WO2016079347A1 - Construcción génica y métodos para detectar compuestos antífúngicos y antitumoraies - Google Patents

Construcción génica y métodos para detectar compuestos antífúngicos y antitumoraies Download PDF

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WO2016079347A1
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strain
cerevisiae
mkk1
seq
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PCT/ES2015/000166
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Humberto MARTíN BRIEVA
Esmeralda ALONSO RODRÍGUEZ
César NOMBELA CANO
María MOLINA MARTÍN
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Universidad Complutense De Madrid
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    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/80—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for fungi
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/25—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving enzymes not classifiable in groups C12Q1/26 - C12Q1/66

Definitions

  • the present invention falls within the sector of the pharmaceutical-biotechnology industry and, more specifically, in pharmacological screening programs for the search of compounds with antifungal activity or modifier of MAPK-mediated signaling (Mitogen Activaied Protein Kinases).
  • IFI invasive fungal infection
  • Candida albicans and Aspergiilus fumigatus are changing.
  • other species such as Candida giahraia, Aspergiilus terreas, Trichosporon asahis, Fusahum spp, Scedosporium spp, Mucorales and dematiaceae are being identified as causative agents of IFI. All these emerging species have the common characteristic of being much more resistant to antifungals than C albicans and A. fumigatus, which increases the already high mortality.
  • Some methodologies focused on the search for antifungals that specifically act on the cell wall have been proposed, such as the search for fungal GTPase inhibitor compounds that regulate the process of maintaining cell wall integrity (EP0892854B1), compounds that can inhibit Mannosyl-transferases (N or O-gi ⁇ cos ⁇ iases), which are enzymes absent in mammalian cells and essential for the maintenance of the fungal cell wall (ÜS6153376A), or specific inhibitors of the product of genes related to this structure and which are essential for Fungal viability such as CaKRES, CaALR1 or CaCdc24 (WO0068420A2).
  • the antibiotic nurseotricin makes it possible to detect the induction of the route based on the resistance of the yeast to said antibiotic (ES2303452B1). Another reason that could explain the low number of fungal cell wall biogenesis inhibitors identified so far, could be precisely the existence of the effective rescue mechanism induced by the CWi route under conditions that endanger this structure- All cell types, from the most elementary prokaryotic to the most complex eukaryotic, use signal transduction pathways to recognize the environment around them and adapt to it, as well as to communicate with other cells. Of particular relevance in eukaryotic organisms are the routes in which MAPKs (Mitogen Activated Protein Kinases) are involved. These protein kinases regulate essential processes such as gene expression or protein translation, stability and localization.
  • MAPKs Mitogen Activated Protein Kinases
  • MAPKs play an essential role in processes such as embryogenesis, cell proliferation and differentiation, apoptosis, stress response, cell mobility, mefabolic homeostasis, immunity or cardiac function, or that abnormalities in MAPK signaling are associated with human diseases such as obesity, diabetes, neurodegenerative disorders, rheumatoid arthritis or cancer (Klm and Choi, 2010. Pathological roles of MAPK diagnosis pathways in human diseases Biochim. Biophys. Acta. 1802, 398-405).
  • MAPKs are phosphorylated and activated successively under stimulation conditions.
  • MAPKs Once activated, MAPKs in turn phosphorylate effector proteins, for example, transcription factors, thus regulating gene expression (Yang et al., 2013. MAP kinase signail ⁇ ng cascades and transcriptional regulation Gene 513, 1-13) .
  • MAPKs operate: Fus3, Kss1, Hogl, Smk1 and Slt2, which define 5 routes that regulate mating, filamentous growth, response to osmotic stress conditions, spore formation and cellular integrity, respectively (Chen and Thorner, 2007.
  • Function and regulation in MAPK signa ⁇ ing pathways Lessons ⁇ earned from the yeast Saccharomyces cerevisiae. Biochim. Biophys. Acta. 1773, 1311-1340). In response to an attack on the cell wall of S.
  • the MAPK Slt2 is activated by the redundant MAPKKs Mkk1 and Mkk2 who in turn are activated by the MAPKKK Bck1.
  • Bck1 receives the stimulation of protein kinase C Pkc1, in turn activated by the GTPase Rho1 in response to the signal detected by the membrane mechanosensors Mid2 and Wsc1, 2,3.
  • Slt2 phosphites and activates the transcription factor Rim1, which promotes an increase in the transcription of a series of genes, including YKL161C (MLP1), CRH1, CWP1, SLT2 or RLM1.
  • MLP1C YKL161C
  • CRH1C CRH1, CWP1, SLT2 or RLM1.
  • the cell wall is not present in mammalian cells, while this route is also conserved in pathogenic fungi, such as Candida albicans (Navarro-Garcia, F. et ai, 2001.
  • a gene construction has been carried out that includes the modified MKK1 gene of Saccharomyces cerevisiae by means of a mutation that leads to a change in amino acid 386 of the protein. , so that the serine of the wild sequence is replaced by a proiin, which results in an overactive form of! gene (MKK1 S386P ); in gene construction, moreover, said gene is preceded by a promoter sequence inducible by e! transcription factor Rlm1 of the CW ⁇ roller and also a transcription termination sequence is included.
  • promoter sequence means the region of a DNA molecule to which RNA polymerase binds to initiate transcription
  • transcription termination sequence means the DNA sequence located in the end of the transcribed portion, and that causes RNA polymerase to terminate transcription.
  • One aspect of the present invention relates to a gene construct comprising the following components, in the order indicated in the transcription direction from 5 'to 3':
  • Mkk1 S386P a DNA sequence whose expression gives rise to the Mkk1 protein of Saccharomyces cerevisiae with a mutation that produces the modification of amino acid S386 by P386 in said protein, called Mkk1 S386P , as described in SEQ ID NO: 3, and
  • the distance between the 3 'end of the promoter sequence and the 5' end of the DNA sequence whose expression gives rise to the Mkk1 S388P protein is less than or equal to 18 nucieotides and the distance between the 3 'end of The DNA sequence whose expression gives rise to the Mkk1 S3S6P protein and the 5 "end of the termination sequence is less than or equal to 18 nucieotides.
  • nucieotides of restriction enzyme target sequences inserted in the sequence of one or more components to facilitate the binding of the different components of the construction, or other nucieotide sequences, provided they do not alter the functionality of the construction.
  • the promoter sequence belongs to the YKL161C (MLP1) gene, which is described in SEQ ID NO: 1.
  • MLP1 YKL161C
  • a preferred embodiment includes the ADHt termination sequence, described in SEQ ID NO: 4.
  • the overexpression of the year of MKK1 S386P encoding an overactive version of this MAPKK is lethal to the city.
  • a gene construct has been developed that results in a positive feedback genetic circuit that leads to a high amplification of the signal that is transmitted through the CWI path of the S. cerevisiae yeast and results in lethality for the cells.
  • the gene construct object of this invention leads to a continuous amplification of the signal transmitted by the MAPK S ⁇ t2 through the factor of Rlm1 transcript.
  • the scheme that includes a preferred embodiment of the invention is: pYKL181C-MKK1 smP- ADHt, and therefore comprises the following components:
  • pYKL161C- promoter of the YKL161C (MLP1) gene characterized by SpQ ID NO: 1, which has a high transcriptional induction in response to wall damage and stimuli that activate the CWi path.
  • MKK S3S6P cauterized by SEQ ID NO: 2; MKK1 allele that encodes a hyperactive version of this MAFKK, whose overexpression is lethal to the cell.
  • ADHt- transcriptional termination region of the ADH1 gene characterized by SEQ ID NO: 4.
  • Another aspect of the invention relates to vectors in which the possible constructions of the invention have been inserted. These vectors can subsequently be used to transform S. cerevisiae cells.
  • the constructs of the invention can be integrated directly into the genome of a S. cerevisiae strain.
  • the invention also includes the S. cerevisiae strain deposited on September 23, 2014 in the Spanish Type Culture Collection (CECT), located in the Scientific Park of the University of Valencia, 46980 Paterna (Valencia), with number of CECT13115 access that, internally, receives the reference yEA1.
  • CECT Spanish Type Culture Collection
  • a positive feedback amplification circuit is generated, and the stimulation of the route involves the activation of the kinase cascade up to SH2, the phosphorylation and activation of Rlm1, the induction of the YKL161C promoter and the expression of the corresponding hyperactive allele. Its expression leads to a niayor activation of S! T2, therefore of Rlm1. and therefore a greater expression of YKL161C, generating an activation loop that feeds positively and continuously while the stimulus is maintained.
  • the gene construct of the invention gives the cells that carry it a hypersensitivity to the stimuli that activate the CWI pathway.
  • This invention has applications as a biosensor system of external stimuli. Strains that include the gene construct can be used to more easily detect weak stimuli that naturally activate the CWI route, due to their greater sensitivity.
  • the bisense capacity of the fungal strains with the gene construct that gives rise to the signal amplifier circuit allows its use as a pharmacological screening tool for the identification of different types of drugs: i) On the one hand, for the search of antifungals.
  • yeast strain that includes the gene construct of the invention, which gives rise to the amplification circuit in the CW ⁇ route, we can track 2 types of compounds with antifungal activity in a very simple and sensitive way:
  • (A) compounds that alter cell wall processes or directly damage said structure cause cell death by stimulating the amplification circuit of the CWI route, which is detected by HTS (High throughput screening) tracking systems.
  • HTS High throughput screening
  • the strain that contains the gene construct is hypersensitive to damage to the wall, due to the amplifying effect of the signal, so it can allow to discover compounds that, being active on that target, are in low concentration or have a reduced potency in the sample to be tested (natural or synthetic products chemistry), so they could not be directly detected as fungal growth inhibitors in a siivestre strain of S. cerevisiae.
  • the possible compounds that would be obtained in a screening with the second bioassay described above (B) as inhibitors of the components of the CWI route are, potentially, inhibitors of similar MAPK pathways in mammalian cells. Since, in this case, the target is not specific to fungi, the compounds selected they can have an antitumor effect since these MAPK routes are essential in the cell proliferation of higher eukaryotic cells, playing a fundamental role in some oncological processes.
  • Another aspect of the invention relates to a kit for the detection of antifungal and / or antitumor compounds that includes the gene constructs, vectors and / or eukaryotic cells of the invention.
  • yeast strains that include this gene construct constitute a simple, easy-to-manipulate, sensitive, specific, safe and very economical system for finding compounds that both alter the fungal wall and modify signaling through MAPK routes. . and therefore with potential antifungal or antitumor activity.
  • Figure 1 Illustrative scheme of the operation of the genetic amplification and feedback circuit of the CWi route mediated by the MAPK Slt2 in the S. cerevisiae yeast. The different components are shown that they participate in this stress response route on the cell wall and the composition of the gene construct of the invention.
  • Figure 2 Sensitivity tests in liquid medium of the strain YEA1 and the wild isogenic BY4741 and mutant Y00993 ⁇ sSt2 ⁇ ), against red With go (represented as "RC"), a cell wall altering compound, using a method of microdilution
  • Figure 3 Recovery tests of the viability in liquid medium in the presence of Congo red of the strain YEA1 and the wild isogenic BY4741 and mutant slt2 ⁇ , after the addition of cercosporamide (represented as "C"), an agent that inhibits signaling to through the CWI route, using a microdilution method.
  • C Cerosporamide
  • Example 1 Construction of plasmid pEA1 that includes the amplification cassette of the signal of the CWI route.
  • the three modules that include the gene construction of the invention were amplified separately and by polymerase chain reaction (PCR). of the corresponding restriction enzymes are indicated by underlined medium):
  • Oiigonucieotide primers MKK1-5 (CCCGTCGACTCGAGATGG CTTCACTGTTCAGACC) were used, characterized by SEQ ID NO: 7, which introduces Sall-Xhol cutting sites at the beginning of the amplified sequence and oligonucleotide MKK1-3 iCCCGTCG ⁇ CTTAATCTTTC CAG characterized by CAG characterized by ID NO: 8, which introduces a site I left at the end of the amplified sequence.
  • Plasmid pNV7W-MKK1 S386P (Watanabe, Y. et al. 1995) was used as a template.
  • Yeast RLM1 encodes a serum response factor-like protein that may function downstream of the Mpk1 (Slt2) mitogen-activated protein kinase pathway. Mol. Ceil Biol. 15, 5740-5749).
  • ADHT5 oiigonucieotide ios CCCCGGATCCGTCGACCCTGAGTAAATAA GCG
  • SEQ ID NO: 9 which introduces BamHi-Sali cutting sites
  • ADHT3B CCCGGG ⁇ C ⁇ CGGTGGTG
  • the gene construct was assembled by tandem subcloning the three modules indicated above, following the sequence EcoRI-pYKL161C-Xho ⁇ -MKK1 S389P -Sall-ADHt-BamH ⁇ , and were introduced as a gene fragment into the integration vector M4386 HO-hisG-URA3-hisG-poly-HO (Voth et al. 2001. Yeast neighbors for integration at the HO locus. Nucleic Acids Res. 29, E59) (accession number AF324729) between the EcoRI and BamHI sites, generating the plasmid pEA1.
  • Example 2 Construction of the recombinant strain yEA1 of S. cerevisiae
  • the gene construction p YKL 161C-MKK1 S386P was integrated into the genome of the strain wild BY4741 (EUROSCARF collection) through its transformation with the fragment Noti-Noft irocedente of! plasmid pEA1, thus targeting the integration to the HO locus of said strain.
  • the lithium acetate method was followed by selecting the transformants in a medium lacking uracil.
  • Example 3 Test of strain yEA1 against altering agents of the cell wall.
  • the assay was performed by culturing a pre-circle of each yeast strain in YPD medium (Yeast Extract-Peptone-Dextrose, common fungal growth medium) to a concentration of 2 x 10 7 cells (equivalent to an OD 600 between 0 , 8 and 1, 2), from which the culture was diluted to an estimated OD 0.01, 75 ⁇ l of this suspension was inoculated in each well of a multi-well plate (96 wells), containing 75 ⁇ l of fresh YPD medium in each well, when Congo red was added at a concentration between 0.0029 and 1.5 ⁇ g / ml, as indicated in Figure 2.
  • the multipocil plates were incubated at 24 ° C for 24 hours, assessing growth.
  • Example 4 Test of the yEA1 strain against signaling inhibitors through the CWI route.
  • Cercosporamide is a commercial inhibitor of the protein kinase Pkc1, the essential component) in signaling via the CW ⁇ pathway. AND! essay was reacted igua! that in e!
  • Example 3 with the exception that a fixed concentration of 0.025 ⁇ g / ml of Congo red was added to all wells to induce the positive feedback genetic circuit resulting in the gene construction of the invention and varying concentrations of cercosporamide, in a range that is not toxic to the wild strain (between 2.5 and 40 ⁇ g / mi); in addition, the same three strains were used as in example 3.
  • the graph of Figure 3 shows, in ordinates, the growth in these conditions of the three strains tested, after 24 hours of incubation at 24 ° C, versus at the concentrations of cercosporamide used, in the abscissa axis.
  • the growth recovery caused by cercosporamide in strain yEA1 from a concentration of 20 ⁇ g / ml is observed, while the isogenic slt2 ⁇ mutant strain did not grow at any of the concentrations tested.
  • Free text from the sequence list ⁇ free text used in the sequence list corresponds in Spanish to the following characteristics:
  • Nucleotides 12 through 17 PspOMl restriction enzyme recognition site.
  • Nucleotides 4 to 9 Sal ⁇ restriction enzyme recognition site.
  • Nucleotides 9 through 14 Xho ⁇ restriction enzyme recognition site
  • Nucleotides 5 to 10 BamH restriction enzyme recognition site.
  • Nucleotides from 1 to 1 a! 16 Sali restriction enzyme recognition site.
  • Nucleotides 1 to 6 EcoRl restriction enzyme recognition site.
  • Nucleotides from 7 to 12 PspOMl restriction enzyme recognition site.
  • Nucleotides from 13 to 1204 promoter of the YKL 161C gene of S. cerevisiae.
  • Nucleotides from 1205 to 1210 Xho restriction enzyme recognition site.
  • Nucleotides from 2744 to 2938 termination region of the ADH1 gene of S. cerevisiae. Nucieotides from 2939 to 2944: BamH1 restriction enzyme recognition site.

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Abstract

La presente invención se refiere a una construcción génica para la amplificación de la respuesta a señales que activan la ruta de integridad celular (CWi) en Saccharomyces cerevisiae. Comprende un alelo hiperactivo de la MAPKK de esta ruta, bajo el control del promotor de un gen inducible por Rlm1 : que implica la creación de un circuito de reíroaíimentación positiva cuya estimulación conduce a la muerte celular. La invención también se refiere a los métodos para detectar agentes que alteren la pared celular o la función de componentes de la propia ruta, lo que permite la detección de compuestos farmacológicos antífúngicos y/o antitumorales.

Description

Título
Construcción génica y métodos para detectar compuestos antifúngicos y antitumoraies
Sector de la Técnica
La presente invención se encuadra en el sector de la industria farmacéutica- biotecnoiógica y, más concretamente, en programas de cribado farmacológico para búsqueda de compuestos con actividad antifúngica o modificadora de la señalización mediada por MAPKs (Mitogen Activaied Protein Kinases).
Estado de la técnica:
La epidemiología de la infección füngica invasiva (IFI) ha cambiado en los últimos 20 años, por lo que hoy día las micosis se consideran enfermedades emergentes. Su incidencia ha aumentado significativamente y la población de riesgo se ha extendido Incluyendo a pacientes con diferentes enfermedades de base tales como los que padecen un cáncer hematológico, ios ingresados en unidades de cuidados intensivos, los trasplantados de órgano sóiido o aquellos que reciben altas dosis de coriicosteroides u otros inmunosupresores (García- Vidal et al., 2013 Pathogenesis of ínvasive fungal infections. Curr. Opin. Infecí, Dis, 26, 270-276), Además, este aumento se ha observado también en otras poblaciones de pacientes mucho más numerosas como son los que sufren enfermedad pulmonar obstructiva crónica. También es relevante el hecho de que la etiología de las micosis invasivas está cambiando. Además de Candida albicans y Aspergiilus fumigatus, se están identificando como agentes causales de IFI otras especies como Candida giahraia, Aspergiilus terreas, Trichosporon asahis, Fusahum spp, Scedosporium spp, Mucorales y dematiaceos. Todas estas especies emergentes tienen la característica común de ser mucho más resistentes a los antifúngicos que C albicans y A. fumigatus, lo que aumenta la mortalidad ya de por sí elevada.
El número actual de antifúngicos efectivos es relativamente reducido y, contrariamente a lo que se podía esperar por analogía con lo que ocurre en el caso de ios fármacos antibacterianos que actúan sobre la pared celular, sólo se ha comercializado hasta eí momento un tipo de compuestos antiíúngicos que actúan sobre esta diana, inhibiendo la síntesis de β-glucano: las equinocandinas (Drew et al., 2013. Recent advances in the treatrnent of life- threatening, invasive funga! infections. Expert. Opin. Pharmacother. 14, 2361 - 2374). Una de las razones de ia escasez de fármacos antifúngicos de este tipo probablemente sea el limitado número de procedimientos de rastreo específicos dirigidos a esta diana, frente a la estrategia clásica de buscar inhibidores del crecimiento fúngico de una forma general. Se han propuesto algunas metodologías enfocadas a la búsqueda de antifúngicos que específicamente actúen sobre ia pared celular, como son ia búsqueda de compuestos inhibidores de GTPasas fúngicas que reguian el proceso de mantenimiento de ía integridad de la pared celular (EP0892854B1), compuestos que puedan inhibir manosil-transferasas (N u O-giícosíiaciones), que son enzimas ausentes en células de mamíferos y esenciales para el mantenimiento de ia pared celular fúngica (ÜS6153376A), o bien inhibidores específicos del producto de genes relacionados con esta estructura y que son esenciales para ia viabilidad fúngica como CaKRES, CaALR1 o CaCdc24 (WO0068420A2). Se han propuesto también estrategias orientadas a la valoración de ia expresión de genes indicadores de ia actividad de la vía de ia gíucán-sintasa, como son los genes SKM1, YPS3, YKL161C (MLP1 ), MET10, etc. (WO2004057033A1 ). Asimismo, se ha propuesto una metodología para identificar compuestos que alteren la pared celular mediante la valoración de la expresión del promotor de uno de estos genes, MLP1, en virtud de que su expresión está regulada por ia ruta de integridad de ia pared celular (CWI, Cell Wall integrity) de forma dependiente de! factor de transcripción Rlm1 , de manera que cuando se induce la ruta, consecuencia de una alteración significativa de la pared celular, este es e! gen cuya expresión más se induce. La fusión de dicho promotor al gen de resistencia a! antibiótico nurseotricina permite detectar ía inducción de la ruta en función de ia resistencia de ia levadura a dicho antibiótico (ES2303452B1 ). Otra de las razones que podrían explicar el bajo número de inhibidores de la biogénesis de la pared celular fungica identificados hasta el momento, podría ser precisamente la existencia dei eficaz mecanismo de salvamento inducido por la ruta CWi ante condiciones que hacen peligrar a esta estructura- Todo tipo de células, desde las procaríóticas más elementales hasta las eucarióticas más complejas, utilizan rutas de íransducción de señales para reconocer el ambiente que las rodea y adaptarse a él, asi como para comunicarse con otras células. De especial relevancia en organismos eucariotas son las rutas en las que intervienen MAPKs (Mitogen Activated Protein Kinases). Estas proteín quinasas regulan procesos esenciales como son la expresión gémca o la traducción, estabilidad y localización de proteínas. No es de extrañar, por tanto, que las MAPKs jueguen un papel esencial en procesos como la embríogénesís, ia proliferación y diferenciación celular, la apoptosís, ia respuesta a estrés, ia movilidad celular, la homeostasis mefabólíca, la inmunidad o la función cardíaca, o que las anormalidades en señalización por MAPKs se asocien con enfermedades humanas como la obesidad, diabetes, desórdenes neurodegenerativos, artritis reumatoide o cáncer (Klm and Choi, 2010. Pathological roles of MAPK sígnaling pathways ín human diseases Biochim. Biophys. Acta. 1802, 398-405).
Estas rutas, conservadas evolutivamente en eucariotas, comparten una cascada de tres proteín quinasas: una MAPK quinase quinasa (MKKK o MEKK), una MAPK kínasa (MKK o MEK) y la propia MAPK, que se fosforilan y activan sucesivamente en condiciones de estimulación. Una vez activadas, las MAPKs fosforilan a su vez a proteínas efectoras, por ejemplo, factores de transcripción, regulando de esta manera la expresión géníca (Yang et al., 2013. MAP kinase signailíng cascadas and transcríptional regulation Gene 513, 1- 13).
En la levadura Saccharomyces cerevisiae, un organismo unicelular eucariótico, operan 5 MAPKs: Fus3, Kss1 , Hogl , Smk1 y Slt2, que definen 5 rutas que regulan el apareamiento, el crecimiento filamentoso, la respuesta a condiciones de estrés osmótico, la formación de las esporas y la integridad celular, respectivamente (Chen and Thorner, 2007. Function and regulation in MAPK signaíing pathways: Lessons íearned from the yeast Saccharomyces cerevisiae. Biochim. Biophys. Acta. 1773, 1311-1340). En respuesta a una agresión a la pared celular de S. cerevisiae, una estructura esencial que la protege y da forma, se produce la estimulación de la ruta mediada por la MAPK Sit2, denominada ruta de integridad de la pared celular (CWI; revisado por Levin en 2005 -Levin, D.E., 2005. Celi wall integrity sígnaiing in Saccharomyces cerevisiae. Microbiol. Mol. Biol, Rev. 69, 262-291-). La activación de esta ruta dispara un mecanismo compensatorio dirigido a mantener la estabilidad de ia pared celular mediante una remodelación de la misma, fundamentalmente a través de un cambio en el patrón de expresión génica, y con ello asegurar la viabilidad celular frente a dicha agresión. La MAPK Slt2 es activada por las MAPKKs redundantes Mkk1 y Mkk2 quienes a su vez son activadas por la MAPKKK Bck1. Bck1 recibe el estímulo de la proteína kinasa C Pkc1 , a su vez activada por ia GTPasa Rho1 en respuesta a la señal detectada por los mecanosensores de membrana Mid2 y Wsc1 ,2,3. Una vez activada, Slt2 fosforita y activa al factor de transcripción Rim1 , que promueve un incremento en ia transcripción de una serie de genes, entre ellos YKL161C (MLP1), CRH1, CWP1, SLT2 o RLM1. Por otro lado, ia pared celular no está presente en células de mamíferos, mientras que esta ruta también está conservada en hongos patógenos, como Candida albicans (Navarro-Garcia, F. et ai, 2001. Signai transduction pathways and cell-wall construction in Candida aibicans. Med. Mycol. 39 Suppl 1, 87-100), Aspergilius fumigatus (May, G.S et ai., 2005. Mitogen activated protein kinases of Aspergilius fumigatus. Med.Mycol. 43 Suppi 1, S83-S86) o Cryptococcus neoformans (Kozubowski, L. et al., 2009. Signaíiing pathways in the pathogenesis of Cryptococcus. Cell Microbiol. 11, 370-380).
En conclusión, es necesario desarrollar nuevos sistemas de búsqueda y estrategias terapéuticas para solventar estos problemas. En esa linea de actuaciones se inciuye la invención aquí presentada, que se orienta a !a utilización de cepas hipersensibles para el rastreo farmacológico de compuestos que específicamente dañen ia pared celular fúngica, o inhiban el mecanismo compensatorio controlado por la ruta CWÍ.
Descripción detaliada de la invención
Construcción génica y métodos para detectar compuestos antifúngicos y antitumorales.
Para obtener un sistema con el que rastrear nuevos fármacos con efecto potencialmente antifúngico, en la presente invención se ha realizado una construcción génica que incluye el gen MKK1 de Saccharomyces cerevisiae modificado mediante una mutación que da iugar a un cambio en el aminoácido 386 de la proteína, de manera que la serina de la secuencia silvestre está sustituida por una proiina, lo que da lugar a una forma hiperactiva de! gen (MKK1 S386P); en la construcción génica, además, dicho gen está precedido por una secuencia promotora inducible por e! factor de transcripción Rlm1 de la rula CWÍ y también se inciuye una secuencia de terminación de la transcripción.
En la presente invención, por "secuencia promotora" se entiende la región de una molécula de ADN a la que se une la ARN polimerasa para iniciar la transcripción y por "secuencia de terminación de la transcripción" se entiende la secuencia de ADN localizada en el extremo de ia porción transcrita, y que causa que la ARN polimerasa termine la transcripción.
Un aspecto de la presente invención se refiere a una construcción génica que comprende los siguientes componentes, en el orden que se indica en la dirección de transcripción de 5' a 3':
- la secuencia promotora de un gen inducible por el factor de transcripción Rim1 de la ruta de integridad ceiular (CWÍ) de Saccharomyces cerevisiae, - una secuencia de DNA cuya expresión da lugar a la proteína Mkk1 de Saccharomyces cerevisiae con una mutación que produce ia modificación del aminoácido S386 por P386 en dicha protelna, denominada Mkk1S386P, según se describe en SEQ ID NO: 3, y
- una secuencia de terminación de ia transcripción.
En esta construcción génica ia distancia entre ei extremo 3' de ia secuencia promotora y el extremo 5' de la secuencia de DNA cuya expresión da lugar a ia proteína Mkk1S388P es menor o íguaí a 18 nucieótidos y ia distancia entre el extremo 3' de ia secuencia de DNA cuya expresión da lugar a la proteína Mkk1S3S6P y el extremo 5" de la secuencia de terminación es menor o igual a 18 nucieótidos. De hecho, en la unión entre dos de ios componentes de la construcción pueden quedar, por ejemplo, nucieótidos de secuencias diana de enzimas de restricción insertadas en la secuencia de uno o varios componentes para facilitar ia unión de los distintos componentes de la construcción, o bien otras secuencias de nucieótidos, siempre que no alteren la funcionaiidad de ia construcción.
En una realización preferida, ia secuencia promotora pertenece al gen YKL161C (MLP1), que se describe en SEQ ID NO:1. Por otro lado, como secuencia de terminación de la transcripción, una realización preferida incluye ia secuencia de terminación ADHt, descrita en SEQ ID NO:4. La reaiización más preferida de la invención, caracterizada por SEQ ID NO: 13, incluye pYKL161C y ADHl.
La sobreexpresión dei aieio de MKK1S386P que codifica una versión hiperactiva de esta MAPKK es letal para ia céiuía. Se ha elaborado una construcción génica que da lugar a un circuito genético de retroaiimentación positiva que conduce a una elevada amplificación de ia señal que se transmite a través de ia ruta CWI de la levadura S. cerevisiae y resulta en letalidad para las células.
La construcción génica objeto de esta invención conduce a una amplificación continua de la señal transmitida por la MAPK Sít2 a través dei factor de transcripción Rlm1. El esquema que incluye una realización preferida de la invención es: pYKL181C-MKK1smP-ADHt, y por tanto comprende los siguientes componentes:
pYKL161C- promotor del gen YKL161C (MLP1), caracterizado por SpQ ID NO: 1 , que presenta una elevada inducción transcripcional en respuesta a daño en pared y a estímulos que activan la ruta CWi.
MKK S3S6P. cauterizado por SEQ ID NO: 2; alelo de MKK1 que codifica una versión hiperactiva de esta MAFKK, cuya sobreexpresión es letal para la célula.
ADHt- región de terminación transcripcionai del gen ADH1, caracterizada por SEQ ID NO: 4.
Otro aspecto de la invención se refiere a vectores en los que se han insertado las posibles construcciones de la invención. Estos vectores, posteriormente, pueden utilizarse para transformar células de S. cerevisiae. Además, las construcciones de la invención pueden integrarse directamente en el genoma de una cepa de S. cerevisiae.
La invención también incluye a la cepa de S. cerevisiae depositada con fecha 23 de septiembre de 2014 en la Colección Española de Cultivos Tipo (CECT), ubicada en el Parque Científico de ía Universidad de Valencia, 46980 Paterna (Valencia), con número de acceso CECT13115 que, internamente, recibe la referencia yEA1.
Tai y como se indica en la figura 1 , en una célula que incluye la construcción génica de la invención, se genera un circuito de amplificación, de retroalimentación positiva, y la estimulación de la ruta supone la activación de la cascada de quinasas hasta SH2, la fosforilación y activación de Rlm1 , la inducción deí promotor YKL161C y ia expresión del alelo hiperactivo correspondiente. Su expresión conduce a una niayor activación de S!t2, por tanto de Rlm1. y por tanto una mayor expresión de YKL161C, generándose un bucle de activación que se retroalimenta positiva y continuadamente mientras se mantenga el estimulo. Ello conlleva una gran amplificación de la señal y, por tanto, una respuesta celular excesiva, Eo que conduce a la muerte de la célula a bajas concentraciones de cualquier agente que altere la pared de 5. cerevisiae. Por tanto, la construcción génica de la invención confiere a las células que la portan una hipersensibilidad a los estímulos que activan la ruta CWI.
Esta invención tiene aplicaciones como sistema biosensor de estímulos externos. Las cepas que incluyen la construcción génica pueden utilizarse para detectar con más facilidad estímulos débiles que activen naturalmente la ruta CWI, debido a su mayor sensibilidad.
La capacidad bíosensora de las cepas fúngicas con la construcción génica que da lugar al circuito amplificador de señal permite su utilización corno herramienta de cribado farmacológico para la identificación de diferentes tipos de fármacos: i) Por una parte, para la búsqueda de antifúngicos.
Con una cepa de levadura que incluya la construcción génica de la invención, que da lugar ai circuito de amplificación en la ruta CWÍ, podemos rastrear 2 tipos de compuestos con actividad antifúngica de una manera muy sencilla y sensible:
(A) compuestos que alteran procesos de ia pared celular o dañan directamente dicha estructura. Estos compuestos provocan la muerte celular al estimular el circuito de amplificación de ia ruta CWI, lo que se detecta mediante sistemas de rastreo HTS (High throughput screening). La cepa que contiene la construcción génica es hipersensible al daño en la pared, debido al efecto amplificador de la señal, por lo que puede permitir descubrir compuestos que, siendo activos sobre esa diana, estén en baja concentración o tengan una potencia reducida en ia muestra a ensayar (productos naturales o de síntesis química), por lo que no podrían ser detectados directamente como inhibidores del crecimiento fúngico en una cepa siivestre de S. cerevisiae.
(B) compuestos que inhiben a componentes de la ruta CWi y, por tanto, ai mecanismo compensatorio que se dispara en condiciones de daño en la pared celular y que permite mantener Ea integridad de esta estructura esencial. Este segundo tipo de compuestos podría potenciar ia acción de otros antifúngicos que actúen directamente sobre Ea pared ceiuiar en terapias combinadas. Estos compuestos se identifican por su capacidad de evitar la muerte celular de las cepas fúngicas que incluyen las construcciones génicas de la invención en condiciones de activación del circuito de amplificación por algún estímulo conocido de la ruta CWE. Eí hecho de que su forma de identificación en el rastreo sea por recuperación de la viabilidad celular, favorece el aislamiento de compuestos con poca toxicidad per se sobre la célula eucariótica. ii) Por otra parte, este bioensayo se puede utilizar en ei rastreo farmacológico para la búsqueda de antitumorales.
Hay que tener en cuenta que tanto las proteínas que operan en las rutas mediadas por MAPKs en Ea ievadura S. cerevisiae, como los mecanismos de activación, las interacciones moleculares que determinan ei reconocimiento y la especificidad de sustratos o Ea localización subceluEar de los componentes, son muy parecidos a los del resto de organismos eucarióticos, incluyendo ios de eucariotas superiores. De hecho, esta conservación estructural y funcional ha hecho posible el uso de S. cerevisiae como modelo experimental de célula eucariótica para la clonación o caracterización de genes humanos que codifican proteínas de señalización. Por tanto, tos posibles compuestos que se obtendrían en un cribado con ei segundo bioensayo anteriormente descrito (B) como inhibidores de Eos componentes de la ruta CWI son, potenciaimente, inhibidores de rutas de MAPKs similares en céEuias de mamífero. Dado que, en este caso, la diana no es especifica de hongos, ios compuestos seleccionados pueden tener efecto antitumoral ya que estas rutas de MAPKs son esenciales en la proliferación celular de células eucarióticas superiores, jugando un papel fundamental en algunos procesos oncológicos.
El desarrollo de bioensayos utilizando este sistema, ya sea mediante el uso de ia construcción génica o mediante el uso de los vectores y/o células que la contienen, tiene una serie de ventajas destacables, como es su fácil adaptabilidad a la tecnología de alto rendimiento (HTS), ya que admite formatos de alta densidad, presenta un sistema de detección muy fácil (medida de crecimiento por espectrometría, frente a otros sistemas basados en genes reporteros que implican medida de actividad enzimática), rapidez en la obtención de resultados, bajo coste (permite el uso de medios de cultivo sencillos no definidos, sin requerimientos nutritivos específicos), etc. Una innovación importante de este sistema es la combinación de una elevada sensibilidad de ias levaduras que portan la construcción génica de la invención con una gran selectividad de acción.
Otro aspecto de la invención se refiere a un kit para la detección de compuestos antifúngicos y/o antitumorales que incluye las construcciones génicas, los vectores y/o las células eucariotas de ia invención.
En conclusión, las cepas de levaduras que incluyen esta construcción génica constituyen un sistema sencillo, fácil de manipular, sensible, específico, seguro y muy económico de búsqueda de compuestos tanto que alteren la pared fúngica como que modifiquen ia señalización a través de rutas de MAPKs. y por tanto con potencial actividad antifúngica o antitumoral.
Descripción de las figuras
Figura 1 : Esquema ilustrativo de la forma de operar del circuito genético de ampíificación y retroalimentación de ia ruta CWi mediada por la MAPK Slt2 en ia levadura S. cerevisiae. Se muestran los distintos componentes que participan en esta ruta de respuesta a estrés sobre ia pared celular y la composición de la construcción génica de la invención.
Figura 2: Ensayos de sensibilidad en medio liquido de ia cepa yEA1 y las isogénicas silvestre BY4741 y muíante Y00993 {sSt2Δ), frente a rojo Con go (representado como "RC"), un compuesto alterante de la pared celular, utilizando un método de microdilución.
Figura 3: Ensayos de recuperación de ia viabilidad en medio líquido en presencia de rojo Congo de ia cepa yEA1 y las isogénicas silvestre BY4741 y muíante slt2Δ, tras la adición de cercosporamida (representada como "C"), un agente que inhibe la señalización a través de la ruta CWI, utilizando un método de microdilución.
Modo de realización de la invención
La presente invención se ilusíra adicionaimente medianíe los siguientes ejemplos, los cuales no pretenden ser limitativos de su alcance
Ejemplo 1 : Construcción del plásmido pEA1 que incluye la cassette de amplificación de ia señal de ia ruta CWI.
Para construir el plásmido pEAl con la cassette de amplificación de la señal de la ruta CWI, se amplificaron por separado y mediante la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) los tres módulos que incluye la construcción génica de la invención (los sitios de corte de las correspondientes enzimas de restricción se indican medianíe subrayado):
- Región promotora del gen YKL161C, utilizando ios oiigonucieóíidos cebadores MLP1 PR5 ÍGCCCGGAATTCGGGCCCACAACAAGAACGT GGGCGATAC), caracterizado por SEQ ID NO: 5, que introduce puntos de corte EcoR/ y PspOMl; y MLP1PR3 (CCCCCTCGAGCATTTAATTG T GAATCTTTC TTCG) , caracterizado por SEQ ID NO: 6, que introduce un punto Xhol. Como molde se utilizó DNA genómico de la cepa S288C de S. cerevisiee.
- Amplificación de la versión hiperactiva del gen MKK1S386P. Se utilizaron ios oiigonucieótidos cebadores MKK1-5 (CCCGTCGACTCGAGATGG CTTCACTGTTCAGACC), caracterizado por SEQ ID NO: 7, que introduce sitios de corte Sall-Xhol al comienzo de la secuencia amplificada y el oligonucíeótido MKK1-3 iCCCGTCG^CTTAATCTTTC CAGCACTTCC), caracterizado por SEQ ID NO:8, que introduce un sitio Salí al final de la secuencia amplificada. Como molde se utilizó el plásmido pNV7W-MKK1S386P (Watanabe, Y. et al. 1995. Yeast RLM1 encodes a serum response factor-like protein that may function downstream of the Mpk1 (Slt2) mitogen-activated protein kinase pathway. Mol. Ceil Biol. 15, 5740-5749).
- Amplificación de la región terminadora del gen ADH1, con ios oiigonucieótidos ADHT5 (CCCCGGATCCGTCGACCCTGAGTAAATAA GCG), caracterizado por SEQ ID NO: 9, que introduce sitios de corte BamHi-Sali, y ADHT3B (CCCCGGG^C^CGGTGGTGGTCAATAAG|, caracterizado por SEQ ID NO: 10, que introduce un sitio de corte BamHI. Como molde se utilizó DNA genómico de la cepa S288C de S. cerevisiae.
A continuación, la construcción génica se ensambló subclonando en tándem los tres módulos indicados anteriormente, siguiendo la secuencia EcoRI- pYKL161C-Xho\-MKK1S389P-Sall-ADHt-BamH\, y se introdujeron como un fragmento génico en el vector de integración M4386 HO-hisG-URA3-hisG-poly- HO (Voth et al. 2001. Yeast vecíors for integration at the HO locus. Nucleic Acids Res. 29, E59) (número de acceso AF324729) entre los sitios EcoRI y BamHI , generándose el plásmido pEA1.
Ejemplo 2: Construcción de la cepa recom binante yEA1 de S. cerevisiae Para construir la cepa recombinante yEA1 de S. cerevisiae, se integró la construcción génica p YKL 161C-MKK1S386P en el genoma de la cepa silvestre BY4741 (colección EUROSCARF) mediante su transformación con ei fragmento Noti-Noft irocedente de! plásmido pEA1 , dirigiéndose por tanto la integración al locus HO de dicha cepa. Para ia transformación, se siguió el método del acetato de litio seleccionando los transformantes en medio carente de uracilo. Se confirmó su integración en ei locus HO mediante ensayos de amplificación por PCR, utilizándose los oligonucieótidos 5'- CTGATATGTCTGAGG-3', caracterizado por SEQ ID NO: 11 , que híbrida en ei gen HO, y 5'-CATTGGAAATTAGGGC'-3, caracterizado por SEQ ID NO: 12, que híbrida en la secuencia de la región promotora del gen YKL161C. Tras la verificación de su integración correcta, se forzó la pérdida dei marcador de selección URA3, presente en la cassette de integración, mediante ei cuitivo en presencia de ácido 5-fluoroorótico, que resulta tóxico para aquellas células portadoras del gen URA3, obteniéndose la cepa yEA1.
Ejemplo 3: Ensayo de la cepa yEA1 frente a agentes alterantes de la pared celular.
A modo de ejemplo de la aplicabilidad de este sistema en la búsqueda de antifúngicos alterantes de la pared celular fúngica, se muestra la inhibición dei crecimiento que provoca ei rojo Congo, una sustancia que se une a ia quitina de ia pared celular e interfiere con ia estabilidad de ia pared celular de la levadura. Los ensayos se realizaron en ía cepa yEA1 , en comparación con ia cepa silvestre BY4741 y con una cepa mutante s¡t2Δ isogénica (la cepa Y00993 de EUROSCARF). El ensayo se realizó mediante el cultivo de un preinóculo de cada cepa de levadura en medio YPD (Yeast Extract-Peptone-Dextrose, medio común de crecimiento de hongos) hasta una concentración de 2 x 107 células (equivalente a una DO600 entre 0,8 y 1 ,2), desde el cual se diluyó ei cultivo hasta una DO estimada 0,01 inoculándose 75 μl de esta suspensión en cada pocilio de una placa multipocilio (96 pocilios), que contenía 75 μl de medio fresco YPD en cada pocilio, ai que se añadió rojo Congo en una concentración comprendida entre 0,0029 y 1 ,5 μg/mi, tal y como se indica en la Figura 2. Las placas multipocilio se incubaron a 24°C durante 24 horas, valorándose ei crecimiento de las tres cepas utilizadas en un lector de placas como absorbencia a 600nM. En eí gráfico de la Figura 2, se muestra el comportamiento en este ensayo de las tres cepas, con e! crecimiento representado en ordenadas y las concentraciones de rojo Congo utilizadas en el eje de abscisas. Se puede observar cómo ía Concentración Mínima Inhibitoria (CMI) de este compuesto sobre ía cepa yEA1 que incluye ia construcción génica de ia invención es menor que sobre ía cepa silvestre BY4741 e, incíuso, que sobre ia cepa delecionada en ei gen SLT2. Ello indica ia eievada sensibilidad de la cepa yEA1 , que porta ia construcción génica aquí descrita.
Ejemplo 4: Ensayo de la cepa yEA1 frente a agentes inhibidores de la señalización a través de la ruta CWI. A modo de ejemplo de la aplicabilidad de este sistema en la búsqueda de compuestos inhibidores de la ruta CWI de hongos, se muestra un ensayo de recuperación dei crecimiento por cercosporamida. La cercosporamida es un inhibidor comercial de ia protein kinasa Pkc1 , componente esencia) en ia señalización a través de ía ruta CWÍ. E! ensayo se reaíizó igua! que en e! ejemplo 3, con ía excepción de que se añadió una concentración fija de 0,025μg/mí de rojo Congo a todos los pocilios para inducir eí circuito genético de retroalimentación positiva a que da lugar ia construcción génica de la invención y concentraciones variables de cercosporamida, en un rango que no resulta tóxico para la cepa silvestre (entre 2,5 y 40 μg/mi); se utilizaron, además, ías mismas tres cepas que en el ejemplo 3. En el gráfico de ia Figura 3 se muestra, en ordenadas, el crecimiento en estas condiciones de las tres cepas ensayadas, tras 24 horas de incubación a 24°C, frente a las concentraciones de cercosporamida utilizadas, en el eje de abscisas. Se observa ia recuperación del crecimiento que provocó la cercosporamida en la cepa yEA1 a partir de una concentración de 20μg/ml, mientras que ia cepa mutante slt2Δ isogénica no creció a ninguna de las concentraciones ensayadas.
Texto libre de la lista de secuencias Εί texto libre utilizado en la lista de secuencias se corresponde en español a las siguientes características:
SEQ ID NO: 5
Secuencia artificial de ADN; cebador basado en YKL161C de Saccharomyces cerevisiae.
Nucleótidos dei 6 al 11: sitio de reconocimiento de la enzima de restricción
EcoR\.
Nucleótidos del 12 al 17: sitio de reconocimiento de la enzima de restricción PspOMl.
SEQ ID NO: 6
Secuencia artificial de ADN; cebador basado en YKL161C de Saccharomyces cerevisiae.
Nucleótidos del 5 al 10: sitio de reconocimiento de la enzima de restricción Xho\ SEQ ID NO: 7
Secuencia artificial de ADN; cebador basado en MKK1 de Saccharomyces cerevisiae
Nucleótidos del 4 al 9: sitio de reconocimiento de la enzima de restricción Sal\. Nucleótidos del 9 al 14: sitio de reconocimiento de la enzima de restricción Xho\
SEQ ID NO: 8
Secuencia artificia! de ADN; cebador basado en MKK1 de Saccharomyces cerevisiae.
Nucleótidos del 4 al 9: sitio de reconocimiento de la enzima de restricción Sañ. SEQ ID NO: 9
Secuencia artificial de ADN; cebador basado en ADH1 de Saccharomyces cerevisiae.
Nucleótidos del 5 al 10: sitio de reconocimiento de la enzima de restricción BamH\. Nucleótidos del 1 1 a! 16: sitio de reconocimiento de ia enzima de restricción Sali.
SEQ ID NO: 10
Secuencia artificial de ADN; cebador basado en ADH1 de Saccharomyces cerevisiae.
Nucleótidos del 6 al 11 : sitio de reconocimiento de la enzima de restricción
BamHl
SEQ ID NO: 11
Cebador basado en el gen HO de Saccharomyces cerevisiae. SEQ ID NO: 12
Cebador basado en ia región promotora del gen YKL161C de Saccharomyces cerevisiae.
SEQ ID NO: 13
Secuencias artificial de ADN; construcción génica que comprende la región promotora del gen YKL161C, el gen MKK1S386P y ia región de terminación dei gen ADH1 de Saccharomyces cerevisiae.
Nucleótidos del 1 al 6: sitio de reconocimiento de ia enzima de restricción EcoRl.
Nucleótidos dei 7 al 12: sitio de reconocimiento de la enzima de restricción PspOMl.
Nucleótidos del 13 al 1204: promotor del gen YKL 161C de S. cerevisiae.
Nucleótidos del 1205 al 1210: sitio de reconocimiento de la enzima de restricción Xho\.
Nucleótidos del 121 1 al 2737: gen MKK1S386P óe S. cerevisiae.
Nucleótidos del 2738 al 2743: sitio de reconocimiento de la enzima de restricción Sa/i.
Nucleótidos del 2744 ai 2938: región de terminación dei gen ADH1 de S. cerevisiae. Nucieótidos del 2939 ai 2944: sitio de reconocimiento de la enzima de restricción BamH1.

Claims

REIVINDICACIONES
1. Construcción génica que comprende los siguientes componentes, en el orden que se indica en la dirección de transcripción de 5' a 3':
- la secuencia promotora de un gen inducible por el factor de transcripción Rim1 de ia ruta de integridad ceiular (CWI) de Saccharomyces cerevisiae,
- una secuencia de DNA cuya expresión da lugar a ía proteína Mkk1 de Saccharomyces cerevisiae con una mutación que produce la modificación dei aminoácido S386 por P386 en dicha proteína, según se describe en SEQ ID NO: 3 y denominada Mkk1S386p, y
- una secuencia de terminación de ía transcripción;
en Ía que Ía distancia entre eí extremo 3' de ia secuencia promotora y el extremo 5' de ia secuencia de DNA cuya expresión da lugar a ía proteina Mkk1S386P es menor o igual a 18 nucieótidos y la distancia entre el extremo 3' de ía secuencia de DNA cuya expresión da iugar a la proteina Mkk1S386P y e! extremo 5' de la secuencia de terminación es menor o igual a 18 nucieótidos.
2. Construcción génica en la que ía secuencia de DNA cuya expresión da iugar a la proteína Mkk1S386P es eí polinucleótido que se describe en SEQ ID NO: 2, denominado MKK1S386P.
3. - Construcción génica según cualquiera de las reivindicaciones 1-2 en la que ia secuencia promotora es la región promotora de! gen YKL161c, caracterizada por SEQ ID NO: 1.
4. Construcción génica según cualquiera de ías reivindicaciones 1-3 en ia que la secuencia de terminación de ia transcripción es ia secuencia de terminación de gen ADH1 de Saccharomyces ceravisiae, caracterizada por SEQ ÍD NO: 4.
5. Construcción génica caracterizada por SEQ ÍD NO: 13.
6. Vector que contiene cualquiera de las construcciones definidas en Eas reivindicaciones 1-5.
7. Célula de S. cerevisiae que contiene el vector definido en la reivindicación 6.
8. Célula recombinante de S. cerevisiae que incluye en su genoma cualquiera de las construcciones definidas en las reivindicaciones 1-5.
9. Cepa de S. cerevisiae depositada en la Colección de Cultivos Tipo (CECT) con el número de acceso CECT13115.
10. Método para detectar compuestos antifúngicos que alteran la pared celular fúngica que incluye Eos siguientes pasos:
a) inocular una cantidad suficiente de una cepa de S. cerevisiae según se define en cualquiera de las reivindicaciones 7-9 en medio de cultivo que contiene, en sucesivos tubos, microtubos o pocilios, concentraciones crecientes de ios productos que se desea evaluar;
b) incubar el medio de cultivo inoculado del paso a);
c) determinar el crecimiento de la cepa inoculada en el paso a);
d) seleccionar el/los producto/s incluido/s en el medio de cultivo del paso a) en el que se detecte menor crecimiento de la cepa de S. cerevisiae definida en las reivindicaciones 7-9 con respecto a una cepa silvestre utilizada como control.
11. Método para detectar compuestos antitumorales o antifúngicos inhibidores de la señalización a través de la ruta CWl que incluye los siguientes pasos: a) inocular una cantidad suficiente de una cepa de S. cerevisiae según se define en cualquiera de las reivindicaciones 7-9 en medio de cultivo que contiene un compuesto que estimula la ruta CWl y, en sucesivos tubos, microtubos o pocilios, concentraciones crecientes de los productos que se desea evaluar;
b) incubar el medio de cultivo inoculado del paso a);
c) determinar el crecimiento de la cepa inoculada en el paso a); d) seleccionar el/los producto/s incluido/s en el medio de cultivo del paso a) en el que se detecte mayor crecimiento de ia cepa de S. cerevisiae definida en lis reivindicaciones 7-9 con respecto a una cepa silvestre utilizada como control.
12. Método según !a reivindicación 11 en ef que el compuesto estimulador de la ruta CWI del paso a) es el Rojo Congo.
13. Uso de la construcción génica, los vectores y/o las células definidas en las reivindicaciones 1-9 en ia detección de compuestos antifúngicos y/o de compuestos antitumoraies.
14. Kit para la detección de compuestos antifúngicos y/o antitumoraies que incluye las construcciones génicas, los vectores y/o las células eucariotas definidas en las reivindicaciones 1-9.
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