WO2015156385A1 - ホウ素化合物を内包および外壁に担持するカーボンナノホーン及びその製造方法 - Google Patents
ホウ素化合物を内包および外壁に担持するカーボンナノホーン及びその製造方法 Download PDFInfo
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Definitions
- the present invention relates to a carbon nanohorn having a boron compound supported on an inner wall and an outer wall and a method for producing the same, and more particularly to a carbon nanohorn having a boron compound supported on an inner wall and an outer wall used for boron neutron capture therapy (BNCT). It relates to a manufacturing method.
- BNCT boron neutron capture therapy
- boron neutron capture therapy In boron neutron capture therapy, boron compounds that are more likely to collect in cancer tissues than normal tissues are taken into cancer cells in advance and irradiated with thermal neutrons with low energy from the outside. This is a technique that favors neutron capture, causes fission at the same time as capture, generates alpha particles, and kills nearby cancer cells with the alpha particles.
- Boron neutron capture therapy requires a boron preparation that has high affinity and selectivity for tumors and that can minimize accumulation and damage to normal tissues.
- Phenylalanine, orthodecaborane, and the like have problems such as insufficient chemical stability and difficulty in increasing the amount accumulated in the tumor, and the effect of boron neutron capture therapy cannot be enhanced.
- Non-Patent Document 1 carbon nanotubes containing BN nanotubes have been reported (see Non-Patent Document 1).
- the non-patent document 1 does not mention use as a preparation for boron neutron capture therapy.
- the diameter of the carbon nanotube is small, it is difficult to increase the amount of inclusion.
- Carbon nanotubes also have the disadvantage that the tubes are agglomerated by van der Waals forces and difficult to disperse.
- the present inventors have selected boron compounds as tumor cells by using carbon nanohorns carrying boron compounds on the inner and outer walls as neutron capture therapy preparations. We have obtained the knowledge that it is possible to increase the tumor accumulation amount of boron.
- a carbon nanohorn characterized in that a boron compound is supported on the inner and outer walls.
- a carbon nanohorn complex wherein the surface of the carbon nanohorn according to [1] or [2] is modified by physically attaching a phospholipid PEG to which an antibody or folic acid is added.
- a carbon nanohorn complex characterized in that antibody-added polyethylene glycol is chemically bonded to the functional group introduced into the carbon nanohorn according to [1] or [2].
- a boron neutron capture therapy preparation comprising the carbon nanohorn according to [1] or [2] or the carbon nanohorn complex according to [5] or [6] as an active ingredient.
- the carbon nanohorn (hereinafter also referred to as “BN-CNH”) carrying the boron compound of the present invention on the inner wall and the outer wall has a carbon nanohorn (hereinafter also referred to as “CNH”) diameter of 2. Since it is as large as ⁇ 5 nm, it contains a large amount of boron compound, and it is possible to increase the tumor accumulation amount of boron. Further, since the specific surface area is 300-400 m 2 / g, a large amount of boron compound can be supported on the outer wall.
- BN-CNH when ammonia borane (H 3 N—BH 3 ) is used as a raw material, BN-CNH can be obtained by changing from ammonia borane to BN by heating, and at that time BN stays inside or outside the CNH. it can.
- CNH since CNH is chemically stable and it is easy to modify its outer wall, the tumor when administered in blood by chemically or physically modifying BN-CNH of the present invention It is possible to increase the amount of storage in Furthermore, CNH used in the present invention has a spherical structure of about 100 nm, and the surface is rich in unevenness, so that it does not agglomerate strongly and is isolated and dispersed in the solution. Accordingly, appropriately surface-modified BN-CNH can realize accumulation in a tumor and enhance the effect of boron neutron capture therapy when administered in vivo.
- Figure (a) showing the number of boron atoms per carbon atom of BN-CNH synthesized at different temperatures, after immersing BN-CNH in each of phosphate buffered saline and cell culture medium for 3 days
- Figures (b, c) showing the amount of boron remaining in BN-CNH as a percentage of the amount of boron before immersion, and the amount of boron in BN-CNH in% when the immersion in PBS was extended to 10 days
- Figure (d) BN-CNH transmission electron micrograph (ad) and BN-CNH electron energy loss spectrum (e), ⁇ in Fig. (E) is inserted BN-CNH electron micrograph The location where the electron energy loss spectrum was measured is shown.
- the present invention is characterized in that a boron compound is supported on an inner wall and an outer wall of a carbon nanohorn.
- the method for producing the carbon nanohorn in the present invention is not particularly limited, and any method such as a CVD method, a laser ablation method, or an arc discharge method may be used.
- the boron compound to be supported on the inner wall and the outer wall of the carbon nanohorn and the method thereof are not particularly limited, and examples thereof include a method in which ammonia borane is used as a raw material and heated together with CNH.
- BN-CNH can be obtained by changing from ammonia borane to BN by heating, and at that time BN stays in the CNH or on the outer wall.
- the chemical reaction formula is as follows. NH 3 BH 3 ⁇ BN + 3H 2
- the BN-CNH of the present invention is chemically added to increase the amount of accumulation in the tumor when administered in blood. Alternatively, it can be physically modified.
- BN-CNH can be accumulated specifically in cancer cells.
- the BN-CNH of the present invention is oxidized to introduce a carboxyl group, and then PEG-COOH is added to the carboxyl group of the obtained BN-CNH by an amide bond, so that BN-CNH-PEG- COOH was obtained, and a small amount of N-hydroxysuccinimide (NHS) and EDC was added to the obtained BN-CNH-PEG-COOH to obtain BN-CNH-PEG-NHS, and then triethylamine and EGF were added.
- BN-CNH-PEG-EGF can be obtained.
- BN-CNH can be specifically accumulated in cancer cells by physically binding PLPEG-FA to the surface of BN-CNH of the present invention.
- PLPEG phospholipid PEG
- FA folic acid
- the resulting PLPEG-FA is physically converted into carbon nanotubes by van der Waals force.
- PLPEG-FA can be obtained according to the present invention by a similar method.
- PEG poly (ethylene glycol) derivatized distearoylphosphatidylethanolamine
- FA folic acid
- PEG-FA folic acid
- BN-CNH was recovered by filtration, and the amount of boron remaining in BN-CNH was measured and estimated by ICP using the method described above.
- the boron content in BN-CNH is expressed as a percentage of the boron content before immersion, it was as shown in FIGS. 1b and 1c, respectively.
- BN—CNH heated at 750 ° C. or higher was considered to have a stable structure.
- BN—CNH heated at 800 ° C. was used for structural evaluation.
- BN-CNH was added to the cell culture solution (2 mL), dispersed for 5 minutes with an ultrasonic cleaner, and allowed to stand for 0 to 10 days. After standing, BN-CNH was recovered by filtration, and the amount of boron remaining in BN-CNH was measured by ICP by the above method and estimated. The amount of boron in BN—CNH is shown in FIG. 1d as a percentage of the amount of boron before immersion. It was found that the amount of boron in BN-CNH was kept at 75-80% of the amount of boron before immersion even after 10 days immersion.
- BN-CNH Transmission electron microscope observation (TEM) and electron energy loss spectroscopy (EELS) measurement
- TEM transmission electron microscope observation
- EELS electron energy loss spectroscopy
- DLS Dynamic light scattering measurement
- the average particle size of BN—CNH shown in b is about 130 nm, which is almost the same as the average particle size of about 120 nm of the original CNH shown in a, and the structure is not greatly changed by the operation of supporting the boron compound on the inner wall and outer wall. It suggests that. Since the average diameter of CNH is known to be about 100 nm by electron microscope observation, it can be seen that BN—CNH dispersed in PBS with PLPEG is dispersed almost alone. This dispersion state was stable for at least several days.
- BN-CNH surface modification In order to accumulate a high concentration of BN-CNH in the tumor, the BN-CNH surface was coated with polyethylene glycol (PEG) to avoid phagocytosis by macrophages, and folic acid (FA) was added to BN-CNH to add BN- CNH is selectively taken up by cancer cells.
- PEG polyethylene glycol
- FA folic acid
- the obtained liquid was put into a dialysis membrane (MWCO 3500), immersed in 2 L of water, and allowed to stand at room temperature. About 1 day later, 2 L of water was replaced five times to remove unreacted PLPEG molecules. The obtained liquid was freeze-dried to obtain PLPEG-FA powder. The structure of PLPEG-FA was confirmed by 1 H NMR.
- PLPEG-FA 4 mg
- BN-CNH 3 mg
- PBS phosphate buffered saline
- the lipid group (alkyl chain) of PLPEG-FA was bonded to the surface of BN-CNH with one-delwal force to synthesize BN-CNH / PLPEG-FA that is selectively taken up by cancer cells.
- BN-CNH / PLPEG (a) and CNH / PLPEG (c) were less uptake into KB cells, but BN-CNH / PLPEG-FA (b) and CNH / PLPEG -FA (d) was taken up in large quantities by KB cells.
- a cell lysate was prepared with a cell lysis reagent, and the amount of protein and the amount of CNH in this solution were measured.
- cell debris was removed and separated from CNH by a centrifuge (1800 ⁇ g, 50 minutes).
- Bradford solution 250 ⁇ L was added to the supernatant cell lysate (10 ⁇ L), and the absorption intensity at a wavelength of 595 nm was measured.
- the amount of BN-CNH taken up by the cells was estimated by measuring the absorption intensity at a wavelength of 700 nm after applying the cell lysate to chip-type sonication for 10 minutes.
- the amount of BN-CNH / PLPEG-FA uptake in cancer cells was calculated from the amount of protein and the amount of CNH by the above operation. The result is shown in FIG. As a result, it was found that BN-CNH can be easily taken up by cancer cells by modifying PLPEG-FA, similar to CNH.
- the BN-CNH of the present invention carries a large amount of boron compound on the inner wall and outer wall, and in particular, the appropriately surface-modified BN-CNH realizes accumulation in a tumor when administered in vivo, and boron Since the effect of neutron capture therapy can be enhanced, it can be used in the pharmaceutical manufacturing industry that provides components useful for boron neutron capture therapy.
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Abstract
本発明は、従来のホウ素中性子捕捉療法に使われているホウ素製剤のホウ素の腫瘍蓄積量が少ないという欠点を解決して、ホウ素の腫瘍蓄積量が多いホウ素製剤を提供することを目的とするものであり、ホウ素化合物を内包するカーボンナノホーン(BN-CNH)を、ホウ素中性子捕捉療法製剤の有効成分とすることにより、ホウ素化合物を腫瘍細胞へ選択的に送達し、ホウ素の腫瘍蓄積量を上げることを可能にする。該BN-CNHは、好ましくは、原料にアンモニアボランを用い、カーボンナノホーンとともに加熱することにより製造される。
Description
本発明は、ホウ素化合物を内包および外壁に担持するカーボンナノホーン及びその製造方法に関し、特に、ホウ素中性子捕捉療法(BNCT:Boron Neutron Capture Therapy)に用いるホウ素化合物を内包および外壁に担持するカーボンナノホーン及びその製造方法に関するものである。
ホウ素中性子捕捉療法は、正常組織よりもがん組織に集合しやすいホウ素化合物を、あらかじめ癌細胞内に取り込ませておき、外部からエネルギーの低い熱中性子線を照射すると、ホウ素の原子核が低速の熱中性子を好んで捕捉し、捕捉と同時に核分裂を起こし、α粒子を発生し、このα粒子で近傍のがん細胞を殺傷させる手法である。
ホウ素中性子捕捉療法では、腫瘍に対して高い親和性と選択性を持ち、かつ正常組織に対する蓄積・損傷を最小限にすることが可能なホウ素製剤が必須であるが、現在使われている、ホウ素フェニルアラニンやオルトデカボランなどでは、化学的安定性が十分でないことや腫瘍への蓄積量を上げることが困難であるなどの問題があり、ホウ素中性子捕捉療法の効果を高めることができない。
近年、ホウ素中性子捕捉療法用製剤の性能向上を目指して多くの研究が進められるようになり、ポルフィリンやフラーレン(特許文献1参照)、あるいはヘテロポリ酸(特許文献2参照)などの化合物中にホウ素を導入した例、リポソーム中にBSHやBPAを導入したもの(特許文献3および4参照)、カルボランのような無機系ホウ素化合物(特許文献5参照)の利用、ポリマーにBPA等を含む化合物を反応させたもの(特許文献6参照)などの複合系を利用しようとする試みも行われている。しかし、これらのいずれの手法も、ホウ素の量を飛躍的に向上することは不可能である。
一方、BNナノチューブを内包したカーボンナノチューブが報告されている(非特許文献1参照)。しかしながら、該非特許文献1には、ホウ素中性子捕捉療法用製剤としての利用については、触れられていない。
また、カーボンナノチューブでは、直径が細いために内包量を上げることが困難である。また、カーボンナノチューブは、チューブ同士がファンデルワールス力で凝集し、分散させることが困難であるという欠点を有する。
また、カーボンナノチューブでは、直径が細いために内包量を上げることが困難である。また、カーボンナノチューブは、チューブ同士がファンデルワールス力で凝集し、分散させることが困難であるという欠点を有する。
Nakanishiet al. Scientific Report, Vol.3, Article No.1385, 2013
前述のとおり、これまでの、ホウ素中性子捕捉療法に使われているホウ素製剤は、腫瘍蓄積量が少ないという欠点を有する。
本発明は、こうした現状を鑑みてなされたものであって、ホウ素の腫瘍蓄積量が多いホウ素製剤を提供することを目的とするものである。
本発明は、こうした現状を鑑みてなされたものであって、ホウ素の腫瘍蓄積量が多いホウ素製剤を提供することを目的とするものである。
本発明者らは、上記目的を達成すべく鋭意研究を重ねた結果、中性子捕捉療法用製剤として、ホウ素化合物を内包および外壁に担持するカーボンナノホーンを用いることにより、ホウ素化合物を腫瘍細胞へ選択的に送達し、ホウ素の腫瘍蓄積量を上げることが可能になるという知見を得た。
本発明はこれらの知見に基づいて完成に至ったものであり、本発明によれば、以下の発明が提供される。
[1]ホウ素化合物が内包及びおよび外壁に担持されていることを特徴とするカーボンナノホーン。
[2]前記ホウ素化合物が、窒化ホウ素であることを特徴とする[1]に記載のカーボンナノホーン。
[3]ホウ素化合物の原料にアンモニアボランを用い、カーボンナノホーンとともに加熱することを特徴とする、ホウ素化合物が内包および外壁に担持されているカーボンナノホーンの製造方法。
[4]750℃以上に加熱することを特徴とする[3]に記載の、ホウ素化合物が内包および外壁に担持されているカーボンナノホーンの製造方法。
[5][1]又は[2]に記載のカーボンナノホーンの表面に、抗体または葉酸を付加させたリン脂質PEGが物理的に付着して表面修飾されていることを特徴とするカーボンナノホーン複合体。
[6][1]又は[2]に記載のカーボンナノホーンに導入された官能基に、抗体付加ポリエチレングリコールが化学結合されていることを特徴とするカーボンナノホーン複合体。
[7][1]又は[2]に記載のカーボンナノホーン或いは[5]又は[6]に記載のカーボンナノホーン複合体を有効成分として含有することを特徴とするホウ素中性子捕捉療法用製剤。
[1]ホウ素化合物が内包及びおよび外壁に担持されていることを特徴とするカーボンナノホーン。
[2]前記ホウ素化合物が、窒化ホウ素であることを特徴とする[1]に記載のカーボンナノホーン。
[3]ホウ素化合物の原料にアンモニアボランを用い、カーボンナノホーンとともに加熱することを特徴とする、ホウ素化合物が内包および外壁に担持されているカーボンナノホーンの製造方法。
[4]750℃以上に加熱することを特徴とする[3]に記載の、ホウ素化合物が内包および外壁に担持されているカーボンナノホーンの製造方法。
[5][1]又は[2]に記載のカーボンナノホーンの表面に、抗体または葉酸を付加させたリン脂質PEGが物理的に付着して表面修飾されていることを特徴とするカーボンナノホーン複合体。
[6][1]又は[2]に記載のカーボンナノホーンに導入された官能基に、抗体付加ポリエチレングリコールが化学結合されていることを特徴とするカーボンナノホーン複合体。
[7][1]又は[2]に記載のカーボンナノホーン或いは[5]又は[6]に記載のカーボンナノホーン複合体を有効成分として含有することを特徴とするホウ素中性子捕捉療法用製剤。
本発明のホウ素化合物を内包および外壁に担持しているカーボンナノホーン(以下、「BN-CNH」ということもある。)は、カーボンナノホーン(以下、「CNH」ということもある。)の直径が2~5nmと大きいために、大量のホウ素化合物を内包しており、ホウ素の腫瘍蓄積量を上げることが可能になる。また、比表面積が300-400m2/gであるため、外壁にも大量のホウ素化合物を担持できる。特に、原料としてアンモニアボラン(H3N-BH3)を用いた場合、加熱によりアンモニアボランからBNへ変化し、その際にBNがCNH内部や外壁にとどまることで、BN-CNHをえることができる。
また、CNHは化学的に安定であって、その外壁を修飾することが容易であるので、本発明のBN-CNHを化学的にあるいは物理的に修飾することにより、血中投与した際の腫瘍での蓄積量を上げることが可能となる。
さらに、本発明に用いるCNHは、100nm程度の球状構造をとっていて、しかも表面は凹凸に富んだ構造をしているため、強く凝集することはなく、溶液中にて孤立分散する。したがって、適切に表面修飾したBN-CNHは、生体内投与した際に、腫瘍への蓄積を実現させ、ホウ素中性子捕捉療法の効果を高めることができる。
また、CNHは化学的に安定であって、その外壁を修飾することが容易であるので、本発明のBN-CNHを化学的にあるいは物理的に修飾することにより、血中投与した際の腫瘍での蓄積量を上げることが可能となる。
さらに、本発明に用いるCNHは、100nm程度の球状構造をとっていて、しかも表面は凹凸に富んだ構造をしているため、強く凝集することはなく、溶液中にて孤立分散する。したがって、適切に表面修飾したBN-CNHは、生体内投与した際に、腫瘍への蓄積を実現させ、ホウ素中性子捕捉療法の効果を高めることができる。
本発明は、カーボンナノホーンにホウ素化合物が内包および外壁に担持されていることを特徴とするものである。
本発明におけるカーボンナノホーンの製造方法は、特に限定されず、CVD法、レーザーアブレーション法、アーク放電法など、いずれの方法であっても構わない。
本発明において、カーボンナノホーンに内包および外壁に担持させるホウ素化合物及びその方法は、特に限定されないが、たとえば、原料にアンモニアボランを用い、CNHとともに加熱する方法があげられる。該方法によれば、加熱によりアンモニアボランからBNへ変化し、その際にBNがCNH内部や外壁にとどまることで、BN-CNHを得ることができる。
ちなみに、化学反応式は、以下のとおりである。
NH3BH3 → BN+3H2
ちなみに、化学反応式は、以下のとおりである。
NH3BH3 → BN+3H2
カーボンナノホーンは化学的に安定であって、その外壁を化学修飾することが容易であるので、血中投与した際に腫瘍での蓄積量を上げるために、本発明のBN-CNHを化学的にあるいは物理的に修飾することができる。
化学的な修飾の一例として、例えば、本発明のBN-CNHに、PEGを介して、がん細胞にその受容体が多数形成されている上皮成長因子(EGF:Epidermal Growth Factor)を結合させることで、BN-CNHをがん細胞に特異的に集積させることができる。
具体的には、本発明のBN-CNHを酸化処理してカルボキシル基を導入した後、得られたBN-CNHのカルボキシル基にアミド結合によりPEG-COOHを付加して、BN-CNH-PEG-COOHを得、得られたBN-CNH-PEG-COOHに、N-ヒドロキシコハク酸イミド(NHS)とEDCを少量加えて、BN-CNH-PEG-NHSを得た後、トリエチルアミンとEGFを加えて、BN-CNH-PEG-EGFを得ることができる。
具体的には、本発明のBN-CNHを酸化処理してカルボキシル基を導入した後、得られたBN-CNHのカルボキシル基にアミド結合によりPEG-COOHを付加して、BN-CNH-PEG-COOHを得、得られたBN-CNH-PEG-COOHに、N-ヒドロキシコハク酸イミド(NHS)とEDCを少量加えて、BN-CNH-PEG-NHSを得た後、トリエチルアミンとEGFを加えて、BN-CNH-PEG-EGFを得ることができる。
また、物理的な修飾の一例として、例えば、本発明のBN-CNHの表面に、PLPEG-FAを物理的に結合させることで、BN-CNHをがん細胞に特異的に集積させることができる。
すなわち、がん細胞には葉酸受容体が多数形成されているため、リン脂質PEG(PLPEG)と葉酸(FA)を反応さて、得られたPLPEG-FAをカーボンナノチューブにファンデルワールス力により物理的に付着させるとカーボンナノチューブががん細胞に集積しやすくなることが示されており(飯泉陽子、博士学理論文、筑波大学、2012年参照)、同様な手法により、PLPEG-FAを、本発明のBN-CNHの表面に物理的に結合させると、BN-CNHをがん細胞に特異的に集積させることが可能となる。
すなわち、がん細胞には葉酸受容体が多数形成されているため、リン脂質PEG(PLPEG)と葉酸(FA)を反応さて、得られたPLPEG-FAをカーボンナノチューブにファンデルワールス力により物理的に付着させるとカーボンナノチューブががん細胞に集積しやすくなることが示されており(飯泉陽子、博士学理論文、筑波大学、2012年参照)、同様な手法により、PLPEG-FAを、本発明のBN-CNHの表面に物理的に結合させると、BN-CNHをがん細胞に特異的に集積させることが可能となる。
以下に、リン脂質PEG(ポリ(エチレングリコール)誘導体化ジステアロイルホスファチジルエタノールアミン、以下、「PLPEG」とする。)、葉酸(FA)、及びその化合物(PLPEG-FA)の分子構造と反応式を示す(前掲論文、図5-9参照)。
以下、本発明を実施例に基づいて説明するが、本発明はこの実施例に限定されるものではない。
(BN-CNHの作製)
CNHは乾燥空気中で室温から500℃まで1℃/minで昇温し、その後放冷して開孔させた。アンモニアボラン1mgと開孔CNH1mgをガラス容器にいれて、4×10-4Paにて2時間真空排気後、ガラス容器の一端を封じ切ってアンプルを得た。
得られた試料入りアンプルを電気炉に入れ、24時間かけて所定の温度(550℃から850℃までの、50℃毎に異なる温度)まで昇温し、24時間保った後、放冷させた。この処理により、BN-CNHを得た。
アンプルを開封して、BN-CNHを取り出し、エタノールで遊離している余剰なホウ素化合物をフィルターろ過することで洗い流した後、構造評価に用いた。
CNHは乾燥空気中で室温から500℃まで1℃/minで昇温し、その後放冷して開孔させた。アンモニアボラン1mgと開孔CNH1mgをガラス容器にいれて、4×10-4Paにて2時間真空排気後、ガラス容器の一端を封じ切ってアンプルを得た。
得られた試料入りアンプルを電気炉に入れ、24時間かけて所定の温度(550℃から850℃までの、50℃毎に異なる温度)まで昇温し、24時間保った後、放冷させた。この処理により、BN-CNHを得た。
アンプルを開封して、BN-CNHを取り出し、エタノールで遊離している余剰なホウ素化合物をフィルターろ過することで洗い流した後、構造評価に用いた。
(誘導結合プラズマ(ICP)発光測定)
各温度で合成したBN-CNHを、それぞれ、1%ドデシルベンゼンスルホン酸ナトリウム水溶液中に0.05mg/mLになるように加え、チップ型ソニケーションで5分間処理し、BN-CNH分散溶液を得た。これをICP発光測定することにより、BN-CNH中のホウ素含有量を定量した。その結果を図1aに示す。
また、BN-CNH(1mg)を、リン酸緩衝生理食塩水(PBS)(2mL)及び細胞培養液(Cell Culture Meddium)(2mL)にそれぞれ加え、超音波洗浄機を用いて5分間分散させた後、3日間静置させた。3日間静置後、濾過によりBN-CNHを回収し、BN-CNHに残っていたホウ素量を上述の方法でICPにて測定して見積もった。BN-CNH中のホウ素量は、浸漬前のホウ素量に対する%で示すと、それぞれ図1b、cのようになった。
図1b、cに示すとおり、750℃以上で加熱処理したBN-CNHが安定した構造をとると考えられたため、以後は、800℃で加熱処理したBN-CNHを構造評価に用いた。
800℃で作製したBN-CNH(1mg)を細胞培養液(2mL)に加え、超音波洗浄機にて5分間分散させた後、0~10日間静置させた。静置後、濾過によりBN-CNHを回収し、BN-CNHに残っていたホウ素量を上述の方法でICPにて測定して見積もった。BN-CNH中のホウ素量は、浸漬前のホウ素量に対する%で示すと図1dのようになった。BN-CNH中のホウ素量は、10日間浸漬でも浸漬前のホウ素量の75-80%に保たれることが分かった。
各温度で合成したBN-CNHを、それぞれ、1%ドデシルベンゼンスルホン酸ナトリウム水溶液中に0.05mg/mLになるように加え、チップ型ソニケーションで5分間処理し、BN-CNH分散溶液を得た。これをICP発光測定することにより、BN-CNH中のホウ素含有量を定量した。その結果を図1aに示す。
また、BN-CNH(1mg)を、リン酸緩衝生理食塩水(PBS)(2mL)及び細胞培養液(Cell Culture Meddium)(2mL)にそれぞれ加え、超音波洗浄機を用いて5分間分散させた後、3日間静置させた。3日間静置後、濾過によりBN-CNHを回収し、BN-CNHに残っていたホウ素量を上述の方法でICPにて測定して見積もった。BN-CNH中のホウ素量は、浸漬前のホウ素量に対する%で示すと、それぞれ図1b、cのようになった。
図1b、cに示すとおり、750℃以上で加熱処理したBN-CNHが安定した構造をとると考えられたため、以後は、800℃で加熱処理したBN-CNHを構造評価に用いた。
800℃で作製したBN-CNH(1mg)を細胞培養液(2mL)に加え、超音波洗浄機にて5分間分散させた後、0~10日間静置させた。静置後、濾過によりBN-CNHを回収し、BN-CNHに残っていたホウ素量を上述の方法でICPにて測定して見積もった。BN-CNH中のホウ素量は、浸漬前のホウ素量に対する%で示すと図1dのようになった。BN-CNH中のホウ素量は、10日間浸漬でも浸漬前のホウ素量の75-80%に保たれることが分かった。
(透過型電子顕微鏡観察(TEM)と電子エネルギー損失分光(EELS)測定)
得られた前記BN-CNHをエタノールに分散させ、TEM観察とEELS測定を行った。
TEM測定の結果を、図2a-dに示す。図2a-dに示すとおり、BN-CNHはCNH個々の擬円筒状構造とその球状集合体形状を維持していた。さらに高倍率で観察してみると、CNHの壁に沿って、壁の内側と外側に層状にBNが合成されていることがわかった。また、CNH内部空間にもBNが存在していることを確認した。BNは六方晶BNとして存在していると推知される。図2eに示すEELSスペクトルには、B、N、及びCによるピークが観察され、B及びNのピーク形状は六方晶BNのものと一致した。
得られた前記BN-CNHをエタノールに分散させ、TEM観察とEELS測定を行った。
TEM測定の結果を、図2a-dに示す。図2a-dに示すとおり、BN-CNHはCNH個々の擬円筒状構造とその球状集合体形状を維持していた。さらに高倍率で観察してみると、CNHの壁に沿って、壁の内側と外側に層状にBNが合成されていることがわかった。また、CNH内部空間にもBNが存在していることを確認した。BNは六方晶BNとして存在していると推知される。図2eに示すEELSスペクトルには、B、N、及びCによるピークが観察され、B及びNのピーク形状は六方晶BNのものと一致した。
(X線光電子分光(XPS)測定)
前記のBN-CNH(1mg)とエタノール(5mL)を混合し、5分間バスソニケーションして得た分散液をSiウエハー上に滴下し、乾燥させた後に、XPS測定を行った。結果を図3に示す。
図3に示すとおり、BN-CNHは、B、C、及びNに帰属されるピークが観察され、それぞれの強度から、B(22%)、C(55%)、N(22%)であることが分かった(%は原子数%)。酸素のピークも見られたが、これは、基盤に用いたSiウエハーの表面のSi酸化物による。
前記のBN-CNH(1mg)とエタノール(5mL)を混合し、5分間バスソニケーションして得た分散液をSiウエハー上に滴下し、乾燥させた後に、XPS測定を行った。結果を図3に示す。
図3に示すとおり、BN-CNHは、B、C、及びNに帰属されるピークが観察され、それぞれの強度から、B(22%)、C(55%)、N(22%)であることが分かった(%は原子数%)。酸素のピークも見られたが、これは、基盤に用いたSiウエハーの表面のSi酸化物による。
(動的光散乱測定(DLS))
前記のBN-CNH(1mg)をPLPEGのリン酸緩衝生理食塩水(PBS)(5mL)に加え、バスソニケーションで、5分間ソニケーションしてBN-CNHを分散させた後に、粒子径をDLSにて測定した。比較のため、同様にして前記の開孔したCNH(1mg)を分散させた後に、粒子径をDLSにて測定した。それぞれの結果を、図4のb、aに示す。
bに示すBN-CNHの平均粒子径は約130nmであり、aに示すもとのCNHの平均粒子径約120nmとほぼ一致し、ホウ素化合物を内包および外壁に担持する操作により構造が大きく変わらなかったことを示唆している。電子顕微鏡観察によりCNHの平均直径が約100nmであることが知られているので、PLPEGでPBS中に分散したBN-CNHはほぼ孤立に分散していることが分かる。また、この分散状態は少なくとも数日間は安定であった。
前記のBN-CNH(1mg)をPLPEGのリン酸緩衝生理食塩水(PBS)(5mL)に加え、バスソニケーションで、5分間ソニケーションしてBN-CNHを分散させた後に、粒子径をDLSにて測定した。比較のため、同様にして前記の開孔したCNH(1mg)を分散させた後に、粒子径をDLSにて測定した。それぞれの結果を、図4のb、aに示す。
bに示すBN-CNHの平均粒子径は約130nmであり、aに示すもとのCNHの平均粒子径約120nmとほぼ一致し、ホウ素化合物を内包および外壁に担持する操作により構造が大きく変わらなかったことを示唆している。電子顕微鏡観察によりCNHの平均直径が約100nmであることが知られているので、PLPEGでPBS中に分散したBN-CNHはほぼ孤立に分散していることが分かる。また、この分散状態は少なくとも数日間は安定であった。
(BN-CNHの表面修飾)
腫瘍へBN-CNHを高濃度蓄積させるために、BN-CNH表面をポリエチレングリコール(PEG)によりコーティングしてマクロファージによる貪食を避け、さらに、葉酸(FA)をBN-CNHに付加して、BN-CNHをがん細胞選択的に取り込ませるようにする。
そのためにまず、FA(1mg)をDMSO(4mL)に溶解させ、この溶液に、PLPEG(200mg)、ピリジン(2mL)、EDC(38mg)を加え、4時間室温にて撹拌した。ロータリーエバポレーターでピリジンを蒸発させた後に水50mLを加えた。得られた液を透析膜(MWCO3500)に入れ、水2L中に浸したのちに室温にて放置した。約1日後に、水2Lを入れ替えるという操作を5回行い、未反応PLPEG分子を除去した。得られた液を凍結乾燥させ、PLPEG-FAの粉末を得た。PLPEG-FAの構造は1H NMRにて確認した。
腫瘍へBN-CNHを高濃度蓄積させるために、BN-CNH表面をポリエチレングリコール(PEG)によりコーティングしてマクロファージによる貪食を避け、さらに、葉酸(FA)をBN-CNHに付加して、BN-CNHをがん細胞選択的に取り込ませるようにする。
そのためにまず、FA(1mg)をDMSO(4mL)に溶解させ、この溶液に、PLPEG(200mg)、ピリジン(2mL)、EDC(38mg)を加え、4時間室温にて撹拌した。ロータリーエバポレーターでピリジンを蒸発させた後に水50mLを加えた。得られた液を透析膜(MWCO3500)に入れ、水2L中に浸したのちに室温にて放置した。約1日後に、水2Lを入れ替えるという操作を5回行い、未反応PLPEG分子を除去した。得られた液を凍結乾燥させ、PLPEG-FAの粉末を得た。PLPEG-FAの構造は1H NMRにて確認した。
得られたPLPEG-FAでBN-CNH表面を修飾するため、PLPEG-FA(4mg)と、前記BN-CNH(3mg)をリン酸緩衝生理食塩水(PBS)(2mL)中にて混合させ、PLPEG-FAの脂質基(アルキル鎖)をBN-CNHの表面にワンデルワール力で結合させ、がん細胞選択的に取り込まれるBN-CNH/PLPEG-FAを合成した。
CNHをPLPEG-FAを用いてPBS中に分散させたもの(CNH/PLPEG-FA)と、[0028]で得られたBN-CNH/PLPEG-FAのPBS分散液における粒子サイズをDLSにて測定した。その結果をそれぞれ、図4のd、cに示す。
dに示すBN-CNH/PLPEG-FAの平均粒子サイズは約130nmであり、上記[0026]と同様、cに示すもとのCNHのサイズとほぼ一致し、FA付加後においても、表面修飾したCNHは単一分散していることがわかる。
dに示すBN-CNH/PLPEG-FAの平均粒子サイズは約130nmであり、上記[0026]と同様、cに示すもとのCNHのサイズとほぼ一致し、FA付加後においても、表面修飾したCNHは単一分散していることがわかる。
(がん細胞のBN-CNH/PLPEG-FA選択的取り込み実験)
ヒト口腔類上皮がん由来の細胞株(KB細胞)を培養し、そこに、PBSに分散させたBN-CNH/PLPEG-FA溶液を、最終濃度10μg/mLになるように添加した。24時間培養後、細胞に取り込まれなかったBN-CNH/PLPEG-FAをPBSで洗い流したあと、共焦点レーザー顕微鏡にて、細胞を観察した。結果を図5a-dに示す。
図5a-dに示すとおり、BN-CNH/PLPEG(a)とCNH/PLPEG(c)は、KB細胞に取り込まれる量が少なかったが、BN-CNH/PLPEG―FA(b)とCNH/PLPEG―FA(d)は、KB細胞に大量に取り込まれていた。
ヒト口腔類上皮がん由来の細胞株(KB細胞)を培養し、そこに、PBSに分散させたBN-CNH/PLPEG-FA溶液を、最終濃度10μg/mLになるように添加した。24時間培養後、細胞に取り込まれなかったBN-CNH/PLPEG-FAをPBSで洗い流したあと、共焦点レーザー顕微鏡にて、細胞を観察した。結果を図5a-dに示す。
図5a-dに示すとおり、BN-CNH/PLPEG(a)とCNH/PLPEG(c)は、KB細胞に取り込まれる量が少なかったが、BN-CNH/PLPEG―FA(b)とCNH/PLPEG―FA(d)は、KB細胞に大量に取り込まれていた。
また、BN-CNH/PLPEG-FAのがん細胞による取り込み量を定量的に評価するため、細胞溶解試薬によって、細胞溶解液を作成し、この溶液中のタンパク質量とCNH量を測定した。タンパク質量は、ブラッドフォード法にて定量するため、遠心分離機(1800xg,50分)によって、細胞片を取り除き、また、CNHから分離した。上澄みの細胞溶解液(10μL)に、ブラッドフォード液(250μL)を加えて、595nmの波長での吸収強度を測定した。さらに、細胞が取り込んだBN-CNH量は、細胞溶解液をチップ型ソニケーションに10分間かけた後、700nmの波長での吸収強度を測定することで濃度を見積もった。以上の操作によるタンパク質量とCNH量から、がん細胞でのBN-CNH/PLPEG-FA取り込み量を算出した。結果を図5eに示す。
その結果、BN-CNHは、CNHと同様に、PLPEG-FAを修飾することによって、がん細胞に取り込まれやすくなることがわかった。
その結果、BN-CNHは、CNHと同様に、PLPEG-FAを修飾することによって、がん細胞に取り込まれやすくなることがわかった。
[0030]と[0031]に記載と同様の実験を、正常細胞FHs173Weを用いて行った。結果を図6a-eに示す。
図6a-eに示すとおり、FAを付加したことによる細胞取り込み量に差は見られず、FAがない場合と同様取り込み量は少なかった。BN-CNH/PLPEG(a)、BN-CNH/PLPEG-FA(b)、CNH/PLPEG(c)、CNH/PLPEG―FA(d)のいずれの場合も、顕微鏡でみた細胞内取り込み量は少なく、また、これら試料の細胞内取り込み量測定結果にも優位な差は認められなかった(e)。
上記[0030]、[0031]に記載の結果と合わせて考察することにより、BN-CNH/PLPEG-FAは、がん細胞選択的に取り込まれるといえる。
図6a-eに示すとおり、FAを付加したことによる細胞取り込み量に差は見られず、FAがない場合と同様取り込み量は少なかった。BN-CNH/PLPEG(a)、BN-CNH/PLPEG-FA(b)、CNH/PLPEG(c)、CNH/PLPEG―FA(d)のいずれの場合も、顕微鏡でみた細胞内取り込み量は少なく、また、これら試料の細胞内取り込み量測定結果にも優位な差は認められなかった(e)。
上記[0030]、[0031]に記載の結果と合わせて考察することにより、BN-CNH/PLPEG-FAは、がん細胞選択的に取り込まれるといえる。
本発明のBN-CNHは、大量のホウ素化合物を内包および外壁に担持しており、特に、適切に表面修飾したBN-CNHは、生体内投与した際に、腫瘍への蓄積を実現させ、ホウ素中性子捕捉療法の効果を高めることができるので、ホウ素中性子捕捉療法に有用な成分を提供する医薬製造業において利用できる。
Claims (7)
- ホウ素化合物が内包および外壁に担持されていることを特徴とするカーボンナノホーン。
- 前記ホウ素化合物が、窒化ホウ素であることを特徴とする請求項1に記載のカーボンナノホーン。
- ホウ素化合物の原料にアンモニアボランを用い、カーボンナノホーンとともに加熱することを特徴とする、ホウ素化合物が内包および外壁に担持されているカーボンナノホーンの製造方法。
- 750℃以上に加熱することを特徴とする請求項3に記載の、ホウ素化合物が内包および外壁に担持されているカーボンナノホーンの製造方法。
- 請求項1又は2に記載のカーボンナノホーンの表面に、抗体または葉酸を付加させたリン脂質PEGが物理的に付着して表面修飾されていることを特徴とするカーボンナノホーン複合体。
- 請求項1又は2に記載のカーボンナノホーンに導入された官能基に、抗体付加ポリエチレングリコールが化学結合されていることを特徴とするカーボンナノホーン複合体。
- 請求項1又は2に記載のカーボンナノホーン或いは請求項5又は6に記載のカーボンナノホーン複合体を有効成分として含有することを特徴とするホウ素中性子捕捉療法用製剤。
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