WO2016084850A1 - 造血幹細胞を減少させる組成物およびその製造方法 - Google Patents

造血幹細胞を減少させる組成物およびその製造方法 Download PDF

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山崎　聡
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Definitions

  • the present invention relates to a composition and medium for reducing hematopoietic stem cells, and a method for producing the same.
  • hematopoietic stem cell transplantation attempts have been made to treat blood cell diseases by hematopoietic stem cell transplantation.
  • a treatment for removing the hematopoietic stem cells of the patient is required.
  • the treatment for removing hematopoietic stem cells include irradiation and chemotherapy for the patient, but these treatments have strong side effects and cause a great burden on the patient. This is particularly true when the patient undergoing hematopoietic cell transplantation is an elderly person or a child.
  • methods for removing useful hematopoietic stem cells other than irradiation and chemotherapy are not known.
  • Non-patent Document 1 It is known that severe granulocytopenia and anemia develop in mice bred with food that does not contain protein (Non-patent Document 1). Abnormalities in these blood cells were recovered by 18% casein and folic acid (Non-patent Document 1).
  • the present invention provides a technique that is an alternative to radiation irradiation when reducing or removing hematopoietic stem cells in an animal (particularly human) body.
  • hematopoietic stem cells can be reduced in an animal body if the animal is maintained without valine as described in the following examples.
  • the phenomenon in which hematopoietic stem cells decrease was a phenomenon characteristic of hematopoietic stem cells as far as observed.
  • the present inventors transplanted a hematopoietic stem cell transplant into an animal that has been depleted of hematopoietic stem cells by maintaining without valine (referred to as “recipient animal”). Found to wear. Further, when the hematopoietic stem cells in the recipient animal were examined in detail, the contribution of the recipient animal-derived cells to the hematopoietic system was not confirmed, and the hematopoietic stem cells were replaced with transplanted hematopoietic stem cells. From this, it was found that the method of the present invention can be applied to the treatment of a recipient before hematopoietic stem cell transplantation.
  • the present invention has been made based on such knowledge.
  • a parenteral or enteral nutrient substantially free of valine (2) A composition for use in reducing hematopoietic stem cells, comprising the nutrient according to (1) above and substantially free of valine. (3) A composition for use in reducing hematopoietic stem cells, which has a composition as a parenteral nutrition or enteral nutrition except valine, and is substantially free of valine. . (4) The composition according to (2) or (3) above, wherein the administration subject is a recipient before hematopoietic stem cell transplantation. (5) Intravenous or enteral nutrients are designed to provide sufficient nutrients for life support for at least 3 weeks by continuous administration, except that they are substantially free of valine.
  • composition according to any one of (2) to (6) above, for intravenous administration. (8) a cell culture medium, A medium characterized by being substantially free of valine or cysteine or both.
  • a method for detecting a decrease in hematopoietic stem cells in a subject (A) measuring the number of hematopoietic stem cells in a bone marrow fluid or peripheral blood sample obtained from a recipient prior to treatment; (B) measuring the number of hematopoietic stem cells in a bone marrow fluid or peripheral blood sample obtained from a recipient during or after treatment; (C) comparing the number of cells determined in step (a) with the number of cells obtained in step (b); The treatment is substantially not giving the recipient valine for a period of time, Method. (10) The method according to (9) above, wherein the treatment is performed by administration of the nutrient according to (1) or the composition according to any of (2) to (7).
  • hematopoietic stem cells can be reduced by simply culturing hematopoietic stem cells in a medium that does not contain valine or cysteine. It is advantageous in that it has high cell specificity and can target stem cells with high specificity.
  • hematopoietic stem cells can be reduced in a subject (for example, a human) by giving a meal that does not contain valine.
  • the present invention is advantageous in that conventional irradiation is not required or can be reduced.
  • FIG. 1 shows the amino acid content in the cell culture medium.
  • FIG. 2 is a diagram showing the results of seeding 40 cells per well of CD34 ⁇ KSL cells and culturing them in a medium having the composition shown in FIG. 1 for 1 week.
  • FIG. 3A shows the number of cells counted by seeding CD34 ⁇ KSL cells at 40 cells per well and culturing in a medium having the composition shown in FIG. 1 for 1 week.
  • FIG. 3B shows the chimera ratio when cells obtained by seeding CD34 ⁇ KSL cells at 40 cells per well are transplanted into irradiated mice under the condition of competition with normal cells.
  • FIG. 4 is a diagram showing the composition of a normal bait, a baline-free bait, and a cysteine-free bait.
  • FIG. 5 shows the results of examining the content of amino acids in peripheral blood and bone marrow of mice fed with a normal diet or a diet containing no valine (-Val) for 4 weeks, respectively.
  • FIG. 6A shows the total blood count (WBC), red blood cell count (RBC) and platelet count (PLT) in peripheral blood samples obtained from mice fed a normal diet or a diet without valine for 4 weeks.
  • FIG. 6B shows the frequency of CD150 + CD41 ⁇ CD48 ⁇ KSL cells in the bone marrow.
  • FIG. 6C shows the frequency of cells whose cell cycle is in the G0 phase.
  • FIG. 7 shows the prevalence of bone marrow B cells, peripheral blood B cells and lymphoid common progenitor cells in mice fed a normal diet or a diet without valine.
  • FIG. 8 shows the frequency of CD34 ⁇ KSL cells in the bone marrow of mice fed on a normal diet, a diet without valine ( ⁇ Val) or a diet without cysteine ( ⁇ Cys) for 4 weeks.
  • FIG. 9 shows the survival curve of mice bred on diets that did not contain any of the amino acids.
  • FIG. 10 is a tissue section image of a mouse bred for 4 weeks on a normal diet or a diet not containing valine.
  • FIG. 11A is a diagram showing a change in body weight change of a mouse that was given a bait-free diet and then changed to a normal diet.
  • FIGS. 11B and C show that the thymus and spleen are reduced in mice fed with valine-free diet for 4 weeks, respectively, and then size is restored by feeding with normal diet for 4 weeks.
  • FIG. 12 is a diagram showing changes in chimera rates of whole bone marrow obtained from mice fed with a normal diet or a diet not containing valine and transplanted to irradiated mice under competitive conditions.
  • FIG. 13 is a graph showing the survival rate after administration of poly I: C to mice bred on a normal diet or a diet not containing valine (-Val) for 2 weeks.
  • FIG. 14A shows a scheme of hematopoietic stem cell transplantation. In this scheme, recipient mice are not irradiated and are bred for 2 weeks on baline-free food before being transplanted with donor cells.
  • FIG. 14B is a diagram showing the chimera rate of donor cells in recipients after transplantation.
  • FIG. 14C is a diagram showing the success rate of transplantation and the contribution rate of donor cells in the recipient after transplantation for each cell.
  • FIG. 15 is a diagram showing the influence of an amino acid-deficient medium on human hematopoietic stem cells.
  • hematopoietic stem cells can be reduced in an animal body if the animal is maintained without valine as described in the following examples. Therefore, according to the present invention, a method of reducing hematopoietic stem cells in an animal body by maintaining the animal without giving valine, or a composition used in the method is provided.
  • the subject can be nutritionally managed so as not to give valine. This reduces hematopoietic stem cells in the subject's body. Extending the period of nutritional management can remove hematopoietic stem cells from the subject's body substantially completely. Substantially completely removing cells means that the cells are 10% or less, more preferably 5% or less, even more preferably 3% or less, even more preferably 1% or less, even more preferably 0.1% or less, Particularly preferably, it means 0.01% or less, most preferably disappearing completely.
  • the composition for use in reducing hematopoietic stem cells comprises a parenteral nutrition or enteral nutritional product, wherein the parenteral nutrition or enteral nutritional product is substantially free of valine. It is a composition.
  • not containing valine is used interchangeably with “lack of valine”.
  • not containing valine means not containing valine as a peptide. In the present specification, “substantially” means that there may be contamination that cannot be avoided in the manufacturing process.
  • transvenous nutritional preparation means a nutrient used for parenteral nutrition.
  • parenteral nutritional preparations include peripheral parenteral nutritional preparations that administer nutrients into peripheral veins and central parenteral nutritional preparations that administer nutrients into central veins.
  • enteral nutrition is selected as the nutritional method, and enteral nutritional preparations are administered to the subject, but when enteral nutrition is difficult, intravenous administration A nutritional method is selected and a parenteral nutritional product is administered to the subject.
  • Intravenous nutritional preparations include peripheral parenteral nutritional preparations and central parenteral nutritional preparations.
  • Intravenous nutritional preparations are usually infusion preparations, are aqueous solutions containing sugars, electrolytes and amino acids, and may further contain vitamins.
  • Central parenteral nutritional preparations usually contain vitamins and trace elements necessary for living bodies (for example, vitamins for infusions, general vitamins for infusions and trace element preparations for infusions) in addition to sugar, electrolytes and amino acids.
  • Enteral nutritional product means a nutrient used in enteral nutrition.
  • Enteral nutritional products include semi-digested nutrients, digested nutrients, and component nutrients.
  • Semi-digested nutrients include protein as a nitrogen source
  • digested nutrients include low molecular peptides and amino acids as nitrogen sources
  • component nutrients include amino acids as nitrogen sources.
  • an ingredient nutrient can be preferably used as an enteral nutritional preparation.
  • compositions other than valine are the same as the parenteral or enteral nutritional product, It means that the composition other than valine is similar and has a function as a parenteral nutrition preparation or enteral nutrition preparation.
  • “designed as a complete nutritional product except that it is substantially free of valine” has the composition of a nutritional product designed as a complete nutritional product. It means not included. That is, a composition “designed as a complete nutritional formulation, except that it is substantially free of valine” may have the same composition other than valine as a complete nutritional formulation.
  • Intravenous nutrition or enteral nutrition may be selected as a nutritional management method so that the nutritional management of the subject is medically appropriate.
  • the parenteral nutritional preparation or enteral nutritional preparation is commercially available for such proper nutritional management.
  • a preparation that increases energy intake such as a fat emulsion, may be used in combination.
  • Fat emulsions are administered in combination with nutritional preparations for energy supply and prevention of fatty acid deficiency, and generally include emulsions of fatty acids, which can be derived from, for example, soybean oil, and the emulsifier is derived from egg yolk. Of lecithin.
  • hematopoietic stem cells can be decreased in the subject animal body. It can be preferably used to reduce.
  • compositions for use in reducing hematopoietic stem cells of the present invention are preferably 10% or less, more preferably 5% or less, and even more preferably 3% prior to administration. %, Even more preferably 1% or less, most preferably designed to be able to supply enough nutrients for the recipient to survive beyond the period until complete disappearance.
  • the composition may be used in combination with a preparation that increases energy intake, such as a fat emulsion.
  • the composition for use in reducing hematopoietic stem cells of the present invention is preferably 10% or less, more preferably 5% or less, still more preferably 3% or less, more preferably 3% or less before administration of the subject-derived hematopoietic stem cells. More preferably, it can be administered to a subject in order to make it disappear 1% or less, most preferably completely.
  • the composition for use in reducing hematopoietic stem cells of the present invention contains all amino acids other than valine among the 20 types of amino acids. In one embodiment, the composition for use in reducing hematopoietic stem cells of the present invention is substantially free of a peptide comprising valine. In one embodiment, the composition for use in reducing hematopoietic stem cells of the present invention contains all amino acids other than valine among the 20 amino acids, and contains sugar, electrolytes, vitamins and essential trace elements. In addition. In one embodiment, the composition for use in reducing hematopoietic stem cells of the present invention comprises all of the 20 amino acids other than valine, and further comprises a sugar, an electrolyte, a vitamin, and essential trace elements.
  • each component included in the composition for use in reducing hematopoietic stem cells of the present invention can be equivalent to the amount of each component included in a normal parenteral or enteral nutrient.
  • the subject is a mammal, preferably a human.
  • the administration subject of the composition of the present invention is a patient with hematopoietic tumor.
  • the composition of the present invention is, in one aspect, a pharmaceutical composition for treating a hematopoietic tumor in a patient with a hematopoietic tumor.
  • the hematopoietic tumor is a hematopoietic tumor with hematopoietic cancer stem cells.
  • each nutrient comprises a pharmaceutically acceptable ingredient.
  • the administration target of the composition of the present invention is a recipient before hematopoietic stem cell transplantation. Because hematopoietic stem cell transplant recipients have nutritional risks, nutritional management such as parenteral or enteral nutrition is recommended, regardless of the presence or absence of malnutrition. Intravenous nutritional preparations or enteral nutritional preparations used for nutritional management of recipients of hematopoietic stem cell transplantation are also well known. Therefore, the composition for use in reducing hematopoietic stem cells of the present invention can be a normal parenteral nutritional preparation or enteral nutritional preparation used for nutritional management of the recipient before hematopoietic stem cell transplantation (however, The nutritional product must be free of valine). Intravenous nutritional preparations or enteral nutritional preparations used for nutritional management of recipients of hematopoietic stem cell transplantation can be those with increased amounts of energy and protein than those normally used.
  • the energy dose by the above nutrient can be measured by techniques well known to those skilled in the art, for example, indirect calorimetry.
  • Intravenous nutritional preparations or enteral nutritional preparations substantially free of valine can be obtained by mixing amino acid preparations other than valine as amino acids with other constituents of nutrients (such as sugar and electrolytes).
  • composition for use in reducing hematopoietic stem cells of the present invention may be one that is designed to supply nutrients sufficient for life support for at least 3 weeks by continuous administration, preferably, It can be designed to provide sufficient nutrients for life support of 4 weeks or 5 weeks or longer.
  • the composition for use in reducing hematopoietic stem cells of the present invention can be a composition for use in substantially completely removing hematopoietic stem cells from the body of a subject.
  • hematopoietic stem cells in the body of the subject are reduced. Therefore, according to the present invention, there is provided a method for reducing hematopoietic stem cells in a body of a subject, comprising nutritional management (nutrition intake) so as not to substantially give valine to the subject.
  • Nutritional management can be performed by enteral nutrition or parenteral nutrition.
  • Nutritional management may be performed by administering the enteral nutritional preparation or parenteral nutritional preparation to the subject.
  • the subject is a mammal, preferably a human.
  • composition for use in reducing hematopoietic stem cells of the present invention is also a composition for use in inhibiting hematopoietic stem cell division.
  • a method for detecting a decrease in hematopoietic stem cells in a subject comprising: (A) measuring the number of hematopoietic stem cells in a bone marrow fluid or peripheral blood sample obtained from a subject prior to treatment; (B) measuring the number of hematopoietic stem cells in a bone marrow fluid or peripheral blood sample obtained from a subject during or after treatment; (C) comparing the number of cells determined in step (a) with the number of cells obtained in step (b); The treatment is substantially not giving the subject valine for a period of time; A method is provided.
  • the treatment is nutritional therapy by enteral or parenteral nutrition.
  • treatment may be performed by administering to the subject an enteral or parenteral nutrition product as described above.
  • the fixed period is preferably 1 day or more, 2 days or more, 3 days or more, 4 days or more, 5 days or more, 6 days or more, 1 week or more. It should not be longer than 2 weeks, 3 weeks or 4 weeks and so long as the patient dies. In one embodiment of the present invention, the fixed period is about 1 day to 5 weeks, 1 week to 4 weeks, or 2 weeks to 3 weeks.
  • the subject can be a mammal, preferably a human.
  • the subject is a pre-transplant recipient of a hematopoietic stem cell transplant.
  • the subject is a patient with a hematopoietic tumor.
  • a method for producing a composition for use in reducing hematopoietic stem cells comprising mixing nutrients such that the composition is substantially free of valine.
  • the nutrients to be mixed can be sugars, amino acids, vitamins, electrolytes and essential trace elements.
  • the amino acids to be mixed are one or more amino acids or all amino acids selected from essential amino acids such as tryptophan, lysine, methionine, phenylalanine, threonine, leucine, isoleucine and histidine.
  • Compositions administered by parenteral nutrition consist of pharmaceutically acceptable ingredients.
  • Examples of trace elements necessary in the body include iron, zinc, copper, selenium, chromium, cobalt, iodine, manganese, and molybdenum.
  • the doses of essential trace elements are generally as follows. Iron: 20-200 ⁇ g / kg body weight / day Zinc: 40-60 ⁇ g / kg body weight / day Copper: 20-50 ⁇ g / kg body weight / day Selenium: 2-7 ⁇ g / kg body weight / day Chromium: 0.1-0.2 ⁇ g / day kg body weight / day iodine: 1 to 15 ⁇ g / kg body weight / day manganese: 1 to 60 ⁇ g / kg body weight / day molybdenum: 0.1 to 0.5 ⁇ g / kg body weight / day Essential trace elements can be mixed in the composition.
  • a method for transplanting hematopoietic stem cells comprising: As a pretreatment for transplantation, the subject is substantially free of valine (ie, provided with other nutrients) for a certain period of time to maintain the life of the transplant recipient, thereby increasing hematopoietic stem cells in the patient's body.
  • a method is provided that includes reducing.
  • the method of transplanting hematopoietic stem cells of the present invention further includes substantially not giving valine to the subject until the hematopoietic stem cells of the patient are substantially removed, and transplanting the hematopoietic stem cells after the removal. Also good.
  • a method of treating a hematopoietic tumor in a patient in need thereof comprising: Providing a method comprising maintaining a patient's life substantially free of valine (ie, providing other nutrients) to a subject for a period of time, thereby reducing hematopoietic stem cells in the patient's body Is done.
  • the method for treating a hematopoietic tumor of the present invention may be performed before, after or during the treatment with an anticancer agent used for the treatment of a hematopoietic tumor.
  • the method of treating hematopoietic tumors of the present invention further comprises substantially not giving the subject valine until the patient's hematopoietic stem cells are substantially removed and transplanting the hematopoietic stem cells after removal. You may go out.
  • the method for treating a hematopoietic tumor according to the present invention is extremely effective in treating a hematopoietic tumor, particularly in that the amount of cancer stem cells involved in hematopoiesis can be reduced.
  • the present invention relates to the use of a nutrient for producing a pharmaceutical composition for use in reducing hematopoietic stem cells, wherein the nutrient is a nutrient other than valine.
  • the nutrients used can be sugars, amino acids, vitamins, electrolytes and essential trace elements.
  • the amino acids used are one or more amino acids selected from essential amino acids such as tryptophan, lysine, methionine, phenylalanine, threonine, leucine, isoleucine and histidine, or all amino acids selected from the above essential amino acids.
  • the nutrient comprises all amino acids except valine as amino acids.
  • the amino acids used are all amino acids (except valine).
  • the nutrients used are sugars, amino acids, vitamins, electrolytes and essential trace elements, and the amino acids are from essential amino acids such as tryptophan, lysine, methionine, phenylalanine, threonine, leucine, isoleucine and histidine.
  • the nutrients used are sugars, amino acids, vitamins, electrolytes and essential trace elements, and the amino acids are asparagine, aspartic acid, serine, threonine, glutamine, glutamic acid, proline, glycine, methionine, leucine, isoleucine , Tyrosine, phenylalanine, histidine, alanine, lysine, tryptophan and arginine.
  • the nutrients used are sugars, amino acids, vitamins, electrolytes and essential trace elements, and the amino acids are asparagine, aspartic acid, serine, threonine, glutamine, glutamic acid, proline, glycine, methionine, leucine, isoleucine , Tyrosine, phenylalanine, histidine, alanine, lysine, tryptophan, cysteine and arginine.
  • each nutrient used can be appropriately determined by those skilled in the art depending on the administration target.
  • the content of each nutrient used can be equivalent to the content of each nutrient in a parenteral or enteral nutrient.
  • a cell culture medium for use in reducing hematopoietic stem cells is provided.
  • the cell culture medium of the present invention is characterized by being substantially free of valine and / or cysteine.
  • the cell culture media of the present invention has the same composition as normal cell culture media except that it is substantially free of valine or cysteine or both.
  • a normal cell culture medium is a synthetic medium (fully synthetic medium).
  • the cell culture media of the present invention is a fully synthetic media that is substantially free of valine or cysteine or both.
  • a person skilled in the art can appropriately determine the composition of the completely synthetic medium.
  • the content of each component can be equivalent to that of a generally used synthetic medium.
  • the cell culture medium of the present invention can be used, for example, for removing undifferentiated cells (hematopoietic stem cells) from a differentiated culture obtained by differentiating cells from hematopoietic stem cells.
  • the amino acid contained in the cell culture medium of the present invention is one or more amino acids selected from essential amino acids such as tryptophan, lysine, methionine, phenylalanine, threonine, valine, leucine, isoleucine and histidine, or the above All amino acids selected from the essential amino acids (provided that the nutrients do not contain valine or cysteine or both).
  • essential amino acids such as tryptophan, lysine, methionine, phenylalanine, threonine, valine, leucine, isoleucine and histidine, or the above All amino acids selected from the essential amino acids (provided that the nutrients do not contain valine or cysteine or both).
  • the amino acids contained in the cell culture medium of the present invention are asparagine, aspartic acid, serine, threonine, glutamine, glutamic acid, proline, glycine, methionine, leucine, isoleucine, tyrosine, phenylalanine, histidine, alanine, Lysine, tryptophan and arginine.
  • the amino acids contained in the cell culture medium of the present invention are asparagine, aspartic acid, serine, threonine, glutamine, glutamic acid, proline, glycine, methionine, leucine, isoleucine, tyrosine, phenylalanine, histidine, alanine, Lysine, tryptophan, cysteine and arginine.
  • the amino acids contained in the cell culture medium of the present invention are asparagine, aspartic acid, serine, threonine, glutamine, glutamic acid, proline, glycine, methionine, leucine, isoleucine, tyrosine, phenylalanine, histidine, alanine, Lysine, tryptophan, valine and arginine.
  • the human cell culture medium of the present invention does not contain one or more amino acids selected from the group consisting of alanine, cysteine, histidine, lysine, methionine, glutamine and valine as an amino acid, preferably cysteine Or does not contain valine.
  • Example 1 Effect of amino acid deficiency in cell culture medium A cell culture medium lacking one amino acid out of 20 amino acids was prepared, and the influence of each amino acid deficiency on the proliferation of hematopoietic stem cells was examined.
  • C57BL / 6 (B6-Ly5.2) mice were purchased from Japan SLC, and C57BL / 6 (B6-Ly5.1) and NOD / scid (Ly5.2) mice were purchased from Sankyo Lab Service. did. The University of Tokyo's guidelines for animal experiments and recombinant DNA experiments (the guidance of the University) of Tokyo for animal and recombinant DNA experiments).
  • RPMI1640 medium product number: R8758
  • DMEM / F12 medium product number: D6421
  • Amino acids were added to the medium as shown in FIG. S-clone SF-O3 medium was purchased from Sanko Junyaku Co., Ltd.
  • CD34 ⁇ mouse KSL cells were used as hematopoietic stem cells.
  • CD34 ⁇ mouse KSL cells were collected from the bone marrow of 8-12 week old C57BL / 6 (B6-Ly5.1) mice. Specifically, bone marrow cells were stained with an allophycocyanin (APC) -conjugated anti-c-kit antibody (manufactured by eBioscience), and c-Kit + cells were concentrated with anti-APC magnetic beads (manufactured by Miltenyi Biotech).
  • APC allophycocyanin
  • the obtained cells were stained with fluorescein isothiocyanate (FITC) -conjugated anti-CD34 antibody (manufactured by eBioscience) and phycoerythrin (PE) -conjugated anti-Sca-1 antibody (manufactured by eBioscience), and further with a lineage marker Staining with an anti-Gr-1 antibody, anti-Mac-1 antibody, anti-B220 / CD45R antibody, anti-CD4 antibody, anti-CD8 antibody, anti-CD127 / IL7R ⁇ antibody, and anti-Ter-119 antibody cocktail (manufactured by eBioscience) did. Thereafter, mouse KSL cells of CD34 ⁇ were purified using a cell sorter manufactured by Becton Dickinson (BD).
  • FITC fluorescein isothiocyanate
  • PE phycoerythrin
  • the obtained hematopoietic stem cells were treated with 40 cells per well in a cell culture medium lacking one amino acid as described above (containing 1% bovine serum albumin, 50 ng / mL mouse SCF (manufactured by PeproTech) and 50 ng / mL mouse TPO).
  • the cells were cultured for a week, and the number of cells after the culture was counted. The experiment was repeated three times independently.
  • FIG. 2 shows a photograph of cells cultured for 1 week in the above amino acid deficient medium. According to FIG. 2, no cell mass was observed in the case of valine (-Val) and cysteine (-Cys). The cell count results were as shown in FIG. As shown in FIG. 3A, in the case of valine (-Val) and cysteine (-Cys), the number of cells did not increase.
  • valine (-Val) and cysteine (-Cys) are necessary for the proliferation of hematopoietic stem cells.
  • Example 2 Transplantation of hematopoietic stem cells cultured in an amino acid deficient medium
  • hematopoietic stem cells cultured by the method of Example 1 were administered to irradiated mice to confirm cell engraftment.
  • hematopoietic stem cells cultured in an amino acid deficient medium hematopoietic stem cells obtained by culturing in Example 1 (referred to as donor hematopoietic stem cells) were used. Irradiated mice were obtained by irradiating C57BL / 6 (B6-Ly5.2) mice with a dose of 9.5 Gy. In order to observe cell proliferation under competitive conditions, 1 ⁇ 10 6 bone marrow cells (referred to as competing cells) were obtained from Ly5.1 and Ly5.2 F1 mice.
  • Hematopoietic stem cells cultured in an amino acid deficient medium and bone marrow cells of F1 mice were transplanted into irradiated mice.
  • peripheral blood (PB) was collected 12 weeks after transplantation, and PE / Cy7-conjugated anti-Ly5.1 antibody (manufactured by Tonbo) and FITC-conjugate Donor hematopoietic stem cells and competitor cells were stained with an anti-Ly5.2 antibody (BioLegend).
  • peripheral blood was further clarified with PE-conjugated anti-Mac-1 and anti-Gr-1 antibodies, APC-conjugated anti-CD4 antibodies and anti-cells. Further staining was performed with CD8 antibody and APC-eFluor 780-conjugated anti-B220 / CD45R antibody.
  • the number of donor hematopoietic stem cells and competitor cells was measured using FACS-Canto II (Becton-Dickinson) to determine the chimera rate.
  • the chimera rate was determined by dividing the number of donor hematopoietic stem cells by the sum of the numbers of donor hematopoietic stem cells and competitor cells.
  • Example 3 Analysis of mice fed with a diet not containing any of the amino acids
  • the presence or absence of abnormalities in mice fed with a diet not containing valine or cysteine was analyzed.
  • the bait has a product number and composition as shown in FIG. 4 and was purchased from Research-Diet. First, the content of each amino acid in the peripheral blood and bone marrow of mice bred for 4 weeks on a normal diet or a diet not containing valine was measured.
  • Peripheral blood samples for measurement of amino acid content were obtained by centrifuging blood sampled from the orbit and removing cellular components, and then removing protein components using Amicon Ultra-0.5 mL Centrifugal Filter (Merck Millipore). Obtained.
  • a bone marrow sample for measuring the amino acid content was obtained by eluting the bone marrow with water and then removing the protein using an Amicon® Ultra-0.5 mL mL Centrifugal® Filter. Each amino acid content in these samples was measured using Prominence®Amino®Acid®Analysis®System® (manufactured by Shimadzu).
  • CD150 + CD41 ⁇ CD48 ⁇ KSL cells were obtained as the hematopoietic stem cells by the following method.
  • bone marrow cells were collected from B6 mice fed with a diet containing no valine for 4 weeks. Cells are treated with the above lineage marker cocktail, APC-conjugated anti-c-kit antibody, Pacific blue-conjugated anti-Sca1 antibody, FITC-conjugated anti-CD41 antibody, Alexa Fluor488 conjugated anti-CD48 antibody, and PE-conjugated anti-CD150 antibody and streptavidin. -Stained with APC-eFluor780 antibody.
  • the number of cells was measured by FACS Aria-2 (BD Biosciences) and analyzed using FlowJo Software (Tree Star).
  • CD34 ⁇ KSL hematopoietic stem cells were greatly reduced in mice bred for 4 weeks on a diet not containing valine (FIG. 8).
  • Example 3 Effect of diet containing no amino acid on mice In this example, the survival rate of mice that continued to receive diet containing no amino acids was confirmed.
  • mice were annihilated in about one month in mice bred with a diet not containing isoleucine or a diet not containing tryptophan. Mice reared on a diet without valine had no effect on the survival rate of the mice for at least about 40 days.
  • mice were bred for 1, 2, 3 or 4 weeks on a diet that did not contain valine, then returned to the normal diet, and the changes in the weight of the mice and the size of the spleen and thymus were confirmed. Then, as shown in FIG. 11A, the mice bred with a diet not containing valine did not show an increase in body weight, but the body weight was quickly recovered when reared on a normal diet.
  • Example 4 Effect of diet containing no valine on long-term hematopoiesis
  • the whole bone marrow of a mouse bred with a diet not containing valine and the whole bone marrow of a mouse bred with a normal diet in the body of an irradiated mouse was examined under competitive conditions in which equal amounts of each were transplanted.
  • mice Irradiated mice were obtained by irradiating C57BL / 6 (Ly5.2) mice with a lethal dose of radiation.
  • C57BL / 6 (Ly5.1) mice were bred for 4 weeks on a diet not containing valine to obtain whole bone marrow.
  • B6 (Ly5.1 / Ly5.2) mice were bred on normal diet for 4 weeks to obtain whole bone marrow.
  • Example 5 Effect of baline-free diet on hematopoietic stem cell division
  • the effect of valine deficiency on hematopoietic stem cell division was examined.
  • mice C57BL / 6 mice were bred for 2 weeks on a baline-free diet, and poly I: C was intraperitoneally administered 7 days later. Then, as shown in FIG. 13, the mice reared on a diet not containing valine died 3 days after the administration. Poly I: C is known to induce interferon-1 to force cells to divide. Therefore, this result suggested that valine is necessary for cell division.
  • Example 6 Hematopoietic stem cell transplantation experiment Usually, a hematopoietic stem cell transplant recipient removes hematopoietic stem cells by irradiation and transplants donor-derived hematopoietic stem cells.
  • a hematopoietic stem cell in the recipient's body was reduced by feeding a baline-free feed, and then the donor-derived hematopoietic stem cell was transplanted to confirm the engraftment of the donor-derived hematopoietic stem cell.
  • a NOD / SCID mouse (Ly5.1) as a recipient was fasted for 2 days, and then reared for 2 weeks on a normal diet or a diet not containing valine.
  • 5 ⁇ 10 3 KSL cells derived from B6 mice (Ly5.2) as donors were transplanted into the recipients, then reared on normal diet, and the chimerism rate of hematopoietic stem cells was monitored for 3 months .
  • hematopoietic stem cell transplantation it is a conventional method to remove the recipient-derived hematopoietic stem cells by irradiation and then transplant the donor-derived hematopoietic stem cells. It was found that donor-derived transplanted hematopoietic stem cells can be engrafted only by breeding.
  • Example 7 Human hematopoietic stem cells valine deficiency on impact cord blood from CD34 + CD38 - Lin - were obtained by a conventional method of hematopoietic stem cells.
  • the obtained human hematopoietic stem cells are cultured for 10 days in a medium not containing any of the amino acids (including SCF, TPO, Flt3L, IL-3 and IL-6), and assayed in a conventional manner using methylcellulose medium. did.
  • Human hematopoietic stem cells could not form colonies when cultured in a medium not containing valine. Human hematopoietic stem cells could not form colonies even when cultured in a medium not containing cysteine, histidine, lysine, methionine or glutamine.

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Abstract

課題：本発明は、動物（特にヒト）体内の造血幹細胞を低減または除去する際に、放射線照射の代替となる手法を提供する。 解決手段：バリンを実質的に含まない、経静脈栄養剤または経腸栄養剤。

Description

造血幹細胞を減少させる組成物およびその製造方法
　本発明は、造血幹細胞を減少させる組成物および培地並びにその製造方法に関する。
　近年、血液細胞の疾患を造血幹細胞移植によって治療する試みが盛んになされている。造血幹細胞移植に際しては、患者の造血幹細胞を除去する処置が必要とされる。造血幹細胞を除去する処置としては、患者に対する放射線照射や化学療法が挙げられるが、これらの処置は副作用が強く、患者に大きな負担をもたらしている。このことは、特に造血細胞移植を受ける患者が老人や小児の場合に顕著である。しかし、放射線照射や化学療法以外の有用な造血幹細胞の除去方法は知られていない。
　タンパク質を含まない餌で飼育されたマウスにおいて、重度の顆粒球減少症および貧血症が発症することが知られている（非特許文献１）。これら血球における異常は、１８％のカゼインおよび葉酸により回復した（非特許文献１）。
Kornberg A, Daft FS, Sebrell WH, Granulocytopenia and Anemia in Rats Fed Diets of Low Casein Content, Science, 1949, 103(2682):646-8
　本発明は、動物（特にヒト）体内の造血幹細胞を低減または除去する際に、放射線照射の代替となる手法を提供する。
　本発明者らは、下記実施例に記載されるように、バリンを与えないで動物を維持すると、動物体内において造血幹細胞を減少させることができることを見出した。造血幹細胞が減少する現象は、観察されるかぎり、造血幹細胞に特徴的な現象であった。
　本発明者らはさらに、バリンを与えないで維持することにより造血幹細胞を減少させた動物（「レシピエント動物」という）に、造血幹細胞移植を移植すると、移植造血幹細胞がレシピエント動物体内で生着することを見出した。また、レシピエント動物体内の造血幹細胞を詳細に調べると、レシピエント動物由来の細胞の造血系への寄与は確認されず、造血幹細胞が移植造血幹細胞に置き換わった。このことから、本発明の方法は、造血幹細胞移植前のレシピエントの処置に応用できることを見出した。
　本発明はこのような知見に基づきなされたものである。
　すなわち、本願発明によれば、以下の発明が提供される。
（１）バリンを実質的に含まない、経静脈栄養剤または経腸栄養剤。
（２）造血幹細胞を減少させることに用いるための組成物であって、上記（１）に記載の栄養剤を含み、バリンを実質的に含まない、組成物。
（３）造血幹細胞を減少させることに用いるための組成物であって、バリンを除いては経静脈栄養剤または経腸栄養剤としての組成を有し、バリンを実質的に含まない、組成物。
（４）投与対象が、造血幹細胞移植前のレシピエントである、上記（２）または（３）に記載の組成物。
（５）経静脈栄養剤または経腸栄養剤が、バリンを実質的に含まないことを除いては、継時的投与により少なくとも３週間の生命維持に十分な栄養素を供給可能なように設計された、上記（２）～（４）のいずれかに記載の組成物。
（６）経静脈栄養剤または経腸栄養剤が、バリンを実質的に含まないことを除いては完全栄養製剤として設計された、上記（２）～（５）のいずれかに記載の組成物。
（７）経静脈投与のための、上記（２）～（６）のいずれかに記載の組成物。
（８）細胞培養培地であって、
　バリン若しくはシステインまたはその両方を実質的に含まないことを特徴とする、培地。
（９）対象の体内の造血幹細胞の減少を検出する方法であって、
　（ａ）処置前のレシピエントから得られた骨髄液または末梢血サンプル中の造血幹細胞数を計測することと、
　（ｂ）処置中または処置後のレシピエントから得られた骨髄液または末梢血サンプル中の造血幹細胞数を計測することと、
　（ｃ）工程（ａ）で求められた細胞数と工程（ｂ）で得られた細胞数とを比較することとを含んでなり、
　処置が、一定期間中、レシピエントにバリンを実質的に与えないことである、
　方法。
（１０）処置が、上記（１）に記載の栄養剤または上記（２）～（７）のいずれかに記載の組成物の投与により行われる、上記（９）に記載の方法。
（１１）処置が、一定期間中、対象にレシピエントにバリンを実質的に与えないことを特徴とする栄養療法である、上記（９）に記載の方法。
（１２）造血幹細胞を減少させることに用いるための組成物を製造する方法であって、
　組成物にバリンが実質的に含まれないように生体に必須の栄養素を混合することを含む、
　方法。
（１３）栄養素が、少なくとも、糖、必須アミノ酸、ビタミン類および必須微量元素である、上記（１２）に記載の方法。
（１４）組成物が、継時的投与により少なくとも３週間の生命維持に十分な量の栄養素を含む、上記（１２）に記載の方法。
（１５）造血幹細胞を減少させることに用いるための医薬組成物を製造するための栄養素の使用であって、栄養素がバリン以外の栄養素である、使用。
　本発明によれば、単にバリンまたはシステインを含まない培地で造血幹細胞を培養することで造血幹細胞を減少させることができる。細胞特異性が高く、幹細胞を特異性高く標的とできる点で有利である。また、本発明によれば、バリンを含まない食事を与えることで対象（例えば、ヒト）において造血幹細胞を減少させることができる。従来のような放射線照射を必要としない、または低減できる点で、本発明は有利である。
図１は、細胞培養培地中のアミノ酸含量を示す。 図２は、ＣＤ３４-ＫＳＬ細胞を１ウェルあたり４０細胞播種して、図１に示される組成の培地中で１週間培養した結果を示す図である。 図３Ａは、ＣＤ３４-ＫＳＬ細胞を１ウェルあたり４０細胞播種して、図１に示される組成の培地中で１週間培養して計測された細胞の数を示す。図３Ｂは、ＣＤ３４-ＫＳＬ細胞を１ウェルあたり４０細胞播種して得られた細胞を照射マウスに通常の細胞との競合条件で移植した場合のキメラ率を示す。 図４は、通常餌、バリンを含まない餌およびシステインを含まない餌の組成を示す図である。 図５は、通常餌またはバリンを含まない餌（-Val）でそれぞれ４週間飼育したマウスの末梢血および骨髄中のアミノ酸の含量を調べた結果である。 図６Ａは、通常餌またはバリンを含まない餌を４週間与えたマウスから得られた末梢血サンプル中の全血球数（ＷＢＣ）、赤血球数（ＲＢＣ）および血小板数（ＰＬＴ）を示す。図６Ｂは、骨髄中のＣＤ１５０+ＣＤ４１-ＣＤ４８-のＫＳＬ細胞の存在頻度を示す。図６Ｃは、細胞周期がＧ０期である細胞の頻度を示す。 図７は、通常餌またはバリンを含まない餌を与えられたマウスの骨髄Ｂ細胞、末梢血Ｂ細胞およびリンパ球系共通前駆細胞の存在頻度を示す。 図８は、通常餌、バリンを含まない餌（-Val）またはシステインを含まない餌（-Cys）で４週間飼育されたマウスの骨髄中のＣＤ３４-のＫＳＬ細胞の存在頻度を示す。 図９は、アミノ酸のいずれかを含まない餌で飼育されたマウスの生存曲線を示す。 図１０は、通常餌またはバリンを含まない餌で４週間飼育されたマウスの組織切片像である。 図１１Ａは、バリンを含まない餌を与えてから通常餌に変えたマウスの体重変化の推移を示す図である。図１１ＢおよびＣはそれぞれ、胸腺および脾臓がバリンを含まない餌で４週間飼育されたマウスで小さくなること、および、その後、通常の餌を４週間与えることで大きさが回復することを示す。 図１２は、通常の餌またはバリンを含まない餌を与えて飼育されたマウスから得られた全骨髄を競合条件下で照射マウスに移植して、それぞれのキメラ率の推移を示す図である。 図１３は、通常の餌またはバリンを含まない餌（-Val）で２週間飼育したマウスにポリＩ：Ｃを投与した後の生存率を示す図である。 図１４Ａは、造血幹細胞移植のスキームを示す。このスキームでは、レシピエントマウスは照射されず、バリンを含まない餌で２週間飼育されてからドナー細胞を移植される。図１４Ｂは、移植後のレシピエント中でのドナー細胞のキメラ率を示す図である。図１４Ｃは、移植の成功率および移植後のレシピエント中でのドナー細胞の寄与率を細胞ごとに示す図である。 図１５は、ヒト造血幹細胞に対するアミノ酸欠損培地の影響を示す図である。
発明の具体的な説明
　本発明者らは、下記実施例に記載されるように、バリンを与えないで動物を維持すると、動物体内において造血幹細胞を減少させることができることを見出した。従って、本発明によれば、バリンを与えないで動物を維持することにより、動物体内において造血幹細胞を減少させる方法、またはその方法に用いる組成物が提供される。
　本発明によれば、対象は、バリンを与えないよう栄養管理され得る。これにより、対象の体内の造血幹細胞は減少する。栄養管理の期間を延ばせば、対象の体内から実質的に完全に造血幹細胞を除去し得る。実質的に完全に細胞を除去するとは、細胞が、１０％以下、より好ましくは５％以下、さらに好ましくは３％以下、さらにより好ましくは１％以下、さらにより好ましくは０．１％以下、とりわけ好ましくは、０．０１％以下、最も好ましくは完全に消失することを意味する。
　ある態様では、造血幹細胞を減少させることに用いるための組成物は、経静脈栄養製剤または経腸栄養製剤を含むものであるが、経静脈栄養製剤または経腸栄養製剤は、バリンを実質的に含まない組成物である。本明細書では、「バリンを含まない」とは、「バリンを欠如した」と相互互換的に用いられる。本明細書では、「バリンを含まない」とは、ペプチドとしてもバリンを含まないことを意味する。本明細書では、「実質的に」とは、製造工程で避けることのできない程度の混入があってもよいことを意味する。
　ここで、「経静脈栄養製剤」とは、静脈栄養法に用いられる栄養剤を意味する。経静脈栄養製剤としては、末梢静脈内に栄養素を投与する末梢静脈栄養製剤と、中心静脈内に栄養素を投与する中心静脈栄養製剤が挙げられる。通常は、腸が機能している場合には、栄養法としては、経腸栄養法が選択され、経腸栄養製剤が対象に投与されるが、経腸栄養が困難である場合は、経静脈栄養法が選択され、経静脈栄養製剤が対象に投与される。経静脈栄養製剤としては、末梢静脈栄養製剤と中心静脈栄養製剤が挙げられる。経静脈栄養製剤は、通常、輸液製剤であり、糖、電解質およびアミノ酸を含む水溶液であり、ビタミンをさらに含んでいてもよい。中心静脈栄養製剤は、通常は、糖、電解質およびアミノ酸に加えて、ビタミンおよび生体に必要な微量元素（例えば、輸液用ビタミン剤、輸液用総合ビタミン剤および輸液用微量元素製剤）を含む。
　「経腸栄養製剤」とは、経腸栄養法に用いられる栄養剤を意味する。経腸栄養製剤としては、半消化態栄養剤、消化態栄養剤および成分栄養剤が挙げられる。半消化態栄養剤は、窒素源としてタンパク質を含み、消化態栄養剤は、窒素源として低分子ペプチドおよびアミノ酸を含み、成分栄養剤は、窒素源としてアミノ酸を含む。本発明では、経腸栄養製剤としては、成分栄養剤が好ましく用いられ得る。
　本明細書では、「バリンを除いては経静脈栄養製剤または経腸栄養製剤としての組成を有する」とは、バリン以外の組成は、経静脈栄養製剤または経腸栄養製剤と同一であるか、またはバリン以外の組成が類似しており、かつ経静脈栄養製剤または経腸栄養製剤としての機能を有することを意味する。
　本明細書では、「バリンを実質的に含まないことを除いては、完全栄養製剤として設計された」とは、完全栄養製剤として設計された栄養製剤の組成を有するが、その組成においてバリンを含まないことを意味する。すなわち、「バリンを実質的に含まないことを除いては、完全栄養製剤として設計された」組成物は、バリン以外の組成は、完全栄養製剤と同一とし得る。
　本明細書では、「バリンを実質的に含まないことを除いては、継時的投与により少なくとも３週間の生命維持に十分な栄養素を供給可能なように設計された」または類似の表現は、継時的投与により少なくとも３週間の生命維持に十分な栄養素を供給可能なように設計された栄養製剤の組成を有するが、その組成においてバリンを含まないことを意味する。
　医学的に対象の栄養管理が適切になされるよう、栄養管理法として経静脈栄養法または経腸栄養法が選択されることがある。上記経静脈栄養製剤または経腸栄養製剤は、このような適切な栄養管理のために市販されている。経静脈栄養法または経腸栄養法では、上記経静脈栄養製剤または経腸栄養製剤に加えて脂肪乳剤などのエネルギー摂取量を増加させる製剤が併用されてもよい。脂肪乳剤は、エネルギー供給のためや、脂肪酸欠乏の防止のために栄養製剤と併用投与され、一般的には脂肪酸の乳化物を含み、脂肪酸は例えば、大豆油由来であり得、乳化剤は卵黄由来のレシチンであり得る。
　本発明では、バリンを与えないで動物を維持することにより、対象動物体内において造血幹細胞を減少させることができるので、バリンを実質的に含まない経静脈栄養製剤または経腸栄養製剤が造血幹細胞を減少させるために好ましく用いられ得る。
　本発明の造血幹細胞を減少させることに用いるための組成物は、継時的投与により少なくとも対象由来の造血幹細胞が、投与前の好ましくは１０％以下、より好ましくは５％以下、さらに好ましくは３％以下、さらにより好ましくは１％以下、最も好ましくは完全に消失するまでの期間を超えて、レシピエントを生存させるに十分な栄養素を供給可能なように設計されている。この際、組成物は、脂肪乳剤などのエネルギー摂取量を増加させる製剤が併用されてもよい。
　従って、本発明の造血幹細胞を減少させることに用いるための組成物は、対象由来の造血幹細胞を、投与前の好ましくは１０％以下、より好ましくは５％以下、さらに好ましくは３％以下、さらにより好ましくは１％以下、最も好ましくは完全に消失させるために対象に投与することができる。
　ある態様では、本発明の造血幹細胞を減少させることに用いるための組成物は、２０種類のアミノ酸のうち、バリン以外のアミノ酸をすべて含んでいる。ある態様では、本発明の造血幹細胞を減少させることに用いるための組成物は、バリンを含むペプチドを実質的に含まない。また、ある態様では、本発明の造血幹細胞を減少させることに用いるための組成物は、２０種類のアミノ酸のうち、バリン以外のアミノ酸をすべて含み、かつ、糖、電解質、ビタミンおよび必須微量元素をさらに含む。ある態様では、本発明の造血幹細胞を減少させることに用いるための組成物は、２０種類のアミノ酸のうち、バリン以外のアミノ酸をすべて含み、かつ、糖、電解質、ビタミンおよび必須微量元素をさらに含み；かつ、脂肪乳剤と併用される。本発明の造血幹細胞を減少させることに用いるための組成物に含ませる各成分の量は、通常の経静脈栄養剤または経腸栄養剤に含ませる各成分の量と同等とすることができる。
　本発明では、対象は、哺乳動物、好ましくはヒトである。また、ある態様では、本発明の組成物の投与対象は造血器腫瘍の患者である。従って、本発明の組成物は、ある態様では、造血器腫瘍の患者において造血器腫瘍を処置するための医薬組成物である。ある好ましい態様では、造血器腫瘍は、造血系の癌幹細胞を伴う造血器腫瘍である。
　経静脈投与の医薬組成物において、各栄養素は、薬学的に許容可能な成分からなる。
　本発明のある態様では、本発明の組成物の投与対象は造血幹細胞移植前のレシピエントである。造血幹細胞移植のレシピエントは、栄養学的なリスクを有しているので、栄養障害の有無に関わらず、経静脈栄養法または経腸栄養法などの栄養管理が推奨される。また、造血幹細胞移植のレシピエントの栄養管理に使う経静脈栄養製剤または経腸栄養製剤もよく知られている。従って、本発明の造血幹細胞減少させることに用いるための組成物は、造血幹細胞移植前のレシピエントの栄養管理に用いられる通常の経静脈栄養製剤または経腸栄養製剤とすることができる（ただし、栄養製剤は、バリンを含まないことが条件である）。造血幹細胞移植のレシピエントの栄養管理に使う経静脈栄養製剤または経腸栄養製剤は、通常用いるものよりも、エネルギー量やタンパク質量を増やしたものであり得る。
　上記栄養剤によるエネルギー投与量は、当業者に周知の技術、例えば、間接熱量測定により測定することができる。
　バリン実質的に含まない経静脈栄養製剤または経腸栄養製剤は、アミノ酸としてバリン以外のアミノ酸製剤を栄養剤の他の構成成分（糖および電解質など）と混合することによって得ることができる。
　本発明の造血幹細胞を減少させることに用いるための組成物は、継時的投与により少なくとも３週間の生命維持に十分な栄養素を供給可能なように設計されたものであればよく、好ましくは、４週間若しくは５週間またはそれ以上の生命維持に十分な栄養素を供給可能なように設計されたものとすることができる。
　ある態様では、本発明の造血幹細胞を減少させることに用いるための組成物は、対象の体内から造血幹細胞を実質的に完全に除去することに用いるための組成物であり得る。
　本発明によれば、対象にバリンを実質的に与えることなく、その他の栄養を与えると、対象の体内の造血幹細胞が減少する。従って、本発明によれば、対象の体内の造血幹細胞を減少させる方法であって、対象にバリンを実質的に与えないよう栄養管理する（栄養摂取させる）ことを含む、方法が提供される。栄養管理は、経腸栄養法または経静脈栄養法により行うことができる。栄養管理は、上記の経腸栄養製剤または経静脈栄養製剤を対象に投与することにより行ってもよい。
　対象は、哺乳動物であり、好ましくはヒトである。
　本発明の造血幹細胞を減少させることに用いるための組成物は、造血幹細胞の分裂を抑制することに用いるための組成物でもある。
　本発明によれば、対象の体内の造血幹細胞の減少を検出する方法であって、
　（ａ）処置前の対象から得られた骨髄液または末梢血サンプル中の造血幹細胞数を計測することと、
　（ｂ）処置中または処置後の対象から得られた骨髄液または末梢血サンプル中の造血幹細胞数を計測することと、
　（ｃ）工程（ａ）で求められた細胞数と工程（ｂ）で得られた細胞数とを比較することとを含んでなり、
　処置が、一定期間中、対象にバリンを実質的に与えないことである、
　方法が提供される。この方法では、工程（ｃ）において、工程（ａ）で求められた細胞数よりも工程（ｂ）で得られた細胞数が少ないときに、体内の造血幹細胞が減少したと判断することができる。ある態様では、処置は、経腸栄養法または経静脈栄養法による栄養療法である。ある態様では、処置は、上記の経腸栄養製剤または経静脈栄養製剤を対象に投与することにより行ってもよい。
　本発明の対象の体内の造血幹細胞の減少を検出する方法では、一定期間は、好ましくは１日以上、２日以上、３日以上、４日以上、５日以上、６日以上、１週間以上、２週間以上、３週間以上または４週間以上であり、患者が死亡するほど長い期間であってはならない。本発明のある態様では、一定期間は、１日～５週間、１週間～４週間、または２週間～３週間程度である。
　本発明の対象の体内の造血幹細胞の減少を検出する方法では、対象は、哺乳動物とすることができ、好ましくはヒトとすることができる。本発明のある態様では、対象は、造血幹細胞移植の移植前のレシピエントである。本発明のある態様では、対象は、造血器腫瘍の患者である。
　本発明によれば、造血幹細胞を減少させることに用いるための組成物を製造する方法であって、組成物にバリンが実質的に含まれないように栄養素を混合することを含む、方法が提供される。混合される栄養素は、糖、アミノ酸、ビタミン、電解質および必須の微量元素であり得る。ある態様では、混合されるアミノ酸は、トリプトファン、リジン、メチオニン、フェニルアラニン、トレオニン、ロイシン、イソロイシンおよびヒスチジンなどの必須アミノ酸から選択される１以上のアミノ酸またはすべてのアミノ酸である。経静脈栄養法により投与する組成物は、薬学的に許容可能な成分からなる。
　体内に必要な微量元素としては、例えば、鉄、亜鉛、銅、セレン、クロム、コバルト、ヨウ素、マンガンおよびモリブデンが挙げられる。必須微量元素の投与量は、概ね以下の通りである。
　鉄　　　　：２０～２００μｇ／ｋｇ体重／日
　亜鉛　　　：４０～６０μｇ／ｋｇ体重／日
　銅　　　　：２０～５０μｇ／ｋｇ体重／日
　セレン　　：２～７μｇ／ｋｇ体重／日
　クロム　　：０．１～０．２μｇ／ｋｇ体重／日
　ヨウ素　　：１～１５μｇ／ｋｇ体重／日
　マンガン　：１～６０μｇ／ｋｇ体重／日
　モリブデン：０．１～０．５μｇ／ｋｇ体重／日
　従って、上記必要量を目安にして本発明の組成物に必須微量元素を混入させることができる。
　本発明によれば、造血幹細胞の移植方法であって、
　移植の前処理として、一定期間中、対象にバリンを実質的に与えないで（すなわち、それ以外の栄養素を与えて）移植のレシピエントの生命を維持し、それにより、患者体内の造血幹細胞を減少させることを含む、方法が提供される。本発明の造血幹細胞の移植方法は、患者の造血幹細胞が実質的に除去されるまで、対象にバリンを実質的に与えないことと、除去後、造血幹細胞を移植することとをさらに含んでいてもよい。
　本発明によれば、その必要のある患者において造血器腫瘍を処置する方法であって、
　一定期間中、対象にバリンを実質的に与えないで（すなわち、それ以外の栄養素を与えて）患者の生命を維持し、それにより、患者体内の造血幹細胞を減少させることを含む、方法が提供される。本発明の造血器腫瘍を処置する方法は、造血器腫瘍の処置に用いられる抗癌剤による治療の前若しくは後または最中に行ってもよい。本発明の造血器腫瘍を処置する方法は、患者の造血幹細胞が実質的に除去されるまで、対象にバリンを実質的に与えないことと、除去後、造血幹細胞を移植することとをさらに含んでいてもよい。本発明の造血器腫瘍を処置する方法は、特に造血に係る癌幹細胞の量を低減できる点で造血器腫瘍の処置にきわめて高い効果を奏するものである。
　本発明によれば、造血幹細胞を減少させることに用いるための医薬組成物を製造するための栄養素の使用であって、栄養素がバリン以外の栄養素である、使用に関する。使用される栄養素は、糖、アミノ酸、ビタミン、電解質および必須の微量元素であり得る。ある態様では、使用されるアミノ酸は、トリプトファン、リジン、メチオニン、フェニルアラニン、トレオニン、ロイシン、イソロイシンおよびヒスチジンなどの必須アミノ酸から選択される１以上のアミノ酸または上記必須アミノ酸から選択されるすべてのアミノ酸である。ある態様では、栄養素はアミノ酸としてバリン以外のすべてのアミノ酸を含む。
　ある態様では、使用されるアミノ酸は、すべてのアミノ酸（バリンを除く）である。従って、ある態様では、使用される栄養素は、糖、アミノ酸、ビタミン、電解質および必須の微量元素であり、アミノ酸は、トリプトファン、リジン、メチオニン、フェニルアラニン、トレオニン、ロイシン、イソロイシンおよびヒスチジンなどの必須アミノ酸から選択される１以上のアミノ酸または上記必須アミノ酸から選択されるすべてのアミノ酸である。
　ある態様では、使用される栄養素は、糖、アミノ酸、ビタミン、電解質および必須の微量元素であり、アミノ酸は、アスパラギン、アスパラギン酸、セリン、トレオニン、グルタミン、グルタミン酸、プロリン、グリシン、メチオニン、ロイシン、イソロイシン、チロシン、フェニルアラニン、ヒスチジン、アラニン、リジン、トリプトファンおよびアルギニンである。
　ある態様では、使用される栄養素は、糖、アミノ酸、ビタミン、電解質および必須の微量元素であり、アミノ酸は、アスパラギン、アスパラギン酸、セリン、トレオニン、グルタミン、グルタミン酸、プロリン、グリシン、メチオニン、ロイシン、イソロイシン、チロシン、フェニルアラニン、ヒスチジン、アラニン、リジン、トリプトファン、システインおよびアルギニンである。
　使用される各栄養素の含量は、投与対象に応じて当業者により適宜決定することができる。例えば、使用される各栄養素の含量は、経静脈栄養剤または経腸栄養剤における各栄養素の含量と同等とすることができる。
　本発明のある態様では、造血幹細胞を減少させることに用いるための細胞培養培地が提供される。本発明の細胞培養培地は、バリン若しくはシステインまたはその両方を実質的に含まないことを特徴とする。ある態様では、本発明の細胞培養培地は、バリン若しくはシステインまたはその両方を実質的に含まないことを除けば、通常の細胞培養培地と同じ組成を有する。例えば、通常の細胞培養培地は、合成培地（完全合成培地）である。従って、ある態様では、本発明の細胞培養培地は、バリン若しくはシステインまたはその両方を実質的に含まない完全合成培地である。完全合成培地の組成は、当業者であれば適宜決定することができる。各成分の含量は、通常用いられる完全合成培地と同等とすることができる。本発明の細胞培養培地は、例えば、造血幹細胞から細胞を分化させて得た分化培養物から、未分化細胞（造血幹細胞）を除去することなどに用いることができる。
　本発明のある態様では、本発明の細胞培養培地に含まれるアミノ酸は、トリプトファン、リジン、メチオニン、フェニルアラニン、トレオニン、バリン、ロイシン、イソロイシンおよびヒスチジンなどの必須アミノ酸から選択される１以上のアミノ酸または上記必須アミノ酸から選択されるすべてのアミノ酸である（ただし、栄養素は、バリン若しくはシステインまたはその両方を含まないことが条件である）。
　本発明のある態様では、本発明の細胞培養培地に含まれるアミノ酸は、アスパラギン、アスパラギン酸、セリン、トレオニン、グルタミン、グルタミン酸、プロリン、グリシン、メチオニン、ロイシン、イソロイシン、チロシン、フェニルアラニン、ヒスチジン、アラニン、リジン、トリプトファンおよびアルギニンである。
　本発明のある態様では、本発明の細胞培養培地に含まれるアミノ酸は、アスパラギン、アスパラギン酸、セリン、トレオニン、グルタミン、グルタミン酸、プロリン、グリシン、メチオニン、ロイシン、イソロイシン、チロシン、フェニルアラニン、ヒスチジン、アラニン、リジン、トリプトファン、システインおよびアルギニンである。
　本発明のある態様では、本発明の細胞培養培地に含まれるアミノ酸は、アスパラギン、アスパラギン酸、セリン、トレオニン、グルタミン、グルタミン酸、プロリン、グリシン、メチオニン、ロイシン、イソロイシン、チロシン、フェニルアラニン、ヒスチジン、アラニン、リジン、トリプトファン、バリンおよびアルギニンである。
　本発明のヒト用の細胞培養培地は、ある態様では、アミノ酸として、アラニン、システイン、ヒスチジン、リジン、メチオニン、グルタミンおよびバリンからなる群から選択される１以上のアミノ酸を含まず、好ましくは、システインまたはバリンを含まない。
実施例１：細胞培養培地におけるアミノ酸欠損の影響
　２０アミノ酸のうち１アミノ酸を欠損させた細胞培養培地を作製し、各アミノ酸が欠損することによる造血幹細胞の増殖に対する影響を調べた。
　C57BL/6 (B6-Ly5.2)マウスは、日本SLC社から購入し、C57BL/6 (B6-Ly5.1)マウスおよびNOD/scid (Ly5.2)マウスは、三協ラボサービス社から購入した。マウスは、東京大学医科学研究所実験動物施設（the Animal Research Facility of the Institute of Medical Science, the University of Tokyo）にて、動物実験および組換えDNA実験に関する東京大学の指針（the guidance of the University of Tokyo for animal and recombinant DNA experiments）に従って飼育した。
　細胞培養培地は、アミノ酸を含まないRPMI1640培地（製品番号：R8758）およびDMEM/F12培地（製品番号：D6421）をシグマアルドリッチ社から購入した。これらの培地を等量ずつ混合した。アミノ酸は、図１に示される通りに培地に添加した。Ｓ－ｃｌｏｎｅ　ＳＦ－Ｏ３培地は、三光純薬社から購入した。
　造血幹細胞としては、ＣＤ３４-のマウスＫＳＬ細胞を用いた。ＣＤ３４-のマウスＫＳＬ細胞は、８～１２週齢のC57BL/6 (B6-Ly5.1)マウスの骨髄から採取した。具体的には、骨髄細胞をアロフィコシアニン（ＡＰＣ）コンジュゲート抗ｃ－ｋｉｔ抗体（eBioscience社製）で染色し、ｃ－Ｋｉｔ+細胞を抗ＡＰＣ磁気ビーズ（Miltenyi Biotech社製）で濃縮した。得られた細胞をフルオレセインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ）－コンジュゲート抗ＣＤ３４抗体（eBioscience社製）とフィコエリスリン（ＰＥ）－コンジュゲート抗Ｓｃａ－１抗体（eBioscience社製）で染色し、さらにリニエージマーカーである、抗Ｇｒ－１抗体、抗Ｍａｃ－１抗体、抗Ｂ２２０／ＣＤ４５Ｒ抗体、抗ＣＤ４抗体、抗ＣＤ８抗体、抗ＣＤ１２７／ＩＬ７Ｒα抗体、および抗Ｔｅｒ－１１９抗体の抗体カクテル（eBioscience社製）で染色した。その後、べクトン・デッキンソン（ＢＤ）社製のセルソーターを用いてＣＤ３４-のマウスＫＳＬ細胞を精製した。
　得られた造血幹細胞を上記の１アミノ酸を欠損した細胞培養培地（１％ウシ血清アルブミン、５０ｎｇ／ｍＬマウスＳＣＦ（PeproTech社製）および５０ｎｇ／ｍＬマウスＴＰＯを含む）中で各ウェル４０細胞を１週間培養し、培養後の細胞の数を計測した。実験は独立して３回繰り返した。
　図２は、上記アミノ酸欠損培地で１週間培養した細胞の写真を示す。図２によれば、バリン（－Ｖａｌ）およびシステイン（－Ｃｙｓ）の場合に、細胞塊が観察されなかった。細胞の計数結果は図３に示される通りであった。図３Ａに示されるように、バリン（－Ｖａｌ）およびシステイン（－Ｃｙｓ）の場合は、細胞が増えなかった。
　このことから、造血幹細胞の増殖にバリン（－Ｖａｌ）およびシステイン（－Ｃｙｓ）が必要であることが明らかとなった。
実施例２：アミノ酸欠損培地で培養した造血幹細胞の移植
　次に、実施例１の方法で培養した造血幹細胞を照射マウスに投与して細胞の生着を確認した。
　アミノ酸欠損培地で培養した造血幹細胞としては、実施例１で培養して得られた造血幹細胞（ドナー造血幹細胞という）を用いた。照射マウスは、C57BL/6 (B6-Ly5.2)マウスに９．５Ｇｙの線量を照射して得た。競合条件下で細胞の増殖を観察するため、Ly5.1とLy5.2のF1マウスから１×１０6細胞の骨髄細胞（競合細胞という）を得た。
　アミノ酸欠損培地で培養した造血幹細胞とF1マウスの骨髄細胞を照射マウスに移植した。ドナー造血幹細胞の寄与率（キメラ率）を計算するため、移植１２週間後に末梢血（ＰＢ）を採取し、ＰＥ／Ｃｙ７－コンジュゲート抗Ly5.1抗体（Tonbo社製）およＦＩＴＣ－コンジュゲート抗Ly5.2抗体（BioLegend社製）でそれぞれドナー造血幹細胞および競合細胞を染色した。さらにＢ細胞、Ｔ細胞、骨髄細胞およびその他の細胞の割合を計算するために、末梢血をさらにＰＥ－コンジュゲート抗Ｍａｃ－１抗体および抗Ｇｒ－１抗体、ＡＰＣ－コンジュゲート抗ＣＤ４抗体および抗ＣＤ８抗体、並びにＡＰＣ－ｅＦｌｕｏｒ　７８０－コンジュゲート抗Ｂ２２０／ＣＤ４５Ｒ抗体でさらに染色した。
　ドナー造血幹細胞および競合細胞の細胞数をFACS Canto II（Becton Dickinson社製）を用いて計測し、キメラ率を求めた。キメラ率は、ドナー造血幹細胞の細胞数をドナー造血幹細胞および競合細胞の細胞数の和で除して求めた。
　結果は、図３Ｂに示される通りであった。図３Ｂに示されるように、バリン（－Ｖａｌ）およびシステイン（－Ｃｙｓ）の場合は、キメラ率はほぼ０であった。
実施例３：アミノ酸のいずれかを含まない餌を与えて飼育したマウスの解析
　本実施例では、バリンまたはシステインを含まない餌を与えられたマウスにおける異常の有無を解析した。
　餌は、図４に記載の通りの製品番号および組成を有し、Research Diet社から購入した。まず、通常の餌またはバリンを含まない餌で４週間飼育したマウスの末梢血および骨髄における各アミノ酸の含量を測定した。
　アミノ酸含量の測定用の末梢血サンプルは、眼窩からサンプリングした血液を遠心分離して細胞成分を除去した後に、Amicon Ultra-0.5 mL Centrifugal Filter（Merck Millipore社製）を用いてタンパク質成分を除去して得た。アミノ酸含量の測定用の骨髄サンプルは、骨髄を水で溶出させてからAmicon Ultra-0.5 mL Centrifugal Filterを用いてタンパク質を除去して得た。これらのサンプル中の各アミノ酸含量は、Prominence Amino Acid Analysis System (Shimadzu社製)を用いて測定した。
　結果は、図５に示される通りであった。図５に示されるように、バリンを含まない餌を４週間与えたマウスでは、末梢血においても、骨髄においても、バリン含量が低減していた。
　次に、バリンを含まない餌を４週間与えたマウスから得られた末梢血サンプル中の全血球数（ＷＢＣ）、赤血球数（ＲＢＣ）および血小板数（ＰＬＴ）を日本光電社製の自動血球計数器（MEK-6258）を用いて計数すると、図６Ａに示されるように、全血球数において大きな減少が観察された。赤血球数でも有意差が見られた。
　さらに、バリンを含まない餌を４週間与えたマウスにおける造血幹細胞の数を調べた。造血系幹細胞としてＣＤ１５０+ＣＤ４１-ＣＤ４８-のＫＳＬ細胞を以下の方法で取得した。まず、バリンを含まない餌を４週間与えたＢ６マウスから骨髄細胞を採取した。細胞を上記リニエージマーカーカクテル、ＡＰＣコンジュゲート抗ｃ－ｋｉｔ抗体、パシフィックブルーコンジュゲート抗Ｓｃａ１抗体、ＦＩＴＣ－コンジュゲート抗ＣＤ４１抗体、Ａｌｅｘａ　Ｆｌｕｏｒ４８８コンジュゲート抗ＣＤ４８抗体、およびＰＥコンジュゲート抗ＣＤ１５０抗体並びにストレプトアビジン－ＡＰＣ－ｅＦｌｕｏｒ７８０抗体で染色した。
　細胞数の計測は、ＦＡＣＳ　Ａｒｉａ－２（BD Biosciences社製）により行い、FlowJo Software（Tree Star社製）を用いて解析した。
　その結果、図６Ｂに示されるように、バリンを含まない餌を与えられたマウスでは造血幹細胞の出現頻度が大きく減少した。ＣＤ３４の発現およびピロニンＹ染色でＧ０期の細胞の割合を調べたところ、バリンを含まない餌を与えられたマウスは、通常の餌を与えられたマウスとＧ０期の細胞の割合はほとんど変わらなかった（図６Ｃ）。また、バリンを含まない餌を与えられたマウスでは末梢血および骨髄のいずれでもＢ細胞の大きな減少が見られた（図７）。また、バリンを含まない餌を与えられたマウスではリンパ球系共通前駆細胞（ＣＬＰ）の細胞数においても大きな減少が見られた（図７）。
　さらに、ＣＤ３４-のＫＳＬの造血幹細胞の頻度を確認したところ、バリンを含まない餌で４週間飼育したマウスでは、ＣＤ３４-のＫＳＬの造血幹細胞が大きく減少していた（図８）。
実施例３：アミノ酸のいずれかを含まない餌のマウスへの影響
　本実施例では、アミノ酸のいずれかを含まない餌を与え続けたマウスの生存率を確認した。
　絶食下で２日間飼育したＣ５７ＢＬ／６に示されたアミノ酸のいずれかを含まない餌を与え続け、生存率を確認した。
　結果は、図９に示される通り、イソロイシンを含まない餌やトリプトファンを含まない餌で飼育したマウスでは、１か月程度でマウスが全滅した。バリンを含まない餌で飼育したマウスは、少なくとも４０日間程度はマウスの生存率に影響はなかった。
　さらに、バリンを含まない餌で４週間飼育したマウスの各組織の切片を調べた。切片は常法により作製し、ヘマトキシリン－エオシン染色したものを観察した。すると、図１０に示されるように、通常の餌と比較して、バリンを含まない餌で飼育したマウスの脳、心臓、肺、腎臓、胃、膵臓および精巣では違いが観察できなかった。一方、大腸では絨毛が伸びており、横紋筋や褐色脂肪細胞に変化が見られた（図１０）。
　次に、マウスを、バリンを含まない餌で１、２、３または４週間飼育した後に通常の餌に戻して飼育し、マウスの体重変化の推移や脾臓、胸腺の大きさを確認した。すると、図１１Ａに示されるようにバリンを含まない餌で飼育したマウスは体重の増加がみられないが、通常の餌に戻して飼育すると迅速に体重が回復した。
　また、図１１ＢおよびＣに示されるように、バリンを含まない餌で４週間飼育すると脾臓も胸腺も小さくなるが、通常の餌に戻して４週間飼育すると脾臓、胸腺の大きさは、ずっと通常の餌で飼育したマウスのそれらと同じ大きさに回復した。
　このことは、バリンを含まない食事により患者を生命維持してその体内の造血幹細胞を除去したとしても、その後、バリンを含む通常の食事を与えれば、バリン欠損の影響から回復させることができることを示唆するものである。
実施例４：バリンを含まない餌の長期の造血への影響
　本実施例では、照射マウスの体内に、バリンを含まない餌で飼育したマウスの全骨髄と通常の餌で飼育したマウスの全骨髄を等量ずつ移植する競合条件下で、バリンを含まない餌で飼育したマウスの全骨髄の生着率を調べた。
　照射マウスは、Ｃ５７ＢＬ／６（Ｌｙ５．２）マウスに致死量の放射線を照射して得た。Ｃ５７ＢＬ／６（Ｌｙ５．１）マウスをバリンを含まない餌で４週間飼育して全骨髄を得た。また、Ｂ６（Ｌｙ５．１／Ｌｙ５．２）マウスを通常の餌で４週間飼育して全骨髄を得た。
　同じ量の全骨髄を競合条件下で照射マウスに移植して、それぞれの全骨髄からの造血を血球細胞のキメラ率により確認した。
　すると、図１２に示されるように、全血球、骨髄細胞、Ｔ細胞およびＢ細胞のいずれにおいても、移植約８週間後には大きな減少は認められなかったものの、移植約１２週間後には、バリンを含まない餌で飼育したマウスの全骨髄に由来する細胞はほとんど見られなかった。
　このことは、バリンを含まない餌により、血球系のうち特に造血幹細胞が影響を受けたことを示唆するものである。
実施例５：バリンを含まない餌の造血幹細胞の分裂への影響
　本実施例では、バリン欠損の造血幹細胞の分裂に対する影響を調べた。
　Ｃ５７ＢＬ／６マウスをバリンを含まない餌で２週間飼育し、さらに７日後にポリＩ：Ｃを腹腔内投与した。すると、図１３に示されるように、バリンを含まない餌で飼育したマウスは投与３日後から死亡した。ポリＩ：Ｃは、インターフェロン－１を誘導して細胞を強制的に分裂させることで知られている。従って、この結果から、バリンは細胞の分裂に必要であることが示唆された。
実施例６：造血幹細胞移植実験
　通常は、造血幹細胞移植のレシピエントは照射して造血幹細胞を除去してから、ドナー由来の造血幹細胞を移植する。本実施例では、バリンを含まない餌を与えてレシピエントの体内の造血幹細胞を低減させ、その後、ドナー由来の造血幹細胞を移植して、ドナー由来の造血幹細胞の生着を確認した。
　具体的には、図１４Ａに示されるように、レシピエントとしてのＮＯＤ／ＳＣＩＤマウス（Ｌｙ５．１）を、２日間絶食させた後に、通常の餌またはバリンを含まない餌で２週間飼育して、ドナーとしてのＢ６マウス（Ｌｙ５．２）由来のＫＳＬ細胞５×１０3個をレシピエントに移植し、その後は、通常の餌で飼育し、３か月間にわたって、造血幹細胞のキメラ率をモニターした。
　すると、図１４Ｂに示されるように、通常の餌で２週間飼育したマウスでは、ドナー細胞の生着は認められなかったが、バリンを含まない餌で２週間飼育したマウスでは、ドナー細胞の生着が認められた。
　また、図１４Ｃに示されるように、バリンを含まない餌で２週間飼育したマウスでは、１０匹中死亡した４匹を除いてはすべてでドナー細胞の生着が確認された。また、移植１か月後のレシピエントマウスでは、Ｔ細胞、Ｂ細胞および骨髄細胞が確認された（図１４Ｃ）。
　このことから、造血幹細胞移植においては、レシピエント由来の造血幹細胞を照射により除去してからドナー由来の造血幹細胞を移植するのが従来の方法であるが、照射の代わりにバリンを含まない餌で飼育するだけでも、ドナー由来の移植造血幹細胞が生着させることができることが分かった。
実施例７：ヒト造血幹細胞に対するバリン欠損の影響
　臍帯血からＣＤ３４+ＣＤ３８-Ｌｉｎ-の造血幹細胞を常法により得た。得られたヒト造血幹細胞をアミノ酸のいずれかを含まない培地（ＳＣＦ、ＴＰＯ、Ｆｌｔ３Ｌ、ＩＬ－３およびＩＬ－６を含む）で１０日間培養して常法によりメチルセルロース培地を用いてコローにアッセイをした。
　その結果は、図１５に示される通りであった。ヒト造血幹細胞は、バリンを含まない培地で培養するとコロニーを形成することができなかった。ヒト造血幹細胞は、システイン、ヒスチジン、リジン、メチオニンまたはグルタミンを含まない培地で培養しても、コロニーを形成することができなかった。

 
 

Claims (15)

  1. 　バリンを実質的に含まない、経静脈栄養剤または経腸栄養剤。
  2. 　造血幹細胞を減少させることに用いるための組成物であって、請求項１に記載の栄養剤を含み、バリンを実質的に含まない、組成物。
  3. 　造血幹細胞を減少させることに用いるための組成物であって、バリンを除いては経静脈栄養剤または経腸栄養剤としての組成を有し、バリンを実質的に含まない、組成物。
  4. 　投与対象が、造血幹細胞移植前のレシピエントである、請求項２または３に記載の組成物。
  5. 　経静脈栄養剤または経腸栄養剤が、バリンを実質的に含まないことを除いては、継時的投与により少なくとも３週間の生命維持に十分な栄養素を供給可能なように設計された、請求項２～４のいずれか一項に記載の組成物。
  6. 　経静脈栄養剤または経腸栄養剤が、バリンを実質的に含まないことを除いては、完全栄養製剤として設計された、請求項２～５のいずれか一項に記載の組成物。
  7. 　経静脈投与のための、請求項２～６のいずれか一項に記載の組成物。
  8. 　細胞培養培地であって、
    　バリン若しくはシステインまたはその両方を実質的に含まないことを特徴とする、培地。
  9. 　対象の体内の造血幹細胞の減少を検出する方法であって、
    　（ａ）処置前のレシピエントから得られた骨髄液または末梢血サンプル中の造血幹細胞数を計測することと、
    　（ｂ）処置中または処置後のレシピエントから得られた骨髄液または末梢血サンプル中の造血幹細胞数を計測することと、
    　（ｃ）工程（ａ）で求められた細胞数と工程（ｂ）で得られた細胞数とを比較することとを含んでなり、
    　処置が、一定期間中、レシピエントにバリンを実質的に与えないことである、
    　方法。
  10. 　処置が、請求項１に記載の栄養剤または請求項２～７のいずれか一項に記載の組成物の投与により行われる、請求項９に記載の方法。
  11. 　処置が、一定期間中、対象にレシピエントにバリンを実質的に与えないことを特徴とする栄養療法である、請求項９に記載の方法。
  12. 　造血幹細胞を減少させることに用いるための組成物を製造する方法であって、
    　組成物にバリンが実質的に含まれないように生体に必須の栄養素を混合することを含む、
    　方法。
  13. 　栄養素が、少なくとも、糖、必須アミノ酸、ビタミン類および必須微量元素である、請求項１２に記載の方法。
  14. 　組成物が、継時的投与により少なくとも３週間の生命維持に十分な量の栄養素を含む、請求項１２に記載の方法。
  15. 　造血幹細胞を減少させることに用いるための医薬組成物を製造するための栄養素の使用であって、栄養素がバリン以外の栄養素である、使用。

     
     
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