WO2017203999A1 - 白斑毒性及び黒皮症毒性の試験方法 - Google Patents

白斑毒性及び黒皮症毒性の試験方法 Download PDF

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昌志 加藤
真智子 飯田
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Definitions

  • the present invention relates to a technique for evaluating vitiligo toxicity and melanosis toxicity. Specifically, the present invention relates to a test method for vitiligo toxicity and melanosis toxicity using experimental animals.
  • This application claims priority based on Japanese Patent Application No. 2016-104698 filed on May 25, 2016, the entire contents of which are incorporated by reference.
  • Vitiligo is a disease accompanied by mottled white skin (depigmentation) (Non-patent Document 1).
  • onset time it is reported that 1 to 2 months for early people, and 3 to 5 months for many cases, and one of the characteristics is that there is a large individual difference in sensitivity.
  • Rhododenol is a reductant of raspberry ketone that has already been reported to have vitiligo toxicity, but has been commercialized as a whitening agent because it has cleared safety standards using several types of animals, as defined by the Ministry of Health, Labor and Welfare. Nevertheless, given the background of the current vitiligo problem, the sensitivity required for current safety tests is not sufficient. Furthermore, the Ministry of Health, Labor and Welfare has reported that vitiligo-induced toxicity is suspected in 19 chemical substances other than rhododenol, and there is concern that the damage to vitiligo caused by whitening agents will further increase in the future.
  • Non-patent Document 3 a technique using haired guinea pigs has been reported (Non-patent Document 3).
  • vitiligo is induced by external application of 30% rhododenol in skin whose pigment production has been enhanced by artificial stimulation such as shaving or ultraviolet rays.
  • vitiligo toxicity has not been evaluated at low concentrations (for example, 2%) of rhododenol, and vitiligo has not been induced even at 10% rhododenol.
  • Non-patent Document 4 an evaluation method using hairless hk14-SCF Tg mice has also been reported (Non-patent Document 4), it is a vitiligo toxicity evaluation technique limited to 30% rhododenol external use, and it is based on low concentration (eg 2%) of rhododenol. Vitiligo toxicity has not been evaluated. Moreover, it is an evaluation technology for vitiligo toxicity in which the chemical substance is limited to rhododenol, and the toxicity of melanosis is not evaluated.
  • mice have repeatedly studied to solve the above problems.
  • One noteworthy point is that when specific mice (hairless RET mice) are used, vitiligo toxicity and melanosis toxicity can be evaluated simultaneously.
  • Further studies have succeeded in the construction of a cell-based evaluation system (in vitro test method) that can evaluate vitiligo toxicity, melanosis toxicity, or both simultaneously. Inventions completed by the present inventors are shown below.
  • a test method for vitiligo toxicity comprising the following steps (1) and (2): (1) applying a test substance to the tail of a hairless mouse having melanin-producing ability; (2) A step of evaluating the presence and / or degree of induction of vitiligo in the tail of the hairless mouse and determining vitiligo toxicity of the test substance based on the evaluation result.
  • the test method according to [1] wherein the hairless mouse is a hairless mouse having normal melanin production ability.
  • the test method according to [1], wherein the genetic background of the hairless mouse is C57BL / 6.
  • the hairless mouse having the genetic background of C57BL / 6 is a mouse obtained by backcrossing a C57BL / 6 mouse to a Hos: HRM hairless mouse, or a mouse obtained by crossbreeding the mouse.
  • a test method for melanosis toxicity comprising the following steps (1) and (2): (1) A hairless RET mouse obtained by backcrossing a hairless mouse having a genetic background of C57BL / 6 to a RET / o- transgenic mouse into which an activated RET gene has been introduced in a heterozygous form, or the mouse Applying a test substance to the skin of a hairless RET mouse obtained by mating siblings (excluding the skin of the tail), (2) A step of evaluating the presence and / or degree of induction of melanosis in the skin of the hairless RET mouse and determining the toxicity of the test substance on the basis of the evaluation result. [7] The test method according to [6], wherein the skin is back, abdomen, or head skin.
  • [8] Simultaneous test method for vitiligo toxicity and scleroderma toxicity comprising the following steps (1) to (3): (1) A hairless RET mouse obtained by backcrossing a hairless mouse having a genetic background of C57BL / 6 to a RET / o- transgenic mouse into which an activated RET gene has been introduced in a heterozygous form, or the mouse Applying the test substance to the tail of the hairless RET mouse obtained by crossbreeding the brother and sister and the skin (excluding the skin of the tail), (2) evaluating the presence and / or extent of induction of vitiligo in the tail of the hairless RET mouse, and determining vitiligo toxicity of the test substance based on the evaluation results; (3) A step of evaluating the presence and / or degree of induction of melanosis in the skin of the hairless RET mouse and determining the toxicity of the test substance on the basis of the evaluation result.
  • the RET / o ⁇ transgenic mouse is a 192 line RET / o ⁇ transgenic mouse, a 242 line RET / o ⁇ transgenic mouse, a 304 line RET / o ⁇ transgenic mouse, or a 304 / B6 line RET /
  • the test method according to any one of [4], [6] to [11], which is an o- transgenic mouse.
  • a mouse susceptible to vitiligo toxicity and melanosis toxicity comprising the following mouse (i) or (ii): (I) a hairless RET mouse obtained by backcrossing a hairless mouse having a genetic background of C57BL / 6 to a RET / o- transgenic mouse into which an activated RET gene has been introduced into a heterozygous form, (Ii) A hairless RET mouse obtained by mating the mouse of (i) with a sibling. [14] The sensitive mouse according to [13], wherein the activated RET gene is an RFP-RET gene generated by hybridization of a c-RET gene and an RFP gene.
  • the sensitive mouse according to [13] or [14], wherein the activated RET gene is linked to a metallothionein I promoter.
  • the RET / o- transgenic mouse is a 192 line RET / o- transgenic mouse, a 242 line RET / o- transgenic mouse, a 304 line RET / o- transgenic mouse, or a 304 / B6 line RET /
  • the sensitive mouse according to any one of [13] to [15], which is an o- transgenic mouse.
  • An in vitro test method characterized by evaluating vitiligo toxicity of a test substance using a melanocyte collected from the tail of a hairless mouse having melanin production ability or its passage cells.
  • a hairless RET mouse obtained by backcrossing a hairless mouse having a genetic background of C57BL / 6 to a RET / o- transgenic mouse into which an activated RET gene has been introduced into a heterozygote, or the mouse Characterized by evaluating the melanosis toxicity of the test substance using melanocytes collected from the skin of hairless RET mice (excluding the skin of the tail) or their passage cells obtained by mating siblings In vitro test method.
  • An in vitro test method for evaluating vitiligo toxicity and / or melanosis toxicity comprising the following steps (a) to (d): (A) a hairless RET mouse obtained by backcrossing a hairless mouse having a genetic background of C57BL / 6 to a RET / o- transgenic mouse into which an activated RET gene has been introduced in a heterozygous form, or the mouse Preparing a sample containing skin melanocytes of hairless RET mice obtained by mating siblings, and dividing the test group and the control group, (B) culturing the test group in the presence of the test substance; (C) For the test group after step (b) and the control group cultured under the same conditions except that the test substance is not present, c-Met, RFP-RET, c-Ret, Enothelin receptor B ( Ednrb), c-kit, Mc1r, Mitf-m, Tyrosinase, Tyrosinase-realted protein
  • An in vitro test method for evaluating vitiligo toxicity and / or scleroderma toxicity comprising the following steps (A) to (D): (A) preparing a melanocyte cell line derived from a RET / o- transgenic mouse into which an activated RET gene has been introduced into a heterogeneous form, and dividing it into a test group and a control group; (B) culturing the test group in the presence of the test substance; (C) For the test group after step (B) and the control group cultured under the same conditions except that the test substance is not present, c-Met, RFP-RET, c-Ret, Enothelin receptor B ( Ednrb), c-kit, Mc1r, Mitf-m, Tyrosinase, Tyrosinase-realted protein-2, TGF-beta type receptor 2 (Tgfr2), Fibroblast growth factor (Fgfr), Bcl2, p53, survivin,
  • a screening method for a prophylactic or therapeutic drug for vitiligo comprising the following steps (a) to (c): (A) performing a vitiligo induction treatment on the tail of a hairless mouse having melanin production ability; (B) administering a test substance to the hairless mouse; (C) determining the preventive effect or therapeutic effect of the test substance.
  • a screening method for a drug for preventing or treating melanosis comprising the following steps (A) to (C): (A) A hairless RET mouse obtained by backcrossing a hairless mouse having a genetic background of C57BL / 6 to a RET / o- transgenic mouse into which an activated RET gene has been introduced in a heterozygous form, or the mouse Applying melanosis induction treatment to the skin of hairless RET mice obtained by mating siblings (excluding tail skin), (B) administering a test substance to the hairless RET mouse, (C) A step of determining the prophylactic effect or therapeutic effect of the test substance.
  • mice used for evaluation of toxicity of vitiligo and melanosis 8-week-old hairless wild-type mice (C57BL / 6 background) (A: back skin on the left, tail skin on the right), and hairless RET mice (242 strains) used to evaluate vitiligo toxicity and melanosis toxicity (C57BL / 6 background) (B: left skin on the back, tail skin on the right).
  • the arrowhead A indicates melanin stained with Fontana Masson, and the arrowhead C indicates Dct-positive cells.
  • the blue fluorescence shows nuclei stained with Dapi.
  • Scale bar is 50 ⁇ m. * P ⁇ 0.05, ** p ⁇ 0.01 (according to Tukey-Kramer test). Histological analysis of tail skin using 2% rhododenol and 2% raspberry ketone.
  • the arrowhead A indicates melanin stained with Fontana Masson, and the arrowhead C indicates Dct-positive cells.
  • the blue fluorescence shows nuclei stained with Dapi.
  • Scale bar is 50 ⁇ m. ** p ⁇ 0.01 (according to Tukey-Kramer test). Evaluation of vitiligo toxicity and melanosis toxicity using a cell line isolated from RET-mouse.
  • Vitiligo toxicity refers to an action or effect that induces vitiligo.
  • Vitiligo is a condition caused by a decrease or disappearance of melanocytes, which are pigment cells distributed in the basal layer of the skin.
  • the vitiligo according to the present invention does not include congenital vitiligo (albinism) as is apparent from the object and use form of the present invention, and corresponds to so-called vulgaris.
  • the following steps (1) and (2) are performed.
  • Step of applying test substance to tail of hairless mouse having melanin producing ability (2) Evaluation of presence and / or degree of induction of vitiligo in tail of hairless mouse, and based on the evaluation result, vitiligo toxicity of test substance Step to determine
  • a specific mouse that is, a hairless mouse having the ability to produce melanin is prepared, and a test substance is applied to its tail.
  • “Hairless mouse having melanin-producing ability” has melanin in the epidermis and indicates the genotype of a hairless individual (in which hair is missing). This feature is important in that it is necessary for the induction of vitiligo and allows easy and objective evaluation. Examples of hairless mice having melanin producing ability include Hos: HRM, Hos: HRM-2, and HR / DeF1 (all available from Hoshino Test Animal Breeding).
  • a hairless mouse with melanin production ability molecules involved in regulation of melanin production, specifically Microphthalmia-associated transcription factor, Tyrosinase, Tyrosinase related protein-1, Tyrosinase related protein 2, Pmel 17, alpha-Melanocyte-stimulating hormone, It is preferable to use a hairless mouse in which molecules such as Stem cell factor, c-Kit, Endothelin, Endothelin receptor function and normal melanin production ability.
  • a hairless mouse having a genetic background of C57BL / 6 is used.
  • C57BL / 6 mice for example, C57BL / 6 mice provided by Nippon Charles River and Japan Marie
  • a genetic background that can be used in the present invention is described.
  • C57BL / 6 hairless mice mice that have not undergone genetic modification such as introduction of a RET gene and may be referred to as “hairless wild-type mice” to be distinguished from the following hairless RET mice
  • the backcrossing using C57BL / 6 mice may be repeated so that the genetic background is preferably 95.0% or more, more preferably 99.9% or more, and C57BL / 6.
  • a hairless RET mouse obtained by backcrossing a hairless mouse having a genetic background of C57BL / 6 to a RET / o- transgenic mouse into which an activated RET gene has been introduced into a heterogeneous form or A hairless RET mouse obtained by mating a mouse with a brother and sister is used as a “hairless mouse having melanin production ability”.
  • the evaluation system assumes a human who develops vitiligo over a relatively long period of time (see Examples for details).
  • a mouse other than the hairless RET mouse that is, the above-mentioned hairless wild-type mouse
  • a more sensitive evaluation system can be realized. Therefore, when these two modes are used in combination, toxicity evaluation for humans with different sensitivities can be performed.
  • hairless RET mice are a method of backcrossing a hairless mouse having a genetic background of C57BL / 6 to a RET / o- transgenic mouse into which an activated RET gene has been introduced in a heterozygous manner (production method 1 ), Or a method of crossbreeding the mouse obtained in Production Method 1 (Creation Method 2).
  • production method 1 production method 1
  • Ret / O a method of crossbreeding the mouse obtained in Production Method 1
  • a hairless mouse having a genotype genotype of hr / hr; Ret / O and a genetic background of C57BL / 6 can be obtained.
  • a RET / o- transgenic mouse into which an activated RET gene has been introduced into a heterozygous form is typically an RFP-RET gene generated by hybridization of a c-RET gene and an RFP gene as an activated RET gene. This is a heterozygous mouse.
  • the activated RET gene is preferably linked to the metallothionein I promoter (MT).
  • RET / o- transgenic mice include 192 line RET / o- transgenic mice, 242 line RET / o- transgenic mice, 304 line RET / o- transgenic mice (Kato et al., Oncogene, 18 ( 3): 837-42, 1999; Iwamoto et al., EMBO J, 10 (11), 3167-3175, 1991), and C57BL / 6 mice were mated to 304 line RET / o- transgenic mice.
  • the obtained 304 / B6 strain RET / o- transgenic mouse (Kato et al, Oncogene, 17, 1885-1888, 1998).
  • 242 lines are used. Note that frozen fertilized eggs and frozen spermatozoa of RET transgenic mice are stored in the National Center for Life Resources Research and Support (CARD) of Kumamoto University and the RIKEN BioResource Center (Tsukuba) of RIKEN.
  • a hairless mouse having a genetic background of C57BL / 6 is backcrossed to the RET / o- transgenic mouse as described above.
  • a hairless mouse having a genetic background of C57BL / 6 the above hairless wild-type mouse can be used.
  • a mouse obtained by backcrossing a C57BL / 6 mouse to a Hos: HRM hairless mouse or a mouse obtained by crossbreeding the mouse with a sibling is referred to as a ⁇ hairless mouse having a genetic background of C57BL / 6 ''.
  • Adopt as.
  • mice obtained in Production Method 1 are mated with siblings.
  • the mouse thus obtained has an advantage that the homogeneity of the genetic background is enhanced and the influence due to individual differences can be reduced, so that stable toxicity evaluation is possible.
  • the sibling mating may be performed 10 times or more, preferably 20 times or more (specifically, 20 to 30 times).
  • the test substance is applied to the tail of the “hairless mouse having the ability to produce melanin” prepared as described above. That is, in the present invention, the tail is adopted as the application site of the test substance based on the knowledge that the induction of vitiligo was specifically observed in the tail.
  • the method for applying the test substance is not particularly limited.
  • the test substance itself or a composition containing the test substance solution, ointment, cream, cosmetics, etc.
  • a prick test and a scratch test are also possible. It is also possible to apply the test substance by putting or immersing the tail in the test substance or a solution containing it.
  • test substance any substance that needs to be evaluated for vitiligo toxicity, that is, any substance that may show vitiligo toxicity can be used as a test substance.
  • the structure, molecular size, and presence state of the test substance are not particularly limited. Therefore, various organic compounds or inorganic compounds, or various compositions containing the same can be used as test substances.
  • the test substance may be derived from natural products or synthesized. Take into account that vitiligo toxicity caused by chemical substances may be enhanced by physical stimuli (eg light) (eg photosensitivity vitiligo melanosis), and add physical stimuli when applying the test substance It may be.
  • cosmetics for example, basic cosmetics such as lotions, cosmetic liquids, milky lotions, creams, whitening cosmetics, moisturizing cosmetics, foundations, lipsticks, shampoos, soaps, hairdressing agents, etc.
  • skin pharmaceuticals Quasi-drugs for example, medicated creams such as hand creams, whitening agents, deodorants, white hair dyes, hair coloring agents, hair growth agents, hair growth agents, etc.
  • pharmaceuticals external preparations, internal use (eg, thiazide diuretics, muscle tone)
  • the main components, subcomponents, additives or base materials such as therapeutic agents, etc.), drops, injections, etc.
  • test substances may be used as test substances.
  • Various substances for example, chemical substances, foods, animal / plant-derived substances
  • chemical substances for example, chemical substances, foods, animal / plant-derived substances
  • industrial processes such as chemical factories and raw material processing industries
  • the test substance is applied once or multiple times (for example, 2 to 360 times).
  • a predetermined period eg, 1 week, 2 weeks
  • a predetermined interval eg, 6 hours, 12 hours, 1 day, 2 days, 3 days, 1 week, 2 weeks
  • 3 weeks, 4 weeks, January, February, March, April, May, June may be constant or may vary in the middle.
  • the application amount of each time may be the same or different.
  • step (2) the presence or absence or degree of induction of vitiligo in the tail of the hairless mouse treated in step (1), or both of them is evaluated. And the vitiligo toxicity of a test substance is determined based on an evaluation result. Typically, when vitiligo is induced, it is determined that “the test substance has vitiligo toxicity”. However, instead of such a definitive determination, a determination result such as “the test substance is highly likely to have vitiligo toxicity” or “the test substance may have vitiligo toxicity” will be given. Also good.
  • a determination result such as “the test substance does not have vitiligo toxicity” or “the test substance is unlikely to have vitiligo toxicity” is given.
  • a determination result such as “the test substance does not have vitiligo toxicity” or “the test substance is unlikely to have vitiligo toxicity” is given.
  • multiple toxicity levels corresponding to the degree of vitiligo induction time until vitiligo is induced, size of the induced vitiligo (area), hue of vitiligo, etc.
  • the toxicity level of the evaluation result is confirmed, and the toxicity level of the test substance is determined or determined.
  • Evaluation of the presence or degree of vitiligo induction is the time until vitiligo is induced, the size (area) of the induced vitiligo, the color of the vitiligo, the skin color of the test substance application site, the amount of skin melanin at the test substance application site, It can be performed according to evaluation items such as the amount of skin melanocytes at the test substance application site, tyrosinase activity, the expression level of melanin-related molecules in melanocytes and surrounding cells.
  • the time until vitiligo is induced, the size (area) of the induced vitiligo, the color tone of the vitiligo, and the skin color of the test substance application site can be evaluated visually, but a color difference meter or image analysis software (for example, evaluation may be performed using WinROOF image analysis software (Mitani Corporation).
  • the international color standard L * a * b * color system should be adopted when evaluating the color of vitiligo and skin color using a color difference meter. According to the L * value (lightness) of the color difference meter, it is possible to more objectively evaluate the color tone of the vitiligo and the skin color. It is also possible to evaluate using a table system such as L * C * h or HSL.
  • two or more evaluation items may be used in combination.
  • Examples of combined use of endpoints include: (i) time to induce vitiligo and combination of two endpoints: induced vitiligo size (area), (ii) time to induce vitiligo , The combination of two evaluation items of vitiligo color tone, (iii) the time to induce vitiligo, the size (area) of the induced vitiligo, and the combination of three evaluation items of vitiligo color tone it can.
  • a hairless mouse (test group) to which the test substance is applied and a hairless mouse (control group) under the same conditions except that the test substance is not applied are prepared. And a test group and a control group are compared regarding the employ
  • the toxicity of the test substance can be determined easily and with high reliability.
  • the number of individuals included in the test group and the control group is not particularly limited. In general, as the number of individuals to be used increases, a result with higher reliability is obtained. However, handling a large number of individuals at the same time is difficult in terms of securing and operating (including breeding) the individuals to be used. Therefore, the number of individuals included in each group is, for example, 1 to 50, preferably 2 to 30, and more preferably 5 to 20.
  • Test method for melanosis toxicity The second aspect of the present invention provides a test method for melanosis toxicity.
  • Black skin disease is a condition in which the skin changes from dark brown to purple brown due to pigmentation.
  • the following steps (1) and (2) are performed.
  • the detail of each step is demonstrated below, about the term and requirement which are common in 1st aspect (white spot toxicity test method), description in 1st aspect is used and the overlapping description is abbreviate
  • Second Existence and / or extent of induction of melanosis in the skin of the hairless RET mouse To evaluate the toxicity of scleroderma of the test substance based on the evaluation result
  • a hairless RET mouse obtained by backcrossing a hairless mouse having a genetic background of C57BL / 6 to a RET / o- transgenic mouse into which the activated RET gene has been introduced in a heterozygous form, or Prepare a hairless RET mouse (that is, a hairless mouse with a genotype of hr / hr; Ret / O and a genetic background of C57BL / 6) obtained by mating the mouse with a sibling, and apply the test substance to the skin .
  • the test substance is applied to the skin at a site other than the tail, but preferably the skin of the back, stomach or head is used as the test substance application site.
  • the method for applying the test substance is not particularly limited.
  • test substance itself or a composition containing the test substance (solution, ointment, cream, cosmetics, etc.) is applied or dropped onto the skin (other than the tail) of the mouse, or injected into the skin (other than the tail).
  • a prick test and a scratch test are also possible.
  • test substance Any substance can be used as a test substance as long as it is a substance that is required to be evaluated for toxicity of melanosis, that is, a substance that may show toxicity of melanosis. Therefore, various substances can be adopted as in the case of the first aspect (for details, refer to the description of the test substance in the first aspect). Further, as in the case of the first aspect, physical stimulation may be applied together with the administration of the test substance. The number of times of application of the test substance and the application schedule are also in accordance with the first aspect.
  • step (2) following step (1), the presence or absence or degree of induction of melanosis in the skin (other than the tail) of the hairless RET mouse treated in step (1), or both of them is evaluated. Based on the evaluation result, the toxicity of the test substance is determined.
  • evaluation and determination are performed at a site corresponding to the application site of the test substance. That is, when the test substance is applied to the back of the mouse, the “back” becomes the evaluation site. Similarly, when the test substance is applied to the abdomen, the “belly” becomes the evaluation site, and when the test substance is applied to the head, the “head” becomes the evaluation site.
  • melanosis is induced, it is determined that “the test substance has melanosis toxicity”.
  • a determination result such as “the test substance is highly likely to have melanosis toxicity” or “the test substance may have melanosis toxicity” is used. You may decide to put it out.
  • a determination result such as “the test substance does not have melanosis toxicity” or “the test substance is unlikely to have melanosis toxicity” is given.
  • the degree of melanosis induction for example, the degree of melanosis induction (time until melanosis is induced, the size (area) of the induced pigmentation, the color tone of pigmentation, etc.
  • toxicity levels corresponding to are set, the toxicity level of the evaluation result is confirmed, and the toxicity level of the test substance is determined or determined. Evaluation of whether or not melanosis is induced is based on the time until melanosis is induced, the size (area) of the induced pigmentation, the color of the pigmentation, the skin color of the test substance application site, the test substance application It can be performed according to evaluation items such as the amount of skin melanin at the site, the amount of skin melanocyte at the site of application of the test substance, tyrosinase activity, the expression level of melanin-related molecules in melanocytes and surrounding cells.
  • the time until melanosis is induced, the size (area) of the induced pigmentation, the color of the pigmentation, and the skin color at the site where the test substance is applied can be evaluated by visual inspection. You may evaluate using image analysis software (for example, WinROOF image analysis software (Mitani Corporation)).
  • image analysis software for example, WinROOF image analysis software (Mitani Corporation)
  • the international color standard L * a * b * color system should be adopted when evaluating the color of vitiligo and skin color using a color difference meter. According to the L * value (brightness) of the color difference meter, it is possible to more objectively evaluate pigmentation color tone, skin color, and the like.
  • two or more evaluation items may be used in combination.
  • combination of endpoints include: (i) time to induce melanosis, and combination of two endpoints: induced pigmentation size (area); (ii) melanosis is induced And (iii) the time to induce dermatosis, the size (area) of the induced pigmentation, and the coloration of the pigmentation.
  • the combination of three evaluation items can be mentioned.
  • test group and a control group in the scleroderma toxicity test method, and evaluate and determine the toxicity of the test substance based on a comparison between them.
  • hairless RET mice ie, genotype hr / hr; Ret / O and genetic background In C57BL / 6 hairless mice
  • low concentrations of rhododenol and raspberry ketone induced vitiligo on the tail skin and melanosis on the back skin low concentrations of rhododenol and raspberry ketone induced vitiligo on the tail skin and melanosis on the back skin. That is, the hairless RET mouse has a unique and useful characteristic that it is highly sensitive to vitiligo toxicity and melanosis toxicity, and has high utility value.
  • the present invention provides, as a further aspect, a mouse susceptible to vitiligo toxicity and melanosis toxicity, which comprises the following mouse (i) or (ii).
  • a mouse susceptible to vitiligo toxicity and melanosis toxicity which comprises the following mouse (i) or (ii).
  • mouth of (i) and (ii) is the same as the mouse
  • omitted the following, items specific to this aspect will be described.
  • the mouse of (ii) has the advantage that the uniformity of genetic background is higher than that of the mouse of (i) and the influence due to individual differences can be reduced. It can be said.
  • the sibling mating may be performed 10 times or more, preferably 20 times or more (specifically, 20 to 30 times).
  • transgenic mice 192 strain RET / o - transgenic mice, 242 strains RET / o - transgenic mice, 304 strains RET / o - transgenic mice, and 304 strains RET / o - transgenic 304 / B6 strain RET / o- transgenic mice obtained by mating C57BL / 6 mice with mice, preferably 242 strains are used.
  • Hairless RET mice are useful for evaluation of vitiligo toxicity (first aspect) and melanosis toxicity (second aspect).
  • This aspect is highly sensitive to both vitiligo toxicity and melanosis toxicity. Taking advantage of the characteristic of showing, it provides a very unique test method for simultaneously evaluating and judging vitiligo toxicity and melanosis toxicity. In this test method (simultaneous test method for vitiligo toxicity and melanosis toxicity), the following steps (1) to (3) are performed.
  • a hairless RET mouse obtained by backcrossing a hairless mouse having a genetic background of C57BL / 6 to a RET / o- transgenic mouse into which an activated RET gene has been introduced in a heterozygous form, or the mouse (2) Presence and / or extent of vitiligo on the tail of the hairless RET mouse (2) Applying a test substance to the tail of the hairless RET mouse obtained by mating siblings and the skin (excluding the skin of the tail) And (3) evaluating the presence and / or extent of induction of melanosis in the skin of the hairless RET mouse, and evaluating the test substance based on the evaluation result Steps to determine melanosis toxicity
  • step (1) a hairless RET mouse is prepared, and the test substance is applied to the tail and skin (excluding the skin of the tail). That is, the test substance is roughly applied to two places.
  • the application to each part is performed without providing a substantial time difference (that is, substantially simultaneously) or at a predetermined time interval.
  • a substance requiring evaluation of vitiligo toxicity is applied to the tail as the first test substance, and another substance requiring evaluation of melanosis toxicity is applied to the skin (other than the tail) as the second test substance
  • a test substance is a substance that requires evaluation of vitiligo toxicity, melanosis toxicity, or both.
  • Various substances can be adopted as in the case of the first aspect / second aspect (for details, refer to the description of the test substance in the first aspect / second aspect).
  • the number of times of application of the test substance and the application schedule are also in accordance with the first aspect / second aspect.
  • step (2) the presence or absence or degree of induction of vitiligo in the tail of the hairless RET mouse treated in step (1), or both of them is evaluated. And the vitiligo toxicity of a test substance is determined based on an evaluation result.
  • step (3) the presence or absence or degree of induction of melanosis in the skin (other than the tail) of the hairless RET mouse treated in step (1), or both of these is evaluated. Based on the evaluation result, the toxicity of the test substance is determined. Any of steps (2) and (3) may be performed first. Steps (2) and (3) may be performed in parallel.
  • evaluation items and determination results are the first and second aspects, respectively.
  • two or more evaluation items may be used in combination to increase the accuracy and reliability of the evaluation, and a test group and a control group are prepared. It is the same as in the above aspect that it is preferable to evaluate and determine the above.
  • This aspect relates to a cell-based test method. Specifically, a test method for evaluating vitiligo toxicity of a test substance using a melanocyte collected from the tail of a hairless mouse used in the first aspect or its passage cells (including established cells); Evaluation of melanosis toxicity of test substance using melanocytes collected from hairless RET mouse skin (excluding tail skin) or passage cells (including established cells) used in 2 aspects A test method is provided.
  • vitiligo toxicity or melanosis toxicity in addition to cell physiological function tests such as melanin expression, melanocyte proliferation ability, melanocyte survival rate, melanocyte migration ability, etc., molecules that affect these cell physiological functions Evaluation items such as expression or activity level (tyrosinase, ⁇ MSH, endothelin, endothelin receptor, SCF, c-Kit, POMC, GM-CSF, Mitf, etc.) can be used.
  • expression or activity level tyrosinase, ⁇ MSH, endothelin, endothelin receptor, SCF, c-Kit, POMC, GM-CSF, Mitf, etc.
  • a test method for evaluating vitiligo toxicity, melanosis toxicity, or both including the following steps (a) to (d).
  • A a hairless RET mouse obtained by backcrossing a hairless mouse having a genetic background of C57BL / 6 to a RET / o- transgenic mouse into which an activated RET gene has been introduced in a heterozygous form, or the mouse
  • B a step of culturing the test group in the presence of the test substance
  • a hairless RET mouse that is, a RET / o- transgenic mouse into which an activated RET gene is heterogeneously introduced
  • a hairless mouse having a genetic background of C57BL / 6 A sample containing skin melanocytes of a hairless RET mouse or a hairless RET mouse obtained by mating the mouse with a sibling is prepared.
  • the hairless RET mouse is the same as described above (1. Vitiligo Toxicity Test Method column), so detailed description thereof is omitted.
  • cells skin melanocytes alone or a combination of skin melanocytes and other cells constituting the skin tissue
  • tissue pieces skin tissue, epidermal tissue, or dermis tissue
  • cell culture single culture or co-culture of melanocytes
  • organ culture is performed.
  • the sample used in step (a) can be collected or isolated from the back skin or tail skin of a hairless RET mouse by a known method.
  • procedures for isolation and culture (primary culture) of skin melanocyte cells of hairless RET mice will be shown.
  • the isolated back skin or tail skin is washed with a calcium / magnesium-free phosphate buffer, immersed in a 0.25% trypsin solution, and allowed to stand at 2 ° C. overnight. Remove the epidermis and dermis with tweezers. Only the peeled skin sheet is treated with 0.02% EDTA solution at 37 ° C. for 10 minutes, and the cells are dissociated by pipetting. The remaining keratin sheet is removed with tweezers, and a cell pellet is obtained by centrifugation. The cell pellet is suspended in Ham's F-10 medium, and then cultured in melanocyte selective medium at 37 ° C.
  • melanocyte cell Any melanocyte cell may be used, but preferably a melanocyte more commonly used (differentiated melanocyte or proliferative differentiated melanocyte) is used.
  • melanocytes proliferative differentiated melanocytes are suitable for evaluating many test substances and can be said to be particularly preferable.
  • Medium A Undifferentiated melanocyte medium Ham's F-10 medium Insulin (10 ⁇ g / ml) Bovine serum albumin (1 mg / ml) Ethanolamine (1 ⁇ M) Phosphoethanolamine (1 ⁇ M) Sodium selenite (10 nM) Penicillin G (100 U) Streptomycin sulfate (100 ⁇ g / ml) Gentamycin sulfate (50 ⁇ g / ml) Amphotericin B (0.25 ⁇ g / ml)
  • Medium B Differentiated melanocyte medium Medium A supplemented with ⁇ -melanocyte stimulating hormone ( ⁇ -MSH) (100 nM)
  • ⁇ -MSH ⁇ -melanocyte stimulating hormone
  • Medium C Proliferative differentiated melanocyte medium
  • Medium A supplemented with Dibutyryl adenosine 3-cyclic monophosphate (DBcAMP) (0.5 mM)
  • DBcAMP Dibutyryl adenosine 3-cyclic monophosphate
  • Medium D Proliferative undifferentiated melanocyte medium
  • bFGF basic fibroblast growth factor
  • the prepared samples are divided into a test group and a control group and cultured under predetermined conditions (step (b)).
  • the test group is cultured in the presence of the test substance.
  • the sample may be cultured and the test substance may be added to the culture solution or replaced with a culture solution to which the test substance has been added.
  • the test substance may be added or replaced with a culture solution containing the test substance.
  • a culture solution to which a test substance has been added in advance may be used so that a “state in which the test substance is present in the culture solution” is formed simultaneously with the start of culture.
  • various substances can be adopted as the test substance as in the case of the first aspect / second aspect (for details, refer to the description of the test substance in the first aspect / second aspect).
  • the culture time in the presence of the test substance is not particularly limited, but for example 0.5 minutes to 5 days, preferably 30 minutes to 5 hours.
  • the optimal culture time can be determined by preliminary experiments.
  • the culture conditions may be determined with reference to past reports and books or through preliminary experiments.
  • the culture temperature is usually 37 ° C.
  • step (c) c-Met, RFP-RET, c-Ret, Enothelin receptor B (Ednrb), c-kit, Mc1r, Mitf-m, Tyrosinase, Tyrosinase-realted protein-2 , TGF-beta type receptor 2 (Tgfr2), Fibroblast growth factor (Fgfr), Bcl2, p53, survivin, CCAAT-enhancer-binding protein homologous protein (CHOP), Glutamate cysteine ligase (GCLC), NF-E2 relatedffactor2 (GCLC) ), Heat shock protein (HSP) 70, Foxp1, Foxp3, CCR6, Bach2, NACHT leucine-rich-repeat protein 1 (Nalp), Cytotoxic T-lymphocyte antigen-4 (Ctla4) and Granzyme B (GZMB)
  • the expression or activity of one or more selected marker molecules is detected.
  • c-Met or RFP-RET are used.
  • a detection method suitable for the marker molecule employed is employed. For example, transcriptional activity (luciferase activity evaluation method, etc.), gene expression level (real-time PCR, etc.), protein expression level (Western blot, ELISA, immunohistochemistry, etc.), activation level such as phosphorylation (Western blot, ELISA, immune, etc.) Detect histochemistry, etc.) in the usual way If it is a secreted protein, the protein in the culture supernatant can be detected / quantified by ELISA or the like.
  • step (d) the detection results are compared between the test group and the control group, and the vitiligo toxicity and / or melanosis toxicity of the test substance is determined based on the comparison results. That is, in the present invention, the detection results of the test group and the target group are used to simultaneously determine vitiligo toxicity, scleroderma toxicity, or both.
  • the test substance has melanosis toxicity.
  • CHOP, CCR6, and GZMB have a negative correlation between their expression level / activity and melanosis toxicity. Therefore, a decrease in the expression level / activity of these marker molecules is an indicator of scleroderma toxicity.
  • the expression level / activity of the marker molecule is lower in the test group than in the control group, It is determined that “the test substance has melanosis toxicity”.
  • the degree (level) of melanosis toxicity may be evaluated based on the expression level / activity level (level). Further, when a plurality of test substances are used, the melanosis toxicity of each test substance can be compared and evaluated based on the degree of increase or decrease in the expression or activity of the marker molecule.
  • CHOP, CCR6, and GZMB have a positive correlation between their expression level / activity and vitiligo toxicity. Therefore, the increase in the expression level / activity of these marker molecules is an indicator of vitiligo toxicity.
  • the “test substance” Has vitiligo toxicity ".
  • the degree of vitiligo toxicity may be evaluated based on the expression level / degree of activity (level).
  • the vitiligo toxicity of each test substance can be comparatively evaluated based on the degree of increase or decrease in the expression or activity of the marker molecule.
  • c-Met is adopted as an index of vitiligo toxicity
  • RFP-RET is adopted as an indicator of melanosis toxicity.
  • these two indicators are used in combination to simultaneously determine and evaluate vitiligo toxicity and melanosis toxicity.
  • RET-mouse melanocyte cell line derived from a RET / o- transgenic mouse (hereinafter referred to as “RET-mouse”) into which an activated RET gene was introduced into a heterogeneous form was used.
  • a test method is provided. This test method can be said to be simpler than the above test method in that a melanocyte cell line that is easy to prepare in advance is used. Since the RET / o- transgenic mouse into which the activated RET gene has been introduced into a heterozygous form is as described above (1. Test Method for Vitiligo Toxicity), detailed description thereof is omitted.
  • a mouse melanocyte cell line can be established, for example, from cells isolated from skin tissue containing RET mouse melanocyte cells. More specifically, a method of organ-culturing skin tissue containing melanocyte-based cells collected from a mouse and repeating subculture of cells that have migrated outside the organ, skin tissue containing melanocyte-based cells collected from a mouse is trypsin, etc. By repeatedly subculturing cells dissociated by the enzyme of this method, by using a viral gene such as Simian virus 40 (SV40) T antigen to induce immortalization, and by expressing telomere reverse transcription protein (TERT)
  • SV40 Simian virus 40
  • T antigen to induce immortalization
  • T antigen telomere reverse transcription protein
  • a RET-mouse-derived melanocyte cell line can be established by an operation such as a method for inducing immortalization.
  • step (A) A step of preparing a melanocyte cell line derived from a RET / o- transgenic mouse into which an activated RET gene is heterogeneously introduced, and dividing the test group into a test group and a control group
  • step (B) Step of culturing in the presence
  • C For the test group after step (B) and the control group cultured under the same conditions except that the test substance is not present, c-Met, RFP-RET, c- Ret, Enothelin receptor B (Ednrb), c-kit, Mc1r, Mitf-m, Tyrosinase, Tyrosinase-realted protein-2, TGF-beta type receptor 2 (Tgfr2), Fibroblast growth factor (Fgfr), Bcl2, p53, survivin , CCAAT-en
  • Step (A) a RET-mouse-derived melanocyte cell line is prepared and divided into a test group and a control group. Subsequently, the cells are cultured under predetermined conditions (step (B)).
  • the culture method, culture time, etc. are in accordance with step (b) of the above test method using skin melanocytes of hairless RET mice.
  • Step (C) and step (D) are also the same as step (c) and step (d) of the above test method using the skin melanocytes of hairless RET mice, respectively, and therefore description thereof is omitted.
  • a further aspect of the present invention provides a method for screening a drug for preventing or treating vitiligo or melanosis.
  • a first embodiment of this aspect is a screening method for a drug for preventing or treating vitiligo, and includes the following steps (a) to (c).
  • (A) A step of performing vitiligo induction treatment on the tail of a hairless mouse having melanin production ability
  • (b) A step of administering a test substance to the hairless mouse
  • c) A step of determining a prophylactic effect or a therapeutic effect of the test substance
  • the term “medicament for preventing or treating vitiligo” is not only used for the purpose of improving the symptoms of patients who develop vitiligo, but also prophylactic for those who may develop vitiligo. It is also used as a term that includes drugs used (including the purpose of preventing recurrence). Thus, the drug obtained by using the screening method of the present invention can be used for the purpose of preventing or treating vitiligo.
  • a hairless mouse having the ability to produce melanin is prepared and a vitiligo induction treatment is applied to the tail.
  • the hairless mouse having the ability to produce melanin is the same as in the first aspect, and thus the description thereof is omitted.
  • the vitiligo induction treatment is performed, for example, by application (application, dripping, injection, etc.) of a substance having vitiligo toxicity (for example, rhododenol, raspberry ketone).
  • test compounds include organic compounds of various molecular sizes (nucleic acids, peptides, proteins, lipids (simple lipids, complex lipids (phosphoglycerides, sphingolipids, glycosylglycerides, cerebrosides, etc.), prostaglandins, isoprenoids, terpenes, steroids, etc.) ) Or inorganic compounds can be used.
  • the test substance may be derived from natural products or synthesized.
  • an efficient screening system can be constructed using, for example, a combinatorial synthesis technique.
  • Cell extracts containing nucleic acids / proteins, lipids, culture supernatants, and the like may be used as test substances. Two or more kinds of test substances may be used in combination.
  • the administration timing (timing of administration) of the test substance is not particularly limited, and the test substance is administered before the vitiligo induction treatment in step (a), simultaneously with the vitiligo induction treatment, or after the vitiligo induction treatment.
  • the number of administrations is not particularly limited, and single or multiple administrations are performed.
  • step (c) the therapeutic or preventive effect of the test substance is determined.
  • a test substance determined to have a preventive effect or a therapeutic effect is a potential drug candidate.
  • the therapeutic or prophylactic effect can be determined by evaluating the presence or extent of vitiligo induction, or both. Since the evaluation index and the evaluation method are the same as those in the first aspect, detailed description thereof is omitted.
  • the second embodiment of this aspect is a method for screening a drug for preventing or treating melanosis, and includes the following steps (A) to (C).
  • a hairless RET mouse obtained by backcrossing a hairless mouse having a genetic background of C57BL / 6 to a RET / o- transgenic mouse into which an activated RET gene has been introduced in a heterozygous form, or the mouse
  • B A step of administering a test substance to the hairless RET mouse
  • C A test substance is applied to the hairless RET mouse skin (excluding the tail skin). Determining the preventive or therapeutic effect of
  • the term "medicine for preventing or treating melanosis” refers to drugs used for the purpose of improving the symptoms of patients with melanosis, as well as the possibility of developing melanosis. It is also used as a term that includes drugs that are used prophylactically (including the purpose of preventing recurrence). Thus, the drug obtained using the screening method of the present invention can be used for the purpose of preventing or treating melanosis.
  • a hairless RET mouse obtained by backcrossing a hairless mouse having a genetic background of C57BL / 6 to a RET / o- transgenic mouse into which the activated RET gene is heterogeneously introduced
  • a hairless RET mouse that is, a hairless mouse having a genotype of hr / hr; Ret / O and a genetic background of C57BL / 6
  • a hairless RET mouse that is, a hairless mouse having a genotype of hr / hr; Ret / O and a genetic background of C57BL / 6
  • dermatosis induction treatment is applied to the head. Since the hairless RET mouse is the same as in the second aspect, the description thereof is omitted.
  • the melanosis induction treatment is performed, for example, by application (application, dripping, injection, etc.) of a substance having toxicity to melanosis (for example, rhododenol, raspberry
  • Method of administration of test substance in step (B) (however, in the case of administration by application, dripping, etc., the site to which melanosis induction treatment is applied is the application site), administration time, substances that can be adopted as test substances, etc. Is the same as in the first embodiment.
  • step (C) the therapeutic or preventive effect of the test substance is determined.
  • a test substance determined to have a preventive effect or a therapeutic effect is a potential drug candidate.
  • the therapeutic or preventive effect can be determined by the presence or absence or degree of induction of scleroderma, or evaluation of both. Since the evaluation index and the evaluation method are the same as those in the second aspect, detailed description thereof is omitted.
  • a group of model animals (test group) to which the test substance is administered and a group of model animals having the same conditions except that the test substance is not administered (Control group) is prepared. And a test group and a control group are compared regarding the employ
  • the test group is more vitiligo (the first case than the control group).
  • the test group has a therapeutic or prophylactic effect, such as when the symptoms have not progressed or become severe, or when there is a significant amelioration of the symptoms in the test group. If it is, it can be determined that the test substance is a promising candidate for a preventive or therapeutic agent for vitiligo (in the case of the first aspect) or a preventive or therapeutic agent for melanosis (in the case of the second aspect).
  • test group the group to which the test substance is administered
  • control group the effectiveness of the test substance can be easily determined with high reliability.
  • the number of individuals included in the test group and the control group is not particularly limited. In general, as the number of individuals used increases, a more reliable result can be obtained. However, handling a large number of individuals at the same time is difficult in terms of securing and operating the individuals to be used (including breeding). Therefore, for example, the number of individuals included in each group is set to 1 to 50, preferably 2 to 30, and more preferably 5 to 20.
  • the compound selected by the screening method of the present invention has a sufficient medicinal effect against vitiligo (in the case of the first aspect) or scleroderma (in the case of the second aspect)
  • the compound is used as it is. It can be used as an active ingredient.
  • it if it does not have a sufficient medicinal effect, it is subjected to alteration such as chemical modification to enhance its medicinal effect, and then the medicinal prophylaxis or treatment drug (in the case of the first aspect) or the prevention of melanosis or
  • the compound can be used as an active ingredient of a therapeutic drug (in the case of the second embodiment).
  • the same modification may be applied for the purpose of further increasing the medicinal effect.
  • FIG. 1A Hairless wild-type mice (FIG. 1A) and hairless RET mice (FIG. 1B) were prepared as hairless mice that do not require shaving treatment. The production method of both mice is as follows.
  • Hairless wild-type mouse production method Hairless wild-type mouse (Hos: HRM: CBA / J x C57BL / 6J Jms background) that is hairless (hr / hr) and can produce melanin purchased from Hoshino Test Animal Breeding Center
  • a hairless wild-type mouse C57BL / 6 background in which C57BL / 6 mice were back-crossed 7 times was prepared, and then those that were bred by 10 or more brother-sister matings were used.
  • FIG. 1 shows the back (left) and tail (right) of hairless wild-type mice (A) and 242 strains of hairless RET mice (B). In the back skin of hairless wild-type mice, almost no skin blackness is visually confirmed.
  • the hairless RET mouse the entire back skin is black. It was shown that the L * value indicating the brightness (whiteness) of the skin measured with a color difference meter (Konica Minolta CR400) was statistically significantly smaller in hairless RET mice than in hairless wild type mice ( FIG. 1C). As for the skin of the tail, although a certain blackness can be confirmed even in the hairless wild type mouse, the hairless RET mouse has a darker skin color (FIGS. 1A and 1B).
  • the hairless RET mouse (C57BL / 6 background) prepared by the above method is the same as the previously reported hairless RET mouse (242 strains of hairless RET mice (CBA / J) prepared by crossing with Hos: HRM mouse once.
  • x C57BL / 6J Jms background (see JP2013-106554) is a different strain with a different genetic background. The difference between the two strains appears as a difference in skin blackness.
  • the resulting hairless RET mice have a weak skin blackness, which affects (advantages) the sensitivity in assessing scleroderma toxicity.
  • a test using hairless RET mice can be said to be particularly useful as a vitiligo toxicity evaluation system assuming a human who develops vitiligo over a relatively long period of time. If hairless wild-type mice and hairless RET mice are evaluated in combination, toxicity assessment is possible for humans with different sensitivities. ⁇ In the evaluation system using hairless wild-type mice and hairless RET mice, there is no need for secondary stimuli such as shaving and UV irradiation, so it is possible to evaluate the toxicity of chemical substances in a unified manner and is highly reliable. An evaluation result is obtained.
  • c-Met is a receptor tyrosine kinase and is a representative molecule involved in the proliferation and function of human melanocytes (Non-patent Document 6).
  • Method Melanocyte cell lines isolated from RET-mouse were seeded on 6-well plates at a density of 1.0 ⁇ 10 5 / well. Rhododenol was dissolved in dimethyl sulfoxide (DMSO) to a concentration 1000 times the final concentration and added to the culture solution in an amount of 1/1000 (0.1% DMSO). After exposing the melanocyte cell line to rhododenol for 5 hours, mRNA expression analysis of RFP-RET, c-Met, and Hprt was performed by quantitative PCR.
  • DMSO dimethyl sulfoxide
  • Toxicity could be evaluated with a sensitivity of about 1/10 (the erythroderma toxicity using RFP-RET as an index).
  • the evaluation system is about 50 times more sensitive than the previous report (Non-patent Document 8) that evaluated vitiligo toxicity with the most sensitivity in an in vitro test system.
  • the previous in vitro test system has been evaluated after 24 hours or 48 hours exposure (Non-patent Documents 1, 7, and 8), this evaluation system can evaluate toxicity even with only 5 hours of exposure. is there.
  • test method of the present invention it is possible to evaluate vitiligo toxicity / black skin toxicity with high sensitivity.
  • the test method of the present invention is highly versatile and can be used for toxicity evaluation of various substances.
  • the present invention is useful as a means for confirming safety in the development stage of cosmetics, pharmaceuticals, and the like.

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Abstract

高感度で白斑毒性又は黒皮症毒性を評価できる評価方法の提供を課題とする。メラニン産生能を有するヘアレスマウスの尾に被験物質を適用するステップと、前記ヘアレスマウスの尾における白斑の誘発の有無及び／又は程度を評価し、評価結果に基づき被験物質の白斑毒性を判定するステップを含む、白斑毒性の試験方法が提供される。

Description

白斑毒性及び黒皮症毒性の試験方法
　本発明は白斑毒性及び黒皮症毒性を評価する技術に関する。詳しくは、実験動物を用いた白斑毒性及び黒皮症毒性の試験方法に関する。本出願は、２０１６年５月２５日に出願された日本国特許出願第２０１６－１０４６９８号に基づく優先権を主張するものであり、当該特許出願の全内容は参照により援用される。
　近年、2%のロドデノールを含む美白剤の使用による「白斑」被害が社会的に大きな問題となった。白斑とは、皮膚がまだらに白く抜ける（脱色素）を伴う疾患である(非特許文献１)。また、当該美白剤を使用した白斑患者の内、約３８％は、色素沈着を伴う「黒皮症」を発症することも報告されている(非特許文献２)。発症時期に関しては、早い人では１～２ヶ月、多くの場合は３～５ヶ月と報告されており、感受性に対する個人差が大きいことも特徴の一つといえる。ロドデノールは、すでに白斑毒性が報告されているラズベリーケトンの還元体であるが、厚生労働省が定める、数種類の動物を用いた安全基準をクリアしたため美白剤として商品化された。それにも関わらず今回の白斑問題が生じた背景を鑑みると、現行の安全性試験に要求される感度は十分とはいえない。さらに、厚生労働省はロドデノール以外にも１９件の化粧品等に含まれる化学物質に白斑誘発毒性が疑われることを報告しており、美白剤による白斑被害が今後さらに拡大することが懸念される。
　美白剤の毒性発覚は企業生命を脅かす大問題であり、その対策は急務である。また、化粧品に限らず、工場などで職業として化学物質を取り扱う人にも白斑被害は多数報告されており、産業衛生的な問題でもある。さらに、輸入食品の増加による食の安全という面からも、動物モデルを用いた安全性試験の化粧品・食品・医薬品メーカーからの需要は非常に高い。
　白斑毒性の評価に関連するものとして、有毛モルモットを用いた技術が報告されている（非特許文献３）。この技術では、剃毛や紫外線などの人為的刺激により色素産生を増強させた皮膚において、３０％ロドデノール外用により白斑を誘発している。しかしながら、低濃度（例えば2%）のロドデノールでは白斑毒性は評価されておらず、１０％ロドデノールでも白斑を誘導できていない。また、化学物質をロドデノールに限定した評価技術であり、黒皮症毒性については評価されていない。一方、ヘアレスhk14-SCF Tgマウスを用いた評価法も報告されているが（非特許文献４）、３０％ロドデノール外用に限定した白斑毒性評価技術であり、低濃度（例えば2%）のロドデノールによる白斑毒性は評価されていない。また、化学物質をロドデノールに限定した白斑毒性の評価技術であり、黒皮症毒性については評価されていない。
Pigment Cell Melanoma Res,27,754-763,2014 日皮会誌：124（11），2095-2109,2014 J Toxicol Sci,39,615-23,2014 J Dermatol Science 81:35-43,2016 J Invest Dermatol. 127(5):1244-9,2007 J Biol Chem. 14; 281, 10365-73,2006 Toxicology in Vitro 32; 339-346,2016 Pigment Cell Melanoma Res. 29(5):541-9,2016
　上記の社会的ニーズを受け、化学物質による白斑等の健康被害の再発防止のため、より感度の高い評価技術の開発が望まれる。しかしながら、現状、化学物質による白斑毒性／黒皮症毒性を高感度に評価できる技術は存在しない。そこで本発明は、高感度で白斑毒性及び／又は黒皮症毒性を評価できる、実用性に優れた評価方法を提供することを主たる課題とする。
　本発明者らは、上記課題を解決すべく検討を重ねた。その結果、一定の特徴を備えるマウスを用いた高感度で汎用性の高い評価系の確立に成功した。当該評価系では、剃毛や紫外線照射などの副次的な刺激が必要ないため、化学物質の毒性のみを一元的に評価可能であり、信頼性の高い評価結果が得られる。特筆すべきことの一つは、特定のマウス（ヘアレスRETマウス）を用いた場合には白斑毒性と黒皮症毒性を同時に評価できる点である。更なる検討によって、白斑毒性又は黒皮症毒性、或いはこれらの両者を同時に評価することが可能な、細胞ベースの評価系（in vitro試験方法）の構築にも成功した。
　本発明者らの貢献によって完成した発明を以下に示す。
　［１］以下のステップ（１）及び（２）を含む、白斑毒性の試験方法：
　（１）メラニン産生能を有するヘアレスマウスの尾に被験物質を適用するステップ、
　（２）前記ヘアレスマウスの尾における白斑の誘発の有無及び／又は程度を評価し、評価結果に基づき被験物質の白斑毒性を判定するステップ。
　［２］前記ヘアレスマウスが、メラニン産生能が正常なヘアレスマウスである、［１］に記載の試験方法。
　［３］前記ヘアレスマウスの遺伝的背景がC57BL/6である、［１］に記載の試験方法。
　［４］前記ヘアレスマウスが、活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスに、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを戻し交配して得られたヘアレスRETマウス、又は該マウスを兄妹交配して得られたヘアレスRETマウスである、［３］に記載の試験方法。
　［５］前記遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスが、Hos:HRMヘアレスマウスにC57BL/6マウスを戻し交配して得られたマウス、又は該マウスを兄妹交配して得られたマウスである、［４］に記載の試験方法。
　［６］以下のステップ（１）及び（２）を含む、黒皮症毒性の試験方法：
　（１）活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスに、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを戻し交配して得られたヘアレスRETマウス、又は該マウスを兄妹交配して得られたヘアレスRETマウスの皮膚（但し、尾の皮膚を除く）に被験物質を適用するステップ、
　（２）前記ヘアレスRETマウスの前記皮膚における黒皮症の誘発の有無及び／又は程度を評価し、評価結果に基づき被験物質の黒皮症毒性を判定するステップ。
　［７］前記皮膚が背、腹又は頭の皮膚である、［６］に記載の試験方法。
　［８］以下のステップ（１）～（３）を含む、白斑毒性と黒皮症毒性の同時試験方法：
　（１）活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスに、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを戻し交配して得られたヘアレスRETマウス、又は該マウスを兄妹交配して得られたヘアレスRETマウスの尾と、皮膚（但し、尾の皮膚を除く）とに被験物質を適用するステップ、
　（２）前記ヘアレスRETマウスの尾における白斑の誘発の有無及び／又は程度を評価し、評価結果に基づき被験物質の白斑毒性を判定するステップ、
　（３）前記ヘアレスRETマウスの前記皮膚における黒皮症の誘発の有無及び／又は程度を評価し、評価結果に基づき被験物質の黒皮症毒性を判定するステップ。
　［９］前記皮膚が背、腹又は頭の皮膚である、［８］に記載の試験方法。
　［１０］前記活性化型RET遺伝子がc-RET遺伝子とRFP遺伝子のハイブリットによって生じたRFP-RET遺伝子である、［４］、［６］～［９］のいずれか一項に記載の試験方法。
　［１１］前記活性化型RET遺伝子がメタロチオネインIプロモーターに連結している、［４］、［６］～［１０］のいずれか一項に記載の試験方法。
　［１２］前記RET/o-トランスジェニックマウスが、192系統RET/o-トランスジェニックマウス、242系統RET/o-トランスジェニックマウス、304系統RET/o-トランスジェニックマウス、又は304/B6系統RET/o-トランスジェニックマウスである、［４］、［６］～［１１］のいずれか一項に記載の試験方法。
　［１３］以下の（ｉ）又は（ｉｉ）のマウスからなる、白斑毒性及び黒皮症毒性に感受性のマウス：
　（ｉ）活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスに、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを戻し交配して得られたヘアレスRETマウス、
　（ｉｉ）（ｉ）のマウスを兄妹交配して得られたヘアレスRETマウス。
　［１４］前記活性化型RET遺伝子がc-RET遺伝子とRFP遺伝子のハイブリットによって生じたRFP-RET遺伝子である、［１３］に記載の感受性マウス。
　［１５］前記活性化型RET遺伝子がメタロチオネインIプロモーターに連結している、［１３］又は［１４］に記載の感受性マウス。
　［１６］前記RET/o-トランスジェニックマウスが、192系統RET/o-トランスジェニックマウス、242系統RET/o-トランスジェニックマウス、304系統RET/o-トランスジェニックマウス、又は304/B6系統RET/o-トランスジェニックマウスである、［１３］～［１５］のいずれか一項に記載の感受性マウス。
　［１７］メラニン産生能を有するヘアレスマウスの尾から採取されるメラノサイト又はその継代細胞を用いて被験物質の白斑毒性を評価することを特徴とするin vitro試験方法。
　［１８］活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスに、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを戻し交配して得られたヘアレスRETマウス、又は該マウスを兄妹交配して得られたヘアレスRETマウスの皮膚（但し、尾の皮膚を除く）から採取されるメラノサイト又はその継代細胞を用いて被験物質の黒皮症毒性を評価することを特徴とするin vitro試験方法。
　［１９］以下のステップ（ａ）～（ｄ）を含む、白斑毒性及び／又は黒皮症毒性を評価するためのin vitro試験方法：
　（ａ）活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスに、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを戻し交配して得られたヘアレスRETマウス、又は該マウスを兄妹交配して得られたヘアレスRETマウスの皮膚メラノサイトを含む試料を用意し、試験群と対照群に分けるステップ、
　（ｂ）試験群を被験物質の存在下で培養するステップ、
　（ｃ）ステップ（ｂ）後の試験群と、被験物質が非存在下であること以外は同一の条件で培養した対照群について、c-Met、RFP-RET、c-Ret、Enothelin receptor B (Ednrb)、c-kit、Mc1r、Mitf-m、Tyrosinase、Tyrosinase-realted protein-2、TGF-beta type receptor 2 (Tgfr2)、Fibroblast growth factor (Fgfr)、Bcl2、p53、survivin、CCAAT-enhancer-binding protein homologous protein (CHOP)、Glutamate cysteine ligase (GCLC)、NF-E2 related factor２(Nrf2)、Heat shock protein (HSP) 70、Foxp1、Foxp3、CCR6、Bach2、NACHT leucine-rich-repeat protein 1 (Nalp)、Cytotoxic T-lymphocyte antigen-4 (Ctla4)及びGranzyme B(GZMB)からなる群より選択される一以上のマーカー分子の発現又は活性を検出するステップ、
　（ｄ）試験群と対照群の間で検出結果を比較し、比較結果に基づき被験物質の白斑毒性及び／又は黒皮症毒性を判定するステップ。
　［２０］以下のステップ（Ａ）～（Ｄ）を含む、白斑毒性及び／又は黒皮症毒性を評価するためのin vitro試験方法：
　（Ａ）活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウス由来のメラノサイト系細胞株を用意し、試験群と対照群に分けるステップ、
　（Ｂ）試験群を被験物質の存在下で培養するステップ、
　（Ｃ）ステップ（Ｂ）後の試験群と、被験物質が非存在下であること以外は同一の条件で培養した対照群について、c-Met、RFP-RET、c-Ret、Enothelin receptor B (Ednrb)、c-kit、Mc1r、Mitf-m、Tyrosinase、Tyrosinase-realted protein-2、TGF-beta type receptor 2 (Tgfr2)、Fibroblast growth factor (Fgfr)、Bcl2、p53、survivin、CCAAT-enhancer-binding protein homologous protein (CHOP)、Glutamate cysteine ligase (GCLC)、NF-E2 related factor２(Nrf2)、Heat shock protein (HSP) 70、Foxp1、Foxp3、CCR6、Bach2、NACHT leucine-rich-repeat protein 1 (Nalp)、Cytotoxic T-lymphocyte antigen-4 (Ctla4)及びGranzyme B(GZMB)からなる群より選択される一以上のマーカー分子の発現又は活性を検出するステップ、
　（Ｄ）試験群と対照群の間で検出結果を比較し、比較結果に基づき被験物質の白斑毒性及び／又は黒皮症毒性を判定するステップ。
　［２１］以下のステップ（ａ）～（ｃ）を含む、白斑の予防又は治療用薬剤のスクリーニング方法：
　（ａ）メラニン産生能を有するヘアレスマウスの尾に白斑誘発処理を施すステップ、
　（ｂ）前記ヘアレスマウスに被験物質を投与するステップ、
　（ｃ）被験物質の予防効果又は治療効果を判定するステップ。
　［２２］以下のステップ（Ａ）～（Ｃ）を含む、黒皮症の予防又は治療用薬剤のスクリーニング方法：
　（Ａ）活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスに、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを戻し交配して得られたヘアレスRETマウス、又は該マウスを兄妹交配して得られたヘアレスRETマウスの皮膚（但し、尾の皮膚を除く）に黒皮症誘発処理を施すステップ、
　（Ｂ）前記ヘアレスRETマウスに被験物質を投与するステップ、
　（Ｃ）被験物質の予防効果又は治療効果を判定するステップ。
白斑・黒皮症毒性の評価に用いたマウス。白斑毒性及び黒皮症毒性の評価に用いた8週齢のヘアレス野生型マウス（C57BL/6バックグラウンド）（A: 左は背部皮膚、右は尾部皮膚）、及びヘアレスRETマウス（242系統）（C57BL/6バックグラウンド）（B: 左は背部皮膚、右は尾部皮膚）の代表的な肉眼所見を示す。ヘアレス野生型マウス及びヘアレスRETマウスの背部皮膚におけるL*値（n=5）（平均±SD）についてヘアレス野生型マウスのL*値を1としたときの相対値を示す（C）。** p<0.01（Mann-Whitney U testによる）。 2%ロドデノール及び2%ラズベリーケトンの塗布により誘発された白斑及び黒皮症。溶媒（50%エタノール）及び2%ロドデノール又は2%ラズベリーケトンを4ヶ月外用したヘアレス野生型マウス（C57BL/6バックグラウンド）およびヘアレスRETマウス（242系統）（C57BL/6バックグラウンド）背部皮膚の代表的な肉眼所見（A）、背部皮膚のL*値の相対値（n=5）（平均±SD）について、溶媒を外用したヘアレス野生型マウスのL*値を1としたときの相対値を示す（B）、尾部皮膚の代表的な肉眼所見（C）、尾部皮膚の皮膚色（黒さ）の相対値（n=5）（平均±SD）（D）を示す。* p<0.05, ** p<0.01（対応のある Student’s t-testによる）。 2%ロドデノール及び2%ラズベリーケトンを外用した背部皮膚の組織学的解析。溶媒（50%エタノール）及び2%ロドデノール又は2%ラズベリーケトンを4ヶ月外用したヘアレス野生型マウス（C57BL/6バックグラウンド）及びヘアレスRETマウス（242系統）（C57BL/6バックグラウンド）の背部皮膚の代表的フォンタナマッソン染色像（A）、表皮メラニン密度（n=5）（平均±SD）（B）、Dopachrometautomerase（Dct）陽性細胞（メラノサイト）の分布を示す代表的な組織像（C）、表皮（500μm）あたりのDct陽性細胞の数（n=5）（平均±SD）（D）を示す。Aの矢尻はフォンタナマッソンにて染色されたメラニンを、Cの矢尻はDct陽性細胞を示す。原図では青色蛍光がDapiで染色された核を示す。スケールバーは50μm。* p<0.05， ** p<0.01（Tukey-Kramer testによる）。 2%ロドデノール及び2%ラズベリーケトンを外用した尾部皮膚の組織学的解析。溶媒（50%エタノール）及び2%ロドデノール又は2%ラズベリーケトンを4ヶ月外用したヘアレス野生型マウス（C57BL/6バックグラウンド）及びヘアレスRETマウス（242系統）（C57BL/6バックグラウンド）の尾部皮膚の代表的フォンタナマッソン染色像（A）、表皮メラニン密度（n=5）（平均±SD）（B）、Dopachrometautomerase（Dct）陽性細胞（メラノサイト）の分布を示す代表的な組織像（C）、表皮（500μm）あたりのDct陽性細胞の数（n=5）（平均±SD）（D）を示す。Aの矢尻はフォンタナマッソンにて染色されたメラニンを、Cの矢尻はDct陽性細胞を示す。原図では青色蛍光がDapiで染色された核を示す。スケールバーは50μm。** p<0.01（Tukey-Kramer testによる）。 RET-マウスより単離した細胞株を用いた白斑毒性・黒皮症毒性の評価。Hypoxanthine phosphoribosyltransferase (Hprt)のmRNA発現レベルにより補正したRFP-RETのmRNA発現変化（RFP-RET/Hprt）(n=3, 平均±SD)（A）、及びc-MetのmRNA発現変化（c-Met/Hprt）(n=3, 平均±SD)(B)を示す。それぞれ、ロドデノール非曝露時のRFP-RET/Hprtあるいはc-Met/Hprtの値を1とした時の相対値を示す。（*, p<0.05, Mann-Whitney U-testによる)。
１．白斑毒性の試験方法
　本発明はマウスを用いた毒性試験に関する。第１の局面では白斑毒性の試験方法が提供される。白斑毒性とは、白斑を誘発する作用ないし効果をいう。白斑は、皮膚の基底層に分布する色素細胞であるメラノサイトが減少又は消失することで生ずる病態である。本発明における白斑は、本発明の目的及び利用形態等から明らかな通り、先天性の白斑（白皮症）を含まず、いわゆる尋常性白斑に対応するものである。本発明の白斑毒性試験方法では、以下のステップ（１）及び（２）を行う。
　（１）メラニン産生能を有するヘアレスマウスの尾に被験物質を適用するステップ
　（２）前記ヘアレスマウスの尾における白斑の誘発の有無及び／又は程度を評価し、評価結果に基づき被験物質の白斑毒性を判定するステップ
　ステップ（１）では特定のマウス、即ち、メラニン産生能を有するヘアレスマウスを用意し、その尾に被験物質を適用する。「メラニン産生能を有するヘアレスマウス」は表皮にメラニンを有し、ヘアレス（体毛が欠落する）個体の遺伝型を示す。この特徴は白斑の誘発に必要であるとともに、容易且つ客観的な評価を可能にする点で重要である。メラニン産生能を有するヘアレスマウスの例として、Hos:HRM、Hos:HRM-2及びHR/DeF1(いずれも星野試験動物飼育所から入手可能である)を挙げることができる。メラニン産生能を有するヘアレスマウスとして、メラニン産生の調節に関わる分子、具体的にはMicrophthalmia-associated transcription factor、Tyrosinase、Tyrosinase related protein-1、Tyrosinase related protein 2、Pmel 17、alpha-Melanocyte-stimulating hormone、Stem cell factor、c-Kit、Endothelin、Endothelin receptor等の分子が機能しており、メラニン産生能が正常なヘアレスマウスを用いるとよい。好ましくは、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを用いる。例えば、上掲のヘアレスマウスにC57BL/6マウス（例えば、日本チャールズリバーや日本クレアが提供するC57BL/6マウスを使用できる）を戻し交配することによって、本発明に使用可能な、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウス（RET遺伝子の導入という遺伝子改変を経ていないマウスであり、下記のヘアレスRETマウスと区別するために「ヘアレス野生型マウス」と呼ぶことがある）を得ることができる。遺伝的背景が好ましくは95.0％以上、更に好ましくは99.9％以上C57BL/6になるように、C57BL/6マウスを用いた戻し交配を繰り返すとよい。
　一態様では、活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスに、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを戻し交配して得られたヘアレスRETマウス、又は当該マウスを兄妹交配して得られたヘアレスRETマウスを「メラニン産生能を有するヘアレスマウス」として用いる。ヘアレスRETマウスを用いた場合、比較的長期間かけて白斑が発症するタイプのヒトを想定した評価系となる（詳細は実施例を参照）。一方、ヘアレスRETマウス以外のマウス（即ち、上記のヘアレス野生型マウス）を用いた場合、より感度が高い評価系を実現できる。従って、これら二つの態様を併用すれば、感受性の異なるヒトを対象とした毒性評価が可能となる。
　上記の通り、ヘアレスRETマウスは、活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスに、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを戻し交配する方法（作出法１）、又は作出法１で得られたマウスを兄妹交配する方法（作出法２）によって得ることができる。これらの方法によれば、遺伝子型遺伝子型がhr/hr;Ret/Oで遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを得ることができる。活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスとは、典型的にはc-RET遺伝子とRFP遺伝子のハイブリットによって生じたRFP-RET遺伝子を活性化型RET遺伝子としてヘテロに保有するマウスである。活性化型RET遺伝子がメタロチオネインIプロモーター（MT）に連結していることが好ましい。RET/o-トランスジェニックマウスの具体例は192系統RET/o-トランスジェニックマウス、242系統RET/o-トランスジェニックマウス、304系統RET/o-トランスジェニックマウス (Kato et al.,Oncogene,18(3):837-42,1999; Iwamoto et al.,EMBO J,10(11),3167-3175,1991)、及び304系統RET/o-トランスジェニックマウスに対してC57BL/6マウスを交配して得られた304/B6系統RET/o-トランスジェニックマウス（Kato et al,.Oncogene, 17, 1885-1888, 1998)である。好ましくは、242系統を用いる。尚、RETトラスジェニックマウスの凍結受精卵及び凍結精子は国立大学法人熊本大学の生命資源研究・支援センター（CARD）、及び独立行政法人理化学研究所の理研バイオリソースセンター(筑波)に保存されている。
　作出法１では、上記のごときRET/o-トランスジェニックマウスに、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを戻し交配する。遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスとしては上記のヘアレス野生型マウスを用いることができる。好ましい一態様では、Hos:HRMヘアレスマウスにC57BL/6マウスを戻し交配して得られたマウス、又は当該マウスを兄妹交配して得られたマウスを「遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウス」として採用する。
　作出法２では、作出法１で得られたマウスを兄妹交配する。このようにして得られたマウスは、遺伝的背景の均一性が高まり、個体差による影響を低減できるため、安定した毒性評価が可能になる利点がある。兄妹交配は例えば１０回以上、好ましくは２０回以上（具体的には２０回～３０回）行うとよい。
　以上のようにして用意した「メラニン産生能を有するヘアレスマウス」の尾に被験物質が適用される。即ち、本発明では、尾において特異的に白斑の誘発が認められたという知見に基づき、被験物質の適用部位として尾を採用する。被験物質の適用方法は特に限定されない。例えば、被験物質自体、又は被験物質を含む組成物（溶液、軟膏、クリーム、化粧料等）を尾の皮膚に塗布若しくは滴下し、又は尾に注射する。プリックテストやスクラッチテストも可能である。被験物質又はそれを含む溶液などに尾を投入ないし浸漬することによって被験物質を適用することも可能である。
　白斑毒性の評価が必要とされる物質、即ち、白斑毒性を示す可能性があるものであれば、任意の物質を被験物質にすることができる。被験物質の構造、分子サイズ、存在状態（例えば他の物質が混在していたり、他の物質と複合体を形成していたりしてもよい）等は特に問わない。従って、様々な有機化合物若しくは無機化合物、又はそれを含む各種組成物が被験物質となり得る。被験物質は天然物由来であっても、或いは合成によるものであってもよい。化学物質による白斑毒性が物理的刺激（例えば光線）によって増強される場合（例えば、光過敏性白斑黒皮症等）があることも考慮し、被験物質を適用する際、物理的刺激も加えることにしてもよい。また、既存の物質に限らず、今後開発される物質も被験物質として用いることができる。典型的には、例えば、化粧料（例えば化粧水、美容液、乳液、クリーム等の基礎化粧品、美白用化粧品、保湿用化粧品、ファンデーション、口紅、シャンプー、石鹸、整髪剤等）、皮膚用の医薬部外品（例えばハンドクリーム等の薬用クリーム、美白剤、デオドラント剤、白髪染め、ヘアカラー剤、育毛剤、発毛剤等）、医薬品（外用剤、内服剤（例えば、サイアザイド系利尿剤、筋緊張治療薬等）、点滴薬、注射薬等）等の主成分、副成分、添加物又は基材は好適な被験物質となる。また、化粧料自体、医薬部外品自体、医薬品自体等を被験物質としてもよい。化学工場や原料加工業などの産業行程で作業員や周辺住民が曝露され得る各種物質（例えば化学物質、食品、動物・植物由来物質）を被験物質としてもよい。
　被験物質は単回又は複数回（例えば、２回～３６０回）、適用される。後者の場合には、典型的には、所定の間隔（例えば６時間、１２時間、一日、二日、三日、１週間、２週間）をおいて所定の期間（例えば１週間、２週間、３週間、４週間、１月、２月、３月、４月、５月、６月）にわたって適用されることになる。ここでの間隔は一定であっても、途中で変動してもよい。また、各回の適用量は同一であっても異なっていても良い。
　ステップ（２）では、ステップ（１）の処置をしたヘアレスマウスの尾における白斑の誘発の有無又は程度、或いはこれらの両者を評価する。そして、評価結果に基づき被験物質の白斑毒性を判定する。典型的には、白斑が誘発された場合に「被験物質が白斑毒性を有する」と判定することになる。但し、このような断定的な判定ではなく、「被験物質が白斑毒性を有する可能性が高い」又は「被験物質が白斑毒性を有する可能性がある」等のような判定結果を出すことにしてもよい。白斑が誘発されなかった場合には「被験物質が白斑毒性を有しない」又は「被験物質が白斑毒性を有する可能性は低い」等の判定結果が出される。白斑誘発の程度に基づき判定する場合には、例えば、白斑誘発の程度（白斑が誘発されるまでの時間、誘発された白斑のサイズ（面積）、白斑の色調など）に対応した複数の毒性レベルを設定しておき、評価結果がいずれの毒性レベルに該当するかを確認し、被験物質の毒性レベルを判定ないし決定する。白斑誘発の有無又は程度の評価は、白斑が誘発されるまでの時間、誘発された白斑のサイズ（面積）、白斑の色調、被験物質適用部位の皮膚色、被験物質適用部位の皮膚メラニン量、被験物質適用部位の皮膚メラノサイトの量、チロシナーゼ活性、メラノサイト及び周辺細胞におけるメラニン関連分子の発現レベル等の評価項目に従って行うことができる。白斑が誘発されるまでの時間、誘発された白斑のサイズ（面積）、白斑の色調、被験物質適用部位の皮膚色については、目視によっても評価可能であるが、色彩色差計や画像解析ソフト（例えばWinROOF画像解析ソフト(三谷商事株式会社)）などを利用して評価してもよい。色彩色差計によって白斑の色調や皮膚色などを評価する際には国際色彩基準L*a*b*表色系を採用するとよい。色彩色差計のL*値（明度）によれば、白斑の色調や皮膚色などをより客観的に評価することができる。また、L*C*hやHSL等の表式系により評価する事も可能である。
　評価の正確性や信頼度を高めるため、二つ以上の評価項目を併用してもよい。評価項目の併用の例として、(i)白斑が誘発されるまでの時間と、誘発された白斑のサイズ（面積）の二つの評価項目の併用、(ii)白斑が誘発されるまでの時間と、白斑の色調の二つの評価項目の併用、(iii)白斑が誘発されるまでの時間と、誘発された白斑のサイズ（面積）と、白斑の色調の三つの評価項目の併用を挙げることができる。
　好ましくは、被験物質を適用するヘアレスマウス（試験群）と、被験物質を適用しないこと以外は同条件のヘアレスマウス（対照群）を用意する。そして、採用した評価項目に関して試験群と対照群を比較し、その結果を基にしてステップ（２）の判定を行う。このように試験群と対照群を比較することによれば、被験物質の毒性を容易に且つ高い信頼度で判定することができる。試験群及び対照群に含まれる個体数は特に限定されない。一般に、使用する個体数が多くなるほど信頼度の高い結果が得られるが、多数の個体を同時に取り扱うことは使用する個体の確保や操作（飼育を含む）の面で困難を伴う。そこで、各群に含まれる個体数を例えば１～５０、好ましくは２～３０、さらに好ましくは５～２０とする。
２．黒皮症毒性の試験方法
　本発明の第２の局面は黒皮症毒性の試験方法を提供する。黒皮症とは、色素沈着によって皮膚が黒褐色～紫褐色に変化する病態である。本発明の黒皮症毒性試験方法では以下のステップ（１）及び（２）を行う。尚、以下では各ステップの詳細を説明するが、第１の局面（白斑毒性試験方法）と共通する用語及び要件については、第１の局面での説明を援用し、重複する説明を省略する。
　（１）活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスに、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを戻し交配して得られたヘアレスRETマウス、又は該マウスを兄妹交配して得られたヘアレスRETマウスの皮膚（但し、尾の皮膚を除く）被験物質を適用するステップ
　（２）前記ヘアレスRETマウスの前記皮膚における黒皮症の誘発の有無及び／又は程度を評価し、評価結果に基づき被験物質の黒皮症毒性を判定するステップ
　ステップ（１）では活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスに、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを戻し交配して得られたヘアレスRETマウス、又は当該マウスを兄妹交配して得られたヘアレスRETマウス（即ち、遺伝子型がhr/hr;Ret/Oで遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウス）を用意し、その皮膚に被験物質を適用する。尾以外の部位の皮膚に被験物質が適用されるが、好ましくは背、腹又は頭の皮膚を被験物質の適用部位とする。被験物質の適用方法は特に限定されない。例えば、被験物質自体、又は被験物質を含む組成物（溶液、軟膏、クリーム、化粧料等）をマウスの皮膚（尾以外）に塗布若しくは滴下し、或いは皮膚（尾以外）に注射する。プリックテストやスクラッチテストも可能である。
　黒皮症毒性の評価が必要とされる物質、即ち、黒皮症毒性を示す可能性があるものであれば、任意の物質を被験物質にすることができる。従って、第１の局面の場合と同様に様々な物質を採用することができる（詳細は第１の局面における被験物質の説明を参照）。また、第１の局面の場合と同様に、被験物質の投与とともに物理的刺激を加えることにしてもよい。被験物質の適用回数や適用スケジュールも第１の局面に準ずる。
　ステップ（１）に続くステップ（２）では、ステップ（１）の処置をしたヘアレスRETマウスの皮膚（尾以外）における黒皮症の誘発の有無又は程度、或いはこれらの両者を評価する。そして、評価結果に基づき被験物質の黒皮症毒性を判定する。当然ながら、被験物質の適用部位に対応する部位で評価、判定することになる。即ち、被験物質をマウスの背に適用した場合は「背」が評価部位となる。同様に、被験物質を腹に適用した場合には「腹」、被験物質を頭に適用した場合には「頭」がそれぞれ評価部位となる。典型的には、黒皮症が誘発された場合に「被験物質が黒皮症毒性を有する」と判定することになる。但し、このような断定的な判定ではなく、「被験物質が黒皮症毒性を有する可能性が高い」又は「被験物質が黒皮症毒性を有する可能性がある」等のような判定結果を出すことにしてもよい。黒皮症が誘発されなかった場合には「被験物質が黒皮症毒性を有しない」又は「被験物質が黒皮症毒性を有する可能性は低い」等の判定結果が出される。黒皮症誘発の程度に基づき判定する場合には、例えば、黒皮症誘発の程度（黒皮症が誘発されるまでの時間、誘発された色素沈着のサイズ（面積）、色素沈着の色調など）に対応した複数の毒性レベルを設定しておき、評価結果がいずれの毒性レベルに該当するかを確認し、被験物質の毒性レベルを判定ないし決定する。黒皮症誘発の有無又は程度の評価は、黒皮症が誘発されるまでの時間、誘発された色素沈着のサイズ（面積）、色素沈着の色調、被験物質適用部位の皮膚色、被験物質適用部位の皮膚メラニン量、被験物質適用部位の皮膚メラノサイトの量、チロシナーゼ活性、メラノサイトおよび周辺細胞におけるメラニン関連分子の発現レベル等の評価項目に従って行うことができる。黒皮症が誘発されるまでの時間、誘発された色素沈着のサイズ（面積）、色素沈着の色調、被験物質適用部位の皮膚色については、目視によっても評価可能であるが、色彩色差計や画像解析ソフト（例えばWinROOF画像解析ソフト(三谷商事株式会社)）などを利用して評価してもよい。色彩色差計によって白斑の色調や皮膚色などを評価する際には国際色彩基準L*a*b*表色系を採用するとよい。色彩色差計のL*値（明度）によれば、色素沈着の色調や皮膚色などをより客観的に評価することができる。
　評価の正確性や信頼度を高めるため、二つ以上の評価項目を併用してもよい。評価項目の併用の例として、(i)黒皮症が誘発されるまでの時間と、誘発された色素沈着のサイズ（面積）の二つの評価項目の併用、(ii)黒皮症が誘発されるまでの時間と、色素沈着の色調の二つの評価項目の併用、(iii)黒皮症が誘発されるまでの時間と、誘発された色素沈着のサイズ（面積）と、色素沈着の色調の三つの評価項目の併用を挙げることができる。
　第１の局面の場合と同様に、黒皮症毒性試験方法においても試験群と対照群を用意し、これらの比較に基づき被験物質の毒性を評価及び判定することが好ましい。
３．白斑毒性と黒皮症毒性の同時評価に有用なマウス及びそれを用いた試験方法
　後述の実施例に示す通り、ヘアレスRETマウス（即ち、遺伝子型がhr/hr;Ret/Oで遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウス）では、低濃度のロドデノール及びラズベリーケトンの適用により、尾部皮膚では白斑が誘発され、背部皮膚では黒皮症が誘発された。即ち、当該ヘアレスRETマウスは白斑毒性及び黒皮症毒性に高い感受性を示すという、ユニークかつ有用な特性を備え、それ自体の利用価値が高い。そこで本発明は更なる局面として、以下の（ｉ）又は（ｉｉ）のマウスからなる、白斑毒性及び黒皮症毒性に感受性のマウスを提供する。尚、（ｉ）及び（ｉｉ）のマウスは、上記第１の局面及び第２の局面で使用されるマウスと同一であるため、重複する説明を省略する。以下では、この局面に特有の事項を説明する。
　（ｉ）活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスに、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを戻し交配して得られたヘアレスRETマウス
　（ｉｉ）（ｉ）のマウスを兄妹交配して得られたヘアレスRETマウス
　（ｉｉ）のマウスは、（ｉ）のマウスに比較して遺伝的背景の均一性が高く、個体差による影響を低減できるため、安定した毒性評価が可能になるという利点を有し、特に好ましいといえる。兄妹交配は例えば１０回以上、好ましくは２０回以上（具体的には２０回～３０回）行うとよい。
　RET/o-トランスジェニックマウスの具体例は192系統RET/o-トランスジェニックマウス、242系統RET/o-トランスジェニックマウス、304系統RET/o-トランスジェニックマウス、及び304系統RET/o-トランスジェニックマウスに対してC57BL/6マウスを交配して得られた304/B6系統RET/o-トランスジェニックマウスであるが、好ましくは242系統が用いられる。
　ヘアレスRETマウスは白斑毒性の評価（第１の局面）と黒皮症毒性の評価（第２の局面）に有用であるが、この局面は、白斑毒性及び黒皮症毒性の両者に高い感受性を示すという特徴を活かし、白斑毒性と黒皮症毒性を同時に評価・判定するという極めてユニークな試験方法を提供する。当該試験方法（白斑毒性と黒皮症毒性の同時試験方法）では以下のステップ（１）～（３）を行う。尚、以下では各ステップの詳細を説明するが、第１の局面（白斑毒性試験方法）と共通する用語及び要件については、第１の局面での説明を援用し、重複する説明を省略する。
　（１）活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスに、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを戻し交配して得られたヘアレスRETマウス、又は該マウスを兄妹交配して得られたヘアレスRETマウスの尾と、皮膚（但し、尾の皮膚を除く）とに被験物質を適用するステップ
　（２）前記ヘアレスRETマウスの尾における白斑の有無及び／又は程度を評価し、評価結果に基づき被験物質の白斑毒性を判定するステップ
　（３）前記ヘアレスRETマウスの前記皮膚における黒皮症の誘発の有無及び／又は程度を評価し、評価結果に基づき被験物質の黒皮症毒性を判定するステップ
　ステップ（１）ではヘアレスRETマウスを用意し、その尾と、皮膚（但し、尾の皮膚を除く）とに被験物質を適用する。即ち、大別して２箇所に被験物質が適用される。各部位への適用は、実質的な時間差を設けることなく（即ち、実質的同時に）、或いは所定の時間間隔を空けて行われる。
　白斑毒性の評価が必要とされる物質を第１の被験物質として尾に適用し、黒皮症毒性の評価が必要とされる別の物質を第２の被験物質として皮膚（尾以外）に適用し、各被験物質の毒性を同時に評価することも可能であるが、同一の被験物質を尾と皮膚（尾以外）の両方に適用することにすれば、当該物質の白斑毒性と黒皮症毒性を同時に評価することができる。この場合、白斑毒性又は黒皮症毒性、或いはこれらの両者の評価が必要とされる物質を被験物質とする。第１の局面／第２の局面の場合と同様に様々な物質を採用することができる（詳細は第１の局面／第２の局面における被験物質の説明を参照）。被験物質の適用回数や適用スケジュールも第１の局面／第２の局面に準ずる。
　ステップ（２）では、ステップ（１）の処置をしたヘアレスRETマウスの尾における白斑の誘発の有無又は程度、或いはこれらの両者を評価する。そして、評価結果に基づき被験物質の白斑毒性を判定する。一方、ステップ（３）では、ステップ（１）の処置をしたヘアレスRETマウスの皮膚（尾以外）における黒皮症の誘発の有無又は程度、或いはこれらの両者を評価する。そして、評価結果に基づき被験物質の黒皮症毒性を判定する。ステップ（２）及び（３）はいずれを先に行ってもよい。また、ステップ（２）と（３）を並行して行うことにしてもよい。ステップ（２）の評価及び判定の詳細（評価項目や判定結果など）及びステップ（３）の評価及び判定の詳細（評価項目や判定結果など）は、それぞれ、第１の局面及び第２の局面に準ずる。尚、各ステップにおいて、評価の正確性や信頼度を高めるために二つ以上の評価項目を併用してもよいことや、試験群と対照群を用意し、これらの比較に基づき被験物質の毒性を評価及び判定することが好ましいことなども、上記の局面と同様である。
４．in vitro試験系
　この局面は細胞ベースの試験方法に関する。具体的には、第１の局面で使用するヘアレスマウスの尾から採取されるメラノサイト又はその継代細胞（株化した細胞も含む）を用いて被験物質の白斑毒性を評価する試験方法と、第２の局面で使用するヘアレスRETマウスの皮膚（但し、尾の皮膚を除く）から採取されるメラノサイト又はその継代細胞（株化した細胞も含む）を用いて被験物質の黒皮症毒性を評価する試験方法が提供される。白斑毒性又は黒皮症毒性の評価には、例えば、メラニン発現量、メラノサイトの増殖能、メラノサイトの生存率、メラノサイト遊走能等の細胞生理機能検査に加え、これらの細胞生理機能に影響を与える分子（チロシナーゼ、αMSH、エンドセリン、エンドセリン受容体、SCF、c-Kit、POMC、GM-CSF、Mitf等）の発現又は活性レベルといった評価項目を利用することができる。
　より具体的なin vitro試験系として、以下のステップ（a)～(d)を含む、白斑毒性又は黒皮症毒性、或いはこれらの両者を評価するための試験方法が提供される。
　（ａ）活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスに、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを戻し交配して得られたヘアレスRETマウス、又は該マウスを兄妹交配して得られたヘアレスRETマウスの皮膚メラノサイトを含む試料を用意し、試験群と対照群に分けるステップ
　（ｂ）試験群を被験物質の存在下で培養するステップ
　（ｃ）ステップ（ｂ）後の試験群と、被験物質が非存在下であること以外は同一の条件で培養した対照群について、c-Met、RFP-RET、c-Ret、Enothelin receptor B (Ednrb)、c-kit、Mc1r、Mitf-m、Tyrosinase、Tyrosinase-realted protein-2、TGF-beta type receptor 2 (Tgfr2)、Fibroblast growth factor (Fgfr)、Bcl2、p53、survivin、CCAAT-enhancer-binding protein homologous protein (CHOP)、Glutamate cysteine ligase (GCLC)、NF-E2 related factor２(Nrf2)、Heat shock protein (HSP) 70、Foxp1、Foxp3、CCR6、Bach2、NACHT leucine-rich-repeat protein 1 (Nalp)、Cytotoxic T-lymphocyte antigen-4 (Ctla4)及びGranzyme B(GZMB)からなる群より選択される一以上のマーカー分子の発現又は活性を検出するステップ
　（ｄ）試験群と対照群の間で検出結果を比較し、比較結果に基づき被験物質の白斑毒性及び／又は黒皮症毒性を判定するステップ
　ステップ（ａ）では、ヘアレスRETマウス（即ち、活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスに、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを戻し交配して得られたヘアレスRETマウス、又は該マウスを兄妹交配して得られたヘアレスRETマウス）の皮膚メラノサイトを含む試料を用意する。ヘアレスRETマウスについては前述の通り（１．白斑毒性の試験方法の欄）であるのでその詳細な説明は省略する。ここでの試料として、細胞（皮膚メラノサイト単独、又は皮膚メラノサイトと皮膚組織を構成する他の細胞との併用）又は組織片（皮膚組織、表皮組織、若しくは真皮組織）を用いることができる。前者の場合、細胞培養（メラノサイトの単独培養又は共培養）が行われ、後者の場合には器官培養が行われることになる。ステップ（ａ）に使用する試料は、ヘアレスRETマウスの背部皮膚や尾部皮膚から公知の方法で採取ないし単離することができる。以下、ヘアレスRETマウスの皮膚メラノサイト系細胞の単離及び培養（初代培養）の手順の例を示す。
　生後0.5日のヘアレスRETマウスの背部皮膚又は尾部皮膚を用いる。単離した背部皮膚又は尾部皮膚をカルシウム・マグネシウム不含のリン酸緩衝液で洗い、0.25%トリプシン溶液に浸漬し2℃で一晩静置する。ピンセットにて表皮と真皮を剥離する。剥離した表皮シートのみを0.02%EDTA溶液にて37℃で10分処理し、ピペッティングにより細胞を解離させる。残った角質シートをピンセットで取り除き、遠心にて細胞ペレットを得る。細胞ペレットをHam's F-10培地中で懸濁した後、メラノサイト選択培地にて37℃、5% CO2にて培養する（培地組成は以下に示す）。培地組成を変えることにより、「未分化メラノサイト」、「分化メラノサイト」、「増殖性未分化メラノサイト」、「増殖性分化メラノサイト」の純粋培養が得られる（Hirobe T. Melanocyte stimulating hormone induces the differentiation of mouse epidermal melanocytes in serum-free culture. J Cell Physiol. 152(2):337-45, 1992.；Hirobe T. Endothelins are involved in regulating the proliferation and differentiation of mouse epidermal melanocytes in serum-free primary culture. J Investig Dermatol Symp Proc. 6(1):25-31, 2001.）。いずれのメラノサイト系細胞を用いてもよいが、好ましくは、より一般的に使用されるメラノサイト（分化メラノサイト又は増殖性分化メラノサイト）を用いる。メラノサイトの中でも増殖性分化メラノサイトは多くの試験物質を評価することに適しており、特に好ましいといえる。尚、試料として用いる皮膚メラノサイト系細胞として、継代培養後の細胞を用いることにしてもよい。
＜培地の種類と組成＞
培地A：未分化メラノサイト培地
　Ham's F-10培地
　インスリン (10μg/ml)
　牛血清アルブミン (1 mg/ml)
　エタノールアミン(1μM)
　フスフォエタノールアミン (1μM)
　亜セレン酸ナトリウム (10 nM)
　ペニシリンG (100 U)
　Streptomycin sulfate (100μg/ml)
　Gentamycin sulfate (50μg/ml)
　Amphotericin B (0.25μg/ml)
培地B：分化メラノサイト培地
　培地Aにα-melanocyte stimulating hormone(α-MSH)（100 nM）を添加したもの
培地C：増殖性分化メラノサイト培地
　培地AにDibutyryl adenosine 3-cyclic monophosphate (DBcAMP)(0.5 mM)を添加したもの
培地D：増殖性未分化メラノサイト培地
　培地Cにbasic fibroblast growth factor (bFGF) (2.5 ng/ml)を添加したもの
　用意した試料は試験群と対照群に分けられ、所定の条件下でそれぞれ培養される（ステップ（ｂ））。試験群については被験物質の存在下で培養する。被験物質の存在下で培養するためには、例えば、試料を培養しておき、被験物質を培養液に添加するか或いは被験物質を添加した培養液に交換すればよい。培養開始直後に被験物質の添加或いは被験物質を添加した培養液への交換を実施することにしてもよい。また、被験物質を予め添加した培養液を用いることにし、培養開始と同時に「被験物質が培養液中に存在した状態」が形成されるようにしてもよい。尚、第１の局面／第２の局面の場合と同様に様々な物質を被験物質として採用することができる（詳細は第１の局面／第２の局面における被験物質の説明を参照）。
　被験物質存在下での培養時間は特に限定されないが、例えば0.5分～5日間、好ましくは30分～5時間とする。尚、最適な培養時間は予備実験によって決定することができる。
　本明細書で言及しない事項（培地、培養温度など）については、一般的な培養条件に従えばよい。培養条件は、過去の報告や成書を参考にして、或いは予備実験を通じて決定すればよい。尚、培養温度は通常37℃とする。
　ステップ（ｃ）では、試験群と対照群について、c-Met、RFP-RET、c-Ret、Enothelin receptor B (Ednrb)、c-kit、Mc1r、Mitf-m、Tyrosinase、Tyrosinase-realted protein-2、TGF-beta type receptor 2 (Tgfr2)、Fibroblast growth factor (Fgfr)、Bcl2、p53、survivin、CCAAT-enhancer-binding protein homologous protein (CHOP)、Glutamate cysteine ligase (GCLC)、NF-E2 related factor２(Nrf2)、Heat shock protein (HSP) 70、Foxp1、Foxp3、CCR6、Bach2、NACHT leucine-rich-repeat protein 1 (Nalp)、Cytotoxic T-lymphocyte antigen-4 (Ctla4)及びGranzyme B(GZMB)からなる群より選択される一以上のマーカー分子の発現又は活性を検出する。好ましくは、c-Met又はRFP-RET、或いはこれらの両方を用いる。採用するマーカー分子に適した検出法が採用される。例えば、転写活性（ルシフェラーゼ活性評価法等）、遺伝子発現レベル（リアルタイムPCR等）、タンパク質発現レベル(ウエスタンブロット、ELISA、免疫組織化学等)、リン酸化などの活性化レベル(ウエスタンブロット、ELISA、免疫組織化学等)を常法で検出する。分泌タンパク質であれば、培養上清中のタンパク質をELISA等で検出／定量することも可能である。
　ステップ（ｄ）では、試験群と対照群の間で検出結果を比較し、比較結果に基づき被験物質の白斑毒性及び／又は黒皮症毒性を判定する。即ち、本発明では、試験群と対象群の検出結果を利用して、白斑毒性又は黒皮症毒性、或いはこれらの両方を同時に判定することになる。
　上掲のマーカー分子の中で、RFP-RET、c-Met、c-Ret、Ednrb、c-Kit、Mc1r、Mitf-m、Tyrosinase、TRP2、Tgfbeta-2、Fgfr、Bcl2、p53、survivin、GCGL、Nrf2、HSP70、Foxp1、Focp3、Bach2、Nalp、Ctla4は、その発現量／活性と黒皮症毒性が正の相関を示す。従って、これらのマーカー分子はその発現量／活性の上昇が黒皮症毒性の指標となり、典型的には、対照群に比較して試験群の方がマーカー分子の発現量／活性が高い場合、「被験物質が黒皮症毒性を有する」と判定することになる。他方、CHOP、CCR6、GZMBは、その発現量／活性と黒皮症毒性が負の相関を示す。従って、これらのマーカー分子はその発現量／活性の低下が黒皮症毒性の指標となり、典型的には、対照群に比較して試験群の方がマーカー分子の発現量／活性が低い場合、「被験物質が黒皮症毒性を有する」と判定することになる。発現量／活性の程度（レベル）に基づき、黒皮症毒性の程度（レベル）を評価することにしてもよい。また、複数の被験物質を用いた場合には、マーカー分子の発現又は活性の上昇又は低下の程度に基づき、各被験物質の黒皮症毒性を比較評価することができる。
　上掲のマーカー分子の中で、CHOP、CCR6、GZMBは、その発現量／活性と白斑毒性が正の相関を示す。従って、これらのマーカー分子はその発現量／活性の上昇が白斑毒性指標となり、典型的には、対照群に比較して試験群の方がマーカー分子の発現量／活性が高い場合、「被験物質が白斑毒性を有する」と判定することになる。他方、RFP-RET、c-Met、c-Ret、Ednrb、c-Kit、Mc1r、Mitf-m、Tyrosinase、TRP2、Tgfbeta-2、Fgfr、Bcl2、p53、survivin、GCGL、Nrf2、HSP70、Foxp1、Focp3、Bach2、Nalp、Ctla4は、その発現量／活性と白斑毒性が負の相関を示す。従って、これらのマーカー分子はその発現量／活性の低下が白斑毒性の指標となり、典型的には、対照群に比較して試験群の方がマーカー分子の発現量／活性が低い場合、「被験物質が白斑毒性を有する」と判定することになる。発現量／活性の程度（レベル）に基づき、白斑毒性の程度（レベル）を評価することにしてもよい。また、複数の被験物質を用いた場合には、マーカー分子の発現又は活性の上昇又は低下の程度に基づき、各被験物質の白斑毒性を比較評価することができる。
　好ましくは、白斑毒性の指標としてc-Metを採用し、黒皮症毒性の指標としてRFP-RETを採用する。最も好ましい態様の一つでは、これらの二つの指標を併用し、白斑毒性と黒皮症毒性を同時に判定・評価する。
　in vitro試験系の更なる態様として、活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウス（以下、「RET－マウス」と呼ぶ）由来のメラノサイト系細胞株を用いた試験方法が提供される。この試験方法では、予め用意しておくことが容易なメラノサイト系細胞株を用いる点において、上記の試験方法よりも簡便であるといえる。活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスついては前述の通り（１．白斑毒性の試験方法の欄）であるのでその詳細な説明は省略する。マウスメラノサイト系細胞株は、例えば、RETマウスのメラノサイト系細胞を含む皮膚組織から単離した細胞から樹立することができる。より詳細には、マウスから採取したメラノサイト系細胞を含む皮膚組織を器官培養し、器官外に遊走してきた細胞の継代培養を繰り返す方法、マウスから採取したメラノサイト系細胞を含む皮膚組織をトリプシンなどの酵素により解離させた細胞の継代培養を繰り返す方法、Simian virus 40（SV40）T抗原のようなウイルス遺伝子を利用して不死化を誘発する方法、テロメア逆転写タンパク質（TERT）を発現させて不死化を誘発する方法等の操作によってRET-マウス由来のメラノサイト系細胞株を樹立することができる。
　この態様では、典型的には、以下のステップ（Ａ）～（Ｄ）を行い、被験物質の白斑毒性及び／又は黒皮症毒性を評価する。
　（Ａ）活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウス由来のメラノサイト系細胞株を用意し、試験群と対照群に分けるステップ
　（Ｂ）試験群を被験物質の存在下で培養するステップ
　（Ｃ）ステップ（Ｂ）後の試験群と、被験物質が非存在下であること以外は同一の条件で培養した対照群について、c-Met、RFP-RET、c-Ret、Enothelin receptor B (Ednrb)、c-kit、Mc1r、Mitf-m、Tyrosinase、Tyrosinase-realted protein-2、TGF-beta type receptor 2 (Tgfr2)、Fibroblast growth factor (Fgfr)、Bcl2、p53、survivin、CCAAT-enhancer-binding protein homologous protein (CHOP)、Glutamate cysteine ligase (GCLC)、NF-E2 related factor２(Nrf2)、Heat shock protein (HSP) 70、Foxp1、Foxp3、CCR6、Bach2、NACHT leucine-rich-repeat protein 1 (Nalp)、Cytotoxic T-lymphocyte antigen-4 (Ctla4)及びGranzyme B(GZMB)からなる群より選択される一以上のマーカー分子の発現又は活性を検出するステップ
　（Ｄ）試験群と対照群の間で検出結果を比較し、比較結果に基づき被験物質の白斑毒性及び／又は黒皮症毒性を判定するステップ
　ステップ（Ａ）では、RET-マウス由来のメラノサイト系細胞株を用意し、試験群と対照群に分ける。続いて、所定の条件下でそれぞれ培養する（ステップ（Ｂ））。培養方法、培養時間等は、ヘアレスRETマウスの皮膚メラノサイトを用いた上記試験方法のステップ（ｂ）に準ずる。ステップ（Ｃ）及びステップ（Ｄ）についても、それぞれ、ヘアレスRETマウスの皮膚メラノサイトを用いた上記試験方法のステップ（ｃ）及びステップ（ｄ）と同様であるため、その説明を省略する。
５．白斑又は黒皮症の予防又は治療用薬剤のスクリーニング方法
　本発明の更なる局面は、白斑又は黒皮症の予防又は治療用薬剤のスクリーニング方法を提供する。この局面の第１の態様は白斑の予防又は治療用薬剤のスクリーニング方法であり、以下のステップ（ａ）～（ｃ）を含む。
　（ａ）メラニン産生能を有するヘアレスマウスの尾に白斑誘発処理を施すステップ
　（ｂ）前記ヘアレスマウスに被験物質を投与するステップ
　（ｃ）被験物質の予防効果又は治療効果を判定するステップ
　用語「白斑の予防又は治療用薬剤」は、白斑を発症している患者に対してその症状の改善などを目的として使用される薬剤はもとより、白斑を発症するおそれのある者に対して予防的に（再発防止の目的も含む）使用される薬剤も含む用語として用いられる。このように、本発明のスクリーニング方法を利用して得られる薬剤は、白斑の予防又は治療を目的として使用することができる。
　ステップ（ａ）ではメラニン産生能を有するヘアレスマウスを用意し、その尾に白斑誘発処理を施す。メラニン産生能を有するヘアレスマウスについては第１の局面と同様であるため、その説明を省略する。白斑誘発処理は、例えば、白斑毒性のある物質（例えばロドデノール、ラズベリーケトン）の適用（塗布、滴下、注射等）によって行われる。
　ステップ（ｂ）における被験物質の投与方法としては、尾の皮膚への塗布若しくは滴下、経口投与や静脈内、動脈内、皮下、筋肉、又は腹腔内注射等を例示することができる。被験物質としては様々な分子サイズの有機化合物（核酸、ペプチド、タンパク質、脂質（単純脂質、複合脂質（ホスホグリセリド、スフィンゴ脂質、グリコシルグリセリド、セレブロシド等）、プロスタグランジン、イソプレノイド、テルペン、ステロイド等））又は無機化合物を用いることができる。被験物質は天然物由来であっても、或いは合成によるものであってもよい。後者の場合には例えばコンビナトリアル合成の手法を利用して効率的なスクリーニング系を構築することができる。核酸・蛋白質、脂質を含む細胞抽出液、培養上清などを被験物質として用いてもよい。２種類以上の被験物質を併用することにしてもよい。
　被験物質の投与時期（投与のタイミング）は特に限定されず、ステップ（ａ）の白斑誘発処理の前、白斑誘発処理と同時、又は白斑誘発処理の後に被験物質を投与する。投与回数も特に限定されず、単回又は複数回の投与を行う。
　ステップ（ｃ）では被験物質の治療又は予防効果を判定する。予防効果又は治療効果があると判定された被験物質は有力な薬剤候補となる。白斑の誘発の有無又は程度、或いはこれらの両者の評価によって治療又は予防効果を判定することができる。評価の指標や評価方法は第１の局面と同様であるため、その詳細な説明は省略する。
　この局面の第２の態様は、黒皮症の予防又は治療用薬剤のスクリーニング方法であり、以下のステップ(Ａ）～(Ｃ)を含む。
　（Ａ）活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスに、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを戻し交配して得られたヘアレスRETマウス、又は該マウスを兄妹交配して得られたヘアレスRETマウスの皮膚（但し、尾の皮膚を除く）に黒皮症誘発処理を施すステップ
　（Ｂ）前記ヘアレスRETマウスに被験物質を投与するステップ
　（Ｃ）被験物質の予防効果又は治療効果を判定するステップ
　用語「黒皮症の予防又は治療用薬剤」は、黒皮症を発症している患者に対してその症状の改善などを目的として使用される薬剤はもとより、黒皮症を発症するおそれのある者に対して予防的に（再発防止の目的も含む）使用される薬剤も含む用語として用いられる。このように、本発明のスクリーニング方法を利用して得られる薬剤は、黒皮症の予防又は治療を目的として使用することができる。
　ステップ（Ａ）では、活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスに、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを戻し交配して得られたヘアレスRETマウス、又は当該マウスを兄妹交配して得られたヘアレスRETマウス（即ち、遺伝子型がhr/hr;Ret/Oで遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウス）を用意し、その皮膚（例えば背、腹又は頭）に黒皮症誘発処理を施す。当該ヘアレスRETマウスについては、第２の局面と同様であるため、その説明を省略する。黒皮症誘発処理は、例えば、黒皮症毒性のある物質（例えばロドデノール、ラズベリーケトン）の適用（塗布、滴下、注射等）によって行われる。
　ステップ（Ｂ）における被験物質の投与方法（但し、塗布、滴下などによって投与する場合には、黒皮症誘発処理を施す部位を適用部位にする）や投与時期、被験物質として採用可能な物質等は第１の態様と同様である。
　ステップ（Ｃ）では被験物質の治療又は予防効果を判定する。予防効果又は治療効果があると判定された被験物質は有力な薬剤候補となる。黒皮症の誘発の有無又は程度、或いはこれらの両者の評価によって治療又は予防効果を判定することができる。評価の指標や評価方法は第２の局面と同様であるため、その詳細な説明は省略する。
　本発明のスクリーニング方法（第１の態様及び第２の態様）では、好ましくは、被験物質が投与されるモデル動物群（試験群）と、被験物質が投与されないこと以外は同条件のモデル動物群（対照群）を用意する。そして、採用した指標に関して試験群と対照群を比較し、その結果を基にして判定（ステップ（ｃ）、ステップ（Ｃ））を行う。比較の結果、例えば対照群のみで白斑（第１の態様の場合）又は黒皮症（第２の態様の場合）の発症を認める場合、試験群の方が対照群よりも白斑（第１の態様の場合）又は黒皮症（第２の態様の場合）の症状が進行ないし重篤化していない場合、試験群で症状の有意な軽快を認める場合など、試験群に治療ないし予防効果が認められれば、被験物質が白斑の予防又は治療用薬剤（第１の態様の場合）或いは黒皮症の予防又は治療用薬剤（第２の態様の場合）の有力な候補であると判定できる。このように被験物質を投与する群（試験群）と投与しない群（対照群）とを比較することによれば、被験物質の有効性を容易に且つ高い信頼度で判定することができる。
　試験群及び対照群に含まれる個体数は特に限定されない。一般に使用する個体数が多くなるほど信頼度の高い結果が得られるが、多数の個体を同時に取り扱うことは使用する個体の確保や操作（飼育を含む）の面で困難を伴う。そこで例えば各群に含まれる個体数を１～５０、好ましくは２～３０、さらに好ましくは５～２０とする。
　本発明のスクリーニング方法によって選択された化合物が白斑（第１の態様の場合）又は黒皮症（第２の態様の場合）に対して十分な薬効を有する場合には、当該化合物をそのまま薬剤の有効成分として使用することができる。一方で十分な薬効を有しない場合には化学的修飾などの改変を施してその薬効を高めた上で、白斑の予防又は治療用薬剤（第１の態様の場合）或いは黒皮症の予防又は治療用薬剤（第２の態様の場合）の有効成分として当該化合物を使用することができる。勿論、十分な薬効を有する場合であっても、更なる薬効の増大を目的として同様の改変を施してもよい。
　本明細書で特に言及しない事項（条件、操作方法など）については常法に従えばよく、例えばMolecular Cloning（Third Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York)、Current protocols in molecular biology（edited by Frederick M. Ausubel et al., 1987）、Current protocols in Immunology, John Wiley& Sons Inc等を参考にすることができる。
Ａ．ヘアレスマウスを用いた毒性評価系の構築
１．マウス
　剃毛処理を必要としない無毛のヘアレスマウスとして、ヘアレス野生型マウス（図１Ａ）とヘアレスRETマウス（図１Ｂ）を用意した。両マウスの作製法は下記の通りである。
（１）ヘアレス野生型マウスの作製法
　星野試験動物飼育所より購入した無毛（hr/hr）でメラニン産生可能なヘアレス野生型マウス（Hos:HRM：CBA/J x C57BL/6J Jmsバックグラウンド）に、C57BL/6マウスを7回バッククロスしたヘアレス野生型マウス（C57BL/6バックグラウンド）を作製し、その後、10回以上の兄妹交配により繁殖させたものを使用した。
（２）ヘアレスRETマウスの作製法
　本発明者らの研究グループは、以前、192系統（BCF1マウスと１回交配した後、C57BL/6と１回交配）・242系統（BCF1マウスと１回交配した後、C57BL/6と１回交配）・304系統（BCF1マウスと１回交配した後、C57BL/6と6回戻し交配）のRET/o-トランスジェニックマウスを開発した(Iwamoto et al., 1991; Kato et al.,1998)。これらの3系統のRET/o-トランスジェニックマウスに、（１）で作製したヘアレス野生型マウス（C57BL/6バックグラウンド）を7回戻し交配することによってヘアレスRETマウス（C57BL/6バックグラウンド）を作製した。その後、10回以上の兄妹交配により繁殖させたヘアレスRETマウスを以下の実験に使用した。
（３）各マウスの特徴
　上述の方法で作製したマウスの内、192系統及び304系統は腫瘍を発症するため、好ましくは242系統のヘアレスRETマウスを用いる。図１に、ヘアレス野生型マウス（A）及び242系統のヘアレスRETマウス（B）の背部（左）及び尾部（右）を示す。ヘアレス野生型マウスの背部皮膚では肉眼的に皮膚の黒さはほとんど確認されない。一方、ヘアレスRETマウスでは背部皮膚全体が黒い。色彩色差計（コニカミノルタCR400）によって計測した皮膚の明るさ（白さ）を示すL*値は、ヘアレス野生型マウスと比べ、ヘアレスRETマウスにおいて統計学的に有意に小さいことが示された（図１Ｃ）。尾部の皮膚については、ヘアレス野生型マウスにおいても一定の黒さが確認できるものの、ヘアレスRETマウスの方がより皮膚色が黒い（図１Ａ、Ｂ）。
　尚、上記の方法で作製したヘアレスRETマウス（C57BL/6バックグラウンド）は、以前に報告したヘアレスRETマウス（Hos:HRMマウスと１回交配して作製した242系統のヘアレスRETマウス（CBA/J x C57BL/6J Jmsバックグラウンド。特開２０１３－１０６５５４号公報を参照）とは遺伝的背景の異なる別の系統である。両系統の違いは、皮膚の黒さの違いとして現れ、上記の方法で作製したヘアレスRETマウスは皮膚の黒さが弱い。この特徴は黒皮症毒性の評価における感度に影響する（有利に働く）。
２．低濃度のロドデノール及びラズベリーケトンを用いた外用試験
　ヘアレス野生型マウス（C57BL/6バックグラウンド）及びヘアレスRETマウス（C57BL/6バックグラウンド）の背部皮膚と尾部皮膚に、70%エタノールにて溶解した2%ロドデノール又は2%ラズベリーケトンを毎日１回、週５回外用した（試験群）。対照群（コントロール）には溶媒（70%エタノール）のみを外用した。外用量は9.0μl/cm2とした。
（１）目視、色彩色差計及び画像解析による評価
（１－１）背部皮膚の評価結果
　2%ロドデノール又は2%ラズベリーケトンの外用を初めて約3ヶ月後、ヘアレスRETマウスの背部皮膚において黒皮症が誘発された（図２Ａ）。一方、ヘアレス野生型マウスの背部皮膚では、2%ロドデノール又は2%ラズベリーケトンを外用したいずれの皮膚においても皮膚色の変化は観察されなかった（図２Ａ）。色彩色差計により計測したL*値による客観評価の結果からも、2%ロドデノール又は2%ラズベリーケトンを外用したヘアレスRETマウスの背部皮膚では、溶媒を外用した背部皮膚と比べてL*値のレベルが有意に低い（皮膚がより黒い）ことが示された（図２Ｂ）。一方、ヘアレス野生型マウスでは、溶媒を外用した皮膚と、2%ロドデノール又は2%ラズベリーケトンを外用した皮膚の間でL*値に有意な差はみられなかった（図２Ｂ）。
（１－２）尾部皮膚の評価結果
　外用を始めて約1ヶ月後、ヘアレス野生型マウスの尾部皮膚では、2%ロドデノール又は2%ラズベリーケトンの外用により脱色素が観察された（図２Ｃ）。ヘアレスRETマウスの尾部背部皮膚では、外用後1ヶ月の時点で肉眼的に脱色素を観察することはできなかったが、外用を始めて約3ヶ月後、2%ロドデノール又は2%ラズベリーケトンの外用により脱色素が観察された（図２Ｃ）。尾部皮膚については、装置の構造上の制約から色彩色差計による測定が困難であったため、写真撮影後に画像解析ソフト（WinROOF）にて皮膚の黒さを数値化することで客観評価を行った。その結果、ヘアレス野生型マウス、ヘアレスRETマウスのいずれにおいても、2%ロドデノール又は2%ラズベリーケトンを外用した尾部皮膚の黒さは、溶媒を外用した尾部皮膚と比べ、有意に低いことが示された（図２Ｄ）。
（２）病理解析による評価
　次に、2%ロドデノール又は2%ラズベリーケトンによって誘発された、黒皮症及び脱色素がヒトの黒皮症・白斑の病態と類似しているかどうかを確認するために病理解析を行った（図３、４）。ヒトの白斑部では、メラニン色素の減少／消失及びメラノサイト数の減少／消失が報告されている。ロドデノールやラズベリーケトンが誘発する黒皮症におけるメラニン及びメラノサイトに関しては現時点でほとんど情報がないが、黒皮症では一般にメラニン色素の増加が確認されており、また、メラノサイトの数については、変化しない症例と増加する症例が報告されている。皮膚メラニンを検出するため、皮膚パラフィン切片を作製し、フォンタナマッソン染色を行った。また、メラノサイトを検出するため、メラノサイト特異抗原であるDopachrometautomerase（Dct）に対する抗体を用いた免疫組織化学法を行った。
（２－１）背部皮膚の評価結果
　組織学的観察においてもWinROOFによる客観評価においても、2%ロドデノール又は2%ラズベリーケトンを外用したヘアレス野生型マウスの背部皮膚と、溶媒を外用した背部皮膚との間でメラニン分布及びメラニン密度の有意な差は認められなかった（図３Ａ、Ｂ）。一方、黒皮症が観察されたヘアレスRETマウスの背部皮膚では、組織学的観察及びWinROOFによる客観評価において、溶媒を外用した背部皮膚に比べて有意にメラニン密度が高い事が示された（図３Ａ、Ｂ）。また、ヘアレス野生型マウスでは、2%ロドデノール又は2%ラズベリーケトン外用によるメラノサイト数の変化は認められなかったが（図３Ｃ、Ｄ）、ヘアレスRETマウスでは、2%ロドデノール又は2%ラズベリーケトンを外用した皮膚においてメラノサイトの数の明らかな増加（溶媒を外用した皮膚の約２倍のメラノサイト数）が認められた（図３Ｃ、Ｄ）。
（２－２）尾部皮膚の評価結果
　2%ロドデノール又は2%ラズベリーケトンの外用により脱色素が確認されたヘアレス野生型マウス、及びヘアレスRETマウスの尾部皮膚におけるメラニン密度は、溶媒を外用した尾部皮膚のメラニン密度と比べ有意に低いことが組織学的観察及びWinROOFによる客観評価により明らかとなった（図４Ａ、Ｂ）。また、2%ロドデノール又は2%ラズベリーケトンを外用した尾部皮膚のメラノサイト数は、溶媒を外用した尾部皮膚のメラノサイト数と比べて有意に少ないことが、組織学的観察及びWinROOFによる客観評価により示された（図４Ｃ、Ｄ）。
（３）考察
・実際の美白剤等に含まれる低濃度の化学物質を用いた白斑毒性及び黒皮症毒性の評価が可能となった。ヘアレス野生型マウスについては尾部皮膚において白斑毒性を、ヘアレスRETマウスについては、尾部皮膚における白斑毒性と背部皮膚における黒皮症毒性を同時に評価可能である。
・ヘアレス野生型マウスでは約1ヶ月の外用期間、ヘアレスRETマウスでは約3ヶ月の外用期間により白斑が誘発されたことから、ヘアレス野生型マウスを用いた試験は、より感度が高いヒトを想定した白斑毒性評価系として特に有用である。一方、ヘアレスRETマウスを用いた試験は、比較的長期間かけて白斑が発症するタイプのヒトを想定した白斑毒性評価系として特に有用といえる。ヘアレス野生型マウスとヘアレスRETマウスを併用して評価すれば、感受性の異なるヒトを対象として毒性評価が可能となる。
・ヘアレス野生型マウス及びヘアレスRETマウスを用いた評価系では、剃毛や紫外線照射などの副次的な刺激が必要ないため、化学物質の毒性を一元的に評価可能であり、信頼性の高い評価結果が得られる。
・ヘアレス野生型マウス及びヘアレスRETマウスによって、ロドデノールのみならずラズベリーケトンの白斑・黒皮症毒性を評価できた。この事実は、ヘアレス野生型マウス又はヘアレスRETマウスを用いた評価系が汎用性に優れ、多種多様な化学物質の毒性評価に利用できることを示す。
Ｂ．in vitro毒性評価系の構築
　より簡便且つ短時間で白斑毒性及び黒皮症毒性を評価できる評価系の確立を目指し、RET-マウスから単離・樹立した細胞株を用い、ロドデノール曝露による黒皮症関連遺伝子及び白斑関連遺伝子の発現変化を調べた。RET-マウスにはRFP-RET遺伝子が導入されており、これにより黒皮症が発症することが報告されている（非特許文献５）。そこで、本モデルから単離した細胞株を用い、RFP-RET遺伝子発現を指標に黒皮症毒性を評価した。一方、白斑毒性評価についてはc-Met遺伝子に着目した。c-Metは受容体型チロシンキナーゼであり、ヒトのメラノサイトの増殖・機能に関与する代表分子である（非特許文献６）。
１．方法
　RET-マウスから単離したメラノサイト細胞株を1.0 x 105/wellの密度で6-well platesに播種した。ロドデノールは、dimethyl sulfoxide (DMSO)にて終濃度の1000倍濃度となるように溶解し、それらを培養液に1/1000量添加した（0.1% DMSO）。メラノサイト細胞株をロドデノールに５時間曝露した後、定量PCR法によりRFP-RET、c-Met、HprtのmRNA発現解析を行った。
２．結果
　0.2 % ロドデノール添加により、RFP-RETのmRNA発現レベルは約2倍に上昇した。また、0.00002 % ロドデノール添加によりc-MetのmRNA発現レベルは約30%に減少した（図５）。
３．考察
　（１）ロドデノール曝露により、黒皮症マーカーであるRFP-RETのmRNA発現レベルが上昇し、メラノサイトの生存マーカーであるc-MetのmRNA発現レベルが減少したことから、本試験法を用いることにより、ロドデノールによる黒皮症毒性および白斑毒性を同時に評価できることが示された。
　（２）in vitro試験系を用いたロドデノールによる毒性の評価に関する先行技術（非特許文献１、７、８）は、白斑毒性の評価に限定された試験である。対照的に、本評価系によれば白斑毒性と黒皮症毒性を同時に評価可能である。
　（３）ヒトにおいて、ロドデノールは白斑毒性を示すだけでなく、患者の約38%が色素沈着を伴う黒皮症を発症することが報告されている（非特許文献２）。本評価法によれば白斑毒性だけでなく黒皮症毒性の評価も可能であることから、よりヒトの症例に対応した毒性の評価が可能である。
　（４）ヒトの場合と同様にヘアレス野生型マウスやヘアレスRETマウスでは2%のロドデノールで白斑毒性及び黒皮症毒性が誘発したが、本評価系ではその約1/100000（c-Metを指標にした白斑毒性）と約1/10（RFP-RETを指標にした黒皮症毒性）の感度で毒性を評価可能であった。尚、in vitro試験系で最も感度よく白斑毒性を評価した過去の報告（非特許文献８）と比較しても、本評価系は約50倍高感度である。
　（５）過去のin vitro試験系では24時間又は48時間曝露の後に評価しているが（非特許文献１、７、８）、本評価系ではわずか5時間の曝露によっても毒性を評価可能である。
５．まとめ
　RET-マウスから樹立した株細胞を用いることで、高感度かつ短時間で白斑毒性及び黒皮症毒性を同時に評価することが可能となった。in vitro評価系を構築できたことにより、より多くの試験物質を短期間で評価することができる。また、in vitro評価のみ、in vivo評価のみ、あるいはその両方といった多様なニーズにも対応可能であり、in vitro評価の結果とin vivo評価の結果を合わせて総合的に評価することで、より信頼性の高い毒性評価が可能である。
　本発明の試験方法によれば高感度で白斑毒性／黒皮症毒性を評価することができる。本発明の試験方法は汎用性も高く、様々な物質の毒性評価に利用可能である。例えば、化粧品、医薬品などの開発段階における安全性確認のための手段として本発明は有用である。
　この発明は、上記発明の実施の形態及び実施例の説明に何ら限定されるものではない。特許請求の範囲の記載を逸脱せず、当業者が容易に想到できる範囲で種々の変形態様もこの発明に含まれる。本明細書の中で明示した論文、公開特許公報、及び特許公報などの内容は、その全ての内容を援用によって引用することとする。

Claims (22)

  1. 　以下のステップ（１）及び（２）を含む、白斑毒性の試験方法：
    　（１）メラニン産生能を有するヘアレスマウスの尾に被験物質を適用するステップ、
    　（２）前記ヘアレスマウスの尾における白斑の誘発の有無及び／又は程度を評価し、評価結果に基づき被験物質の白斑毒性を判定するステップ。
  2. 　前記ヘアレスマウスが、メラニン産生能が正常なヘアレスマウスである、請求項１に記載の試験方法。
  3. 　前記ヘアレスマウスの遺伝的背景がC57BL/6である、請求項１に記載の試験方法。
  4. 　前記ヘアレスマウスが、活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスに、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを戻し交配して得られたヘアレスRETマウス、又は該マウスを兄妹交配して得られたヘアレスRETマウスである、請求項３に記載の試験方法。
  5. 　前記遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスが、Hos:HRMヘアレスマウスにC57BL/6マウスを戻し交配して得られたマウス、又は該マウスを兄妹交配して得られたマウスである、請求項４に記載の試験方法。
  6. 　以下のステップ（１）及び（２）を含む、黒皮症毒性の試験方法：
    　（１）活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスに、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを戻し交配して得られたヘアレスRETマウス、又は該マウスを兄妹交配して得られたヘアレスRETマウスの皮膚（但し、尾の皮膚を除く）に被験物質を適用するステップ、
    　（２）前記ヘアレスRETマウスの前記皮膚における黒皮症の誘発の有無及び／又は程度を評価し、評価結果に基づき被験物質の黒皮症毒性を判定するステップ。
  7. 　前記皮膚が背、腹又は頭の皮膚である、請求項６に記載の試験方法。
  8. 　以下のステップ（１）～（３）を含む、白斑毒性と黒皮症毒性の同時試験方法：
    　（１）活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスに、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを戻し交配して得られたヘアレスRETマウス、又は該マウスを兄妹交配して得られたヘアレスRETマウスの尾と、皮膚（但し、尾の皮膚を除く）とに被験物質を適用するステップ、
    　（２）前記ヘアレスRETマウスの尾における白斑の誘発の有無及び／又は程度を評価し、評価結果に基づき被験物質の白斑毒性を判定するステップ、
    　（３）前記ヘアレスRETマウスの前記皮膚における黒皮症の誘発の有無及び／又は程度を評価し、評価結果に基づき被験物質の黒皮症毒性を判定するステップ。
  9. 　前記皮膚が背、腹又は頭の皮膚である、請求項８に記載の試験方法。
  10. 　前記活性化型RET遺伝子がc-RET遺伝子とRFP遺伝子のハイブリットによって生じたRFP-RET遺伝子である、請求項４、６～９のいずれか一項に記載の試験方法。
  11. 　前記活性化型RET遺伝子がメタロチオネインIプロモーターに連結している、請求項４、６～１０のいずれか一項に記載の試験方法。
  12. 　前記RET/o-トランスジェニックマウスが、192系統RET/o-トランスジェニックマウス、242系統RET/o-トランスジェニックマウス、304系統RET/o-トランスジェニックマウス、又は304/B6系統RET/o-トランスジェニックマウスである、請求項４、６～１１のいずれか一項に記載の試験方法。
  13. 　以下の（ｉ）又は（ｉｉ）のマウスからなる、白斑毒性及び黒皮症毒性に感受性のマウス：
    　（ｉ）活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスに、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを戻し交配して得られたヘアレスRETマウス、
    　（ｉｉ）（ｉ）のマウスを兄妹交配して得られたヘアレスRETマウス。
  14. 　前記活性化型RET遺伝子がc-RET遺伝子とRFP遺伝子のハイブリットによって生じたRFP-RET遺伝子である、請求項１３に記載の感受性マウス。
  15. 　前記活性化型RET遺伝子がメタロチオネインIプロモーターに連結している、請求項１３又は１４に記載の感受性マウス。
  16. 　前記RET/o-トランスジェニックマウスが、192系統RET/o-トランスジェニックマウス、242系統RET/o-トランスジェニックマウス、304系統RET/o-トランスジェニックマウス、又は304/B6系統RET/o-トランスジェニックマウスである、請求項１３～１５のいずれか一項に記載の感受性マウス。
  17. 　メラニン産生能を有するヘアレスマウスの尾から採取されるメラノサイト又はその継代細胞を用いて被験物質の白斑毒性を評価することを特徴とするin vitro試験方法。
  18. 　活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスに、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを戻し交配して得られたヘアレスRETマウス、又は該マウスを兄妹交配して得られたヘアレスRETマウスの皮膚（但し、尾の皮膚を除く）から採取されるメラノサイト又はその継代細胞を用いて被験物質の黒皮症毒性を評価することを特徴とするin vitro試験方法。
  19. 　以下のステップ（ａ）～（ｄ）を含む、白斑毒性及び／又は黒皮症毒性を評価するためのin vitro試験方法：
    　（ａ）活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスに、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを戻し交配して得られたヘアレスRETマウス、又は該マウスを兄妹交配して得られたヘアレスRETマウスの皮膚メラノサイトを含む試料を用意し、試験群と対照群に分けるステップ、
    　（ｂ）試験群を被験物質の存在下で培養するステップ、
    　（ｃ）ステップ（ｂ）後の試験群と、被験物質が非存在下であること以外は同一の条件で培養した対照群について、c-Met、RFP-RET、c-Ret、Enothelin receptor B (Ednrb)、c-kit、Mc1r、Mitf-m、Tyrosinase、Tyrosinase-realted protein-2、TGF-beta type receptor 2 (Tgfr2)、Fibroblast growth factor (Fgfr)、Bcl2、p53、survivin、CCAAT-enhancer-binding protein homologous protein (CHOP)、Glutamate cysteine ligase (GCLC)、NF-E2 related factor２(Nrf2)、Heat shock protein (HSP) 70、Foxp1、Foxp3、CCR6、Bach2、NACHT leucine-rich-repeat protein 1 (Nalp)、Cytotoxic T-lymphocyte antigen-4 (Ctla4)及びGranzyme B(GZMB)からなる群より選択される一以上のマーカー分子の発現又は活性を検出するステップ、
    　（ｄ）試験群と対照群の間で検出結果を比較し、比較結果に基づき被験物質の白斑毒性及び／又は黒皮症毒性を判定するステップ。
  20. 　以下のステップ（Ａ）～（Ｄ）を含む、白斑毒性及び／又は黒皮症毒性を評価するためのin vitro試験方法：
    　（Ａ）活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウス由来のメラノサイト系細胞株を用意し、試験群と対照群に分けるステップ、
    　（Ｂ）試験群を被験物質の存在下で培養するステップ、
    　（Ｃ）ステップ（Ｂ）後の試験群と、被験物質が非存在下であること以外は同一の条件で培養した対照群について、c-Met、RFP-RET、c-Ret、Enothelin receptor B (Ednrb)、c-kit、Mc1r、Mitf-m、Tyrosinase、Tyrosinase-realted protein-2、TGF-beta type receptor 2 (Tgfr2)、Fibroblast growth factor (Fgfr)、Bcl2、p53、survivin、CCAAT-enhancer-binding protein homologous protein (CHOP)、Glutamate cysteine ligase (GCLC)、NF-E2 related factor２(Nrf2)、Heat shock protein (HSP) 70、Foxp1、Foxp3、CCR6、Bach2、NACHT leucine-rich-repeat protein 1 (Nalp)、Cytotoxic T-lymphocyte antigen-4 (Ctla4)及びGranzyme B(GZMB)からなる群より選択される一以上のマーカー分子の発現又は活性を検出するステップ、
    　（Ｄ）試験群と対照群の間で検出結果を比較し、比較結果に基づき被験物質の白斑毒性及び／又は黒皮症毒性を判定するステップ。
  21. 　以下のステップ（ａ）～（ｃ）を含む、白斑の予防又は治療用薬剤のスクリーニング方法：
    　（ａ）メラニン産生能を有するヘアレスマウスの尾に白斑誘発処理を施すステップ、
    　（ｂ）前記ヘアレスマウスに被験物質を投与するステップ、
    　（ｃ）被験物質の予防効果又は治療効果を判定するステップ。
  22. 　以下のステップ（Ａ）～（Ｃ）を含む、黒皮症の予防又は治療用薬剤のスクリーニング方法：
    　（Ａ）活性化型RET遺伝子がヘテロ型に遺伝子導入されたRET/o-トランスジェニックマウスに、遺伝的背景がC57BL/6のヘアレスマウスを戻し交配して得られたヘアレスRETマウス、又は該マウスを兄妹交配して得られたヘアレスRETマウスの皮膚（但し、尾の皮膚を除く）に黒皮症誘発処理を施すステップ、
    　（Ｂ）前記ヘアレスRETマウスに被験物質を投与するステップ、
    　（Ｃ）被験物質の予防効果又は治療効果を判定するステップ。
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