WO2017130802A1

WO2017130802A1 - 間葉系幹細胞を含む細胞シート組成物、及び、それを用いた管腔臓器の治癒方法

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Publication number: WO2017130802A1
Application number: PCT/JP2017/001432
Authority: WO
Inventors: 信雄金井; 安広丸屋; 蔵人腰野; 前田　真法; 岡野　光夫
Original assignee: Tokyo Women's Medical University
Current assignee: Tokyo Women's Medical University
Priority date: 2016-01-29
Filing date: 2017-01-17
Publication date: 2017-08-03
Anticipated expiration: 2018-07-29
Also published as: JP6884394B2; US20190054123A1; CN108697739A; JPWO2017130802A1

Abstract

本発明は、管腔臓器の創傷部からの漏出を治癒又は予防するための、細胞シート組成物を提供することを課題とする。また、本発明は、細胞シート組成物を管腔臓器の創傷部に貼付し、該管腔臓器の該創傷部からの漏出を治癒又は予防する方法を提供することを課題とする。　本発明は、管腔臓器の創傷部からの漏出を治癒又は予防するために、前記管腔臓器の前記創傷部に貼付されることを特徴とする、間葉系幹細胞を含む細胞シート組成物を提供する。また、本発明は、間葉系幹細胞を含む細胞シート組成物を、管腔臓器の創傷部に貼付し、前記管腔臓器の前記創傷部からの漏出を治癒又は予防する方法を提供する。

Description

間葉系幹細胞を含む細胞シート組成物、及び、それを用いた管腔臓器の治癒方法

　本発明は、管腔臓器の創傷部からの漏出を治癒又は予防するための間葉系幹細胞を含む細胞シート組成物に関する。また、本発明は、間葉系幹細胞を含む細胞シート組成物を、管腔臓器の創傷部に貼付し、前記管腔臓器の前記創傷部からの漏出を治癒又は予防する方法に関する。

　悪性腫瘍が消化管に生じた場合、早期であれば組織への浸潤が少なく、内視鏡を用いた内視鏡的粘膜切除術（ＥＭＲ：Ｅｎｄｏｓｃｏｐｉｃ　Ｍｕｃｏｓａｌ　Ｒｅｓｅｃｔｉｏｎ）又は、内視鏡的粘膜切開剥離術（ＥＳＤ：Ｅｎｄｏｓｃｏｐｉｃ　Ｓｕｂｍｕｃｏｓａｌ　Ｄｉｓｓｅｃｔｉｏｎ）等により、表層の悪性腫瘍のみを切除することが可能である。例えば、食道の場合、初期の癌であれば内視鏡を使用したＥＳＤにより病変部を切除することができる。しかし、ＥＳＤ後に切除した部位に潰瘍が生じ、食道の狭窄がしばしば引き起こされる。狭窄が生じるのを予防する目的で、口腔粘膜上皮細胞シートを貼付する方法が開発されている（非特許文献１）。口腔粘膜上皮細胞シートとは、患者本人の口腔粘膜の組織片を採取し、得られた口腔粘膜上皮細胞を、温度応答性培養皿上で培養し、下限臨界温度で培養することで得られた口腔粘膜上皮細胞シートを、ＥＳＤ後の食道内壁の切除面に移植する再生医療の一つである。これにより、食道の狭窄が予防される。

　しかし、進行がんでは、悪性腫瘍が組織の奥深く浸潤して病変が広範に及んでしまっているために、病変部を含む周囲の組織を切除する必要が生じ、病変部を切除後は、消化管の残存部を縫合又は吻合する手術が必要となる。その際、問題となるのが消化管縫合不全である。

　消化管縫合不全とは、消化管吻合後の吻合部が治癒しないで、離開してしまう状態のことで、腸管内容物が胸腔内や腹腔内に漏出し、重篤な感染症を起こして、時に致死的な状態になる可能性のある消化管術後の合併症の一つである。縫合不全は、吻合部組織の治癒過程（修復期）が妨げられることで起こるが、修復期の治癒過程を妨げる要因としては、術前低栄養状態やステロイドなどの薬剤投与、慢性疾患（糖尿病、肝・腎障害等）による全身的な要因と吻合部周囲の血行障害や過緊張、感染症などの局所的な要因が挙げられる。縫合不全を予防するために、術前の全身状態をより良い状態に改善して手術に臨む努力や、自動吻合機の開発、部位・状況に応じた適切な吻合法の選択、吻合部の緊張の低減、的確な血流の確保など様々な工夫が行われているが、未だ、縫合不全を完全に予防することは出来ていないのが現状である。

　この課題を解決する手段として、組織の創傷治癒を促進する作用のある間葉系幹細胞や脂肪由来幹細胞を用いた動物実験の報告がなされているが、その移植方法の大部分は静脈注射や局所注射などの細胞注入法であった。一般に消化管吻合部の創傷治癒の過程は、術後３～４日までの炎症期と、術後７日程までの修復期に分けられる。術後３～４日までの炎症期には、吻合部粘膜下組織の再構築のために、既存のコラーゲンを炎症細胞由来のコラゲナーゼが分解し、その後の修復期で線維芽細胞が増殖し、コラーゲンが産生されて増加し、術後７日程まで組織の連続性と物理的抗張力が維持される（非特許文献２）。そのため、吻合部位に細胞を注入する移植法では、細胞がその場に保持されにくいだけでなく、注入した細胞が炎症期のタンパク分解酵素であるコラゲナーゼに暴露されるため、コラゲナーゼの細胞傷害により組織修復能が低下する可能性があった。

　また、近年、術前化学放射線療法や分子標的療法など局所および全身への強力な治療が進歩して、消化器癌の再発や術後生存率には寄与する一方、創傷治癒遅延に伴う術後縫合不全の発生の増加が問題となっていた。

Ｏｈｋｉ　Ｔ．，ｅｔ　ａｌ．Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　ｏｆ　ｏｅｓｏｐｈａｇｅａｌ　ｕｌｃｅｒａｔｉｏｎｓ　ｕｓｉｎｇ　ｅｎｄｏｓｃｏｐｉｃ　ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｔｉｓｓｕｅ－ｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄ　ａｕｔｏｌｏｇｏｕｓ　ｏｒａｌ　ｍｕｃｏｓａｌ　ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ　ｃｅｌｌ　ｓｈｅｅｔｓ　ｉｎ　ａ　ｃａｎｉｎｅ　ｍｏｄｅｌ．Ｇｕｔ．２００６；５５（１２）：１７０４－１７１０．Ｈｅｎｄｒｉｋｓ　Ｔ．，Ｍａｓｔｂｏｏｍ　ＷＪ．Ｈｅａｌｉｎｇ　ｏｆ　ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ　ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ　ａｎａｓｔｏｍｏｓｅｓ．Ｐａｒａｍｅｔｅｒｓ　ｆｏｒ　ｒｅｐａｉｒ．Ｄｉｓ　Ｃｏｌｏｎ　Ｒｅｃｔｕｍ．１９９０　Ｏｃｔ；３３（１０）：８９１－９０１．

　上述のように、管腔臓器、特に消化管の縫合不全を予防したり治癒したりする技術の開発が試みられているが、未だ提供されるに至っていない。本発明は、管腔臓器の創傷部からの漏出を治癒又は予防するための、細胞シート組成物を提供することを課題とする。また、本発明は、細胞シート組成物を管腔臓器の創傷部に貼付し、該管腔臓器の該創傷部からの漏出を治癒又は予防する方法を提供することを課題とする。

　本発明者らは、上記課題を解決するために、種々の角度から検討を加えて研究開発を行ってきた。その結果、驚くべきことに、間葉系幹細胞を含む細胞シート組成物を管腔臓器の創傷部に貼付したところ、管腔臓器の創傷部からの漏出が治癒又は予防されることを見出した。また、すなわち、本発明は、以下のとおりである。

　［１］　管腔臓器の創傷部からの漏出を治癒又は予防するために、前記管腔臓器の前記創傷部に貼付されることを特徴とする、間葉系幹細胞を含む細胞シート組成物。
　［２］　前記間葉系幹細胞が、臍帯血、胎盤、骨髄、脂肪組織、滑膜、及び／又は、多能性幹細胞由来の間葉系幹細胞である、［１］に記載の細胞シート組成物。
　［３］　前記間葉系幹細胞が、脂肪由来幹細胞である、［１］又は［２］に記載の細胞シート組成物。
　［４］　前記創傷部が、縫合又は吻合された創傷部である、［１］～［３］のいずれか１項に記載の細胞シート組成物。
　［５］　貼付される部位が、前記管腔臓器の外壁である、［１］～［４］のいずれか１項に記載の細胞シート組成物。
　［６］　前記管腔臓器が、消化管である、［１］～［５］のいずれか１項に記載の細胞シート組成物。
　［７］　前記管腔臓器が、腸管である、［１］～［６］のいずれか１項に記載の細胞シート組成物。

　［８］　間葉系幹細胞を含む細胞シート組成物を、管腔臓器の創傷部に貼付し、前記管腔臓器の前記創傷部からの漏出を治癒又は予防する方法。
　［９］　前記間葉系幹細胞が、臍帯血、胎盤、骨髄、脂肪組織、滑膜、及び／又は、多能性幹細胞由来の間葉系幹細胞である、［８］に記載の方法。
　［１０］　前記間葉系幹細胞が、脂肪由来幹細胞である、［８］又は［９］に記載の方法。
　［１１］　前記創傷部が、縫合又は吻合された創傷部である、［８］～［１０］のいずれか１項に記載の方法。
　［１２］　貼付する部位が、前記管腔臓器の外壁である、［８］～［１１］のいずれか１項に記載の方法。
　［１３］　前記管腔臓器が、消化管である、［８］～［１２］のいずれか１項に記載の方法。
　［１４］　前記管腔臓器が、腸管である、［８］～［１３］のいずれか１項に記載の方法。

　本発明は、種々の要因により吻合部組織の治癒過程（修復期）が妨げられて起こる消化管縫合不全に対して、本発明の細胞シート組成物及びそれを用いた方法によって、組織修復能を最大限に発揮し、縫合不全を予防又は治癒する画期的な効果をもたらす。これによって、縫合不全により生じる人工肛門、腸瘻造設などの追加治療による患者ＱＯＬの著しい低下、多くの医療資源の投入などの社会的損失を軽減できる可能性がある。

図１は、脂肪由来幹細胞シート組成物の組織学的解析結果を示す図である。上段は細胞シート組成物を示す図である。中段は４層の積層シートの組織切片をヘマトキシリン・エオジン染色（HE染色）、下段はビメンチンを染色した図を示す。図２は、脂肪由来幹細胞の表面抗原を解析した図を示す。図３は、脂肪由来幹細胞の分化誘導能を示す図である。図４は、脂肪由来幹細胞の自己複製能を確かめるコロニー形成試験を示した図である。図５は、脂肪由来幹細胞シート組成物の移植後の生着を示す図である。図６Ａは、小腸吻合部の示す図である。図６Ｂは、小腸吻合部の潰瘍面積を示すグラフである。図７Ａは、小腸吻合部の血管新生を観察した図である。抗ＣＤ３１抗体によって免疫染色した。図７Ｂは、小腸吻合部の血管新生を観察した図である。抗ＣＤ３１抗体によって蛍光免疫染色した。図７Ｃは、小腸吻合部の血管新生をグラフ化した図であるである。

　本発明において、管腔臓器とは、管腔構造を有する臓器であって、例えば、消化管、血管系、膀胱、膣などが挙げられるが、好ましくは、消化管である。本発明において、消化管とは、口腔から肛門までを貫通している器官であって、例えば、食道、胃、小腸、大腸である。

　本明細書中において、「創傷」とは、組織又は臓器が傷ついた状態を広く意味し、例えば、熱傷、褥瘡、挫傷、切創、擦過傷、潰瘍、手術創、銃創、爆傷、刺創、杙創、咬創等が含まれる。本発明において、創傷とは、好ましくは、管腔臓器の切創、手術創、刺創、杙創、咬創であり、より好ましくは、手術創である。本発明において、手術創とは、外科手術の結果として形成される創傷を表し、例えば、メス、ハサミ、医療用レーザ、鉗子、スネア等を使用して形成される創傷であるが、外科手術で通常使用される器具によって形成される創傷であればよく、限定されない。本発明において、「創傷部」とは、組織又は臓器において、創傷部位を含むその周辺組織をいい、例えば、創傷部位を中心として半径１０ｃｍ以内、８ｃｍ以内、５ｃｍ以内、３ｃｍ以内、２ｃｍ以内である。創傷部の範囲、形状は、創傷の形状によって変わるため、限定されない。

　本発明において、管腔臓器の創傷部からの「漏出」とは、管腔臓器の内容物が、管腔臓器の外側へ漏れ出すことをいい、例えば、管腔臓器が消化管である場合、食物やその消化物等の固形物、胃液、唾液等の液体、空気等の気体が、創傷部から胸腔内又は腹腔内へ漏れ出すことをいう。特に、管腔臓器、例えば消化管に生じた癌であって、深層部まで浸潤している場合、消化管の一部を切除する必要がある。その場合、残った消化管を縫合又は吻合する必要がある。上述のように、消化管の縫合又は吻合された部分は、種々の事由により、内容物が漏出してしまう縫合不全が生じる場合がある。本発明は、管腔臓器、特に消化管において、縫合又は吻合された創傷部に、本発明の間葉系幹細胞を含む細胞シート組成物を貼付することにより、該創傷部の治癒が促進され、縫合不全が予防又は治癒される効果をもたらす。また、本発明を適用することにより、適用しない場合と比較して、有意に高い耐圧強度を示し、様々な物質が通過する消化管の縫合又は吻合部の強度の回復を促進する。これによって、術後の患者の予後及び生活の質（ＱＯＬ）の向上に寄与する。

　本発明において、管腔臓器の創傷部の縫合又は吻合の方法については、従来外科手術で用いられる方法であれば、特に限定されない。管腔臓器を縫合又は吻合する時に用いられる縫合糸は、溶解性又は非溶解性のいずれでも良いが、侵襲性の観点からは、溶解性の縫合糸の方が好ましい。縫合糸の太さは、創傷の大きさ、部位等によって適宜選択すればよい。

　本発明における「細胞シート組成物」とは、細胞培養基材上で培養し、細胞培養基材上から剥離することで得られる１層又は複数層のシート状の細胞群をいう。細胞シート組成物を得る方法としては、例えば、温度、ｐＨ、光等の刺激によって分子構造が変化する高分子を被覆した刺激応答性培養基材上で細胞を培養し、温度、ｐＨ、光等の刺激の条件を変えて刺激応答性培養基材表面を変化させることで、細胞同士の接着状態は維持しつつ、刺激応答性培養基材から細胞をシート状に剥離する方法や、任意の培養基材にて細胞を培養し、細胞培養基材の端部から物理的にピンセット等により剥離する方法等が挙げられる。好ましい形態としては、刺激応答性培養基材として、０～８０℃の温度範囲で水和力が変化するポリマーを表面に被覆した温度応答性培養基材を用いる方法である。温度応答性培養基材上で、ポリマーの水和力が弱い温度域で細胞を培養し、その後、培養液をポリマーの水和力が強い状態となる温度に変化させることで細胞を培養し、細胞をシート状に剥離して回収する方法である。その際、細胞は０～８０℃の温度範囲で水和力が変化するポリマーを表面に被覆した細胞培養基材上で、ポリマーの水和力の弱い温度域で培養する。その温度域とは通常、細胞を培養する温度、例えば３３℃～４０℃であることが好ましい。本発明に用いる温度応答性高分子はホモポリマー、コポリマーのいずれであってもよい。このような高分子としては、例えば、特開平２－２１１８６５号公報に記載されているポリマーが挙げられる。

　刺激応答性高分子、特に温度応答性高分子としてポリ（Ｎ－イソプロピルアクリルアミド）を用いた場合を例（温度応答性培養皿）に説明する。ポリ（Ｎ－イソプロピルアクリルアミド）は３１℃に下限臨界溶解温度を有するポリマーとして知られ、遊離状態であれば、水中で３１℃以上の温度で脱水和を起こしポリマー鎖が凝集して白濁する。逆に３１℃以下の温度ではポリマー鎖は水和し、水に溶解した状態となる。本発明では、このポリマーがシャーレなどの基材表面に被覆されて固定されたものである。したがって、３１℃以上の温度であれば、培養基材表面のポリマーも同じように脱水和するが、ポリマー鎖が培養基材表面に固定されているため、培養基材表面が疎水性を示すようになる。逆に、３１℃以下の温度では、培養基材表面のポリマーは水和するが、ポリマー鎖が培養基材表面に被覆されているため、培養基材表面が親水性を示すようになる。このときの疎水的な表面は細胞が付着し、増殖できる適度な表面であり、また、親水的な表面は細胞が付着できない表面となる。そのため、該基材を３１℃以下に冷却すると、細胞が基材表面から剥離する。細胞が培養面一面にコンフルエントになるまで培養されていれば、該基材を３１℃以下に冷却することによって細胞シート組成物が回収できる。温度応答性培養皿は、同一の効果を有するものであれば限定されるものではないが、例えば、セルシード社が市販するＵｐ　Ｃｅｌｌ（登録商標）などが挙げられる。

　本発明に用いられる細胞の動物種の由来は、例えば、ヒト、ラット、マウス、モルモット、マーモセット、ウサギ、イヌ、ネコ、ヒツジ、ブタ、ヤギ、サル、チンパンジーあるいはそれらの免疫不全動物などの哺乳類動物、鳥類、爬虫類、両生類、両生類、魚類、昆虫等が挙げられる。本発明の細胞シート組成物をヒトの治療に用いる場合はヒト由来、ブタの治療に用いる場合はブタ由来、サルの治療に用いる場合はサル由来、チンパンジーの治療に用いる場合はチンパンジー由来の細胞を用いる方が好ましい。また、治療を行うのがヒトである場合、患者本人から採取した細胞であってもよく（自家細胞）、他人の細胞から採取した細胞を用いてもよく（他家細胞）、市販の細胞株であってもよい。

　本明細書中において、「間葉系幹細胞」とは、未分化な細胞で、脂肪細胞、軟骨細胞、骨細胞、筋芽細胞、線維芽細胞、ストローマ細胞、及び／又は腱細胞等のさまざまな間葉系の細胞へ分化する能力を持ち、且つ自己複製の能力を持つ細胞をいう。Ｔｈｅ　Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ　Ｓｏｃｉｅｔｙ　ｆｏｒ　Ｃｅｌｌｕｌａｒ　Ｔｈｅｒａｐｙ　（ＩＳＣＴ）において、間葉系幹細胞を既定する以下の３つの最小限の基準；（１）標準的な培養条件でプラスチックに接着して培養できること、（２）免疫学的特徴として、ＣＤ１０５、ＣＤ７３、ＣＤ９０が陽性、ＣＤ４５、ＣＤ３４、ＣＤ１４又はＣＤ１１ｂ、ＣＤ７９ａ又はＣＤ１９、ＨＬＡ－ＤＲが陰性であること、（３）ｉｎ　ｖｉｔｒｏ分化系で骨芽細胞、脂肪細胞、軟骨芽細胞への分化能を示すこと、を提唱するが、本発明においては、これに限定されない。その他、ＣＤ２９、ＣＤ４４、ＣＤ１０６及びＳＴＲＯ－１も間葉系幹細胞を示す陽性マーカーとして挙げられる。本発明において、「間葉系幹細胞」は、可能な限り最も広く解釈される。

　間葉系幹細胞は、生体内においては、骨髄、脂肪組織、臍帯血、歯髄、滑膜、胎盤等の組織から単離される細胞であって、公知の方法を用いて単離することができる。

　例えば、骨髄由来間葉系幹細胞は、骨髄から採取した骨髄液を、密度勾配遠心法にて血球系細胞を分離し、プラスチック培養皿に播種し、３７℃、５％ＣＯ_２環境で培養することで、接着する細胞として単離することが可能である。

　脂肪組織由来間葉系幹細胞（脂肪組織由来幹細胞；Ａｄｉｐｏｓｅ　ｄｅｒｉｖｅｄ　ｓｔｅｍ　ｃｅｌｌ）は、採取した脂肪組織を細分化（ミンス（ｍｉｎｃｅ））し、コラゲナーゼタイプＩＩによって、３７℃１時間処理をして組織を消化し、培地を加えて遠心分離する。その後、沈殿した細胞を基礎培地で洗浄し、セルストレーナー等のメッシュにてろ過し、プラスチック培養皿に播種して、３７℃、５％ＣＯ_２環境で培養することで、接着する細胞として単離することが可能である。その他の組織由来の間葉系幹細胞を単離する方法については、公知の方法を用いればよく、限定されない。

　間葉系幹細胞は、多能性幹細胞から分化誘導して得られた間葉系幹細胞であってもよい。本明細書において、多能性幹細胞とは、自己複製能と多分化能を有する細胞であり、体を構成するあらゆる細胞を形成する能力（ｐｌｕｒｉｏｐｏｔｅｎｔ）を備える細胞をいう。自己複製能とは、１つの細胞から自分と同じ未分化な細胞を２つ作る能力のことをいう。本発明で用いられる多能性幹細胞には、胚性幹細胞（ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ　ｓｔｅｍ　ｃｅｌｌ：ＥＳ細胞）、胚性癌腫細胞（ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ　ｃａｒｃｉｎｏｍａ　ｃｅｌｌ：ＥＣ細胞）、栄養芽幹細胞（ｔｒｏｐｈｏｂｌａｓｔ　ｓｔｅｍ　ｃｅｌｌ：ＴＳ細胞）、エビブラスト幹細胞（ｅｐｉｂｌａｓｔ　ｓｔｅｍ　ｃｅｌｌ：ＥｐｉＳ細胞）、胚性生殖細胞（ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ　ｇｅｒｍ　ｃｅｌｌ：ＥＧ細胞）、多能性生殖細胞（ｍｕｌｔｉｐｏｔｅｎｔ　ｇｅｒｍｌｉｎｅ　ｓｔｅｍ　ｃｅｌｌ：ｍＧＳ細胞）、人工多能性幹細胞（ｉｎｄｕｃｅｄ　ｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔ　ｓｔｅｍ　ｃｅｌｌ：ｉＰＳ細胞）などが含まれる。多能性幹細胞より、公知の方法（例えば、特開２０１２－１２０４８６、Ｆｕｋｕｔａ　Ｍ．，ｅｔ　ａｌ．，Ｄｅｒｉｖａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ　ｓｔｒｏｍａｌ　ｃｅｌｌｓ　ｆｒｏｍ　ｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔ　ｓｔｅｍ　ｃｅｌｌｓ　ｔｈｒｏｕｇｈ　ａ　ｎｅｕｒａｌ　ｃｒｅｓｔ　ｌｉｎｅａｇｅ　ｕｓｉｎｇ　ｓｍａｌｌ　ｍｏｌｅｃｕｌｅ　ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ　ｗｉｔｈ　ｄｅｆｉｎｅｄ　ｍｅｄｉａ．ＰＬＯＳ　ＯＮＥ，２０１４；９（１２）：ｅ１１２２９１．等）を用いて誘導された間葉系幹細胞を用いてもよい。

　間葉系幹細胞の分化誘導される能力については、公知の方法によって確認すればよい。例えば、間葉系幹細胞から脂肪細胞への分化誘導の確認には、インスリン及びデキサメサゾンを加えた培地で培養して、Ｏｉｌ　Ｒｅｄ　Ｏ染色によって確認すればよい。例えば、間葉系幹細胞から骨細胞への分化誘導では、アスコルビン酸、β－グリセロリン酸、デキサメサゾンを培地に添加して培養し、アルカリフォスファターゼ染色で確認すればよい。例えば、間葉系幹細胞から筋分化誘導には、ウマ血清を加えた培地で培養すればよく、筋細胞に特異的な融合細胞が出現することを確認すればよい。その他、間葉系幹細胞からの分化誘導は、公知の方法を用いればよく、特に限定されない。分化誘導の有無の確認も公知の方法を用いればよく、例えば、分化誘導後にのみ発現する遺伝子又はタンパク質を、リアルタイムPCR法、フローサイトメーター等によって検出すればよい。

　本発明に使用される間葉系幹細胞の由来は限定されないが、骨髄又は脂肪組織であれば、採取方法、分離方法が広く確立されており、好ましい。脂肪組織由来であれば、骨髄由来と比較して、採取される間葉系幹細胞の数が多く、好ましい。

　細胞の由来によっては、細胞培養基材上に接着しにくい細胞があり、そのような場合は、例えば、コラーゲン、ラミニン、ラミニン５、フィブロネクチン、マトリゲル等の細胞接着性タンパク質を単独又は２種以上の混合物を予め被覆した細胞培養基材上で細胞を培養することができる。これらの細胞接着性タンパク質の被覆方法は常法に従えば良く、例えば、細胞接着性タンパク質を含む水溶液を細胞培養基材表面に塗布し、その後その水溶液を除去し、リンスする方法等が挙げられる。

　本発明において、細胞シート組成物に含まれる間葉系幹細胞の数は、貼付する創傷の大きさ、度合いによって変化するため、限定されない。また、本発明の細胞シート組成物に含まれる間葉系幹細胞の割合も限定されないが、例えば、３０％以上、４０％以上、５０％以上、５５％以上、６０％以上、６５％以上、７０％以上、７５％以上、８０％以上、８５％以上、９０％以上、９３％以上、９５％以上、９７％以上、９８％以上、９９％以上であってもよい。細胞シート組成物に含まれる間葉系幹細胞の割合が高ければ高いほど、管腔臓器の創傷部の漏出を予防又は治療する効果が、より高くなる。

　細胞シート組成物を構成する細胞としては、間葉系幹細胞以外の細胞が含まれてもよく、例えば、血管内皮細胞、血管内皮前駆細胞、線維芽細胞、上皮系細胞、間質細胞等、移植する部位、目的によって適宜選択すればよい。また、間葉系幹細胞を採取した組織由来の細胞が含まれていても良い。

　本発明において、細胞シート組成物を作製するために播種する細胞数は動物種や細胞種によって異なるが、例えば、０．３×１０^４～１０×１０^６個／ｃｍ^２であってもよく、０．５×１０^４～８×１０^６個／ｃｍ^２であってもよく、０．７×１０^４～５×１０^６個／ｃｍ^２であってもよい。本発明においては、細胞シート組成物を温度応答性培養基材から剥離して回収するためには、細胞が付着し、コンフルエント又はサブコンフルエント状態となった培養基材の温度を、被覆ポリマーの上限臨界溶解温度以上若しくは下限臨界溶解温度以下にすることによって剥離させることで得られる。その際、細胞シート組成物の作製は、培養液中において行うことも、その他の等張液中において行うことも可能であり、目的に合わせて選択することができる。細胞シート組成物をより早く、高効率に剥離、回収するために、培養基材を軽くたたいたり揺らしたりする方法、ピペットを用いて培地を撹拌する方法、ピンセットを用いる方法等を単独又は併用して用いてもよい。温度以外の培養条件は常法に従えばよい。例えば、使用する培地については公知のウシ胎児血清（ＦＢＳ）等の血清が添加されている培地でもよく、無血清培地を用いてもよい。

　本発明に用いられる細胞シート組成物の作製用の細胞培養基材の形状は、例えば、ディッシュ、マルチプレート、フラスコ、又は平膜状などの形状のものを用いることができる。細胞培養基材の材料としては、通常、細胞培養に用いられるガラス、改質ガラス、ポリスチレン、ポリメチルメタクリレート、ポリカーボネート等の化合物や、一般に形態付与が可能である物質、例えば、上記以外の高分子化合物、セラミックス類などが挙げられる。

　本発明に用いられる細胞シート組成物の作製用の細胞培養基材は、細胞が接着する領域と細胞が接着しない領域の両方とを同一培養面上に備えた細胞培養基材を用いてもよく、例えば、複数の円形の細胞接着領域と、それ以外の細胞を接着しない領域とを同一培養面に備えた細胞培養基材を用いることで一度に複数の細胞シートを作製することが可能である。この場合、細胞接着領域の形状は円形、正方形、三角形、長方形等、目的に応じて所望の形状であってよく、その大きさも適宜変更することができる。細胞が接着しない領域を設ける方法としては特に限定されないが、例えば細胞と親和性の低い細胞非付着性高分子である、ポリ－Ｎ－アクリロイルモルホリン、ポリアクリルアミド、ポリジメチルアクリルアミド、ポリエチレングリコール、セルロース等の親水性高分子、又はシリコーン高分子、フッ素高分子等の強疎水性高分子等を被覆する方法等が挙げられる。

　本発明における細胞シート組成物は、従来、接着性細胞を回収する際に用いられるディスパーゼ、トリプシン等のタンパク質分解酵素を用いないため、細胞表面に発現するタンパク質に損傷をほとんど受けていない。そのため、細胞培養基材から剥離された細胞シート組成物の下面（細胞培養基材と接触していた側の面）は、損傷を受けていない接着性タンパク質を豊富に有しており、また、細胞－細胞間のデスモゾーム構造が保持されている。このような構造を有していることにより、細胞シート組成物は生体患部に貼付することや、細胞シート組成物を積層することに適している。タンパク質分解酵素であるディスパーゼは、細胞－細胞間のデスモソーム構造を１０～４０％保持した状態で細胞を剥離させることができることで知られているが、細胞－培養基材間に存在する基底膜様タンパク質等も同時に破壊してしまう。これに対して、本発明に用いられる細胞シート組成物は、デスモゾーム構造及び基底膜様タンパク質の両者を６０％以上残存された状態で剥離・回収可能であり、上述したような種々の効果を得ることができる。

　本発明の細胞シート組成物は、複数の細胞シート組成物を積層した積層化細胞シート組成物を用いても良い。本発明において、積層化細胞シート組成物を用いた場合、貼付する細胞数が多くなり、管腔臓器の創傷部の漏出を予防又は治療する効果がより高くなる。積層化細胞シート組成物を得る方法としてはピペット等によって培養液中に浮かんでいる細胞シート組成物を培養液ごと吸い取り、別の培養皿の細胞シート組成物上に放出し、液体培地の流れによって積層する方法、細胞移動治具を用いて積層する方法等が挙げられる。本発明の積層化細胞シート組成物を製造する方法では、細胞移動治具を用いる方法の方が、細胞シート組成物を損傷させることなく積層することが可能となるため、好ましい。細胞移動治具は、細胞シート組成物を捕捉できる機能を有するものであればよく、例えば、材料としては、ポリビニリデンジフルオライド（ＰＶＤＦ）、シリコーン樹脂、ポリビニルアルコール、ウレタン、セルロース及びその誘導体、キチン、キトサン、コラーゲン、ゼラチン、フィブリンゲル等を用いることができる。細胞移動治具の形状としては、例えば、スタンプ型、膜状、多孔膜状、不織布状、織布状の形状で使用される。本発明の実施形態では、細胞移動治具は細胞シート組成物を破損することなく回収し、別の細胞シート組成物に積層する機能を有していればよく、細胞接着性タンパク質、細胞接着性ペプチド、又は親水性ポリマーの１種、若しくは２種以上からなる細胞付着部を有する培養細胞移動治具であることが好ましい。例えば、特開２００５－１７６８１２号公報には細胞付着部を有したスタンプ型の培養細胞移動治具を開示している。該スタンプ型の培養細胞移動治具は、その細胞付着部によって細胞シート組成物を破損することを防止し、細胞シート組成物が培養皿から剥離するときに起こる細胞シート組成物の縮みを防止しながら回収を可能とする。該細胞移動治具により、細胞シート組成物を別の細胞シート組成物上に容易に移動させつつ、細胞シート組成物を縮ませることなく積層することができる。細胞シート組成物を縮ませずに積層することにより、細胞シート組成物同士が隙間なく積層され、高密度な三次元構造を有する積層化細胞シート組成物を得ることができる。

　本発明の細胞シート組成物を製造する方法について、さらに、アスコルビン酸を添加した培地で培養してもよい（参考：Ｋａｔｏ　Ｙ，ｅｔ　ａｌ．Ａｌｌｏｇｅｎｅｉｃ　Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ　ｏｆ　ａｎ　Ａｄｉｐｏｓｅ－Ｄｅｒｉｖｅｄ　Ｓｔｅｍ　Ｃｅｌｌ　Ｓｈｅｅｔ　Ｃｏｍｂｉｎｅｄ　Ｗｉｔｈ　Ａｒｔｉｆｉｃｉａｌ　Ｓｋｉｎ　Ａｃｃｅｌｅｒａｔｅｓ　Ｗｏｕｎｄ　Ｈｅａｌｉｎｇ　ｉｎ　ａ　Ｒａｔ　Ｗｏｕｎｄ　Ｍｏｄｅｌ　ｏｆ　Ｔｙｐｅ　２　Ｄｉａｂｅｔｅｓ　ａｎｄ　Ｏｂｅｓｉｔｙ．Ｄｉａｂｅｔｅｓ．２０１５　Ａｕｇ；６４（８）：２７２３－３４）。アスコルビン酸を添加した培地で培養することによって得られた、間葉系幹細胞を含む細胞シート組成物は、添加せずに培養して得られた細胞シート組成物よりも強度が高く、破れにくい細胞シート組成物が得られる。これにより、より、移植に適した細胞シート組成物が得られる。

　細胞シート組成物には、さらに血管新生を誘導する因子を添加してもよい。血管新生を誘導する因子としては、例えば、血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）、線維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ）、アンジオポエチン、血小板由来増殖因子（ＰＤＧＦ）、トランスフォーミング増殖因子－β（ＴＧＦ－β）、マトリックスメタロプロテアーゼ（ＭＭＰ）、ＶＥ－カドヘリン、エフリン、プラスミノーゲンアクチベータ、誘導型一酸化窒素合成酵素（ｉＮＯＳ）、シクロオキシゲナーゼ－２（ＣＯＸ－２）、胎盤成長因子（ＰｌＧＦ）等である。これらが細胞シート組成物に含まれることによって、移植部位における血管新生もより促進されることとなる。

　本発明の細胞シート組成物を貼付する部位は創傷部であればよく、好ましくは、縫合又は吻合された創傷部である。縫合又は吻合されている部位であれば、創傷によって炎症をおこした組織同士が密接し、そこに本発明の細胞シート組成物が貼付されることで、治癒効果が高まる。本発明の細胞シートが貼付されることによって、創傷部のコラーゲン等の産生能が高まり、管腔臓器の創傷部周辺の再構築が促進され、管腔内部の圧力上昇にも耐えうる程、創傷部の治癒が促進される。また、本発明の細胞シート組成物を貼付する部位は、管腔臓器の内壁及び／又は外壁であってもよく、外科手術時の貼付のしやすさの点からは外壁のみであってもよい。

　以下に、本発明を実施例に基づいて更に詳しく説明するが、これらは本発明を何ら限定するものではない。なお、本実施例におけるミニブタを用いた実験プロトコールは、東京女子医科大学の動物実験に関する倫理委員会によって承認されたものであり、米国国立衛生研究所（ＮＩＨ）によって刊行された「実験動物の管理と使用に関する指針」（１９９６年改定版）に沿って実施された。

＜使用した動物・試薬・キット＞
・ミニブタメス（月齢５～６カ月、ＮＩＢＳ系ミニブタ、日本生物科学研究所）
・ペニシリン・ストレプトマイシン（ＩＮＶＩＴＲＯＧＥＮ、＃１５１４０１２２）
・ウシ胎児血清（ＦＢＳ；ジャパンバイオシーラム社、＃７３１０６－２３Ｒ１５０１）
・Ｔｒｙｐｓｉｎ－ＥＤＴＡ（×１）（ナカライテスク社、＃３２７７７－４４）
・Ｌ－アスコルビン酸りん酸エステルマグネシウム塩ｎ水和物（和光純薬社、＃０１３－１９６４１）
・ポピドンヨード（イソジン（登録商標）、明治製菓社、＃５０４００）
・コラゲナーゼ（ＳＥＲＶＡ社、＃１７４６５　ＮＢ　４Ｇ　Ｐｒｏｖｅｄ　Ｇｒａｄｅ）
・蒸留水（大塚製薬社）
・ＲＮｅａｓｙ（登録商標）　Ｆｉｂｒｏｕｓ　Ｔｉｓｓｕｅ　Ｍｉｎｉ　Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ社、＃７４７０４）
・マイトマイシンC（和光純薬工業社、＃１３４－０７９１１）
・Ｈｅｐａｔｏｃｙｔｅ　Ｇｒｏｗｔｈ　Ｆａｃｔｏｒ（Ｈｅａｐａｐｏｉｅｔｉｎ　Ａ，　Ｓｃａｔｔｅｒ　Ｆａｃｔｏｒ）（ＨＧＦ）　ＥＬＩＳＡ　Ｋｉｔ（ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，ｏｎｌｉｎｅ．Ｃｏｍ社、＃ＡＢＩＮ３６７４１２）
・ＦＧＦ　ｂａｓｉｃ　Ｐｉｇ　ＥＬＩＳＡ　Ｋｉｔ（アブカム社、＃ａｂ１５６４６７）

＜使用した抗体＞
・Ａｌｅｘａ　Ｆｌｕｏｒ（登録商標）６４７　Ｍｏｕｓｅ　Ａｎｔｉ－Ｐｉｇ　ＣＤ２９（ＢＤ　Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ、＃５６１４９６）
・Ａｎｔｉ－ＣＤ４４　ａｎｔｉｂｏｄｙ［ＩＭ７］（ＦＩＴＣ）（アブカム社、＃ａｂ１９６２２）
・ＡＰＣ　Ｍｏｕｓｅ　Ａｎｔｉ－Ｈｕｍａｎ　ＣＤ９０（ＢＤ　Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ社、＃５６１９７１）
・ＣＤ１０５　Ｍｓ　ｍＡｂ　ｔｏ　ＣＤ１０５（アブカム社、＃ａｂ６９７７２）
・ＰＥ　Ｍｏｕｓｅ　Ａｎｔｉ－Ｒａｔ　ＣＤ３１（ＢＤ　Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ社、＃５５５０２７）
・Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ　Ａｎｔｉｂｏｄｙ　ｔｏ　ＣＤ４５／ＬＣＡ（ＣＤ４５Ｒ）－ＰＥ（Ａｃｒｉｓ　Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，　Ｉｎｃ．社、＃ＳＭ５６３Ｒ）
・ＣＤ３１抗体；Ａｎｔｉ－ＣＤ３１　ａｎｔｉｂｏｄｙ（アブカム社、＃ａｂ２８３６４）
・ＣＤ２９ネガティブコントロール：Ａｌｅｘａ　Ｆｌｕｏｒ（登録商標）６４７　Ｍｏｕｓｅ　ＩｇＧ１，κ　Ｉｓｏｔｙｐｅ　Ｃｏｎｔｒｏｌ（ＢＤ　Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ社、＃５５７７１４）
・ＣＤ４４ネガティブコントロール：Ｍｏｕｓｅ　ＩｇＧ（ＦＩＴＣ）－Ｉｓｏｔｙｐｅ　Ｃｏｎｔｒｏｌ（アブカム社、＃ａｂ３７３５６）
・ＣＤ９０ネガティブコントロール：ＡＰＣ　Ｍｏｕｓｅ　ＩｇＧ１，κ　Ｉｓｏｔｙｐｅ　Ｃｏｎｔｒｏｌ　（ＢＤ　Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ社、＃５５５７５１）
・ＣＤ１０５ネガティブコントロール：Ｍｏｕｓｅ　ＩｇＧ２ａ，κ　Ｉｓｏｔｙｐｅ　（ＰＥ／Ｃｙ７）　（アブカム社、＃ａｂ１０３５３４）
・ＣＤ１０５　２次抗体：Ｇｏｕｔ　ｐＡｂ　ｔｏ　Ｍｓ　ＩｇＧ２ａ　ＰＥ／Ｃｙ７　（アブカム社、＃ａｂ１３０７８７）
・ＣＤ３１ネガティブコントロール：　ＣＤ２９　ｃｏｎｔｒｏｌ（ＢＤ　Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ社、ＢＤ５５７７１４）
・ＣＤ４５　ネガティブコントロール：ＰＥ　Ｍｏｕｓｅ　ＩｇＧ１，κ　Ｉｓｏｔｙｐｅ　Ｃｏｎｔｒｏｌ（ＢＤ　Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ社、＃５５０６１７）

＜使用した器材＞
・７５ｃｍ^２フラスコ　（ＢＤファルコン社、＃３５３８１０）
・３．５ｃｍ（３５mm）温度応答性培養皿（ＵｐＣｅｌｌ（登録商標））（セルシード社、＃ＣＳ３００７）

＜使用した機器＞
・マノメーターＰＧ－１００Ｂ（日本電算コパル社、＃ＰＧ－１００Ｂ－１０２Ｒ－ＭＸ２Ｔ）
・フローサイトメーター（Ｇａｌｌｉｏｓ、ＢＥＣＫＭＡＮ　ＣＯＵＬＴＥＲ社）
・ＦＡＣＳ解析ソフト（Ｋａｌｕｓａ、ＢＥＣＫＭＡＮ　ＣＯＵＬＴＥＲ社）
・リアルタイムＰＣＲ（Ｓｔｅｐ　Ｏｎｅ　Ｐｌｕｓ^TM　Ｒｅａｌ－Ｔｉｍｅ　ＰＣＲ　Ｓｙｓｔｅｍ、Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社、＃４３７９２１６）

＜使用したプライマー＞
　実施例中のリアルタイムＰＣＲ法に使用したプライマーは、Ａｐｐｌｉｅｄ　Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社より購入した。それぞれのプライマーの情報を以下に示す。
・ＡＣＴＢ（βアクチン）；
　　Ｔａｑ　Ｍａｎ（登録商標）Ｇｅｎｅ　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　Ａｓｓａｙｓ、β－ａｃｔｉｎ
　　ａｓｓａｙ　ＩＤ：　Ｓｓ０３３７６０８１＿ｍ１
・Ｃｏｌｌａｇｅｎ１；
　　Ｔａｑ　Ｍａｎ（登録商標）　Ｇｅｎｅ　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　Ａｓｓａｙｓ、ｃｏｌｌａｇｅｎ，ｔｙｐｅ　Ｉ，ａｌｐｈａ　１　
　　ａｓｓａｙ　ＩＤ：　Ｓｓ０３３７３３４０＿ｍ１
・Ｃｏｌｌａｇｅｎ３；
　　Ｔａｑ　Ｍａｎ（登録商標）Ｇｅｎｅ　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　Ａｓｓａｙｓ、ｃｏｌｌａｇｅｎ，ｔｙｐｅ　III ，ａｌｐｈａ　１　
　　ａｓｓａｙ　ＩＤ：　Ｓｓ０４３２３７９０＿ｍ１

１．実験方法
１－１．脂肪由来幹細胞の分離培養および細胞シート組成物の作製
（１）脂肪由来幹細胞の分離
　脂肪由来幹細胞の分離はＷａｔａｎａｂｅ　Ｎ．らの論文（Ｗａｔａｎａｂｅ　Ｎ．，ｅｔ　ａｌ．，Ｇｅｎｅｔｉｃａｌｌｙ　Ｍｏｄｉｆｉｅｄ　Ａｄｉｐｏｓｅ　Ｔｉｓｓｕｅ－Ｄｅｒｉｖｅｄ　Ｓｔｅｍ／Ｓｔｒｏｍａｌ　Ｃｅｌｌｓ，Ｕｓｉｎｇ　Ｓｉｍｉａｎ　Ｉｍｍｕｎｏｄｅｆｉｃｉｅｎｃｙ　Ｖｉｒｕｓ－Ｂａｓｅｄ　Ｌｅｎｔｉｖｉｒａｌ　Ｖｅｃｔｏｒｓ，ｉｎ　ｔｈｅ　Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　ｏｆ　Ｈｅｍｏｐｈｉｌｉａ　Ｂ．Ｈｕｍ　Ｇｅｎｅ　Ｔｈｅｒ．２０１３　Ｍａｒ；２４（３）：２８３-２９４．）に記載の方法に従った。具体的には、ＮＩＢＳ系ミニブタ（６ヶ月、１６～２０ｋｇ）の腹壁の皮下脂肪を局所麻酔下になるべく血球成分が入らないようにして２０ｇ採取した。その後、採取した脂肪組織はポピドンヨードで殺菌消毒を行い、抗生剤入り培地（１％　ペニシリン・ストレプトマイシン入りＤＭＥＭ）で２回洗浄した。洗浄後、ディッシュの上でハサミを用いて組織片を細かくした。４ｇずつ５０ｍｌチューブに入れ抗生剤入り培地を３５ｍｌ加え、０．２７　ｐｚｕ／ｍｌの濃度のコラゲナーゼを１ｍｌずつ加えた。３７℃、１５０ｒｐｍで１時間振盪した。その後４℃で３００Ｇで５分間遠心した。３０秒間チューブを用手的に振盪した。再度、４℃、３００Ｇで５分間遠心した。チューブ表面に浮遊する大型の組織片を除去し、１００μｍのセルストレーナー（ＢＤ　日本ベクトン・ディッキンソン社、＃３５２３６０）に通した。その後、４０μｍのセルストレーナー（ＢＤ　日本ベクトン・ディッキンソン社、＃３５２３４０）に通した。４℃、１５００ｒｐｍで５分間遠心した。上清を除去しペレットを１０％ＦＢＳ入り培地で懸濁し、７５ｃｍ²フラスコ５枚に播種し３７℃インキュベーターで培養した。

（２）脂肪由来幹細胞の培養と細胞シート組成物作製
　細胞播種後３日目に培地交換を行い、５日目に０．２５％トリプシンで細胞を剥がした後に１０枚の７５ｃｍ²フラスコに継代した。継代後は２～３日後で再度継代を行った。２～３日後に再度０．２５％トリプシンで細胞を剥がし、細胞カウントを行った後に、２．３×１０^６個の細胞を２ｍｌの培地に懸濁し、３５ｍｍ　ＵＰ　Ｃｅｌｌ（登録商標）に播種し、３７℃で２日間培養した。２日後に１６．４μｇ／ｍｌアスコルビン酸入り培地で培地交換を行った。更に２日後にアスコルビン酸入り培地で培地交換を行い、細胞シート組成物移植直前に２０℃のインキュベーターで２０～３０分インキュベートすることで細胞をシート状に回収した。

（３）脂肪由来幹細胞シート組成物の組織学的解析
　上記方法で回収した細胞シート組成物はコンパウンドで包埋後に液体窒素で凍結し組織切片を作製した。ヘマトキシリン・エオジン染色および抗ビメンチン抗体（アブカム社、＃ａｂ８０６９）にてＶｉｍｅｎｔｉｎの免疫染色を行った。

（４）培養している細胞が脂肪由来幹細胞であることの確認
　３継代目、ＵＰ　Ｃｅｌｌ（登録商標）に播種する直前の細胞を用いて培養している細胞が脂肪由来幹細胞であることを確認した。フローサイトメーターで幹細胞マーカー（ＣＤ２９、ＣＤ４４、ＣＤ９０、ＣＤ１０５陽性、ＣＤ３１、ＣＤ４５陰性）を用いて存在する細胞の表現型を確認した。一方で幹細胞の機能評価として多分化能に関しては既知の方法で脂肪・骨への分化誘導を確認した（参考：Ｋａｔｏ　Ｙ，ｅｔ　ａｌ．Ａｌｌｏｇｅｎｅｉｃ　Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ　ｏｆ　ａｎ　Ａｄｉｐｏｓｅ－Ｄｅｒｉｖｅｄ　Ｓｔｅｍ　Ｃｅｌｌ　Ｓｈｅｅｔ　Ｃｏｍｂｉｎｅｄ　Ｗｉｔｈ　Ａｒｔｉｆｉｃｉａｌ　Ｓｋｉｎ　Ａｃｃｅｌｅｒａｔｅｓ　Ｗｏｕｎｄ　Ｈｅａｌｉｎｇ　ｉｎ　ａ　Ｒａｔ　Ｗｏｕｎｄ　Ｍｏｄｅｌ　ｏｆ　Ｔｙｐｅ　２　Ｄｉａｂｅｔｅｓ　ａｎｄ　Ｏｂｅｓｉｔｙ．Ｄｉａｂｅｔｅｓ．２０１５　Ａｕｇ；６４（８）：２７２３－３４）。また既知の方法で自己複製能の評価はコロニー形成試験を用いて行った（参考：Ｋａｔｏ　Ｙ，ｅｔ　ａｌ．Ａｌｌｏｇｅｎｅｉｃ　Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ　ｏｆ　ａｎ　Ａｄｉｐｏｓｅ－Ｄｅｒｉｖｅｄ　Ｓｔｅｍ　Ｃｅｌｌ　Ｓｈｅｅｔ　Ｃｏｍｂｉｎｅｄ　Ｗｉｔｈ　Ａｒｔｉｆｉｃｉａｌ　Ｓｋｉｎ　Ａｃｃｅｌｅｒａｔｅｓ　Ｗｏｕｎｄ　Ｈｅａｌｉｎｇ　ｉｎ　ａ　Ｒａｔ　Ｗｏｕｎｄ　Ｍｏｄｅｌ　ｏｆ　Ｔｙｐｅ　２　Ｄｉａｂｅｔｅｓ　ａｎｄ　Ｏｂｅｓｉｔｙ．Ｄｉａｂｅｔｅｓ．２０１５　Ａｕｇ；６４（８）：２７２３－３４）。

（５）作製した脂肪由来幹細胞シート組成物からのＨＧＦ、ＦＧＦ２の分泌の確認
　脂肪由来幹細胞シート組成物を２４時間培養した培養培地を採取し、Ｈｅｐａｔｏｃｙｔｅ　Ｇｒｏｗｔｈ　Ｆａｃｔｏｒ（Ｈｅａｐａｐｏｉｅｔｉｎ　Ａ，Ｓｃａｔｔｅｒ　Ｆａｃｔｏｒ）（ＨＧＦ）ＥＬＩＳＡ　Ｋｉｔ及びＦＧＦ　ｂａｓｉｃ　Ｐｉｇ　ＥＬＩＳＡ　Ｋｉｔを用いて、キットに添付の手順書に従い、培養液中のＨＧＦ、ＦＧＦ２を測定した。

１－２．脂肪由来幹細胞シート組成物の移植
（１）消化管吻合部への移植方法
　上記方法でシート状に回収した脂肪由来幹細胞シート組成物は消化管吻合術後の吻合部漿膜面に細胞シート組成物の基底膜面が接着するように移植した。吻合部全周を覆うように細胞シート組成物を３枚移植した。

（２）ミニブタ小腸縫合部創傷治癒遅延モデルへの移植
　ミニブタ小腸の漿膜下に１００μｇ／ｍｌのマイトマイシンＣを２ｍｌずつ局注、更に縫合予定部への血管を６本結紮切離した後に腸間膜対側を２ｃｍ切開し、その後に同部位を５針ずつ４－０バイクリルによりＧａｍｂｅｅ縫合で縫合し作製した小腸縫合部創傷治癒遅延モデルに対して上記脂肪由来幹細胞シート組成物を移植することで脂肪由来幹細胞シート組成物移植の縫合部の創傷治癒促進効果および補強効果を検証した。１頭のミニブタにつき８か所の小腸縫合部を作製し、８か所の縫合部の口側と肛門側に側々吻合でバイパスを作製した。４か所を細胞シート組成物移植群、４か所を細胞シート組成物非移植群になるように細胞シート組成物移植直前にランダムに決定し、細胞シート組成物移植群には３枚ずつ脂肪由来幹細胞シート組成物を縫合部が覆われるように移植した。手術当日、翌日に抗生剤を点滴し、術後３日目より食事を開始し術後７日目に再開腹手術を行った。縫合腸管を摘出した後に塩化カリウムを静注し犠牲死させた。

（３）脂肪由来幹細胞シート組成物の移植後生着の検討
　移植後生着性の評価には移植直前に蛍光色素ＰＫＨ２６ＧＬ（ＳＩＧＭＡ社　製品番号：ＰＫＨ２６ＧＬ－１ＫＴ）を細胞シート組成物に添加し移植した。移植後７日目に摘出した吻合部を凍結組織切片作製用包埋剤（製品名「Ｏ．Ｃ．Ｔ．コンパウンド」、サクラファインテックジャパン社、＃４５８３）に包埋後、液体窒素で凍結し組織切片を作製した。その後、蛍光顕微鏡で脂肪由来幹細胞シート組成物の生着の有無を確認した。

（４）小腸縫合部の物理的強度の検討（耐圧試験）
　参考文献（Ｉｋｅｄａ　Ｔ．，ｅｔ　ａｌ．，Ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ　ｔｏ　ｐｒｅｖｅｎｔ　ｃｏｌｏｒｅｃｔａｌ　ａｎａｓｔｏｍｏｔｉｃ　ｌｅａｋａｇｅ．Ｊ　Ｓｕｒｇ　Ｒｅｓ．２０１５　Ａｐｒ；１９４（２）：４５０－７．）に従って、小腸縫合部の耐圧試験を行った。具体的には、摘出した腸管は縫合部の癒着を愛護的に剥離し、縫合部から２ｃｍずつ離して切離した。縫合部口側にエクスエンションチューブ（トップ社　５Ｃ１３Ｍ）を挿入し２号絹糸（日本工業規格ＪＩＳ－Ｔ４１０１）で結紮し、縫合部肛門側はリスター型腸鉗子で断端を把持した。その後、エクステンションチューブと三方活栓付きの点滴チューブを接続し、圧測定用のマノメーターと接続した。吻合部を１５００ｍｌの生理食塩水内に沈め、三方活栓に５０ｍｌ注射器を接続し空気を注入し縫合部から空気が漏れた瞬間の圧を測定した。

（５）縫合部周囲の肉眼的評価
　上記耐圧試験を行っていないブタの縫合部を摘出後に腸間膜側で切開し標本を粘膜面で拡げ固定しデジタルカメラで写真を撮影した。撮影した写真の縫合部から口側肛門側それぞれ１ｃｍずつの範囲における潰瘍面積の割合を画像解析ソフト（Ｉｍａｇｅ　Ｊ（Ｖｅｒ．１．４８））により算出し比較した。

（６）組織学的評価
　手術後７日目に摘出したサンプルをコンパウンドに包埋後、液体窒素で凍結し組織切片を作製した。ヘマトキシリン・エオジン染色、シリウスレッド染色、ＣＤ３１免疫染色を行った。ＣＤ３１については１視野あたりの陽性細胞の密度を計測した。検体当たり３視野のＣＤ３１陽性細胞の割合の平均値を算出し、各群で平均値を求めた。

（７）分子生物学的解析
　手術後７日目に摘出したサンプルの縫合部よりＲＮＡ抽出をした。ＲＮＡから逆転写反応によりｃＤＮＡを合成した。リアルタイムＰＣＲ法により１型コラーゲンおよび３型コラーゲン転写量を定量し、内因性コントロールであるβ－アクチン転写量で除算した。

（８）統計学的分析
　データは平均値±標準誤差であらわした。群間の比較はｔ検定にて行い、Ｐ値が０．０５未満を有意差ありとした。

２．結果
（１）脂肪由来幹細胞シート組成物の組織学的解析
　直径１．３ｃｍの４層積層シートを組織学的に確認した。免疫染色でＶｉｍｅｎｔｉｎ陽性で脂肪由来幹細胞シート組成物として矛盾しない結果であった。（図１）

（２）培養している細胞が脂肪由来幹細胞であることの確認
　フローサイトメーターでＣＤ２９、ＣＤ４４、ＣＤ９０、ＣＤ１０５陽性、ＣＤ３１、ＣＤ４５陰性の表面抗原の発現を確認した。更に分化誘導実験で脂肪および骨への分化、コロニー形成試験で自己複製能を確認した。（図２～４）

（３）作製した脂肪由来幹細胞シート組成物からのＨＧＦ、ＦＧＦ２の分泌
　脂肪由来幹細胞シート組成物を２４時間培養した培養液中からＨＧＦ、ＦＧＦ２をＥＬＩＳＡ法で検出した（ＦＧＦ：１０６．９ｐｇ／ｍｌ、ＨＧＦ：１．３８ｎｇ／ｍｌ）。

（４）脂肪由来幹細胞シート組成物の移植後生着の検討
　移植後７日目に摘出した吻合部の漿膜面に蛍光顕微鏡でＰＫＨ２６ＧＬがシート状に残存していることを確認、脂肪由来幹細胞シート組成物が吻合部漿膜面に生着していることが確認できた。（図５）

（５）小腸縫合部の物理的強度の検討（耐圧試験）
　術後７日目の吻合部耐圧試験の結果は非移植群で２１１．３±２５．４ｍｍＨｇ、脂肪由来幹細胞シート組成物移植群で２７６．０±２９．６ｍｍＨｇであり、脂肪由来幹細胞シート組成物移植群で有意に高い耐圧能を示した（ｎ＝４、ｐ＜０．０５）。

（６）吻合部の肉眼的評価（潰瘍面積）
　術後７日目の縫合部周囲粘膜面の潰瘍面積の割合は非移植群で３７．３±７．２％、移植群で１９．８±１３．４％であった（ｎ＝４、ｐ＜０．０５）。（図６Ａ及び図６Ｂ）

（７）組織学的評価
　ＣＤ３１免疫染色の結果、１視野あたりのＣＤ３１陽性細胞の割合は非移植群で０．９５±０．３３％、移植群で１．４２±０．１７％で脂肪由来幹細胞シート組成物移植群は非移植群に比べ有意に血管新生が促進していた（ｎ＝４、ｐ＜０．０５）。（図７Ａ～Ｃ）

（８）分子生物学的検討
　１型コラーゲンの発現は非移植群で０．６４±０．３２、移植群で１．１０±０．４０であった（ｎ＝４、ｐ＞０．０５）。３型コラーゲンの発現は非移植群で０．４５±０．０８、移植群で０．６９±０．２１で脂肪由来幹細胞シート組成物移植群で有意に高い発現であった（ｎ＝４、ｐ＜０．０５）。このことから、小腸縫合部創傷治癒遅延モデルにおいて脂肪由来幹細胞シート組成物の漿膜面への移植は縫合部の創傷治癒を促進することが示唆された。

Claims

　管腔臓器の創傷部からの漏出を治癒又は予防するために、前記管腔臓器の前記創傷部に貼付されることを特徴とする、間葉系幹細胞を含む細胞シート組成物。
　前記間葉系幹細胞が、臍帯血、胎盤、骨髄、脂肪組織、滑膜、及び／又は、多能性幹細胞由来の間葉系幹細胞である、請求項１に記載の細胞シート組成物。
　前記間葉系幹細胞が、脂肪由来幹細胞である、請求項１又は２に記載の細胞シート組成物。
　前記創傷部が、縫合又は吻合された創傷部である、請求項１～３のいずれか１項に記載の細胞シート組成物。
　貼付される部位が、前記管腔臓器の外壁である、請求項１～４のいずれか１項に記載の細胞シート組成物。
　前記管腔臓器が、消化管である、請求項１～５のいずれか１項に記載の細胞シート組成物。
　前記管腔臓器が、腸管である、請求項１～６のいずれか１項に記載の細胞シート組成物。
　間葉系幹細胞を含む細胞シート組成物を、管腔臓器の創傷部に貼付し、前記管腔臓器の前記創傷部からの漏出を治癒又は予防する方法。
　前記間葉系幹細胞が、臍帯血、胎盤、骨髄、脂肪組織、滑膜、及び／又は、多能性幹細胞由来の間葉系幹細胞である、請求項８に記載の方法。
　前記間葉系幹細胞が、脂肪由来幹細胞である、請求項８又は９に記載の方法。
　前記創傷部が、縫合又は吻合された創傷部である、請求項８～１０のいずれか１項に記載の方法。
　貼付する部位が、前記管腔臓器の外壁である、請求項８～１１のいずれか１項に記載の方法。
　前記管腔臓器が、消化管である、請求項８～１２のいずれか１項に記載の方法。
　前記管腔臓器が、腸管である、請求項８～１３のいずれか１項に記載の方法。