WO2016125251A1 - 単一細胞解析用フローセルデバイス及び単一細胞解析装置 - Google Patents

単一細胞解析用フローセルデバイス及び単一細胞解析装置 Download PDF

Info

Publication number
WO2016125251A1
WO2016125251A1 PCT/JP2015/052965 JP2015052965W WO2016125251A1 WO 2016125251 A1 WO2016125251 A1 WO 2016125251A1 JP 2015052965 W JP2015052965 W JP 2015052965W WO 2016125251 A1 WO2016125251 A1 WO 2016125251A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
cell
nucleic acid
flow
analysis
flow cell
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Ceased
Application number
PCT/JP2015/052965
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
白井　正敬
友幸 坂井
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Hitachi Ltd
Original Assignee
Hitachi Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Hitachi Ltd filed Critical Hitachi Ltd
Priority to PCT/JP2015/052965 priority Critical patent/WO2016125251A1/ja
Priority to US15/544,888 priority patent/US10646869B2/en
Priority to JP2016572977A priority patent/JP6307179B2/ja
Publication of WO2016125251A1 publication Critical patent/WO2016125251A1/ja
Anticipated expiration legal-status Critical
Ceased legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L3/00—Containers or dishes for laboratory use, e.g. laboratory glassware; Droppers
    • B01L3/50—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes
    • B01L3/502—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures
    • B01L3/5027—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures by integrated microfluidic structures, i.e. dimensions of channels and chambers are such that surface tension forces are important, e.g. lab-on-a-chip
    • B01L3/502761—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures by integrated microfluidic structures, i.e. dimensions of channels and chambers are such that surface tension forces are important, e.g. lab-on-a-chip specially adapted for handling suspended solids or molecules independently from the bulk fluid flow, e.g. for trapping or sorting beads or physically stretching molecules
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L3/00—Containers or dishes for laboratory use, e.g. laboratory glassware; Droppers
    • B01L3/50—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes
    • B01L3/502—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures
    • B01L3/5027—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures by integrated microfluidic structures, i.e. dimensions of channels and chambers are such that surface tension forces are important, e.g. lab-on-a-chip
    • B01L3/502715—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures by integrated microfluidic structures, i.e. dimensions of channels and chambers are such that surface tension forces are important, e.g. lab-on-a-chip characterised by interfacing components, e.g. fluidic, electrical, optical or mechanical interfaces
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M1/00—Apparatus for enzymology or microbiology
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/10—Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
    • C12N15/1003—Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/10—Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
    • C12N15/1096—Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA cDNA Synthesis; Subtracted cDNA library construction, e.g. RT, RT-PCR
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6869—Methods for sequencing
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2200/00—Solutions for specific problems relating to chemical or physical laboratory apparatus
    • B01L2200/06—Fluid handling related problems
    • B01L2200/0647—Handling flowable solids, e.g. microscopic beads, cells, particles
    • B01L2200/0668—Trapping microscopic beads
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2300/00—Additional constructional details
    • B01L2300/16—Surface properties and coatings
    • B01L2300/161—Control and use of surface tension forces, e.g. hydrophobic, hydrophilic
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2400/00—Moving or stopping fluids
    • B01L2400/04—Moving fluids with specific forces or mechanical means
    • B01L2400/0475—Moving fluids with specific forces or mechanical means specific mechanical means and fluid pressure
    • B01L2400/0487—Moving fluids with specific forces or mechanical means specific mechanical means and fluid pressure fluid pressure, pneumatics
    • B01L2400/049—Moving fluids with specific forces or mechanical means specific mechanical means and fluid pressure fluid pressure, pneumatics vacuum
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2400/00—Moving or stopping fluids
    • B01L2400/06—Valves, specific forms thereof
    • B01L2400/0688—Valves, specific forms thereof surface tension valves, capillary stop, capillary break
    • G—PHYSICS
    • G16—INFORMATION AND COMMUNICATION TECHNOLOGY [ICT] SPECIALLY ADAPTED FOR SPECIFIC APPLICATION FIELDS
    • G16B—BIOINFORMATICS, i.e. INFORMATION AND COMMUNICATION TECHNOLOGY [ICT] SPECIALLY ADAPTED FOR GENETIC OR PROTEIN-RELATED DATA PROCESSING IN COMPUTATIONAL MOLECULAR BIOLOGY
    • G16B30/00—ICT specially adapted for sequence analysis involving nucleotides or amino acids

Definitions

  • the present invention relates to a flow cell device for single cell analysis and a single cell analysis apparatus using the same.
  • Single cell analysis is a technique for detecting and quantifying biomolecules in cells with high accuracy for each single cell.
  • Single cell analysis is roughly divided into two techniques. One is a technique for isolating cells for analysis, and the other is a technique for preparing and analyzing a measurement sample with high efficiency from a small amount of biomolecules in one cell.
  • Patent Document 1 describes a configuration in which a plurality of cell trapping units for individually capturing cells in a reaction chamber in a flow cell device are arranged in an array for the purpose of isolating cells as measurement target species.
  • the cell trapping unit is a device having a membrane filter that can isolate the cells introduced into the reaction chamber in the flow cell device one by one. Target cells cannot pass through the holes formed in the filter and are trapped and isolated on the filter, while non-target cells pass through the filter holes and from the opposite side of the filter. Discharged.
  • the captured cells are measured using a fluorescent label introduced by an immunostaining method or the like for staining a membrane protein expressed on the cell membrane.
  • Patent Document 2 describes a device and an apparatus that capture one cell from a plurality of cells (isolate cells from the plurality of cells) and collect the captured cells.
  • the cells are sucked and captured in a small hole, and then only the target cells are sucked into the reaction chamber by valve control, while the non-target cells are discharged from the cell trapping portion.
  • mRNA was taken out from a group of cells, then cDNA, which is a complementary strand, was prepared by PCR amplification, and then a DNA probe array (DNA chip) was used.
  • a method of detecting fluorescence by capturing a target at a corresponding probe position is used.
  • Non-Patent Document 1 A method of counting the number of nucleic acid sequences and estimating the number of mRNA molecules has been used (Non-Patent Document 1). In this method, the upper limit of the number of genes that can be measured is determined by the parallel number of large-scale DNA sequencers. It can measure all kinds of arrays.
  • a 1 st cDNA library is constructed using a porous membrane or a membrane device packed with a large number of beads in order to realize gene expression analysis of a large number of cells at once. Furthermore, a device that can obtain a two-dimensional distribution of gene expression from the library and realize gene expression analysis in a large number of cells is described. The analysis of gene expression of a single cell using the device, and synthesized to PCR amplify the complementary strand (2 nd cDNA) from 1 st cDNA constructed on the device, samples for large scale sequence analyzer (Sequencing library) is prepared.
  • this sequencing library is prepared not for each cell but for each device, nucleic acids from a plurality of cells are mixed.
  • Patent Document 3 in order to identify the cells on the device from the obtained sequence analysis data, a position-specific sequence on the device is introduced into the 1 st cDNA library, and a large-scale sequence analysis apparatus is provided for each position-specific sequence. By classifying the sequence analysis results obtained in step 1, gene expression analysis at the single cell level is realized.
  • each individual cell isolated using a flow cytometer is put into a reaction tube, and the essential processes for constructing a sequencing library for gene expression analysis (mRNA extraction, 1 st cDNA synthesis, 2 nd cDNA synthesis, when attempting to perform a nucleic acid amplification) all manual operation, not only the number ⁇ L or more reagents are required, since the cost of the reagent increases in proportion to the number of cells, high cost of reagents become.
  • the manual operation described above needs to be performed by a skilled engineer.
  • One of the flow cell devices for single cell analysis of the present invention that solves the above problem is (1) a plurality of cells each having at least one cell capture unit and at least one nucleic acid capture unit connected through a flow path. (2) the first liquid channel commonly connected to the plurality of reaction chambers on the first surface side, and (3) the plurality of the plurality of reaction chambers on the first surface side. A plurality of second liquid channels connected to the reaction chamber on a one-to-one basis, and (4) a common connection to the plurality of reaction chambers on the second surface side facing the first surface A single cell analysis flow cell device.
  • Another one of the flow cell devices for single cell analysis of the present invention that solves the above-mentioned problems is (1) at least one cell capture unit and at least one nucleic acid capture unit each connected through a flow path.
  • a plurality of reaction chambers and (2) a plurality of first liquid channels connected to the plurality of reaction chambers in a one-to-one manner on the first surface side, and (3) a plurality of the first liquid channels.
  • a flow cell device for single cell analysis having a second liquid channel commonly connected to the plurality of reaction chambers on a second surface side facing the surface.
  • one of the single cell analysis devices of the present invention that solves the above-mentioned problems is as follows.
  • (1-1) is connected to each other through at least one cell capture unit and at least one nucleic acid capture unit.
  • (3) an introduction control device that individually controls the introduction of the first liquid into the plurality of first fluid flow paths;
  • a single cell analyzer having a discharge control device for controlling discharge of the second liquid from the second fluid flow path That.
  • FIG. 1 is a diagram illustrating a configuration of a flow cell device according to a first embodiment.
  • 1 is a diagram illustrating a configuration of a two-dimensional array chip used in Embodiment 1.
  • FIG. 2 is an enlarged view showing a unit structure of a two-dimensional array chip used in Example 1.
  • FIG. 3 is a diagram showing a reaction process executed in Example 1.
  • FIG. 6 is a diagram illustrating a configuration of a flow cell device according to a second embodiment.
  • FIG. 5 is a diagram illustrating a configuration of a two-dimensional array chip used in the second embodiment.
  • FIG. 5 is an enlarged view showing a unit structure of a two-dimensional array chip used in Example 2.
  • FIG. 4 is a diagram showing a reaction process executed in Example 2.
  • FIG. 10 is a diagram illustrating a configuration of a flow cell device according to a third embodiment.
  • FIG. 10 is a diagram illustrating another configuration of the flow cell device according to the third embodiment.
  • FIG. 6 is a diagram illustrating a configuration example of a single cell analysis device used in Example 3.
  • FIG. 6 is a diagram showing a configuration example of a single cell analysis apparatus used in Example 4.
  • Two processes essential for single cell analysis can be performed in one flow cell device, avoiding manual reagent dispensing operations, reducing the volume of reagent required, and running required for single cell analysis Cost is reduced.
  • the entire process of single-cell analysis can be automated (automated reaction processing required for each cell), which simplifies the sample preparation process required for large-scale sequencers. Single cell analysis will be possible.
  • a flow cell device by applying a membrane device to which a cell identification sequence disclosed in Patent Document 3 is fixed for sample preparation from mRNA extracted from cells.
  • a membrane device to which a cell identification sequence disclosed in Patent Document 3 is fixed for sample preparation from mRNA extracted from cells.
  • a 1 st cDNA library with high efficiency from a large number of cells simultaneously, at the same time, it is possible to achieve a uniform sample preparation with a small amount of reagent per cell. That is, a sample for a large-scale sequence analyzer (next-generation sequencer) capable of gene expression analysis for each individual cell can be prepared.
  • a sequencing library can be constructed at a low cost.
  • a method that can be processed using a cell identification tag of a type that is significantly smaller than the number of cells in the flow cell device in the sample preparation reaction of the flow cell device will also be described.
  • a plurality placed a membrane device with a cell identification tags of the same combination in the flow-cell device (a membrane device with for example 100 different identification tag placed in 20 sheets of the flow cell devices), 2 nd cDNA synthesis
  • a tag sequence that can identify different membrane devices during subsequent reactions is inserted into a nucleic acid sample for sequencing.
  • the number of cells that can be processed by one flow cell device is a number given by the product of the number of types of cell identification tags on one membrane device and the number of types of tag arrays for identifying membrane devices. Can be increased. In other words, by preparing an array of types given by the sum of the number of types of cell identification tags and the number of types of tag arrays for identifying membrane devices, cells given by the product of the number of these tags are prepared. Identification up to a number is possible. By realizing this method on the flow cell device according to the embodiment, the reagent amount per cell can be reduced and the reagent cost can be reduced.
  • each of the reaction chambers has at least one pair of a cell capture unit and a nucleic acid capture unit, and (2) the common connection to the plurality of reaction chambers.
  • a single cell analysis flow cell device having a third liquid flow path for collecting the second liquid will be described.
  • each of the plurality of reaction chambers having at least one pair of a cell capturing unit and a nucleic acid capturing unit, and (2) a pair of the plurality of reaction chambers.
  • a plurality of first liquid channels that are individually connected to each of the reaction chambers, and (3) a common connection to the plurality of reaction chambers, and the cell capture unit and the nucleic acid capture unit.
  • a flow cell device for single cell analysis having a second liquid flow path for collecting the liquid that has passed through the section will be described.
  • FIG. 1 shows a top view (FIG. 1 (a)) and a cross-sectional view (FIG. 1 (b)) of a flow cell device.
  • the flow cell device 101 is provided with a plurality of reaction chambers 102.
  • one or a plurality of cell capture units 103 and one or a plurality of nucleic acid capture units 104 are arranged in each reaction chamber 102.
  • the nucleic acid capture unit 104 is desirably arranged in one-to-one correspondence with the cell capture unit 103. By being one-to-one, the correspondence between one cell captured by the cell capturing unit 103 and the nucleic acid captured by the nucleic acid capturing unit 104 becomes clear. In the case of FIG.
  • the nucleic acid capturing unit 104 is stacked on the lower surface side of the cell capturing unit 103. Due to the stacked relationship, the nucleic acid extracted from one cell captured by the cell capturing unit 103 can be reliably introduced into the corresponding nucleic acid capturing unit 104.
  • a flow cell device 101 shown in FIG. 1 includes a plurality of reaction chambers 102 in a substrate and a common supply channel 105 connected on the upper surface side, and a plurality of reaction chambers 102 and a common suction channel connected on the lower surface side. 109.
  • a solution containing cells 106 to be examined flows through the common supply channel 105.
  • the solution is introduced from an upper common inlet 107 provided in the common supply flow path 105, flows along the common supply flow path 105, and is recovered from the upper common outlet. At this time, the solution fills each reaction chamber 102 located on the common supply channel 105.
  • a negative pressure is applied to the lower common outlet 110 provided in the common suction channel 109. Since the common suction channel 109 has a negative pressure, a part of the solution filling the reaction chamber 102 flows into the common suction channel 109 through the cell capturing unit 103 and the nucleic acid capturing unit 104.
  • the cell trap 103 is configured with an opening smaller than the diameter of the cell 106. Therefore, the cell 106 is captured by the opening of the cell capturing unit 103.
  • a nucleic acid trap 104 made of a porous material is disposed immediately below the cell trap 103.
  • the fine figure 10 vesicle capturing part 103 and the nucleic acid capturing part 104 are produced on a two-dimensional array chip 115 arranged one-on-one with respect to the reaction chamber 102.
  • a two-dimensional array chip 115 arranged one-on-one with respect to the reaction chamber 102.
  • four structures in a single reaction chamber 102 are arranged at predetermined positions in the reaction chamber 102.
  • the cells 106 are uniformly captured by the plurality of cell traps 103 on the plurality of two-dimensional array chips 115 arranged in the plurality of reaction chambers 102.
  • a separate fluid flow path is connected to each reaction chamber 102 in addition to the common supply flow path 105 so that the captured cells 106 can be processed differently for each reaction chamber 102.
  • the fluid flow paths are connected to the reaction chamber 102 on a one-to-one basis.
  • FIG. 1 four fluid flow paths and their corresponding four individual inlets 111, 112, 113, 114 are shown.
  • individual reagents are introduced according to the processing content to be executed in the connected reaction chamber 102.
  • individual fluid flow paths are connected from the side of the upper surface side of each reaction chamber 102.
  • water repellent inside wall surfaces of the regions 116 between the reaction chambers 102 or before and after each reaction chamber 102
  • a non-polar solvent such as mineral oil may be flowed from the upper common inlet 107 to the upper common outlet 108 prior to the introduction of the individual reagents, using a common supply channel 105 that has been treated with (hydrophobic).
  • the nonpolar solvent remains in the region 116 in the common supply channel 105, and the reaction chambers 102 are separated from each other. That is, the aqueous solution that is a polar solvent cannot pass through the region 116, and the individually introduced reagent is not introduced into the other reaction chamber 102.
  • a common solution can be introduced into a plurality of reaction chambers 102 through the common supply channel 105 at a time, and individual reactions can be performed through the individual fluid channels. Individual reagents can be introduced into chamber 102. For this reason, the use of the flow cell device 101 shown in FIG. 1 makes it possible to simultaneously perform highly accurate gene expression analysis for a large number of cells.
  • reaction processes that do not require the introduction of individual reagents (reaction solutions)
  • the same reaction process can be executed in multiple reaction chambers 102, making the reactions uniform in each reaction chamber 102 and achieving high-precision analysis. Is done.
  • the flow cell device 101 (FIG. 1) is provided with a plurality of reaction chambers 102, and each reaction chamber 102 isolates and captures individual cells from a plurality of cells. And a two-dimensional array chip 115 in which a plurality of structures, each of which includes a nucleic acid capturing unit 104 made of a porous material, are arranged in a plane.
  • FIG. 2 shows an enlarged structure of the inner wall surface (the surface of the porous material) of the nucleic acid capturing unit 104.
  • the first DNA probe 201 is fixed to the inner wall surface of the nucleic acid capturing unit 104.
  • This first DNA probe 201 is a known sequence for identifying a cell 106 from a capture sequence (poly T) 202 for capturing a nucleic acid (mRNA) 206 extracted from a cell captured by the cell capture unit 103.
  • a sequence (cell identification sequence) 203 and a common sequence 204 for PCR amplification are included.
  • Step 1 This step shows that mRNA 206 is captured by the capture sequence 202 of the first DNA probe 201. Even in the case of the nucleic acid capturing unit 104 in the same reaction chamber 102, different cell identification sequences 203 are attached if the positions in the reaction chamber 102 are different. For example, in the case of the structure of FIG. 1, the four nucleic acid capturing units 104 constituting the two-dimensional array chip 115 are given unique cell identification sequences 203 corresponding to the respective arrangement positions. The nucleic acid 206 is taken out from the cell 106 by crushing the cell 106 captured by the cell capturing unit 103 by electrophoresis or solution flow.
  • Step 2 This step, the mRNA 206 that has captured the first DNA probe 201 as a template, and illustrates how to synthesize 1 st cDNA strand 207.
  • the reverse transcriptase and the substrate necessary for this synthesis reaction are supplied by the following procedure. First, a buffer solution containing an enzyme and a substrate is flowed from the upper common inlet 107 toward the upper common outlet 108, and the upper space of the two-dimensional array chip 115 in each reaction chamber 102 is filled with this buffer solution. Next, a negative pressure is applied to the lower common outlet 110, and the solution in the reaction chamber 102 is caused to flow through the common suction channel 109 so as to pass through the nucleic acid capturing unit 104. Fulfill.
  • Step 3 the second DNA probe 208 that hybridizes from the cell identification sequence 203 to a predetermined position / range (for example, around 200 bases / range of 150 to 250 bases) is independently introduced into each reaction chamber 102.
  • Step 3 in FIG. 2 shows that the second DNA probe 208 is hybridized to the 1 st cDNA strand 207.
  • the second DNA probe 208 is composed of a common primer (Forward) 209 for PCR from the 5 ′ end, a chip identification sequence 210, and a gene-specific probe 211 that is a sequence complementary to the 1 st cDNA strand 207. ing.
  • the chip identification array 210 has a different array for each reaction chamber 102 (that is, for each two-dimensional array chip 115). Further, the gene-specific probes 211 are required as many as the number of gene expression data to be acquired. When 20 types of gene expression analysis are performed, a mixed solution of 20 types of gene-specific probes 211 is introduced into the reaction chamber 102.
  • the introduction of the second DNA probe 208 into the reaction chamber 102 is performed according to the following procedure.
  • mineral oil is introduced from the upper common inlet 107 and discharged from the upper common outlet 108 on the opposite side through the common supply channel 105.
  • the four reaction chambers 102 connected to the common supply channel 105 have not been separated yet.
  • a salt-containing buffer solution is allowed to flow from the common suction channel 109 toward the individual inlets 111, 112, 113, 114, and excess mineral oil in the individual reaction chambers 102 is separated from the individual inlets 111, 112, It discharges through 113,114. After this drainage, the mineral oil remains only in region 116.
  • the four reaction chambers 102 connected to the common supply channel 105 are separated from each other. That is, the upper space of the two-dimensional array chip 115 provided in the reaction chamber 102 is separated from the upper space of the two-dimensional array chip 115 provided in the other reaction chamber 102.
  • Such separation occurs because the inner wall of the reaction chamber 102 that defines the upper space of the two-dimensional array chip 115 is surface-treated so as to be hydrophilic, whereas the region located between the reaction chambers 102 This is because the surface treatment is performed so that 116 becomes hydrophobic. It is also important to maintain high reaction efficiency that the 1 st cDNA probe 201 is firmly fixed to the inner wall surface (the surface of the porous material) of the nucleic acid capturing unit 104 (for example, by a biotin-avidin bond).
  • a buffer solution containing the second DNA probe 208 having a different chip identification sequence 210 is introduced into the reaction chamber 102 through the individual inlets 111, 112, 113, 114, and the introduced buffer solution Is discharged from the lower common outlet 110 via the cell trapping part 103, the nucleic acid trapping part 104, and the common suction channel 109.
  • the vicinity of the inner wall of the nucleic acid trap 104 is filled with the second DNA probe 208 that is different for each reaction chamber 102, and the second DNA probe 208 is hybridized to the 1 st cDNA strand 207.
  • Step 4 to synthesize 2 nd cDNA 212.
  • a large amount of buffer solution is flowed from the upper common inlet 107 toward the upper common outlet 108.
  • a large amount of buffer solution will wash away the emulsion oil that has remained in region 116. Since the purpose of flowing a large amount of buffer solution through the common supply channel 105 is to reconnect the common supply channel 105, some emulsion oil may remain in the region 116.
  • the enzyme and the substrate necessary for the 2 nd cDNA synthesis is introduced into the reaction chamber 102.
  • Steps 5 and 6 In these steps, PCR amplification with the common primer 214 is performed.
  • the PCR common primer necessary for amplification (Forward) 214, a common primer (Reverse) 213, and PCR enzyme, a substrate is introduced into the reaction chamber 102 at 1 st case the same procedure cDNA strand 207.
  • the PCR product 215 obtained after completion of the reaction is a sequence that can be sequence-analyzed (more precisely, a sequence that can be pre-processed for sequence analysis (emulsion PCR or the like)), and is called a sequencing library.
  • the gene expression level can be obtained for each cell identification sequence (cell identification sequence 203) and chip identification sequence (chip identification sequence 210). That is, it is possible to simultaneously analyze the number of cells equal to or less than the product of the type of the cell identification sequence 203 and the type of the chip identification sequence 210 introduced into the flow cell device 101 at the same time. As a result, it becomes possible to analyze the number of cells significantly larger than the number of cell identification sequences introduced into the two-dimensional array chip 115 in advance.
  • the second method instead of introducing the chip identification sequence 210 when synthesizing the 2 nd cDNA 212, introducing a chip identification sequence in the first process of PCR amplification after 2 nd cDNA synthesis.
  • FIG. 3 shows the entire process up to obtaining a sequencing library, similar to FIG.
  • Steps 1 and 2 The sequence of the first DNA probe 301 immobilized on the inner wall surface of the nucleic acid capturing unit 104 is provided with a common connection sequence 302 instead of the common sequence 204 (common PCR primer (Reverse)).
  • Step 3 The second DNA probes 303 during 2 nd cDNA synthesis is the sequence excluding the chip identification sequence 210 from the second DNA probe 208 (FIG. 2). That is, the second DNA probe 303 is composed of only a common primer (Forward) 209 and a gene-specific probe 211.
  • Step 4 Wherein the second DNA probe 303 hybridizes to the 1 st cDNA strand 207 to synthesize 2 nd cDNA strands 304.
  • Step 5 Respect synthesized 2 nd cDNA strands 304, are hybridized third DNA probe 305 having a second chip identifier sequence 307.
  • the third DNA probe 305 includes a PCR common primer (Reverse) 306, a second chip identification sequence 307, and a complementary sequence 308 of the common connection sequence.
  • Step 6 A sequencing library is constructed as a PCR amplification product 309 obtained after completion of the PCR process. Since the number of types of the third DNA probe 305 may be the same as the number of chips, the initial cost for the DNA probe can be reduced and the number of simultaneously analyzed cells can be increased.
  • the nucleic acid capturing unit 104 is configured by packing a large number of beads having DNA (DNA probes) for capturing a nucleic acid immobilized on the surface.
  • the sequencing library is adjusted based on the first method described above.
  • FIG. 4 shows a top view (FIG. 4 (a)) and a cross-sectional view (FIG. 4 (b)) of the flow cell device 101 used in this embodiment.
  • the basic structure of the flow cell device 101 in the present embodiment is the same as the basic structure of FIG. That is, the flow cell device 101 has four reaction chambers 102, and each reaction chamber 102 has one or a plurality of cell capture units 103 and nucleic acid capture units 104.
  • the nucleic acid capture unit 104 is desirably arranged in a one-to-one relationship with the cell capture unit 103. In FIG. 4, the nucleic acid capture units 104 are arranged one-on-one with respect to 7 ⁇ 7 cell capture units 103 formed on the two-dimensional array chip 115.
  • the nucleic acid capturing unit 104 is disposed immediately below the cell capturing unit 103.
  • the nucleic acid capturing unit 104 is formed by a space filled with a large number of magnetic beads.
  • a solution containing the cells 106 is introduced from the common inlet 107. The introduced solution sequentially flows into the four reaction chambers 102 along the common supply channel 105 and is finally discharged from the upper common outlet 108.
  • a part of the solution in the common supply channel 105 passes through the reaction chamber 102 by controlling the common suction channel 109 formed in the lower part of the reaction chamber 102 to a negative pressure. It flows to the common suction channel 109.
  • a cDNA library is constructed in the nucleic acid capture unit 104 formed at the same position as the cell capture unit 103. This library is used as a template for synthesis of the 2 nd cDNA using a DNA probe having a different sequence for each two-dimensional array chip 115, to construct a sequencing library.
  • FIG. 5 shows a detailed configuration of the two-dimensional array chip 115 used in this embodiment.
  • FIG. 5A is a cross-sectional view cut perpendicularly to the surface of the two-dimensional array chip 115.
  • 5B is a cross-sectional view of the AA ′ cross section of FIG. 5A viewed from the upper surface side
  • FIG. 5C is the BB ′ cross section of FIG. 5A of the upper surface side. It is sectional drawing seen from.
  • the cell trapping part 103 corresponds to each opening (channel 504) formed on the upper surface side of the chip 503, and the nucleic acid trapping part 104 is accommodated in a space surrounded by the chip 503 and the pore array sheet 502. It corresponds to a large number of magnetic beads 601.
  • FIG. 6 shows an enlarged unit structure of the two-dimensional array chip 115 (FIG. 5).
  • the unit structure is composed of a pair of cell traps 103, a nucleic acid trap 104 packed with a large number of magnetic beads 601, and a pore array sheet 502 in which a lower channel 501 is formed.
  • the pore array sheet 502 functions as a member that closes a large number of concave portions formed on the lower surface side of the chip 503 and confines the magnetic beads 601 in the concave portions.
  • the lower channel 501 is a large number of through holes formed in the pore array sheet 502, and connects the nucleic acid capturing unit 104 and the common suction channel 109.
  • the size of the lower flow path 501 is formed such that the magnetic beads 601 can be held in the nucleic acid capturing unit 104.
  • FIG. 7 shows known information necessary for capturing nucleic acid (mRNA) extracted from the cells 106 captured by the cell capturing unit 103 (step 1), cDNA synthesis (step 2), nucleic acid amplification (PCR), and sequencing.
  • mRNA nucleic acid
  • step 3 and 4 The conceptual diagram of the step of the synthesis
  • step 3 and 4 The conceptual diagram of the step of the synthesis
  • Step 1 First, the cells 106 were washed with 500 ⁇ L of 1 ⁇ PBS buffer (Phosphate buffered saline) without damaging them, and then 1000 cells 106 suspended in 10 ⁇ L of 1 ⁇ PBS buffer cooled to 4 ° C. were flow cells. It is introduced from a common inlet 107 formed on the upper surface of the device 101 (FIG. 4). At the same time, the solution is sucked from the upper common outlet 108 which is the opposite end of the common supply channel 105 so that the four reaction chambers 102 are filled with this solution. Thereby, the upper part of the two-dimensional array chip 115 arranged in each reaction chamber 102 is filled with the PBS buffer containing the cells 106.
  • 1 ⁇ PBS buffer Phosphate buffered saline
  • a negative pressure (1.0 atm) is applied to the lower common outlet 110, and the solution is sucked from the cell trap 103 into the common suction channel 109 (FIG. 4).
  • the cell 106 moves along the flow of the solution and reaches the cell trap 103.
  • the opening diameter of the cell trapping portion 103 is smaller than the diameter of the cell 106, the reached cell 106 is trapped in the opening of the cell trapping portion 103. Since the trapped cells 106 serve as plugs for the solution flow, the solution flow moves to the cell trapping portion 103 that has not yet captured the cells 106. Therefore, the remaining cells 106 in the solution move to the openings that have not yet captured the cells 106 and are captured.
  • the cells 106 remaining in the reaction chamber 102 (excess cells 106 that have not been trapped) and the PBS buffer are discharged from the upper common outlet 108.
  • a cell lysis solution (Lysis buffer) (for example, a surface active agent such as Tween 20) is allowed to flow from the upper common inlet 107 toward the upper common outlet 108 to fill the reaction chamber 102 with the cell lysis solution.
  • a negative pressure is applied to the lower common outlet 110 to aspirate the cell lysate.
  • the lower flow path 501 formed in the pore array sheet 502 is a flow path made of a porous material having a diameter of 0.2 ⁇ m and has a large pressure loss. For this reason, the cell lysate continues to flow slowly from the reaction chamber 102 through the cell capture unit 103 and the nucleic acid capture unit 104 to the common suction channel 109 over a period of about 5 minutes.
  • the cell lysate breaks the cells 106 while flowing.
  • Nucleic acid (mRNA) 206 is extracted from the disrupted cells 106.
  • the nucleic acid 206 passes through the cell capture unit 103 together with the cell lysate without reaching the periphery, and reaches the nucleic acid capture unit 104.
  • an electric field may be applied in the direction indicated by the arrow 603 (the direction from the lower surface side to the upper surface side of the flow cell device 101) to move the nucleic acid 206 in the cell 106 to the nucleic acid trap 104 by electrophoresis.
  • Position information on the two-dimensional array chip 115 of the cell capture unit 103 that has captured the cell 106 (in the case of FIG. 5A, the cell capture at any position of the cell capture units 103 arranged in a 7 ⁇ 7 lattice pattern)
  • the information on the part 103) is stored as the sequence information of the first DNA probe 201 fixed to the magnetic bead 601 of the corresponding nucleic acid capturing part 104. That is, a different capture sequence 202 is introduced into the first DNA probe 201 of the nucleic acid capture unit 104 for each position of the nucleic acid capture unit 104 on the two-dimensional array chip 115.
  • the first DNA probe 201 has a poly T sequence at the 3 ′ end in addition to the capture sequence 202.
  • the nucleic acid 206 is captured by hybridizing the poly T sequence at the 3 ′ end on the first DNA probe 201 side with the poly A sequence at the 3 ′ end of the nucleic acid 206.
  • a common primer 204 reverse for PCR amplification is further provided on the 5 ′ end side of the first DNA probe 201.
  • the first DNA probe 201 of the present example has a slightly more complicated sequence configuration, 30 base PCR amplification common primer 204 (Reverse) from the 5 ′ end, 7 base cell recognition sequence and 7 bases.
  • 30 base PCR amplification common primer 204 reverse
  • 7 base cell recognition sequence 7 bases.
  • a cell identification sequence 203 consisting of a random sequence
  • 18 base oligo (dT) sequence + a capture sequence 202 consisting of a 2 base VN sequence.
  • a sequence for molecular recognition for example, 7 bases
  • 4 7 1.6 ⁇ 10 4 molecules can be recognized, so the DNA sequence for the amplification product obtained by the next-generation sequencer From the data, it is possible to recognize which molecule is derived from the amplification product having the same gene sequence from the same cell.
  • the amplification bias between genes generated in the amplification process can be corrected.
  • the amount of nucleic acid initially present in the sample can be quantified with high accuracy.
  • the accuracy of amplification bias correction decreases.
  • the oligo (dT) sequence located most 3 ′ is hybridized with the poly A tail added to the 3 ′ side of the nucleic acid 206 and used to capture the nucleic acid 206.
  • a poly-T sequence was used as a part of the first DNA probe 201 to analyze mRNA.
  • a random sequence is replaced with a sequence to be analyzed. It goes without saying that a part of the complementary sequence may be used.
  • Step 2 A 1 st cDNA strand is synthesized using the nucleic acid 206 captured by the first DNA probe 201 as a template.
  • 5 mM of 10 mM Tris Buffer (pH 8.0) containing 0.1% Tween20 as the 1 st cDNA strand synthesis reagent, 4 ⁇ L of 10 mM dNTP, 225 ⁇ L of 5xRT Buffer (SuperScript III, Invitrogen), 4 ⁇ L of 0.1 M DTT, RNaseOUT (Invitrogen 4 ⁇ L and Superscript III (reverse transcriptase, Invitrogen) 4 ⁇ L are mixed and introduced from the upper common inlet 107 in the same manner as in the previous step.
  • the solution is slowly raised to 50 ° C. while flowing very slowly from the reaction chamber 102 to the common suction channel 109 with the above solution filled in the gaps of the magnetic beads 601 packed with the solution containing reverse transcriptase and a synthetic substrate.
  • the complementary strand synthesis reaction (1 st cDNA strand synthesis reaction) was carried out for about 50 minutes after heating.
  • RNA is degraded, and the residue and degradation products in the nucleic acid capturing unit 104 are removed and washed. Further, it is washed five times in the same manner with a solution containing an alkali modifier and a washing solution.
  • a cDNA library array for each captured cell is constructed.
  • Steps 3 and 4 Next, 69 ⁇ L of sterilized water, 10 ⁇ L of 10 x Ex Taq Buffer (TaKaRa Bio), 100 ⁇ L of 2.5 mM dNTP Mix, and 10 ⁇ M of each PCR amplification consensus sequence (Reverse) were added to the Ex Taq Hot start version (TaKaRa Bio) 1 ⁇ L was mixed, and this mixed reagent was introduced from the upper common inlet 107 into the nucleic acid capturing unit 104 through the common supply channel 105 in the same manner as in the previous step. An individual introduction method of 10 ⁇ L of a mixed solution of 20 kinds of second DNA probes 208 with chip identification tags will be described later.
  • FIG. 7 shows a state in which the second DNA probe 208 is hybridized to the 1 st cDNA strand 207. Furthermore, 6 minutes, the temperature was raised to 72 ° C. perform complementary strand extension reaction, to synthesize the 2 nd cDNA strands 304.
  • a mixed solution of 20 types of second DNA probes 208 having different sequences in the region of the gene-specific probe 211 (a solution having a different chip identification sequence for each reaction chamber 102 (that is, for each two-dimensional array chip 115)) It is introduced for each two-dimensional array chip 115 (reaction chamber 102). In this introduction, individual inlets 111, 112, 113, and 114 are used as described later.
  • the number of gene-specific probes 211 required is the number for acquiring gene expression data.
  • a mixed solution of 200 types of gene-specific probes 211 is introduced into the reaction chamber 102.
  • the porous inner wall, 1 st cDNA strand 207 firmly - it is important that the (eg, biotin by avidin binding) fixed.
  • a buffer solution containing the second DNA probe 208 having a different chip identification sequence is introduced from the individual inlets 111, 112, 113, 114, passed through the common suction channel 109, and the lower common outlet Drain from 110.
  • the vicinity of the inner wall of the nucleic acid capturing unit 103 is filled with the second DNA probe 208 that is different for each reaction chamber 102, and this probe can hybridize to the 1 st cDNA strand 207.
  • the chip identification tag in the second DNA probe 208 is a 4-base random sequence, which enables identification of a maximum of 256 chips.
  • 20 gene-specific sequences for example, ATP5B, GAPDH, GUSB, HMBS, HPRT1, RPL4, RPLP1, RPS18, RPL13A, RPS20, ALDOA, B2M, EEF1G, SDHA, TBP, VIM, RPLP0, RPLP2, RPLP27 and 20 ⁇ 5 bases upstream of 109 ⁇ 8 bases from the poly A tail of the target gene were used for the gene-specific sequence of OAZ1). This is to unify the PCR product size to about 200 bases in the subsequent PCR amplification step.
  • Steps 5 and 6 Finally, PCR amplification with common primers is performed.
  • 49. ⁇ L of sterilized water 10 ⁇ L of 10 x High Fidelity PCR Buffer (Invitrogen), 10 ⁇ L of 2.5 mM dNTP mix, 4 ⁇ L of 50 mM MgSO 4 , 10 ⁇ L of 10 ⁇ M common primer for PCR amplification (Forward), 10 ⁇ M of 10 ⁇ M
  • a reagent is prepared by mixing 10 ⁇ L of the common sequence primer for PCR amplification (Reverse) and 1.5 ⁇ L of Platinum Taq Polymerase High Fidelity (Invitrogen). Further, the solution filling the common suction channel 109 of the flow cell device 101 is discharged from the lower common outlet 110.
  • the prepared reagent is introduced into the common supply channel 105 through the upper common inlet 107 as in the previous step.
  • the entire flow cell device 101 is kept at 94 ° C. for 30 seconds, and thereafter, a three-stage process of 94 ° C. for 30 seconds ⁇ 55 ° C. for 30 seconds ⁇ 68 ° C. for 30 seconds is repeated 40 cycles.
  • the entire flow cell device 101 is kept at 68 ° C. for 3 minutes, and then cooled to 4 ° C. to perform a PCR amplification step.
  • This reaction is a common reaction. Therefore, PCR amplification is performed under common reagent conditions for all chips, and amplification efficiency between chips is made uniform.
  • the obtained PCR product 215 is a sequence that can be sequence-analyzed (more precisely, a sequence that can be pre-processed for sequence analysis (emulsion PCR, etc.)), and is called a sequencing library.
  • a sequencing library a sequence that can be pre-processed for sequence analysis (emulsion PCR, etc.)
  • amplification bias occurs between genes or molecules in this process, it is possible to correct the amplification bias using molecular recognition tags after acquiring next-generation sequencing data. Data can be obtained.
  • the gene expression level can be obtained for each cell identification sequence and chip identification sequence. That is, it is possible to simultaneously analyze the number of cells equal to or less than the product of the type of the cell identification sequence and the type of the chip identification sequence simultaneously introduced into the flow cell device. As a result, it is possible to analyze the number of cells significantly larger than the number of cell identification sequences previously introduced into the two-dimensional array chip.
  • PCR amplification An example was described.
  • the amplification method is not limited to PCR amplification, and other amplification methods such as rolling circle amplification (RCA), NASBA, and LAMP method may be used.
  • the two-dimensional array chip 115 is manufactured as a chip 503 made of PDMS (polydimethylsiloxane).
  • the chip 503 is formed with a cell trapping portion 103, a nucleic acid trapping portion 104 filled with magnetic beads 601, and a flow path 504 connecting them.
  • the chip 503 includes a large number of concave structures corresponding to the cell trapping part 103 and a small-diameter channel 504 formed on the bottom surface (upper surface in the drawing). This structure is produced by injection molding.
  • the flow paths 504 are through holes having a diameter of 10 ⁇ m, and are arranged in an array at intervals of 125 ⁇ m.
  • the region on the upper surface side across the channel 504 corresponds to the cell capture unit 103, and the lower surface side (concave) across the channel 504 corresponds to the nucleic acid capture unit 104.
  • the size of the chip 503 side is square 1.125 mm, the case of FIG. 5, the cell capturing unit 103 are located two 7 therein. This number is only an example, for example, it may be 10 two.
  • the diameter of the cylindrical through hole forming the concave portion directly below the cell trapping portion 103 is 75 ⁇ m, and this portion is filled with magnetic beads 601 to form the nucleic acid trapping portion 104.
  • a pore array sheet 502 in which a large number of pores are arranged in correspondence with the positions of the through holes (recesses) is disposed.
  • the diameter of the pores of the pore array sheet 502 is set to 200 nm, which is smaller than 1 ⁇ m, which is the diameter of the magnetic beads 601.
  • the magnetic beads 601 are filled using an ink jet printer head. That is, in a state where the upper and lower surfaces of the chip 503 are reversed, 2 nL of the solution of the magnetic beads 601 on which the first DNA probe 201 having a different arrangement for each region is fixed is placed in the space as the nucleic acid capturing unit 104. Fill. At this time, the magnetic bead 601 solution used for filling is suspended at a number density of 5 ⁇ 10 9 particles / mL of magnetic beads 601 having a diameter of 1 ⁇ m. Further, streptavidin is immobilized on the magnetic bead 601, and the first DNA probe 201 modified with the 5 ′ biotin group is immobilized via this streptavidin.
  • the solvent is only the water in the bead solution due to capillary action because the inner wall of the pores in the pore array sheet 502 is a hydrophilic surface.
  • the magnetic beads 601 remain in the nucleic acid capture unit 104 after absorption.
  • the pore array sheet 502 various materials such as a monolith sheet composed of porous glass, a capillary plate obtained by bundling capillaries and sliced, a nylon membrane, and a gel thin film can be used. In this embodiment, alumina is anodized. The pore array sheet thus obtained was used. Such a pore array sheet 502 can be made by anodic oxidation, but a product having a pore diameter of 20 nm to 200 nm and a diameter of 25 mm is commercially available. In this embodiment, as described above, the pore array sheet 502 having a pore diameter of 200 nm is used. The pores in the pore array sheet 502 become the lower channel 501 connecting the nucleic acid capturing unit 104 and the lower common channel 109.
  • the chip 503 is manufactured by PDMS, but a substrate made of a resin (polycarbonate, cyclic polyolefin, polypropylene) manufactured by nanoimprint technology or injection molding, a commercially available nylon mesh or a track etch membrane is used.
  • the chip 503 may be used.
  • thermal bonding can be used.
  • the two-dimensional array chip 115 is configured by integrating the chip 503 and the pore array sheet 502.
  • a separate reaction tube is prepared for each unique tag sequence, and the magnetic bead 601 and the DNA probe are included therein.
  • the solution may be mixed in a Tris buffer (pH 7.4) containing 1.5 M NaCl and the binding reaction may be performed while rotating for 10 minutes.
  • the pore array sheet 502 produced by the above-mentioned method can be used repeatedly, and for gene groups that need to know the expression level, a gene-specific sequence primer mix solution with a common sequence primer (Reverse) for PCR amplification added to produce, in the same manner as described above synthesis of 2 nd cDNA strands, PCR amplification, and emPCR subjected, it may be performed an analysis in the next generation sequencers. That is, by repeatedly using a cDNA library, it is possible to perform highly accurate expression distribution measurement for a necessary type of gene.
  • the second adjustment method can also be executed using the above-described flow cell device 101 (FIGS. 5 and 6), and a sequencing library for the next-generation sequencer can be easily prepared.
  • step 1 the sequence of the first DNA probe 301 (FIG. 3) immobilized on the inner wall of the nucleic acid capture unit 104 is a common connection sequence with a short base length of 10 bases instead of the common PCR primer (Reverse). It is only a point using 302.
  • step 2 is exactly the same as the first adjustment method described above.
  • the second DNA probe 303 to be used when the 2 nd cDNA strand synthesis is that it does not include chip identification sequence. That is, the mixed solution of 20 kinds of second DNA probes 303 is not introduced through the individual inlets 111, 112, 113, 114 for each two-dimensional array chip 115, but steps 1 and 2 of the first adjustment method. Similarly, a mixed solution of the second DNA probes 303 having the same arrangement for all the two-dimensional array chips 115 is introduced from the upper common inlet 107 through the common supply channel 105.
  • step 4 as in the first adjustment method, it performs complementary strand extension reaction by raising the inter temperature of the whole of the flow cell devices 101 72 ° C. in 6 minutes, to synthesize the 2 nd cDNA strands.
  • Step 5 with respect to the synthesized 2 nd cDNA strands 304, the third DNA probe 305 (the PCR common 306, a second chip identifier sequence 307 consists of complementary sequence 308.) hybridizing .
  • the introduction method is exactly the same as the first adjustment method described above.
  • the temperature of the entire flow cell device 101 is raised to 72 ° C. for 6 minutes to perform complementary strand extension reaction, thereby completing the introduction of the tag sequence.
  • PCR amplification is performed by the same method as the first adjustment method, and a sequencing library is constructed as the PCR amplification product 309.
  • FIG. 8 shows a configuration example of a single cell analysis apparatus that can automatically execute the first adjustment method or the second adjustment method using the flow cell device 101 described above.
  • This single cell analysis apparatus can execute the first adjustment method or the second adjustment method by automatic control, introduce a reagent into the flow cell device 101, and cause the reaction.
  • FIG. 8 shows the configuration of a single cell analyzing apparatus with particular attention paid to the liquid feeding control system.
  • the control computer 1309 of the single cell analysis apparatus appropriately controls the cell introduction control device 1311, the reagent introduction control device 1312, the stage control system 1313, the upper reagent discharge device 1314, the lower reagent discharge device 1315, and the temperature control system 1316.
  • the cell introduction control device 1311 controls introduction of the cells 106 into the flow cell device 101 of cells.
  • the reagent introduction controller 1312 introduces a cell lysate for disrupting the cells 106, introduces an enzyme reagent for cDNA synthesis or PCR amplification, introduces the second and third DNA probes, and separates the reaction chamber 102. Control the introduction of mineral oil and so on.
  • the cell introduction control device 1311 and the reagent introduction control device 1312 are connected to the upper common inlet 107 through a common pipe.
  • the stage control system 1313 controls the change of the observation field of view of the flow cell device 101 (XYZ position of the stage on which the flow cell device 101 is placed) for microscopic observation.
  • the upper reagent discharging device 1314 controls the discharging of unnecessary reagents, cells, mineral oil for separating the reaction chamber 102, and the like.
  • the upper reagent discharging device 1314 and the upper common outlet are connected by a dedicated pipe.
  • the lower reagent discharging device 1315 includes (1) introduction of cells 106 into the two-dimensional array chip 115, (2) suction for introducing various enzyme reagents, second and third DNA probes, substrates, etc. Controls the discharge of the prepared nucleic acid amplification product.
  • the lower reagent discharging device 1315 and the lower common outlet 110 are connected by a dedicated pipe.
  • the temperature control system 1316 controls the temperature (reaction temperature) in the flow cell device 101.
  • the cell introduction control device 1311 and the reagent introduction control device 1312 are a flow cell device for storing cells 106 and various reagents (enzyme reagents, substrates, second and third DNA probes, primers) stored at an appropriate temperature at an appropriate timing. 101 is introduced into the common supply flow path 105 or the individual inlets 111, 112, 113, 114. For this reason, the cell introduction control device 1311 and the reagent introduction control device 1312 appropriately open and close the switching valve to switch the piping inside the device.
  • the upper reagent discharging device 1314 and the lower reagent discharging device 1315 have a syringe pump or the like inside, and suck and discharge the reagent and the cell solution.
  • the waste liquid accumulated in the syringe can be discharged into a waste liquid bottle or the like.
  • the temperature control system 1316 has the ability to control the temperature of the reaction chamber 102 between 4 ° C. and 98 ° C., and is composed of a Peltier element and its control device.
  • the stage control system 1313 will be described in a third embodiment.
  • the single cell analysis apparatus shown in FIG. 8 executes the following series of controls using the control computer 1309.
  • Step 1 the control computer 1309 executes a cell 106 capture process and a nucleic acid 206 capture process.
  • the control computer 1309 controls the cell introduction control device 1311 to introduce a solution containing the cells 106 into the upper common inlet 107 from the solution tube.
  • the control computer 1309 controls the upper reagent discharging device 1314 to temporarily fill the reaction chamber 102 with the cell solution.
  • the control computer 1309 controls the lower reagent discharging device 1315 to capture the cells 106 on the two-dimensional array chip 115.
  • the control computer 1309 sucks the cells 106 in the excessive cell solution by controlling the upper reagent discharging device 1314 and introduces the cell lysate from the upper common inlet 107.
  • the control computer 1309 controls the lower reagent discharging device 1315, sucks the cell lysate through the common suction channel 109, and captures the nucleic acid (mRNA) 206 in the nucleic acid capturing unit 104.
  • the control computer 1309 uses the temperature control system 1316 to control the temperature in the reaction chamber 102 to about 25 ° C. (the temperature at which mRNA capture occurs with high efficiency).
  • Step 2 In order to synthesize the 1 st cDNA strand, the control computer 1309 introduces a cDNA synthesis reagent from the upper common inlet 107 using the reagent introduction controller 1312. Next, the control computer 1309 fills the reaction chamber 102 with the reagent using the upper reagent discharge device 1314, and then applies a negative pressure to the lower common outlet 110 using the lower reagent discharge device 1315. As a result, the cDNA synthesis reagent is introduced from the reaction chamber 102 into the two-dimensional array chip 115.
  • the control computer 1309 uses the temperature control system 1316 to appropriately control the temperature of the flow cell device 101 for a certain reaction time, and the cDNA synthesis reaction is completed. Thereafter, the control computer 1309 uses the temperature control system 1316 to inactivate the cDNA synthase by heating the reaction chamber 102 to 85 ° C., and the RNase reagent is put on the two-dimensional array chip 115 as described above. Introduce.
  • the control computer 1309 controls the reagent introduction controller 1312 to introduce the enzyme reagent solution into the upper common inlet 107.
  • the reagent introduction control device 1312 and the upper common inlet 107 are connected by piping.
  • the control computer 1309 introduces a buffer containing mineral oil and salt from the upper common inlet 107 and sucks it from the upper reagent discharging device 1314.
  • the four reaction chambers 102 connected in series to the common supply channel 105 are separated from each other by the mineral oil.
  • control computer 1309 connects the buffer solutions containing the second DNA probes 208 having different chip identification sequences to the corresponding individual inlets 111, 112, 113, 114 through the control of the reagent introduction controller 1312, Further, the lower reagent discharging device 1315 is controlled to introduce the DNA probe solution into the two-dimensional array chip 115.
  • Steps 5 and 6 When the synthesis of 2 nd cDNA strands 304 is completed, the control computer 1309, together with the controls the reagent introduction control unit 1312 for introducing a washing buffer to the upper common inlet 107, the reaction chamber 102 and controls the upper reagent discharge device 1314 The mineral oil used for the separation is discharged from the region 116 of the common supply channel 105. Thereafter, the control computer 1309 introduces the common primer and the PCR amplification reagent into the upper common inlet 107, and introduces the reagent into the two-dimensional array chip 115 as in the above-described step. Thereafter, the control computer 1309 performs PCR amplification by applying a predetermined temperature cycle using the temperature control system 1316 for the PCR reaction.
  • control computer 1309 introduces the second DNA probe 208 from the upper common inlet 107, and the third DNA probe 308 to the individual inlets 111, 112, 113, 114. Introduce from.
  • Other operations are basically the same as those in the first adjustment method.
  • the nucleic acid (mRNA) 206 contained in each cell 106 is used for constructing a cDNA library in a state where information on which cell in the cell group arranged in an array is derived is retained. Another method will be described.
  • a pore array sheet having a DNA probe immobilized thereon is used as the nucleic acid capture unit 104 instead of the magnetic beads 601. By using the pore array sheet, it is possible to avoid the risk that the magnetic beads 601 are mixed between the nucleic acid capturing units 104 when the two-dimensional array chip 115 is set in the flow cell device 101.
  • FIG. 9 shows the structure of the flow cell device 101 according to this embodiment
  • FIG. 10 shows the structure of the two-dimensional array chip 115 used in this embodiment.
  • FIG. 11 shows an enlarged cross-sectional view of the two-dimensional array chip 115
  • FIG. 12 shows a reaction process for the second adjustment method.
  • FIG. 10A is a cross-sectional view cut perpendicularly to the surface of the two-dimensional array chip 115.
  • FIG. 10B is a cross-sectional view of the AA ′ cross section of FIG. 10A viewed from the upper surface side, and
  • FIG. 10C is the BB ′ cross section of FIG. It is sectional drawing seen from.
  • the pore array sheet constituting the nucleic acid capturing unit 104 through holes 1001 having a diameter of 0.3 ⁇ m were formed at a pitch of 0.5 ⁇ m in a SiO 2 film 1002 having a thickness of 5 ⁇ m.
  • the first DNA probe 301 is fixed to the inner wall surface of the through hole 1001 serving as the nucleic acid capturing unit 104 using a silane coupling agent.
  • the diameter (uppermost part) of the tapered concave part constituting the cell trapping part 103 is 10 ⁇ m.
  • the cell trapping part 103 was prepared by forming an opening in a polyimide resin film 1003 having a thickness of 10 ⁇ m using lithography.
  • borate buffer pH 10 containing 10 mM glycine, 0.01% SDS and 0.15 M NaCl in the volume of the device. 8.5
  • 0.01% SDS heated to 60 ° C, which is 10 times the internal volume and 30 mM sodium citrate buffer (2xSSC, pH 7.0 containing 0.3M NaCl).
  • 10mTris containing 0.1% Tween 20 of 100 times the internal volume is introduced and discharged to complete the washing.
  • the reaction process is the same as in the first adjustment method 2 of Example 1.
  • the common supply channel 105 (corresponding to the upper common inlet 107 and the upper common outlet 108) and the individual fluid channels (corresponding to the individual inlets 111, 112, 113, 114) are provided on the upper surface side.
  • the flow cell device 101 having a structure in which the upper common inlet 107, the common supply channel 105, and the upper common outlet 108 are removed from the upper surface side of the flow cell device 101 (FIG. 1). Is used.
  • the flow cell device 101 shown in FIG. 14 has an opening at the top of the two-dimensional array chip 115, so that the cell solution can be dropped directly on the top surface of the two-dimensional array chip 115 or can be observed with a microscope. ing.
  • Other configurations are the same as those in FIG.
  • the flow cell device 101 according to the present embodiment has a simpler structure than the flow cell device 101 according to the first and second embodiments.
  • FIG. 15 shows a configuration example of a single cell analysis apparatus used in this example.
  • the cell introduction control apparatus according to this example is replaced with the reagent introduction control apparatus 1312 for introducing an enzyme reagent or a DNA probe.
  • a cell / reagent introduction control device 1317 having a function is provided, and introduction of the cell 106 and the reagent is realized through four individual inlets 111 to 114.
  • the same solution is introduced into the four reaction chambers 102
  • the same solution is introduced into the four individual inlets 111 to 114
  • four individual inlets are introduced. Solutions corresponding to 111 to 114 are introduced.
  • the reagent and the like introduced from the upper common inlet 107 in Examples 1 and 2 are introduced through the individual inlets 111 to 114.
  • the composition and quantity of reagents and the like introduced in this example are the same as those in Examples 1 and 2.
  • the reagent was introduced into the two-dimensional array chip 115 using the lower reagent discharging device 1315 after the reaction chamber 102 was filled with the solution with the upper reagent discharging device 1314.
  • the reaction chamber 102 at the upper part of the two-dimensional array chip 115 is filled with the reagent, or an amount of reagent sufficient to cover the upper surface of the two-dimensional array chip 115 with the liquid is introduced from the individual inlets 111 to 114, and then the lower part.
  • the reagent can be introduced into the two-dimensional array chip 115 by controlling the common suction channel 109 to a negative pressure using the reagent discharging device 1315.
  • a cell capture position on a planar device such as the flow cell device 101 can be associated with a gene expression analysis result.
  • a cell capture position on a planar device such as the flow cell device 101 (including a pore array sheet) can be associated with a gene expression analysis result.
  • FIG. 16 shows a configuration in which a single cell analyzer (FIG. 8) and an optical microscope are combined.
  • FIG. 16 shows a situation where the cells 106 are captured on the two-dimensional array chip 115 of the flow cell device 101.
  • the flow system 1201 corresponds to a single cell analyzer (FIG. 8), and performs extraction of nucleic acid (mRNA) 206 from the cell 106 and amplification thereof in the flow cell device 101, as in the above-described embodiment.
  • An optical microscope 1203 is disposed above the flow system 1201. Arrow 1211 indicates the movement of the amplification product.
  • the next generation (large-scale) DNA sequencer 1205 determines the sequence of the cells 106 based on the sequencing library as an amplification sample prepared by the flow cell device 101.
  • the optical microscope 1203 includes a phase contrast microscope, a differential interference microscope, a fluorescence microscope, a laser-scanning confocal fluorescence microscope, a Raman microscope, a nonlinear Raman microscope (CARS microscope, SRS microscope, RIKE microscope), an IR microscope, and the like.
  • the information obtained by these optical microscopes 1203 has little information as far as genetic information is concerned.
  • the optical microscope 1203 can basically measure with the cells 106 alive. That is, it is possible to measure in real time changes over time of the cells 106, for example, the response of the cells to the stimulus.
  • a device that stores position information on the flow cell device 101 detailed information related to gene expression can be associated with information including temporal changes by an optical microscope.
  • the sequence information 1212 from the next generation (large-scale) DNA sequencer 1205, the information 1213 from the optical microscope image 1203, and the position information 1214 in which the tag sequence is associated are integrated.
  • An information integration system 1206 is provided.
  • the minimum configuration of the information integration system 1206 that integrates the measurement information of the cells 106 is a system 1207 other than the next-generation (large-scale) DNA sequencer 1205. It has the function of outputting the sample (nucleic acid amplification product).
  • FIG. 16 shows a state where the cells 106 are captured on the pore array sheet constituting the flow cell device 101.
  • a fluorescent substance is introduced into a specific protein in the cell 106 by expressing GFP in a protein to be measured (for example, p53) or by immunostaining. Data on the amount of expressed protein for individual cells 106 can be correlated with gene expression levels obtained by crushing cells 106, processing samples on a pore array sheet, and quantifying by DNA sequencing. it can.
  • the nucleic acid is stained with DAPI and the cell nucleus is recognized, so that the cell position is identified by a fluorescence microscope.
  • the information integration system 1206 executes the association between the fluorescence microscope data and the gene expression data and the estimation of information related to gene control.
  • the fluorescence microscope includes a light source 1300, an excitation filter 1301, a dichroic mirror 1302, and an emission filter 1303.
  • a light source 1300 for example, a mercury lamp is used.
  • the excitation wavelength is determined by the excitation filter 1301.
  • a light receiving wavelength is selected by the emission filter 1303.
  • the control computer 1308 selects the excitation filter 1301, the dichroic mirror 1302, and the emission filter 1303 according to the control signal 1304, and only the light from the specific phosphors is selected. Measure.
  • the fluorescence image of the cell 106 is acquired by the objective lens 1305, the imaging lens 1306, and the CCD camera 1307.
  • the control computer 1308 controls these and acquires image data.
  • control computer 1308 controls the XY stage 1310 to move the microscope image.
  • control computer 1308 can associate the position coordinates on the pore array sheet, the array data of the cell recognition tag, and the position coordinates on the microscope image calculated from the position coordinates of the XY stage.
  • the finally obtained nucleic acid amplification product is subjected to sequence analysis in a next-generation (large-scale) DNA sequencer 1205.
  • emPCR and bridge amplifier for sequencing are executed in this system.
  • the position information of the image and the cell recognition tag sequence information collated on the control computer 1308 are transmitted to the information integration system 1206, and the protein amount obtained from the fluorescence image is associated with the gene expression amount.
  • the temporal change of gene expression analysis data is estimated. This makes it possible to measure the dynamics of the gene expression network.
  • this fluorescence microscope may be used not only for intracellular measurement but also for measuring the amount of substances secreted from cells such as captured cytokines by immunofluorescence staining with antibodies. Of course, it may be similarly used for analysis of gene expression level after crushing.
  • a differential interference microscope or a Raman microscope can be combined in place of the fluorescence microscope.
  • the present invention is not limited to the above-described embodiments, and includes various modifications.
  • the above-described embodiments have been described in detail for easy understanding of the present invention, and it is not necessary to provide all the configurations described.
  • a part of one embodiment can be replaced with the configuration of another embodiment.
  • the structure of another Example can also be added to the structure of a certain Example.
  • a part of the configuration of another embodiment can be added, deleted, or replaced.
  • each of the above-described configurations, functions, processing units, processing means, and the like may be realized by hardware by designing a part or all of them with, for example, an integrated circuit.
  • Each of the above-described configurations, functions, and the like may be realized by the processor interpreting and executing a program that realizes each function (that is, in software).
  • Information such as programs, tables, and files that realize each function can be stored in a storage device such as a memory, a hard disk, or an SSD (Solid State Drive), or a storage medium such as an IC card, an SD card, or a DVD.
  • Control lines and information lines indicate what is considered necessary for the description, and do not represent all control lines and information lines necessary for the product. In practice, it can be considered that almost all components are connected to each other.

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Crystallography & Structural Chemistry (AREA)
  • Clinical Laboratory Science (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Computational Biology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Fluid Mechanics (AREA)
  • Evolutionary Biology (AREA)
  • Medical Informatics (AREA)
  • Spectroscopy & Molecular Physics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Sustainable Development (AREA)
  • Theoretical Computer Science (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)

Abstract

(1) それぞれが、流路を通じて接続された少なくとも１つの細胞捕捉部と少なくとも１つの核酸捕捉部とを有する、複数の反応室と、(2) 第１の面側において、前記複数の反応室に対して共通に接続される第１の液体流路と、(3) 前記第１の面側において、前記複数の反応室に対して一対一に接続される複数の第２の液体流路と、(4) 前記第１の面と対向する第２の面側において、前記複数の反応室に対して共通に接続される第３の液体流路と、を単一細胞解析用フローセルデバイスに設ける。

Description

単一細胞解析用フローセルデバイス及び単一細胞解析装置
　本発明は、単一細胞解析用フローセルデバイス及びそれを用いた単一細胞解析装置に関する。
　単一細胞解析とは、単一細胞毎に細胞中の生体分子を高精度に検出し、定量する技術である。単一細胞解析は、大きく分けて、２つの技術から構成される。１つは、解析のために細胞を単離する技術であり、１つは、１細胞中の微量な生体分子から高効率に計測用のサンプルを調整して解析する技術である。
　前者の技術には、一般に、フローサイトメータが用いられる。フローサイトメータでは、複雑な処理が自動化されており、ユーザは、細胞を簡便に単離することができる。一方、フローサイトメータは依然として高価である。最近、より簡便かつ安価に細胞を単離する方法として、フローセルデバイスを用いる方法が知られている（特許文献１、２）。
　特許文献１には、計測対象種である細胞の単離を目的として、フローセルデバイス中の反応室内に細胞を個別に捕捉する細胞捕捉部をアレイ状に複数配置した構成が記載されている。細胞捕捉部は、フローセルデバイス中の反応室内に導入された細胞を１つずつ単離することができるメンブレンフィルタを有するデバイスである。目的とする細胞は、上記フィルタに形成された孔を通過することができずフィルタ上に捕捉され、単離される一方、目的外の細胞は、前記フィルタの孔を通過し、フィルタの反対側から排出される。捕捉された細胞は、細胞膜上に発現した膜蛋白を染色する免疫染色法等で導入された蛍光ラベルを用いて計測される。
　特許文献２には、複数の細胞から一つの細胞を捕捉し（複数の細胞から細胞を単離し）、捕捉した細胞を回収するデバイス及び装置が記載されている。特許文献２の場合、細胞は、小さな穴に吸引して捕捉した後、目的とする細胞だけをバルブ制御によって反応室内に吸引する一方、目的外の細胞を細胞捕捉部から排出する。
　次に、単一細胞レベルの遺伝子発現解析で用いられる技術を説明する。
　単一細胞解析が実現する以前の遺伝子発現解析では、細胞群の中からmRNAを取り出し、次に相補鎖であるcDNAを作製してこれをPCR増幅し、更にDNAプローブアレー（DNAチップ）を用いてターゲットを対応するプローブ位置に捕獲して蛍光検出する方法が用いられている。
　しかし、PCR増幅やDNAチップを用いる方法は定量分析精度が低く、より精度の高い遺伝子発現プロフィールの分析方法が望まれている。また、ヒトゲノム解析の終了に伴い、遺伝子発現を定量的に調べる要求が強まると共に、組織中の細胞毎のHeterogeneityに注目が集まっており、多数の単一細胞の中からmRNAを抽出して定量分析する方法が望まれている。
　最近では、単一細胞中の微量なmRNAを逆転写し、これをcDNAに代えてPCR増幅し、大規模DNAシーケンサを用いて増幅産物を配列決定し、シーケンシング結果を集計することによって、増幅後の核酸配列数をカウントし、これによって、mRNA分子数を推定する方法が用いられ始めている（非特許文献１）。この方法の場合、計測できる遺伝子数の上限は、大規模DNAシーケンサの並列数で決まるため、2万数千ある全ての遺伝子を計測できるだけでなく、原理的には、スプラシシングバリアントを含む10万種類の配列も計測できる。
　特許文献３には、多数の細胞について、一度に個々の細胞の遺伝子発現解析を実現するために、多孔質メンブレンや多数のビーズをパッキングしたメンブレンデバイスを利用して1st cDNAライブラリを構成し、更に当該ライブラリから遺伝子発現の２次元分布を得て多数の細胞中の遺伝子発現解析を実現できるデバイスが記載されている。このデバイスを用いた単一細胞中の遺伝子発現の解析では、デバイス上に構築された1st cDNAから相補鎖（2nd cDNA）を合成してPCR増幅し、大規模配列解析装置のためのサンプル（シーケンシングライブラリ）を調製する。
　このシーケンシングライブラリは細胞毎でなく、デバイス毎に調製されるため、複数の細胞からの核酸が混在した状態となる。特許文献３では、得られた配列解析データから上記デバイス上の細胞を識別するためにデバイス上の位置固有の配列が1st cDNAライブラリに導入され、この位置固有の配列ごとに大規模配列解析装置で得られた配列解析結果を分類することによって、単一細胞レベルの遺伝子発現解析を実現している。
特開２０１３－５８１３８号公報 特開２０１０－５１２９１号公報 国際公開第２０１４／０２０６５７号
ゲノムリサーチ 21巻 7号 2002 p. 1088 (Genome Research、 Vol. 21, No. 7, (2011) p. 1088)
　再生医療の実用化研究、遺伝子解析によるがんや免疫関連の診断法の研究、あるいは多細胞生物の生命現象の基礎研究において、組織の平均としての遺伝子の発現量ばかりでなく、組織を構成する一つ一つの細胞の中味を定量的に分析することが重要視され始めている。すなわち、細胞を一つずつ取り出して種々の遺伝子の発現量を定量的にモニターすることが望まれている。生体組織の中で活動する遺伝子mRNAを１細胞レベルで計測することができれば、生体内で起こっている種々の現象を細胞間の相互作用も含めて詳細に知ることができ、生命科学分野、特に医療あるいは創薬分野の研究と診断に大きな効果があると期待される。
　ところで、フローサイトメータを用いて単離された一つ一つの細胞を反応チューブに入れ、遺伝子発現解析のためのシーケンシングライブラリを構築するために必須のプロセス（mRNA抽出、1st cDNA合成、2nd cDNA合成、核酸増幅）を全てマニュアル操作で実行しようとすると、数μL以上の試薬が必要となるだけでなく、前記試薬のコストは細胞数に比例して増大するため、試薬のコストが高額になってしまう。また、前述のマニュアル操作は、熟練した技術者が行う必要がある。
　実際、特許文献１又は特許文献２に記載された方法でも、細胞の単離と、蛍光ラベルによる細胞の識別や計測は可能であるが、個々の細胞についての詳細な遺伝子発現解析のためのシーケンシングライブラリの調整については、単離された細胞を、市販のプラスティック製のチューブ（又は、96穴プレートや、384穴プレート）にマニュアル操作で個別に移した後、mRNAの抽出からPCR増幅までの反応を別途実行させる必要がある。この場合、必要となる試薬量の下限は、マニュアル操作で制御可能なボリューム（通常1μL程度）で定まってしまう。このため、必要となる試薬量は、細胞数に比例して増大し、解析のための試薬コストが上昇してしまうという問題が生じている。
　このように、いずれの特許文献にも、単一のフローセルデバイス内で単一細胞解析の全工程を実行することは想定されていない。ところで、この解析の実行には、フローセルデバイス中の細胞捕捉部に捕捉された均一な細胞集団に対して同一条件で均一なサンプル調製を実行して単一細胞毎の詳細な遺伝子発現を可能にすることと、複数の異なる細胞について個別の処理を同時に実現することと、が求められる。ここで、均一なサンプル調製を行うには、反応溶液が同一の反応容器から供給される必要があり、前記個別の処理の同時実行には、細胞群毎に個別の試薬条件を適用する必要がある。ところが、これら２つの要求を、フローセルデバイスの構成を複雑にすることなく実現できる技術は、現在のところ知られていない。
　上記解題を解決する本発明の単一細胞解析用フローセルデバイスの一つは、(1) それぞれが、流路を通じて接続された少なくとも１つの細胞捕捉部と少なくとも１つの核酸捕捉部とを有する、複数の反応室と、(2) 第１の面側において、前記複数の反応室に対して共通に接続される第１の液体流路と、(3) 前記第１の面側において、前記複数の反応室に対して一対一に接続される複数の第２の液体流路と、(4) 前記第１の面と対向する第２の面側において、前記複数の反応室に対して共通に接続される第３の液体流路と、を有する単一細胞解析用フローセルデバイスである。
　また、上記課題を解決する本発明の単一細胞解析用フローセルデバイスの他の一つは、(1) それぞれが、流路を通じて接続された少なくとも１つの細胞捕捉部と少なくとも１つの核酸捕捉部とを有する、複数の反応室と、(2) 第１の面側において、前記複数の反応室に対して一対一に接続される複数の第１の液体流路と、(3) 前記第１の面と対向する第２の面側において、前記複数の反応室に対して共通に接続される第２の液体流路と、を有する単一細胞解析用フローセルデバイスである。
　また、上記課題を解決する本発明の単一細胞解析装置の一つは、(1)(1-1) それぞれが、流路を通じて接続された少なくとも１つの細胞捕捉部と少なくとも１つの核酸捕捉部とを有する複数の反応室と、(1-2) 第１の面側において、前記複数の反応室に対して一対一に接続される複数の第１の液体流路と、(1-3) 前記第１の面と対向する第２の面側において、前記複数の反応室に対して共通に接続される第２の液体流路とを有する単一細胞解析用フローセルデバイスが載置されるステージと、(2) 前記ステージの位置を制御するステージ制御系と、(3) 前記複数の第１の流体流路に対する第１の液体の導入を個別に制御する導入制御装置と、(4) 前記第２の流体流路からの第２の液体の排出を制御する排出制御装置と、を有する単一細胞解析装置である。
　本発明により、多数の一つ一つの細胞の同時解析を安価かつ簡便に実現することができる。前述した以外の課題、構成及び効果は、以下の実施の形態の説明により明らかにされる。
形態例に係るフローセルデバイスの基本構成を示す図。 シーケンシングライブラリの第１の調整方法を説明する反応過程図。 シーケンシングライブラリの第２の調整方法を説明する反応過程図。 実施例１に係るフローセルデバイスの構成を示す図。 実施例１で使用する２次元アレイチップの構成を示す図。 実施例１で使用する２次元アレイチップの単位構造を拡大して示す図。 実施例１で実行する反応過程を示す図。 単一細胞解析装置の構成例を示す図。 実施例２に係るフローセルデバイスの構成を示す図。 実施例２で使用する２次元アレイチップの構成を示す図。 実施例２で使用する２次元アレイチップの単位構造を拡大して示す図。 実施例２で実行する反応過程を示す図。 実施例３に係るフローセルデバイスの構成を示す図。 実施例３に係るフローセルデバイスの他の構成を示す図。 実施例３で使用する単一細胞解析装置の構成例を示す図。 実施例４で使用する単一細胞解析装置の構成例を示す図。
発明を実施するために形態
　以下、図面に基づいて、本発明の実施の形態を説明する。なお、本発明の実施の態様は、後述する形態例に限定されるものではなく、その技術思想の範囲において、種々の変形が可能である。
　［実施の形態の概要］
　具体的な形態例について説明する前に、各形態例で採用する基本構成や基本概念について説明する。各形態例では、単一細胞解析に必須の２つのプロセス（細胞の単離と、単離された個別の細胞からのサンプルの調製）を実行可能な構造を有するフローセルデバイスと当該フローセルデバイスを用いる単一細胞解析装置の処理動作について説明する。
　単一細胞解析に必須の２つのプロセスが一つのフローセルデバイス内で実行できることで、手作業による試薬の分注操作が回避され、必要になる試薬のボリュームが低減し、単一細胞解析に要するランニングコストが低減される。また、単一細胞解析の全プロセスを自動化（細胞毎に必須な反応処理を自動化）できることで、大規模シーケンサに必要なサンプル調製プロセスの簡素化が実現され、熟練技術者でなくても容易に単一細胞解析ができるようになる。
　さらに、我々は、細胞から抽出されたmRNAからのサンプル調製について、特許文献３に開示されている細胞識別配列を固定したメンブレンデバイスを適用し、形態例に係るフローセルデバイスを構築することとした。これにより、多数の細胞について、同時に多数の細胞から高い効率で1st cDNAライブラリを構築することができ、同時に、一細胞あたり少ない試薬量で均一なサンプル調製を実現することができる。すなわち、個々の細胞毎の遺伝子発現解析が可能な大規模配列解析装置（次世代シーケンサ）用サンプルを調製することできる。かくして、シーケンシングライブラリを安価に構築することができる。
　また、以下の実施の形態では、フローセルデバイスのサンプル調製反応において、フローセルデバイス中の細胞の数に比べて大幅に少ない種類の細胞識別タグを用いて処理できる方法についても説明する。この方法とは、同じ組み合わせの細胞識別タグを持つメンブレンデバイスをフローセルデバイス中に複数配置し（例えば100種類の識別タグを持つメンブレンデバイスを20枚のフローセルデバイス中に配置し）、2nd cDNA合成以降の反応時に異なるメンブレンデバイスを識別できるタグ配列をシーケンシング用の核酸サンプルに挿入する方法である。
　この方法により、一つのフローセルデバイスで処理可能な細胞数を、１つのメンブレンデバイス上の細胞識別タグの種類の数とメンブレンデバイスを識別するためのタグ配列の種類の数との積で与えられる数まで増大させることができる。すなわち、細胞識別タグの種類の数とメンブレンデバイスを識別するためのタグ配列の種類の数との和の数で与えられる種類の配列を準備することにより、これらタグの数の積で与えられる細胞数までの識別が可能となる。この方法を形態例に係るフローセルデバイス上で実現することにより、一細胞あたりの試薬量を低減して試薬コストを低減させることができる。
　以下に示す形態例の１つでは、(1) それぞれが、細胞捕捉部と核酸捕捉部の対を少なくとも１つ有する複数の反応室と、(2) 前記複数の反応室に対して共通に接続され、前記複数の反応室に第１の液体を導入する第１の液体流路と、(3) 前記複数の反応室に対して一対一に接続され、前記反応室毎に第２の液体を個別に導入する複数の第２の液体流路と、(4) 前記複数の反応室に対して共通に接続され、前記細胞捕捉部及び前記核酸捕捉部を通過した前記第1の液体及び／又は前記第２の液体を回収する第３の液体流路と、を有する単一細胞解析用フローセルデバイスについて説明する。
　また、以下に示す形態例の１つでは、(1) それぞれが、細胞捕捉部と核酸捕捉部の対を少なくとも１つ有する複数の反応室と、(2) 前記複数の反応室に対して一対一に接続され、前記反応室毎に液体を個別に導入する複数の第１の液体流路と、(3) 前記複数の反応室に対して共通に接続され、前記細胞捕捉部及び前記核酸捕捉部を通過した液体を回収する第２の液体流路と、を有する単一細胞解析用フローセルデバイスについて説明する。
　［フローセルデバイスの構成］
　図１に、フローセルデバイスの上面図（図１(a）)と断面図（図１(b）)を示す。フローセルデバイス101には複数の反応室102が設けられている。個々の反応室102には、１つ又は複数の細胞捕捉部103と１つ又は複数の核酸捕捉部104とが配置されている。核酸捕捉部104は、望ましくは、細胞捕捉部103に一対一に対応付けて配置されている。一対一であることで、細胞捕捉部103に捕捉された１つの細胞と、核酸捕捉部104に捕捉される核酸との対応関係が明確になる。図１の場合、核酸捕捉部104は、細胞捕捉部103の下面側に積層されている。積層関係にあることで、細胞捕捉部103に捕捉された１つの細胞から抽出された核酸を、対応する核酸捕捉部104に確実に導入することができる。
　図１に示すフローセルデバイス101は、基板内に複数の反応室102とその上面側で接続される共通供給流路105と、前記複数の反応室102とその下面側で接続される共通吸引流路109とを有している。共通供給流路105には、検査対象とする細胞106を含む溶液が流れる。前記溶液は、共通供給流路105に設けられた上部共通インレット107から導入され、共通供給流路105に沿って流れ、上部共通アウトレット108から回収される。この際、前記溶液は、共通供給流路105上に位置する各反応室102を満たす。
　前記溶液の導入と同時に、共通吸引流路109に設けられた下部共通アウトレット110に負圧が印加される。共通吸引流路109が負圧となることで、反応室102内を満たす溶液の一部は、細胞捕捉部103及び核酸捕捉部104を通って共通吸引流路109に流れる。細胞捕捉部103は、細胞106の直径よりも小さい開口部で構成されている。このため、細胞106は、細胞捕捉部103の開口部に捕捉される。細胞捕捉部103の直下には、多孔質材料で構成された核酸捕捉部104が配置されている。細図10図胞捕捉部103と核酸捕捉部104は、反応室102に対して一対一に配置される２次元アレイチップ115上に作製される。図１の場合、細胞捕捉部103と核酸捕捉部104を一組とする構造体は、１つの反応室102内の４つずつ所定の位置に配置される。
　この結果、細胞106は、複数の反応室102内に配置された複数の２次元アレイチップ115上の複数の細胞捕捉部103に均一に捕捉される。捕捉された細胞106に対して反応室102毎に異なる処理を行えるように、各反応室102には、共通供給流路105とは別に個別の流体流路が接続されている。この流体流路は、反応室102に対して一対一に接続される。図１では、４つの流体流路とそれらに対応する４つの個別インレット111、112、113、114を表している。個別インレット111、112、113、114には、接続先の反応室102で実行する処理内容に応じた個別の試薬が導入される。図１の場合、個別の流体流路は、各反応室102の上面側において、その側方側から接続される。
　各反応室102に試薬を個別に導入する場合には、共通供給流路105内における溶液の流れを止めると共に、各反応室102の下面側に接続された共通吸引流路109に負圧を印加して個別の試薬の逆流を防止する。これにより、個別に導入された試薬が、導入先とは異なる反応室102に導入される可能性を十分に低減することができる。
　個別に導入された試薬の導入先とは異なる反応室102への誤導入を確実に防ぐ観点からは、各反応室102の間又は各反応室102の前後の領域116の内壁面を撥水（疎水）処理した共通供給流路105を使用し、個別の試薬の導入に先立って、上部共通インレット107から上部共通アウトレット108に向かってミネラルオイルなどの非極性溶媒を流しても良い。この場合、非極性溶媒が共通供給流路105内の領域116に留まり、各反応室102が互いに分離された状態になる。すなわち、極性溶媒である水溶液は領域116を通過できなくなり、個別に導入された試薬が他の反応室102に導入されることがない。
　このように、図１に示すフローセルデバイス101を用いれば、共通供給流路105を通じて、複数の反応室102に対して一度に共通の溶液を導入できると共に、個別の流体流路を通じて、個別の反応室102に個別の試薬を導入できる。このため、図１に示すフローセルデバイス101の使用により、多数の細胞についての高精度な遺伝子発現解析を同時に実行することが可能となる。また、個別の試薬（反応液）の導入が不要な反応プロセスでは、複数の反応室102で同じ反応プロセスを実行でき、各反応室102における反応の均一化が図られ、高精度な解析が実現される。
　［シーケンシングライブラリの第１の調整方法］
　以下では、１回の配列解析において、多数の細胞からのシーケンシングライブラリを調整するための第１の方法について説明する。
　前述したように、フローセルデバイス101（図１）には、複数の反応室102が設けられており、各反応室102には、複数の細胞から個々の細胞を単離して捕捉する細胞捕捉部103と多孔質材料から構成される核酸捕捉部104とを一組とする複数の構造体が平面的に配置された２次元アレイチップ115が設けられている。
　図２に、核酸捕捉部104の内壁表面（多孔質材料の表面）の拡大構造を示す。図２に示すように、核酸捕捉部104の内壁表面には、第１のDNAプローブ201が固定されている。この第１のDNAプローブ201は、細胞捕捉部103に捕捉された細胞から抽出された核酸（mRNA）206を捕捉するための捕捉配列（ポリT）202と、細胞106を識別するための既知の配列（細胞識別配列）203と、PCR増幅のための共通配列204とを含む。
　（ステップ１）
　このステップは、第１のDNAプローブ201の捕捉配列202に、mRNA 206が捕捉された様子を示している。なお、同じ反応室102内にある核酸捕捉部104であっても、反応室102内の位置が異なれば、異なる細胞識別配列203が付されている。例えば図１の構造の場合、２次元アレイチップ115を構成する４つの核酸捕捉部104には、各配置位置に応じた固有の細胞識別配列203が付されている。核酸206は、電気泳動又は溶液の流れによって、細胞捕捉部103に捕捉された細胞106を破砕することで細胞106から取り出される。
　（ステップ２）
　このステップは、第１のDNAプローブ201に捕捉したmRNA 206を鋳型として、1st cDNA鎖207を合成した様子を示している。この合成反応に必要となる逆転写酵素及び基質は、以下に示す手順で供給される。まず、酵素及び基質を含む緩衝溶液を、上部共通インレット107から上部共通アウトレット108に向かって流し、各反応室102内にある２次元アレイチップ115の上部空間をこの緩衝溶液で満たす。次に、下部共通アウトレット110に負圧を印加して、核酸捕捉部104を通過するように反応室102内の溶液を共通吸引流路109に流し、多孔質材料の表面近傍を必要な試薬で満たす。
　（ステップ３）
　このステップでは、細胞識別配列203から所定位置/範囲（例えば200塩基付近/150～250塩基の範囲）にハイブリダイズする第２のDNAプローブ208を反応室102毎に独立に導入する。図２のステップ３には、第２のDNAプローブ208が、1st cDNA鎖207にハイブリダイズしている様子を示している。第２のDNAプローブ208は、5'末端からPCR用の共通プライマー（Forward）209と、チップ識別配列210と、1st cDNA鎖207に相補的な配列である遺伝子特異的プローブ211とから構成されている。ここで、チップ識別配列210は、反応室102毎（すなわち、２次元アレイチップ115毎）に異なる配列をもつ。また、遺伝子特異的プローブ211は、遺伝子発現データを取得する数だけ必要であり、20種類の遺伝子発現解析を行う場合は２０種類の遺伝子特異的プローブ211の混合溶液を反応室102に導入する。
　反応室102に対する第２のDNAプローブ208の導入は、以下の手順による。まず、上部共通インレット107からミネラルオイルを導入し、共通供給流路105を通じて反対側の上部共通アウトレット108から排出する。この段階では、共通供給流路105に接続された４つの反応室102は未だ分離されていない。次に、塩の含まれる緩衝溶液を共通吸引流路109から個別インレット111、112、113、114に向かって流し、個々の反応室102内にある余分なミネラルオイルを、個別インレット111、112、113、114を通じて排出する。この排出後、ミネラルオイルは、領域116にのみ留まる。この結果、共通供給流路105に接続された４つの反応室102は互いに分離される。すなわち、反応室102内に設けられた２次元アレイチップ115の上部空間は、他の反応室102内に設けられた２次元アレイチップ115の上部空間から分離される。
　このような分離が起きるのは、２次元アレイチップ115の上部空間を規定する反応室102の内壁が親水的であるように表面処理されているのに対し、反応室102の間に位置する領域116が疎水的になるように表面処理されているからである。1st cDNAプローブ201が核酸捕捉部104の内壁表面（多孔質材料の表面）に強固に（たとえばビオチン－アビジン結合によって）固定されていることも高い反応効率を維持するために重要である。
　反応室102の分離が完了した後、チップ識別配列210が異なる第２のDNAプローブ208を含む緩衝溶液を、個別インレット111、112、113、114を通じて反応室102に導入し、導入された緩衝溶液を、細胞捕捉部103、核酸捕捉部104、共通吸引流路109を経て下部共通アウトレット110から排出する。これにより、核酸捕捉部104の内壁近傍は、反応室102毎に異なる第２のDNAプローブ208で満たされた状態となり、この第２のDNAプローブ208が1st cDNA鎖207にハイブリダイズする。
　（ステップ４）
　このステップでは、2nd cDNA 212を合成する。この反応に必要な基質と酵素を導入するために、まず、上部共通インレット107から上部共通アウトレット108に向かって大量の緩衝溶液を流す。大量の緩衝溶液によって、領域116に留まっていたエマルジョンオイルが洗い流される。大量の緩衝溶液を共通供給流路105に流す目的は、共通供給流路105を再び繋げることであるため、多少のエマルジョンオイルが領域116に残っても良い。次に、1st cDNA合成の場合と同様のプロセスにより、2nd cDNA合成に必要な酵素と基質を反応室102に導入する。
　（ステップ５及び６）
　これらのステップでは、共通プライマー214によるPCR増幅を行う。PCR増幅に必要な共通プライマー（Forward）214と、共通プライマー（Reverse）213と、PCR酵素と、基質とは、1st cDNA鎖207の場合と同様の手順で反応室102に導入される。反応完了後に得られたPCR産物215は、配列解析が可能な配列であり（正確には、配列解析の前処理（エマルジョンPCRなど）が可能な配列であり）、シーケンシングライブラリと呼ばれる。
　このシーケンシングライブラリを配列解析することにより、細胞識別配列（細胞識別配列203）とチップ識別配列（チップ識別配列210）毎に遺伝子発現量が得られる。すなわち、フローセルデバイス101中に同時に導入された細胞識別配列203の種類とチップ識別配列210の種類の積の数以下の細胞数についての同時解析が可能となる。これによって、事前に２次元アレイチップ115中に導入した細胞識別配列の数よりも大幅に多い細胞数の解析が可能となる。
　［シーケンシングライブラリの第２の調整方法］
　ただし、前述の方法では、解析遺伝子数が多い場合、第２のDNAプローブ208の種類は、チップ識別配列210の種類数×解析遺伝子数で与えられる数だけ準備する必要がある。このため、多数の第２のDNAプローブ208を準備しなければならない。そこで、以下では、この問題を解決する第２の方法について説明する。
　第２の方法は、2nd cDNA 212を合成するときにチップ識別配列210を導入するのではなく、2nd cDNA合成後のPCR増幅の最初のプロセスでチップ識別配列を導入する。このようにすることで、上記課題（すなわち、解析遺伝子数が多い場合に、準備する第２のDNAプローブ208の種類がチップ数と遺伝子数の積で増えるという問題）を回避することができる。
　以下では、図３を用い、核酸処理のプロセスのうち、第１の方法と相違する点についてのみを説明する。図３は、図２と同様、シーケンシングライブラリを得るまでのプロセス全体を示している。
　（ステップ１及び２）
　核酸捕捉部104の内壁表面に固定する第１のDNAプローブ301の配列は、共通配列204（共通PCRプライマー（Reverse））の代わりに共通接続配列302を設けている。
　（ステップ３）
　2nd cDNA合成時の第２のDNAプローブ303は、第２のDNAプローブ208（図２）からチップ識別配列210を除いた配列である。すなわち、第２のDNAプローブ303は、共通プライマー(Forward)209と遺伝子特異的プローブ211のみから構成されている。
　（ステップ４）
　前記第２のDNAプローブ303を1st cDNA鎖207にハイブリダイズして2nd cDNA鎖304を合成する。
　（ステップ５）
　合成された2nd cDNA鎖304に対して、第２のチップ識別配列307を持った第３のDNAプローブ305をハイブリダイズさせる。この第３のDNAプローブ305は、PCR共通プライマー（Reverse）306と、第２のチップ識別配列307と、共通接続配列の相補配列308とから構成されている。
　（ステップ６）
　PCRプロセス完了後に得られるPCR増幅産物309として、シーケンシングライブラリが構築される。第３のDNAプローブ305の種類の数は、チップの数と同じでよいため、DNAプローブのための初期コストを低減して、同時解析細胞数を増やすことができる。
　［実施例１］
　（フローセルデバイスの構造）
　以下では、前述の形態例の具体的な構成である実施例の１つを説明する。本実施例では、核酸捕捉のためのDNA（DNAプローブ）を表面に固定したビーズを多数パッキングして核酸捕捉部104を構成する。また、本実施例の場合、前述した第一の方法に基づいてシーケンシングライブラリを調整する。
　図４に、本実施例で使用するフローセルデバイス101の上面図（図４(ａ)）と断面図（図４(ｂ)）を示す。本実施例におけるフローセルデバイス101の基本構造は、図１の基本構造と同じである。すなわち、フローセルデバイス101は、４つの反応室102を有し、各反応室102に１つ又は複数の細胞捕捉部103と核酸捕捉部104を有する。核酸捕捉部104は、望ましくは、細胞捕捉部103に対して一対一の関係で配置される。図４では、２次元アレイチップ115に形成された7×7個の細胞捕捉部103に対して核酸捕捉部104が一対一に配置されている。
　本実施例の場合も、核酸捕捉部104は細胞捕捉部103の直下に配置される。ただし、本実施例の場合、核酸捕捉部104は、多数の磁性ビーズを充填した空間により形成されている。本実施例の場合も、細胞106を含む溶液が共通インレット107から導入される。導入された溶液は、共通供給流路105に沿って４つの反応室102に順番に流れ、最終的に上部共通アウトレット108から排出される。溶液を共通供給流路105に流す際に、反応室102の下部に形成した共通吸引流路109を負圧に制御することで、共通供給流路105中の溶液の一部は反応室102を通じて共通吸引流路109に流れる。
　この流れにより、溶液中の細胞106は、細胞捕捉部103を構成する開口部に引き寄せられ、捕捉される。この際、１つの細胞捕捉部103に対して１つの細胞106が捕捉される。また、この流れにより、捕捉された細胞106が破壊され、細胞106内からmRNAが抽出され、核酸捕捉部104の磁気ビーズの表面に捕捉される。このように、本実施例では、細胞捕捉部103と同じ位置に形成された核酸捕捉部104にcDNAライブラリが構築される。このライブラリを鋳型として、２次元アレイチップ115毎に異なる配列を持つDNAプローブを用いて2nd cDNAを合成し、シーケンシングライブラリを構築する。
　図５に、本実施例で使用する２次元アレイチップ115の詳細な構成を示す。図５(a)は、２次元アレイチップ115の面に対して垂直に切断した断面図である。図５(b)は、図５(a)のA-A'断面を上面側から見た断面図であり、図５(c)は、図５(a)のB-B'断面を上面側から見た断面図である。細胞捕捉部103は、チップ503の上面側に形成された個々の開口部（流路504）に相当し、核酸捕捉部104は、チップ503と細孔アレーシート502で囲まれた空間に収容された多数の磁気ビーズ601に相当する。
　図６に、２次元アレイチップ115（図５）の単位構造を拡大して示す。図６に示すように、単位構造は、一対の細胞捕捉部103と、多数の磁性ビーズ601をパッキングした核酸捕捉部104と、下部流路501が形成された細孔アレーシート502とで構成される。細孔アレーシート502は、チップ503の下面側に形成された多数の凹部を塞ぎ、当該凹部に磁気ビーズ601に閉じ込める部材として機能する。下部流路501は、細孔アレーシート502に形成された多数の貫通孔であり、核酸捕捉部104と共通吸引流路109とを接続する。下部流路501の寸法は、磁気ビーズ601を核酸捕捉部104に保持できる寸法に形成されている。
　（単一細胞解析処理：第１の調整方法）
　図７を用いて、磁気ビーズ601の表面で実行される一連の処理を説明する。以下の処理は、前述の第１の調整方法に対応する。この図７には、細胞捕捉部103に捕捉された細胞106から抽出された核酸(mRNA)の捕捉（ステップ１）、cDNAの合成（ステップ２）、核酸増幅(PCR)およびシーケンスに必要な既知の末端配列を導入した2ndストランドの合成（ステップ３、４）、PCR増幅（ステップ５）のステップの概念図が示されている。図７のステップ１～６は、図３のステップ１～６に対応する。
　（ステップ１）
　まず、500μLの１×PBSバッファ（Phosphate buffered saline）で細胞106を傷つけないように洗浄した後、4℃に冷却された10μLの1×PBSバッファに懸濁された1000個の細胞106を、フローセルデバイス101（図４）の上面に形成された共通インレット107から導入する。同時に、４つの反応室102がこの溶液で満たされるように、共通供給流路105の反対側の端部である上部共通アウトレット108から当該溶液を吸引する。これにより、各反応室102に配置される２次元アレイチップ115の上部は、細胞106を含むPBSバッファで満たされる。
　次に、下部共通アウトレット110に負圧（1.0気圧）を印加し、細胞捕捉部103から共通吸引流路109（図４）に溶液を吸引する。細胞106は、溶液の流れに乗って移動し、細胞捕捉部103まで到達する。図５(b)に示すように、細胞捕捉部103の開口直径は、細胞106の直径よりも小さいため、到達した細胞106は細胞捕捉部103の開口に捕捉される。捕捉された細胞106は、溶液流に対して栓の役割を果たすので、溶液の流れは未だ細胞106を捕捉していない細胞捕捉部103に移動する。そのため、溶液中の残りの細胞106は、未だ細胞106を捕捉していない開口に移動し、捕捉される。
　細胞106が細胞捕捉部103に十分な数だけが捕捉されると、反応室102中に残留する細胞106（捕捉されていない過剰な細胞106）とPBSバッファとを、上部共通アウトレット108から排出する。続いて、上部共通インレット107から上部共通アウトレット108に向かって細胞溶解液（Lysis buffer）（例えば、Tween 20などの表面活性剤）を流し、反応室102を当該細胞溶解液で満たす。反応室102が細胞溶解液で満たされると、直ちに、下部共通アウトレット110に負圧を印加し、細胞溶解液を吸引する。以下、全ての溶液は、同様の方法によって２次元アレイチップ115中の核酸捕捉部104を通過させる。このとき、細孔アレーシート502に形成されている下部流路501は、直径が0.2μmの多孔質材料から構成された流路であり、圧力損失が大きい。このため、細胞溶解液は、反応室102から細胞捕捉部103及び核酸捕捉部104を通って共通吸引流路109に、５分程度時間を掛けてゆっくり流れ続ける。
　細胞溶解液は、流れている間に、細胞106を破砕する。破砕された細胞106からは核酸（mRNA）206が抽出される。核酸206は、周辺に拡散することなく、細胞溶解液と共に細胞捕捉部103を通り、核酸捕捉部104に到達する。この他、矢印603で示す方向（フローセルデバイス101の下面側から上面側の方向）に電界を印加し、細胞106中の核酸206を核酸捕捉部104まで電気泳動によって移動させてもよい。この細胞溶解液の導入により、細胞106の破砕と核酸捕捉部104の磁気ビーズ601上に固定された第１のDNAプローブ201による核酸206の捕捉とが同時に実行される。
　細胞106を捕捉した細胞捕捉部103の２次元アレイチップ115上における位置情報（図５(a)の場合、7×7の格子状に配列された細胞捕捉部103のうちのどの位置の細胞捕捉部103かの情報）は、対応する核酸捕捉部104の磁気ビーズ601に固定された第１のDNAプローブ201の配列情報として保存されている。すなわち、核酸捕捉部104の第１のDNAプローブ201には、２次元アレイチップ115上における核酸捕捉部104の位置毎に異なる捕捉配列202が導入されている。第１のDNAプローブ201は、捕捉配列202に加え、3'末端にポリＴ配列を持っている。第１のDNAプローブ201側の3'末端のポリＴ配列を、核酸206の3'末端のポリA配列とハイブリダイズすることにより核酸206を捕捉する。第１のDNAプローブ201の5'末端側には、更に、PCR増幅のための共通プライマー204（Reverse)が設けられている。
　なお、本実施例の第１のDNAプローブ201は、もう少し複雑な配列構成を有し、5'末端から30塩基のPCR増幅用共通プライマー204（Reverse）、7塩基の細胞認識用配列と7塩基のランダム配列からなる細胞識別配列203、18塩基のオリゴ(dT)配列＋2塩基のVN配列からなる捕捉配列202の順に配列されている。ここで、細胞識別配列を7塩基のランダム配列に設定しているので、最大で、47＝1.6×104個の単一細胞を認識することが可能となる。
　また、分子認識用配列（例えば7塩基）を第１のDNAプローブ201へ導入すれば、47＝1.6x104分子を認識することができるため、次世代シーケンサで得られる増幅産物についてのDNA配列データから同じ細胞由来で同じ遺伝子の配列をもった増幅産物が、どの分子由来であるかを認識することが可能となる。すわなち、増幅工程で生じた遺伝子間の増幅バイアスを修正することができる。このため、始めに試料中に存在していた核酸量を高い精度で定量することができる。ただし、単一細胞中の同一遺伝子の発現量が分子認識用配列のバリエーションよりも多い場合には増幅バイアス補正の正確性が低下する。最も3'側に位置するオリゴ(dT)配列は、核酸206の3'側に付加されているポリAテールとハイブリダイズし、核酸206を捕捉するために利用される。
　本実施例では、mRNAを解析するために第１のDNAプローブ201の一部にポリT配列を用いたが、microRNAやゲノム解析を行うためにポリT配列の代わりにランダム配列は解析したい配列と相補的な配列の一部を用いてもよいことは言うまでもない。
　（ステップ２）
　第１のDNAプローブ201に捕捉された核酸206を鋳型として、1st cDNA鎖を合成する。1st cDNA鎖合成試薬として0.1%Tween20を含む10mM Tris Buffer (pH=8.0) 58.5μLと、10mM dNTP 4μLと、5xRT Buffer (SuperScript III, Invitrogen社) 225μLと、0.1M DTT 4μLと、RNaseOUT (Invitrogen社) 4μLと、Superscript III(逆転写酵素, Invitrogen社) 4μLを混和し、上部共通インレット107から前工程と同様に導入する。上記溶液を逆転写酵素および合成基質を含む溶液でパックされた磁気ビーズ601の空隙部分を満たした状態で反応室102から共通吸引流路109に非常にゆっくり流しながら、溶液を50℃にゆっくり昇温して50分ほど相補鎖合成反応（1st cDNA鎖の合成反応）を行った。
　この結果、細胞106毎に、磁気ビーズ601の表面に固定された多くのcDNAをライブラリとして得た。これはいわば１細胞cDNAライブラリアレイというべきものであり、これまでの多くの細胞から得られる平均化されたcDNAライブラリとは根本的に違うものである。
　反応終了後（1st cDNA鎖を合成した後）、フローセルデバイス101の全体を、1.5分間、85℃の温度で保ち、逆転写酵素を失活させた。さらに、フローセルデバイス101の全体を、4℃に冷却した後、RNaseおよび0.1%Tween20を含む10mM Tris Buffer (pH ＝ 8.0) 0.2mLを上部共通インレット107から注入すると共に反対側の上部共通アウトレット108から吸引して反応室102を上記溶液で満し、その後、下部共通アウトレット110から上記溶液を排出すると共に、反応室102中の溶液を上部共通アウトレット108から取り除くという工程を５回繰り返す。これにより、RNAを分解し、核酸捕捉部104中の残存物および分解物を除去及び洗浄する。さらに、アルカリ変性剤を含む液および洗浄液で同様に５回洗浄する。ここまでのプロセスにより、捕捉された細胞毎のcDNAライブラリアレイが構築される。
　（ステップ３及び４）
　次に、滅菌水69μLと、10 x Ex Taq Buffer (TaKaRa Bio社) 10μLと、2.5mM dNTP Mix 100μLと、各10μMのPCR増幅用共通配列(Reverse)が付加されたEx Taq Hot start version (TaKaRa Bio社)1μLとを混和し、この混合試薬を前工程と同様に上部共通インレット107から共通供給流路105を通じて核酸捕捉部104に導入した。チップ識別タグ付きの20種の第２のDNAプローブ208の混合溶液10μLの個別の導入方法については後述する。その後、95℃で3分間、核酸の２次構造を解き、その後、44℃で2分間、1st cDNA鎖207を鋳型としてプライマーの遺伝子特異的配列をアニールさせた。図７は、第２のDNAプローブ208が1st cDNA鎖207にハイブリダイズしている様子を示している。さらに、6分間、72℃に温度を上げて相補鎖伸長反応を行い、2nd cDNA鎖304を合成させる。
　遺伝子特異的プローブ211の領域の配列が異なる20種類の第２のDNAプローブ208の混合溶液（チップ識別配列は反応室102毎（すなわち、２次元アレイチップ115毎）に異なる配列をもつ溶液）を２次元アレイチップ115（反応室102)毎に導入する。この導入には、後述するように個別インレット111、112、113、114を用いる。遺伝子特異的プローブ211は、遺伝子発現データを取得する数だけ必要であり、200種類の遺伝子発現解析を行う場合、200種類の遺伝子特異的プローブ211の混合溶液を反応室102に導入する。
　以下、反応室102に対する第２のDNAプローブ208の導入方法について説明する。まず、上部共通インレット107からミネラルオイルを導入し、上部共通アウトレット108から排出する。次に、塩の含まれる緩衝溶液を共通吸引流路109から個別インレット111、112、113、114に向かって流し、反応室102内の余分なミネラルオイルを排出する。これにより、２次元アレイチップ115の上部の反応室102は、共通供給流路105に残留するミネラルオイルによって他の反応室102から分離される。このような分離が可能であるのは、２次元アレイチップ115の上部の反応室102の内壁が親水的になる一方、反応室102に接続される共通供給流路105の領域116が疎水的になるように表面処理が施されているからである。
　高い反応効率を維持には、多孔質内壁に、1st cDNA鎖207が強固に（例えばビオチン－アビジン結合によって）固定されていることも重要である。反応室102同士の分離が完了すると、チップ識別配列の異なる第２のDNAプローブ208を含む緩衝溶液を個別インレット111、112、113、114から導入し、共通吸引流路109を通って下部共通アウトレット110から排出する。これにより、核酸捕捉部103の内壁近傍は、反応室102毎に異なる第２のDNAプローブ208で満たされ、このプローブが1st cDNA鎖207にハイブリダイズすることができる。
　第２のDNAプローブ208中のチップ識別タグは、細胞識別タグと同様、４塩基のランダム配列であり、これによって最大256チップの識別が可能となる。また、20種類の遺伝子特異的配列（例えば、ATP5B、GAPDH、GUSB、HMBS、HPRT1、RPL4、RPLP1、RPS18、RPL13A、RPS20、ALDOA、B2M、EEF1G、SDHA、TBP、VIM、RPLP0、RPLP2、RPLP27およびOAZ1の遺伝子特異的配列）にターゲット遺伝子のポリAテールから109±8塩基上流部分の20±5塩基を用いた。これは、後続のPCR増幅工程において、PCR産物サイズを約200塩基に統一するためである。PCR産物サイズを統一する事で、煩雑なサイズフラクション精製の工程(電気泳動→ゲルの切り出し→PCR産物の抽出／精製)を除去することができ、1分子からの並列増幅（エマルジョンPCRなど）へ直接利用できる効果を持つ。
　2nd cDNA鎖304を合成完了後、上部共通インレット107から上部共通アウトレット108に向かって大量の緩衝溶液を流し、共通供給流路105の領域116に留まっているミネラルオイルを洗い流す。緩衝溶液を流す目的は、４つの反応室102の間の流路を再び接続することであるので、多少のミネラルオイルが領域116に残ってもよい。
　（ステップ５及び６）
　最後に、共通プライマーによるPCR増幅を実行する。まず、滅菌水49.μLと、10 x High Fidelity PCR Buffer (Invitrogen) 10μLと、2.5 mM dNTP mix 10μLと、50mM MgSO4 4μLと、10μMのPCR増幅用共通配列プライマー (Forward) 10μLと、10μMのPCR増幅用共通配列プライマー(Reverse) 10μLと、Platinum Taq Polymerase High Fidelity (Invitrogen社) 1.5μLとを混和して試薬を作製する。また、フローセルデバイス101の共通吸引流路109を満たしている溶液を下部共通アウトレット110から排出する。
　その後、作製した前記試薬を前工程と同様、上部共通インレット107を通じて共通供給流路105に導入する。続いて、フローセルデバイス101の全体を30秒間94℃に保ち、その後、94℃で30秒間→55℃で30秒間→68℃で30秒間の3段階の工程を40サイクル繰り返す。最後に、フローセルデバイス101の全体を3分間68℃に保った後、4℃に冷却することにより、PCR増幅工程を行う。この反応は共通反応である。従って、全てのチップについて共通の試薬条件によるPCR増幅が行われることになり、チップ間における増幅効率が均一化される。
　この増幅過程において、20種のターゲット遺伝子の目的部分が増幅される。ただし、いずれのPCR産物も、そのサイズは200±8塩基とほぼ均一である。最後に、溶液中に蓄積されたPCR増幅産物の溶液を回収する。この溶液中に含まれるフリーのPCR増幅用共通配列プライマー（Forward/Reverse）や酵素などの残留試薬を除去する目的で、PCR PurificationKit(QIAGEN社)を用いて精製する。
　得られたPCR産物215は、配列解析の可能配列であり（正確には配列解析の前処理（エマルジョンPCRなど）が可能な配列であり）、シーケンシングライブラリと呼ばれる。また、この工程において遺伝子間又は分子間で増幅バイアスが生じたとしても、次世代シーケンシングデータの取得後に、分子認識タグを利用して増幅バイアスの補正を行うことができるため、高精度な定量データを得ることが出来る。
　このシーケンシングライブラリを配列解析することによって、細胞識別配列、チップ識別配列ごとに遺伝子発現量が得られる。すなわち、フローセルデバイス中に同時に導入された細胞識別配列の種類とチップ識別配列の種類の積の数以下の細胞数についての同時解析が可能となる。これにより、事前に２次元アレイチップ中に導入した細胞識別配列数よりも大幅に多い数の細胞数の解析が可能となる。
　ここまで、ビーズ表面で生成したcDNA(1st cDNA)にPCR増幅用の共通配列が付加されている数十種類の遺伝子特異的配列プライマーを用いて2nd cDNA鎖304を合成し、PCR増幅する例について説明した。勿論、増幅手法はPCR増幅に限らず、ローリングサークル増幅(RCA)、NASBA、LAMP法など他の増幅法を用いても良い。
　（２次元アレイチップの構造と作製方法）
　ここでは、図５を用い、磁性ビーズ601を用いて構成される２次元アレイチップ115の構造と作製方法について説明する。２次元アレイチップ115は、PDMS（ポリジメチルシロキサン）製のチップ503として作製される。チップ503には、細胞捕捉部103、磁性ビーズ601を充填した核酸捕捉部104、これらを結ぶ流路504が形成される。なお、チップ503は、細胞捕捉部103に対応する多数の凹構造と、その底面（図中は上面）に形成された小口径の流路504とで構成される。この構造は、射出成型により作製される。流路504は、直径10μmの貫通孔であり、125μm間隔にアレイ状に配置される。流路504を挟んで上面側の領域が細胞捕捉部103であり、流路504を挟んで下面側（凹部）が核酸捕捉部104に対応する。
　チップ503の大きさは一辺が1.125mmの正方形であり、図５の場合、その内部に細胞捕捉部103が72個配置されている。この個数は一例であり、例えば102個でも良い。細胞捕捉部103の直下の凹部を形成する筒状の貫通孔の直径は75μmであり、この部分に磁性ビーズ601を充填して核酸捕捉部104とする。この貫通孔をアレイ状に配置したチップ503の下面には、前記貫通孔（凹部）の位置に対応付けて多数の細孔を配置した細孔アレーシート502が配置される。細孔アレーシート502の細孔の直径は磁性ビーズ601の直径である1μmよりも小さく、200nmとする。細孔アレーシート502で前記貫通孔（凹部）の下面側の開口を塞ぐことにより、磁気ビーズ601は前記貫通孔（凹部）に保持されたままとなる。また、細孔アレーシート502に形成された細孔により、反応室102の上面側と下面側（共通吸引流路109）の間での溶液の流れが確保される。
　上記磁性ビーズ601の充填には、インクジェットプリンタヘッドを用いて実行する。すなわち、チップ503の上下面を逆転させた状態で、個々の領域毎に異なる配列を付した第１のDNAプローブ201を固定した磁気ビーズ601の溶液を、核酸捕捉部104としての空間に2nLずつ充填する。このとき充填に用いる磁気ビーズ601の溶液は、直径1μmの磁性ビーズ601が5×109個/mLの数密度で懸濁されている。また、磁性ビーズ601上には、ストレプトアビジンが固定されており、このストレプトアビジンを介して5'ビオチン基修飾された第１のDNAプローブ201が固定される。インクジェットプリンタヘッドを用いて磁気ビーズ601の溶液を核酸捕捉部104に吐出するとき、溶媒は細孔アレーシート502中の細孔の内壁が親水表面であるため毛細管現象によってビーズ溶液中の水分のみを吸収して、磁気ビーズ601が核酸捕捉部104に残る。
　細孔アレーシート502は、多孔質のガラスから構成されるモノリスシート、毛細管を束ねてスライスしたキャピラリープレート、ナイロンメンブレン、ゲル薄膜など種々のものを用い得るが、本実施例では、アルミナを陽極酸化して得た細孔アレーシートを用いた。このような細孔アレーシート502は、陽極酸化により自作することもできるが、孔径20nm～200nm、直径25mmのものが市販品として入手可能である。本実施例では、上記の通り、孔径が200nmの細孔アレーシート502を使用する。この細孔アレーシート502中の細孔が核酸捕捉部104と下部共通流路109とを接続する下部流路501となる。
　前述の説明では、チップ503をPDMSで作製しているが、ナノインプリント技術や射出成型によって作製した樹脂（ポリカービネート、サイクリックポリオレフィン、ポリプロピレン）製の基板、市販のナイロンメッシュやトラックエッチメンブレンを用いてチップ503としても良い。チップ503と細孔アレーシート502との接着には熱接着を用いることもできる。チップ503と細孔アレーシート502を一体化することで２次元アレイチップ115が構成される。
　なお、磁性ビーズ601上に、固有のタグ配列を有する第１のDNAプローブ201を固定するには、固有のタグ配列毎に別々の反応チューブを用意し、その中で、磁性ビーズ601とDNAプローブ溶液とを1.5M NaClを含むTris バッファ(pH 7.4)中で混和し、10分回転させながら結合反応させれば良い。
　前述の手法で作製した細孔アレーシート502は繰り返し利用可能であり、発現量を知る必要がある遺伝子群については、PCR増幅用共通配列プライマー(Reverse)が付加された遺伝子特異的配列プライマーMix溶液を作製し、上記と同様に2nd cDNA鎖の合成、PCR増幅、およびemPCRを施し、次世代シーケンサにて解析を行えば良い。すなわち、cDNAライブラリを繰り返し利用することによって、高精度な発現分布測定を必要な種類の遺伝子について行うことが可能である。
　（単一細胞解析処理：第２の調整方法）
　続いて、前述の第２の調整方法に対応する処理を説明する。第２の調整方法も、前述のフローセルデバイス101（図５、図６）を用いて実行でき、次世代シーケンサ用のシーケンシングライブラリを容易に調製することができる。
　以下、前述の第の調整方法との相違点についてのみ説明する。ステップ１の相違点は、核酸捕捉部104の内壁に固定する第１のDNAプローブ301（図３）の配列として、共通PCRプライマー（Reverse）の代わりに、塩基長が10塩基と短い共通接続配列302を用いる点のみである。ステップ２は、前述の第１の調整方法と全く同じである。
　ステップ３の相違点は、2nd cDNA鎖の合成時に使用する第２のDNAプローブ303が、チップ識別配列を含んでいない点である。すなわち、20種の第２のDNAプローブ303の混合溶液は、２次元アレイチップ115毎に個別インレット111、112、113、114を通じて導入するのではなく、第１の調整方法のステップ１及び２と同様に、全ての２次元アレイチップ115に対して同じ配列を有する第２のDNAプローブ303の混合溶液が上部共通インレット107から共通供給流路105を介して導入される。
　さらに、ステップ４では、第１の調整方法と同じように、フローセルデバイス101の全体の温度を72℃に6分間を上げることによって相補鎖伸長反応を行い、2nd cDNA鎖を合成させる。ステップ５では、合成された2nd cDNA鎖304に対して、第３のDNAプローブ305（PCR共通306と、第２のチップ識別配列307と、相補配列308とから構成される）をハイブリダイズさせる。
　この処理を実行するために、滅菌水69μLと、10 x Ex Taq Buffer (TaKaRa Bio社) 10μLと、2.5mM dNTP Mix 100μLと、各10μMのPCR増幅用共通配列(Reverse)が付加されたチップ識別タグ付きの10種類のチップ識別タグを含む第３のDNAプローブ308の混合溶液10μLと、Ex Taq Hot start version (TaKaRa Bio社)1μLを混和し、この混合試薬を前工程と同様に上部インレット107から共通供給流路105を通じて、各反応室102の核酸捕捉部104に導入する。10種類の第３のDNAプローブは２次元アレイチップごとに個別に導入する。導入方法は、前述した第１の調整方法と全く同じである。次に、フローセルデバイス101の全体の温度を72℃に6分間上げて相補鎖伸長反応を行い、タグ配列の導入を完了する。最後のステップ６では、第１の調整方法と同じ方法でPCR増幅を実行し、PCR増幅産物309としてシーケンシングライブラリを構築する。
　［単一細胞解析装置］
　図８に、前述のフローセルデバイス101を用いて第１の調整方法又は第２の調整方法を自動的に実行することができる単一細胞解析装置の構成例を示す。この単一細胞解析装置は、第１の調整方法又は第２の調整方法を自動制御で実行し、フローセルデバイス101中に試薬を導入して反応させることができる。
　図８は、特に送液制御系に着目した、単一細胞解析装置の構成を示している。単一細胞解析装置の制御コンピュータ1309は、細胞導入制御装置1311、試薬導入制御装置1312、ステージ制御系1313、上部試薬排出装置1314、下部試薬排出装置1315、温度制御系1316を適切に制御する。
　細胞導入制御装置1311は、細胞のフローセルデバイス101への細胞106の導入を制御する。試薬導入制御装置1312は、細胞106を破砕するための細胞溶解液の導入、cDNA合成又はPCR増幅のための酵素試薬の導入、第２および第３のDNAプローブの導入、反応室102を分離するためのミネラルオイル等の導入を制御する。細胞導入制御装置1311と試薬導入制御装置1312は、共通の配管を通じて上部共通インレット107と接続されている。ステージ制御系1313は、顕微鏡観察のため、フローセルデバイス101の観察視野（フローセルデバイス101を載置するステージのXYZ位置）の変更を制御する。上部試薬排出装置1314は、不要な試薬、細胞、反応室102を分離するためのミネラルオイル等の排出を制御する。上部試薬排出装置1314と上部共通アウトレットは専用の配管で接続されている。下部試薬排出装置1315は、(1) ２次元アレイチップ115への細胞106の導入、(2) 各種酵素試薬、第２及び第３のDNAプローブ、基質等を導入するための吸引、(3) 調製された核酸増幅産物の排出等を制御する。下部試薬排出装置1315と下部共通アウトレット110は専用の配管で接続されている。温度制御系1316は、フローセルデバイス101中の温度（反応温度）を制御する。
　細胞導入制御装置1311と試薬導入制御装置1312は、適切な温度で保存された細胞106、各種試薬（酵素試薬、基質、第２及び第３のDNAプローブ、プライマー）を、適切なタイミングでフローセルデバイス101の共通供給流路105、又は、個別インレット111、112、113、114に導入する。このため、細胞導入制御装置1311と試薬導入制御装置1312は、切り替えバルブを適切に開閉し、装置内部の配管を切り替える。
　上部試薬排出装置1314及び下部試薬排出装置1315は、その内部にシリンジポンプなどを有し、試薬や細胞溶液を吸引して排出する。勿論、前記シリンジに蓄積された廃液は、廃液ボトル等に排出できるように構成されている。温度制御系1316は、反応室102の温度を4℃～98℃の間で温度を制御する能力を有し、ペルチェ素子とその制御装置から構成されている。ステージ制御系1313については実施例３で説明する。
　前記第１の調整方法の自動実行時、図８に示す単一細胞解析装置は、制御コンピュータ1309を用いて以下に示す一連の制御を実行する。
　（ステップ１）
　このステップにおいて、制御コンピュータ1309は、細胞106の捕捉処理と核酸206の捕捉処理を実行する。まず、制御コンピュータ1309は、細胞導入制御装置1311を制御し、細胞106を含む溶液を溶液チューブから上部共通インレット107に導入する。次に、制御コンピュータ1309は、上部試薬排出装置1314を制御し、反応室102を細胞溶液で一旦満たす。続いて、制御コンピュータ1309は、下部試薬排出装置1315を制御し、２次元アレイチップ115上に細胞106を捕捉する。
　次に、制御コンピュータ1309は、過剰な細胞溶液中の細胞106を、上部試薬排出装置1314を制御して吸引すると共に、細胞溶解液を上部共通インレット107から導入する。細胞106を導入する場合と同様、制御コンピュータ1309は、下部試薬排出装置1315を制御し、共通吸引流路109を通じて細胞溶解液を吸引し、核酸（mRNA）206を核酸捕捉部104に捕捉する。ことのき、制御コンピュータ1309は、温度制御系1316を用いて、反応室102内の温度を25℃程度（mRNAの捕捉が高効率で起こる温度）に制御する。
　（ステップ２）
　1st cDNA鎖を合成するために、制御コンピュータ1309は、試薬導入制御装置1312を用いて、cDNA合成試薬を上部共通インレット107から導入する。次に、制御コンピュータ1309は、上部試薬排出装置1314を用いて反応室102を試薬で満たし、その後、下部試薬排出装置1315を用いて、下部共通アウトレット110に負圧を印加する。これにより、cDNA合成試薬が、反応室102から２次元アレイチップ115の内部に導入される。
　制御コンピュータ1309は、温度制御系1316を用いて、一定の反応時間の間、フローセルデバイス101の温度を適切に制御し、cDNA合成反応が終了する。この後、制御コンピュータ1309は、温度制御系1316を用いて、反応室102を85℃に加温することで、cDNA合成酵素を失活させ、上記と同様、RNase試薬を２次元アレイチップ115に導入する。
　（ステップ３及び４）
　制御コンピュータ1309は、試薬導入制御装置1312を制御して、酵素試薬溶液を上部共通インレット107に導入する。試薬導入制御装置1312と上部共通インレット107とは配管で接続されている。これにより、前記と同様、共通供給流路105に接続された各反応室102の各２次元アレイチップ115に上記試薬が導入される。次に、制御コンピュータ1309は、ミネラルオイル及び塩を含むバッファを上部共通インレット107から導入すると共に、上部試薬排出装置1314から吸引する。これにより、共通供給流路105に直列に接続された４つの反応室102がミネラルオイルによって互いに分離される。この後、制御コンピュータ1309は、試薬導入制御装置1312の制御を通じて、チップ識別配列の異なる第２のDNAプローブ208を含む緩衝溶液をそれぞれに対応する個別インレット111、112、113、114に接続し、更に下部試薬排出装置1315を制御して、２次元アレイチップ115内にDNAプローブ溶液を導入する。
　（ステップ５及び６）
　2nd cDNA鎖304の合成が完了すると、制御コンピュータ1309は、試薬導入制御装置1312を制御して上部共通インレット107に洗浄バッファを導入すると共に、上部試薬排出装置1314を制御して反応室102の分離に用いたミネラルオイルを共通供給流路105の領域116から排出する。この後、制御コンピュータ1309は、共通プライマーとPCR増幅試薬を上部共通インレット107に導入し、前記工程と同様、試薬を２次元アレイチップ115内に導入する。その後、制御コンピュータ1309は、PCR反応のために、温度制御系1316を用いて所定の温度サイクルを印加してPCR増幅する。
　なお、前述の第２の調整方法を実行する場合、制御コンピュータ1309は、第２のDNAプローブ208を上部共通インレット107から導入し、第３のDNAプローブ308を個別インレット111、112、113、114から導入する。それ以外の動作は、基本的に第１の調整方法と同じである。
　［実施例２］
　本実施例では、個々の細胞106の中に含まれる核酸（mRNA）206が、アレイ状に配置された細胞群のどの細胞に由来するかの情報を保持した状態でcDNAライブラリを構築するための別の手法を説明する。本実施例では、核酸捕捉部104として、磁気ビーズ601の代わりに、DNAプローブを固定した細孔アレーシートを使用する。細孔アレーシートを用いることで、フローセルデバイス101に２次元アレイチップ115をセットするときに磁気ビーズ601が核酸捕捉部104の間に混じってしまうリスクを回避できる。
　図９に、本実施例に係るフローセルデバイス101の構造を示し、図１０に、本実施例で使用する２次元アレイチップ115の構造を示す。図１１に、２次元アレイチップ115の拡大断面図を示し、図１２に第２の調整方法についての反応過程を示す。
　以下、実施例１との相違点についてのみ説明する。フローセルデバイス101の構造は、２次元アレイチップ115が半導体プロセスで作製されている点でのみ異なっている。２次元アレイチップ115の具体的な構造は、図１０に示す通りである。図１０(a)は、２次元アレイチップ115の面に対して垂直に切断した断面図である。図１０(b)は、図１０(a)のA-A'断面を上面側から見た断面図であり、図１０(c)は、図１０(a)のB-B'断面を上面側から見た断面図である。
　本実施例の場合、核酸捕捉部104を構成する細孔アレーシートは、厚さ5μmのSiO2膜1002中に直径0.3μmの貫通孔1001を0.5μmピッチで形成した。また、本実施例では、核酸捕捉部104となる貫通孔1001の内壁面にシランカップリング剤を用いて第１のDNAプローブ301を固定している。なお、細胞捕捉部103を構成するテーパー状の凹部の直径（最上部）は10μmである。細胞捕捉部103は、厚さ10μmのポリイミド樹脂膜1003にリソグラフィを用いて開口部を形成することによって作製した。
　次に、第１のDNAプローブ301の核酸捕捉部104への固定方法について説明する。核酸捕捉部104となる貫通孔1001の内壁面をシラン処理するために、0.3mg/mlのシラン化プリング剤GTMSi（GTMSi：3-Glycidoxypropyltrimethoxysilane信越化学）、及び、酸触媒である0.02%酢酸を含む水溶液を反応デバイス中に導入し、2時間反応させる。反応デバイス内容積の100倍量のエタノールを反応デバイス内に導入することによってデバイス内部を洗浄した後、溶液を全て排出し、更に、110℃で2時間熱反応させる。
　次に、1μMストレプトアビジン溶液を反応デバイスに導入し、６時間室温にて反応させ、ストレプトアビジンを反応デバイスの領域に固定する。続いて、未反応グリシド基をブロックし、過剰なDNAプローブを除去するために、デバイス内容積の10倍量の10ｍMのグリシンと、0.01％SDSと、0.15MのNaClを含むホウ酸バッファ(pH 8.5)とを5分かけて導入しながら排出し、更に、内容積の10倍量の60℃に加熱された0.01%のSDSと、0.3M NaClを含む30mMクエン酸ナトリウムバッファ（2xSSC, pH 7.0）を導入しながら排出する。最後に、内容積の100倍量の0.1%Tween 20を含む10mTrisを導入しながら排出して洗浄を完了する。
　さらに、内容積と等量の10μMの5'末端をビオチン修飾した第１のDNAプローブ301と１MのNaCl及び0.1%のTween20を含む10mMのTrisHCl溶液を反応デバイスに導入し、30分反応させた後、再度、前記10倍量の60℃に過熱された2×SSCバッファを導入又は排出した後、100倍量の0.1%Tween 20を含むTris HClバッファを反応デバイスに導入しながら排出することで洗浄し、固定化反応を完了した。
　なお、反応プロセスは実施例１の第の調整方法２と同じである。
　［実施例３］
　前述の実施例１及び２では、上面側に共通供給流路105（上部共通インレット107及び上部共通アウトレット108が対応）と個別の流体流路（個別インレット111、112、113、114が対応）が形成され、下面側に共通吸引流路109（下部共通アウトレット110が対応）が形成されているフローセルデバイス101を使用した。
　本実施例では、図１３及び図１４に示すように、フローセルデバイス101（図１）の上面側から、上部共通インレット107、共通供給流路105、上部共通アウトレット108を除去した構造のフローセルデバイス101を使用する。特に、図１４に示すフローセルデバイス101は、２次元アレイチップ115の上部が開口となっており、直接、２次元アレイチップ115の上面に細胞溶液を滴下したり、顕微鏡観察したりできる構成となっている。その他の構成は、図１の場合と同じである。本実施例に係るフローセルデバイス101は、実施例１及び２のフローセルデバイス101に比して構造が単純で済む。
　図１５に、本実施例で使用する単一細胞解析装置の構成例を示す。図８に示す実施例１及び２の単一細胞解析装置との違いは、本実施例に係る細胞導入制御装置では、酵素試薬やDNAプローブを導入する試薬導入制御装置1312に代えて、これらの機能を兼ね備える細胞／試薬導入制御装置1317が設けられ、細胞106及び試薬の導入が４つの個別インレット111～114を通じて実現される点である。本実施例の場合、４つの反応室102に同じ溶液を導入する場合、４つの個別インレット111～114に同じ溶液を導入し、各反応室102に個別の溶液を導入する場合、４つの個別インレット111～114にそれぞれ対応する溶液を導入する。
　実施例１及び２において上部共通インレット107から導入した試薬等は、本実施例の場合、個別インレット111～114を通じて導入する。なお、本実施例において導入する試薬等の組成や分量は、実施例１及び２と同じである。また、実施例１及び２においては、上部試薬排出装置1314で反応室102を溶液で満たしてから、下部試薬排出装置1315を用いて２次元アレイチップ115中に試薬を導入していたが、本実施例では、２次元アレイチップ115の上部の反応室102を試薬で満たすか、２次元アレイチップ115の上面を液で覆うだけの分量の試薬を個別インレット111～114から導入し、その後、下部試薬排出装置1315を用いて共通吸引流路109を負圧に制御することで、２次元アレイチップ115中に試薬を導入することができる。
　また、本実施例の場合、反応室102を相互に分離する必要がないため、ミネラルオイル等の導入と洗浄の工程の実行するための制御プログラムは不要となる。その他の装置の動作は基本的に実施例１と同じである。
　［実施例４］
　２次元アレイチップ115を用いた遺伝子発現解析では、フローセルデバイス101（細孔アレーシートを含む）などの平面型デバイス上における細胞の捕捉位置と、遺伝子発現解析結果とを対応させることができる。例えば遺伝子発現解析のために細胞106を破砕して詳細な遺伝子発現解析を行う前に、細胞106が生きた状態での形状の取得、蛍光染色による遺伝子や蛋白質の定量、又はラマンイメージングの取得を実行し、これらのデータと遺伝子発現解析データとを対応させることができる。本実施例では、この機能を実現するためのシステム構成について説明する。
　図１６に、単一細胞解析装置（図８）と光学顕微鏡を組み合わせた構成を示す。図１６は、フローセルデバイス101の２次元アレイチップ115上に細胞106が捕捉された状況を示している。フローシステム1201は、単一細胞解析装置（図８）に相当し、前述の実施例と同様、フローセルデバイス101中で細胞106から核酸（mRNA）206の抽出とその増幅とを実行する。フローシステム1201の上方位置には、光学顕微鏡1203が配置されている。矢印1211は、増幅産物の移動を示している。フローセルデバイス101で調製された増幅サンプルとしてのシーケンシングライブラリに基づいて、次世代（大規模）DNAシーケンサ1205は細胞106の配列を決定する。
　本実施例の場合、配列の決定に先立って、フローセルデバイス101上での位置が特定された細胞106の観察を光学顕微鏡1203により実行する。図中に細線で示す矢印は、情報の移動方向を示している。光学顕微鏡1203には、位相差顕微鏡、微分干渉顕微鏡、蛍光顕微鏡、レーザ―走査共焦点蛍光顕微鏡、ラマン顕微鏡、非線形ラマン顕微鏡（CARS顕微鏡、SRS顕微鏡,RIKE顕微鏡）、ＩＲ顕微鏡等が含まれる。これらの光学顕微鏡1203によって得られる情報は、遺伝子情報に関する限り情報が少ない。
　しかし、光学顕微鏡1203は、基本的に、細胞106が生きた状態で計測することができる。すなわち、細胞106の経時変化、例えば刺激に対する細胞の応答をリアルタイムに計測することができる。フローセルデバイス101上での位置情報を保存したデバイスを利用することによって、遺伝子発現に関する詳細情報と光学顕微鏡による時間変化を含む情報とを対応させることができる。
　この対応付けの実現のため、本実施例では、次世代（大規模）DNAシーケンサ1205からの配列情報1212と、光学顕微鏡像1203から情報1213と、タグ配列を対応付けた位置情報1214とを統合する情報統合システム1206を設けている。細胞106の計測情報を統合する情報統合システム1206の最小構成は、次世代（大規模）DNAシーケンサ1205以外のシステム1207であり、次世代（大規模）DNAシーケンサ1205との間で情報の入力とサンプル（核酸増幅産物）の出力を行う機能を有している。
　次に、フローシステム1201について説明する。図１６では、フローセルデバイス101を構成する細孔アレーシート上に細胞106が捕捉された状態を示している。計測したい蛋白質（例えばp53）にGFPを発現させるか免疫染色により、細胞106中の特定の蛋白質には蛍光体が導入されている。個々の細胞106についての発現蛋白量のデータは、細胞106を破砕した後、細孔アレーシート上でサンプル処理し、DNAシーケンシングして定量することで得られる遺伝子発現量と相関を取ることができる。この際、細胞106を認識するために、DAPIによって核酸を染色し、細胞核を認識することによって、細胞位置を蛍光顕微鏡によって識別している。
　蛋白質は、GFPの発現で計測しているため経時変化を追うことができるが、同時に計測可能な蛋白質の種類は数種類程度である。一方、シーケンシングによる遺伝子発現解析は一度に100種類程度は可能であり、プローブを用意すれば1000種類程度の解析も可能である。それゆえ、細胞内の詳細な遺伝子発現制御に関する情報が個々の細胞毎に得られる。しかし、遺伝子発現解析では経時変化を捉えることができない。しかし、両者を組み合わせることによって、どのような蛋白質の発現のときに、どのような遺伝子発現があるかというデータが事前に得られていれば、蛋白質の発現データのみから遺伝子制御に関する情報を推定することが可能となる。この蛍光顕微鏡データと遺伝子発現データとの対応付けと遺伝子制御に関する情報の推定を情報統合システム1206で実行する。
　次に、光学顕微鏡1203が蛍光顕微鏡である場合について説明する。蛍光顕微鏡は、光源1300、励起フィルタ1301、ダイクロイックミラー1302、エミッションフィルタ1303を有する。光源1300には、例えば水銀ランプを使用する。励起フィルタ1301により励起波長が決まる。エミッションフィルタ1303により受光波長が選択される。
　細胞106に導入された複数種類の蛍光体を同時に計測する場合、制御コンピュータ1308は、制御信号1304によって、励起フィルタ1301、ダイクロイックミラー1302、エミッションフィルタ1303を選択し、特定の蛍光体からの光のみを計測する。細胞106の蛍光イメージは、対物レンズ1305、結像レンズ1306、CCDカメラ1307によって取得する。前記制御コンピュータ1308は、これらを制御し、画像データを取得する。
　また、制御コンピュータ1308は、ＸＹステージ1310を制御し、顕微鏡像を移動させる。このとき、制御コンピュータ1308は、細孔アレーシート上の位置座標と、細胞認識タグの配列データと、ＸＹステージの位置座標から計算される顕微鏡像上の位置座標とを対応付けることができる。
　最終的に得られた核酸増幅産物は、次世代（大規模）DNAシーケンサ1205において配列解析される。このとき、シーケンシングのためのemPCRやブリッジアンプは、このシステムの中で実行される。制御コンピュータ1308上で照合された画像の位置情報と細胞認識タグ配列情報は情報統合システム1206に送信され、蛍光イメージから得られる蛋白量と遺伝子発現量との対応付けを行う。さらに、同じシステムにおいて、遺伝子発現解析データの経時変化を推定する。これにより、遺伝子発現ネットワークのダイナミクスを計測することが可能となる。
　また、この蛍光顕微鏡は、細胞内の計測のみならず、捕捉サイトカイン等の細胞から分泌される物質を抗体によって免疫蛍光染色してその量を計測するために用いてもよい。もちろん、同様にして、破砕後の遺伝子発現量の解析に用いても良い。蛍光顕微鏡の代わりに微分干渉顕微鏡やラマン顕微鏡を組み合わせることも同様に行うことができる。
　［他の実施例］
　本発明は、上述した実施例に限定されるものでなく、様々な変形例を含んでいる。例えば、上述した実施例は、本発明を分かりやすく説明するために詳細に説明したものであり、必ずしも説明した全ての構成を備える必要はない。また、ある実施例の一部を他の実施例の構成に置き換えることができる。また、ある実施例の構成に他の実施例の構成を加えることもできる。また、各実施例の構成の一部について、他の実施例の構成の一部を追加、削除又は置換することもできる。
　また、上述した各構成、機能、処理部、処理手段等は、それらの一部又は全部を、例えば集積回路で設計する等によりハードウェアで実現しても良い。また、上記の各構成、機能等は、プロセッサがそれぞれの機能を実現するプログラムを解釈し、実行することにより（すなわちソフトウェア的に）実現しても良い。各機能を実現するプログラム、テーブル、ファイル等の情報は、メモリ、ハードディスク、SSD（Solid State Drive）等の記憶装置、又は、ICカード、SDカード、DVD等の記憶媒体に格納することができる。また、制御線や情報線は、説明上必要と考えられるものを示すものであり、製品上必要な全ての制御線や情報線を表すものでない。実際にはほとんど全ての構成が相互に接続されていると考えて良い。
　101  フローセルデバイス
　102  反応室
　103  細胞捕捉部
　104  核酸捕捉部
　105  共通供給流路
　106  細胞
　107  上部共通インレット
　108  上部共通アウトレット
　109  共通吸引流路
　110  下部共通アウトレット
　111、112、113、114  個別インレット
　115  ２次元アレイチップ
　116  領域
　201  第１のDNAプローブ
　202  捕捉配列
　203  細胞識別配列
　204  共通配列
　206  核酸(mRNA)
　207  1st cDNA鎖
　208  第２のDNAプローブ
　209  共通プライマー
　210  チップ識別配列
　211  遺伝子特異的プローブ
　212  2nd cDNA
　213、214  共通プライマー
　215  PCR産物
　301  第１のDNAプローブ
　302  共通接続配列
　303  第２のDNAプローブ
　304  2nd cDNA鎖
　305  第３のDNAプローブ
　306   PCR共通プライマー
　307  第２のチップ識別配列
　308  相補配列
　309  PCR増幅産物
　501  下部流路
　502  細孔アレーシート
　503  チップ
　601  磁気ビーズ
　1001　貫通孔
　1002　SiO2膜
　1201　フローシステム
　1203　光学顕微鏡
　1205　次世代（大規模）DNAシーケンサ
　1206　情報統合システム
　1207　DNAシーケンサ1205以外のシステム
　1212　配列情報
　1213　情報
　1214　位置情報
　1300　光源
　1301　励起フィルタ
　1302　ダイクロイックミラー
　1303　エミッションフィルタ
　1304　制御信号
　1305　対物レンズ
　1306　結像レンズ
　1307　CCDカメラ
　1308　制御コンピュータ
　1309　制御コンピュータ
　1311　細胞導入制御装置
　1312　試薬導入制御装置
　1313　ステージ制御系
　1314　上部試薬排出装置
　1315　下部試薬排出装置
　1316　温度制御系
　1317　細胞／試薬導入制御装置

Claims (15)

  1. 　それぞれが、流路を通じて接続された少なくとも１つの細胞捕捉部と少なくとも１つの核酸捕捉部とを有する、複数の反応室と、
    　第１の面側において、前記複数の反応室に対して共通に接続される第１の液体流路と、
    　前記第１の面側において、前記複数の反応室に対して一対一に接続される複数の第２の液体流路と、
    　前記第１の面と対向する第２の面側において、前記複数の反応室に対して共通に接続される第３の液体流路と
    　を有する単一細胞解析用フローセルデバイス。
  2. 　請求項１に記載の単一細胞解析用フローセルデバイスにおいて、
    　前記細胞捕捉部と前記核酸捕捉部は一対一に対応付けられている
    　ことを特徴とする単一細胞解析用フローセルデバイス。
  3. 　請求項１に記載の単一細胞解析用フローセルデバイスにおいて、
    　前記細胞捕捉部は前記第１の面側に配置され、前記核酸捕捉部は前記第２の面側に配置される
    　ことを特徴とする単一細胞解析用フローセルデバイス。
  4. 　請求項１に記載の単一細胞解析用フローセルデバイスにおいて、
    　前記核酸捕捉部は、多孔質構造又は多数のビーズをパックした構造である
    　ことを特徴とする単一細胞解析用フローセルデバイス。
  5. 　請求項１に記載の単一細胞解析用フローセルデバイスにおいて、
    　前記核酸捕捉部のDNAプローブには、前記核酸捕捉部の配置位置を識別するための配列と、核酸を捕捉するための捕捉配列とが含まれる
    　ことを特徴とする単一細胞解析用フローセルデバイス。
  6. 　請求項１に記載の単一細胞解析用フローセルデバイスにおいて、
    　前記複数の反応室の内壁はいずれも親水処理されており、前記複数の反応室を接続する前記第１の液体流路の内壁面は疎水処理されている
    　ことを特徴とする単一細胞解析用フローセルデバイス。
  7. 　それぞれが、流路を通じて接続された少なくとも１つの細胞捕捉部と少なくとも１つの核酸捕捉部とを有する、複数の反応室と、
    　第１の面側において、前記複数の反応室に対して一対一に接続される複数の第１の液体流路と、
    　前記第１の面と対向する第２の面側において、前記複数の反応室に対して共通に接続される第２の液体流路と
    　を有する単一細胞解析用フローセルデバイス。
  8. 　請求項７に記載の単一細胞解析用フローセルデバイスにおいて、
    　前記細胞捕捉部と前記核酸捕捉部は一対一に対応付けられている
    　ことを特徴とする単一細胞解析用フローセルデバイス。
  9. 　請求項７に記載の単一細胞解析用フローセルデバイスにおいて、
    　前記細胞捕捉部は前記第１の面側に配置され、前記核酸捕捉部は前記第２の面側に配置される
    　ことを特徴とする単一細胞解析用フローセルデバイス。
  10. 　請求項７に記載の単一細胞解析用フローセルデバイスにおいて、
    　前記核酸捕捉部は、多孔質構造又は多数のビーズをパックした構造である
    　ことを特徴とする単一細胞解析用フローセルデバイス。
  11. 　請求項７に記載の単一細胞解析用フローセルデバイスにおいて、
    　前記核酸捕捉部のDNAプローブには、前記核酸捕捉部の配置位置を識別するための配列と、核酸を捕捉するための捕捉配列とが含まれる
    　ことを特徴とする単一細胞解析用フローセルデバイス。
  12. 　請求項７に記載の単一細胞解析用フローセルデバイスにおいて、
    　前記第１の液体流路は、前記細胞捕捉部を外部に露出させる前記反応室の開口として形成される
    　ことを特徴とする単一細胞解析用フローセルデバイス。
  13. 　それぞれが、流路を通じて接続された少なくとも１つの細胞捕捉部と少なくとも１つの核酸捕捉部とを有する複数の反応室と、第１の面側において、前記複数の反応室に対して一対一に接続される複数の第１の液体流路と、前記第１の面と対向する第２の面側において、前記複数の反応室に対して共通に接続される第２の液体流路とを有する単一細胞解析用フローセルデバイスが載置されるステージと、
    　前記ステージの位置を制御するステージ制御系と、
    　前記複数の第１の流体流路に対する第１の液体の導入を個別に制御する導入制御装置と、
    　前記第２の流体流路からの第２の液体の排出を制御する排出制御装置と
    　を有する単一細胞解析装置。
  14. 　請求項１３に記載の単一細胞解析装置において、
    　前記単一細胞解析用フローセルデバイスが有する、前記第１の面側において、前記複数の反応室に対して共通に接続される第３の液体流路に対して第３の液体を導入する第２の導入制御装置と、
    　前記第３の液体を前記第３の液体流路から排出する第２の排出制御装置と
    　を更に有することを特徴とする単一細胞解析装置。
  15. 　請求項１３に記載の単一細胞解析装置において、
    　前記単一細胞解析用フローセルデバイスを観察し、観察領域から取得された情報を前記ステージ制御系より取得した位置情報に対応付ける光学顕微鏡と、
    　前記単一細胞解析用フローセルデバイスの前記核酸捕捉部毎に得られた核酸増幅産物の配列を解析し、解析結果を前記ステージ制御系より取得した位置情報に対応付けるDNAシーケンサと、
    　前記光学顕微鏡が観察領域から取得した前記情報と、前記DNAシーケンサが取得した前記核酸捕捉部毎の解析結果とを統合する情報統合システムと
    　を更に有することを特徴とする単一細胞解析装置。
PCT/JP2015/052965 2015-02-03 2015-02-03 単一細胞解析用フローセルデバイス及び単一細胞解析装置 Ceased WO2016125251A1 (ja)

Priority Applications (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PCT/JP2015/052965 WO2016125251A1 (ja) 2015-02-03 2015-02-03 単一細胞解析用フローセルデバイス及び単一細胞解析装置
US15/544,888 US10646869B2 (en) 2015-02-03 2015-02-03 Flow cell device for single cell analysis, and single cell analysis device
JP2016572977A JP6307179B2 (ja) 2015-02-03 2015-02-03 単一細胞解析用フローセルデバイス及び単一細胞解析装置

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PCT/JP2015/052965 WO2016125251A1 (ja) 2015-02-03 2015-02-03 単一細胞解析用フローセルデバイス及び単一細胞解析装置

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2016125251A1 true WO2016125251A1 (ja) 2016-08-11

Family

ID=56563616

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP2015/052965 Ceased WO2016125251A1 (ja) 2015-02-03 2015-02-03 単一細胞解析用フローセルデバイス及び単一細胞解析装置

Country Status (3)

Country Link
US (1) US10646869B2 (ja)
JP (1) JP6307179B2 (ja)
WO (1) WO2016125251A1 (ja)

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2018042725A1 (ja) * 2016-09-05 2018-03-08 株式会社日立製作所 単一細胞解析用システム
JP2019037160A (ja) * 2017-08-24 2019-03-14 国立大学法人北陸先端科学技術大学院大学 細胞内容物の回収機構および回収方法
CN109841266A (zh) * 2018-12-29 2019-06-04 河海大学 一种高吸水树脂内养护补偿收缩水泥基材料早龄期孔径分布模型构建方法及应用
JPWO2021181467A1 (ja) * 2020-03-09 2021-09-16
EP3766955A4 (en) * 2018-03-13 2022-01-05 Wuhan Edebio Technology LLC NUCLEIC ACID EXTRACTION SYSTEM
WO2023243152A1 (ja) 2022-06-16 2023-12-21 株式会社日立製作所 単一細胞解析用容器及びそれを用いた単一細胞解析方法
JP2023184046A (ja) * 2022-06-17 2023-12-28 株式会社日立製作所 セルソータ用細胞懸濁液を改良した高感度な単一細胞解析方法

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2017094101A1 (ja) * 2015-12-01 2017-06-08 株式会社日立ハイテクノロジーズ 細胞解析デバイス、装置およびそれを用いた細胞解析方法
EP3467563A1 (de) * 2017-10-06 2019-04-10 Siemens Healthcare GmbH Mikroskopiervorrichtung
WO2021056651A1 (zh) * 2019-09-25 2021-04-01 中国科学院苏州生物医学工程技术研究所 超高通量单细胞核酸分子实时荧光定量分析方法、芯片和系统
CN117019248B (zh) * 2023-08-17 2025-05-02 杭州跃真生物科技有限公司 一种微孔芯片与单细胞分析方法

Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2008261832A (ja) * 2007-01-12 2008-10-30 Nsk Ltd 流路形成装置及び流路基板
JP2009534653A (ja) * 2006-04-18 2009-09-24 アドバンスド・リキッド・ロジック・インコーポレイテッド 液滴に基づく生化学
JP2010142233A (ja) * 2003-01-29 2010-07-01 ４５４ コーポレーション 核酸を増幅および配列決定する方法
WO2012020711A1 (ja) * 2010-08-09 2012-02-16 国立大学法人東京大学 電気的機能を持つマイクロチャンバーアレイ装置およびそれを用いた検査対象物解析方法
JP2013533469A (ja) * 2010-05-25 2013-08-22 アリックス インク 免疫診断における生物学的および化学的分析および用途における粒子の位置的自由度の検出のための方法および装置
JP2013539978A (ja) * 2010-10-04 2013-10-31 ジナプシス インコーポレイテッド 自動化された再使用可能な並行生物反応のための系および方法
WO2014141386A1 (ja) * 2013-03-12 2014-09-18 株式会社日立製作所 遺伝子定量・配列解析用２次元セルアレイデバイスおよび装置

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CA2155186A1 (en) * 1993-02-01 1994-08-18 Kevin M. Ulmer Methods and apparatus for dna sequencing
GB0508983D0 (en) * 2005-05-03 2005-06-08 Oxford Gene Tech Ip Ltd Cell analyser
JP5267923B2 (ja) 2008-08-29 2013-08-21 国立大学法人北陸先端科学技術大学院大学 細胞捕捉装置及び細胞捕捉方法
US20120071358A1 (en) * 2008-12-04 2012-03-22 Xiaochuan Zhou Fluidic devices and methods for multiplex chemical and biochemical reactions
CH700127A1 (de) * 2008-12-17 2010-06-30 Tecan Trading Ag System und Vorrichtung zur Aufarbeitung biologischer Proben und zur Manipulation von Flüssigkeiten mit biologischen Proben.
WO2011068088A1 (ja) * 2009-12-04 2011-06-09 株式会社日立製作所 ２次元cDNAライブラリを用いた遺伝子発現解析方法
JP2013058138A (ja) 2011-09-09 2013-03-28 Sony Corp 画像処理装置及び方法、並びにプログラム
CN110079585A (zh) 2012-07-30 2019-08-02 株式会社日立制作所 基因表达解析方法、基因表达解析用设备及基因表达解析装置

Patent Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2010142233A (ja) * 2003-01-29 2010-07-01 ４５４ コーポレーション 核酸を増幅および配列決定する方法
JP2009534653A (ja) * 2006-04-18 2009-09-24 アドバンスド・リキッド・ロジック・インコーポレイテッド 液滴に基づく生化学
JP2008261832A (ja) * 2007-01-12 2008-10-30 Nsk Ltd 流路形成装置及び流路基板
JP2013533469A (ja) * 2010-05-25 2013-08-22 アリックス インク 免疫診断における生物学的および化学的分析および用途における粒子の位置的自由度の検出のための方法および装置
WO2012020711A1 (ja) * 2010-08-09 2012-02-16 国立大学法人東京大学 電気的機能を持つマイクロチャンバーアレイ装置およびそれを用いた検査対象物解析方法
JP2013539978A (ja) * 2010-10-04 2013-10-31 ジナプシス インコーポレイテッド 自動化された再使用可能な並行生物反応のための系および方法
WO2014141386A1 (ja) * 2013-03-12 2014-09-18 株式会社日立製作所 遺伝子定量・配列解析用２次元セルアレイデバイスおよび装置

Cited By (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2018038285A (ja) * 2016-09-05 2018-03-15 株式会社日立製作所 単一細胞解析用システム
WO2018042725A1 (ja) * 2016-09-05 2018-03-08 株式会社日立製作所 単一細胞解析用システム
JP2019037160A (ja) * 2017-08-24 2019-03-14 国立大学法人北陸先端科学技術大学院大学 細胞内容物の回収機構および回収方法
JP7078949B2 (ja) 2017-08-24 2022-06-01 国立大学法人北陸先端科学技術大学院大学 細胞内容物の回収機構および回収方法
EP3766955A4 (en) * 2018-03-13 2022-01-05 Wuhan Edebio Technology LLC NUCLEIC ACID EXTRACTION SYSTEM
US11679382B2 (en) 2018-03-13 2023-06-20 Wuhan Edebio Technology Llc. Nucleic acid extraction system
CN109841266A (zh) * 2018-12-29 2019-06-04 河海大学 一种高吸水树脂内养护补偿收缩水泥基材料早龄期孔径分布模型构建方法及应用
CN109841266B (zh) * 2018-12-29 2021-03-16 河海大学 高吸水树脂内养护水泥浆体早期孔径模型构建方法及应用
WO2021181467A1 (ja) * 2020-03-09 2021-09-16 株式会社日立ハイテク 微粒子充填方法及び微粒子充填装置
JPWO2021181467A1 (ja) * 2020-03-09 2021-09-16
JP7312313B2 (ja) 2020-03-09 2023-07-20 株式会社日立ハイテク 微粒子充填方法及び微粒子充填装置
WO2023243152A1 (ja) 2022-06-16 2023-12-21 株式会社日立製作所 単一細胞解析用容器及びそれを用いた単一細胞解析方法
JP2023184046A (ja) * 2022-06-17 2023-12-28 株式会社日立製作所 セルソータ用細胞懸濁液を改良した高感度な単一細胞解析方法

Also Published As

Publication number Publication date
JP6307179B2 (ja) 2018-04-04
US10646869B2 (en) 2020-05-12
JPWO2016125251A1 (ja) 2017-06-29
US20180304262A1 (en) 2018-10-25

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP6307179B2 (ja) 単一細胞解析用フローセルデバイス及び単一細胞解析装置
US11680286B2 (en) Tag-sequence-attached two-dimensional cDNA library device, and gene expression analysis method and gene expression analysis apparatus each utilizing same
JP6093436B2 (ja) 遺伝子定量・配列解析用２次元セルアレイデバイスおよび装置
CN114787348B (zh) 用于空间组学测序的确定性条形码
JP6312710B2 (ja) 生体分子解析装置
CN113773958B (zh) 细胞分析器件及使用了该细胞分析器件的细胞分析方法
JP6552720B2 (ja) 一細胞由来生体分子捕捉用システム
JPWO2017056274A1 (ja) 細胞解析装置およびそれを用いた細胞解析方法
JP6244439B2 (ja) 遺伝子定量・配列解析用２次元セルアレイデバイスおよび装置
US11299727B2 (en) System for analyzing single cell
WO2016001963A1 (ja) 核酸解析用アレイデバイス、核酸解析装置及び核酸解析方法
JP6827847B2 (ja) 洗浄機能付き単一細胞解析装置

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 15881068

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2016572977

Country of ref document: JP

Kind code of ref document: A

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 15544888

Country of ref document: US

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

122 Ep: pct application non-entry in european phase

Ref document number: 15881068

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1