WO2012067151A1 - Cartilage Acidic Protein 1蛋白質による脳梗塞の検査方法 - Google Patents

Cartilage Acidic Protein 1蛋白質による脳梗塞の検査方法 Download PDF

Info

Publication number
WO2012067151A1
WO2012067151A1 PCT/JP2011/076415 JP2011076415W WO2012067151A1 WO 2012067151 A1 WO2012067151 A1 WO 2012067151A1 JP 2011076415 W JP2011076415 W JP 2011076415W WO 2012067151 A1 WO2012067151 A1 WO 2012067151A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
cerebral infarction
protein
animal
cerebral
test
Prior art date
Application number
PCT/JP2011/076415
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
孝成 北園
正浩 鴨打
哲朗 吾郷
貴弘 桑城
裕 清原
淳 秦
秀人 粟野
輝章 小林
Original Assignee
三菱化学株式会社
国立大学法人九州大学
一般社団法人久山生活習慣病研究所
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 三菱化学株式会社, 国立大学法人九州大学, 一般社団法人久山生活習慣病研究所 filed Critical 三菱化学株式会社
Priority to JP2012544280A priority Critical patent/JPWO2012067151A1/ja
Priority to CN2011800551155A priority patent/CN103210312A/zh
Priority to KR1020137015013A priority patent/KR20140023260A/ko
Priority to EP11841158.6A priority patent/EP2642292A4/en
Publication of WO2012067151A1 publication Critical patent/WO2012067151A1/ja
Priority to US13/895,919 priority patent/US20130252265A1/en

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/68Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving proteins, peptides or amino acids
    • G01N33/6887Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving proteins, peptides or amino acids from muscle, cartilage or connective tissue
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/68Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving proteins, peptides or amino acids
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/15Medicinal preparations ; Physical properties thereof, e.g. dissolubility
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2800/00Detection or diagnosis of diseases
    • G01N2800/28Neurological disorders
    • G01N2800/2871Cerebrovascular disorders, e.g. stroke, cerebral infarct, cerebral haemorrhage, transient ischemic event

Definitions

  • the present invention relates to a method for examining cerebral infarction, a method for evaluating cerebral infarction treatment or prevention effect, a method for screening for cerebral infarction preventive or therapeutic agent, and cerebral infarction examination, cerebral infarction treatment effect evaluation or cerebral infarction prevention / treatment.
  • the present invention relates to a drug candidate compound screening kit.
  • Stroke is a general term for cerebrovascular disorders such as cerebral infarction, cerebral hemorrhage, and subarachnoid hemorrhage. Of these stroke types, cerebral infarction has been relatively increasing recently.
  • Thrombolytic therapy, anticoagulant therapy, antiplatelet therapy, administration of cerebral protective drugs, etc. are used as drug therapy in the acute phase of cerebral infarction.
  • Surgical surgery is performed for patients with severe or hemorrhagic cerebral infarction. Is done. Cerebral infarction symptoms are strongest in the acute phase and then gradually improve. This is because the necrotic brain tissue is swollen and the surrounding brain tissue is also compressed and damaged. As the swelling subsides, the surrounding tissues recover their function and the symptoms are fixed.
  • free radicals released from cerebral ischemic sites have the function of necrosing surrounding tissues, continuous treatment is required to improve the functional prognosis even after the acute phase.
  • the clinical types of cerebral infarction include lacunar infarction that develops when the intracerebral small artery is occluded, atherothrombotic cerebral infarction that develops when the intracerebral aorta is occluded by atheroma, and a thrombus in the heart becomes an obturator.
  • Examples include cardiogenic cerebral embolism that develops by blocking an artery. Since appropriate treatment methods for the acute and chronic phases differ depending on these clinical types, a method for rapidly diagnosing the clinical type of patients with cerebral infarction has been demanded.
  • As a method of classifying clinical types of cerebral infarction clinical symptom observation and echocardiography, MRI, MRA, cervical vascular echo, etc.
  • Non-patent Document 1 a flowchart of clinical diagnosis of cerebral infarction based on TOAST classification (Non-patent Document 1), etc.
  • molecular markers such as CRP, D-Dimer, RAGE, MMP-9, S100B, BNP within 24 hours of cerebral infarction
  • BNP a specific cutoff value
  • Non-patent Document 2 There was a need for molecular markers that could be diagnosed.
  • the prognosis of cerebral infarction is to evaluate the degree of movement disorder in daily life by the modified Rankin Scale (Non-patent Document 3) or Barthel Index (Non-patent Document 4) between 3 months or 1 year after onset. It is judged by. Predicting the prognosis in advance is important for early determination of a treatment method for cerebral infarction. Although it has been disclosed that death can be predicted by setting a specific cutoff value with BNP in plasma measured at the time of admission (Non-patent Document 5), a molecular marker for predicting the degree of injury when alive is required. It was.
  • the degree of cerebral infarction is assessed by the National Institute of Health Stroke Scale (NIHSS) between immediately after the onset of cerebral infarction and 3 months after the onset of cerebral infarction. It is judged by.
  • NIHSS National Institute of Health Stroke Scale
  • cerebral infarction worsens during hospitalization, it is possible to confirm whether it is progressive cerebral infarction by observing changes in NIHSS. Since progressive cerebral infarction often has a poor prognosis, it is important to predict treatment early and enhance treatment. However, a method for predicting progressive cerebral infarction has not been established, and a molecular marker to be predicted has been demanded.
  • Patent Document 1 describes the use of Cartilage Acidic Protein 1 as a marker for cardiovascular disease, blood disease, neurological disease, respiratory disease, gastrointestinal disease and urological disease. However, there is no specific data showing that Cartilage Acidic Protein 1 can be used for diagnosis of these diseases, only showing that the expression level of Cartilage Acidic Protein 1 is high in ischemia / myocardial infarction model animals.
  • the present invention has an object to provide a method for quickly and surely inspecting cerebral infarction using serum or plasma of patients with cerebral infarction and the like, and a method for evaluating cerebral infarction treatment effects. To do.
  • Cartilage Acidic Protein 1 protein in the plasma of patients with normal or different concentrations in the plasma of patients with different disease types and prognoses.
  • the present inventors have found that the amount of Cartilage Acidic Protein 1 protein is a useful index for examination of cerebral infarction, and have completed the present invention.
  • the gist of the present invention is as follows. [1] It includes a step of measuring the amount of Cartilage Acidic Protein 1 protein in a blood sample collected from a test animal, and it is determined that the brain is infarcted when the amount of the protein is lower than that of a healthy subject A test method for diagnosing cerebral infarction in the animal. [2] The blood sample collected from the test animal is collected from the test animal at any time between the onset of cerebral infarction-like symptoms and the 20th day after the onset. [1] The examination method for diagnosis of cerebral infarction according to [1]. [3] A test method for diagnosing cerebral infarction in an animal, comprising measuring the amount of Cartilage Acidic Protein 1 protein in a blood sample collected from the test animal.
  • [4] Disease type diagnosis diagnoses either lacunar infarction, atherothrombotic, cardiogenic cerebral embolism, aortic cerebral embolism, Branch atheromatous disease (BAD), arterial dissection, or unclassifiable The inspection method according to [3].
  • a test method for predicting the prognosis of cerebral infarction in the animal comprising a step of measuring the amount of Cartilage Acidic Protein 1 protein in a blood sample collected from the test animal.
  • a test method for predicting the progression of cerebral infarction in an animal comprising measuring the amount of Cartilage Acidic Protein 1 protein in a blood sample collected from the subject animal. [8] The prediction of the progression of cerebral infarction according to [7], wherein the blood sample collected from the test animal is collected from the test animal on the seventh day of the onset of cerebral infarction. Inspection method for. [9] Measuring the amount of Cartilage Acidic Protein 1 protein in a blood sample collected from an animal in need of prevention or treatment of cerebral infarction administered with a cerebral infarction preventive or therapeutic agent For evaluating the effect of preventing or treating cerebral infarction in Japan.
  • a prophylactic or therapeutic agent for cerebral infarction comprising a step of contacting a subject with a candidate compound for a prophylactic or therapeutic agent for cerebral infarction and then measuring the amount of Cartilage Acidic Protein 1 protein in the subject Screening method.
  • a kit for screening for cerebral infarction examination, cerebral infarction therapeutic effect, or screening for candidate compounds for preventing or treating cerebral infarction comprising a reagent capable of measuring the amount of Cartilage Acidic Protein 1 protein.
  • Cartilage Acidic ⁇ Protein 1 protein whose plasma concentration in patients with cerebral infarction is different from that in plasma of healthy subjects or patients with different types of disease, prognosis, or progression is a molecular marker for cerebral infarction examination (This may be referred to herein as “CRTAC1 protein marker”).
  • CRTAC1 protein marker By using the CRTAC1 protein marker alone or in combination with other cerebral infarction molecular markers, it becomes possible to quickly and reliably diagnose cerebral infarction, or to classify the cerebral infarction and predict the prognosis.
  • the first of the present invention is a method for examining cerebral infarction in an animal, comprising a step of measuring the amount of Cartilage Acidic Protein 1 protein in a blood sample collected from the subject animal.
  • Cerebral infarction is a disease in which the cerebral artery is blocked by a thrombus or embolus and becomes ischemic, and the brain tissue is necrotized and damaged, and a lacunar infarction that develops due to blocking of a small intracerebral artery.
  • Aortic cerebral embolism which is an embolism that develops when the obturator dissociates from the atherosclerotic lesion and occludes the intracerebral artery, and a plaque formed in the main artery obstructs the entrance of the penetrating branch “Branch atheromatous disease” (hereinafter sometimes referred to as “BAD”), an infarction of the penetrating branch region that occurs, arterial dissection where the intima of the cerebral blood vessel is damaged and blood enters the arterial wall and occludes the cerebral blood vessel Any of these are included.
  • cerebral infarction includes any of acute phase, subacute phase, recovery phase (chronic phase) and the like.
  • Cartilage Acidic Protein 1 protein (hereinafter sometimes referred to as “CRTAC1 protein”) means Cartilage Acidic Protein 1 protein, which is a target for measuring the content in a blood sample in the test method of the present invention. Any protein can be used as long as it is derived from a test animal. Specific examples of human-derived proteins include proteins represented by the specific amino acid sequences described below. Furthermore, fragments, derivatives, and mutants of proteins having the same functions as these are also included.
  • the “test animal” may be any animal that may cause cerebral infarction, and specifically includes rodents such as humans, monkeys, and rats.
  • the method for examining cerebral infarction of the present invention is particularly preferably performed in humans suspected of having cerebral infarction, humans after onset of cerebral infarction, or the like.
  • the “blood sample” collected from the test animal is not particularly limited as long as it contains CRTAC1 protein and can measure the concentration thereof.
  • EDTA plasma, citrate plasma, etc. any of plasma, serum, and whole blood may be used, but among these, EDTA plasma is preferably used because it can be easily collected, easily stored, and collected in a large amount.
  • the timing for collecting the blood sample from the test animal may be any timing as long as the diagnosis of cerebral infarction is performed. Since cerebral infarction changes in symptoms and pathology from onset to onset, it will be described in detail below.
  • Cartilage Acidic Protein 1 protein which is a target for measuring the content in a blood sample collected from a test animal, in the case of a human, from the amino acid sequence shown by Entry Name CRAC1_HUMAN of UniProtKB Is a protein.
  • sequence information can be obtained by inputting the above Entry Name in a National Center for Biotechnology Information (NCBI) database.
  • NCBI National Center for Biotechnology Information
  • the amino acid sequence is human, but when the test animal is different, a homologous protein derived from the animal becomes the protein to be measured.
  • the method for measuring the content of the protein in the blood sample is not particularly limited as long as the content of the protein can be measured.
  • an existing immunoassay method using an antibody of the protein or a chromatographic method All components captured on a chromatographic carrier (eg, cation exchanger, anion exchanger, hydrophobic chromatographic carrier, metal ion, etc.) under certain conditions using a combination of holographic techniques and time-of-flight mass spectrometry (TOF-MS)
  • TOF-MS time-of-flight mass spectrometry
  • a method of measuring the mass of the solution at once, a two-dimensional gel electrophoresis method, or the like is used.
  • the immunoassay a method of quantitative detection according to an enzyme immunoassay, a method of measurement by a fluorescence immunoassay, a chemiluminescence immunoassay, or the like is preferable.
  • the enzyme immunoassay method is a detection method using an enzyme as a labeling substance among the labeled immunoassay methods.
  • ELISA enzyme-linked immunosorbent assay
  • the sandwich method is mentioned as one of the particularly preferable measurement modes in consideration of the convenience of operation, economic convenience, and general versatility in clinical examination.
  • Antibodies and the like (including antibody fragments) used in the above measurement can be obtained by a known method using the target CRTAC1 protein as an antigen. However, it is not necessary to be produced using the target CRTAC1 protein as an antigen, and any protein may be used as long as it exhibits at least cross-reactivity with the protein and can measure its content. As such an immunoassay and an antibody used therefor, for example, Anti-human® CRTAC1 • Antibody (catalog No. AF5234) manufactured by R & D, etc. is preferably used.
  • the blood sample used in the method of the present invention is preferably used immediately after being collected from the test animal for the above measurement, but a stored sample may be used.
  • the method for storing the blood sample is not particularly limited as long as the amount of molecular marker for cerebral infarction examination does not change, but there are, for example, a low temperature condition such as 0 to 10 ° C. that does not freeze, a dark condition, and no vibration condition. preferable.
  • a low temperature condition such as 0 to 10 ° C. that does not freeze, a dark condition, and no vibration condition.
  • a method capable of avoiding marker molecule decomposition or oxidation reaction such as deep freezing is preferable.
  • the content of the CRTAC1 protein marker in a blood sample collected from a test animal is measured.
  • it is a composite index that combines the contents of specimens such as CRP and D-Dimer, which are existing cerebral infarction markers, and links the observation of clinical symptoms with the results of echocardiography, MRI, MRA, cervical vascular echo, etc. It is possible to inspect more accurately by using.
  • the cerebral infarction test is performed using the content of the molecular marker for cerebral infarction test in the sample as an index
  • the absolute value of the content of the molecular marker for cerebral infarction test in the sample is compared with that of a healthy person (healthy animal). It may be compared, or a method of inspecting by specifying an appropriate cutoff value may be used.
  • the content in the blood sample of the cerebral infarction test marker of a healthy subject is obtained by collecting blood from a healthy subject who has been clinically confirmed in advance as not having cerebral infarction, and processing similar to that of blood collected from a test animal and It can be obtained by measuring and quantifying.
  • the method for clinically confirming various cerebral infarctions is not particularly limited, but examples include methods for confirming from device diagnostic methods such as head X-ray CT, head MRI, MRA, cerebral angiography, cervical vascular echo, etc. It is done.
  • the cut-off value is a value determined when determining a target disease group and a non-disease group (a group other than the target disease) by paying attention to a certain substance.
  • determining the target disease and non-disease it is negative if it is below the cut-off value, positive if it is above the cut-off value, or positive if it is below the cut-off value, and if it is above the cut-off value
  • the disease can be determined as negative (Kanai Masamitsu, Clinical Laboratory Proposal Kanehara Publishing Co., Ltd.).
  • the index used for the purpose of evaluating the clinical usefulness of the cutoff value includes sensitivity and specificity.
  • a certain population is determined using a cut-off value, and among the diseased patients, a (true positive) is positive in the determination, and b (false negative) is negative in the determination while being a disease patient.
  • the distribution of measured values between the target disease group and the non-disease group usually has some overlap. Therefore, sensitivity and specificity change by raising or lowering the cutoff value. Decreasing the cut-off value increases the sensitivity, but the specificity decreases, and increasing the cut-off value decreases the sensitivity, but increases the specificity. As a determination method, it is preferable that both sensitivity and specificity are higher. A determination method in which the values of sensitivity and specificity do not exceed 0.5 is not recognized as useful.
  • the method for setting the cut-off value is to set 95% of the distribution of the non-disease group as one of the values at both ends from the center as the cut-off value.
  • the distribution of the non-disease group shows a normal distribution
  • a method of setting an average value +2 times standard deviation (SD) or an average value -2SD as a cut-off value is a normal distribution.
  • the sensitivity and specificity vary depending on the cutoff value set as described above, so the sensitivity and specificity at a certain cutoff value are simply used. Rather than evaluating, it is desirable to evaluate with an index that maintains high sensitivity and specificity when the cut-off value is raised or lowered, for example, the AUC value of the ROC curve.
  • the AUC value of the ROC curve becomes 1 when a cutoff value exists such that both sensitivity and specificity are 100%, and approaches 0.5 when the diagnostic performance is not good. Therefore, when the performance of a certain diagnostic method is judged by the AUC value of the ROC curve, it can be evaluated that the method is suitable as a diagnostic method if it is 0.7 or more. Since the CRTAC1 protein marker described in the present invention also has an ROC curve AUC value of 0.7 or more, it is used in the cerebral infarction examination method described later.
  • CRTAC1 protein marker As a specific method of the cerebral infarction examination method using the CRTAC1 protein marker of the present invention, in order to distinguish healthy subjects from cerebral infarction patients. In other words, the amount of CRTAC1 protein in a blood sample collected from a test animal is measured, and if the CRTAC1 protein amount is lower than that of a healthy subject, it is determined that the subject has a cerebral infarction. And an inspection method.
  • the timing of obtaining the specimen in this case is not particularly limited from immediately after the onset of cerebral infarction-like symptoms, but is preferred from the meaning of diagnosis from immediately after the onset to the 20th day after onset.
  • a particularly preferable timing is between immediately after onset and 9 days after onset.
  • the content of the CRTAC1 protein marker in the collected specimen may be measured, and this absolute value may be compared with that of a healthy person (healthy animal), or an appropriate cut-off value may be defined by the above method. An inspection method may be used.
  • the absolute value of the content of the CRTAC1 protein marker in a blood sample collected from a subject suspected of having cerebral infarction is higher than that of a healthy person (healthy animal) or higher than the cutoff value, the subject The examiner can determine that the patient is a cerebral infarction patient.
  • the content in the blood sample of the cerebral infarction test marker of a healthy subject is obtained by collecting blood from a healthy subject who has been clinically confirmed in advance as not having cerebral infarction, and processing similar to that of blood collected from a test animal and It can be obtained by measuring and quantifying.
  • the method for clinically confirming various cerebral infarctions is not particularly limited, but examples include methods for confirming from device diagnostic methods such as head X-ray CT, head MRI, MRA, cerebral angiography, cervical vascular echo, etc. It is done.
  • the disease type means a clinically distinct disease type known per se, and specifically includes “lacuna infarction” (sometimes referred to herein as “lacuna”), “atherothrombosis” Cerebral infarction “(sometimes referred to herein as” atherothrombotic “),” cardiogenic cerebral embolism “(sometimes referred to herein as” cardiogenic cerebral embolism ”) ), “Aortic cerebral embolism”, an embolism that develops when the obturator dissociates from the atherosclerotic lesion from the ascending aorta to the aortic arch and occludes the intracerebral artery, plaque formed in the main artery "Branch atheromatous disease” (hereinafter sometimes referred to as "BAD”), which is an infarction of the penetrating branch region caused by occlusion of the entrance of the penetrating branch, and blood in the arterial wall Does not fall under arterial dissection or any of them Disease type (hereinafter sometimes referred
  • the cut-off value that can distinguish each disease type in the amount of CRTAC1 protein in the blood sample is determined as described above. And the amount of CRTAC1 protein in the sample is compared with the cut-off value to determine which disease type group it belongs to.
  • the timing of obtaining the specimen when performing these measurements is not particularly limited immediately after the onset of cerebral infarction-like symptoms, but Table 1 shows preferred timings.
  • the amount of CRTAC1 protein in a blood sample of a patient clinically determined as the above-mentioned distinct disease type is measured in advance, and the above method is used to distinguish between both disease type groups.
  • (1-3) Test method for predicting prognosis of cerebral infarction using CRTAC1 protein marker As a specific method of the cerebral infarction test method using CRTAC1 protein marker of the present invention, the prognosis of cerebral infarction of a subject (animal) is determined. Examples include inspection methods for prediction. The prognosis of cerebral infarction is indicated by the degree of injury due to cerebral infarction of the patient after a certain period of time after the onset of cerebral infarction. The degree of failure can be assessed using an already established indicator known per se. Indicators include, for example, Japan's modified Rankin Scale (mRS) criteria (Yukito Shinohara et al. MRS Reliability Study Group, research on reliability of modified Rankin Scale-introduction of Japanese criteria and questionnaire, stroke 2007; 29: 6-13) etc. are used.
  • mRS Japan's modified Rankin Scale
  • the amount of CRTAC1 protein in a blood sample obtained from a subject about 2 weeks after onset, and the state of the subject 3 months after the onset is preferable.
  • the amount of CRTAC1 protein in the blood sample at the time of measurement is measured in advance for each patient who has been clinically determined for the above mRS at the time of prediction. Then, a cutoff value for distinguishing both mRS groups is set by the above-described method. More specifically, for example, when distinguishing between patients with mRS 0-1 after 3 months and patients with 2-5, patients with mRS 0-5 3 months after the onset (for prediction purposes) 7 days after the onset of illness (at the time of measurement), the CRTAC1 protein level in the blood sample is measured, and the cut-off between the measured value of patients whose mRS is 0 to 1 and the measured value of patients 2 to 5 after 3 months Set the value. Thereafter, a sample at the measurement purpose is collected, the content of the CRTAC1 protein marker in the sample is measured, and the absolute value is compared with the cut-off value set by the above method. The state of the subject (animal) can be predicted.
  • the prediction method of the present invention particularly preferably, about 2 weeks after onset, more preferably 3 months after onset by measuring the amount of CRTAC1 protein in a sample collected from a subject on the 9th day after onset.
  • Examples include a method for predicting whether the mRS of the subject in the vicinity is 2 to 5 or less than 1 or the like.
  • a preferred example is a method for predicting whether the mRS of the subject in the vicinity of 3 months after the onset is 4-5 or less than 3 by measuring the amount of CRTAC1 protein in a sample collected from It is done.
  • a subject (animal) diagnosed with cerebral infarction by the method of the present invention has a very good prognostic course and therapeutic effect by receiving a treatment suitable for each disease.
  • (1-4) Examination Method for Predicting Progression of Cerebral Infarction Using CRTAC1 Protein Marker As a specific method of the cerebral infarction examination method using CRTAC1 protein marker of the present invention, progression of cerebral infarction in a subject (animal) Examples include inspection methods for predicting sex. Progression of cerebral infarction is indicated by a change in the severity of the patient due to cerebral infarction within a certain period of time after the onset of cerebral infarction. Severity can be assessed using known indicators already known per se. As an index, for example, National Institute of Health Stroke Scale (NIHSS) (Brott T. et al., Measurement of acute cerebral infarction: A clinical examination scale. Stroke, 20, 864 (1989)) is used.
  • NIHSS National Institute of Health Stroke Scale
  • the amount of CRTAC1 protein in the blood sample obtained from the subject within about one week immediately after the onset is preferable.
  • the amount of CRTAC1 protein in the blood sample at the time of measurement is measured in advance for each patient who has been clinically determined for the NIHSS at the time of the prediction purpose, and the change in NIHSS that is desired to be distinguished at the time of the prediction purpose.
  • the cutoff value for distinguishing between progressive and non-progressive is set by the above-described method.
  • NIHSS immediately after the onset of cerebral infarction
  • NIHSS determined within 2 weeks (at the time of prediction) increases by 1 or more, it is progressive, if it does not change or decreases by 1 or more
  • It is defined as non-progressive and the amount of CRTAC1 protein in blood samples from immediately after onset to the seventh day of onset (during measurement) is measured, and patients with advanced or non-progressive NIHSS within 2 weeks Set the cutoff value between the measured values.
  • a sample at the measurement purpose is collected, the content of the CRTAC1 protein marker in the sample is measured, and the absolute value is compared with the cut-off value set by the above method.
  • the state of the subject (animal) can be predicted.
  • Examples include a method of predicting whether the examiner's NIHSS will increase or decrease by 1 or more or decrease by 1 or more immediately after the onset of cerebral infarction.
  • Kit for measuring cerebral infarction The present invention further provides a kit for use in the above-described cerebral infarction examination, or evaluation of the prevention or treatment effect of cerebral infarction described below, or a screening method for a cerebral infarction prevention or treatment drug.
  • the kit is also included.
  • the contents of the kit are configured by a combination of equipment or reagents.
  • the configuration or form of the kit is not limited as long as it includes a substance that is essentially the same as each component described below, or a substance that is essentially the same as a part thereof. Even if they are different, they are included in the kit of the present invention.
  • the reagent include an anti-CRTAC1 protein marker antibody when the CRTAC1 protein marker is measured by an immunoassay.
  • a biological sample diluent an antibody-immobilized solid phase, a reaction buffer, a washing solution, a labeled secondary antibody or an antibody fragment thereof, a labeled detection reagent, a standard substance, and the like are also included as necessary.
  • the diluted solution of the biological sample include an aqueous solution containing a protein such as BSA or casein in a surfactant or a buffer.
  • the antibody-immobilized solid phase a material in which various polymer materials are shaped to suit the application and anti-molecular marker antibodies or their antibody fragments are solid-phased is used. Shapes are tubes, beads, plates, fine particles such as latex, sticks, etc., and materials are polystyrene, polycarbonate, polyvinyl toluene, polypropylene, polyethylene, polyvinyl chloride, nylon, polymethacrylate, gelatin, agarose, cellulose, polyethylene terephthalate, etc. Polymer materials, glass, ceramics and metals. Examples of the method for immobilizing an antibody include known methods such as a physical method and a chemical method, or a combination method thereof. For example, a 96-well polystyrene immunoassay microterplate prepared by subjecting an antibody or antibody fragment to a hydrophobic solid phase can be used.
  • reaction buffer Any reaction buffer may be used as long as it provides a solvent environment for the binding reaction between the antibody on the antibody-immobilized solid phase and the antigen in the biological sample.
  • surfactants buffers, BSA, Reaction buffers containing proteins such as casein, preservatives, stabilizers, reaction accelerators and the like can be mentioned.
  • the labeled secondary antibody or antibody fragment thereof is labeled with a labeling enzyme such as horseradish peroxidase (HRP), bovine small intestine alkaline phosphatase, ⁇ -galactosidase, or buffering agent. , BSA, casein and other proteins, preservatives and the like are used.
  • HRP horseradish peroxidase
  • BSA bovine small intestine alkaline phosphatase
  • ⁇ -galactosidase or buffering agent.
  • BSA casein and other proteins, preservatives and the like are used.
  • a substrate for absorption measurement such as tetramethylbenzidine or orthophenylenediamine, or a fluorescence such as hydroxyphenylpropionic acid or hydroxyphenylacetic acid.
  • a substrate for absorption measurement such as tetramethylbenzidine or orthophenylenediamine
  • a fluorescence such as hydroxyphenylpropionic acid or hydroxyphenylacetic acid.
  • the substrate or the luminescent substrate such as luminol is alkaline phosphatase
  • examples include an absorbance measurement substrate such as 4-nitrophenyl phosphate, and a fluorescent substrate such as 4-methylumbelliferyl phosphate.
  • the second aspect of the present invention is blood collected from an animal in need of prevention or treatment of cerebral infarction administered with a cerebral infarction preventive or therapeutic agent.
  • a method for evaluating the effect of preventing or treating cerebral infarction in an animal comprising a step of measuring the amount of CRTAC1 protein marker in a sample.
  • an animal that requires prevention or treatment of cerebral infarction is a human who exhibits symptoms of cerebral infarction or an animal described in (1) (these may be simply referred to as “subjects”), Examples include patients diagnosed with cerebral infarction by the method (1) above.
  • the cerebral infarction preventive or therapeutic agent may be any as long as it is used as a cerebral infarction preventive or therapeutic agent.
  • thrombolytic agents such as urokinase and tissue plasminogen activator, antiparin such as heparin, etc.
  • anticoagulants such as coagulants, cyclooxygenase inhibitors, phosphodiesterase inhibitors, thromboxen A2 (TXA2) synthesis inhibitors, and brain protective agents such as free radical scavengers.
  • the amount of CRTAC1 protein marker in a blood sample collected from an animal in need of prevention or treatment of cerebral infarction administered with a cerebral infarction preventive or therapeutic agent is increased or decreased compared to the amount before administration, or When approaching the amount in a control animal that has not developed cerebral infarction, it can be determined that there was a preventive or therapeutic effect. Since the cerebral infarction preventive or therapeutic agent to be treated differs depending on the disease type, it is possible to perform appropriate treatment for the patient if the disease type is diagnosed with the CRTAC1 protein marker.
  • a lacunar infarction if a lacunar infarction is diagnosed, it can be treated with a thromboxen A2 (TXA2) synthesis inhibitor and a cyclooxygenase inhibitor can prevent recurrence of cerebral infarction.
  • TXA2 thromboxen A2
  • a cyclooxygenase inhibitor can prevent recurrence of cerebral infarction.
  • the prognosis is improved by using several kinds of therapeutic agents such as free radical scavengers from the early stage of treatment, or by enhancing the content of rehabilitation. It is possible to perform such treatment.
  • an anticoagulant such as argatroban or an antiplatelet agent such as a phosphodiesterase inhibitor is used in combination with a free radical scavenger from the early stage of treatment.
  • a free radical scavenger By enhancing drug treatment, it becomes possible to prevent the progression of symptoms by preventing or suppressing the degree of progression.
  • CRTAC1 in a blood sample of a subject is contacted with a subject and a candidate compound for a prophylactic or therapeutic agent for cerebral infarction.
  • a screening method for a preventive or therapeutic agent for cerebral infarction comprising a step of measuring the amount of a protein marker.
  • a non-human animal individual, tissue, cell or the like in which the content of the CRTAC1 protein marker exhibits the same abnormality as in the cerebral infarction state is used.
  • animals having cerebral infarction include non-human cerebral infarction animals in which a cerebral infarction state has been formed by a surgical technique or the like (Yuji Kuge, Kazuo Minematsu et al. Nylon Monofilament for Intraluminal Middle Cerebral Artery Occlusionin Rats. Stroke , 26, 1655 (1995)).
  • Yuji Kuge Kazuo Minematsu et al. Nylon Monofilament for Intraluminal Middle Cerebral Artery Occlusionin Rats. Stroke , 26, 1655 (1995)
  • CRTAC1 protein marker content similar to that in the normal state (normal) as a control Based on the CRTAC1 protein marker, if a pathological condition similar to a certain disease type in humans can be constructed in a non-human animal with cerebral infarction, an experimental system for developing a therapeutic agent in a patient with cerebral infarction of a certain disease type will be established be able to. In addition, by monitoring the prognosis of a non-human animal individual with the marker, it is possible to develop a therapeutic agent effective for the prognosis of human cerebral infarction.
  • candidate compounds for preventing or treating cerebral infarction include peptides, proteins, non-peptidic compounds, low-molecular synthetic compounds, and the like. These compounds may be novel compounds or known compounds. Moreover, fermentation products, cell extracts, plant extracts, animal tissue extracts and the like containing these compounds may be used. The dose, administration method, treatment time and the like may be appropriately selected according to the subject to be used.
  • the method for measuring the content of the CRTAC1 protein marker in the subject after contacting with the candidate compound can be performed by a method suitable for each subject.
  • the subject when it is a cell, it may be prepared as a cell extract according to a known method and used as a sample, or the cell may be immobilized on a culture plate or a slide glass and used as a sample. Also good.
  • detection can be performed by ELISA or the like. It is preferable that these samples have the same number of cells used for extraction, or the amount of purified RNA or the amount of extracted protein so that the numerical values obtained as a result of detection can be compared and analyzed accurately. If the amount of CRTAC1 protein marker in the subject contacted with the candidate compound is increased or decreased compared to the amount before contact, or approaches the amount in the control subject, the candidate compound is It can be determined to have a prophylactic or therapeutic effect.
  • Example 1 Evaluation of Test Method for Discriminating Healthy Persons from Cerebral Infarction Patients Using Cartilage Acidic Protein 1 Protein Marker Immediately after the onset of cerebral infarction (described as “DAY0” in the table), 7 days after onset (in the table) Blood was collected from patients with cerebral infarction at the time (described as “DAY7”) and healthy individuals (number of persons described in Table 2), and EDTA plasma was obtained.
  • the AUC value of the ROC curve was calculated according to the method described in Fawcett, T. (2004) ROC Graphs: NotesNoteand Practical Considerations for researchers. The results are shown in Table 2. It is shown that a value exceeding 0.7 at each time of blood collection is useful as a test method for discriminating between a cerebral infarction patient and a healthy person.
  • blood can be obtained from cerebral infarction patients immediately after onset and on the 7th day, and the test for distinguishing between healthy individuals and patients with cerebral infarction can be performed by comparing the concentration of CRTAC1 protein in healthy subjects and plasma. all right.
  • Example 2 Evaluation of a test method for discriminating cerebral infarction type using CRTAC1 protein marker Patients with a confirmed diagnosis for each type of cerebral infarction, specifically, “lacuna infarction” (in the table (Referred to as “lacuna”), “atherothrombotic cerebral infarction” (referred to as “atherothrombotic” in the table), “cardiogenic cerebral embolism” (referred to as “cardiogenic cerebral embolism” in the table) ), “Aortic cerebral embolism” (referred to as “aortic cerebral embolism” in the table), “Branch atheromatous disease” (referred to as “BAD” in the table), “arterial dissection” (in the table) , Referred to as “arterial dissection”, or patients with a disease type that does not fall into any of these (referred to as “non-classifiable type” in the table), immediately after the onset of cerebral infarction (described as “DAY0” in the table) ), 7 days after onset (in
  • the concentration of CRTAC1 protein in the plasma was measured in the same manner as in the method of Example 1, and the AUC value of the ROC curve was calculated from the measured value in the same manner as in Example 1. It is shown that a value exceeding 0.7 at each time of blood collection is useful as a test method for determining the disease type of a cerebral infarction patient.
  • Example 3 Evaluation of a test method for predicting the prognosis of cerebral infarction using CRTAC1 protein marker
  • the prognosis of cerebral infarction is indicated by the degree of injury due to cerebral infarction of the patient after a certain period of time after the onset of cerebral infarction. It is.
  • Japanese version modified Rankin Scale (mRS) criteria Yukito Shinohara et al. MRS Reliability Study Group, reliability of modified Rankin Scale-Japanese version criteria and questionnaire
  • Blood was collected 7 days after the onset of cerebral infarction (indicated as “DAY7” in the table) for patients classified as 0 to 5 using the introduction of Stroke 2007; 29: 6-13) (each in Table 4) EDTA plasma was obtained.
  • the concentration of CRTAC1 protein in the plasma was measured in the same manner as in the method of Example 1, and the AUC value of the ROC curve was calculated from the measured value in the same manner as in Example 1.
  • the results are shown in Table 4. It is shown that a value exceeding 0.7 at each time of blood collection is useful as a test method for determining the prognosis of a cerebral infarction patient.
  • the degree of injury (prognosis) 3 months after the onset of cerebral infarction was determined by comparing the CRTAC1 protein concentration in the plasma on the 7th day after the onset of patients ranked 3 months later. 3 months later, rank 2-5 patients, rank 0-1 patients, rank 3-5 patients, rank 0-2 patients, rank 4-5 patients, rank 0-3 patients It turned out that the test
  • Example 4 Evaluation of Test Method for Predicting Progression of Cerebral Infarction Using CRTAC1 Protein Marker 3 days after onset, 7 onset of NIHSS immediately after the onset of cerebral infarction (described as “DAY0” in the table) One day after the onset and 14 days after the onset, NIHSS increased by 1 or more points as progressive, and NIHSS did not change or decreased by 1 or more points as non-progressive. To eliminate bias between severity and disease type subgroups, patients with NIHSS> 15 immediately after onset were excluded. The concentration of CRTAC1 protein in the plasma was measured in the same manner as in the method of Example 1, and the AUC value of the ROC curve was calculated from the measured value in the same manner as in Example 1.
  • diagnosis of cerebral infarction diagnosis of cerebral infarction, prognosis prediction test and evaluation of treatment / prevention effect can be performed, which is useful in the medical and diagnostic fields.
  • a therapeutic / prophylactic agent for cerebral infarction can be screened, which is also useful in the pharmaceutical field.

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

被検動物より採取された血液試料中のCartilage Acidic Protein 1蛋白質の量を測定する工程を含む、該動物における脳梗塞の診断のための検査方法、脳梗塞の病型診断のための検査方法、および脳梗塞の予後の予測のための検査方法。

Description

Cartilage Acidic Protein 1蛋白質による脳梗塞の検査方法
 本発明は、脳梗塞の検査方法、脳梗塞治療または予防効果の評価方法、脳梗塞の予防薬または治療薬のスクリーニング方法、および脳梗塞検査用、脳梗塞治療効果評価用または脳梗塞予防・治療薬候補化合物スクリーニング用のキットに関するものである。
 脳卒中とは、脳梗塞、脳出血、くも膜下出血などの脳血管障害の総称である。これら脳卒中の病型のうち、最近では脳梗塞が相対的に増加してきている。脳梗塞急性期の薬物療法としては血栓溶解療法、抗凝固療法、抗血小板療法、脳保護薬投与などが用いられ、重篤な患者や出血性脳梗塞を起こした患者に対しては外科的手術が行われる。脳梗塞の症状は急性期にもっとも強く、その後徐々に改善していく。これは、壊死に陥った脳組織が腫脹して、周囲の脳組織も圧迫・障害していることによる。腫脹が引いていくとともに、周囲の組織が機能を回復して症状は固定していくのである。ただし、脳虚血部位から放出されるフリーラジカルは周囲の組織をも壊死させる働きがあるため急性期を過ぎても機能予後の向上につなげるため継続的な治療が必要とされている。
 脳梗塞の臨床病型には、脳内小動脈が閉塞して発症するラクナ梗塞、脳内大動脈が粥腫で閉塞して発症するアテローム血栓性脳梗塞、心臓内の血栓が栓子となり脳内動脈を閉塞して発症する心原性脳塞栓症等がある。これらの臨床病型により急性期及び慢性期の適切な治療法が異なるため、脳梗塞患者の臨床病型を迅速に診断する方法が求められていた。
 脳梗塞の臨床病型の分類方法としては、臨床症候の観察と心エコー、MRI、MRA、頚部血管エコー等を施行してTOAST分類に準拠した脳梗塞臨床診断のフローチャート(非特許文献1)等により分類する方法や、分子マーカーを用いた方法、具体的には、CRP、D-Dimer、RAGE、MMP-9、S100B、BNP等の分子マーカーを脳梗塞発症24時間以内に同時測定した結果、BNPとD-Dimerで、特定のカットオフ値を設定すると、心原性脳塞栓症を他病型と分類できること(非特許文献2)などが開示されているが、さらに迅速で確実な病型診断が可能となる分子マーカーが求められていた。
 脳梗塞の予後は、発症後3ヶ月後ないしは1年後までの間にmodified Rankin Scale(非特許文献3)、またはBarthel Index(非特許文献4)により日常生活における動作の障害度を評価することで判断されている。予後を事前に予測することは、脳梗塞の治療方法を早期に決める上で重要である。入院時に測定した血漿中のBNPで特定のカットオフ値を定めることにより死亡が予測できること(非特許文献5)が開示されているが、生存した場合の障害の程度を予測する分子マーカーが求められていた。
 脳梗塞の症状の程度(重症度)は、脳梗塞発症直後から発症後3ヶ月後までの間にNational Institute of Health Stroke Scale(NIHSS)により意識障害、運動障害や高次機能障害などを評価することで判断されている。脳梗塞は少なからず入院期間中に症状が悪化するが、NIHSSの変化を観察することにより進行性脳梗塞かどうかを確認できる。進行性脳梗塞は予後不良となることが多いことから、早期に予測して治療を充実させることが重要である。しかしながら、進行性脳梗塞を予測する方法は確立されておらず、予測する分子マーカーが求められていた。
 特許文献1には、Cartilage Acidic Protein 1を循環器疾患、血液疾患、神経疾患、呼吸器疾患、消化器疾患および泌尿器疾患のマーカーとして使用することが記載されている。しかしながら、虚血・心筋梗塞モデル動物でCartilage Acidic Protein 1の発現量が多いことを示すのみで、Cartilage Acidic Protein 1がこれらの疾患の診断に使用できることを示す具体的なデータはない。
米国特許出願公開2010/0081136号明細書
Lee,L.J. et al., Stroke , 1081-1089 (2000) Montaner et al., Stroke, 2280-2287(2008) van Swieten,J.C et al., Stroke, 604-607 (1988) Mahoney,F.L et al., Maryland State Med J, 61-65 (1965) Shibazaki,K et al., Inter Med, 1601-1604 (2009) Brott T. et al., Stroke, 20, 864 (1989)
 本発明は、上記の問題点に鑑み、脳梗塞患者などの血清や血漿等を用いて迅速かつ確実な脳梗塞の検査を行う方法、及び脳梗塞治療効果の評価方法を提供することを課題とする。
 本発明者らは、前述の課題を解決すべく鋭意検討した結果、患者血漿中の、Cartilage Acidic Protein 1蛋白質が、健常者、あるいは病型や予後の異なる患者の血漿中のその濃度の間で異なるという知見を得、Cartilage Acidic Protein 1蛋白質の量が脳梗塞の検査のための有用な指標となることを見出して、本発明を完成するに至った。
 即ち、本発明は以下を要旨とする。
[1]被検動物より採取された血液試料中のCartilage Acidic Protein 1蛋白質の量を測定する工程を含み、該蛋白質量が健常者と比較して低下していた場合に脳梗塞であると判断することを特徴とする、該動物における脳梗塞の診断のための検査方法。
[2]被検動物より採取された血液試料が、脳梗塞様症状の発症直後から発症後20日目の間のいずれかの時期において被検動物より採取されたものであることを特徴とする[1]に記載の脳梗塞の診断のための検査方法。
[3]被検動物より採取された血液試料中のCartilage Acidic Protein 1蛋白質の量を測定する工程を含む、該動物における脳梗塞の病型診断のための検査方法。
[4]病型診断が、ラクナ梗塞、アテローム血栓性、心原性脳塞栓症、大動脈原性脳塞栓症、Branch atheromatous disease(BAD)、動脈解離、分類不能のいずれかを診断するものである[3]に記載の検査方法。
[5]被検動物より採取された血液試料中のCartilage Acidic Protein 1蛋白質の量を測定する工程を含む、該動物における脳梗塞の予後の予測のための検査方法。
[6]被検動物より採取された血液試料が、脳梗塞発症7日目に被検動物より採取されたものであることを特徴とする[5]に記載の脳梗塞の予後の予測のための検査方法。
[7]被検動物より採取された血液試料中のCartilage Acidic Protein 1蛋白質の量を測定する工程を含む、該動物における脳梗塞の進行性の予測のための検査方法。
[8]被検動物より採取された血液試料が、脳梗塞発症7日目に被検動物より採取されたものであることを特徴とする[7]に記載の脳梗塞の進行性の予測のための検査方法。
[9]脳梗塞の予防薬もしくは治療薬が投与された脳梗塞の予防もしくは治療を必要とする動物から採取された血液試料中のCartilage Acidic Protein 1蛋白質の量を測定する工程を含む、該動物における脳梗塞の予防もしくは治療効果の評価方法。
[10]被検体と脳梗塞の予防薬または治療薬の候補化合物を接触させた後、該被検体中のCartilage Acidic Protein 1蛋白質の量を測定する工程を含む、脳梗塞の予防薬または治療薬のスクリーニング方法。
[11]Cartilage Acidic Protein 1蛋白質の量を測定し得る試薬を含んでなる、脳梗塞検査用、脳梗塞治療効果評価用、または脳梗塞予防・治療薬候補化合物のスクリーニング用キット。
 本発明によれば、脳梗塞患者の血漿中の濃度が、健常者、あるいは病型や予後や進行性の異なる患者の血漿中のその濃度と異なるCartilage Acidic Protein 1蛋白質が脳梗塞検査用分子マーカー(本明細書中ではこれを「CRTAC1蛋白質マーカー」と称することがある)として提供される。CRTAC1蛋白質マーカーを単独で、あるいは他の脳梗塞分子マーカーと組み合わせて用いることにより脳梗塞の迅速、確実な診断、あるいは脳梗塞の病型の分類や予後の予測を行うことが可能となる。
以下、本発明の実施の形態を詳細に説明する。
(1)脳梗塞検査方法
 本発明の第1は、被検動物より採取された血液試料中の、Cartilage Acidic Protein 1蛋白質量を測定する工程を含む、該動物における脳梗塞の検査方法である。
 本明細書において、「脳梗塞」とは、脳動脈が血栓または塞栓によって閉塞し虚血状態となり、脳組織が壊死および障害される疾患であり、脳内小動脈が閉塞して発症するラクナ梗塞、脳内大動脈が粥腫で閉塞して発症するアテローム血栓性脳梗塞、心臓内の血栓が栓子となり脳内動脈を閉塞して発症する心原性脳塞栓症、上行大動脈から大動脈弓部にできた粥状硬化巣から栓子が解離して脳内動脈を閉塞して発症する塞栓症である大動脈原性脳塞栓症、主幹動脈にできたプラークが穿通枝の入口部を閉塞することによって生じる穿通枝領域の梗塞である「Branch atheromatous disease」(以下、「BAD」と称することがある)、脳血管の内膜が損傷し血液が動脈壁内に侵入して脳血管を閉塞する動脈解離のいずれをも含む。また、脳梗塞でも急性期、亜急性期、回復期(慢性期)等のいずれをも含む。
 本明細書においてCartilage Acidic Protein 1蛋白質(以下、「CRTAC1蛋白質」と称することがある)とは、本発明の検査法において血液試料中の含有量を測定する対象であるCartilage Acidic Protein 1蛋白質を意味し、被検動物に由来する蛋白質であればよいが、ヒト由来の蛋白質として具体的には、下述する特定のアミノ酸配列で示される蛋白質が例示される。さらに、これらと同様の機能を有する蛋白質の断片、誘導体、および変異体も包含される。
 上記検査方法において、「被検動物」は、脳梗塞を起こす可能性のある動物であれば如何なるものでもよく、具体的には、ヒト、サル、あるいはラット等のげっ歯類等が挙げられる。本発明の脳梗塞の検査方法は、このうち、脳梗塞の疑いのあるヒト、あるいは脳梗塞発症後のヒト等において特に好ましく行われる。
 また、上記被検動物から採取された「血液試料」としては、CRTAC1蛋白質を含有し、その濃度を測定できるものであれば特に制限はないが、具体的には、EDTA血漿、クエン酸血漿等の血漿、血清、全血の何れでもよいが、これらのうち、EDTA血漿が簡便に採取でき、保存が容易で且つ採取量が多いため好ましく用いられる。被検動物から該血液試料を採取するために採血するタイミングは、脳梗塞の診断を行うタイミングであればいずれのタイミングでもよい。脳梗塞は、発症後刻々と症状や病態が変化するので、具体的には以下で詳述する。
 本発明の検査法において、被検動物から採取した血液試料中の含有量を測定する対象であるCartilage Acidic Protein 1蛋白質とは、ヒトの場合には、UniProtKBのEntry Name CRAC1_HUMANで示されるアミノ酸配列からなる蛋白質である。例えば、National Center for Biotechnology Information(NCBI)のデータベースなどにおいて上記Entry Nameを入力することで配列情報を得ることができる。上記アミノ酸配列はヒトのものであるが、被検動物が異なる場合には、該動物由来のホモログ蛋白質が測定対象の蛋白質となる。
 上記蛋白質の血液試料中の含有量の測定方法としては、該蛋白質の含有量が測定できる方法であれば特に制限はないが、例えば、該蛋白質の抗体を用いた既存の免疫測定法や、クロマトグラフィー技術と飛行時間型質量分析(TOF-MS)を組み合わせて、クロマト担体(例:カチオン交換体、アニオン交換体、疎水性クロマト担体、金属イオンなど)に一定条件下で捕捉されるすべての成分の質量を一括して測定する方法、二次元ゲル電気泳動法等が用いられる。免疫測定法としては、酵素免疫定量法に従い定量検出する方法や、蛍光免疫測定法、化学発光免疫測定法等で測定する方法等が好ましい。酵素免疫定量法は、標識イムノアッセイ法のうち、酵素を標識物質として用いる検出方法である。また、イムノソルベントを用いる、enzyme-linked immunosorbent assay(ELISA) 法を選択するのが、特に好適である。また、ELISAのうちサンドイッチ法は、操作の簡便性、経済上の利便性、とりわけ臨床検査における汎用性を考慮すると、特に好適な測定態様の一つとして挙げられる。これらの測定方法は、例えば、新生化学実験講座(日本生化学会編;東京化学同人)、Molecular Cloning, A Laboratory Manual (T. Maniatis et al., Cold Spring Harbor Laboratory (2001))、Antibodies - A Laboratory Manual(E.Harlow, et al., ColdSpring Harbor Laboratory(1988))等の一般的実験書に記載の方法又はそれに準じて行うことができる。
 上記測定を行う際に用いられる抗体等(抗体断片を含む)は、対象のCRTAC1蛋白質を抗原として公知の方法によって得ることができる。ただし、対象のCRTAC1蛋白質を抗原として製造されたものである必要はなく、該蛋白質と少なくとも交差反応性を示し、その含有量を測定することができるものであれば何れのものでもよい。このような免疫測定法、及びそれに用いられる抗体としては、例えばR&D社製のAnti-human CRTAC1 Antibody(カタログNo.AF5234)等が好ましく用いられる。
 本発明の方法で使用する血液試料は、被検動物から採取直後のものを上記測定に用いることが好ましいが、保存したものを用いてもよい。血液試料の保存方法としては、脳梗塞検査用分子マーカー量が変化しない条件であれば特に制限は無いが、例えば0~10℃の凍結しない程度の低温条件、暗所条件および無振動条件下が好ましい。止むをえず凍結する場合には、深凍結などマーカー分子の分解や酸化反応等を避けられる方法が好ましい。
 本発明の検査方法においては、被検動物から採取された血液試料(本明細書中では、これを「検体」と称することがある)中の上記CRTAC1蛋白質マーカーの含有量を測定して、これを指標として、脳梗塞を検査することができる。また、既存の脳梗塞マーカーであるCRPやD-Dimer等の検体中含有量とを組み合わせることや、臨床症候の観察と心エコー、MRI、MRA、頚部血管エコー等の結果とを関連付けた複合指標を用いることで、より的確に検査することが可能である。
 上記脳梗塞検査用分子マーカーの検体中の含有量を指標として上記脳梗塞検査を行う場合には、脳梗塞検査用分子マーカーの検体中の含有量の絶対値を健常者(健常動物)のそれと比較してもよいし、適当なカットオフ値を規定して検査する方法でもよい。健常者の上記脳梗塞検査用マーカーの血液試料中の含有量は、予め脳梗塞でないことを臨床的に確認された健常者から血液を採取し、被検動物から採取した血液と同様の処理及び測定を行って定量することにより得ることができる。臨床的に各種脳梗塞を確認する方法は特に制限がないが、例えば頭部X線CT、頭部MRI、MRA、脳血管造影、頚部血管エコー等の機器診断方法等から確認する方法等が挙げられる。
 カットオフ値とは、ある物質に着目して目的とする疾患群と非疾患群(目的とする疾患以外の群)とを判定する場合に定める値をいう。目的とする疾患と非疾患とを判定する場合に、カットオフ値以下であれば陰性、カットオフ値以上であれば陽性として、またはカットオフ値以下であれば陽性、カットオフ値以上であれば陰性として疾患を判定することができる(金井正光編、臨床検査法提要 金原出版株式会社)。
 カットオフ値の臨床的有用性を評価する目的で用いられる指標としては、感度と特異度が挙げられる。ある母集団をカットオフ値を用いて判定し、疾病患者のうち、判定で陽性とされたものをa(真陽性)、疾病患者でありながら判定で陰性とされたものをb(偽陰性)、疾病患者でないにも関わらず判定で陽性とされたものをc(偽陽性)、疾病患者でなく判定で陰性とされたものをd(真陰性)と表したときに、a/(a+b)で表される値を感度(真陽性率)、d/(c+d)で表される値を特異度(真陰性率)として表すことができる。
 目的とする疾患群と非疾患群との測定値の分布は通常、一部重複する。したがって、カットオフ値を上下させることにより、感度と特異度は変化する。カットオフ値を下げることにより感度は高くなるが、特異度は低下し、カットオフ値を上げることにより感度は低くなるが、特異度は上がる。判定方法としては、感度と特異度の両者の値が高いほうが好ましい。また、感度と特異度の値が0.5を超えない判定方法は、有用とは認められない。
 カットオフ値を設定する方法としては、非疾患群の分布の95%を含む、中央からの両端のいずれかの値をカットオフ値として設定する方法、非疾患群の分布が正規分布を示す場合、平均値+2倍の標準偏差(SD)または平均値-2SDをカットオフ値として設定する方法等が挙げられる。
 また、一般に、診断方法が有用かどうかを判定するためには、前述のように設定されたカットオフ値によって感度と特異度が変化するため、単純にあるカットオフ値での感度と特異度で評価するよりも、カットオフ値を上下させたときに感度や特異度が高く保たれるような指標、例えばROC曲線のAUC値で評価するのが望ましい。ROC曲線のAUC値は感度と特異度が両方100%になるようなカットオフ値が存在する場合に1になり、診断性能が良くない場合に0.5に近づく。したがって、ある診断方法の性能をROC曲線のAUC値で判断する場合には0.7以上であれば該方法は診断方法として適当であると評価することが可能である。本発明に記載のCRTAC1蛋白質マーカーについても、ROC曲線のAUC値0.7以上であったので、後述する脳梗塞検査方法に用いられるものである。
(1-1)Cartilage Acidic Protein 1(CRTAC1)蛋白質マーカーを用いた脳梗塞検査方法
 本発明のCRTAC1蛋白質マーカーを用いた脳梗塞検査方法の具体的方法として、健常者と脳梗塞患者を区別するための検査方法、すなわち、被検動物より採取された血液試料中のCRTAC1蛋白質量を測定し、CRTAC1蛋白質量が健常者と比較して低下していた場合に脳梗塞であると判断することを特徴とする検査方法が挙げられる。この場合の検体の取得のタイミングは、脳梗塞様症状の発症直後から特に制限はないが、発症直後から発症後20日目までが診断を行う意味からも好ましい。特に好ましいタイミングとしては、発症直後~発症後9日目の間である。採取された検体中の上記CRTAC1蛋白質マーカーの含有量を測定して、この絶対値を健常者(健常動物)のそれと比較してもよいし、上記の方法で適当なカットオフ値を規定して検査する方法でもよい。脳梗塞が疑われる被検者から採取された血液試料中のCRTAC1蛋白質マーカーの含有量の絶対値が、健常者(健常動物)のそれより高い場合や、カットオフ値より高い場合に、該被検者は脳梗塞患者であると判定することができる。健常者の上記脳梗塞検査用マーカーの血液試料中の含有量は、予め脳梗塞でないことを臨床的に確認された健常者から血液を採取し、被検動物から採取した血液と同様の処理及び測定を行って定量することにより得ることができる。臨床的に各種脳梗塞を確認する方法は特に制限がないが、例えば頭部X線CT、頭部MRI、MRA、脳血管造影、頚部血管エコー等の機器診断方法等から確認する方法等が挙げられる。また、既存の脳梗塞マーカーであるCRPやD-Dimer等の検体中含有量とを組み合わせることや、臨床症候の観察と心エコー、MRI、MRA、頚部血管エコー等の結果とを関連付けた複合指標を用いることで、より的確に検査することが可能である。
(1-2)CRTAC1蛋白質マーカーを用いた脳梗塞病型検査方法
 本発明のCRTAC1蛋白質マーカーを用いた脳梗塞検査方法の具体的方法として、脳梗塞の病型を区別するための検査方法が挙げられる。病型とは、それ自体既知の臨床的に区別されている病型を意味し、具体的には、「ラクナ梗塞」(本明細書中では「ラクナ」と称することがある)、「アテローム血栓性脳梗塞」(本明細書中では、「アテローム血栓性」と称することがある)、「心原性脳塞栓症」(本明細書中では、「心原性脳塞栓」と称することがある)、上行大動脈から大動脈弓部にできた粥状硬化巣から栓子が解離して脳内動脈を閉塞して発症する塞栓症である「大動脈原性脳塞栓症」、主幹動脈にできたプラークが穿通枝の入口部を閉塞することによって生じる穿通枝領域の梗塞である「Branch atheromatous disease」(以下、「BAD」と称することがある)、脳血管の内膜が損傷し血液が動脈壁内に侵入して脳血管を閉塞する動脈解離あるいはそれらのいずれにも該当しない病型(以下、これを「分類不能型」と称することがある)が挙げられる。
 検体中に含まれるCRTAC1蛋白質量を測定することにより脳梗塞の病型を区別するためには、まず、血液試料中のCRTAC1蛋白質量において、各病型を区別し得るカットオフ値を上述の方法により決定し、検体中のCRTAC1蛋白質量を該カットオフ値と比較して、いずれの病型群に入るかを判断することにより行われる。
 本発明の血液試料中に含まれるCRTAC1蛋白質量により区別し得る病型としては、両病型群の間でCRTAC1蛋白質含有量によりお互いが区別されるカットオフ値を設定し得るものであれば特に制限はないが、具体的には、例えば、表1に示すように「アテローム血栓性脳梗塞」と「動脈解離」、「心原性脳塞栓症」と「動脈解離」、「ラクナ梗塞」と「BAD」、「ラクナ梗塞」と「動脈解離」、「大動脈原性脳塞栓症」と「BAD」、「大動脈原性脳塞栓症」と「動脈解離」、「BAD」と「動脈解離」、「BAD」と「分類不能型」、「アテローム血栓性脳梗塞」と「ラクナ梗塞」、「心原性脳塞栓症」と「ラクナ梗塞」、「心原性脳塞栓症」と「BAD」、「アテローム血栓性脳梗塞」と「BAD」、「動脈解離」とそれ以外の病型、「BAD」とそれ以外の病型等が挙げられる。
 これらの測定を行う場合の検体の取得のタイミングは、脳梗塞様症状の発症直後から特に制限はないが、表1に好ましいタイミングを示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
 本発明の測定方法では、予め、上記の区別される病型と臨床的に判断された患者の血液試料中のCRTAC1蛋白質量を測定し、上記の方法で、両病型群を区別するカットオフ値を設定する。採取された検体中の上記CRTAC1蛋白質マーカーの含有量を測定して、この絶対値を、上記の方法で設定されたカットオフ値と比較することによっていずれの病型に検体を採取した被検者(動物)が含まれるかを判断することができる。
 また、上記病型の検査を行う場合には、既存の脳梗塞マーカーであるCRPやD-Dimer等の検体中含有量とを組み合わせることや、臨床症候の観察と心エコー、MRI、MRA、頚部血管エコー等の結果とを関連付けた複合指標を用いることで、より的確に検査することが可能である。
(1-3)CRTAC1蛋白質マーカーを用いた脳梗塞の予後予測の検査方法
 本発明のCRTAC1蛋白質マーカーを用いた脳梗塞検査方法の具体的方法として、被検者(動物)の脳梗塞の予後を予測するための検査方法が挙げられる。脳梗塞の予後は、脳梗塞発症後、ある一定期間の後に、その患者の脳梗塞による障害の程度にて示される。障害の程度は、それ自体公知の既に確定している指標を用いて評価することができる。指標としては、例えば、日本版modified Rankin Scale(mRS)判定基準(篠原幸人らmRS信頼性研究グループ、modified Rankin Scaleの信頼性に関する研究-日本語版判定基準書および問診表の紹介、脳卒中 2007;29:6-13)等が用いられる。
 一定の期間後とは、発症後いつの時点でもよいが、被検者(動物)の社会復帰の状態を評価する観点から、例えば発症3ヶ月後から1年後までの間に評価するのが一般的である。予後の予測においては、予想方法の有用性を考慮して、発症直後から2週間程度の被検者から取得した血液試料中のCRTAC1蛋白質の量で、発症3ヵ月後の該被検者の状態を予測する方法等が好ましい。
 本発明の測定方法では、予め、予測目的時点で上記mRSをそれぞれ臨床的に判定された患者の、測定目的時の血液試料中のCRTAC1蛋白質量を測定し、予測目的時点で区別したいmRS間で、上述の方法で両mRS群を区別するカットオフ値を設定する。具体的に説明すると、例えば、発症3ヵ月後のmRSが0~1の患者と2~5の患者を区別する場合には、発症3ヵ月後(予測目的時)にmRSが0~5の患者の発症7日後(測定目的時)の血液試料中のCRTAC1蛋白質量を測定し、3ヵ月後のmRSが0~1の患者の測定値と2~5の患者の測定値との間にカットオフ値を設定する。この後、測定目的時の検体を採取し、検体中のCRTAC1蛋白質マーカーの含有量を測定して、この絶対値を、上記の方法で設定されたカットオフ値と比較することにより、予測目的時の該被検者(動物)の状態を予測することができる。
 本発明の予測方法で特に好ましくは、発症直後から2週間程度、さらに好ましくは発症直後から発症9日目の被検者から採取した検体中のCRTAC1蛋白質量を測定することにより、発症3ヵ月後付近の該被検者のmRSが2~5となるか/1以下となるかを予測する方法等が挙げられる。
 また、本発明の他の好ましい予測方法としては、発症直後から2週間程度、さらに好ましくは発症直後から発症9日目の被検者から採取した検体中のCRTAC1蛋白質量を測定することにより、発症3ヵ月後付近の該被検者のmRSが3~5となるか/2以下となるかを予測する方法、発症直後から2週間程度、さらに好ましくは発症直後から発症9日目の被検者から採取した検体中のCRTAC1蛋白質量を測定することにより、発症3ヵ月後付近の該被検者のmRSが4~5となるか/3以下となるかを予測する方法等が好ましい例として挙げられる。
 かくして、本発明の方法により脳梗塞の診断がついた被検者(動物)は、それぞれの疾患に適した治療法を受けることにより、予後の経過や治療効果が非常に良好となる。
(1-4)CRTAC1蛋白質マーカーを用いた脳梗塞の進行性予測の検査方法
 本発明のCRTAC1蛋白質マーカーを用いた脳梗塞検査方法の具体的方法として、被検者(動物)の脳梗塞の進行性を予測するための検査方法が挙げられる。脳梗塞の進行性は、脳梗塞発症後、ある一定期間以内に、その患者の脳梗塞による重症度の変化にて示される。重症度は、それ自体公知の既に確定している指標を用いて評価することができる。指標としては、例えば、National Institute of Health Stroke Scale(NIHSS)(Brott T. et al., Measurement of acute cerebral infarction: A clinical examination scale. Stroke, 20, 864 (1989))等が用いられる。
 一定の期間以内とは、発症後いつの時点まででもよいが、被検者(動物)の入院期間中の状態を評価する観点から、例えば発症直後から2週間以内までの間に評価するのが一般的である。進行性の予測においては、予想方法の有用性を考慮して、発症直後から1週間程度までに被検者から取得した血液試料中のCRTAC1蛋白質の量で、その後の該被検者の進行性の有無を予測する方法等が好ましい。
 本発明の測定方法では、予め、予測目的時点で上記NIHSSをそれぞれ臨床的に判定された患者の、測定目的時の血液試料中のCRTAC1蛋白質量を測定し、予測目的時点で区別したいNIHSSの変化で、上述の方法で進行性と非進行性を区別するカットオフ値を設定する。具体的に説明すると、例えば、脳梗塞発症直後のNIHSSに対して、2週間以内(予測目的時)に判定されたNIHSSが1以上増加する場合は進行性、変化しないか1以上減少する場合は非進行性と定義し、発症直後から発症7日目(測定目的時)までの血液試料中のCRTAC1蛋白質量を測定して、2週間以内のNIHSSが進行性の患者と非進行性の患者の測定値との間にカットオフ値を設定する。この後、測定目的時の検体を採取し、検体中のCRTAC1蛋白質マーカーの含有量を測定して、この絶対値を、上記の方法で設定されたカットオフ値と比較することにより、予測目的時の該被検者(動物)の状態を予測することができる。
 本発明の予測方法で特に好ましくは、発症直後から2週間程度、さらに好ましくは発症直後から発症9日目の被検者から採取した検体中のCRTAC1蛋白質量を測定することにより、その後の該被検者のNIHSSが脳梗塞発症直後に対して1以上増加するか/変化しないあるいは1以上減少するかを予測する方法等が挙げられる。
(2)脳梗塞測定用キット
 本発明は、さらに上記脳梗塞検査に用いるためのキット、あるいは下述する脳梗塞の予防もしくは治療効果の評価、あるいは脳梗塞予防もしくは治療薬のスクリーニング方法を行うためのキットも含まれる。キットの内容は、機器または試薬の組み合わせにより構成されるが、以下に述べる各構成要素と本質的に同一、またはその一部と本質的に同一な物質が含まれていれば、構成または形態が異なっていても、本発明のキットに包含される。試薬としては、例えば、免疫測定法によりCRTAC1蛋白質マーカーを測定する場合には、抗CRTAC1蛋白質マーカー抗体を含む。また、必要に応じ、生体試料の希釈液、抗体固定化固相、反応緩衝液、洗浄液、標識された二次抗体またはその抗体断片、標識体の検出用試薬、標準物質なども含まれる。生体試料の希釈液としては、界面活性剤、緩衝剤などにBSAやカゼインなどの蛋白質を含む水溶液などが挙げられる。
 抗体固定化固相としては、各種高分子素材を用途に合うように整形した素材に、抗分子マーカー抗体またはそれらの抗体断片を固相化したものが用いられる。形状としてはチューブ、ビーズ、プレート、ラテックスなどの微粒子、スティック等が、素材としてはポリスチレン、ポリカーボネート、ポリビニルトルエン、ポリプロピレン、ポリエチレン、ポリ塩化ビニル、ナイロン、ポリメタクリレート、ゼラチン、アガロース、セルロース、ポリエチレンテレフタレート等の高分子素材、ガラス、セラミックスや金属等が挙げられる。抗体の固相化の方法としては物理的方法と化学的方法またはこれらの併用方法等、公知の方法が挙げられる。例えば、ポリスチレン製96ウェルの免疫測定用マイクロタープレートに抗体または抗体断片等を疎水固相化したものが挙げられる。
 反応緩衝液は、抗体固定化固相の抗体と生体試料中の抗原とが結合反応をする際の溶媒環境を提供するものであればいかなるものでもよいが、界面活性剤、緩衝剤、BSAやカゼインなどの蛋白質、防腐剤、安定化剤、反応促進剤等を含む反応緩衝液が挙げられる。
 標識された二次抗体またはその抗体断片としては、本発明に用いられる抗体または抗体断片に西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP)、ウシ小腸アルカリホスファターゼ、β-ガラクトシダーゼなどの標識用酵素をラベルしたもの、緩衝剤、BSAやカゼインなどの蛋白質、防腐剤などを混合したものが用いられる。
 標識体の検出用試薬としては前記の標識用酵素に応じて、例えば西洋ワサビペルオキシダーゼであれば、テトラメチルベンジジンやオルトフェニレンジアミンなどの吸光測定用基質、ヒドロキシフェニルプロピオン酸やヒドロキシフェニル酢酸などの蛍光基質、ルミノールなどの発光基質が、アルカリホスファターゼであれば、4-ニトロフェニルフォスフェートなどの吸光度測定用基質、4-メチルウンベリフェリルフォスフェートなどの蛍光基質等が挙げられる。
(3)脳梗塞の予防もしくは治療効果の評価方法
 本発明の第2の態様は、脳梗塞の予防薬もしくは治療薬が投与された脳梗塞の予防もしくは治療を必要とする動物から採取された血液試料中のCRTAC1蛋白質マーカーの量を測定する工程を含む、該動物における脳梗塞の予防もしくは治療効果の評価方法である。
 脳梗塞の予防もしくは治療を必要とする動物とは、具体的には、脳梗塞の症状を示すヒトあるいは(1)記載の動物(これらを単に「被検者」と称することがある)や、上記(1)の方法により脳梗塞と診断された患者等が挙げられる。
 脳梗塞予防もしくは治療薬とは、脳梗塞予防または治療薬として用いられているものであればいずれのものでもよいが、例えば、ウロキナーゼ、組織プラスミノゲンアクチベーターの等血栓溶解剤、へパリン等の抗凝固剤、サイクロオキシゲナーゼ阻害薬、フォスフォリジエステラーゼ阻害薬、スロンボキセンA2(TXA2)合成阻害薬等の抗血小板剤、フリーラジカルスカベンジャー等の脳保護薬等が挙げられる。
 脳梗塞の予防薬もしくは治療薬が投与された脳梗塞の予防もしくは治療を必要とする動物から採取された血液試料におけるCRTAC1蛋白質マーカー量が、投与前の量に比べて増加又は減少するか、あるいは、脳梗塞を発症していない対照の動物における量に近づいた場合、予防または治療効果があったと判定することができる。
 病型により治療する脳梗塞予防もしくは治療薬が異なるため、CRTAC1蛋白質マーカーで病型診断を行えば患者に対して適切な治療を施すことが可能となる。例えば、ラクナ梗塞と診断されればスロンボキセンA2(TXA2)合成阻害薬で治療を行い、サイクロオキシゲナーゼ阻害薬で脳梗塞の再発を予防できる。また、該マーカーで予後不良となる可能性が予測できた場合には、フリーラジカルスカベンジャー等の数種の治療薬を治療早期から併用したり、リハビリテーションの内容を充実させることにより、予後が好転するような治療を施すことが可能となる。さらに、該マーカーで進行性となる可能性が予測できた場合には、治療早期からフリーラジカルスカベンジャーにアルガトロバン等の抗凝固剤やフォスフォリジエステラーゼ阻害薬等の抗血小板薬を併用するなどして薬物治療を充実させることにより、進行性を予防あるいは進行の程度を抑えて症状の重症化を防ぐことが可能となる。
(4)脳梗塞予防もしくは治療薬のスクリーニング方法
 本発明の第3の態様は、被検体と脳梗塞の予防薬もしくは治療薬の候補化合物を接触させた後、該被検体の血液試料中のCRTAC1蛋白質マーカー量を測定する工程を含む、脳梗塞の予防もしくは治療薬のスクリーニング方法である。
 被検体とは、CRTAC1蛋白質マーカーの含有量が、脳梗塞状態と同様の異常を示す非ヒト動物個体、組織、細胞等が用いられる。脳梗塞の症状を有する動物としては、例えば、外科的手法等で脳梗塞状態を形成させた脳梗塞モデル非ヒト動物(Yuji Kuge, Kazuo Minematsu et al. Nylon Monofilament for Intraluminal Middle Cerebral Artery Occlusionin Rats. Stroke, 26, 1655 (1995))等が挙げられる。被検体とともに、対照として被検体と同種の個体、組織、細胞等でCRTAC1蛋白質マーカーの含有量が、健常状態と同様(正常)であるものを用いることも好ましい。
 CRTAC1蛋白質マーカーをもとに、脳梗塞状態の非ヒト動物個体でヒトにおけるある病型に類似した病態を構築できれば、ある病型の脳梗塞患者における治療薬を開発するための実験系を確立することができる。また、非ヒト動物個体の予後を該マーカーでモニタリングすることにより、ヒトの脳梗塞の予後に有効な治療薬を開発することが可能となる。
 これらの被検体に接触させる脳梗塞予防もしくは治療薬候補化合物(以下、「候補化合物」と称することがある)としては、例えば、ペプチド、タンパク、非ペプチド性化合物、低分子合成化合物などが挙げられ、これらの化合物は新規な化合物であってもよいし、公知の化合物であってもよい。また、これらの化合物を含む、発酵生産物、細胞抽出液、植物抽出液、動物組織抽出液などでもよい。
 その投与量、投与方法、処理時間等は、用いる被検体に従って適宜選択すればよい。
 候補化合物と接触させた後に、該被検体中のCRTAC1蛋白質マーカーの含有量を測定する方法としては、各被検体に適した方法により行うことができる。例えば、被検体が細胞の場合には、公知の方法に従って細胞抽出液に調製し、これを試料として用いてもよいし、細胞を培養プレートやスライドグラス上に固定化し、これを試料として用いてもよい。例えば、細胞抽出液を調製してこれを試料とする場合には、ELISA法等により検出を行うことができる。これらの試料は、検出の結果得られた数値を正確に比較・解析できるように、あらかじめ抽出に用いる細胞数をそろえるか、精製されたRNA量又は抽出された蛋白質量をそろえることが好ましい。
 候補化合物と接触させた被検体におけるCRTAC1蛋白質マーカーの量が、接触前の量に比べて増加、又は減少するか、あるいは、対照の被検体における量に近づいた場合、該候補化合物は脳梗塞の予防または治療効果を有すると判定することができる。
 以下、実施例により本発明をさらに具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
実施例1 Cartilage Acidic Protein 1蛋白質マーカーを用いた健常者と脳梗塞患者を判別するための検査方法の評価
 脳梗塞発症直後(表中「DAY0」と記載されている)、発症7日後(表中「DAY7」と記載されている)時点の脳梗塞患者と健常者(それぞれ表2中に記載の人数)から採血を行い、EDTA血漿を取得した。R&D社のAnti-human CRTAC1 Antibody(カタログNo.AF5234)、R&D社のBiotinylated Anti-Human CRTAC1 Antibody(カタログNo.BAF5234)、及びR&D社のStreptavidin-HRP (カタログNo.DY998)を用いた免疫測定法により、EDTA血漿中のCRTAC1蛋白質濃度を測定した。具体的には脳梗塞患者由来の血漿(数十人分を混合)中のCRTAC1蛋白質濃度を任意に100U/mLと定め、これを用いて検量線を作成し、この検量線から血漿中のCRTAC1蛋白質の相対濃度(U/mL)を算出した。
 次に各採血時点において判別性能を評価するために、Fawcett, T. (2004) ROC Graphs:Notes and Practical Considerations for Researchers に記載の方法に従い ROC 曲線の AUC 値を算出した。その結果を表2に示す。それぞれの採血時点において、0.7を上回ったものが脳梗塞患者と健常者の判別するための検査方法として有用であることが示される。つまり、発症直後及び7日目の脳梗塞患者から血液を取得して、健常者と血漿中のCRTAC1蛋白質の濃度を比較することにより健常者と脳梗塞患者を判別するための検査が行えることがわかった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
実施例2 CRTAC1蛋白質マーカーを用いた脳梗塞病型を判別するための検査方法の評価
 脳梗塞の各病型に診断が確定している患者、具体的には、「ラクナ梗塞」(表中では「ラクナ」と称する)、「アテローム血栓性脳梗塞」(表中では、「アテローム血栓性」と称する)、「心原性脳塞栓症」(表中では、「心原性脳塞栓」と称する)、「大動脈原性脳塞栓症」(表中では、「大動脈原性脳塞栓」と称する)、「Branch atheromatous disease」(表中では「BAD」と称する)、「動脈解離」(表中では、「動脈解離」と称する)、あるいはそれらのいずれにも該当しない病型(表中では「分類不能型」と称する)の患者について、脳梗塞発症直後(表中「DAY0」と記載されている)、発症7日後(表中「DAY7」と記載されている)、時点で採血を行い(それぞれ表3中に記載の人数)からそれぞれEDTA血漿を取得した。
 該血漿中のCRTAC1蛋白質の濃度を実施例1の方法と同様に測定し、該測定値から実施例1と同様にROC 曲線の AUC 値を算出した。
 それぞれの採血時点において、0.7を上回ったものが脳梗塞患者の病型を判別するための検査方法として有用であることが示される。
 つまり、発症直後の各病型患者の血漿中のCRTAC1蛋白質の濃度を比較することにより、「アテローム血栓性脳梗塞」と「動脈解離」の病型の脳梗塞患者を判別するための検査を行うことができ、また、同じ比較において「心原性脳塞栓症」と「動脈解離」の病型の脳梗塞患者の判別、「ラクナ梗塞」と「Branch atheromatous disease」の病型の脳梗塞患者の判別、「ラクナ梗塞」と「動脈解離」の病型の脳梗塞患者の判別、「大動脈原性脳塞栓症」と「Branch atheromatous disease」の病型の脳梗塞患者の判別、「大動脈原性脳塞栓症」と「動脈解離」の病型の脳梗塞患者の判別、「Branch atheromatous disease」と「動脈解離」の病型の脳梗塞患者の判別、「Branch atheromatous disease」と「分類不能型脳梗塞」の病型の脳梗塞患者の判別、「心原性脳塞栓症」と「Branch atheromatous disease」の病型の脳梗塞患者の判別、「アテローム血栓性脳梗塞」と「Branch atheromatous disease」の病型の脳梗塞患者の判別、「Branch atheromatous disease」とそれ以外の病型の脳梗塞患者の判別、及び「動脈解離」とそれ以外の病型の脳梗塞患者の判別をするための検査を行えることがわかった。
 また、発症後7日目の各病型患者の血漿中のCRTAC1蛋白質の濃度を比較することにより、「アテローム血栓性脳梗塞」と「ラクナ梗塞」の病型脳梗塞患者を判別するための検査を行うことができ、また、同じ比較において「心原性脳塞栓症」と「ラクナ梗塞」の病型脳梗塞患者の判別、「心原性脳塞栓症」と「Branch atheromatous disease」の病型脳梗塞患者の判別、及び「アテローム血栓性脳梗塞」と「Branch atheromatous disease」の病型脳梗塞患者の判別をするための検査が行えることがわかった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
実施例3 CRTAC1蛋白質マーカーを用いた脳梗塞の予後予測のための検査方法の評価
 脳梗塞の予後は、脳梗塞発症後、ある一定期間の後に、その患者の脳梗塞による障害の程度にて示される。脳梗塞発症3ヶ月後の障害の程度を、日本版modified Rankin Scale(mRS)判定基準(篠原幸人らmRS信頼性研究グループ、modified Rankin Scaleの信頼性に関する研究-日本語版判定基準書および問診表の紹介、脳卒中 2007;29:6-13)を用いて0~5に分類した患者について、脳梗塞発症7日後(表中「DAY7」と記載されている)に採血を行い(それぞれ表4中に記載の人数)EDTA血漿を取得した。
 該血漿中のCRTAC1蛋白質の濃度を実施例1の方法と同様に測定し、該測定値から実施例1と同様にROC 曲線の AUC 値を算出した。その結果を表4に示す。
 それぞれの採血時点において、0.7を上回ったものが脳梗塞患者の予後を判別するための検査方法として有用であることが示される。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
 具体的には、脳梗塞発症後3ヶ月後の障害の程度(予後)について、3ヵ月後に各ランクとなる患者の発症後7日目の血漿中のCRTAC1蛋白質の濃度を比較することにより、発症後3ヶ月でランク2から5の患者と、ランク0から1の患者、ランク3から5の患者と、ランク0から2の患者、及びランク4から5の患者と、ランク0から3の患者を判別するための検査を行うことができることがわかった。
実施例4 CRTAC1蛋白質マーカーを用いた脳梗塞の進行性予測のための検査方法の評価
 脳梗塞発症直後(表中「DAY0」と記載されている)のNIHSSに対して,発症3日後,発症7日後,発症14日後のいずれかのポイントでNIHSSが1点以上増加した場合を進行性,NIHSSが変化しなかった場合及び1点以上減少した場合を非進行性と定義した。重症度および病型のサブグループ間の偏りをなくすため、発症直後のNIHSSが15以上の患者は除外した。該血漿中のCRTAC1蛋白質の濃度を実施例1の方法と同様に測定し、該測定値から実施例1と同様にROC 曲線の AUC 値を算出した。その結果を表5に示す。
 発症7日後の採血時点において、0.7を上回ったものが進行性患者と非進行性患者の判別するための検査方法として有用であることが示される。つまり、発症7日目の脳梗塞患者から血液を取得して、血漿中のCRTAC1蛋白質の濃度を比較することにより進行性患者と非進行性患者を判別するための検査が行えることがわかった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
 本発明の方法によれば脳梗塞の診断や予後予測の検査や治療・予防効果の評価を行うことができ、医療や診断の分野で有用である。また、本発明の方法によれば脳梗塞の治療・予防薬をスクリーニングすることができ、医薬分野でも有用である。

Claims (11)

  1.  被検動物より採取された血液試料中のCartilage Acidic Protein 1蛋白質の量を測定する工程を含み、該蛋白質量が健常者と比較して低下していた場合に脳梗塞であると判断することを特徴とする、該動物における脳梗塞の診断のための検査方法。
  2.  被検動物より採取された血液試料が、脳梗塞様症状の発症直後から発症後20日目の間のいずれかの時期において被検動物より採取されたものであることを特徴とする請求項1に記載の脳梗塞の診断のための検査方法。
  3.  被検動物より採取された血液試料中のCartilage Acidic Protein 1蛋白質の量を測定する工程を含む、該動物における脳梗塞の病型診断のための検査方法。
  4.  病型診断が、ラクナ梗塞、アテローム血栓性、心原性脳塞栓症、大動脈原性脳塞栓症、Branch atheromatous disease、動脈解離、分類不能のいずれかを診断するものである請求項3に記載の検査方法。
  5.  被検動物より採取された血液試料中のCartilage Acidic Protein 1蛋白質の量を測定する工程を含む、該動物における脳梗塞の予後の予測のための検査方法。
  6.  被検動物より採取された血液試料が、脳梗塞発症7日目に被検動物より採取されたものであることを特徴とする請求項5に記載の脳梗塞の予後の予測のための検査方法。
  7.  被検動物より採取された血液試料中のCartilage Acidic Protein 1蛋白質の量を測定する工程を含む、該動物における脳梗塞の進行性の予測のための検査方法。
  8.  被検動物より採取された血液試料が、脳梗塞発症7日目に被検動物より採取されたものであることを特徴とする請求項7に記載の脳梗塞の進行性の予測のための検査方法。
  9.  脳梗塞の予防薬もしくは治療薬が投与された脳梗塞の予防もしくは治療を必要とする動物から採取された血液試料中のCartilage Acidic Protein 1蛋白質の量を測定する工程を含む、該動物における脳梗塞の予防もしくは治療効果の評価方法。
  10.  被検体と脳梗塞の予防薬または治療薬の候補化合物を接触させた後、該被検体中のCartilage Acidic Protein 1蛋白質の量を測定する工程を含む、脳梗塞の予防薬または治療薬のスクリーニング方法。
  11.  Cartilage Acidic Protein 1蛋白質の量を測定し得る試薬を含んでなる、脳梗塞検査用、脳梗塞治療効果評価用、または脳梗塞予防・治療薬候補化合物のスクリーニング用キット。
PCT/JP2011/076415 2010-11-16 2011-11-16 Cartilage Acidic Protein 1蛋白質による脳梗塞の検査方法 WO2012067151A1 (ja)

Priority Applications (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2012544280A JPWO2012067151A1 (ja) 2010-11-16 2011-11-16 CartilageAcidicProtein1蛋白質による脳梗塞の検査方法
CN2011800551155A CN103210312A (zh) 2010-11-16 2011-11-16 通过软骨酸性蛋白1 检测脑梗塞的方法
KR1020137015013A KR20140023260A (ko) 2010-11-16 2011-11-16 Cartilage Acidic Protein 1 단백질에 의한 뇌경색의 검사 방법
EP11841158.6A EP2642292A4 (en) 2010-11-16 2011-11-16 TEST PROCEDURE FOR BRAIN STICKS BY MEANS OF ACIDIC ACID PROTEIN 1
US13/895,919 US20130252265A1 (en) 2010-11-16 2013-05-16 Method for testing for cerebral infarction via cartilage acidic protein 1

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2010-255932 2010-11-16
JP2010255932 2010-11-16

Related Child Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
US13/895,919 Continuation US20130252265A1 (en) 2010-11-16 2013-05-16 Method for testing for cerebral infarction via cartilage acidic protein 1

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2012067151A1 true WO2012067151A1 (ja) 2012-05-24

Family

ID=46084074

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP2011/076415 WO2012067151A1 (ja) 2010-11-16 2011-11-16 Cartilage Acidic Protein 1蛋白質による脳梗塞の検査方法

Country Status (6)

Country Link
US (1) US20130252265A1 (ja)
EP (1) EP2642292A4 (ja)
JP (1) JPWO2012067151A1 (ja)
KR (1) KR20140023260A (ja)
CN (1) CN103210312A (ja)
WO (1) WO2012067151A1 (ja)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2014080979A1 (ja) 2012-11-22 2014-05-30 公立大学法人横浜市立大学 炎症及び脱髄の少なくとも一方を伴う神経疾患の検出方法

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103901214A (zh) * 2014-04-04 2014-07-02 刘新峰 一种用于预测急性脑梗死患者发生微出血的试剂
KR102140581B1 (ko) 2019-08-13 2020-08-03 중앙대학교 산학협력단 뇌경색 아형 진단용 바이오마커 조성물

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20100081136A1 (en) 2006-10-16 2010-04-01 Stefan Golz Crtac as a biomarker, therapeutic and diagnostic target
JP2010523124A (ja) * 2007-04-06 2010-07-15 ジェンザイム・コーポレーション 細胞および細胞培養物を評価する方法

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20120015904A1 (en) * 2010-07-14 2012-01-19 Regents Of The University Of California Biomarkers for diagnosis of transient ischemic attacks

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20100081136A1 (en) 2006-10-16 2010-04-01 Stefan Golz Crtac as a biomarker, therapeutic and diagnostic target
JP2010523124A (ja) * 2007-04-06 2010-07-15 ジェンザイム・コーポレーション 細胞および細胞培養物を評価する方法

Non-Patent Citations (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
"Clinical Test Handbook", KANEHARA & CO., LTD.
"New Biochemistry Experiments Lecture", TOKYO KAGAKU-DOJIN
BROTT T. ET AL., STROKE, vol. 20, 1989, pages 864
BROTT T. ET AL.: "Measurement of acute cerebral infarction: A clinical examination scale", STROKE, vol. 20, 1989, pages 864
E. HARLOW ET AL.: "Antibodies-A Laboratory Manual", 1988, COLD SPRING HARBOR LABORATORY
LEE, L. J. ET AL., STROKE, 2000, pages 1081 - 1089
MAHONEY, F. L ET AL., MARYLAND STATE MED J, 1965, pages 61 - 65
MONTANER ET AL., STROKE, 2008, pages 2280 - 2287
See also references of EP2642292A4 *
SHIBAZAKI, K ET AL., INTER MED, 2009, pages 1601 - 1604
T. MANIATIS ET AL.: "Molecular Cloning, A Laboratory Manual", 2001, COLD SPRING HARBOR LABORATORY
VAN SWIETEN, J. C ET AL., STROKE, 1988, pages 604 - 607
YUJI KUGE; AZUO MINEMATSU ET AL.: "Nylon Monofilament for Intraluminal Middle Cerebral Artery Occlusionin Rats", STROKE, vol. 26, 1995, pages 1655
YUKITO SHINOHARA ET AL.: "mRS Reliability Study Group, Reliability of modified Rankin Scale- Introduction of a guidance scheme and a questionnaire written in Japanese", JPN J STROKE, vol. 29, 2007, pages 6 - 13
YUKITO SHINOHARA ET AL.: "mRS Reliability Study Group, Reliability of modified Rankin Scale-Introduction of a guidance scheme and a questionnaire written in Japanese", JPN J STROKE, vol. 29, 2007, pages 6 - L3

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2014080979A1 (ja) 2012-11-22 2014-05-30 公立大学法人横浜市立大学 炎症及び脱髄の少なくとも一方を伴う神経疾患の検出方法
EP2924437A4 (en) * 2012-11-22 2016-08-31 Public Univ Corp Yokohama City METHOD FOR DETECTING A NEUROLOGICAL ILLNESS ASSOCIATED WITH INFLAMMATION AND / OR DEMYELINATION
JPWO2014080979A1 (ja) * 2012-11-22 2017-01-05 公立大学法人横浜市立大学 炎症及び脱髄の少なくとも一方を伴う神経疾患の検出方法

Also Published As

Publication number Publication date
CN103210312A (zh) 2013-07-17
JPWO2012067151A1 (ja) 2014-05-12
EP2642292A4 (en) 2014-05-14
KR20140023260A (ko) 2014-02-26
EP2642292A1 (en) 2013-09-25
US20130252265A1 (en) 2013-09-26

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US20140350129A1 (en) Diagnostic assay to predict cardiovascular risk
CA2913524C (en) Method for aiding differential diagnosis of stroke
CA2857589C (en) Biomarker-based methods and biochips for aiding the diagnosis of stroke
Fattouh et al. Inflammatory biomarkers in chronic obstructive pulmonary disease
JP2010286279A (ja) 自己免疫疾患検査用バイオマーカー及び検査方法
JP2008547006A (ja) 変形性関節症のタンパク質プロフィール
Murray et al. Fecal calprotectin in gastrointestinal disease
WO2012067151A1 (ja) Cartilage Acidic Protein 1蛋白質による脳梗塞の検査方法
EP3545310B1 (en) Gfap accumulating in stroke
JP2011237402A (ja) ガレクチン−3結合蛋白質による脳梗塞の検査方法
JP2012107935A (ja) Desmoglein−2蛋白質による脳梗塞の検査方法
JP2011107116A (ja) 脳梗塞の検査方法
WO2012067150A1 (ja) Interleukin-6 receptor subunit beta蛋白質による脳梗塞の検査方法
JP2012107933A (ja) Hemopexin蛋白質による脳梗塞の検査方法
JP2012107932A (ja) Clusterin蛋白質による脳梗塞の検査方法
WO2012067152A1 (ja) Endothelial Protein C Receptor蛋白質による脳梗塞の検査方法
JP2015111050A (ja) Kallistatin蛋白質による脳梗塞検査方法
JP2012107931A (ja) Bcl−XL蛋白質による脳梗塞の検査方法
Muharam et al. Correlation of calprotectin serum levels with degrees of endometriosis: A cross-sectional study
JP2013205242A (ja) Il−8蛋白質/nihssによる脳梗塞の予後検査方法
CN117813505A (zh) 使用了可溶型clec2的急性脑血管病的风险评价方法
JP6799226B2 (ja) 骨髄線維症の状態の診断を補助する方法、予後の予測を補助する方法、及び治療効果のモニター方法、並びにそれらの方法に用いるマーカー及び装置
Aoyama et al. Changes of leucine-rich alpha 2 glycoprotein could be a marker of changes of endoscopic and histologic activity of ulcerative colitis
JP2021181890A (ja) 成人スチル病(asd)を判定するためのバイオマーカー
Reisinger et al. Non-invasive measurement of fecal calprotectin and serum amyloid A (SAA) combined with intestinal Fatty Acid Binding Protein (I-FABP) in necrotizing enterocolitis (NEC)

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 11841158

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2012544280

Country of ref document: JP

Kind code of ref document: A

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 20137015013

Country of ref document: KR

Kind code of ref document: A

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2011841158

Country of ref document: EP