WO2016159376A1 - がんの治療薬のスクリーニング方法 - Google Patents

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cancer
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gene
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泰広 山田
克憲 蝉
ウォルツェン、クヌート
穣 松田
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Chugai Pharmaceutical Co Ltd
Kyoto University NUC
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Chugai Pharmaceutical Co Ltd
Kyoto University NUC
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    • G01N2500/10—Screening for compounds of potential therapeutic value involving cells

Definitions

  • the present invention relates to a method for screening for a therapeutic drug for cancer.
  • molecular targeting drugs that is, therapeutic drugs that directly target proteins related to important intracellular signals related to cancer cell growth and progression
  • searches for proteins that can become new drug discovery targets are being actively pursued.
  • target proteins for cancer treatment include proteins encoded by genes that are unique or overexpressed in cancer cells.
  • Non-patent Document 1 a technique for reprogramming somatic cells has been developed and attempts have been made to reinitialize cancer cells. Such attempts have been focused on changing the properties of cancer cells themselves. There are no reports on screening for cancer drugs using cancer cell reprogramming.
  • An object of the present invention is to provide a method for screening for a therapeutic drug for cancer.
  • a known target gene that is, cancer cell growth / Suppressing the expression of genes that are known to be related to important intracellular signals involved in development
  • the proteins encoded by these target genes are: It has been found that it has the effect of maintaining the characteristics as a cancer cell and suppressing the fate change of the cancer cell.
  • a reprogramming factor is introduced into cancer cells that express the target protein of an existing molecular target drug under contact with the molecular target drug, the reprogramming factor is initialized compared to when it is initialized under non-drug contact.
  • the degree of was enhanced. Therefore, when the cancer cell is initialized or differentiated directly into another cell type in a state where an effective target protein is in contact with a known cancer cell and the test substance, the initialization or differentiation is enhanced. It was revealed that the test substance can be confirmed to have a function of suppressing the activity of the target gene. Moreover, even when targeting any cancer cell, if the test substance enhances the initialization or differentiation of the cancer cell, the test substance is an intracellular signal related to the growth and progression of the cancer cell. Since it can be presumed to have a function of suppressing the activity of some protein related to the above, it becomes possible to directly screen candidate substances for cancer therapeutic agents without identifying the target protein (target gene). As a result of further studies based on these findings, the present inventors have completed the present invention.
  • a method for screening for a therapeutic drug for cancer comprising the following steps; (I) a step of expressing an exogenous cell regulator in a target cancer cell in contact with or non-contact with a test substance; (Ii) a step of confirming a change in cancer cells, and (iii) in the case where the change in cancer cells is increased in contact with the test substance compared to non-contact, the test substance is treated for cancer.
  • the process of selecting as a medicine [2] The method according to [1], wherein the cell regulatory factor is an reprogramming factor, and the change in the cancer cells is reprogramming of cancer cells.
  • a method for identifying a protein that can be a drug discovery target of a cancer therapeutic drug comprising the following steps: (I) an exogenous cell regulator in a cancer cell containing a gene encoding a test protein in a form in which expression can be controlled, under conditions under which the gene is expressed or under conditions where expression of the gene is suppressed A step of expressing (Ii) a step of confirming a change in cancer cells, and (iii) when the change in cancer cells is increased under conditions in which expression of the gene is suppressed as compared to conditions under which the gene is expressed, A step of selecting the test protein as a protein that can be a drug discovery target of a cancer therapeutic agent.
  • the present invention it is not necessary to identify a target gene, and it becomes possible to directly screen for a therapeutic drug for cancer that becomes a molecular target drug.
  • the present invention makes it possible to screen for cancer therapeutic agents having a high effect on cancer cells.
  • FIG. 1A shows a schematic diagram describing a method for inducing EWS / ATF1 expression and introducing reprogramming factors.
  • FIG. 1B shows a phase contrast microscopic image of sarcoma cell line G1297 after introduction of reprogramming factor when EWS / ATF1 expression was induced (DOXD0.2 ⁇ g / ml) or not (DOX 0 ⁇ g / ml).
  • FIG. 1C shows the results of measuring the number of colonies formed after introduction of reprogramming factor when EWS / ATF1 expression was induced (DOX 0.2 or 0.1 ⁇ g / ml) or not (DOX 0 ⁇ g / ml). .
  • FIG. 1A shows a schematic diagram describing a method for inducing EWS / ATF1 expression and introducing reprogramming factors.
  • FIG. 1B shows a phase contrast microscopic image of sarcoma cell line G1297 after introduction of reprogramming factor when
  • FIG. 1D shows RT-PCR of EWS / ATF1 expression induction by adding 0.2 ⁇ g / ml DOX to iPS cell lines (C-1, C-2, C-3 and C-4) established from sarcoma cell line G1297. The result confirmed by is shown.
  • FIG. 1E shows the results of chromosome microarray (CGH array) analysis in the sarcoma cell line G1297 and an iPS cell line established from the same.
  • FIG. 1F shows the results of measuring the expression of Nanog in the iPS cell lines (C-1, C-2, C-3 and C-4) by RT-PCR (left figure) and staining the iPS cell line with Nanog and DAPI. The stained image (right figure) is shown.
  • FIG. 1G shows a stained image of teratoma formed by transplanting iPS cells established from sarcoma cell line G1297 subcutaneously into nude mice.
  • FIG. 1H shows a photograph of a chimeric mouse generated by injecting iPS cells established from the sarcoma cell line G1297 into a blastocyst.
  • FIG. 1I shows that EWS / ATF1 expression was induced (DOX 0.2 or 0.1 ⁇ g / ml) or not induced (DOX 0 ⁇ g / ml) on day 4 after introduction of reprogramming factor (4F) into sarcoma cell line G1297.
  • FIG. 1J shows that EWS / ATF1 expression was induced on mouse embryonic fibroblasts (MEF) 4 days after introduction of reprogramming factor (4F) (DOX 0.2 or 0.1 ⁇ g / ml) or not (DOX (0 ⁇ g / ml) shows the results of FACS in which the positive rate of SSEA1 was measured 10 days after 4F introduction.
  • FIG. 1K shows 4F introduction or GFP when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not induced (OFF) on day 4 after introduction of reprogramming factor (4F) or GFP into sarcoma cell line G1297.
  • FIG. 1L shows a schematic diagram describing EWS / ATF1 expression induction and a method for introducing MYOD1.
  • FIG. 1M shows the results of RT-PCR measurement of Myogenin expression when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not induced (OFF) in cells in which MYOD1 was introduced into the sarcoma cell line G1297.
  • FIG. 1L shows a schematic diagram describing EWS / ATF1 expression induction and a method for introducing MYOD1.
  • FIG. 1M shows the results of RT-PCR measurement of Myogenin expression when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not induced (OFF) in cells in which MYOD1 was introduced into the sarcoma cell line G1297.
  • FIG. 10 shows the 6th day after introduction of MYOD1 or GFP when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not induced (OFF) on day 4 after introduction of MYOD1 or GFP into sarcoma cell line G1297. The results of microarray analysis using RNA recovered from the cells are shown.
  • FIG. 2A shows a schematic diagram describing the method of introduction of reprogramming factor, MYOD1 or GFP and siRNA into the MP-CCS-SY cell line.
  • FIG. 2B shows that when reprogramming factor (+ 4F) or GFP was introduced into MP-CCS-SY cell line, expression of EWS / ATF1 was suppressed by RNAi (siEWS / ATF1) or expression was not suppressed (siControl).
  • FIG. 2C shows a schematic diagram describing the introduction of reprogramming factors into HCC827 or SK-BR3 cell lines and the method of adding each drug.
  • 2D shows the case where DMSO, 5FU or Lapatinib (Lap) was added to the SK-BR3 cell line when reprogramming factor was introduced (Dox (4F) +) or not (Dox (4F)-) Of PODXL expression in RT-PCR (left figure) and when reprogramming factor was introduced into HCC827 cell line (Dox (4F) +) or not (Dox (4F)-)
  • the result (right figure) which measured the expression of PODXL in the case of adding DMSO, 5FU, or Gefitinib (Gef) by RT-PCR is shown.
  • FIG. 3A shows a growth curve when doxycycline (DOX) 0, 0.1, 0.2, 1 or 2 ⁇ g / ml was added to sarcoma cell line G1297 and cultured.
  • DOX doxycycline
  • FIG. 3B shows that when the reprogramming factor was introduced into the sarcoma cell line G1297 (+ 4F) or not (-4F), expression of EWS / ATF1 was induced (ON) or not (OFF) ) Shows the results of measuring the amount of Oct3 / 4 in each case by Western blotting.
  • FIG. 3C shows a phase contrast microscopic image of iPS cells established after introduction of reprogramming factor when EWS / ATF1 expression was not induced (DOX 0 ⁇ g / ml).
  • FIG. 3D shows the results of measuring the expression levels of Oct3 / 4 and Nanog by RT-PCR when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not induced (OFF) in the sarcoma cell line G1297. .
  • ESC ES cell
  • FIG. 3E shows a schematic diagram describing the method of induction of EWS / ATF1 expression and introduction of reprogramming factors.
  • FIG. 3F shows that EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not induced (OFF) in cells with or without the reprogramming factor introduced into the sarcoma cell line G1297 (+ 4F).
  • FIG. 4A shows a PiggyBac vector construct for introducing the reprogramming factor and a phase contrast image and a fluorescence image of the cell after introduction into SK-BR3.
  • FIG. 4B shows DMSO, 5FU (1 mM or 10 mM) or Gefitinib (Gef) with or without reprogramming factor introduced into the A549 cell line (Dox (4F) +) or not (Dox (4F) ⁇ ).
  • Dox (4F) + the A549 cell line
  • Dox (4F) ⁇ Dox (4F) +
  • Dox (4F) ⁇ The result of having measured the expression of PODXL by RT-PCR when (10 mM or 50 mM) is added is shown.
  • FIG. 4A shows a PiggyBac vector construct for introducing the reprogramming factor and a phase contrast image and a fluorescence image of the cell after introduction into SK-BR3.
  • FIG. 4B shows DMSO, 5FU (1 mM or
  • FIG. 5A shows a schematic diagram describing the method of induction of reprogramming factors by addition of Dox to HCC827 and SK-BR3 and the introduction of anticancer agents (Gefitinib, Imatinini, Lapatinib, 5-FU).
  • FIG. 5A shows a schematic diagram describing the method of induction of reprogramming factors by addition of Dox to HCC827 and SK-BR3 and the introduction of anticancer agents (Gefitinib, Imatinini, Lapatinib, 5-FU).
  • 5B shows Gefitinib (0 ⁇ M (DMSO added), 0.005 ⁇ M or 0.05 ⁇ M), Imatinib (0 ⁇ M (DMSO added)) when reprogramming factors were induced into HCC827 and SK-BR3 (Dox (4F) +) RT of Nanog and GDF3 expression when Lapatinib (0 ⁇ M (DMSO added), 0.05 ⁇ M or 0.5 ⁇ M) or 5-FU (0 ⁇ M (DMSO added), 10 ⁇ M or 50 ⁇ M) was added, 1 ⁇ M or 10 ⁇ M) -Measured by PCR and shows the result of normalizing the transcription level with the GAPDH value.
  • FIG. 7A shows a schematic diagram describing a construction of a targeting vector for producing reporter cells, and a method for introducing the construct into the PPP1R2C gene locus of HEK293 cells derived from human fetal kidney by genome editing technology using TALEN. .
  • FIG. 7B shows a schematic diagram (left diagram) of the luciferase assay performed using the construct of FIG. 7A and the result (right diagram).
  • the horizontal axis of the graph indicates the number of cells, and the vertical axis indicates the relative luminescence intensity of luciferase.
  • FIG. 8 shows a schematic diagram describing a targeting vector construct for preparing reporter cells and a method for introducing the construct into the Nanog locus of mouse cancer cells by genome editing technology using CRISPR / Cas9.
  • FIG. 9 shows a schematic diagram describing a targeting vector construct for preparing reporter cells and a method for introducing the construct into the Nanog locus of mouse cancer cells by genome editing technology using CRISPR / Cas9.
  • secNluc represents a secreted NanoLuc TM luciferase gene
  • BsdR represents a blasticidin resistance gene.
  • FIG. 10 shows a schematic diagram describing a targeting vector construct for preparing reporter cells and a method for introducing the construct into the Nanog locus of human cancer cells by genome editing technology using CRISPR / Cas9.
  • the present invention provides a method for screening for a therapeutic agent for cancer, comprising the following steps; (I) a step of expressing an exogenous cell regulator in a target cancer cell in contact with or non-contact with a test substance; (Ii) a step of confirming a change in cancer cells, and (iii) in the case where the change in cancer cells is increased in contact with the test substance compared to non-contact, the test substance is treated for cancer.
  • the process of selecting as a medicine comprising the following steps; (I) a step of expressing an exogenous cell regulator in a target cancer cell in contact with or non-contact with a test substance; (Ii) a step of confirming a change in cancer cells, and (iii) in the case where the change in cancer cells is increased in contact with the test substance compared to non-contact, the test substance is treated for cancer.
  • cancer means a malignant tumor, including carcinoma (malignant tumor derived from epithelial cells), sarcoma, and other leukemias, and is not limited to a specific cancer.
  • the cancer cell used in the present invention is a cell constituting a malignant tumor, and may be a cell line or a cell isolated from a living body.
  • cancer cells used in the present invention are cancer cells (for example, EWS / ATF1 fusion gene forced expression) whose effective target protein is known (ie, known to be sensitive to an existing molecular target drug).
  • cancer cells gefitinib-sensitive mutant EGFR-expressing cancer cells, lapatinib-sensitive HER2-amplified cancer cells, alectinib-sensitive EML4-ALK fusion gene-expressing cancer cells, imatinib-sensitive chronic myeloid leukemia cells, etc.
  • cancer cells whose effective target protein is unknown may be used.
  • the cancer cell used in the screening method of the present invention may contain a reporter gene.
  • reporter genes include, but are not limited to, luciferase genes, fluorescent protein genes, and drug resistance genes.
  • the luciferase gene include a firefly luciferase gene, a synthetic Renilla luciferase gene, a secreted luciferase gene, and the like, but a secreted luciferase gene is preferable in terms of ease of protein recovery.
  • fluorescent protein genes include green fluorescent protein genes such as GFP and EGFP, blue fluorescent protein genes such as BFP and TagBFP, and red fluorescent protein genes such as RFP and DsRed.
  • drug resistance genes include kanamycin resistance gene, ampicillin resistance gene, neomycin resistance gene, puromycin resistance gene, and blasticidin resistance gene.
  • the reporter cell can be prepared, for example, by knocking in the reporter gene to a specific locus in the genome by homologous recombination or the like.
  • the homologous recombination may be performed using a genome editing technique.
  • a zinc finger nuclease (ZFN) in which a zinc finger DNA binding domain and a non-specific DNA cleavage domain are linked is used as the genome editing technique.
  • TALEN TAL effector nuclease
  • TAL transcriptional activator-like
  • JP 2013-513389 TALEN-like effector
  • CRISPR-Cas9 system combining the DNA sequence CRISPR (Clustered Regularly interspaced short palindromic repeats) and the nuclease Cas protein family that plays an important role together with CRISPR (Special Table 2010-519929) It is done.
  • Specific loci include open chromatin structures such as the human PPP1R2C locus, which are less susceptible to suppressed expression of inserted genes, and genes that are specifically highly expressed in differentiated pluripotent cells (for example, Nanog , Oct3 / 4, Fbx15, etc., preferably Nanog).
  • Recombinant cells containing such a reporter gene include, for example, MEF (Okita et al., Nature, 448, a transgenic mouse derived by incorporating a green fluorescent protein (GFP) gene and a puromycin resistance gene into the Nanog locus. 313-317 (2007)).
  • a cell regulator is a factor that changes the properties of the cell by introduction into the cell and changes it to another cell type, and is not particularly limited.
  • Nerve cell inducer neural stem cell inducer, neural crest cell inducer, cardiomyocyte inducer, myocyte inducer, chondrocyte inducer, hepatocyte inducer, melanocyte inducer, hematopoietic progenitor inducer, erythroblast Examples include sphere-inducing factors and megakaryocyte progenitor cell-inducing factors.
  • reprogramming factors used in the present invention include Oct3 / 4, Sox2, Sox1, Sox3, Sox15, Sox17, Klf4, Klf2, c-Myc, N-Myc, L-Myc, Nanog, Lin28, Fbx15, ERas , ECAT15-2, Tcl1, beta-catenin, Lin28b, Sall1, Sall4, Esrrb, Nr5a2, Tbx3, Glis1 or GDF3 and other genes or gene products are exemplified, and these reprogramming factors may be used alone, You may use it in combination.
  • a more preferred reprogramming factor is a combination comprising Oct3 / 4, Sox2, Klf4 and c-Myc.
  • the reprogramming factors include histone deacetylase (HDAC) inhibitors [eg small molecule inhibitors such as valproic acid (VPA), trichostatin A, sodium butyrate, MC ⁇ 1293, M344, siRNA and shRNA against HDAC (eg , Nucleic acid expression inhibitors such as HDAC1 siRNA Smartpool (registered trademark) (Millipore), HuSH 29mer shRNA Constructs against HDAC1 (OriGene), etc.], MEK inhibitors (for example, PD184352, PD98059, U0126, SL327 and PD0325901), Glycogen synthase kinase-3 inhibitors (eg, Bio and CHIR99021), DNA methyltransferase inhibitors (eg, 5-azacytidine), histone methyltransferase inhibitors (eg, small molecule inhibitors such as BIX-01294, Suv39hl, Suv39h2, Nucleic acid expression inhibitors such
  • Examples of the nerve cell inducer used in the present invention include Lhx3, Ngn2 and Isl1 (WO2014 / 148646), Ascl1, Brn2 and Myt1l (Wapinski OL et al, Cell. 155: 621-635, 2013). .
  • Examples of the neural stem cell inducing factor used in the present invention include Brn4 / Pou3f4, Sox2, Klf4, c-Myc and E47 / Tcf3 (Han DW et al, Cell Stem Cell.:10:465-472, 2012) and the like. It is done.
  • cardiomyocyte-inducing factor examples include Gata4, Mef2c and Tbx5 (Ieda Met et al., Cell. 142: 375-386, 2010).
  • Examples of the myocyte inducing factor used in the present invention include MYOD1 or MYF5 (Tanaka A, et al, PLoS One. 8: e61540, 2013).
  • chondrocyte inducing factor examples include c-Myc, Klf4 and SOX9 (Outani H, et al, PLoS One. 8: e77365, 2013).
  • hepatocyte-inducing factors used in the present invention include FOXA3, HNF1A, and HNF4A (Huang P, et al, Cell Stem Cell. 14: 370-384, 2014).
  • melanocyte-inducing factor examples include MITF, SOX10, and PAX3 (Yang® R, “et” al, “Nat” Commun. “5: 5807,” 2014).
  • hematopoietic progenitor cell inducers used in the present invention include ERG, GATA2, LMO2, RUNX1c, and SCL (Batta K, Cell Rep. 9: 1871-84, 2014).
  • erythroblast-inducing factor examples include c-MYC and BCL-XL (Hirose S, et al, Stem Cell Reports. 1: 499-508, 2013).
  • Examples of the megakaryocyte progenitor cell inducer used in the present invention include BMI1, c-MYC, and BCL-XL (Nakamura S, et al, Cell Stem Cell. 14: 535-548, 2014).
  • a cell regulator in the present invention, when the cell regulator is in the form of a protein, for example, lipofection, fusion with a cell membrane-permeable peptide (for example, TAT and polyarginine derived from HIV), microinjection.
  • a cell membrane-permeable peptide for example, TAT and polyarginine derived from HIV
  • the cell regulatory factor when it is in the form of DNA, it can be introduced into somatic cells by techniques such as vectors such as viruses, plasmids, artificial chromosomes, lipofection, liposomes, and microinjection.
  • Virus vectors include retrovirus vectors, lentivirus vectors (cell, 126, pp.663-676, 2006; Cell, 131, pp.861-872, 2007; Science, 318, pp.1917-1920, 2007 ), Adenovirus vectors (Science, 322, 945-949, 2008), adeno-associated virus vectors, Sendai virus vectors (WO 2010/008054) and the like.
  • artificial chromosome vectors examples include human artificial chromosomes (HAC), yeast artificial chromosomes (YAC), and bacterial artificial chromosomes (BAC, PAC).
  • HAC human artificial chromosomes
  • YAC yeast artificial chromosomes
  • BAC bacterial artificial chromosomes
  • a plasmid a plasmid for mammalian cells can be used (Science, 322: 949-953, 2008).
  • the vector can contain regulatory sequences such as a promoter, enhancer, ribosome binding sequence, terminator, polyadenylation site, etc. so that the nuclear reprogramming substance can be expressed.
  • It can contain a selection marker sequence such as gene, thymidine kinase gene, diphtheria toxin gene, reporter gene sequence such as fluorescent protein (GFP, etc.), ⁇ -glucuronidase (GUS), FLAG, etc.
  • a selection marker sequence such as gene, thymidine kinase gene, diphtheria toxin gene, reporter gene sequence such as fluorescent protein (GFP, etc.), ⁇ -glucuronidase (GUS), FLAG, etc.
  • the cell regulator When the cell regulator is in the form of RNA, it may be introduced into somatic cells by, for example, lipofection, microinjection, etc., and RNA that incorporates 5-methylcytidine and pseudoridine (TriLink Biotechnologies) to suppress degradation (Warren L, (2010) Cell Stem Cell. 7: 618-630) may be used.
  • RNA that incorporates 5-methylcytidine and pseudoridine (TriLink Biotechnologies) to suppress degradation (Warren L, (2010) Cell Stem Cell. 7: 618-630) may be used.
  • Cancer cells after introduction of cell regulatory factors can be cultured in a culture solution prepared using a medium used for culturing animal cells as a basal medium.
  • a basal medium examples include IMDM medium, Medium ⁇ 199 medium, Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM) medium, ⁇ MEM medium, Dulbecco's modified Eagle's Medium (DMEM) medium, Ham's F12 medium, RPMI 1640 medium, Fischer's medium and the like Is included.
  • the medium may contain serum or may be serum-free.
  • the medium can be, for example, albumin, insulin, transferrin, selenium, fatty acids, trace elements, 2-mercaptoethanol, thiolglycerol, lipids, amino acids, L-glutamine, non-essential amino acids, vitamins, growth factors, small molecules
  • albumin for example, albumin, insulin, transferrin, selenium, fatty acids, trace elements, 2-mercaptoethanol, thiolglycerol, lipids, amino acids, L-glutamine, non-essential amino acids, vitamins, growth factors, small molecules
  • One or more substances such as compounds, antibiotics, antioxidants, pyruvate, buffers, inorganic salts, cytokines and the like may also be included.
  • cancer cells after introduction of a cell regulatory factor may be cultured by appropriately selecting a culture solution suitable for the characteristics of the cell regulatory factor, and the conditions are exemplified below.
  • a culture solution for cells after reprogramming is, for example, DMEM, DMEM / F12 or DME culture solution containing 10 to 15% FBS (in addition to these culture solutions) , LIF, penicillin / streptomycin, puromycin, L-glutamine, non-essential amino acids, ⁇ -mercaptoethanol, etc.) or a commercially available culture solution (for example, a culture solution for mouse ES cell culture (TX-WES Culture medium, Thrombo X), culture medium for primate ES cell culture (culture medium for primate ES / iPS cells, Reprocell), serum-free medium (mTeSR, Stemcell Technology)), and the like.
  • DMEM DMEM / F12 or DME culture solution containing 10 to 15% FBS (in addition to these culture solutions) , LIF, penicillin / streptomycin, puromycin, L-glutamine, non-essential amino acids, ⁇ -mercaptoethanol, etc.
  • Examples of cell culture methods after initialization include, for example, contacting somatic cells with reprogramming factors on DMEM or DMEM / F12 medium containing 10% FBS in the presence of 5% CO 2 at 37 ° C. Cultivate for about 4-7 days, then re-spread the cells on feeder cells (eg, mitomycin C-treated STO cells, SNL cells, etc.), and bFGF-containing primate ES approximately 10 days after contact between the somatic cells and the reprogramming factor
  • the cells can be cultured in a culture medium for cell culture, and iPS-like colonies can be formed about 30 to about 45 days or more after the contact.
  • 10% FBS-containing DMEM medium including LIF, penicillin / streptomycin, etc.
  • feeder cells eg, mitomycin C-treated STO cells, SNL cells, etc.
  • 5% CO 2 at 37 ° C. can be suitably included with puromycin, L-glutamine, non-essential amino acids, ⁇ -mercaptoethanol, etc.
  • ES-like colonies after about 25 to about 30 days or more .
  • somatic cells to be reprogrammed themselves are used (Takahashi K, et al. (2009), PLoS One. 4: e8067 or WO2010 / 137746), or extracellular matrix (eg, Laminin- 5 (WO2009 / 123349) and Matrigel (BD)) are exemplified.
  • iPS cells may be established under hypoxic conditions (oxygen concentration of 0.1% or more and 15% or less) (Yoshida Y, et al. (2009), Cell Stem Cell. 5: 237 -241 or WO2010 / 013845).
  • the culture solution and culture conditions for the cells after the introduction of the factor are described, for example, in WO2014 / 148646, Wapinski OL et al, Cell. 155: 621-635, 2013 And the like.
  • the culture medium and culture conditions for the cell after the factor introduction are described in, for example, Han DW et al, Cell Stem Cell. 10: 465-472, 2012 And the like.
  • the cell regulatory factor is a neural crest cell inducing factor
  • the culture medium and culture conditions for the cell after introduction of the factor are described, for example, in Kim YJ, et al, Cell Stem Cell. 15: 497-506, 2014 And the like.
  • the cell regulatory factor is a cardiomyocyte-inducing factor
  • examples of the culture solution and culture conditions for cells after the introduction of the factor include those described in Ieda M et al, Cell. 142: 375-386, 2010, etc. Is mentioned.
  • the cell regulatory factor is a muscle cell inducing factor
  • examples of the culture solution and culture conditions for the cells after the introduction of the factor include those described in Tanaka A, et al, PLoS One. 8: e61540, 2013, etc. Is mentioned.
  • the cell regulatory factor is a chondrocyte-inducing factor
  • examples of the culture solution and culture conditions for the cell after introduction of the factor include those described in Outani H, et al, PLoS One. 8: e77365, 2013, etc. Is mentioned.
  • the culture solution and culture conditions for the cell after the factor introduction are described in, for example, HuangHP, et al, Cell Stem Cell. 14: 370-384, 2014 And the like.
  • the cell regulatory factor is a melanocyte-inducing factor
  • examples of the culture solution and culture conditions for the cells after the introduction of the factor include those described in Yang R, et al, Nat Commun.:5:5807, ⁇ 2014, etc. Is mentioned.
  • the cell regulatory factor is a hematopoietic progenitor cell inducing factor
  • examples of the culture solution and culture conditions for cells after the introduction of the factor include those described in Batta K, Cell Rep. 9: 1871-84, 2014, etc. Is mentioned.
  • the cell regulatory factor is an erythroblast-inducing factor
  • the culture solution and culture conditions for the cell after introduction of the factor are described in, for example, Hirose S, et al, Stem Cell Reports. 1: 499-508, 2013 And the like.
  • the culture solution and culture conditions for the cell after introduction of the factor are, for example, NakamuraNS, et al, Cell Stem Cell. 14: 535-548, 2014 What is described is mentioned.
  • test substance in the screening method of the present invention, any test substance can be used, and any known compound and novel compound may be used.
  • the test substance may also be (1) a biological library method, (2) a synthetic library method using deconvolution, (3) “one-bead one-compound” live Can be obtained using any of a number of approaches in combinatorial library methods known in the art, including rally methods, and (4) synthetic library methods using affinity chromatography sorting.
  • Biological library methods using affinity chromatography sorting are limited to peptide libraries, but the other four approaches can be applied to small molecule compound libraries of peptides, non-peptide oligomers, or compounds (Lam (1997) Anticancer Drug Des. 12: 145-67).
  • Examples of methods for the synthesis of molecular libraries can be found in the art (DeWitt et al. (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90: 6909-13; Erb et al. (1994) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91: 11422-6; Zuckermann et al. (1994) J. Med. Chem. 37: 2678-85; Cho et al.
  • the contact between the cancer cell and the test substance can be preferably carried out by culturing the cancer cell into which the cell regulatory factor has been introduced as described above in a culture solution to which the test substance is added.
  • concentration of the test substance added to the culture solution can be appropriately selected within a range that does not adversely affect the growth of cells, but is usually 0.1-100 nM.
  • Examples of the contact initiation time include immediately after the introduction of the cell regulatory factor or within a few days.
  • exogenous cell regulators are introduced into cancer cells in a form in which expression can be controlled (ON / OFF enabled)
  • contact can be initiated simultaneously with expression ON treatment or within a few days after the treatment. .
  • the contact period is not particularly limited as long as it is a time sufficient for the change of cancer cells to be observed, but it is usually sufficient to allow it to coexist in the culture solution until a positive colony appears.
  • Changes in cancer cells In the method for screening a therapeutic drug for cancer of the present invention , changes in cells caused by expression of an exogenous cell regulator in cancer cells under the contact of a test substance are used as an index. be able to. In the present invention, the change in the cancer cells depends on the cell regulatory factor to be introduced.
  • initialization means not only complete initialization (ie, establishment of iPS cells with stable pluripotency and undifferentiated state), but also change to a more undifferentiated state compared to the original cancer cells.
  • the cell regulatory factor is a factor that directly induces differentiation into other cells without initialization, not only complete differentiation into the target cell, Including a change to a state in which the characteristics of the target cell are acquired as compared to the original cancer cell. Therefore, the initialization of cancer cells can be evaluated using colony formation, undifferentiated specific antigen expression, or undifferentiated specific gene expression as an index.
  • undifferentiated specific genes include genes that show specific expression in embryonic stem cells or genes that suggest an important role in maintaining pluripotency. Such genes include Cell. 2005 Sep 23. ; 122 (6): 947-56, Stem Cells. 2004; 22 (1): 51-64., Mol Biol Cell. 2002 Apr; 13 (4): 1274-81., Mol Reprod Dev. 2000 Jun; 56 (2): 113-23., EMBO J. 1998 Apr 1; 17 (7): 2019-32., Proc Natl Acad Sci U S A. 2003 Nov 11; 100 (23): 13350-5., Development. 2005 Mar; 132 (5): 885-96., Blood.
  • the undifferentiated specific antigen is selected from the group consisting of, but not limited to, SSEA-1, SSEA-3, SSEA-4, TRA-2-54, TRA-1-60 and TRA-1-80 Examples are antigens. Since SSEA-1 is not detected in undifferentiated cells in humans, SSEA-3 and SSEA-4 are preferably used in place of SSEA-1.
  • colonies is not particularly limited, but is measured under a microscope and evaluated by the number. This measurement may be performed mechanically (WO2011 / 010449) or visually.
  • cells expressing an undifferentiated specific antigen can be evaluated as the number of cells expressing the antigen using a cell sorter such as FACS. It can be evaluated as the expression level by enzyme PCR analysis, quantitative reverse transcriptase PCR analysis, Northern blot analysis, immunohistochemistry, array analysis, RNA-seq analysis, reporter gene analysis and combinations thereof. Therefore, in the present invention, changes in cancer cells can be paraphrased as an increase in the number of cells expressing an undifferentiated specific antigen, an increased expression level of an undifferentiated specific gene, or a colony formation.
  • the change in cancer cells can be evaluated using the expression of a nerve cell specific gene as an index.
  • a nerve cell specific gene include genes selected from the group consisting of MFNG, GRIP1, NGFR, Zfp238, GRINT1 and SYT3 (WO2014 / 148646 and Wapinski OL et al, Cell. 155: 621-635, 2013) .
  • the cell regulatory factor is a neural stem cell inducing factor
  • changes in cancer cells can be evaluated using the expression of neural stem cell specific genes as an index.
  • the nerve cell-specific gene include genes selected from the group consisting of Olig2, Sox2 and Mash1 / Ascl1 (Han DW et al, Cell Stem Cell. 10: 465-472, 2012).
  • the change in cancer cells can be evaluated using the expression of neural crest cell specific gene as an index.
  • neural crest cell-specific genes include genes selected from the group consisting of TWIST1, SNAIL2, ITGA4, ITGA6, SOX5, SOX6, PLP1 and Myelin Protein Zero [MPZ] (Kim YJ, et al, Cell Stem Cell . 15: 497-506, 2014).
  • the change in cancer cells can be evaluated using the expression of a cardiomyocyte-specific gene as an index.
  • a cardiomyocyte-specific gene examples include ⁇ MHC or cTnT (Ieda M et al, Cell. 142: 375-386, 2010).
  • muscle cell-specific genes include genes selected from the group consisting of myogenin, myosin heavy chain (MHC), MEF2C and SIX1 (Tanaka A, et al, PLoS One. 8: e61540, 2013).
  • chondrocyte-specific genes include genes selected from the group consisting of COL11A2, COL2A1, and ACAN (Outani H, et al, PLoS One. 8: e77365, 2013).
  • hepatocyte-specific genes include genes selected from the group consisting of albumin (ALB), ⁇ -1-antitrypsin (AAT), CYP1A2, CYP2A6, CYP2B6, CYP2C8, CYP2C9 and CYP3A4 (Huang P, et al , Cell Stem Cell. 14: 370-384, 2014).
  • melanocyte-specific genes include genes selected from the group consisting of TYR, TYRP1 and DCT (Yang R, et al, Nat Commun. 5: 5807, 2014).
  • hematopoietic progenitor cell inducing factor When the cell regulatory factor is a hematopoietic progenitor cell inducing factor, changes in cancer cells can be evaluated using the expression of hematopoietic progenitor cell specific genes as an index.
  • hematopoietic progenitor cell-specific genes include genes or antigens selected from the group consisting of CD31, CD41, c-KIT, CD45, CD11b and TER119 (Batta K, Cell Rep. 9: 1871-84, 2014) .
  • erythroblast-specific genes include genes or antigens selected from the group consisting of GPA, CD71, GATA1 and RAF1 (Hirose S, et al, Stem Cell Reports. 1: 499-508, 2013).
  • megakaryocyte progenitor cell inducer When the cell regulatory factor is a megakaryocyte progenitor cell inducer, changes in cancer cells can be evaluated using the expression of megakaryocyte progenitor cell specific genes as an index.
  • megakaryocyte progenitor cell-specific genes include genes or antigens selected from the group consisting of CD41a, CD42a, CD42b and CD9 (Nakamura S, et al, Cell Stem Cell. 53514: 535-548, 2014).
  • cells expressing the gene can also be evaluated as the number of cells using a cell sorter such as FACS, and reverse transcriptase PCR analysis
  • the expression level can also be evaluated by quantitative reverse transcriptase PCR analysis, Northern blot analysis, immunohistochemistry, array analysis, reporter gene analysis, and combinations thereof. Therefore, in the present invention, “increasing changes in cancer cells” can be paraphrased as the number of cells expressing the gene increases or the expression level of the gene increases.
  • Kit for Screening for Drug for Cancer contains the above-mentioned cell regulatory factor.
  • the kit for screening for a therapeutic drug for cancer may further include a document and instructions describing the production procedure of cell control and the measurement method and procedure of the index.
  • it may further include a panel of various cancer cells having different effective target proteins (wherein the effective target protein has the same meaning as described above), or a cell serving as an indicator of changes in the cancer cells.
  • An antibody against a surface antigen and a nucleic acid for detecting a cell-specific gene can be further included.
  • a method for identifying a protein that can be a drug discovery target of a cancer therapeutic agent includes the following steps: (I) In a cancer cell containing a gene encoding a test protein (candidate gene) in a form in which expression can be controlled, the gene is exogenous under conditions where the candidate gene is expressed or expression of the gene is suppressed.
  • the method includes a step of selecting the test protein as a protein that can be a drug discovery target of a therapeutic drug for cancer.
  • candidate genes are identified as a result of exhaustive analysis of gene expression in cancer cells using a microarray or the like, and are highly expressed in genes or cancer cells that are specifically expressed in cancer cells. Genes that are present.
  • the expression-controllable form means a form capable of ON / OFF of the expression of the candidate gene.
  • the candidate gene is an inducible promoter (eg, metallothionein promoter (induced by heavy metal ions), heat Under the control of shock protein promoter (induced by heat shock), Tet-ON / Tet-OFF system promoter (induced by addition or removal of tetracycline or its derivative), steroid-responsive promoter (induced by steroid hormone or its derivative), etc.) And expression vectors placed in the above.
  • metallothionein promoter induced by heavy metal ions
  • shock protein promoter induced by heat shock
  • Tet-ON / Tet-OFF system promoter induced by addition or removal of tetracycline or its derivative
  • steroid-responsive promoter induced by steroid hormone or its derivative
  • the EWS / ATF1 fusion gene described in Yamada K, et al, J Clin Invest. 123: 600-610, 2013 is induced in a doxycycline (Dox) -dependent manner
  • Dox doxycycline
  • a possible mouse sarcoma cell line also referred to as G1297 strain
  • the sarcoma cells have been confirmed to stop growth in vitro and to regress tumors in vivo due to EWS / ATF1 expression cessation.
  • G1297 was initialized by introducing an initialization factor into G1297.
  • EWS / ATF1 sarcoma cells expressing EWS / ATF1
  • reprogramming factors 4F: Oct3 / 4, Sox2, Klf4, and c-Myc
  • FIGS. 1A to 1C reprogramming factors
  • Oct3 / 4 Sox2, Klf4 and c-Myc were each introduced into Plat-E cells using a pMXs-based retroviral vector, and the virus-containing supernatant was collected and filtered through a 0.45 ⁇ m cellulose acetate filter.
  • G1297 was seeded at 8 ⁇ 10 5 cells per 60-mm dish, infected with the virus-containing supernatant, and replaced with LIF-containing ES medium on the third day after infection.
  • the established iPS cell-like cell line was confirmed to express EWS / ATF1 in a doxycycline-dependent manner, similar to the parent sarcoma cell (FIG. 1D). Furthermore, some chromosomal abnormalities were also observed, confirming that the iPS cell-like cell line was derived from sarcoma cells (FIG. 1E).
  • pluripotency-related genes such as Nanog and endogenous Oct3 / 4 (Pou5f1) in iPS cell-like cells derived from the sarcoma cells was compared with ES cells, there was no significant difference (Fig. 1F and FIG. 3D).
  • RT-PCR was performed using the following method.
  • the efficiency of initialization of sarcoma cells was 0.06%, which was shown to be lower than the initialization efficiency of MEF.
  • iPS cell-like cells were administered subcutaneously to immunodeficient mice, teratomas were formed, and chimeric mice could be created by injection into blastocysts (FIGS. 1G and 1H).
  • EWS / ATF1 expression-dependent sarcoma cells pluripotent cells can be obtained by reprogramming by suppressing the expression of EWS / ATF1.
  • EWS / ATF1 acts suppressively in the reprogramming of EWS / ATF1 expression-dependent sarcoma cells.
  • EWS / ATF1 does not suppress the generation of SSEA1-positive cells due to reprogramming in MEF (Fig. 1J), so that the expression of EWS / ATF1 results in the suppression of reprogramming specific to sarcoma cells.
  • sarcoma cells when 4F is introduced (4F-sarcoma cells) or sarcoma cells when GFP is introduced as a negative control
  • the microarray analysis was performed for each of the cases where EWS / ATF1 was expressed and not expressed (FIG. 3E).
  • Microarray analysis was performed using Mouse-Gene-1.0-ST-Array (Affymetrix Inc., Santa Clara, USA). All data analysis was performed using GeneSpring GX software program (version 12; Agilent Technologies, Santa Clara, USA).
  • FIG. 1L the influence of EWS / ATF1 expression on skeletal muscle differentiation induction by introduction of MYOD1 was examined.
  • MYOG Myogenin
  • Fig. 1M MYOD1-introduced sarcoma cells
  • MHC myosin heavy chain
  • epidermal growth factor receptor (EGFR) mutant lung cancer cell line HCC827 is sensitive to EGFR tyrosine kinase inhibitor Gefitinib and HER2 tyrosine kinase inhibitor Lapatinib, HER2-amplified breast cancer cell line SK-BR3 to Lapatinib It is known to show sensitivity.
  • EGFR epidermal growth factor receptor
  • Nanog was measured by a method other than quantitative RT-PCR.
  • the experimental procedure is the same as the schematic diagram in FIG. 3E.
  • Reprogramming factor (+ 4F) or GFP was introduced into G1297 strain expressing EWS / ATF1 by Dox addition by retrovirus, and Dox was added 4 days after the introduction.
  • RNA-seq analysis was performed to examine the expression of Nanog in cells (DoxOFF) that stopped and those that continued to add Dox (DoxON). The results are shown in FIG. In DoxOFF + 4F cells, it was confirmed that the expression of the Nanog gene was increased, that is, the expression of the Nanog gene was increased by suppressing the expression of EWS / ATF1.
  • RNA-seq analysis was performed using the following method.
  • a library was created using TruSeq StrandedandTotal RNA with Ribo-Zero Gold LT sample Prep kit (illumina) .
  • concentration quantification using KAPA Library Quantification kits Nippon Genetics
  • sequence was performed with Hiseq 2500 (illumina) using Hiseq PE PE Rapid Cluster Kit v2-HS. The sequence data was analyzed using TopHat software and Cufflinks software, and visualized by IGV (Integrative Genomics Viewer).
  • reporter cells by genome editing technique using Talen, TagBFP gene as a reporter gene, the targeting vector containing the synthetic Renilla luciferase (hRL) gene and puromycin-resistant gene using, HEK298 A reporter cell that stably expresses TagBFP and synthetic Renilla luciferase (hRL) was prepared by knocking in between exon 1 and exon 2 at the PPP1R2C locus of the cell. After selecting TagBFP-expressing cells by cell sorting using FACS, luciferase assay was performed.
  • a reporter gene can be introduced into cancer cells by the same method, and the number of cells of the reporter cells prepared in this way can be calculated from the luminescence intensity of luciferase.
  • a targeting vector containing a GFP gene, a modified firefly luciferase (Luc2) gene and a neomycin resistance gene as a reporter gene was prepared.
  • the targeting vector by genome editing technology using CRISPR / Cas9, between the 5 'untranslated region (5'UTR) and coding region (CDS) of exon 1 in the Nanog locus of mouse cancer cells
  • the reporter gene can be knocked in.
  • the reporter is inserted between the CDS of exon 4 and the 3 ′ untranslated region (3′UTR) in the Nanog locus of mouse cancer cells.
  • a gene can be knocked in.
  • a targeting vector containing a GFP gene, a secreted NanoLuc TM luciferase (secNluc) gene and a neomycin resistance gene as a reporter gene was prepared.
  • the reporter is inserted between the CDS of exon 4 and the 3 ′ untranslated region (3′UTR) in the Nanog locus of human cancer cells.
  • a gene can be knocked in.
  • the cells produced in this manner also express a reporter gene when Nanog is expressed, and therefore, by using the cells, without measuring the expression level of an undifferentiated specific gene such as Nanog, It is suitable for use in the screening method of the present invention.

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Abstract

　本発明は、膨大な数の標的タンパク質の候補の中から、真の標的タンパク質を同定することなく、いずれかのタンパク質を標的とする分子標的薬としてのがん治療薬をスクリーニングする方法を提供することを目的とする。　本発明は、（i）対象となるがん細胞内で、被験物質との接触下または非接触下で、外因性の細胞制御因子を発現させる工程、（ii）がん細胞の変化を確認する工程、および（iii）被験物質との接触下において、非接触下と比較してがん細胞の変化が増加した場合、当該被験物質をがんの治療薬として選出する工程を含む、がんの治療薬をスクリーニングする方法を提供することにより、上記課題を解決する。

Description

がんの治療薬のスクリーニング方法
　本発明は、がんの治療薬をスクリーニングする方法に関する。
　近年、がん治療において、分子標的薬、すなわち、がん細胞の増殖・進展に関わる重要な細胞内シグナルに関係するタンパク質を直接標的とした治療薬が有効であることが多く示されており、新規な創薬標的となり得るタンパク質の探索が盛んにおこなわれている。がん治療の標的候補タンパク質として、がん細胞で特有あるいは過剰に発現している遺伝子によってコードされるタンパク質が例示される。マイクロアレイ法などの網羅的解析により、このような標的候補タンパク質をコードする遺伝子を多く見出すことは可能であるが、その中から実際にがん治療の標的となり得るタンパク質をコードする真の標的遺伝子を特定するのには過度の実験を要する。
　また、体細胞を初期化する技術が開発され、がん細胞を初期化する試みがなされているが（非特許文献１）、このような試みは、がん細胞そのものの性質を変えることに主眼が置かれており、がん細胞の初期化を利用したがんの治療薬のスクリーニングについての報告はない。
Kosaka T, et al, Cancer Sci. 104:1017-1026, 2013
　本発明の課題は、がんの治療薬をスクリーニングする方法を提供することにある。
　本発明者らは上記の課題を解決すべく鋭意検討を行った結果、がん細胞を初期化又は別の細胞種に直接分化誘導する際に、既知標的遺伝子（即ち、がん細胞の増殖・進展に関わる重要な細胞内シグナルに関係することが既知のタンパク質をコードする遺伝子）の発現を抑制すると、初期化又は分化が亢進すること、言い換えれば、これらの標的遺伝子にコードされるタンパク質は、がん細胞としての特徴を維持し、がん細胞の運命変更を抑制する作用があることを見出した。さらに、既存の分子標的薬の標的タンパク質を発現するがん細胞に、該分子標的薬との接触下で初期化因子を導入したところ、薬剤非接触下で初期化した場合に比べて、初期化の程度が亢進されていることを確認した。従って、有効な標的タンパク質が既知のがん細胞と被験物質とを接触させた状態で当該がん細胞を初期化又は別の細胞種に直接分化誘導し、初期化又は分化が亢進した場合、当該被験物質が当該標的遺伝子の活性を抑制する機能を有すると確認できることが明らかとなった。また、任意のがん細胞を対象とした場合でも、被験物質が当該がん細胞の初期化又は分化を亢進させた場合、当該被験物質は、当該がん細胞の増殖・進展に関わる細胞内シグナルに関係する何らかのタンパク質の活性を抑制する機能を有すると推定できるので、標的タンパク質（標的遺伝子）を同定することなく、がん治療薬の候補物質を直接スクリーニングすることが可能となる。
　本発明者らは、これらの知見に基づいてさらに研究を重ねた結果、本発明を完成するに至った。
　すなわち、本発明は以下の方法を提供する。
［１］下記の工程を含む、がんの治療薬をスクリーニングする方法；
（i）対象となるがん細胞内で、被験物質との接触下または非接触下で、外因性の細胞制御因子を発現させる工程、
（ii）がん細胞の変化を確認する工程、および
（iii）被験物質との接触下において、非接触下と比較してがん細胞の変化が増加した場合、当該被験物質をがんの治療薬として選出する工程。
［２］前記細胞制御因子が、初期化因子であり、前記がん細胞の変化が、がん細胞の初期化である、［１］に記載の方法。
［３］前記初期化因子が、Oct3/4、Sox2、Klf4およびc-Mycである、［２］に記載の方法。
［４］前記がん細胞の初期化が、未分化特異的抗原が陽性である細胞数、または当該がん細胞における未分化特異的遺伝子の発現量を指標として評価される、［２］または［３］に記載の方法。
［５］前記未分化特異的遺伝子が、Nanog、Epcam、Cdh1、Fbxo15、PODXLおよびGDF3から選択される１以上の遺伝子である、［４］に記載の方法。
［６］前記がん細胞の初期化が、形成されるコロニー数を指標として評価される、［２］または［３］に記載の方法。
［７］前記細胞制御因子が、MyoD1であり、前記がん細胞の変化が、がん細胞から筋管細胞への変化である、［１］に記載の方法。
［８］前記がん細胞から筋管細胞への変化が、ミオゲニン（myogenin）またはミオシン重鎖（myosin heavy chain）の発現量を指標として評価される、［７］に記載の方法。
［９］下記の工程を含む、がん治療薬の創薬標的となり得るタンパク質の同定方法：
（i）被験タンパク質をコードする遺伝子を、発現制御可能な形態で含むがん細胞内で、該遺伝子を発現する条件下または該遺伝子の発現が抑制された条件下で、外来性の細胞制御因子を発現させる工程、
（ii）がん細胞の変化を確認する工程、および
（iii）該遺伝子の発現が抑制された条件下において、該遺伝子を発現する条件下と比較してがん細胞の変化が増加した場合、当該被験タンパク質をがんの治療薬の創薬標的となり得るタンパク質として選出する工程。
　本発明により、標的遺伝子を同定する必要がなく、分子標的薬となるがんの治療薬を直接スクリーニングすることが可能となる。また、本発明により、がん細胞に対する高い効果を有するがんの治療薬をスクリーニングすることが可能となる。
図１Aは、EWS/ATF1の発現誘導と初期化因子の導入の方法を記載した概略図を示す。図１Bは、EWS/ATF1を発現誘導した（DOX 0.2μg/ml）場合または誘導しなかった（DOX 0μg/ml）場合における初期化因子の導入後のサルコーマ細胞株G1297の位相差顕微鏡像を示す。図１Cは、EWS/ATF1を発現誘導した（DOX 0.2または0.1μg/ml）場合または誘導しなかった（DOX 0μg/ml）場合における初期化因子の導入後のコロニー形成数を測定した結果を示す。図１Dは、サルコーマ細胞株G1297から樹立したiPS細胞株（C-1、C-2、C-3およびC-4）へ0.2μg/mlのDOX添加によるEWS/ATF1の発現誘導をRT-PCRで確認した結果を示す。図１Eは、サルコーマ細胞株G1297および同細胞株から樹立したiPS細胞株における染色体マイクロアレイ（CGHアレイ）解析の結果を示す。図１Fは、iPS細胞株（C-1、C-2、C-3およびC-4）におけるNanogの発現をRT-PCRで測定した結果（左図）およびiPS細胞株をNanogおよびDAPIで染色した染色像（右図）を示す。図１Gは、サルコーマ細胞株G1297から樹立したiPS細胞をヌードマウスの皮下に移植して形成されたテラトーマの染色像を示す。図１Hは、サルコーマ細胞株G1297から樹立したiPS細胞を胚盤胞へ注入し、発生したキメラマウスの写真を示す。図１Iは、サルコーマ細胞株G1297へ初期化因子（4F）導入後4日目にEWS/ATF1を発現誘導した（DOX 0.2または0.1μg/ml）場合または誘導しなかった（DOX 0μg/ml）場合における4F導入後10日目にSSEA1の陽性率を測定したFACSの結果を示す。図１Jは、マウス胚性線維芽細胞（MEF）へ初期化因子（4F）導入後4日目にEWS/ATF1を発現誘導した場合（DOX 0.2または0.1μg/ml）または誘導しなかった（DOX 0μg/ml）場合における4F導入後10日目にSSEA1の陽性率を測定したFACSの結果を示す。図１Kは、サルコーマ細胞株G1297へ初期化因子（4F）導入またはGFP導入後4日目にEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合において、4F導入またはGFP導入後6日目の細胞から回収したRNAを用いてマイクロアレイ解析をした結果を示す。図１Lは、EWS/ATF1の発現誘導とMYOD1を導入する方法を記載した概略図を示す。図１Mは、サルコーマ細胞株G1297へMYOD1導入した細胞においてEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合でのMyogeninの発現をRT-PCRで測定した結果を示す。図１Nは、サルコーマ細胞株G1297へMYOD1導入した細胞においてEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合において、Myosin heavy chain（MHC）およびDAPIで染色した染色像（左図）およびMyosin heavy chainの発現をRT-PCRで測定した結果（右図）を示す。図１Oは、サルコーマ細胞株G1297へMYOD1導入またはGFP導入後4日目にEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合において、MYOD1導入またはGFP導入後6日目の細胞から回収したRNAを用いてマイクロアレイ解析をした結果を示す。 図２Aは、MP-CCS-SY細胞株へ初期化因子、MYOD1またはGFPおよびsiRNAの導入の方法を記載した概略図を示す。図２Bは、MP-CCS-SY細胞株へ初期化因子（+4F）またはGFPを導入した場合における、RNAiによりEWS/ATF1を発現抑制した（siEWS/ATF1）場合または発現抑制しなかった（siControl）場合でのPODXLの発現をRT-PCRで測定した結果（左図）、およびMP-CCS-SY細胞株へMYOD1またはGFPを導入した場合における、RNAiによりEWS/ATF1を発現抑制した（siEWS/ATF1）場合または発現抑制しなかった（siControl）場合でのMyogeninの発現をRT-PCRで測定した結果（右図）を示す。図２Cは、HCC827またはSK-BR3細胞株へ初期化因子の導入および各薬剤の添加方法を記載した概略図を示す。図２Dは、SK-BR3細胞株へ初期化因子を導入した（Dox(4F)+）場合または導入しなかった（Dox(4F)-）場合におけるDMSO、5FUまたはLapatinib（Lap）を添加した場合でのPODXLの発現をRT-PCRで測定した結果（左図）およびHCC827細胞株へ初期化因子を導入した（Dox(4F)+）場合または導入しなかった（Dox(4F)-）場合におけるDMSO、5FUまたはGefitinib（Gef）を添加した場合でのPODXLの発現をRT-PCRで測定した結果（右図）を示す。図２Eは、SK-BR3細胞株へ初期化因子を導入した（Dox(4F)+）場合または導入しなかった（Dox(4F)-）場合における、Lapatinib（Lap）またはDMSOを添加した場合でのマイクロアレイ解析の結果（左図）、およびHCC827細胞株へ初期化因子を導入した（Dox(4F)+）場合または導入しなかった（Dox(4F)-）場合におけるGefitinib（Gef）またはDMSOを添加した場合でのマイクロアレイ解析の結果（右図）を示す。 図３Aは、サルコーマ細胞株G1297へドキシサイクリン（DOX） 0、0.1、0.2、1または2μg/mlを添加して培養した際の増殖曲線を示す。図３Bは、サルコーマ細胞株G1297へ初期化因子を導入した（+4F）場合または導入しなかった（-4F）場合において、EWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合でのOct3/4量をウェスタンブロッティング法で測定した結果を示す。図３Cは、EWS/ATF1を発現誘導しなかった（DOX 0μg/ml）場合における初期化因子の導入後に樹立されたiPS細胞の位相差顕微鏡像を示す。図３Dは、サルコーマ細胞株G1297においてEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合でのOct3/4およびNanogの発現量をRT-PCR法で測定した結果を示す。図中、ESC（ES細胞）は陽性対照として用いた。図３Eは、EWS/ATF1の発現誘導と初期化因子の導入の方法を記載した概略図を示す。図３Fは、サルコーマ細胞株G1297へ初期化因子を導入した（+4F）場合または導入しなかった（GFP）細胞において、EWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合でのCadh1（左図）およびEpcam（右図）の発現をRT-PCRで測定した結果を示す。 図４Aは、初期化因子を導入するためのPiggyBacベクターのコンストラクトおよびSK-BR3へ導入後の細胞の位相差像および蛍光像を示す。図４Bは、A549細胞株へ初期化因子を導入した（Dox(4F)+）場合または導入しなかった（Dox(4F)-）場合における、DMSO、5FU（1ｍMまたは10mM）またはGefitinib（Gef）（10mMまたは50mM）を添加した場合でのPODXLの発現をRT-PCRで測定した結果を示す。 図５Aは、HCC827およびSK-BR3へのDox添加による初期化因子の誘導と、抗がん剤（Gefitinib、Imatinib、Lapatinib、5-FU）の導入の方法を記載した概略図を示す。図5Bは、HCC827およびSK-BR3へ初期化因子を誘導した（Dox(4F)+）場合における、Gefitinib（0μM(DMSOを添加)、0.005μMまたは0.05μM）、Imatinib（0μM(DMSOを添加)、１μMまたは10μM）、Lapatinib（0μM(DMSOを添加)、0.05μMまたは0.5μM）または5-FU（0μM(DMSOを添加)、10μMまたは50μM）を添加した場合でのNanogおよびGDF3の発現をRT-PCRで測定し、転写レベルをGAPDH値で標準化した結果を示す。 図６は、マウスサルコーマ細胞株G1297へEWS/ATF1を発現誘導した（DoxON）場合または誘導しなかった（DoxOFF）場合において、それぞれ初期化因子を導入（+4F）または導入しなかった場合での第６染色体のNanog遺伝子座におけるRNA-seq解析の結果を示す。 図７Aは、レポーター細胞作製用のターゲティングベクターのコンストラクト、およびそのコンストラクトを、TALENを用いたゲノム編集技術により、ヒト胎児腎臓由来のHEK293細胞のPPP1R2C遺伝子座に導入する方法を記載した概略図を示す。図中、hRLは合成ウミシイタケルシフェラーゼ遺伝子を示し、TagBFPは青色蛍光タンパク質遺伝子を示し、PuroRはピューロマイシン耐性遺伝子を示す。また、LHAおよびRHAはそれぞれ左側と右側のホモロジーアーム(homology arm)を示す。図７Bは、図7Aのコンストラクトを用いて行ったルシフェラーゼアッセイの概要図（左図）およびその結果を示す（右図）。グラフの横軸は細胞の数を示し、縦軸はルシフェラーゼの相対的な発光強度を示す。 図８は、レポーター細胞作製用のターゲティングベクターのコンストラクト、およびそのコンストラクトを、CRISPR/Cas9を用いたゲノム編集技術により、マウスがん細胞のNanog遺伝子座に導入する方法を記載した概略図を示す。図中、Luc2はホタルルシフェラーゼ遺伝子を示し、GFPは緑色蛍光タンパク質遺伝子を示し、NeoRはネオマイシン耐性遺伝子を示す。また、Roxは部位特異的組換え酵素Dreの標的配列を示し、sgRNAは一本鎖ガイドRNAを示す。 図９は、レポーター細胞作製用のターゲティングベクターのコンストラクト、およびそのコンストラクトを、CRISPR/Cas9を用いたゲノム編集技術により、マウスがん細胞のNanog遺伝子座に導入する方法を記載した概略図を示す。図中、secNlucは分泌型のNanoLucTMルシフェラーゼ遺伝子を示し、BsdRはブラストサイジン耐性遺伝子を示す。 図１０は、レポーター細胞作製用のターゲティングベクターのコンストラクト、およびそのコンストラクトを、CRISPR/Cas9を用いたゲノム編集技術により、ヒトがん細胞のNanog遺伝子座に導入する方法を記載した概略図を示す。
　本発明は、下記の工程を含む、がんの治療薬をスクリーニングする方法を提供する；
（i）対象となるがん細胞内で、被験物質との接触下または非接触下で、外因性の細胞制御因子を発現させる工程、
（ii）がん細胞の変化を確認する工程、および
（iii）被験物質との接触下において、非接触下と比較してがん細胞の変化が増加した場合、当該被験物質をがんの治療薬として選出する工程。
がん細胞
　本発明において、がんとは、悪性腫瘍を意味し、癌腫（上皮細胞由来の悪性腫瘍）、肉腫、その他白血病などを含み、特定のがんに限定されない。また、本発明で用いるがん細胞とは、悪性腫瘍を構成する細胞であり、株化された細胞であっても生体内から単離された細胞であってもよい。また、本発明で用いるがん細胞は、有効な標的タンパク質が既知（即ち、ある既存の分子標的薬に対して感受性であることが既知）のがん細胞（例えば、EWS/ATF1融合遺伝子強制発現がん細胞、ゲフィチニブ感受性の変異EGFR発現がん細胞、ラパチニブ感受性のHER2-増幅がん細胞、アレクチニブ感受性のEML4-ALK融合遺伝子発現がん細胞、イマチニブ感受性の慢性骨髄性白血病細胞など）であってもよいし、有効な標的タンパク質が不明のがん細胞であってもよい。
　本発明のスクリーニング方法に使用するがん細胞は、レポーター遺伝子を含有していてもよい。レポーター遺伝子の例としては、ルシフェラーゼ遺伝子、蛍光タンパク質遺伝子、および薬剤耐性遺伝子などが挙げられるが、これらに限定されない。ルシフェラーゼ遺伝子として、ホタルルシフェラーゼ遺伝子、合成ウミシイタケルシフェラーゼ遺伝子、分泌型のルシフェラーゼ遺伝子などが挙げられるが、タンパク質の回収の容易さからは、分泌型のルシフェラーゼ遺伝子が好ましい。蛍光タンパク質遺伝子として、GFPやEGFPなどの緑色蛍光タンパク質遺伝子、BFPやTagBFPなどの青色蛍光タンパク質遺伝子、RFPやDsRedなどの赤色蛍光タンパク質遺伝子などが挙げられる。薬剤耐性遺伝子として、カナマイシン耐性遺伝子、アンピシリン耐性遺伝子、ネオマイシン耐性遺伝子、ピューロマイシン耐性遺伝子、ブラストサイジン耐性遺伝子などが挙げられる。
　レポーター細胞は、例えば、レポーター遺伝子を相同組換え等により、ゲノム中の特定の遺伝子座にノックインすることにより作製することができる。相同組換えは、ゲノム編集技術を用いて行ってもよく、ゲノム編集技術としては、例えば、ジンクフィンガーDNA結合ドメインと非特異的なDNA切断ドメインとを連結した、ジンクフィンガーヌクレアーゼ（ZFN）を用いる方法（特許第4968498号公報）、DNA結合モジュールである転写活性化因子様（TAL）エフェクターと、DNAエンドヌクレアーゼとを連結したTALEN（TALエフェクターヌクレアーゼ）を用いる方法（特表2013-513389号公報）、あるいは、DNA配列CRISPR（Clustered Regularly interspaced short palindromic repeats）と、CRISPRとともに重要な働きを持つヌクレアーゼCasタンパク質ファミリーとを組み合わせたCRISPR-Cas9システムを利用する方法（特表2010-519929号公報）が挙げられる。特定の遺伝子座としては、ヒトPPP1R2C遺伝子座などのオープンクロマチン構造のため、挿入された遺伝子の発現抑制を受けにくい遺伝子座や、分化多能性細胞において特異的に高発現する遺伝子（例えば、Nanog、Oct3／4、Fbx15など、好ましくはNanog）の遺伝子座が挙げられる。そのようなレポーター遺伝子を含有する組換え細胞としては、例えばNanog遺伝子座に緑色蛍光タンパク質（GFP）遺伝子とピューロマイシン耐性遺伝子を組み込んだトランスジェニックマウス由来のMEF（Okita et al., Nature, 448, 313－317（2007））などが挙げられる。
細胞制御因子
　本発明において、細胞制御因子とは、細胞内に導入することによって当該細胞の性質を変化させ、他の細胞種へと変化させる因子であり、特に限定されないが、例えば、初期化因子、神経細胞誘導因子、神経幹細胞誘導因子、神経冠細胞誘導因子、心筋細胞誘導因子、筋細胞誘導因子、軟骨細胞誘導因子、肝細胞誘導因子、メラニン細胞誘導因子、造血前駆細胞誘導因子、赤芽球誘導因子および巨核球前駆細胞誘導因子などが例示される。
　本発明で用いられる初期化因子としては、例えば、Oct3/4、Sox2、Sox1、Sox3、Sox15、Sox17、Klf4、Klf2、c-Myc、N-Myc、L-Myc、Nanog、Lin28、Fbx15、ERas、ECAT15-2、Tcl1、beta-catenin、Lin28b、Sall1、Sall4、Esrrb、Nr5a2、Tbx3、Glis1またはGDF3等の遺伝子または遺伝子産物が例示され、これらの初期化因子は、単独で用いても良く、組み合わせて用いても良い。初期化因子の組み合わせとしては、WO2007/069666、WO2008/118820、WO2009/007852、WO2009/032194、WO2009/058413、WO2009/057831、WO2009/075119、WO2009/079007、WO2009/091659、WO2009/101084、WO2009/101407、WO2009/102983、WO2009/114949、WO2009/117439、WO2009/126250、WO2009/126251、WO2009/126655、WO2009/157593、WO2010/009015、WO2010/033906、WO2010/033920、WO2010/042800、WO2010/050626、WO 2010/056831、WO2010/068955、WO2010/098419、WO2010/102267、WO 2010/111409、WO2010/111422、WO2010/115050、WO2010/124290、WO2010/147395、WO2010/147612、Huangfu D, et al. (2008), Nat. Biotechnol., 26: 795-797、Shi Y, et al. (2008), Cell Stem Cell, 2: 525-528、Eminli S, et al. (2008), Stem Cells. 26:2467-2474、Huangfu D, et al.(2008), Nat. Biotechnol. 26:1269-1275、Shi Y, et al. (2008), Cell Stem Cell, 3,568-574、Zhao Y, et al. (2008), Cell Stem Cell, 3:475-479、Marson A, (2008), Cell Stem Cell, 3, 132-135、Feng B, et al. (2009), Nat. Cell Biol. 11:197-203、R.L. Judson et al., (2009), Nat. Biotechnol., 27:459-461、Lyssiotis CA, et al. (2009), Proc Natl Acad Sci U S A. 106:8912-8917、Kim JB, et al. (2009), Nature. 461:649-643、Ichida JK, et al. (2009), Cell Stem Cell. 5:491-503、Heng JC, et al. (2010), Cell Stem Cell. 6:167-74、Han J, et al. (2010), Nature. 463:1096-100、MaliP, et al. (2010), Stem Cells. 28:713-720、Maekawa M, et al. (2011), Nature. 474:225-9.に記載の組み合わせが例示される。より好ましい初期化因子は、Oct3/4、Sox2、Klf4およびc-Mycを含む組み合わせである。
　上記初期化因子には、ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤［例えば、バルプロ酸(VPA)、トリコスタチンA、酪酸ナトリウム、MC 1293、M344等の低分子阻害剤、HDACに対するsiRNAおよびshRNA（例、HDAC1 siRNA Smartpool(登録商標) (Millipore)、HuSH 29mer shRNA Constructs against HDAC1 (OriGene)等）等の核酸性発現阻害剤など］、MEK阻害剤（例えば、PD184352、PD98059、U0126、SL327およびPD0325901）、Glycogen synthase kinase-3阻害剤（例えば、BioおよびCHIR99021）、DNAメチルトランスフェラーゼ阻害剤（例えば、5-azacytidine）、ヒストンメチルトランスフェラーゼ阻害剤（例えば、BIX-01294等の低分子阻害剤、Suv39hl、Suv39h2、SetDBlおよびG9aに対するsiRNAおよびshRNA等の核酸性発現阻害剤など）、L-channel calcium agonist(例えばBayk8644)、酪酸、TGFβ阻害剤またはALK5阻害剤（例えば、LY364947、SB431542、616453およびA-83-01）、p53阻害剤（例えばp53に対するsiRNAおよびshRNA）、ARID3A阻害剤（例えば、ARID3Aに対するsiRNAおよびshRNA）、miR-291-3p、miR-294、miR-295およびmir-302などのmiRNA、Wnt Signaling（例えばsoluble Wnt3a）、神経ペプチドY、プロスタグランジン類（例えば、プロスタグランジンE2およびプロスタグランジンJ2）、hTERT、SV40LT、UTF1、IRX6、GLISl、PITX2、DMRTBl等の樹立効率を高めることを目的として用いられる因子も含まれており、本明細書においては、これらの樹立効率の改善目的のために用いられた因子についても初期化因子と別段の区別をしないものとする。
　本発明で用いられる神経細胞誘導因子としては、例えば、Lhx3、Ngn2およびIsl1（WO2014/148646）、Ascl1、Brn2およびMyt1l（Wapinski OL et al, Cell. 155:621-635, 2013）等が挙げられる。
　本発明で用いられる神経幹細胞誘導因子としては、例えば、Brn4/Pou3f4、Sox2、Klf4、c-MycおよびE47/Tcf3（Han DW et al, Cell Stem Cell. 10:465-472, 2012）等が挙げられる。
　本発明で用いられる神経冠細胞誘導因子としては、例えば、SOX10（Kim YJ, et al, Cell Stem Cell. 15:497-506, 2014）等が挙げられる。
　本発明で用いられる心筋細胞誘導因子としては、例えば、Gata4、Mef2cおよびTbx5（Ieda M et al, Cell. 142:375-386, 2010）等が挙げられる。
　本発明で用いられる筋細胞誘導因子としては、例えば、MYOD1またはMYF5（Tanaka A, et al, PLoS One. 8:e61540, 2013）等が挙げられる。
　本発明で用いられる軟骨細胞誘導因子としては、例えば、c-Myc、Klf4およびSOX9（Outani H, et al, PLoS One. 8:e77365, 2013）等が挙げられる。
　本発明で用いられる肝細胞誘導因子としては、例えば、FOXA3、HNF1AおよびHNF4A（Huang P, et al, Cell Stem Cell. 14:370-384, 2014）等が挙げられる。
　本発明で用いられるメラニン細胞誘導因子としては、例えば、MITF、SOX10およびPAX3（Yang R, et al, Nat Commun. 5:5807, 2014）等が挙げられる。
　本発明で用いられる造血前駆細胞誘導因子としては、例えば、ERG、GATA2、LMO2, RUNX1cおよびSCL（Batta K, Cell Rep. 9:1871-84, 2014）等が挙げられる。
　本発明で用いられる赤芽球誘導因子としては、例えば、c-MYCおよびBCL-XL（Hirose S, et al, Stem Cell Reports. 1:499-508, 2013）等が挙げられる。
　本発明で用いられる巨核球前駆細胞誘導因子としては、例えば、BMI1、c-MYCおよびBCL-XL（Nakamura S, et al, Cell Stem Cell. 14:535-548, 2014）等が挙げられる。
　本発明において、細胞制御因子を細胞内に導入する方法として、細胞制御因子がタンパク質の形態の場合、例えばリポフェクション、細胞膜透過性ペプチド（例えば、HIV由来のTATおよびポリアルギニン）との融合、マイクロインジェクションなどの手法によって細胞内に導入してもよい。
　一方、細胞制御因子がDNAの形態の場合、例えば、ウィルス、プラスミド、人工染色体などのベクター、リポフェクション、リポソーム、マイクロインジェクションなどの手法によって体細胞内に導入することができる。ウィルスベクターとしては、レトロウィルスベクター、レンチウィルスベクター（以上、Cell, 126, pp.663-676, 2006; Cell, 131, pp.861-872, 2007; Science, 318, pp.1917-1920, 2007）、アデノウイルスベクター(Science, 322, 945-949, 2008)、アデノ随伴ウィルスベクター、センダイウイルスベクター（WO 2010/008054）などが例示される。また、人工染色体ベクターとしては、例えばヒト人工染色体(HAC)、酵母人工染色体(YAC)、細菌人工染色体(BAC、PAC)などが含まれる。プラスミドとしては、哺乳動物細胞用プラスミドを使用しうる(Science, 322:949-953, 2008)。ベクターには、核初期化物質が発現可能なように、プロモーター、エンハンサー、リボゾーム結合配列、ターミネーター、ポリアデニル化サイトなどの制御配列を含むことができるし、さらに、必要に応じて、前述の薬剤耐性遺伝子、チミジンキナーゼ遺伝子、ジフテリアトキシン遺伝子などの選択マーカー配列、蛍光タンパク質(GFP等)、β-グルクロニダーゼ(GUS)、FLAGなどのレポーター遺伝子配列などを含むことができる。
　細胞制御因子がRNAの形態の場合、例えばリポフェクション、マイクロインジェクションなどの手法によって体細胞内に導入しても良く、分解を抑制するため、5-メチルシチジンおよびpseudouridine (TriLink Biotechnologies)を取り込ませたRNAを用いても良い（Warren L, (2010) Cell Stem Cell. 7:618-630）。
　細胞制御因子を導入後のがん細胞は、動物細胞の培養に用いられる培地を基礎培地として調製される培養液中で培養することができる。基礎培地としては、例えばIMDM培地、Medium 199培地、Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM)培地、αMEM培地、Dulbecco's modified Eagle's Medium (DMEM)培地、Ham's F12培地、RPMI 1640培地、Fischer's培地およびこれらの混合培地などが包含される。培地には、血清が含有されていてもよいし、あるいは無血清でもよい。必要に応じて、培地は、例えば、アルブミン、インスリン、トランスフェリン、セレン、脂肪酸、微量元素、2-メルカプトエタノール、チオールグリセロール、脂質、アミノ酸、L-グルタミン、非必須アミノ酸、ビタミン、増殖因子、低分子化合物、抗生物質、抗酸化剤、ピルビン酸、緩衝剤、無機塩類、サイトカインなどの1つ以上の物質も含有し得る。
　本発明の他の態様として、細胞制御因子を導入後のがん細胞は、細胞制御因子の特性に合わせた培養液を適宜選択して培養しても良く、以下にその条件を例示する。
　細胞制御因子が初期化因子の場合、初期化後の細胞のための培養液としては、例えば、10～15％FBSを含有するDMEM、DMEM/F12又はDME培養液（これらの培養液にはさらに、LIF、penicillin/streptomycin、puromycin、L-グルタミン、非必須アミノ酸類、β-メルカプトエタノールなどを適宜含むことができる。）または市販の培養液（例えば、マウスES細胞培養用培養液(TX-WES培養液、トロンボＸ社)、霊長類ES細胞培養用培養液（霊長類ES/iPS細胞用培養液、リプロセル社）、無血清培地（mTeSR、Stemcell Technology社））などが含まれる。
　初期化後の細胞の培養法の例としては、たとえば、37℃、5％CO2存在下にて、10％FBS含有DMEM又はDMEM/F12培養液上で体細胞と初期化因子とを接触させ約4～7日間培養し、その後、細胞をフィーダー細胞(たとえば、マイトマイシンC処理STO細胞、SNL細胞等)上にまきなおし、体細胞と初期化因子の接触から約10日後からbFGF含有霊長類ES細胞培養用培養液で培養し、該接触から約30～約45日又はそれ以上ののちにiPS様コロニーを生じさせることができる。
　あるいは、37℃、5% CO2存在下にて、フィーダー細胞(たとえば、マイトマイシンC処理STO細胞、SNL細胞等)上で10％FBS含有DMEM培養液（これにはさらに、LIF、ペニシリン/ストレプトマイシン、ピューロマイシン、L-グルタミン、非必須アミノ酸類、β-メルカプトエタノールなどを適宜含むことができる。）で培養し、約25～約30日又はそれ以上ののちにES様コロニーを生じさせることができる。望ましくは、フィーダー細胞の代わりに、初期化される体細胞そのものを用いる（Takahashi K, et al. (2009), PLoS One. 4:e8067またはWO2010/137746）、もしくは細胞外基質（例えば、Laminin-5（WO2009/123349）およびマトリゲル（BD社））を用いる方法が例示される。
　この他にも、血清を含有しない培地を用いて培養する方法も例示される（Sun N, et al. Proc Natl Acad Sci U S A. 106:15720-15725, 2009またはNakagawa M, et al, Sci Rep. 4:3594, 2014）。さらに、樹立効率を上げるため、低酸素条件（0.1％以上、15％以下の酸素濃度）によりiPS細胞を樹立しても良い（Yoshida Y, et al. (2009), Cell Stem Cell. 5:237-241またはWO2010/013845）。
　細胞制御因子が神経細胞誘導因子の場合、当該因子導入後の細胞のための培養液および培養条件としては、例えば、WO2014/148646、Wapinski OL et al, Cell. 155:621-635, 2013に記載されるもの等が挙げられる。
　細胞制御因子が神経幹細胞誘導因子の場合、当該因子導入後の細胞のための培養液および培養条件としては、例えば、Han DW et al, Cell Stem Cell. 10:465-472, 2012に記載されるもの等が挙げられる。
　細胞制御因子が神経冠細胞誘導因子の場合、当該因子導入後の細胞のための培養液および培養条件としては、例えば、Kim YJ, et al, Cell Stem Cell. 15:497-506, 2014に記載されるもの等が挙げられる。
　細胞制御因子が心筋細胞誘導因子の場合、当該因子導入後の細胞のための培養液および培養条件としては、例えば、Ieda M et al, Cell. 142:375-386, 2010に記載されるもの等が挙げられる。
　細胞制御因子が筋細胞誘導因子の場合、当該因子導入後の細胞のための培養液および培養条件としては、例えば、Tanaka A, et al, PLoS One. 8:e61540, 2013に記載されるもの等が挙げられる。
　細胞制御因子が軟骨細胞誘導因子の場合、当該因子導入後の細胞のための培養液および培養条件としては、例えば、Outani H, et al, PLoS One. 8:e77365, 2013に記載されるもの等が挙げられる。
　細胞制御因子が肝細胞誘導因子の場合、当該因子導入後の細胞のための培養液および培養条件としては、例えば、Huang P, et al, Cell Stem Cell. 14:370-384, 2014に記載されるもの等が挙げられる。
　細胞制御因子がメラニン細胞誘導因子の場合、当該因子導入後の細胞のための培養液および培養条件としては、例えば、Yang R, et al, Nat Commun. 5:5807, 2014に記載されるもの等が挙げられる。
　細胞制御因子が造血前駆細胞誘導因子の場合、当該因子導入後の細胞のための培養液および培養条件としては、例えば、Batta K, Cell Rep. 9:1871-84, 2014に記載されるもの等が挙げられる。
　細胞制御因子が赤芽球誘導因子の場合、当該因子導入後の細胞のための培養液および培養条件としては、例えば、Hirose S, et al, Stem Cell Reports. 1:499-508, 2013に記載されるもの等が挙げられる。
　細胞制御因子が巨核球前駆細胞誘導因子の場合、当該因子導入後の細胞のための培養液および培養条件としては、例えば、Nakamura S, et al, Cell Stem Cell. 14:535-548, 2014に記載されるもの等が挙げられる。
被験物質
　本発明のスクリーニング方法においては、任意の被験物質を用いることができ、いかなる公知化合物および新規化合物であってもよく、例えば、細胞抽出物、細胞培養上清、微生物発酵産物、海洋生物由来の抽出物、植物抽出物、精製タンパク質または粗タンパク質、ペプチド、非ペプチド化合物、合成低分子化合物、天然化合物等が挙げられる。本発明において、被験物質はまた、（1）生物学的ライブラリー法、（2）デコンヴォルーションを用いる合成ライブラリー法、（3）「1ビーズ1化合物（one-bead one-compound）」ライブラリー法、及び（4）アフィニティクロマトグラフィ選別を使用する合成ライブラリー法を含む当技術分野で公知のコンビナトリアルライブラリー法における多くのアプローチのいずれかを使用して得ることができる。アフィニティクロマトグラフィ選別を使用する生物学的ライブラリー法はペプチドライブラリーに限定されるが、その他の4つのアプローチはペプチド、非ペプチドオリゴマー、または化合物の低分子化合物ライブラリーに適用できる（Lam (1997) Anticancer Drug Des. 12: 145-67）。分子ライブラリーの合成方法の例は、当技術分野において見出され得る（DeWitt et al. (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90: 6909-13; Erb et al. (1994) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91: 11422-6; Zuckermann et al. (1994) J. Med. Chem. 37: 2678-85; Cho et al. (1993) Science 261: 1303-5; Carell et al. (1994) Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 33: 2059; Carell et al. (1994) Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 33: 2061; Gallop et al. (1994) J. Med. Chem. 37: 1233-51）。化合物ライブラリーは、溶液（Houghten (1992) Bio/Techniques 13: 412-21を参照のこと）またはビーズ（Lam (1991) Nature 354: 82-4）、チップ（Fodor (1993) Nature 364: 555-6）、細菌（米国特許第5,223,409号）、胞子（米国特許第5,571,698号、同第5,403,484号、及び同第5,223,409号）、プラスミド（Cull et al. (1992) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89: 1865-9）若しくはファージ（Scott and Smith (1990) Science 249: 386-90; Devlin (1990) Science 249: 404-6; Cwirla et al. (1990) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 87: 6378-82; Felici (1991) J. Mol. Biol. 222: 301-10; 米国特許出願第2002103360号）として作製され得る。
　がん細胞と被験物質との接触は、好ましくは、上記のようにして細胞制御因子を導入したがん細胞を、被験物質を添加した培養液中で培養することにより実施することができる。培養液への被験物質の添加濃度は、細胞の生育に悪影響を及ぼさない範囲で適宜選択され得るが、通常0.1-100nMである。接触開始時期としては、細胞制御因子の導入直後ないし数日後以内が挙げられる。外因性の細胞制御因子が発現制御可能（ON/OFF可能）な形態でがん細胞に導入されている場合、発現ONの処理と同時ないし当該処理から数日後以内に接触を開始することができる。接触期間はがん細胞の変化が観察されるのに十分な時間であれば特に制限はないが、通常は陽性コロニーが出現するまで培養液中に共存させておけばよい。
がん細胞の変化
　本発明のがんの治療薬をスクリーニングする方法では、被験物質の接触下で、がん細胞内で外来性の細胞制御因子を発現させることで起きる細胞の変化を指標とすることができる。本発明において、当該がん細胞の変化は、導入する細胞制御因子に依存する。
　細胞制御因子が、初期化因子である場合、当該細胞の変化は、がん細胞の初期化である。ここで初期化とは、完全な初期化（即ち、安定な多能性と未分化状態を有するiPS細胞の樹立）のみならず、元のがん細胞と比較してより未分化な状態に変化することをも包含する概念として用いられる（細胞制御因子が、初期化を経由せず他の細胞へ直接分化誘導する因子である場合も、同様に当該目的細胞への完全な分化のみならず、元のがん細胞と比較してより目的細胞の特徴を獲得した状態に変化することを包含する）。したがって、がん細胞の初期化は、コロニーの形成、未分化特異的抗原の発現、または未分化特異的遺伝子の発現を指標として評価することができる。未分化特異的遺伝子としては、胚性幹細胞で特異的な発現を示す遺伝子または分化多能性維持における重要な役割が示唆される遺伝子などが例示され、このような遺伝子は、Cell. 2005 Sep 23;122(6):947-56、Stem Cells. 2004;22(1):51-64.、Mol Biol Cell. 2002 Apr;13(4):1274-81.、Mol Reprod Dev. 2000 Jun;56(2):113-23.、EMBO J. 1998 Apr 1;17(7):2019-32.、Proc Natl Acad Sci U S A. 2003 Nov 11;100(23):13350-5.、Development. 2005 Mar;132(5):885-96.、Blood. 2005 Jan 15;105(2):635-7.、Cell. 2003 May 30;113(5):631-42.、J Biol Chem. 2000 Mar 3;275(9):6608-19.、Mol Cell Biol. 2005 May;25(9):3492-505.、Mech Dev. 2004 Mar;121(3):237-46.およびWO2007/069666に記載されている。具体的な未分化特異的遺伝子として、特にそれらに限定されないが、Nanog、Epcam、Cdh1、Fboxo15、PODXL、Oct3/4、Sox2、GDF3が例示される。未分化特異的抗原としては、それらに限定されないが、SSEA-1、SSEA-3、SSEA-4、TRA-2-54、TRA-1-60およびTRA-1-80からなる群より選択される抗原が例示される。なお、ヒトでは未分化細胞においてSSEA-1は検出されないことから、SSEA-1に代えて、SSEA-3およびSSEA-4が好適に用いられる。
　コロニーの形成は、特に限定されないが、顕微鏡下で測定され、その数により評価される。この測定は、機械的に行われてもよく（WO2011/010449）、目視で行われてもよい。一方、未分化特異的抗原を発現している細胞は、FACSなどのセルソーターを用いて当該抗原を発現している細胞の数として評価することもでき、未分化特異的遺伝子の発現は、逆転写酵素PCR分析、定量的な逆転写酵素PCR分析、ノーザン・ブロット分析、免疫組織化学、アレイ分析、RNA-seq解析、レポーター遺伝子の解析およびそれらの組合せによって発現量として評価することができる。従って、本発明において、がん細胞の変化は、未分化特異的抗原を発現している細胞数が増える、未分化特異的遺伝子の発現量が増える、またはコロニーが形成すると言い換えることができる。
　細胞制御因子が、神経細胞誘導因子である場合、がん細胞の変化は、神経細胞特異的遺伝子の発現を指標として評価することができる。神経細胞特異的遺伝子として、MFNG、GRIP1、NGFR、Zfp238、GRINT1およびSYT3からなる群より選択される遺伝子が例示される（WO2014/148646およびWapinski OL et al, Cell. 155:621-635, 2013）。
　細胞制御因子が、神経幹細胞誘導因子である場合、がん細胞の変化は、神経幹細胞特異的遺伝子の発現を指標として評価することができる。神経細胞特異的遺伝子として、Olig2、 Sox2およびMash1/Ascl1からなる群より選択される遺伝子が例示される（Han DW et al, Cell Stem Cell. 10:465-472, 2012）。
　細胞制御因子が、神経冠細胞誘導因子である場合、がん細胞の変化は、神経冠細胞特異的遺伝子の発現を指標として評価することができる。神経冠細胞特異的遺伝子として、TWIST1、SNAIL2、ITGA4、ITGA6、SOX5、SOX6、PLP1およびMyelin Protein Zero [MPZ] からなる群より選択される遺伝子が例示される（Kim YJ, et al, Cell Stem Cell. 15:497-506, 2014）。
　細胞制御因子が、心筋細胞誘導因子である場合、がん細胞の変化は、心筋細胞特異的遺伝子の発現を指標として評価することができる。心筋細胞特異的遺伝子として、αMHCまたはcTnTが例示される（Ieda M et al, Cell. 142:375-386, 2010）。
　細胞制御因子が、筋細胞誘導因子である場合、がん細胞の変化は、筋細胞特異的遺伝子の発現を指標として評価することができる。筋細胞特異的遺伝子として、ミオゲニン（myogenin）、ミオシン重鎖（myosin heavy chain; MHC）、MEF2CおよびSIX1からなる群より選択される遺伝子が例示される（Tanaka A, et al, PLoS One. 8:e61540, 2013）。
　細胞制御因子が、軟骨細胞誘導因子である場合、がん細胞の変化は、軟骨細胞特異的遺伝子の発現を指標として評価することができる。軟骨細胞特異的遺伝子として、COL11A2、COL2A1およびACANからなる群より選択される遺伝子が例示される（Outani H, et al, PLoS One. 8:e77365, 2013）。
　細胞制御因子が、肝細胞誘導因子である場合、がん細胞の変化は、肝細胞特異的遺伝子の発現を指標として評価することができる。肝細胞特異的遺伝子として、albumin (ALB)、α-1-antitrypsin (AAT)、CYP1A2、CYP2A6、CYP2B6、CYP2C8、CYP2C9およびCYP3A4からなる群より選択される遺伝子が例示される（Huang P, et al, Cell Stem Cell. 14:370-384, 2014）。
　細胞制御因子が、メラニン細胞誘導因子である場合、がん細胞の変化は、メラニン細胞特異的遺伝子の発現を指標として評価することができる。メラニン細胞特異的遺伝子として、TYR、TYRP1およびDCTからなる群より選択される遺伝子が例示される（Yang R, et al, Nat Commun. 5:5807, 2014）。
　細胞制御因子が、造血前駆細胞誘導因子である場合、がん細胞の変化は、造血前駆細胞特異的遺伝子の発現を指標として評価することができる。造血前駆細胞特異的遺伝子として、CD31, CD41、c-KIT、CD45、CD11bおよびTER119からなる群より選択される遺伝子または抗原が例示される（Batta K, Cell Rep. 9:1871-84, 2014）。
　細胞制御因子が、赤芽球誘導因子である場合、がん細胞の変化は、赤芽球特異的遺伝子の発現を指標として評価することができる。赤芽球特異的遺伝子として、GPA、CD71、GATA1およびRAF1からなる群より選択される遺伝子または抗原が例示される（Hirose S, et al, Stem Cell Reports. 1:499-508, 2013）。
　細胞制御因子が、巨核球前駆細胞誘導因子である場合、がん細胞の変化は、巨核球前駆細胞特異的遺伝子の発現を指標として評価することができる。巨核球前駆細胞特異的遺伝子として、CD41a、CD42a、CD42bおよびCD9からなる群より選択される遺伝子または抗原が例示される（Nakamura S, et al, Cell Stem Cell. 14:535-548, 2014）。
　上述した各細胞特異的遺伝子を本発明のスクリーニングの指標として用いる場合、当該遺伝子を発現している細胞は、FACSなどのセルソーターを用いて細胞の数として評価することもでき、逆転写酵素PCR分析、定量的な逆転写酵素PCR分析、ノーザン・ブロット分析、免疫組織化学、アレイ分析、レポーター遺伝子の解析およびそれらの組合せによって発現量として評価することもできる。従って、本発明において、「がん細胞の変化が増加する」とは、当該遺伝子を発現している細胞数が増える、または当該遺伝子の発現量が増えると言い換えることができる。
がんの治療薬をスクリーニングするためのキット
　本発明において、がんの治療薬をスクリーニングするためのキットは、上述した細胞制御因子を含む。
　本発明において、がんの治療薬をスクリーニングするためのキットは、さらに、細胞制御の製造手順、指標の測定方法や手順を記載した書面や説明書を含んでもよい。あるいは有効な標的タンパク質（ここで、有効な標的タンパク質とは上記と同義である）の異なる種々のがん細胞のパネルをさらに含んでもよいし、あるいは、上記がん細胞の変化の指標となる細胞表面抗原に対する抗体や細胞特異的遺伝子の検出用核酸をさらに含むこともできる。
　本発明の別の側面においては、がん治療薬の創薬標的となり得るタンパク質の同定方法が提供される。本同定方法は下記の工程：
（i）被験タンパク質をコードする遺伝子（候補遺伝子）を、発現制御可能な形態で含むがん細胞内で、候補遺伝子を発現する条件下または該遺伝子の発現が抑制された条件下で、外来性の細胞制御因子を発現させる工程、
（ii）がん細胞の変化を確認する工程、および
（iii）候補遺伝子の発現が抑制された条件下において、該遺伝子を発現する条件下と比較してがん細胞の変化が増加した場合、当該被験タンパク質をがんの治療薬の創薬標的となり得るタンパク質として選出する工程
を含むことを特徴とする。
　ここで、候補遺伝子としては、がん細胞における遺伝子発現をマイクロアレイ等を用いて網羅的に解析した結果同定される、がん細胞に特有に発現している遺伝子やがん細胞で高発現している遺伝子が挙げられる。
　また、ここで、発現制御可能な形態とは、候補遺伝子の発現のON/OFFが可能な形態を意味し、例えば、候補遺伝子が、誘導プロモーター（例、メタロチオネインプロモーター（重金属イオンで誘導）、ヒートショックタンパク質プロモーター（ヒートショックで誘導）、Tet-ON／Tet-OFF系プロモーター（テトラサイクリン又はその誘導体の添加又は除去で誘導）、ステロイド応答性プロモーター（ステロイドホルモン又はその誘導体で誘導）等）の制御下におかれた発現ベクター等が挙げられる。
　細胞制御因子、がん細胞の変化、当該変化を確認・評価するための指標等については、上記したがん治療薬のスクリーニング方法と同様である。
　本発明を以下の実施例でさらに具体的に説明するが、本発明の範囲はそれら実施例によってなんら限定されるものではない。
　がん細胞の初期化に対するがん遺伝子の効果を調べるため、Yamada K, et al, J Clin Invest. 123:600-610, 2013に記載のEWS/ATF1融合遺伝子をドキシサイクリン（Ｄｏｘ）依存性に誘導可能なマウスサルコーマ細胞株（G1297株とも称す）を用いた。なお、当該サルコーマ細胞は、EWS/ATF1の発現停止によりin vitroでの増殖停止およびin vivoでの腫瘍の退縮が確認されている。
　0.2 μg/mlのドキシサイクリン添加によるEWS/ATF1を発現誘導することでマウスES細胞の増殖に影響が出ないことから、EWS/ATF1は、導入した初期化因子の発現量に影響を与えないことを確認した（図３A、図３Bおよび図３D）。
　続いて、G1297に初期化因子を導入することにより、G1297が初期化されるのか否かについて確認した。EWS/ATF1を発現させたサルコーマ細胞では、初期化因子(4F：Oct3/4, Sox2, Klf4, および c-Myc)をレトロウィルスにより導入してもiPS細胞様コロニーは観察されなかった。一方、EWS/ATF1の発現を停止させた場合は、4Fの発現によりiPS細胞様コロニーが確認された（図１A～C）。このiPS細胞様コロニーをピックアップすることにより、iPS細胞様細胞株を樹立した（図３C）。なお、iPS細胞の誘導は、次の方法により行った。Oct3/4、Sox2、Klf4およびc-MycをpMXs-basedレトロウィルスベクターを用いて、それぞれPlat-E細胞へ導入し、ウィルス含有上清を回収し、0.45μmセルロースアセテートフィルターでろ過した。G1297を60-mmディッシュあたり8×105の細胞を播種し、ウィルス含有上清を用いて感染させ、感染後３日目にＬＩＦ含有ＥＳ培地に交換し培養した。
　樹立したiPS細胞様細胞株は、親サルコーマ細胞と同様にドキシサイクリン依存的にEWS/ATF1を発現することが確認された（図１D）。さらに、いくつかの染色体異常も同様に観察され、当該iPS細胞様細胞株がサルコーマ細胞由来であることが確認された（図１E）。当該サルコーマ細胞由来のiPS細胞様細胞における、Nanogおよび内在性のOct3/4 (Pou5f1)などの多能性関連遺伝子の発現をES細胞と比較したところ、大きな違いは見られなかった（図１Fおよび図３D）。なお、RT-PCRは次の方法を用いて行った。RNeasy Plus Mini kit (Qiagen, Hilden, Germany)を使用して全ＲＮＡを単離した。Go-taq qPCR Master Mix (Promega, Madison, USA)を使用して定量的real-time PCR解析を行った。転写レベルをβ-actinまたはGAPDH値で標準化した。
　サルコーマ細胞の初期化の効率は、0.06％であり、このことは、MEFの初期化効率よりも低いことが示された。得られたiPS細胞様細胞を免疫不全マウスの皮下に投与したところ、テラトーマが形成され、さらに、胚盤胞に注入することでキメラマウスを作成できた（図１Gおよび図１H）。
　以上より、EWS/ATF1発現依存性サルコーマ細胞では、EWS/ATF1の発現を抑制することで初期化により多能性細胞を得られることが確認された。この結果は、EWS/ATF1発現依存性サルコーマ細胞の初期化において、EWS/ATF1は抑制的に働くことを示している。
　続いて、EWS/ATF1を介したがん細胞の初期化不全のメカニズムを解析した。まず、SSEA1陽性細胞の発生をFACS解析することで初期化の早期における現象を確認した（図１I）。その結果、SSEA1陽性細胞数は、Dox濃度依存的に減少することが確認された。このことから、EWS/ATF1は、初期化の早期段階から阻害することが示唆された。また、線維芽細胞の初期化における最初の事象である間葉-上皮移行のマーカーの発現をマイクロアレイによって調べたところ、EWS/ATF1の発現抑制後、これらの遺伝子が有意に上昇することが確認された。一方、EWS/ATF1の発現は、MEFでは、初期化によるSSEA1陽性細胞の発生を抑制していないことから（図１J）、EWS/ATF1の発現はサルコーマ細胞に特異的な初期化抑制をもたらすことが示唆された。
　がん遺伝子の発現が、4Fの導入時の転写応答においていかなる影響を与えるかを調べるため、4Fを導入した際のサルコーマ細胞（4F－サルコーマ細胞）または陰性対照としてGFPを導入した際のサルコーマ細胞のマイクロアレイ解析をEWS/ATF1の発現させた場合と発現させなかった場合それぞれについて行った（図３E）。なお、マイクロアレイ解析は、Mouse Gene 1.0 ST Array (Affymetrix Inc., Santa Clara, USA)を使用して行った。すべてのデータ解析は、GeneSpring GX software program (version 12; Agilent Technology, Santa Clara, USA)を使用して行った。
　その結果、4F－サルコーマ細胞においてEWS/ATF1の発現を抑制することで多くの遺伝子が上昇または下降することが確認された（図１K）。発現が変化した遺伝子は、EWS/ATF1を発現した4F-サルコーマ細胞においても同様に上昇または下降していたが、EWS/ATF1が発現していない4F-サルコーマ細胞に比べて、変化の違いは小さかった（図３F）。以上より、EWS/ATF1の発現は、サルコーマ細胞における運命変更を抑制していることが示唆された。
　さらにMYOD1の導入による骨格筋分化誘導へのEWS/ATF1の発現の影響を調べた（図１L）。その結果、初期骨格筋分化マーカーであるMyogenin（MYOG）の発現が、MYOD1導入サルコーマ細胞（MYOD1－サルコーマ細胞）においてEWS/ATF1発現抑制後、有意に上方制御されていることが確認された（図１M）。また、MHC（myosin heavy chain）陽性細胞は、EWS/ATF1 が発現していないMYOD1－サルコーマ細胞において有意に増加していた（図１N）。MYOD1の導入による初期転写応答をマイクロアレイ法で分析したところ、EWS/ATF1発現したサルコーマ細胞と比べて、EWS/ATF1を発現しない細胞では、MYOD1の導入による遺伝子変化数が増加した（図１O）。骨格筋分化誘導関連遺伝子（例えば、Myogenin）は、EWS/ATF1の発現抑制されたサルコーマ細胞においてMYOD1の導入により大きく上方制御されることが示された。一方、筋細胞の分化形質転換は、EWS/ATF1発現により抑制されることが確認された。
　以上の結果より、EWS/ATF1の発現は、細胞運命を変える外来性の転写因子に対する転写応答を制限することが示唆された。
　次に、ヒト明細胞肉腫（ＣＣＳ）細胞株の初期化におけるEWS/ATF1の発現の効果を調べた。4Fを導入したCCS細胞においてEWS/ATF1をノックダウンしたところ（図２A）、ヒト初期化の初期マーカーであるTRA-1-60をコードするPODXLの発現を増加させたが（図２B）、完全に初期化されたiPS細胞を樹立することはできなかった。同様に、MYOD1を導入したCCS細胞においてEWS/ATF1をノックダウンしたところ、MYOGの発現の増加が認められた（図２B）。
　この他にも、がん遺伝子のシグナル活性化が、細胞の初期化に与える影響を調べた。上皮増殖因子レセプター（EGFR）変異肺がん細胞株HCC827およびHER2－増幅乳がん細胞株SK-BR3を実験に使用した。なお、これらのがん細胞株は、それぞれEGFR特異的チロシンキナーゼおよびHER2チロシンキナーゼ阻害剤に感受性である。HCC827およびSK-BR3へDox誘導性4FをPBトランスポゾンを用いて導入し（図４A）、それぞれEGFRチロシンキナーゼ阻害剤であるgefitinibおよびHER2チロシンキナーゼ阻害剤lapatinibの初期化に対する効果を調べた（図２C）。その結果、4F導入SK-BR3において、lapatinibを50%阻害濃度（IC50）で処置したところ、初期化マーカーであるPODXLの発現を促進したが（図２D）、ヒトがん細胞株から完全に初期化されたiPS細胞の樹立までは成功しなかった。一方、5-フルオロウラシル（5FU）をIC50濃度で処置してもPODXLの発現は増加しなかった（図２D）。同様に、4Fを導入したHCC827において、gefitinibをIC50濃度で処置したところ、PODXLの発現を促進したが、5FUをIC50濃度で処置してもPODXLの発現は増加しなかった（図２D）。一方、野生型EGFRを有する肺がん細胞株A549では、4F導入時のgefitinib処置によってもPODXLは上昇しなかった（図４B）。マイクロアレイ解析によって、HCC827およびSK-BR3への４Fの導入時または非導入時の遺伝子発現変化を調べた。それぞれgefitinibおよびlapatinibで処置したところ、PODXLやNANOGを含む多くの遺伝子が上方または下方制御されることが明らかとなった（図２E）。これらの結果により、主要ながん遺伝子シグナルが、安定的な転写ネットワークを介してがん細胞の特徴を維持することが示唆された。
　ある種の抗がん剤に対して感受性を持つがん細胞およびある種の抗がん剤に対して感受性を持たないがん細胞の組み合わせを使用して、薬剤特異的な細胞の初期化への影響を調べた。ここで、上皮増殖因子レセプター（EGFR）変異肺がん細胞株HCC827は、EGFRチロシンキナーゼ阻害剤であるGefitinibおよびHER2チロシンキナーゼ阻害剤Lapatinibに感受性を示すこと、HER2-増幅乳がん細胞株SK-BR3はLapatinibに感受性を示すことが知られている。HCC827株およびSK-BR3株へDox誘導的に4Fを発現誘導可能なpiggyBacベクターを、piggyBac transposageを用いて導入し、Doxによる発現誘導を行った後に、GefitinibおよびBcr-Ablチロシンキナーゼ阻害薬であるImatinib、Lapatinib、5-FUを添加した。２日後、細胞からRNAを抽出し、定量的RT-PCRによりNANOGおよびGDF3の発現レベルを測定した（図５A）。結果を図５Bに示す。0.005μMもしくは0.05μM　Gefitinib、または0.5μM　Lapatinibで処置したHCC827細胞株では、未分化特異的遺伝子であるNANOGおよびGDF3の発現が促進された。一方、Imatinibまたは5-FUで処置した場合は、NANOGおよびGDF3の発現促進は認められなかった。また、SK-BR3細胞株では、0.05μMまたは0.5μM　Lapatinibで処置した場合にのみNANOGおよびGDF3の発現促進が認められた。これらの結果から、感受性のある薬剤特異的にがん細胞の初期化が亢進されることが示され、本発明のスクリーニング方法が、効果を有する薬剤のみを選択的に取得でき得る方法であることが示唆された。
　さらに、定量的RT-PCR以外の方法で、Nanogの発現を測定した。実験手順は、図３Eの概略図と同じであり、Dox添加によりEWS/ATF1を発現させたG1297株に、初期化因子(+4F)またはGFPをレトロウィルスにより導入し、導入４日後にDox添加を停止した細胞(DoxOFF)と、Dox添加を続けた細胞(DoxON)におけるNanogの発現をRNA-seq解析によって調べた。結果を図６に示す。DoxOFF+4Fの細胞において、Nanog遺伝子の発現が上昇すること、すなわちEWS/ATF1の発現を抑制することで、Nanog遺伝子の発現が上昇することを確認した。なお、RNA-seq解析は次の方法を用いて行った。それぞれの細胞からRNeasy Plus Mini Kit (Qiagen, Hilden, Germany)を使用して全RNAを抽出した後に、TruSeq Stranded Total RNA with Ribo-Zero Gold LT sample Prep kit (illumina)を用いてライブラリーを作成した。KAPA Library Quantification kits（日本ジェネティクス）を用いて濃度定量後、Hiseq PE Rapid Cluster kit v2-HSを用いて、Hiseq2500(illumina)にてシーケンスを行った。シーケンスデータは、TopHatソフトウェアおよびCufflinksソフトウェアを用いて解析し、IGV(Integrative Genomics Viewer)により可視化した。
レポーター細胞の作製
　図７Aに示されるように、TALENを用いたゲノム編集技術により、レポーター遺伝子としてTagBFP遺伝子、合成ウミシイタケルシフェラーゼ（hRL）遺伝子およびピューロマイシン耐性遺伝子を含有するターゲティングベクターを用いて、HEK298細胞のPPP1R2C遺伝子座におけるエクソン１とエクソン２の間にノックインすることにより、安定的にTagBFPおよび合成ウミシイタケルシフェラーゼ（hRL）を発現するレポーター細胞を作製した。FACSを用いたセルソーティングによりTagBFP発現細胞を選択したのち、ルシフェラーゼアッセイを行った。ルシフェラーゼアッセイは、Dual-Luciferase Reporter Assay System (Promega)を使用し、Passive lysis bufferを用いて細胞を溶解後、Envison 2104 Multilabel Reader (PerkinElmer)を用いて測定した。結果を図７Bに示す。細胞の数と発光強度の間には高い正の相関関係が認められた（R2=0.9864）。
　同様の方法によりレポーター遺伝子をがん細胞に導入することができ、このようにして作成されたレポーター細胞は、ルシフェラーゼの発光強度により細胞数を算出することができる。
　図８に示されるように、レポーター遺伝子として、GFP遺伝子、改変ホタルルシフェラーゼ（Luc2）遺伝子およびネオマイシン耐性遺伝子を含有するターゲティングベクターを作製した。CRISPR/Cas9を用いたゲノム編集技術により、該ターゲティングベクターを用いることで、マウスがん細胞のNanog遺伝子座におけるエクソン１の5'非翻訳領域（5'UTR）とコーディング領域（CDS）の間に、該レポーター遺伝子をノックインすることができる。
　図９に示されるように、レポーター遺伝子として、GFP遺伝子、分泌型のNanoLucTMルシフェラーゼ（secNluc）遺伝子およびブラストサイジン耐性遺伝子を含有するターゲティングベクターを作製した。CRISPR/Cas9を用いたゲノム編集技術により、該ターゲティングベクターを用いることで、マウスがん細胞のNanog遺伝子座におけるエクソン４のCDSと3'非翻訳領域（3'UTR）との間に、該レポーター遺伝子をノックインすることができる。
　図１０に示されるように、レポーター遺伝子として、GFP遺伝子、分泌型のNanoLucTMルシフェラーゼ（secNluc）遺伝子およびネオマイシン耐性遺伝子を含有するターゲティングベクターを作製した。CRISPR/Cas9を用いたゲノム編集技術により、該ターゲティングベクターを用いることで、ヒトがん細胞のNanog遺伝子座におけるエクソン４のCDSと3'非翻訳領域（3'UTR）との間に、該レポーター遺伝子をノックインすることができる。
　このように作製した細胞は、Nanogが発現する場合には、同時にレポーター遺伝子も発現するため、該細胞を使用することで、Nanog等の未分化特異的遺伝子の発現量を測定することなく、がん細胞の初期化を評価することができ、本発明のスクリーニング方法の使用に適している。
　以上のように、がん遺伝子シグナルによってがん細胞の特徴が維持されること、すなわちがん細胞の初期化を阻害することが示された。一方、がん遺伝子をターゲットとする抗がん剤が、がん細胞の初期化の早期段階を促進することも示された。これらの結果は、がん遺伝子シグナルを阻害する薬剤によって、がん細胞が、細胞の運命の変更に対して寛容な状態になり得ることを示している。従って、がん細胞における特定のシグナルを阻害する薬剤の初期化への影響を調べることによって、重要ながん遺伝子のシグナルを検出することが可能となる。
　本出願は、日本で出願された特許出願特願２０１５－　７７２６４（出願日：２０１５年　４月　３日）を基礎としており、その内容は本明細書に全て包含されるものである。

Claims (9)

  1. 　下記の工程を含む、がんの治療薬をスクリーニングする方法；
    （i）対象となるがん細胞内で、被験物質との接触下または非接触下で、外因性の細胞制御因子を発現させる工程、
    （ii）がん細胞の変化を確認する工程、および
    （iii）被験物質との接触下において、非接触下と比較してがん細胞の変化が増加した場合、当該被験物質をがんの治療薬として選出する工程。
  2. 　前記細胞制御因子が、初期化因子であり、前記がん細胞の変化が、がん細胞の初期化である、請求項１に記載の方法。
  3. 　前記初期化因子が、Oct3/4、Sox2、Klf4およびc-Mycである、請求項２に記載の方法。
  4. 　前記がん細胞の初期化が、未分化特異的抗原が陽性である細胞数、または当該がん細胞における未分化特異的遺伝子の発現量を指標として評価される、請求項２または３に記載の方法。
  5. 　前記未分化特異的遺伝子が、Nanog、Epcam、Cdh1、Fbxo15、PODXLおよびGDF3から選択される１以上の遺伝子である、請求項４に記載の方法。
  6. 　前記がん細胞の初期化が、形成されるコロニー数を指標として評価される、請求項２または３に記載の方法。
  7. 　前記細胞制御因子が、MyoD1であり、前記がん細胞の変化が、がん細胞から筋管細胞への変化である、請求項１に記載の方法。
  8. 　前記がん細胞から筋管細胞への変化が、ミオゲニン（myogenin）またはミオシン重鎖（myosin heavy chain）の発現量を指標として評価される、請求項７に記載の方法。
  9. 　下記の工程を含む、がん治療薬の創薬標的となり得るタンパク質の同定方法：
    （i）被験タンパク質をコードする遺伝子を、発現制御可能な形態で含むがん細胞内で、該遺伝子を発現する条件下または該遺伝子の発現が抑制された条件下で、外来性の細胞制御因子を発現させる工程、
    （ii）がん細胞の変化を確認する工程、および
    （iii）該遺伝子の発現が抑制された条件下において、該遺伝子を発現する条件下と比較してがん細胞の変化が増加した場合、当該被験タンパク質をがんの治療薬の創薬標的となり得るタンパク質として選出する工程。
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