WO2012165270A1 - 遺伝子ターゲティングベクター、その作製方法及び利用方法 - Google Patents

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    • C12N2830/20—Vector systems having a special element relevant for transcription transcription of more than one cistron

Definitions

  • the present invention relates to a gene targeting vector, a production method thereof and a utilization method.
  • Non-patent Documents 1 and 2 Using the homologous recombination ability of cells, only specific genes on the genome can be destroyed or replaced with artificially introduced DNA fragments (Non-patent Documents 1 and 2). This is called gene targeting. This technique has not only demonstrated tremendous power in individual gene function analysis, but is also expected as an ideal gene therapy method and breed improvement method (Non-patent Document 3). However, the efficiency of gene targeting in general higher animal and plant cells is extremely low, and development of an improved method is desired.
  • An object of the present invention is to provide a gene targeting vector that enables highly efficient gene targeting.
  • Another object of the present invention is to provide a method for producing a gene targeting vector that enables highly efficient gene targeting.
  • Another object of the present invention is to provide a method for producing gene knockout cells using a gene targeting vector that enables highly efficient gene targeting.
  • the present inventor has developed a method that can easily and quickly produce an exon trap type targeting vector by utilizing Invitrogen's MultiSite Gateway system (which does not require restriction enzyme treatment or DNA ligation reaction).
  • primer design when amplifying the homologous region arm by PCR is an important key.
  • the vector thus prepared to human lymphocyte cells, ultrahigh-efficiency gene targeting becomes possible.
  • the expression of the gene on the genome and the expression of the marker gene to be used can be made the same level, so trapping of genes with low expression levels It is expected to be easier than before.
  • the gist of the present invention is as follows.
  • a DNA fragment that is homologous to the 5 ′ upstream region of the target site, a selection marker in which a DNA sequence enabling bicistronic expression is present 5 ′ upstream, and a DNA fragment that is homologous to the 3 ′ downstream region of the target site A method for producing a gene targeting vector, comprising ligation.
  • a gene targeting vector characterized in that a DNA sequence enabling bicistronic expression is present 5 ′ upstream of a selection marker.
  • a method for producing a gene knockout cell comprising introducing a gene mutation into a cell using the gene targeting vector according to any one of (4) to (8).
  • An exon trap type targeting vector can be prepared extremely easily and quickly than before.
  • ultra-high-efficiency gene targeting in human cells has become possible.
  • application to a gene having a low expression level becomes easier. Therefore, it is effective for generalization / efficiency of gene knockout and gene trap in the fields of basic biology, medicine, and agriculture and livestock.
  • This specification includes the contents described in the specification and / or drawings of Japanese Patent Application No. 2011-118564, which is the basis of the priority of the present application.
  • Targeting vector structure (A) Structure of a general substitution targeting vector. When a targeting vector is introduced into a cell and colony formation is performed in the presence of a selected drug, a homologous recombinant in which the target site and the drug resistance gene are recombined and a non-targeted insertion of the targeting vector at random positions on the chromosome. Homologous recombinants are obtained, but the latter accounts for the overwhelming majority. That is, since both homologous recombinants and non-homologous recombinants have drug resistance genes, it is difficult to obtain homologous recombinants only by this drug selection.
  • a suicide gene such as DT-A
  • the non-homologous recombinant is killed by the expression of the suicide gene integrated on the chromosome.
  • the ellipses in the figure represent cells, and the rod-shaped squares therein represent chromosomes.
  • the dark gray region in the chromosome represents the target site, the light gray region in the chromosome and the targeting vector represents the homologous region.
  • the region sandwiched between the arms of the targeting vector represents the drug resistance gene, and the black square region represents DT-A.
  • B An example of the structure of a promoterless targeting vector. Unlike replacement targeting vectors, genes used as positive selection markers do not have their own promoters.
  • Hyg represents hygromycin resistance gene
  • DT-A diphtheria toxin A fragment gene
  • Km r is a kanamycin resistance gene
  • Amp r is an ampicillin resistant gene.
  • the underlined portion in the primer sequence represents each att sequence
  • N represents the template-specific sequence
  • the portion surrounded by a frame represents the recognition sequence for I-SceI.
  • the template-specific sequence should be about 25 nt long.
  • An SA site splice acceptor site is included in the 5 ′ arm.
  • the selection marker has a poly A sequence (pA).
  • Km r is a kanamycin resistance gene
  • Hyg r is hygromycin resistance gene
  • IRES is an IRES sequence
  • 2A is 2A peptide sequence
  • IRES2 is IRES2 sequence
  • Amp r is an ampicillin resistant gene
  • Puro r represents puromycin resistance gene.
  • Various types of selectable markers constructed. A selection marker corresponding to the circle of the vector in FIG. 4 was prepared and made available.
  • Exon X is targeted exon
  • SA is SA site
  • IRES is an IRES sequence
  • Puro r is puromycin resistance gene
  • pA is the poly (A) sequence
  • Hyg r is hygromycin resistance gene
  • IRES2 is IRES2 sequence
  • beta-geo is beta-galactosidase gene a fusion gene of the neomycin resistance gene
  • 2A is 2A peptide sequence
  • EGFP is enhanced green fluorescent protein gene
  • Neo r neomycin resistance gene controllable transcription factor gene by tTA2 s tetracycline
  • P CMV is the CMV promoter
  • Tet-Off Advanced represents a gene expression control system using tetracycline (commercially available from Takara Bio Inc.)
  • P Tight represents a promoter that can be controlled by tetracycline
  • P TRE3G represents a TRE3G promoter
  • mCherry represents a red fluorescent protein gene.
  • Gene targeting is a technology that uses a homologous recombination mechanism to introduce a mutation at an arbitrary position on a chromosome.
  • the frequency of homologous recombination in higher organisms is low, and in general, the frequency of random insertion at different sites is more than 100 times higher than the frequency at which targeting vectors introduced into cells are inserted into target sites. Therefore, it is necessary to devise targeting vectors so that homologous recombinants can be efficiently selected and obtained.
  • the most commonly used replacement targeting vectors are DNA fragments homologous to the 5 ′ upstream region and 3 ′ downstream region of the target site (region to be deleted) (hereinafter referred to as “5 ′ arm” and “3 ′ arm”, respectively).
  • Positive selection markers include hygromycin resistance gene, puromycin resistance gene, neomycin resistance gene, drug resistance genes such as ⁇ -geo (a fusion gene of ⁇ -galactosidase gene and neomycin resistance gene), green fluorescent protein (GFP) gene, enhanced Examples thereof include fluorescent protein genes such as green fluorescent protein (enhanced GFP; EGFP) gene and red fluorescent protein (mCherry) gene, luciferase gene, and the like.
  • GFP green fluorescent protein
  • mCherry red fluorescent protein
  • marker gene expression occurs even when inserted randomly by non-homologous recombination. For this reason, as a device for removing non-homologous recombinants, it is common to add a gene for negative selection outside the arm in the targeting vector. Examples of negative selection genes include suicide genes such as HSV-TK and DT-A.
  • negative selection genes include suicide genes such as HSV-TK and DT-A.
  • a promoterless method including an “exon trap method” using a drug resistance gene (selection marker) having no promoter (FIG. 1B). In this method, the expression of the positive selectable marker gene is turned on when homologous recombination occurs.
  • Multisite Gateway technology (Iiizumi, S, Nomura, Y, So, S, et al. (2006) Simple one-week method to construct gene-targeting vectors: application to production of human knockout cell lines.
  • Biotechniques 41 A method for preparing a substitution targeting vector using 311-316) will be described as an example.
  • a 5 ′ arm having attB4 and attB1 sequences at both ends (corresponding to “a DNA fragment homologous to the 5 ′ upstream region of the target site” in the present invention), pDONR P4-P1R and attB2 sequences 5 'entry by performing BP recombination between the 3' arm with both ends of the attB3 sequence (corresponding to the "DNA fragment homologous to the 3 'downstream region of the target site” in the present invention) and pDONR P2R-P3 Clone and 3 'entry clone are created respectively.
  • the 5 'arm and 3' arm are amplified and obtained by genomic PCR.
  • the reverse primer for 5 'arm amplification should be designed on the exon of the target gene.
  • the SA site is not limited to the SA sequence of the target gene, and other SA sites may be used.
  • 5 'upstream of the hygromycin resistance gene is a DNA sequence that enables bicistronic expression (eg, IRES sequence (internal ribosomal entry site); ribosomal entry site in mRNA; encephalomyocarditis virus (EMCV), etc.), 2A peptide sequence (2A “self-cleaving” peptide; Those asigna virus (TaV), etc.), IRES2, etc.). Since a DNA sequence allowing bicistronic expression exists 5 ′ upstream of the selection marker, gene expression of the selection marker occurs depending on the promoter of the target gene when gene targeting occurs.
  • IRES sequence internal ribosomal entry site
  • ribosomal entry site in mRNA e.g., ribosomal entry site in mRNA
  • EMCV encephalomyocarditis virus
  • 2A peptide sequence 2A “self-cleaving” peptide; Those asigna virus (TaV), etc.
  • the hygromycin resistance gene should be sandwiched between lox71 and loxP.
  • the marker for selection can be removed from the genome by transient expression of Cre after gene targeting.
  • the technique for marker removal is not limited to this. That is, target sequences of other site-specific recombinant enzymes such as lox sequences and FRT sequences can also be used.
  • a splice acceptor site may be introduced into the entry clone pENTR IRES-Hyg.
  • SA site a reverse primer for 5 'arm amplification can be set in the intron (not the exon).
  • the preparation of the targeting vector (specifically, the step of linking the 5 ′ arm, the selection marker and the 3 ′ arm) has been described by taking the case of using the Invitrogen MultiSite Gateway system as an example. It is not limited to. That is, production and use by other molecular biological methods (for example, general methods using restriction enzymes and ligases, In-Fusion PCR PCR Cloning, etc.) are also possible.
  • a vector that can be used as a base for creating a targeting vector by a normal method without using an entry clone that is, the Gateway system
  • a vector in which a DNA fragment and a site for incorporating a DNA fragment homologous to the 3 ′ downstream region of the target site and a linearization site are incorporated may be used.
  • a gene knockout cell can be prepared by introducing a gene mutation into a cell using the gene targeting vector of the present invention.
  • Gene knockout cells can be obtained by known methods (eg, Adachi, N, So, S, Iiizumi, S, et al. (2006) The human pre-B cell line Nalm-6 is highly proficient in gene targeting by homologous recombination. DNA Cell Biol. 25: 19-24; Adachi, N, Nishijima, H, Shibahara, K (2008) Gene targeting using the human Nalm-6 pre-B cell line. BioScience Trends. 2: 169-180; Toyoda, E, Kagaya, S, Cowell, IG, et al.
  • the marker for selection can be removed by introducing a site-specific recombinase expression vector (for example, plasmid pBS185 which is a Cre recombinase expression vector) into cells. Another mutation can be introduced into the cells from which the selectable marker has been removed.
  • a site-specific recombinase expression vector for example, plasmid pBS185 which is a Cre recombinase expression vector
  • Another mutation can be introduced into the cells from which the selectable marker has been removed.
  • cells suitable for gene targeting include, but are not limited to, human Nalm-6 cells, chicken DT40 cells, mouse ES cells and the like.
  • Example 1 Construction of targeting vector ⁇ br/> Things to prepare 1.
  • ExTaq TM polymerase (Takara Bio) 2.
  • PCR primers Take HPRT gene amplification as an example. For 5 'arm amplification (1) HPRT 5'Fw, 5'-GGGG ACAACTTTGTATAGAAAAGTTG CACATCACAGGTACCATATCAGTG -3' (SEQ ID NO: 1); (2) HPRT 5'Rv (set on exon), 5'-GGGG ACTGCTTTTTTGTACAAACTTG CACATCTCGAGCAAGACGTTCAGT -3 '(SEQ ID NO: 2); For 3 'arm (3) HPRT 3'Fw, 5'-GGGG ACAGCTTTCTTGTACAAAGTGG CCTGCAGGATCACATTGTAGCCCTCTGTGTGC -3' (SEQ ID NO: 3); (4) HPRT 3'Rv (I-SceI site to be linearized is added), 5'-GGGG ACAACTTT
  • pENTR IRES-Hyg is a pENTR loxP plasmid (Iiizumi, S, Nomura, Y, So, S, et al. (2006) Simple one-week method to construct gene-targeting vectors: application to production of human knockout cell lines.Biotechniques 41: 311-316) was digested with NotI and then added with lox71, IRES, Hyg, pA, and loxP sequentially. lox71 and loxP were added using synthetic linker DNA.
  • Hyg is pENTR lox-Hyg (Iiizumi, S, Nomura, Y, So, S, et al. (2006) Simple one-week method to construct gene-targeting vectors: application to production of human knockout cell lines. Biotechniques 41: 311 -316). 5.
  • Destination vector pDEST R4-R3 (Invitrogen) 6.
  • LB agar medium containing antibiotics LB agar medium containing 50 ⁇ g / ml kanamycin or 50 ⁇ g / ml ampicillin
  • DNA Cell Biol. 25 PCR was performed using the genomic DNA prepared from 19-24) as a template under the following conditions to obtain an HPRT genomic fragment sandwiched between att sequences. Primers (1) and (2) were used for amplification of the 5 ′ arm, and primers (3) and (4) were used for amplification of the 3 ′ arm.
  • PCR product was purified with a commercially available kit and quantified.
  • 3′-entry clone were prepared by BP recombination reaction (FIG. 2A). The following samples were mixed in a 0.5 ml tube.
  • pDONR P4-P1R or pDONR P2R-P3 50 fmoles PCR amplified 5'-arm or 3'-arm 50 fmoles Total volume 4 ⁇ l (combine with TE solution) 4. 1 ⁇ l of BP clonase II enzyme mix was added to the above reaction mixture and mixed well. 5. Incubate at 25 ° C for 4-5 hours. 6.
  • a targeting vector (pHPRT-IRES-Hyg) was prepared by LR recombination reaction (FIG. 2B). Each sample was mixed in a 0.5 ml tube as described below.
  • the recombinants were plated on LB agar medium containing 50 ⁇ g / ml ampicillin. 17. Ten to twenty ampicillin resistant colonies were isolated and plasmid DNA was extracted by alkaline SDS method. Two to three clones expected to be the target plasmid were selected by agarose gel electrophoresis. These candidate plasmids were digested with appropriate restriction enzymes and then subjected to agarose gel electrophoresis to confirm that they were the target plasmids (ie targeting vectors). 18. Targeting vector was purified with kit and quantified.
  • Protocol 1 The targeting vector was digested with restriction enzyme I-SceI. Each reagent was mixed as follows and incubated at 37 ° C. for 4 hours or more.
  • Targeting vector 50 ⁇ g 10x I-SceI buffer 40 ⁇ l 100x BSA (10 mg / ml) 4 ⁇ l I-SceI 15 unit total volume 400 ⁇ l (combine with sterile water) 2. 40 ⁇ l of 3 M sodium acetate and 0.9 ml of ethanol were added and mixed well. 3. Centrifuged at 15,000 rpm for 5 minutes. 4. Washed 3 times with 0.5 ml 70% ethanol. 5. After the third centrifugation, the supernatant was removed using a sterilized chip in a clean bench and air-dried. 6. TE solution was added to dissolve the DNA (DNA concentration was adjusted to 2-4 ⁇ g / ⁇ l). 7. Incubate at 65 ° C for 15 minutes.
  • Protocol 1 Human Nalm-6 cells (2 ⁇ 10 6 or more) in the logarithmic growth phase were collected in a 50 ml centrifuge tube. 2. Centrifugation was performed at 1,100 rpm for 5 minutes, and the supernatant was gently removed. 3. 100 ⁇ l of Solution T was added to the cell mass and well suspended. 4. Add 2 ⁇ g of the targeting vector, mix well, and transfer the entire amount to a cuvette using the dropper provided. 5. The cuvette was set in an electroporation apparatus (Nucleofector II, Lonza). 6. Program C-005 was executed. 7. The entire volume was immediately transferred to a 60 mm dish containing 6 ml of growth medium. 8. Incubate at 37 ° C for 20-24 hours.
  • Protocol 1 A 2 ⁇ ES medium (2.25 ⁇ ES medium with the 1/4 amount of calf serum added) was prepared and kept warm at 40 ° C. 2. After preparing an agarose medium (adding an equal amount of 0.33% agarose solution to 2 ⁇ ES medium and stirring vigorously), it was kept warm at 40 ° C. until just before use. 3. 1 ml of the transfected cells were dispensed into 90 mm dishes. 4. To each dish was added 40 ⁇ l of the selected drug (100 mg / ml hygromycin). Avoid direct contact with cells. 5. 9 ml of agarose medium kept at 40 ° C. was added to each dish and mixed well. 6. Allowed to stand at room temperature for 20-30 minutes to solidify the agarose. 7. Cultivation was performed at 37 ° C for 2-3 weeks to form colonies.
  • Selection medium medium containing hygromycin B
  • Lysis buffer 20 mM Tris-HCl buffer (pH 8.0), 250 mM sodium chloride, 1% SDS
  • 10 mg / ml proteinase K 100 mg proteinase K dissolved in 10 ml pure water and sterilized by filtration (stored at -20 ° C)
  • Saturated NaCl solution 5.
  • PCR primers (for confirmation of gene targeting; Iiizumi et al. Nucleic Acids Res.
  • Protocol 1 0.5 ml of selective medium was dispensed into 48-well plates. 2. 50-200 colonies were picked using yellow or blue chips and transferred to the selection medium while pipetting well. 3. Incubated at 37 ° C for 2-3 days. 4. Each culture was transferred to a 1.5 ml tube and centrifuged at 3,000-3,500 rpm for 5-10 minutes to collect the cells. 5. After removing the supernatant, 270 ⁇ l lysis buffer and 1 ⁇ l 10 mg / ml proteinase K were added. 6. Incubated overnight at 37 ° C (or 1 hour at 55 ° C). 7. 80 ⁇ l of saturated NaCl solution was added and mixed well. 8. An additional 0.9 ml of ethanol was added and mixed well. 9.
  • a drug resistance gene instead of the hygromycin resistance gene, a puromycin resistance gene or a fusion gene of a ⁇ -galactosidase gene and a neomycin resistance gene was used, and the above operation was repeated to prepare a targeting vector.
  • Example 1 Except that the HPRT gene of Example 1 was replaced with CTIP gene, LIG4 gene, or KU70 gene, a gene targeting vector was prepared by the same operation, linearized, gene introduced, colony formation / isolation and target clone Sorted out. The results are summarized in the table below.
  • the present invention is effective for generalization and efficiency of gene knockouts and gene traps in the fields of basic biology, medicine, and agriculture and livestock.
  • SEQ ID NO: 1 shows the DNA sequence of a forward primer for 5 ′ arm amplification targeting the human HPRT gene.
  • SEQ ID NO: 2 shows the DNA sequence of the reverse primer for 5 ′ arm amplification targeting the human HPRT gene.
  • SEQ ID NO: 3 shows the DNA sequence of the forward primer for 3 ′ arm amplification targeting the human HPRT gene. 5'- GGGG ACAGCTTTCTTGTACAAAGTGG CCTGCAGGATCACATTGTAGCCCTCTGTGTGC -3 ' (Underlined is attB2 array) ⁇ SEQ ID NO: 4> SEQ ID NO: 4 shows the DNA sequence of the reverse primer for 3 ′ arm amplification targeting the human HPRT gene.
  • SEQ ID NO: 5 shows the DNA sequence of a PCR primer (HPRT-F) for confirmation of gene targeting.
  • HPRT-F 5'-TGAGGGCAAAGGATGTGTTACGTG-3 '
  • SEQ ID NO: 6 shows the DNA sequence of PCR primer (HPRT-R) for confirmation of gene targeting.
  • HPRT-R 5'-TTGATGTAATCCAGCAGGTCAGCA-3 '

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Abstract

　効率が高い遺伝子ターゲティングを可能とする遺伝子ターゲティングベクターを提供する。　バイシストロン性発現を可能にするDNA配列が選択用マーカーの5'上流に存在することを特徴とする遺伝子ターゲティングベクター。標的部位の5'上流領域と相同なDNA断片、バイシストロン性発現を可能にするDNA配列が5'上流に存在する選択用マーカー及び標的部位の3'下流領域と相同なDNA断片を連結することを含む、遺伝子ターゲティングベクターを作製する方法。

Description

遺伝子ターゲティングベクター、その作製方法及び利用方法
　本発明は、遺伝子ターゲティングベクター、その作製方法及び利用方法に関する。
　細胞が備えている相同組換え能を利用して、ゲノム上の特定の遺伝子だけを破壊、ないし人為的に導入したDNA断片と置き換えることができる（非特許文献１、２）。これを遺伝子ターゲティングと呼ぶ。この手法は、個々の遺伝子機能解析に絶大な威力を発揮してきただけでなく、理想的な遺伝子治療法や品種改良法としても期待されている（非特許文献３）。しかし、一般的な高等動植物細胞における遺伝子ターゲティングの効率は極めて低く、改良法の開発が望まれている。プロモーターレス型（エクソントラップ型も含む。）のターゲティングベクターを用いることで効率の上昇が見込める（非特許文献４、５）が、汎用されているIRES配列では細胞内での発現レベルの低い遺伝子（プロモーター活性の弱い遺伝子）がトラップされにくいため、改良法の開発が求められていた。
Capecchi, MR (1989) Altering the genome by homologous recombination. Science 244: 1288-1292 Vasquez KM, Marburger K, Intody Z, et al. (2001) Manipulating the mammalian genome by homologous recombination. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 98: 8403-8410 Yanez RJ, Porter AC (1998) Therapeutic gene targeting. Gene Ther 5: 149-159 Bunz F, Dutriaux A, Lengauer C, et al. (1998) Requirement for p53 and p21 to Sustain G2 Arrest After DNA Damage. Science 282: 1497-1501 Adachi N, So S, Iiizumi S, et al. (2006) The human pre-B cell line Nalm-6 is highly proficient in gene targeting by homologous recombination. DNA Cell Biol. 25: 19-24
　本発明は、効率が高い遺伝子ターゲティングを可能とする遺伝子ターゲティングベクターを提供することを目的とする。
　また、本発明は、効率が高い遺伝子ターゲティングを可能とする遺伝子ターゲティングベクターを作製する方法を提供することも目的とする。
　さらに、本発明は、効率が高い遺伝子ターゲティングを可能とする遺伝子ターゲティングベクターを利用して、遺伝子ノックアウト細胞を作製する方法を提供することも目的とする。
　遺伝子ターゲティングの効率が極めて低いという問題点の最大の要因は、細胞に導入したターゲティングベクターがゲノム上のランダムな位置に挿入される反応（ランダム挿入）が高頻度で起こってしまうことにある。しかし、プロモーターレス型のターゲティングベクターを用いることでターゲティング効率の上昇が期待できるため、こうしたベクター、特にエクソントラップ型のターゲティングベクターを簡便迅速に作製できるようになれば、一定の技術革新が見込めるはずである。ただし、IRES配列を使用した場合、ゲノム上の遺伝子の発現レベルに比べ、選別に使用したマーカー遺伝子の発現レベルの方が低くなってしまうため、発現レベルの低い遺伝子をトラップしにくいと考えられている。
　本発明者は、Invitrogen社のMultiSite Gatewayシステム（制限酵素処理やDNA連結反応を必要としない）を利用することで、エクソントラップ型のターゲティングベクターを簡便迅速に作製できる手法を開発した。この方法では、相同領域アームをPCRで増幅する際のプライマー設計が重要な鍵となる。こうして作製したベクターをヒトリンパ球細胞に適用することで、超高効率遺伝子ターゲティングが可能になる。また、2Aペプチド配列を利用したエクソントラッピングによる遺伝子ターゲティングを行うことで、ゲノム上の遺伝子の発現と、使用するマーカー遺伝子の発現を同一レベルにすることができるため、発現レベルの低い遺伝子のトラッピングが従来よりも容易になると期待される。また、こうしたベクターを簡便迅速に構築できる手法も同時に開発した。
　本発明の要旨は以下の通りである。
（１）標的部位の5’上流領域と相同なDNA断片、バイシストロン性発現を可能にするDNA配列が5’上流に存在する選択用マーカー及び標的部位の3’下流領域と相同なDNA断片を連結することを含む、遺伝子ターゲティングベクターを作製する方法。
（２）標的部位の5’上流領域と相同なDNA断片がスプライスアクセプター部位を含む（１）記載の方法。
（３）標的部位の3’下流領域と相同なDNA断片又は標的部位の5’上流領域と相同なDNA断片がリニア化部位を含む（１）又は（２）の方法。
（４）バイシストロン性発現を可能にするDNA配列が選択用マーカーの5’上流に存在することを特徴とする遺伝子ターゲティングベクター。
（５）選択用マーカーがポリＡ配列を持つが、プロモーターを持たない（４）のベタクー。
（６）選択用マーカーが部位特異的組換え酵素の標的配列で挟まれている（４）又は（５）のベクター。
（７）さらにスプライスアクセプター部位が導入されている（４）～（６）のいずれかに記載のベクター。
（８）さらにリニア化部位が導入されている（４）～（７）のいずれかに記載のベクター。
（９）（４）～（８）のいずれかに記載の遺伝子ターゲティングベクターを用いて、細胞に遺伝子変異を導入することを含む、遺伝子ノックアウト細胞を作製する方法。
（１０）遺伝子ターゲティングベクターを作製するために使用する選択用マーカーを含んでいるベクターであって、選択用マーカーの5'上流にバイシストロン性発現を可能にするDNA配列が組み込まれている前記ベクター。
（１１）さらにスプライスアクセプター部位が導入されている（１０）記載のベクター。
（１２）遺伝子ターゲティングベクターを作製するために使用する選択用マーカーを含んでいるベクターであって、標的部位の5’上流領域と相同なDNA断片と標的部位の3’下流領域と相同なDNA断片を組み込むための部位、および、リニア化部位が組み込まれている前記ベクター。
　従来よりも極めて簡便迅速にエクソントラップ型ターゲティングベクターを作製できるようになった。また、ヒト細胞での超高効率遺伝子ターゲティングが可能になった。さらに、ゲノム上での発現レベルの低い遺伝子をトラップしやすくなれば、発現レベルの低い遺伝子への適用が容易になる。よって、基礎生物学分野、医療分野、農畜産分野における遺伝子ノックアウトや遺伝子トラップの汎用化・効率化に有効である。
　本明細書は、本願の優先権の基礎である日本国特許出願、特願2011‐118564の明細書および／または図面に記載される内容を包含する。
ターゲティングベクターの構造。（A）一般的な置換型ターゲティングベクターの構造。ターゲティングベクターを細胞内に導入し、選択薬剤存在下でコロニー形成を行うと、標的部位と薬剤耐性遺伝子が組換わった相同組換え体と、染色体上のランダムな位置にターゲティングベクターが挿入された非相同組換え体が得られるが、後者のほうが圧倒的多数を占める。つまり、相同組換え体および非相同組換え体のいずれも薬剤耐性遺伝子をもつため、この薬剤選別だけでは相同組換え体の取得は困難である。しかし、いずれかのアームの外側にDT-Aなどの自殺遺伝子を付加しておくと、非相同組換え体は染色体上に組込まれた自殺遺伝子の発現によって死滅する。図中の楕円は細胞を、その中の棒状の四角は染色体を表す。染色体中の濃い灰色の領域は標的部位、染色体およびターゲティングベクター中の薄い灰色の領域は相同領域を表す。また、ターゲティングベクターのアームに挟まれた領域は薬剤耐性遺伝子を、黒い四角の領域はDT-Aをそれぞれ表す。（B）プロモーターレス型ターゲティングベクターの構造の一例。置換型ターゲティングベクターとは異なり、ポジティブ選択マーカーとして用いる遺伝子に独自のプロモーターをもたせない。このため、理論上、相同組換えによるターゲティングが起こったときのみ、染色体上の標的遺伝子のプロモーターが使われてマーカー遺伝子の発現がオンとなる。 Multisite Gateway technologyを利用したエクソントラップ型ターゲティングベクター作製の概略。両端にattB配列をもつ5’-アームと3’-アームをPCR増幅したのち、BP組換え反応によって5’-エントリークローンと3’-エントリークローンを作製する（A）。得られた２つのエントリークローンと、pENTR IRES-Hyg、pDEST R4-R3を用いて、LR組換えによりターゲティングベクターを作製する（B）。Hygはハイグロマイシン耐性遺伝子、DT-Aはジフテリア毒素Aフラグメント遺伝子、Kmrはカナマイシン耐性遺伝子、Amprはアンピシリン耐性遺伝子を表す。 アーム増幅のためのPCRの概略とプライマー配列。attB配列で挟むように各アームをPCRで増幅する。プライマー配列中の下線部は各att配列を、Nは鋳型特異的配列、枠で囲った部分はI-SceIの認識配列をそれぞれ示す。鋳型特異的配列は25nt程度の長さにするとよい。 Multisite Gateway technologyを利用したエクソントラップ型ターゲティングベクター作製の概略。SA部位（splice acceptor site：スプライスアクセプター部位）を5'アーム中に含む。また、選択用マーカーがポリA配列（pA）を持つ。Kmrはカナマイシン耐性遺伝子、Hygrはハイグロマイシン耐性遺伝子、βgeorはβガラクトシダーゼ遺伝子とネオマイシン耐性遺伝子の融合遺伝子、IRESはIRES配列、2Aは2Aペプチド配列、IRES2はIRES2配列、Amprはアンピシリン耐性遺伝子、Purorはピューロマイシン耐性遺伝子を表す。 構築した様々な種類の選択用マーカー。図４のベクターの丸のところに相当する選択用マーカーを用意し、利用可能とした。Exon Xは標的エクソン、SAはSA部位、IRESはIRES配列、Purorはピューロマイシン耐性遺伝子、pAはポリA配列、Hygrはハイグロマイシン耐性遺伝子、IRES2はIRES2配列、β-geoはβガラクトシダーゼ遺伝子とネオマイシン耐性遺伝子の融合遺伝子、2Aは2Aペプチド配列、EGFPは強化緑色蛍光タンパク質遺伝子、Neorはネオマイシン耐性遺伝子、tTA2sはテトラサイクリンにより制御可能な転写因子遺伝子、PCMVはCMVプロモーター、Tet-Off Advancedはテトラサイクリンを用いた遺伝子発現制御システム（タカラバイオ株式会社から市販されている）、PTightはテトラサイクリンにより制御可能なプロモーター、PTRE3GはTRE3Gプロモーター、mCherryは赤色蛍光タンパク質遺伝子を表す。
　以下、本発明の実施の形態についてより詳細に説明する。
　遺伝子ターゲティングは、相同組換え機構を利用して、染色体上の任意の位置に変異を入れる技術である。しかし、高等生物における相同組換え頻度は低く、一般に細胞内に導入したターゲティングベクターが標的部位に挿入される頻度に比べ、異なる部位にランダムに挿入される頻度の方が100倍以上高い。そこで、相同組換え体を効率よく選別、取得できるよう、ターゲティングベクターに工夫を施す必要がある。最もよく用いられている置換型ターゲティングベクターは、標的部位（欠失させたい領域）の5’上流領域および3’下流領域と相同なDNA断片（以下、それぞれ「5’アーム」および「3’アーム」とよぶこともある）でポジティブ選択マーカー（本発明における「選択用マーカー」に該当する。）を挟むような構造をもつ（図1A）。ポジティブ選択マーカーとしては、ハイグロマイシン耐性遺伝子、ピューロマイシン耐性遺伝子、ネオマイシン耐性遺伝子、β-geo（βガラクトシダーゼ遺伝子とネオマイシン耐性遺伝子の融合遺伝子）などの薬剤耐性遺伝子、緑色蛍光タンパク質（GFP）遺伝子、強化緑色蛍光タンパク質（enhanced GFP; EGFP）遺伝子、赤色蛍光タンパク質（mCherry）遺伝子などの蛍光タンパク質遺伝子、ルシフェラーゼ遺伝子などが例示される。相同組換えが起こると標的部位がポジティブ選択マーカーと置き換わるため、これを指標として組換え体を選別することができる。ただし、非相同組換えによってランダムに挿入されてもマーカー遺伝子の発現は起こる。このため、非相同組換え体を除去するための工夫として、ターゲティングベクター中のアームの外側にネガティブ選択用の遺伝子を付加しておくのが一般的である。ネガティブ選択用の遺伝子としては、HSV-TK、DT-Aなどの自殺遺伝子などが例示される。別の方法として、プロモーターをもたない薬剤耐性遺伝子（選択マーカー）を用いるプロモーターレス法（「エクソントラップ法」も含む）がある（図1B）。この方法では、相同組換えが起こるとポジティブ選択マーカー遺伝子の発現がオンになる。
　本明細書では、Multisite Gateway technology(Iiizumi, S, Nomura, Y, So, S, et al. (2006) Simple one-week method to construct gene-targeting vectors: application to production of human knockout cell lines. Biotechniques 41: 311-316)を利用した置換型ターゲティングベクターの作製法を例にとって説明する。
　具体的には、まずattB4配列とattB1配列を両端にもつ5’アーム（本発明における「標的部位の5’上流領域と相同なDNA断片」に該当する。）とpDONR P4-P1RおよびattB2配列とattB3配列を両端にもつ3’アーム（本発明における「標的部位の3’下流領域と相同なDNA断片」に該当する。）とpDONR P2R-P3間でBP組換えを行うことにより、5’エントリークローンおよび3’エントリークローンをそれぞれ作製する。（5’アームと3’アームはゲノミックPCRにより増幅、取得しておく。）
　5'アーム増幅用のリバースプライマーは、標的遺伝子のエクソン上に設計しておくとよい。これにより、標的遺伝子上において上流のエクソンから選択用マーカー遺伝子（が挿入されたエクソン）へのナチュラルなスプライシングを可能にするSA部位（splice acceptor site：スプライスアクセプター部位）を5'アーム中に含めることができる。SA部位は、標的遺伝子のSA配列に限定されるわけではなく、他のSA部位を用いてもよい。
　3'アーム増幅用のリバースプライマー（もしくは5'アーム増幅用のフォワードプライマー）に、ベクター直鎖化のための制限酵素サイト（例えば、I-SceI、PmeI、AscI、Swal、PacIなど）（本発明における「リニア化部位」に該当する。）を付加しておくとよい。これにより、直鎖化に使用する制限酵素を決定するためのマッピング実験を省略することができる。
　次に、この二つのエントリークローンと、attL1配列とattL2配列の間にハイグロマイシン耐性遺伝子を導入したpENTR IRES-Hyg、pDEST R4-R3（Invitrogen）との四者間でLR組換えを行う。この２ステップだけで、エクソントラップ型の置換型ターゲティングベクターが完成する（図2）。
　ハイグロマイシン耐性遺伝子（他の選択用マーカーでもよい。）の5'上流には、バイシストロン性発現を可能にするDNA配列（例えば、IRES配列（internal ribosomal entry site ; mRNA内部のリボソーム進入サイト ; encephalomyocarditis virus (EMCV) 由来のものなど）、2Aペプチド配列（2A “self-cleaving” peptide ; Thosea asigna virus (TaV) 由来のものなど）、IRES2など）を付加する。選択用マーカーの5'上流にバイシストロン性発現を可能にするDNA配列が存在するため、遺伝子ターゲティングが起こると標的遺伝子のプロモーターに依存して選択用マーカーの遺伝子発現が起こる。
　ハイグロマイシン耐性遺伝子はlox71とloxPで挟んでおくとよい。これにより、遺伝子ターゲティングの後、Creの一過性発現により、選択用マーカーをゲノム中から除去することができる。ただし、マーカー除去のための手法はこれに限定されない。すなわち、他のlox配列やFRT配列などの部位特異的組換え酵素の標的配列も利用することができる。
　また、エントリークローンpENTR IRES-Hygにスプライスアクセプター部位（SA部位）を導入してもよい。スプライスアクセプター部位を導入することにより、5'アーム増幅用のリバースプライマーを（エクソンではなく）イントロン中に設定できる。
　以上、ターゲティングベクターの作製（具体的には5'アームと選択用マーカーと3'アームを連結するステップ）はInvitrogen社のMultiSite Gatewayシステムを利用する場合を例にとり説明したが、連結方法はこの手法に限定されない。すなわち、その他の分子生物学的方法による作製や利用（たとえば制限酵素やリガーゼを利用した一般的な手法やIn-Fusion PCR Cloningなど）も可能である。エントリークローン（つまりGatewayのシステム）を利用せずに、通常の方法でターゲティングベクターを作製するためのベースとなるようなベクターとしては、選択用マーカーを含み、標的部位の5’上流領域と相同なDNA断片と標的部位の3’下流領域と相同なDNA断片を組み込むための部位、および、リニア化部位が組み込まれているベクターを使用するとよい。
　本発明の遺伝子ターゲティングベクターを用いて、細胞に遺伝子変異を導入することにより、遺伝子ノックアウト細胞を作製することができる。遺伝子ノックアウト細胞は、公知の方法（例えば、Adachi, N, So, S, Iiizumi, S, et al. (2006) The human pre-B cell line Nalm-6 is highly proficient in gene targeting by homologous recombination. DNA Cell Biol. 25: 19-24; Adachi, N, Nishijima, H, Shibahara, K (2008) Gene targeting using the human Nalm-6 pre-B cell line. BioScience Trends. 2: 169-180; Toyoda, E, Kagaya, S, Cowell, IG, et al. (2008) NK314, a topoisomerase II inhibitor that specifically targets the alpha isoform. J. Biol. Chem. 283: 23711-23720）で作製することができる。簡単に説明すると、制限酵素でターゲティングベクターを直鎖化した後、エレクトロポレーション法などの遺伝子導入法により細胞に導入し、細胞を培養し、コロニーを形成させる。次いで、適宜マーカーを利用して、遺伝子変異が導入された細胞を選択する。ホモで遺伝子変異が導入された細胞（ホモ破壊株）を得るには、選択用マーカーを代えて、第２の遺伝子ターゲティングを行うとよい。また、部位特異的組換え酵素発現ベクター（例えば、Cre組換え酵素発現ベクターであるプラスミドpBS185）を細胞に導入することにより、選択用マーカーを除去することができる。選択用マーカーを除去した細胞には、別の変異を導入することができる。遺伝子ターゲティングに適した細胞としては、ヒトNalm-6細胞、ニワトリDT40細胞、マウスES細胞などを例示することができるが、これらに限定されることはない。
　以下、実施例に基づいて本発明を詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
〔実施例１〕
（材料及び方法）
ターゲティングベクターの構築
準備するもの
1. 　　　　　　ExTaqTM ポリメラーゼ（タカラバイオ）
2. 　　　　　　PCRプライマー：　HPRT遺伝子の増幅を例にとる。
　　　　　　　5'アーム増幅用
　　　　　　　(1) HPRT 5'Fw, 5’- GGGGACAACTTTGTATAGAAAAGTTGCACATCACAGGTACCATATCAGTG -3’（配列番号１）; 
　　　　　　　(2) HPRT 5'Rv  (エクソン上に設定する), 5’- GGGGACTGCTTTTTTGTACAAACTTGCACATCTCGAGCAAGACGTTCAGT -3’（配列番号２）; 
　　　　　　　3'アーム用
　　　　　　　(3) HPRT 3'Fw, 5’- GGGGACAGCTTTCTTGTACAAAGTGGCCTGCAGGATCACATTGTAGCCCTCTGTGTGC -3’ （配列番号３）; 
　　　　　　　(4) HPRT 3'Rv  (リニア化部位となるI-SceIサイトを付加しておく), 5’- GGGGACAACTTTGTATAATAAAGTTGCTATATTACCCTGTTATCCCTAGCGTAACTCAGGGTAGAAATGCTACTTCAGGC -3’ （配列番号４） 
3. 　　　　　　MultiSite Gateway（登録商標） Three Fragment Vector Construction Kit（Invitrogen）
4. 　　　　　　薬剤耐性遺伝子が組み込まれたエントリークローン（pENTR IRES-Hyg）
　　　　　　　pENTR IRES-Hygは、pENTR loxPプラスミド（Iiizumi, S, Nomura, Y, So, S, et al. (2006) Simple one-week method to construct gene-targeting vectors: application to production of human knockout cell lines. Biotechniques 41: 311-316）をNotIで消化した後、lox71, IRES, Hyg, pA, loxPを順次付加して作製した。lox71とloxPは合成リンカーDNAを用いて付加した。IRESとpAはpIRESベクター（タカラバイオ；http://catalog.takara-bio.co.jp/product/basic_info.asp?unitid=U100004407）に由来する。HygはpENTR lox-Hyg（Iiizumi, S, Nomura, Y, So, S, et al. (2006) Simple one-week method to construct gene-targeting vectors: application to production of human knockout cell lines. Biotechniques 41: 311-316）に由来する。
5. 　　　　　　デスティネーションベクター (pDEST R4-R3) （Invitrogen）  
6. 　　　　　　抗生物質含有LB寒天培地：50 μg/mlカナマイシンまたは50 μg/mlアンピシリンを含むLB寒天培地
プロトコール
1. 　　　　　　Nalm-6細胞（Adachi, N, So, S, Iiizumi, S, et al. (2006) The human pre-B cell line Nalm-6 is highly proficient in gene targeting by homologous recombination. DNA Cell Biol. 25: 19-24）より調製したゲノムDNAを鋳型として下記の条件でPCRを行い，att配列で挟まれたHPRTゲノム断片を取得した。5’アームの増幅にはプライマー(1)と(2)を、3’アームの増幅にはプライマー(3)と(4)を使用した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
 2. 　　　　　　PCR産物を市販のキットで精製し、定量した。
3. 　　　　　　BP組換え反応により、5’-エントリークローンおよび3’-エントリークローンを作製した（図2A）。下記のサンプルを0.5 mlチューブ内で混合した。
pDONR P4-P1R または pDONR P2R-P3               50 fmoles
PCRで増幅した5’-アームまたは3’-アーム        50 fmoles
全量                                            4 μl（TE溶液であわせる）
4. 　　　　　　1 μlのBPクロナーゼ II酵素ミックスを上記反応液に加え、よく混合した。
5. 　　　　　　25℃で4～5時間インキュベートした。
6. 　　　　　　1 μlの2 μg/μl プロテイナーゼKを加え、よく混合した。
7. 　　　　　　37℃で10分インキュベートした。
8. 　　　　　　5 μlの反応液を50 μlの大腸菌コンピテントセルと混和し、形質転換を行った。回復培養後、組換え体を50 μg/ml カナマイシンを含むLB寒天培地に播いた。
9. 　　　　　　カナマイシン耐性コロニーを10～20個単離し、アルカリSDS法でプラスミドDNAを抽出した。アガロースゲル電気泳動により、目的のプラスミドと予想されるクローンを2～3個選んだ。これらの候補プラスミドを適当な制限酵素で消化したのち、アガロースゲル電気泳動を行い、目的のプラスミドであることを確認した。
10. 　　　　　得られた 5’、 3’ 各エントリークローンを市販のキットで精製し、定量した。
11. 　　　　　LR組換え反応により、ターゲティングベクター（pHPRT-IRES-Hyg）を作製した（図2B）。各サンプルを下記のとおりに0.5 mlチューブ内で混合した。
pDEST R4-R3                               20 fmoles 
5’-エントリークローン                    10 fmoles 
3’-エントリークローン                    10 fmoles 
pENTR IRES-Hyg                            10 fmoles 
全量                                       4 μl（TE溶液であわせる）
12. 　　　　　1 μlのLRクロナーゼプラス酵素ミックスを上記反応液に加え、よく混合した。
13. 　　　　　25℃で16時間インキュベートした。
14. 　　　　　2 μlの2 μg/μl プロテイナーゼKを加え、よく混合した。
15. 　　　　　37℃で10分インキュベートした。
16. 　　　　　5 μlの反応液を50 μlの大腸菌コンピテントセルと混和し、形質転換を行った。回復培養後、組換え体を50 μg/ml アンピシリンを含むLB寒天培地に播いた。
17. 　　　　　アンピシリン耐性コロニーを10～20個単離し、アルカリSDS法でプラスミドDNAを抽出した。アガロースゲル電気泳動により、目的のプラスミドと予想されるクローンを2～3個選んだ。これらの候補プラスミドを適当な制限酵素で消化したのち、アガロースゲル電気泳動を行い、目的のプラスミド（すなわちターゲティングベクター）であることを確認した。
18. 　　　　　ターゲティングベクターをキットで精製し、定量した。
ターゲティングベクターの直鎖化
準備するもの
1. 　　　　　　制限酵素 I-SceI、10x I-SceI反応バッファー、10 mg/ml BSA（New England Biolabs）
2. 　　　　　　PCI：TE飽和フェノール、クロロホルム、イソアミルアルコールを25:24:1の割合で混合したもの（4℃保存）
3. 　　　　　　CI：クロロホルムとイソアミルアルコールを24:1の割合で混合したもの（4℃保存）
4. 　　　　　　3 M 酢酸ナトリウム：酢酸ナトリウム 40.81 gを純水80 mlに溶かしたのち、酢酸でpHを5.2に合わせ、全量を100 mlとしたもの
5. 　　　　　　TE溶液：10 mM トリス塩酸緩衝液（pH 8.0）、0.1 mM EDTA (pH 8.0)（4℃保存）
プロトコール
1. 　　　　　　ターゲティングベクターを制限酵素 I-SceI で消化した。各試薬を下記のとおりに混合し、37℃で4時間以上インキュベートした。
ターゲティングベクター  50 μg 
10x I-SceI バッファー   40 μl 
100x BSA (10 mg/ml)      4 μl 
I-SceI                  15 ユニット
全量                   400 μl（滅菌水であわせる）
2. 　　　　　　40 μlの3 M酢酸ナトリウムと0.9 mlのエタノールを加え、よく混合した。
3. 　　　　　　15,000 rpmで5分遠心した。
4. 　　　　　　0.5 mlの70%エタノールで3回洗浄した。
5. 　　　　　　3回目の遠心後、クリーンベンチ内で滅菌済みチップを使って上清を除去し、風乾した。
6. 　　　　　　TE溶液を加え、DNAを溶解した（DNA濃度が2～4 μg/μlとなるようにした）。
7. 　　　　　　65℃で15分インキュベートした。
エレクトロポレーション法による遺伝子導入
準備するもの
1. 　　　　　　増殖培地：ES培地（日水製薬）に10% 仔ウシ血清（HyClone）と50 μM 2-メルカプトエタノールを加えたもの。湯浴で37℃に保温しておく。
2. 　　　　　　直鎖化したターゲティングベクター
3. 　　　　　　Cell Line Nucleofector Kit T（Lonza）
プロトコール
1. 　　　　　　対数増殖期にあるヒトNalm-6細胞（2×106個以上）を50 ml遠心チューブに回収した。
2. 　　　　　　1,100 rpmで5分遠心し、上清を静かに除いた。
3. 　　　　　　細胞塊にSolution Tを100 μl加え、よく懸濁した。
4. 　　　　　　ターゲティングベクターを2 μg加え、よく混和したのち、付属のスポイトを使って全量をキュベットに移した。
5. 　　　　　　キュベットをエレクトロポレーション装置（Nucleofector II, Lonza）にセットした。
6. 　　　　　　プログラムC-005を実行した。
7. 　　　　　　全量をただちに増殖培地6 mlの入った60 mmディッシュに移した。
8. 　　　　　　37℃で20～24時間培養した。
コロニー形成
準備するもの
1. 　　　　　　2.25×ES培地：下記のとおりに各試薬を順次純水に溶かし、室温でよく撹拌したのち、ろ過滅菌したもの（4℃保存）
粉末ES培地              21.8 g
炭酸水素ナトリウム       4.7 g
L-グルタミン             0.68 g
2-メルカプトエタノール   8.1 μl
全量                  1000 ml（純水であわせる）
2. 　　　　　　仔ウシ血清（HyClone）
3. 　　　　　　0.33% アガロース溶液：LEアガロース（Lonza）0.33 gに純水100 mlを加え、オートクレーブ滅菌する。滅菌後、アガロースが固まらないうちに均一にまぜ、40℃の湯浴で保温しておく。
4. 　　　　　　選択薬剤（100 mg/ml ハイグロマイシンB）：1 gのハイグロマイシンBを純水10 mlに溶かし、ろ過滅菌したもの（4℃保存）
プロトコール
1. 　　　　　　2×ES培地（2.25×ES培地にその1/4量の仔ウシ血清を加えたもの）を調製し、40℃に保温しておいた。
2. 　　　　　　アガロース培地を調製（2×ES培地に等量の0.33 %アガロース溶液を加え、激しく撹拌）したのち、使用直前まで40℃に保温しておいた。
3. 　　　　　　遺伝子導入後の細胞を1 mlずつ90 mmディッシュに分注した。
4. 　　　　　　各ディッシュに40 μlの選択薬剤（100 mg/ml ハイグロマイシン）を加えた。細胞に直接触れないようにした。
5. 　　　　　　40℃に保温しておいたアガロース培地9 mlを各ディッシュに加え、よく混合した。
6. 　　　　　　室温で20～30分間静置し、アガロースを固化させた。
7. 　　　　　　37℃で2～3週間培養し、コロニー形成を行った。
コロニーの単離とターゲットクローンの選別
準備するもの
1. 　　　　　　選択培地（ハイグロマイシンB含有培地）：増殖培地にハイグロマイシンBを0.4 mg/mlとなるよう加えたもの
2. 　　　　　　溶解バッファー：20 mM トリス塩酸緩衝液（pH 8.0）、250 mM 塩化ナトリウム、1% SDS
3. 　　　　　　10 mg/ml プロテイナーゼK：100 mgのプロテイナーゼKを純水10 mlに溶かし、ろ過滅菌したもの（-20℃保存）
4. 　　　　　　飽和NaCl溶液
5. 　　　　　　ExTaqTM ポリメラーゼ
6. 　　　　　　PCRプライマー：　（遺伝子ターゲティングの確認用； Iiizumi et al. Nucleic Acids Res. 2008 Nov;36(19):6333-6342.）
　　　　　　　HPRT-F, 5'-TGAGGGCAAAGGATGTGTTACGTG-3'　（配列番号５）
　　　　　　　HPRT-R, 5'-TTGATGTAATCCAGCAGGTCAGCA-3'　（配列番号６）
プロトコール
1. 　　　　　　選択培地を0.5 mlずつ48ウェルプレートに分注した。
2. 　　　　　　50～200個のコロニーを、イエローチップもしくはブルーチップを使って拾い、よくピペッティングしながら選択培地に移した。
3. 　　　　　　37℃で2～3日培養した。
4. 　　　　　　各培養液を1.5 mlチューブへ移し、3,000～3,500 rpmで5～10分遠心し、細胞を回収した。
5. 　　　　　　上清を除去したのち、270 μlの溶解バッファーと1 μlの10 mg/mlプロテイナーゼKを加えた。
6. 　　　　　　37℃で一晩（または55℃で1時間）インキュベートした。
7. 　　　　　　80 μlの飽和NaCl溶液を加え、よく混合した。
8. 　　　　　　さらに0.9 mlのエタノールを加え、よく混合した。
9. 　　　　　　15,000 rpm、4℃で15分遠心を行った。
10. 　　　　　沈殿を除き、0.5 mlの70%エタノールで洗浄した。
11. 　　　　　沈殿を30～100 μlのTE溶液に溶解させた。
12. 　　　　　調製したゲノムDNAを鋳型として、プライマーHPRT-FとHPRT-Rを用いて下記の反応条件でPCRを行い、ターゲットクローンをスクリーニングした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
 薬剤耐性遺伝子として、ハイグロマイシン耐性遺伝子の代わりに、ピューロマイシン耐性遺伝子又はβガラクトシダーゼ遺伝子とネオマイシン耐性遺伝子の融合遺伝子を用いて、上記の操作を繰り返し、ターゲティングベクターを作製した。
また、バイシストロン性発現を可能にするDNA配列として、IRES配列の代わりに、IRES2配列又は2Aペプチド配列を用いて、上記の操作を繰り返し、ターゲティングベクターを作製した。
（結果）
結果を下記の表にまとめる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
 以上の結果の通り、エクソントラップ型のターゲティングベクターを使用するとヒトNalm-6細胞において従来よりも圧倒的に高い効率で遺伝子ターゲティングを行えることがわかった。
　実施例１のHPRT遺伝子をCTIP遺伝子、LIG4遺伝子、またはKU70遺伝子に代えた以外は、同様の操作により遺伝子ターゲッティングベクターを作製し、直鎖化し、遺伝子導入を行い、コロニー形成・単離とターゲットクローンを選別した。
　結果を下記の表にまとめる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
　IRES、IRES2、または2A配列の下流にPuro、Hygro、Neo、またはβgeoをつなぐことにより、さまざまな薬剤耐性遺伝子ユニットを構築した。2A-Puroについてはその上流に2A-EGFPを付加したものも構築した。また、IRES-Puro、IRES-Neo、IRES-Hygro、2A-Hygroについては、破壊した標的遺伝子の発現をテトラサイクリンにより制御できるようにするため、これに必要な遺伝子ないしプロモーターを付加したベクターを構築した。エクソントラップ型ターゲティングベクターの構築法と構築した選択用ベクターをそれぞれ図４及び５に示す。
　本明細書で引用した全ての刊行物、特許および特許出願をそのまま参考として本明細書にとり入れるものとする。
　本発明は、基礎生物学分野、医療分野、農畜産分野における遺伝子ノックアウトや遺伝子トラップの汎用化・効率化に有効である。
＜配列番号１＞
配列番号１は、ヒトHPRT遺伝子を標的とする5’アーム増幅用のフォワードプライマーのDNA配列を示す。
5’- GGGGACAACTTTGTATAGAAAAGTTGCACATCACAGGTACCATATCAGTG -3’
（下線部はattB4配列である）
＜配列番号２＞
配列番号２は、ヒトHPRT遺伝子を標的とする5’アーム増幅用のリバースプライマーのDNA配列を示す。
5’- GGGGACTGCTTTTTTGTACAAACTTGCACATCTCGAGCAAGACGTTCAGT -3’
（下線部はattB1配列である）
＜配列番号３＞
配列番号３は、ヒトHPRT遺伝子を標的とする3’アーム増幅用のフォワードプライマーのDNA配列を示す。
5’- GGGGACAGCTTTCTTGTACAAAGTGGCCTGCAGGATCACATTGTAGCCCTCTGTGTGC -3’
（下線部はattB2配列である）
＜配列番号４＞
配列番号４は、ヒトHPRT遺伝子を標的とする3’アーム増幅用のリバースプライマーのDNA配列を示す。
5’- GGGGACAACTTTGTATAATAAAGTTGCTATATTACCCTGTTATCCCTAGCGTAACTCAGGGTAGAAATGCTACTTCAGGC -3’
（下線部はattB3配列である）
＜配列番号５＞
配列番号５は、遺伝子ターゲティングの確認用のPCRプライマー(HPRT-F)のDNA配列を示す。
HPRT-F, 5'-TGAGGGCAAAGGATGTGTTACGTG-3'
＜配列番号６＞
配列番号６は、遺伝子ターゲティングの確認用のPCRプライマー(HPRT-R)のDNA配列を示す。
HPRT-R, 5'-TTGATGTAATCCAGCAGGTCAGCA-3'　

Claims (12)

  1. 標的部位の5’上流領域と相同なDNA断片、バイシストロン性発現を可能にするDNA配列が5’上流に存在する選択用マーカー及び標的部位の3’下流領域と相同なDNA断片を連結することを含む、遺伝子ターゲティングベクターを作製する方法。
  2. 標的部位の5’上流領域と相同なDNA断片がスプライスアクセプター部位を含む請求項１記載の方法。
  3. 標的部位の3’下流領域と相同なDNA断片又は標的部位の5’上流領域と相同なDNA断片がリニア化部位を含む請求項１又は２記載の方法。
  4. バイシストロン性発現を可能にするDNA配列が選択用マーカーの5’上流に存在することを特徴とする遺伝子ターゲティングベクター。
  5. 選択用マーカーがポリＡ配列を持つが、プロモーターを持たない請求項４記載のベタクー。
  6. 選択用マーカーが部位特異的組換え酵素の標的配列で挟まれている請求項４又は５記載のベクター。
  7. さらにスプライスアクセプター部位が導入されている請求項４～６のいずれかに記載のベクター。
  8. さらにリニア化部位が導入されている請求項４～７のいずれかに記載のベクター。
  9. 請求項４～８のいずれかに記載の遺伝子ターゲティングベクターを用いて、細胞に遺伝子変異を導入することを含む、遺伝子ノックアウト細胞を作製する方法。
  10. 遺伝子ターゲティングベクターを作製するために使用する選択用マーカーを含んでいるベクターであって、選択用マーカーの5'上流にバイシストロン性発現を可能にするDNA配列が組み込まれている前記ベクター。
  11. さらにスプライスアクセプター部位が導入されている請求項１０記載のベクター。
  12. 遺伝子ターゲティングベクターを作製するために使用する選択用マーカーを含んでいるベクターであって、標的部位の5’上流領域と相同なDNA断片と標的部位の3’下流領域と相同なDNA断片を組み込むための部位、および、リニア化部位が組み込まれている前記ベクター。
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