetters, Freedman et al, 2013, Scientific reports ; Larkin et al, 2014, BJ, Waduge et al, 2017) ou avec des nanocapillaires en verre (Li et al, 2013, ACS Nano ; Steinbock et al, 2014, Nanoscale) . Si ces approches permettent de séparer des protéines natives en fonction de leur taille, il faut cependant que les protéines diffèrent d'au moins 4kDa pour les petites chaînes et de plus de 50 kDa pour les grandes chaînes (Li et al, 2013, ACS Nano ; Steinbock et al, 2014) .
A ce jour, on n'a jamais montré la possibilité de faire de la séparation de peptides en fonction de la taille et de la masse en utilisant les nanopores d' aérolysine avec une résolution permettant de déterminer l'ajout d'un acide aminé dans la chaîne.
C'est justement l'objet de l'invention que de proposer l'utilisation d'un nanopore et un procédé permettant d'identifier des peptides, des protéines, des polysaccharides ou des polymères synthétiques présents en mélange.
L'invention a donc pour objet l'utilisation d'un nanopore d' aérolysine ou d'un nanotube pour la détection électrique de peptides, de protéines distincts d'au moins un acide aminé et d' autres macromolécules comme les polysaccharides ou les polymères synthétiques ou naturels présents dans une préparation où le dit nanopore ou nanotube est inséré dans une membrane lipidique que l'on soumet à une différence de potentielle supérieure à -160mV, dans un milieu réactionnel comprenant une solution d' électrolyte halogénure de métal alcalin ayant une concentration inférieure à 6M et une température inférieure à 40°C, et où la dite utilisation a pour objectif de différencier les dits peptides, protéines, et autres molécules en fonction de leur longueur et leur masse .
Selon une caractéristique de l'invention, l' halogénure de métal alcalin est un chlorure de métal alcalin et représenté par LiCl, KC1 ou NaCl .
Selon encore une autre caractéristique de l'invention, la concentration de la solution d' électrolyte est comprise entre 0,5 et 5M.
Selon encore une autre caractéristique de l'invention, la concentration du milieu réactionnel en LiCl est égale à 1M ou Selon encore une autre caractéristique de l'invention, la différence de potentiel appliquée à la membrane est comprise entre environ -80 et -10 mV, avantageusement de -29 mV.
Selon encore une autre caractéristique de l'invention, la température du milieu réactionnel est comprise entre 3 et 33°C.
Une utilisation particulièrement avantageuse de l'invention réside dans la caractérisation de la dégradation enzymatique d'un échantillon de peptides, de protéines, de polysaccharides ou de polymères synthétiques par détermination des produits de dégradation.
Selon encore une autre caractéristique de l'invention, l'utilisation vise la séparation des séquences différentes de peptides ou protéines.
Une autre utilisation particulièrement avantageuse de l'invention réside dans la caractérisation des modifications chimiques naturelles ou synthétiques de molécules natives telles qu'une protéine, un peptide, un métabolite, un médicament.
Une autre utilisation encore particulièrement avantageuse de l'invention réside dans la caractérisation l'activité enzymatique spécifique et molaire d'une enzyme dans une cellule unique procaryote ou eucaryote.
Une utilisation particulièrement avantageuse de l'invention réside dans la caractérisation pour identifier et quantifier des molécules dites « métabolites » appartenant à des voies métaboliques ou de signalisations cellulaires.
L' invention vise également le produit peptidique obtenu par l'utilisation d'un nanopore constitué d'un peptide unique tel le peptide RR10.
Un tout premier avantage de l'invention réside dans la grande sensibilité et la haute résolution de la technique qui permet de différencier des molécules très proches l'une de l'autre, différentes d'un monomère.
Un autre avantage de l'utilisation selon l'invention réside dans la séparation des séquences différentes de peptides ou protéines. Les peptides, protéines, polysaccharides ou polymères synthétiques sont présents dans une préparation présentée comme un mélange complexe, biologique ou commercial pur.
Ainsi, l'invention permet une résolution allant jusqu'à un acide aminé, un sucre ou un monomère de différence entre deux molécules.
Un autre avantage de l'invention réside dans le fait que cette grande sensibilité permet d'effectuer une analyse à partir d'un échantillon en très faible quantité.
Un autre avantage de la présente invention réside dans les nombreuses applications offertes comme la réalisation d'un séquençage des peptides.
Un autre avantage de l'invention réside dans la possibilité d'effectuer une certification de qualité 100% pure d'un peptide ou d'une molécule synthétisée.
Un autre avantage de l'invention réside dans la possibilité d'identifier et de quantifier des médicaments dans tous les fluides biologiques, dans une cellule unique.
Un autre avantage encore de l'invention réside dans la capacité d'identification d'un peptide pour le diagnostique médical biologique.
Un autre avantage encore de l'invention réside dans la possibilité de conserver très longtemps un peptide ou un mélange de peptides, une protéine par lyophilisation pour obtenir une poudre.
On peut alors insérer cette poudre en la protégeant avec un film pour l'utiliser comme code moléculaire à titre de marquage afin de l'identifier de façon certaine pour montrer son origine ou son unicité, telle l'origine de production d'un produit, la certification d'origine.... Ensuite, le contrôle se fera en mettant la poudre dans une solution tampon. La conservation à température ambiante d'une solution est de quelques jours à quelques mois, par exemple à 4°C la durée est de plusieurs mois, à -20°C la durée est de plusieurs années.
On entend par mélange de peptides bien défini un mélange contenant par exemple 95% d'un peptide à 10 AA et 5% à 8 AA. Chacun des lots de ces peptides pouvant être modifié chimiquement (phosphorylation, halogénation, etc.), ce mélange étant une préparation présentée comme un mélange complexe, biologique ou commercial pure.
Il s'agirait d'un code moléculaire invisible et donc discret qui pourrait être lu, en remettant en suspension le mélange de peptides et en le décryptant avec la technologie décrite ici.
D'autres caractéristiques, avantages et détails de l'invention seront mieux compris à la lecture du complément de description qui va suivre de modes de réalisation donnés à titre d'exemple en relation avec des dessins sur lesquels :
- la figure 1 représente un exemple de réalisation d'un dispositif pour mettre en œuvre l'invention,
- la figure 2 représente la variation de la différence de potentiel en fonction du temps d' élution correspondant à la détection d'un peptide,
- la figure 3 représente l'analyse d'un mélange de six peptides ,
- la figure 4 représente les résultats d'analyse d'un échantillon de peptides du commerce,
- la figure 5 illustre la dégradation enzymatique d'un échantillon de peptides de 10 acides aminés par la trypsine.
- la figure 6 illustre la détection des peptides en fonction de la variation de la différence de potentiel,
- la figure 7 montre la discrimination de peptides de 10 acides aminés de long, présentant des séquences différentes, la figure 8 montre la détection d'une activité enzymatique à partir d'une cellule ou vésicule unique, et
- la figure 9 représente une variante du processus selon la figure 7.
Comme il ressort de ce qui précède, il est possible maintenant, suivant l'utilisation et le procédé selon l'invention, de détecter à partir d'une mesure électrique, des peptides individuels et de distinguer des peptides de tailles différentes avec une résolution d'un seul acide aminé. Il en est de même de la détection d'un très grand nombre de molécules comme les protéines, les polysaccharides ou les polymères synthétiques ou naturels présents dans une préparation . Dans la suite de la description ci-après, on va décrire plus particulièrement à des fins d' illustration la mise en œuvre d' un produit vendu dans le commerce renfermant le peptide RR10 donné pur afin de déterminer sa composition exacte.
Sur la figure 1, on a décrit un exemple de réalisation d'un dispositif 1 permettant de séquencer un produit commercial ou autre, du type protéines, polysaccharides ou polymères synthétiques ou naturels présents dans une préparation. Il va de soi que pour chaque catégorie de produit les conditions opératoires sont adaptées en fonction des critères de recherche.
Le dispositif 1 comprend par exemple quatre compartiments en série 2, 3, 4 et 5 séparés les uns des autres par trois membranes lipidiques 6, 7 et 8 dans lesquelles les napores d' aérolysine ou nanotubes respectifs 9, 10 et 11 sont insérés .
Les membranes 6, 7 et 8 sont soumises à un courant électrique à l'aide des circuits respectifs 12, 13 et 14. Ainsi, chaque membrane peut être soumise à un niveau de courant selon les conditions opératoires.
Le dispositif 1 selon l'invention permet donc de suivre en temps réel la translocation des molécules dans les différents compartiments 2 à 5.
Bien entendu, chaque circuit électrique 12, 13 ou 14 est relié respectivement à un détecteur électrique permettant de représenter le passage de chaque molécule que renferme le produit à analyser. Dans cet exemple, il s'agit d'un échantillon de peptides. On voit par exemple que la membrane 6 permet de tracer les trois pictogrammes respectifs 15, 16 et 17. Le pictogramme 15 permet d'identifier trois pics correspondant à 3 peptides, le pictogramme 16 deux pics intéressants de deux peptides et le pictogramme 17 un pic unique d'un seul peptide.
La translocation vers le compartiment 5 est arrêtée par l'ouverture du circuit électrique 14 pour prélever le peptide pur présent dans ce compartiment. Les pictogrammes 15, 16 et 17 représentés sur la figure 1 correspondent à l'analyse d'un produit peptide dont les conditions expérimentales précises sont données ci-après. Il va de soi que le dispositif 1 est opérationnel lorsqu' on procède à l'analyse d'un produit constitué par des protéines, des polysaccharides ou des polymères synthétiques ou naturels. Il va de soi encore que le nombre de pics est fonction de la nature du produit de départ.
On va maintenant s'attacher à l'étude d'un produit commercial donné pur à 96%, le peptide RR10. La connaissance exacte de sa composition et de la nature des impuretés est un élément important en médecine humaine auquel les spécialistes sont attachés .
On a donc effectué à titre d'exemple l'analyse d'un produit vendu dans le commerce, présenté comme étant constitué du peptide RR10 pur à 96% de la manière suivante, afin de déterminer quelle est la composition chimique exacte de ces impuretés.
L' installation est analogue à celle représentée sur la figure 1 éventuellement réduit à deux compartiments. On place alors une membrane lipidique, par exemple la membrane 6 contenant le nanopore d' aérolysine 9, dans un milieu de réaction présentant une concentration en chlorure de lithium de 4M, à une température de 5°C, et on soumet la membrane à une différence de potentiel de -29mV. Grâce à un détecteur électrique extrêmement sensible, on mesure le courant électrique circulant à travers les pores.
La différence de potentiel provoque la circulation d' ions de l' électrolyte entre les deux côtés de la membrane, par exemple dans les compartiments 2 et 3, ce qui crée un courant mesurable. Lorsque des molécules passent à travers le nanotube, elles interrompent le courant. Ces interruptions sont proportionnelles à la taille des molécules, et varient en fonction des conditions de concentration, de pH et de température du milieu de réaction.
On mesure le courant I en permanence au cours du temps et on voit sur la figure 2 le courant de départ 10 quand les ions circulent sans obstacle et le courant Ib quand un blocage du nanopore est en cours. On peut voir clairement les chutes de courant correspondant aux différents peptides composant le mélange présenté comme pur. On voit que ces impuretés sont des sous-produits de la synthèse du peptide RR10, des peptides incomplets présentant chacun un moment de passage spécifique ainsi qu'une chute de courant caractéristique étalée comme indiqué précédemment de 30 à 68 pA.
Sur la figure 2, on retrouve différentes signatures à des niveaux de courant différents. Ainsi, pour une durée d'expérience de 203,3 s et à une tension de 25 pA, on détecte une chute du courant correspondant au peptide RR10. On voit que la mesure effectuée révèle la présence d' impuretés constituées par les peptides RR9, RR8 , RR7 , RR6 et RR5 à des valeurs de courant comprises entre 30 pA et 68 pA.
A partir de ces mesures, on a construit à l'échelle de la molécule unique le spectrogramme de masse représenté sur la figure 3. On voit que dans l'échantillon analysé le peptide RR10 donné pour une concentration pure à 96% est toutefois accompagné de plusieurs autres peptides. On a déterminé qu'il s'agissait des peptides RR9 à RR5.
L'utilisation du nanopore selon l'invention permet d' atteindre une sensibilité très élevée qui révèle la présence de fragments peptidiques quantifiables (de l'ordre de 1% du nombre total de molécules détectées, soit quelques dizaines de molécules) dans un échantillon vendu pur à 96%. Jusqu'à ce jour, il était impossible d'identifier ces fragments par l'analyse de spectrométrie de masse classique et par analyse chromatographique HPLC de la composition fournie par le vendeur de cet échantillon.
On comprend tout l'intérêt de l'invention qui permet d'atteindre un niveau de détection de peptides, protéines, polysaccharides et polymères synthétiques et autres molécules impossible avec les autres techniques classiques d'analyse.
Afin d' obtenir une résolution et une sensibilité satisfaisantes, différents facteurs sont à prendre en considération . On a donc procédé à divers essais en faisant varier les conditions physico-chimiques du milieu de réaction : la concentration en électrolyte, la nature de cet électrolyte, la température du milieu et la différence de potentiel appliquée à la membrane. On a ainsi constaté qu'une augmentation de la concentration en électrolyte et une diminution de la température favorisent la détection des peptides les plus courts et vice versa. Il en est de même des autres molécules.
En effet, comme on peut le voir sur les trois graphes de la figure 4, la diminution de la température et l'augmentation de la concentration en électrolyte du mélange de réaction entraînent une meilleure résolution sur les peptides de petite taille. Sur le graphe (a), où la température est de 20 °C et la concentration en électrolyte est de 2M, on voit que sur les tailles les plus petites, la résolution est plus faible : les pics ne sont pas nets et on constate une dispersion dense d'événements. Sur les graphes (b) et (c) , où la concentration en électrolyte a été augmentée nettement (4M) et où la température est diminuée (5 °C, graphe (c) ) , on voit bien que la définition pour les valeurs élevées de Ib/10, c'est-à-dire pour les peptides les plus petits, est meilleure. Les événements sont nettement séparés en deux pics distincts.
Ainsi, sur la figure 5, on a représenté les résultats obtenus en faisant varier la température et la concentration en électrolyte. On a représenté la durée de blocage de courant en fonction de Ib qui est l'intensité du courant du canal bloqué du nanopore aérolysine et 10 l'intensité du courant du même canal vide du nanopore.
Concernant le graphe (d) , la température est de l'ordre de 20 °C et la concentration en électrolyte de 2M. Sur le graphe (e) , la température est de 20 °C environ et la concentration en électrolyte est de 4M. Sur la courbe du bas, la température est de 5 °C et la concentration en électrolyte de 4M.
On a déterminé que la concentration de la solution d' électrolyte pourrait être comprise entre 0,5 et 5M et qu'une concentration de 1 M constitue un bon compromis, par exemple avec l' électrolyte LiCl .
On a utilisé différents électrolytes comme par exemple LiCl, NaCl, KC1 ou KBr, RbCl, CsCl, KF, ou chlorure d'ammonium, tétraméthylammonium chloride, .... Les résultats obtenus sont globalement du même ordre quel que soit 1 ' électrolyte .
Ainsi, la concentration élevée en électrolyte permet d'étudier des molécules de masse moléculaire plus faible, de l'ordre de deux acides aminés, et de manière surprenante un seul acide aminé. Dans ces conditions, le rapport signal/bruit est meilleur et les valeurs de Ib/10 sont décalées vers la gauche du spectrogramme . En effet, plus le rapport Ib/10 se rapproche de 0, plus la molécule concernée est longue. Ce décalage vers la gauche induit une marge à droite du spectrogramme favorisant ainsi la détection de peptides dont la longueur est inférieure à trois acides aminés. Compte tenu de la marge à droite du spectrogramme et de la forte concentration en sel, la détection d'un seul acide aminé est accessible.
Quant à la température, l'étude des trois diagrammes de la figure 4 montre que la position des peptides varie en ordonnée et qu' il est plus intéressant de préférer une température de 5°C et une concentration de 4M. On améliore donc la résolution. De manière générale, la température du milieu réactionnel peut être comprise entre 3 et 33°C.
La différence de potentiel appliquée à la membrane nanopore aérolysine ne semble pas avoir d'effet sur la position des raies figurant sur les graphes de la figure 4. Toutefois, en passant par exemple de -10 mV à -80 mV, on a constaté que la durée moyenne de bouchage du courant dépend du voltage pour l'échantillon de peptides RR10. Le choix d'une valeur de courant dépendra donc de la résolution que souhaite obtenir l'utilisateur. Une différence de potentiel appliquée à la membrane de -29 mV permet d'obtenir une excellente résolution.
Dans ce qui précède, on a mis en œuvre un nanopore aérolysine mais il va de soi que d'autres nanopores peuvent être utilisés. Ainsi, un nanopore ou nanotube du type cyclodextrine peut être mis en œuvre dans le procédé selon l'invention en adaptant sans difficultés les conditions d'utilisation à savoir la température, la concentration en sel et la nature de l' électrolyte .
Les conditions d'analyse de l'échantillon peptide décrit largement ci-dessus sont applicables aux autres échantillons protéines, quant à la nature de 1 ' électrolyte et sa concentration, quant à la température du milieu réactionnel et quant au niveau du courant appliqué au nanopore ou au nanotube. Il va de soi que ces conditions sont adaptées suivant la nature de ces molécules et l'homme du métier dispose des éléments nécessaires pour définir par des simples essais celles applicables aux protéines, aux oligosaccharides ou aux polymères synthétiques ou naturels. A titre d' illustration, on a déterminé que plus la molécule concernée est longue, plus cette longueur induisait un rapport Ib/IO se rapprochant de 0.
Un autre intérêt de l'invention repose sur les réactions enzymatiques . On sait que de nombreuses réactions enzymatiques sont déterminantes pour doser un produit important pour le diagnostic d'une maladie ou pour un processus industriel. On peut donc, suivant l'invention, suivre la dégradation enzymatique d'un peptide, par exemple par la trypsine, et les constantes cinétiques ont été bien déterminées. Bien évidemment l'homme du métier pourra conduire une dégradation d'une protéine, d'un polysaccharide ou d'un polymère synthétique ou naturel en procédant à des adaptations et quelques essais.
La figure 5 illustre les résultats obtenus en procédant à une analyse suivant l'invention avant (graphe d) et après (graphe e) dégradation enzymatique en mesurant l'intensité Ib du courant du canal bloqué et l'intensité 10 du courant du même canal de l'échantillon donné pur à 96%. Sur ces diagrammes, la raie la plus à gauche représente le peptide RR10, les autres peptides étant sous forme de trace.
Sur le premier diagramme, on voit que, avant dégradation, le peptide RR10 est le constituant majeur de l'échantillon. Après dégradation par la trypsine, on voit que l'appauvrissement en peptide RR10 s'effectue au profit des autres peptides RR9, RR8, RR7 , RR6 , RR5.
L'utilisation d'un nanopore ou d'un nanotube selon l'invention permet donc de visualiser la dégradation du peptide RR10 par la trypsine, en peptides plus courts : RR9, RR8, RR7 , RR6 et RR5. Par conséquent, on peut utiliser ce même procédé pour suivre d'autres processus de dégradation enzymatique de protéines, de polysaccharides , de polymères synthétiques ou naturels ou d'autres macromolécules susceptibles d'intéresser un utilisateur (médicaments, produits industriels ou autres) .
Par ailleurs, on distingue nettement les peptides RR10, RR9, RR8, RR7, RR6 et RR5. On peut donc différencier des peptides ne présentant qu'un acide aminé de différence. Cette caractéristique de l'invention permet un suivi extrêmement fin et spécifique des processus chimiques.
Dans l'exemple, on cite un peptide de 10 acides aminés de long, mais il va de soit que l'invention peut être utilisée avec des peptides plus longs : 20, 50 ou 100 acides aminés, ainsi que sur des macromolécules d'autres types (protéines, polysaccharides, polymères synthétiques ou naturels) .
Sur la figure 6, on a représenté 5 histogrammes illustrant l'effet du voltage sur la discrimination des peptides arginine de différentes longueurs. Ces histogrammes représentent les valeurs de courant de blocage Ib/10 dans le cas de l'interaction du nanopore d' aérolysine avec un mélange équimolaire de peptides d' arginine de différentes longueurs (5, 6, 7, 8, 9 et 10 acides aminés) à -25 mV (a), à -40 mV (b)., -50 mV (c) , -60 mV (d) et -80 mV (e) . Les mesures sont conduites en milieu KC1 4M, à pH 7,5 et à 20 °C.
On note qu' on distingue 6 populations de peptides correspondant aux 6 longueurs de peptides différents de 5 à 10 acides aminés pour un voltage inférieur à -50 mV (graphes f et g) . Par contre, pour un voltage supérieur ou égal à -50 mV, on repère une 7eme population représente en pointillé (graphes h, i et j ) . Ainsi, le procédé selon l'invention permet une analyse fine d'échantillons de molécules comme les peptides en distinguant un peptide différent d'un autre que par la présence d'un seul acide aminé. De plus, tous les essais de séquençage décrits ci-dessus et validés ont été effectués sur des petites quantités de peptides ou protéines, soit quelques dizaines de molécules par exemple de 2 à 15 dizaines
On a effectué les travaux précédents en s' attachant particulièrement à des échantillons donnés purs à 96% afin d'illustrer l'invention. Mais, on a obtenu la séparation de peptides de différentes tailles lorsque l'échantillon peptidique est totalement logé dans le nanopore et que chaque monomère (acide aminé) contribue au blocage de courant. On comprend qu'il n' y a pas de limite à l'analyse d'échantillons de peptides dès lors que la dimension du nanopore recevant les peptides est ajustée.
Il suffit de recueillir les différentes fractions de peptides suivant un processus analogue à celui mis en œuvre dans les chromatographies afin d' isoler une quantité pure de peptide unique comme cela a été expliqué en relation avec la figure 1.
On a illustré abondamment l'application de l'invention à l'étude d'un échantillon donné pur du peptide RR10. Il va sans dire que l'invention est mise en œuvre pour caractériser n'importe quel peptide donné pur. Ainsi, on a pu caractériser des peptides de tailles plus importantes tels que les peptides RR20, RR50 ou RR80. Il s'agit donc d'une avancée majeure dans la connaissance précise des échantillons utilisés en médecine.
Par ailleurs, l'invention peut être appliquée à l'étude d' échantillons comprenant plusieurs peptides de même longueur, mais de séquences différentes, «comme représenté sur la figure 7.
Pour ce faire, selon le même protocole que décrit précédemment, on a étudié des échantillons de pureté élevée (supérieure à 98%) de peptides d' arginine de 10 acides aminés de long (RR10), représenté sur le graphe k, et de peptides de lysine de 10 acides aminés de long (KK10), représenté sur le graphe 1. On voit sur les graphes que les populations majoritaires repérées diffèrent à la fois en terme de valeur du rapport Ib/10 et en durée moyenne de blocage. Cela révèle que l'invention permet de différencier des homopeptides de même longueur, mais de séquences différentes.
De plus, on a testé un échantillon de pureté élevée (supérieure à 98%) d'un hétéropeptide composé de 5 acides aminés lysine et 5 acides aminés arginine (KR10), représenté sur le graphe m. On voit clairement sur le graphe m que cette séquence correspond à un profil de blocage du nanopore, en terme de durée et d'intensité, différent des deux autres peptides .
Le graphe n représente le blocage typique créé par ces trois peptides au cours du temps.
L'invention peut donc également discriminer entre peptides de même longueur, des peptides de séquences différentes., ce qui ouvre des perspectives nouvelles pour l'analyse biologique et médicale.
L'invention trouve une application particulièrement importante en métabolomique et enzymologie.
Le diagnostic médical biologique doit aujourd'hui évoluer afin de permettre de travailler sur des échantillons précieux et rares ne contenant que quelques cellules ou quelques microvésicules d' intérêt ou encore sur de petits volumes d'échantillon tel que ceux recueillis chez la souris.
Les méthodes classiques de dosage qui utilisent la spectrométrie de luminescence, l'absorbance ou encore la fluorescence, nécessitent de grandes quantités d'échantillon pour obtenir un signal suffisant, distinct du bruit de fond. Par exemple, un minimum de 500 000 cellules sanguines blanches est nécessaire pour le dosage de l'activité des complexes enzymatiques de la chaîne respiratoire. Ces méthodes classiques interdisent par exemple de réaliser un profil enzymatique sur une cellule tumorale circulante isolée du sang.
On peut également utiliser un nanopore conformément à l'invention pour séparer des séquences différentes de peptides ou de protéines. La séquence d'un peptide conditionne ses propriétés physico-chimiques, qui elles-mêmes conditionnent son passage dans un nanopore. En effet, la nature des acides aminés conditionne la conformation des peptides. Différentes formes de protéines traversent les nanopores à des vitesses différentes. De même, les autres propriétés des protéines (charge, hydrophobie, etc..) influent sur la vitesse et la fréquence de leur passage à travers un nanopore, et donc sur les caractéristiques du blocage de courant qu'elles induisent. Par conséquent, il est possible, grâce à l'utilisation d'un nanopore selon l'invention, d'identifier différentes protéines présentes dans un mélange, différant par leurs tailles mais également par leurs séquences .
Pour ce faire, on place le mélange de protéines à séparer et identifier dans les conditions appropriées et on procède au passage à travers le nanopore. Chaque protéine crée sa signature spécifique en termes de durée de blocage spécifique du courant et de d'amplitude de blocage de courant, présentant donc des propriétés particulières de durée, d'intensité et de moment.
Il est également possible d'utiliser un nanopore selon l'invention pour caractériser les modifications chimiques naturelles ou synthétiques de molécules natives telles qu'une protéine, un peptide, un métabolite, un médicament.
Les modifications chimiques subies par une molécule changent ses caractéristiques : taille, conformation, charge, hydrophobie, etc.. Comme déjà expliqué ci-dessus, ce sont des caractéristiques qui influent sur le passage à travers un nanopore et par conséquent sur les blocages de courant provoqués par ce passage.
La technologie nanopore aérolysine mise au point dans l'invention permet de doser l'activité d'un petit nombre de copies d'enzymes dans une cellule unique, selon un processus industriel, permettant de quantifier l'activité enzymatique d'un faible nombre de molécules d'enzyme qui sont libérées après lyse de la celle d'origine.
Même les méthodes les plus sophistiquées telles que la spectrométrie de masse en tandem demande un minimum de 50 000 cellules. C'est pourquoi les inventeurs se sont orientés vers le développement d'une technologie « nanopore » qui permet de doser l'activité d'un petit nombre de copies d'enzymes dans une cellule unique.
La figure 8 illustre l'exemple d'un possible processus industriel permettant de quantifier l'activité enzymatique d'un faible nombre de molécules d'enzyme qui auraient été libérées après lyse de la celle d'origine. Ce système de détection et de quantification spécifique permet donc de faire sur cellule unique des dosages jusqu'alors impossibles à réaliser. Son utilisation en santé ouvre un champ d'application très large, notamment celui de la médecine personnalisée .
Ce processus est par exemple le suivant et illustré sur la figure 8 qui représente un synoptique du système microfluidique permettant le dosage d'une activité enzymatique spécifique où l'enzyme est amenée à l'entrée du pore par guidage microfluidique .
En 1, la cellule est lysée de manière classique pour libérer son contenu enzymatique. La cellule unique peut être du type procaryote ou eucaryote
En 2, les molécules de l'enzyme d'intérêt et d'autres molécules provenant du contenu de la cellule lysée sont entraînées par l'écoulement d'une solution tampon dans les tubulures du système microfluidique (système permettant de prendre en charge des fluides dont le volume est de 1CT9 à
1CT18 litres) jusqu'à une chambre réactionnelle .
En 3, dans la chambre réactionnelle les molécules de l'enzyme d'intérêt sont capturées et fixées sur un support par des sondes spécifiques qui peuvent être des anticorps, des sondes aptamériques , des peptides spécifiques, etc.
L'écoulement continu du tampon permet de s'affranchir du phénomène de diffusion. Les autres molécules sont éliminées par diffusion.
En 4, le substrat spécifique de l'enzyme d'intérêt est ensuite injecté et capturé par les enzymes d'intérêt fixées sur le support. Ces enzymes transforment le substrat en produit qui à son tour diffuse dans le tampon. L'excès de substrat est capturé par des sondes spécifiques eh aval.
En 5, enfin, les molécules de produits passent dans une série de nanopores aérolysine.
En 7 et 8 , chaque passage est détecté et permet de compter chaque molécule et d'en déduire la concentration et l'activité enzymatique. La concentration en enzyme est déterminée par un système électronique.
Cette quantification du nombre de molécules d'enzyme combinée à celle du produit permet en 9 d'obtenir une activité enzymatique molaire de très haute précision.
Selon le même processus, il est possible d'identifier et de quantifier des molécules dites « métabolites », appartenant à des voies métaboliques ou jouant un rôle dans la signalisation cellulaire.
De la même façon, on traite un lysat de cellule pour identifier sa composition. Des substrats enzymatiques ou des ligands particuliers au processus biologique étudié permettent de ne détecter que les molécules impliquées dans les processus en question.
Ces molécules dites métabolites sont produites en général par des enzymes appartenant à des voies biochimiques cellulaires telles que le cycle de KREBS, la voie des pentoses phosphates, etc. Ces métabolites sont très souvent ■ tour à tour substrats et produits des réactions enzymatiques qui s'enchaînent les unes aux autres dans les voies métaboliques cellulaires. Pour la voie des pentoses phosphates, ces métabolites sont par exemple le glucose-6 phosphate, le 6-phosphoglucnate ou encore le glycéraldéhyde- 3-phosphate. Dans le cycle de KREBS les métabolites sont à titre d'exemple le citrate, le succinate ou l' alphacétoglutarate . La concentration de ces métabolites varie en fonction de l' homéostasie cellulaire et plus particulièrement en cas de pathologie. Dans une cellule unique ces métabolites sont en quantité non détectables par les techniques de dosages existantes. Outre les métabolites décrits plus haut, notre invention permet aussi le dosage d'hormones, de neuromédiateurs, de neurotransmetteurs, de molécules présentes dans les voies de signalisation cellulaires ou messagers tels que l'ATP, l'ADP, l'AMPc, l'IP3, l'acide arachidonique .
Sur la figure 9, on a représenté une variante de réalisation du système illustré par la figure 8. Le système de détection et de quantification électronique des molécules d' enzyme en 8 peut être remplacé par les nanopore en 5 après avoir élué toutes les molécules de substrat en excès et compté toutes les molécules de produit. Plusieurs cycles de lavages/rinçages seront réalisés de façon ménagée afin de ne pas éluer les molécules d'enzymes accrochées sur leurs sondes spécifiques en 4 avec les molécules de substrat et de produit. Une fois le micro capillaire rincé, l'élution des molécules d'enzyme fixées en 4 est réalisée. Ces molécules d'enzyme sont ensuite comptées en 5 par les nanopores qui ont servi auparavant à compter les molécules de produit.
En 5a, l'excès de substrat est rincé dans un flux de tampon. Le courant de transfert dans le nanopores est coupé. Les conditions d' élution et de rinçage sont telles qu'elles permettent aux molécules d'enzyme de rester fixées sur leurs sondes spécifiques. En 6a, les conditions d' élution sont plus drastiques et permettent aux molécules d'enzyme de quitter leurs sondes spécifiques et de diffuser au travers des nanopores après que l'on ait rétabli le courant de passage.
Les figures ci-dessus 8 et 9 illustrent également le principe de l'invention pour le dosage quantitatif de métabolites et la détermination de l'activité enzymatique molaire de n'importe quelle enzyme.
Il suffit de remplacer le processus des figures 8 et 9 les molécules de protéines enzymatiques par les métabolites et de les simplifier en supprimant l'étape de capture des enzymes .

Claims

REVENDICATIONS
1. Utilisation d'un nanopore d' aérolysine ou d'un nanotube pour la détection électrique de peptides, de protéines distincts d'au moins un acide aminé et d'autres macromolécules comme les polysaccharides ou les polymères synthétiques ou naturels présents dans une préparation où le dit nanopore ou nanotube est inséré dans une membrane lipidique que l'on soumet à une différence de potentielle supérieure à -160mV, dans un milieu réactionnel comprenant une solution d' électrolyte halogénure de métal alcalin ayant une concentration inférieure à 6M et une température inférieure à 40°C, et où la dite utilisation a pour objectif de différencier les dits peptides, protéines, et autres molécules en fonction de leur longueur et leur masse.
2 . Utilisation d'un nanopore selon la revendication 1, caractérisée en ce que l' halogénure de métal alcalin est un chlorure de métal alcalin.
3. Utilisation d'un nanopore selon la revendication 1 ou 2, caractérisée en ce que l' halogénure de métal alcalin est représenté par LiCl, KC1 ou NaCl .
4. Utilisation d'un nanopore selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que la concentration de la solution d' électrolyte est comprise entre 0,5 et 5M.
5. Utilisation d'un nanopore selon la revendication 4, caractérisée en ce que la concentration du milieu réactionnel en LiCl est égale à 1M ou à 4M.
6. Utilisation d'un nanopore selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, caractérisée en ce que la différence de potentiel est comprise entre environ -80 et -10 mV.
7. Utilisation d'un nanopore selon la revendication 6, caractérisée en ce que la différence de potentiel appliquée à la membrane est de -29 mV.
8. Utilisation d'un nanopore selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisée en ce que la température du milieu réactionnel est comprise entre 3 et 33°C.
9. Utilisation d'un nanopore selon l'une quelconque des revendications 1 à 8 pour caractériser la dégradation enzymatique d'un échantillon de peptides, de protéines, de polysaccharides ou de polymères synthétiques par détermination des produits de dégradation.
10. Utilisation d'un nanopore selon l'une quelconque des revendications 1 à 8 pour séparer des séquences différentes de peptides ou protéines.
11. Utilisation d'un nanopore selon l'une quelconque des revendications 1 à 8 pour caractériser les modifications chimiques naturelles ou synthétiques de molécules natives telles qu'une protéine, un peptide, un métabolite, un médicament .
12. Utilisation d'un nanopore selon l'une quelconque des revendications 1 à 8 pour déterminer l'activité enzymatique spécifique et molaire d'une enzyme dans une cellule unique procaryote ou eucaryote.
13. Utilisation d'un nanopore selon l'une quelconque des revendications 1 à 8 pour identifier et quantifier des molécules dites « métabolites » appartenant à des voies métaboliques ou de signalisations cellulaires.
14. Produit peptidique obtenu par l'utilisation d'un nanopore selon l'une quelconque des revendications 1 à 8 constitué d'un peptide unique tel le peptide RRIO.
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