WO2011016376A1 - アイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類及びその製造方法、並びに陽電子放射断層画像撮像用分子プローブ及びそれを用いたシクロオキシゲナーゼ等のイメージング方法 - Google Patents

アイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類及びその製造方法、並びに陽電子放射断層画像撮像用分子プローブ及びそれを用いたシクロオキシゲナーゼ等のイメージング方法 Download PDF

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充穂 宿里
美樹 後藤
久志 土居
浩隆 尾上
正昭 鈴木
恭良 渡辺
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Definitions

  • the present invention relates to isotope-labeled 2-arylpropionic acids, a method for producing the same, a probe for positron emission tomographic imaging (hereinafter referred to as “PET”), and a method for imaging cyclooxygenase using the probe.
  • the isotope-labeled 2-arylpropionic acids and the method for producing the same of the present invention can be suitably used as a molecular probe for use in positron emission tomography (hereinafter referred to as “PET method”) and a method for producing the same.
  • imaging of cyclooxygenase can be performed by using the molecular probe of the present invention.
  • NSAIDs non-steroidal anti-inflammatory drugs
  • NSAIDs non-steroidal anti-inflammatory drugs
  • cyclooxygenase an enzyme called cyclooxygenase
  • pathological conditions such as pain, fever, chronic and acute inflammation, arthritis, colon cancer, angiogenesis, asthma, arteriosclerosis, Alzheimer's disease, Parkinson's disease. For this reason, it is considered that many pathological conditions can be elucidated and diagnosed by investigating the behavior of NSAIDs in vivo.
  • a tracer labeled with a short-lived radionuclide that emits a positron such as 11 C or 18 F is administered into a living body, and ⁇ rays generated by the tracer are emitted from a PET camera (from a gamma ray scintillator and a photomultiplier tube).
  • a PET camera from a gamma ray scintillator and a photomultiplier tube.
  • the PET method can noninvasively and quantitatively track the drug behavior of a drug in a living body including small animals to humans and the degree of arrival at a target site.
  • NSAIDs such as ibuprofen and naproxen inhibit the action of an enzyme called cyclooxygenase in the body and show an anti-inflammatory action, but it is known that cyclooxygenase is involved not only in inflammation but also in tumors and Alzheimer's disease. For this reason, in order to apply NSAIDs to the PET method, a number of NSAIDs are labeled with 11 C and 18 F (Non-Patent Documents 1 to 15). This is because by analyzing a PET image of NSAIDs, non-invasive imaging of cyclooxygenase becomes possible, and thus extremely useful information can be obtained in each field such as biology, drug development, and medicine.
  • 11 C, 18 F and the like are used as short-lived radionuclides used in the PET method, and compounds labeled with these radionuclides are used as tracers.
  • 11 C uses carbon atoms present in organic compounds, so it has a very wide range of applications and can be said to be an ideal radionuclide, but it has a short half-life of 20 minutes, from synthesis to measurement by the PET method. Must be done in a very short time.
  • the present invention has been made in view of the above-described conventional situation, and can be produced in a short time, can be suitably used for the PET method, and can be used for imaging of cyclooxygenase, and a method for producing the same The purpose is to provide.
  • the present inventors paid attention to 2-arylpropionic acids and derivatives thereof such as ibuprofen and naproxen classified into 2-arylpropionic acids among labeled NSAIDs compounds.
  • 2-arylpropionic acids and derivatives thereof such as ibuprofen and naproxen classified into 2-arylpropionic acids among labeled NSAIDs compounds.
  • arylacetic acid having hydrogen at the benzyl position as a precursor, [ 11 C] methyl group was introduced in a very short time and succeeded in purification.
  • the PET method was performed using this isotope-labeled 2-arylpropionic acid as a tracer, the labeled drug was successfully accumulated for the first time in the world to accumulate at the cyclooxygenase expression site and show specific binding. .
  • the isotope-labeled 2-arylpropionic acids of the present invention have the following general formula (1) (wherein Ar represents an aryl group which may have a substituent, and R 1 represents 11 CH 3 , CH 2 18 F and CF 2 18 F, R 2 represents hydrogen or an alkyl group which may have a branch, provided that Ar is a benzene ring, R 1 is 11 CH 3 and R 2 is hydrogen. Or a pharmaceutically acceptable salt, hydrate, solvate or prodrug thereof.
  • isotope-labeled R 1 is introduced into the carbon sandwiched between the carbonyl group serving as an electron withdrawing group and the aryl group. For this reason, it is possible to easily introduce isotope-labeled R 1 from the precursor in which R 1 in the general formula (1) is hydrogen via a carbanion. Since this reaction proceeds instantaneously and ester hydrolysis is completed within 1 minute, the synthesis can be completed in a short time although it is a two-step synthesis. For this reason, the rate at which the radioactivity of an isotope is attenuated by the time until synthesis is small, and it can be used as a molecular probe effective for the PET method.
  • R 2 is preferably an alkyl group having 1 to 6 carbon atoms.
  • the isotope-labeled 2-arylpropionic acids of the present invention include salts, hydrates, solvates and prodrugs in addition to carboxylic acids.
  • the prodrug refers to a compound that is hydrolyzed in vivo to produce the isotope-labeled 2-arylpropionic acid of the present invention.
  • Prodrugs of the present invention include compounds produced by all prodrugation techniques known to those skilled in the art. For example, when it has a carboxyl group or an amino group, a compound derived from such an ester group or amide group that can be easily hydrolyzed in vivo corresponds to a prodrug.
  • the carboxyl group present in the isotope-labeled 2-arylpropionic acid is an alkyloxy such as methyl, ethyl or the like, methyloxymethyl, ethyloxymethyl, 2-methyloxyethyl, 2-methyloxyethyloxymethyl or the like.
  • the aryl group has an amino group, a compound in which the amino group is derived to acetamide or the like can be mentioned.
  • pharmaceutically acceptable salts include base addition salts and acid addition salts.
  • the base addition salt include inorganic base salts such as sodium salt and calcium salt, and organic base salts such as meglumine salt and trishydroxymethylaminomethane salt.
  • acid addition salts include inorganic acid salts such as hydrochloride, hydrobromide, phosphate, sulfate, and nitrate, formate, acetate, propionate, maleate, fumarate, and succinic acid.
  • Organic acid salts such as salts, lactate, malate, tartrate, citrate, ascorbate, malonate, oxalate, glycolate, phthalate, benzenesulfonate, etc. A combination of the above-mentioned salts can also be used.
  • R 1 can be 11 CH 3 .
  • the isotope-labeled 2-arylpropionic acids of the present invention can be synthesized quickly and easily by the following method. That is, the method for producing an isotope-labeled 2-arylpropionic acid according to the present invention represents a 2-arylacetic acid ester represented by the following general formula (2) (wherein Ar represents an aryl group which may have a substituent, R 2 Represents an alkyl group that may have hydrogen or a branch, and R 3 represents hydrogen, an alkyl group that may have a substituent, or an aryl group that may have a substituent, and a base is added and mixed Either 11 CH 3 X, CH 2 18 FX or CF 2 18 FX (where X represents any of I, Br and triflate groups) in the carbanion generation step and the reaction solution after the carbanion generation step And isotope label introduction step of adding.
  • a 2-arylacetic acid ester represented by the following general formula (2) (wherein Ar represents an aryl group which may have a
  • a base is added to and mixed with the 2-arylacetic acid ester represented by the general formula (2) in the carbanion production step.
  • the substituent for R 3 include a halogen atom, a carboxyl group, an ester group, a hydroxyl group, a thiol group, and an alkoxy group.
  • R 3 is an alkyl group, an alkyl group having 6 to 10 carbon atoms is preferable.
  • R 3 is an aryl group, an aryl group having 6 to 10 carbon atoms is preferred.
  • anhydrous N, N-dimethylformamide (DMF), anhydrous tetrahydrofuran or the like can be used.
  • sodium hydride, potassium hydride, lithium diisopropylamide, sodium bis (trimethylsilyl) amide, lithium bis (trimethylsilyl) amide and the like can be used.
  • active hydrogen bonded to the carbon sandwiched between the aryl group and the carbonyl group is eliminated, and a carbanion is generated.
  • any one of 11 CH 3 X, CH 2 18 FX and CF 2 18 FX is added.
  • These labeled compounds can be easily synthesized by chemical conversion from nuclides generated by a cyclotron. Thereby, any of 11 CH 3 , CH 2 18 F and CF 2 18 F is introduced in place of hydrogen at the benzyl position. In addition, if a hydrolysis reaction is further performed, the corresponding carboxylic acid can be obtained.
  • Non-Patent Document 13 the idea of introducing 11 CH 3 using the acetoacetate synthesis method is shown, but there are many steps such as requiring a decarboxylation step.
  • the production of the isotope-labeled 2-arylpropionic acids of the present invention by this method is difficult to apply to the PET method because the operation is complicated and time-consuming.
  • [ 18 F] flurbiprofen has been synthesized in Non-Patent Document 3, but since the method of the present invention can label a common part of many 2-arylpropionic acids in the same way, It can be said that it is a wide method.
  • the isotope-labeled 2-arylpropionic acids of the present invention can be suitably used as a molecular probe for PET.
  • the present inventors confirmed that imaging of cyclooxygenase and brain inflammation involved in neurodegeneration in Alzheimer's disease is possible by applying the isotope-labeled 2-arylpropionic acids of the present invention to the PET method. is doing.
  • an ester can be used as a prodrug of isotope-labeled 2-arylpropionic acid.
  • an ester form as will be described later in Examples, it is possible to improve the ability to migrate into the brain compared to administration in the form of carboxylic acid, and imaging of inflammatory sites in the brain can be performed.
  • the isotope-labeled 2-arylpropionic acids of the present invention can be obtained by the following reaction.
  • 2-aryl acetate ester having hydrogen at the benzyl position is used as a precursor, and hydrogen at the benzyl position is extracted with a base to form a carbanion. Then, it is further reacted with R 1 X (where R 1 is any one of 11 CH 3 , CH 2 18 F and CF 2 18 F, and X represents any one of I, Br and a triflate group).
  • R 1 X where R 1 is any one of 11 CH 3 , CH 2 18 F and CF 2 18 F, and X represents any one of I, Br and a triflate group.
  • the aryl group has a functional group having an active hydrogen such as an amino group or a hydroxyl group
  • the protection / deprotection process described in Protective Groups in Organic Synthesis Can be used.
  • the desired isotope-labeled 2-arylpropionic acids are in the ester form, the final hydrolysis may not be performed.
  • the finally obtained administration solution of isotope-labeled 2-arylpropionic acids can be prepared by dissolving in physiological saline with ethylene glycol, ethanol, Tween 80, ascorbic acid, cyclodextrin and the like.
  • the total time for the synthesis, separation, and intravenous solution preparation of [ 11 C] ibuprofen methyl ester (4) was about 30 minutes.
  • the retention time was about 6 minutes and the purity was 99% or more.
  • [ 11 C] naproxen (5) was synthesized from methyl 2- (6-methoxynaphthalen-2-yl) acetate (USP3896157) by the same procedure as in Example 1.
  • the radioactivity was 3.30 GBq at the end of the reaction, and the specific radioactivity was 29 GBq / ⁇ mol.
  • the total time for the synthesis, separation and intravenous solution preparation of [ 11 C] naproxen (5) was about 29 minutes.
  • the retention time was 5.2 minutes and the purity was 99% or more.
  • [ 11 C] naproxen methyl ester (6) was synthesized from methyl-2- (6-methoxynaphthalen-2-yl) acetate by the same procedure as in Example 2.
  • the radioactivity was 3.30 GBq at the end of the reaction, and the specific radioactivity was 29 GBq / ⁇ mol.
  • the total time for the synthesis, separation, and intravenous preparation of [ 11 C] naproxen methyl ester (6) was about 32 minutes.
  • the retention time was 5.5 minutes and the purity was 99% or more.
  • [ 11 C] ketoprofen (7) was synthesized from methyl 2- (3-benzoylphenyl) acetate (Org. Lett. 2002, 4, 3083-3085) by the same procedure as in Example 1.
  • the radioactivity was 3.40 GBq at the end of the reaction, and the specific radioactivity was 40 GBq / ⁇ mol.
  • the total time for the synthesis, separation and intravenous solution preparation of [ 11 C] ketoprofen (7) was about 28 minutes.
  • the retention time was 6.8 minutes and the purity was 99% or more.
  • ketoprofen methyl ester (8) was synthesized from methyl 2- (3-benzoylphenyl) acetate by the same procedure as in Example 2.
  • [ 11 C] ketoprofen methyl ester (8) flowed out with a retention time of 12 minutes.
  • the radioactivity was 5.4 GBq at the end of the reaction, and the specific radioactivity was 46 GBq / ⁇ mol.
  • the total time for the synthesis, separation and intravenous solution preparation of [ 11 C] ketoprofen methyl ester (8) was about 27 minutes.
  • the retention time was 6.0 minutes and the purity was 99% or more.
  • [ 11 C] phenoprofen (9) was synthesized from ethyl 2- (3-phenoxyphenyl) acetate (J. Med. Chem. 2005, 48, 995-1018) by the same procedure as in Example 1.
  • the radioactivity was 5.99 GBq at the end of the reaction, and the specific activity was 25 GBq / ⁇ mol.
  • the total time for the synthesis, separation and intravenous solution preparation of [ 11 C] fenoprofen (9) was about 40 minutes.
  • the retention time was 8.4 minutes and the purity was 99% or more.
  • [ 11 C] phenoprofen methyl ester (10) was synthesized from methyl 2- (3-phenoxyphenyl) acetate by the same procedure as in Example 2.
  • the radioactivity was 4.8 GBq at the end of the reaction and the specific radioactivity was 43 GBq / ⁇ mol.
  • [ 11 C] loxoprofen (11) was synthesized from methyl 2- ⁇ 4- (2-oxocyclopentyl) phenyl ⁇ acetate (GB2078732) by the same procedure as in Example 1.
  • the radioactivity was 2.1 GBq at the end of the reaction, and the specific radioactivity was 33 GBq / ⁇ mol.
  • the total time for the synthesis, separation, and intravenous preparation of [ 11 C] loxoprofen methyl ester (12) was about 27 minutes.
  • the retention time was 11.5 minutes and the purity was 98% or more.
  • [ 11 C] flurbiprofen (13) was synthesized by the same method as in Example 1 using methyl 2- (2-fluorobiphenyl-4-yl) acetate (USP3755427) as a starting material.
  • [ 11 C] flurbiprofen (13) has a retention time of 14- Spilled in 16 minutes.
  • the radioactivity was 3.1 GBq at the end of the reaction, and the specific radioactivity was 76 GBq / ⁇ mol.
  • the total time for the synthesis, separation, and intravenous solution preparation of [ 11 C] flurbiprofen (13) was about 40 minutes.
  • [ 11 C] flurbiprofen methyl ester (14) was synthesized by the same method as in Example 2 using methyl 2- (2-fluorobiphenyl-4-yl) acetate as a starting material.
  • [ 11 C] flurbiprofen methyl ester (14) flowed out with a retention time of 15-16 minutes as shown in FIG.
  • the radioactivity was 5.8 GBq at the end of the reaction and the specific radioactivity was 41 GBq / ⁇ mol.
  • the total time for the synthesis, separation, and preparation of intravenous injection solution of [ 11 C] flurbiprofen methyl ester (14) was about 30 minutes.
  • [ 11 C] flurbiprofen ethyl ester (16) was synthesized by the same method as in Example 2 using ethyl 2- (2-fluorobiphenyl-4-yl) acetate (US3755427) as a starting material.
  • the radioactivity was 4.65 GBq at the end of the reaction, and the specific radioactivity was 42 GBq / ⁇ mol.
  • the total time for the synthesis, separation, and intravenous solution preparation of [ 11 C] flurbiprofen ethyl ester (16) was about 37 minutes.
  • [ 11 C] flurbiprofen ethyl ester (16) was identified by mixing analytical samples of flurbiprofen ethyl ester (Chem. Pharm. Bull.
  • n-Propyl 2- (2-fluorobiphenyl-4-yl) acetic acid 150 mg, 0.65 mmol was dissolved in dichloromethane (3 mL) and stirred with oxalyl chloride (67 ⁇ L, 99 mg, 0.78 mmol).
  • DMF 10 ⁇ L was added at room temperature.
  • propanol 97 mL, 78 mg, 1.3 mmol was added.
  • [ 11 C] flurbiprofen n-propyl was prepared from n-propyl 2- (2-fluorobiphenyl-4-yl) acetate (18) synthesized from Step 1 of Example 15 in the same manner as in Example 2. An ester (17) was synthesized.
  • [ 11 C] flurbiprofen n-propyl ester (17) flowed out with a retention time of 13 minutes.
  • the radioactivity was 1.4 GBq at the end of the reaction, and the specific radioactivity was 26 GBq / ⁇ mol.
  • the total time for the synthesis, separation, and preparation of the intravenous injection solution of [ 11 C] flurbiprofen n-propyl ester (17) was about 34 minutes.
  • [ 11 C] flurbiprofen n-propyl ester (17) was identified by mixing a sample of flurbiprofen n-propyl ester (J. Org. Chem.
  • [ 11 C] flurbiprofen 2-propyl ester (20) was synthesized from 2-propyl (2-fluorobiphenyl-4-yl) acetate (20) synthesized from Step 1 of Example 16 in the same manner as in Example 2. 19) was synthesized.
  • the total time for the synthesis, separation, and preparation of the intravenous solution of [ 11 C] fluviroprofen 2-propyl ester (19) was about 36 minutes.
  • [ 11 C] methyl flurbiprofen (25) was synthesized by the same method as in Example 1 using flurbiprofen methyl ester as a starting material.
  • FIG. 19 [ 11 C] methyl flurbiprofen (25) was retained. Spilled in 14 minutes.
  • the radioactivity was 3.68 GBq at the end of the reaction, and the specific radioactivity was 42 GBq / ⁇ mol.
  • the total time for the synthesis, separation, and intravenous solution preparation of [ 11 C] methylflurbiprofen (25) was about 32 minutes.
  • [ 11 C] Methylflurbiprofen (25) was identified by mixing analytical samples of methylflurbiprofen (Bioorg. Med. Chem. Lett. 2006, 16, 2219-222) with analytical HPLC.
  • the retention time was 7.6 minutes and the purity was 99% or more.
  • [ 11 C] methyl flurbiprofen methyl ester (26) was synthesized by the same method as in Example 2 using flurbiprofen methyl ester as a starting material.
  • the radioactivity was 2.32 GBq at the end of the reaction and the specific radioactivity was 37 GBq / ⁇ mol.
  • the total time for the synthesis, separation, and preparation of intravenous injection solution of [ 11 C] methylflurbiprofen methyl ester (26) was about 32 minutes.
  • [ 11 C] methyl flurbiprofen methyl ester (26) was identified by mixing a sample of methyl flurbiprofen methyl ester (Bioorg. Med. Chem. Lett.
  • Methyl 2- (2-fluorobiphenyl-4-yl) acetate was used as a starting material, and (R)-[ 11 C] flurbiprofen methyl ester (27R) and ( S)-[ 11 C] flurbiprofen methyl ester (27S) was synthesized.
  • Example 6 ketoprofen methyl ester (8) was subjected to PET imaging using a brain inflammation model rats.
  • intracerebral inflammation was induced by injecting 0.5 ⁇ g of lipopolysaccharide (LPS), a component of the outer membrane of Gram-negative bacteria, into the left striatum of rats (Hunter RL, Dragicevic N, Seifert K, Choi DY, Liu M, Kim HC, Cass WA, Sullivan PG, Bing G. Inflammation induces mitochondrial dysfunction and dopaminergic neurodegeneration in the nigrostriatal system. J Neurochem. 2007 100: 5: 1375-86.
  • LPS lipopolysaccharide
  • ketoprofen methyl ester (8) was administered from the tail vein, and imaging was performed for 45 minutes using a PET device for small animals (microPET, manufactured by SIMENS).
  • [ 11 C] ketoprofen methyl ester (radioactivity 72-74 MBq) injection solution was prepared by diluting to a volume of 1.0 CC with physiological saline.
  • an injection solution containing 10 mg / kg of ketoprofen methyl ester (the final concentration of the solvent was 5% DMSO, 5% tween20) was prepared.
  • brain sections were prepared and Ex vivo autoradiogram (ARG) experiments were performed.
  • ARG Ex vivo autoradiogram
  • rats were perfused with physiological saline, and a slice prepared 2 mm thick from the removed brain was exposed on an imaging plate BAS SR-2040 (Fuji Film) for 1 hour, and a fluoro image analyzer ( This was performed by reading using FLA7000).
  • fluoro image analyzer This was performed by reading using FLA7000.
  • immunohistochemical staining of brain sections was performed using specific antibodies.
  • a 20 ⁇ m frozen section was prepared from the brain section used in the autoradiogram described above, and the one pasted on a slide glass was anticyclooxygenase 2 (200-fold concentration diluted in PBS-T as a primary antibody).
  • a reaction with a biotin-labeled anti-rabbit IgG antibody manufactured by VECTOR
  • an avidin-biotin-labeled peroxidase complex VECTASTAIN Elite ABC Kit, manufactured by VECTOR.
  • the color development method the DAB method in which it was reacted with diaminobenzine was used.
  • FIG. 22a shows that [ 11 C] ketoprofen methyl ester (8) penetrates the blood brain barrier and accumulates in the inflamed area around the LPS injection site on the left side of the brain. This accumulation was significantly reduced by administration of non-RI-labeled ketoprofen methyl ester 10 mg / kg, indicating that the accumulation of [ 11 C] ketoprofen methyl ester in the inflammatory region was specific. Also, as shown in FIG.
  • Example 6 The synthesized in Example 6 [11 C] ketoprofen methyl ester (21) was subjected to PET imaging using Alzheimer's disease model mice.
  • a transgenic mouse (APP-Tg) in which amyloid precursor protein (APP) in familial Alzheimer's disease was overexpressed was purchased from Taconic USA.
  • APP amyloid precursor protein
  • [ 11 C] ketoprofen methyl ester (21) was administered from the tail vein, and a PET device for small animals (microPET, manufactured by SIMENS) was used. For 30 minutes.
  • ketoprofen methyl ester (21) (radioactivity 45-60 MBq) injection solution was prepared by diluting with physiological saline to a volume of 1.0 CC.
  • SUV Standard Uptake Value
  • FIG. 25 shows PET addition average images for 25 minutes from 5 minutes after administration of [ 11 C] ketoprofen methyl ester (21) and quantitative values (SUVs) of accumulated amounts.
  • [ 11 C] ketoprofen methyl ester (21) was shown to be highly accumulated in APP-Tg mouse brain compared to Wild Type mouse brain.
  • the site where [ 11 C] ketoprofen methyl ester is highly accumulated is the site where accumulation of amyloid ⁇ , which is a major component of senile plaques, is reported in the brain of APP-Tg mice (Am J Pathol. 1998; 152 (1): 307-17.). From this fact, it was proved that imaging of intracerebral inflammation involved in neurodegeneration in Alzheimer's disease is possible by using [ 11 C] ketoprofen methyl ester (21).
  • Example 2 is a HPLC chart of the reaction mixture in Example 1, and an arrow is a peak of [ 11 C] ibuprofen. It is a HPLC chart of the reaction liquid mixture in Example 2, and the arrow is a peak of [ 11 C] ibuprofen methyl ester. It is a HPLC chart of the reaction liquid mixture in Example 3, and the arrow is a peak of [ 11 C] naproxen. It is a HPLC chart of the reaction liquid mixture in Example 4, and the arrow is a peak of [ 11 C] naproxen methyl ester. It is a HPLC chart of the reaction liquid mixture in Example 5, and the arrow is a peak of [ 11 C] ketoprofen.
  • a HPLC chart of the reaction mixture in Example 11 the arrow is the peak of the [11 C] flurbiprofen.
  • a HPLC chart of the reaction mixture in Example 12 the arrow is the peak of the [11 C] flurbiprofen methyl ester. It is a chart of HPLC of the reaction liquid mixture in Example 13, and an arrow is a peak of (R)-[ 11 C] flurbiprofen and (S)-[ 11 C] flurbiprofen. It is a HPLC chart of the reaction liquid mixture in Example 14, and the arrow is a peak of [ 11 C] flurbiprofen ethyl ester.
  • FIG. 6 is a HPLC chart of the reaction mixture in Example 15, where the arrow is the peak of [ 11 C] flurbiprofen n-propyl ester. It is a HPLC chart of the reaction mixture in Example 16, and the arrow is the peak of [ 11 C] flurbiprofen 2-propyl ester.
  • FIG. 6 is a HPLC chart of the reaction mixture in Example 17, where the arrow is the peak of [ 11 C] flurbiprofen n-butyl ester.
  • FIG. 10 is a HPLC chart of the reaction mixture in Example 18, and the arrow is the peak of [ 11 C] flurbiprofen 2-methylpropyl ester.
  • FIG. 7 shows an autoradiogram and a quantitative analysis result of [ 11 C] ketoprofen methyl ester (described as 11 C-KTP-Me) (8) synthesized in Example 6.
  • the autoradiogram is an overlay image with a brain section, and the quantitative value is indicated by PSL / mm 2 (stimulable fluorescence PSL / quantitative area mm 2 ).
  • the immunohistochemical staining result of cyclooxygenase 2 using a rat brain section is shown.
  • [ 11 C] ketoprofen methyl ester (referred to as 11 C-KTP-Me) (21), PET addition average image for 25 minutes from 5 minutes after administration, and quantitative value of accumulation in brain tissue (SUV: in region of interest) Tissue radioactivity MBq / g ⁇ [dose MBq / g body weight]).
  • the present invention can be used in the pharmaceutical industry as a molecular probe for PET.

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Abstract

【課題】短時間で製造することができ、ＰＥＴ法に好適に用いることができ、シクロオキシゲナーゼ２のイメージングが可能な、標識ＮＳＡＩＤｓ化合物及びその製造方法を提供する。 【解決手段】 本発明のアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類は、下記一般式（１）（式中Ａｒは置換基を有することがあるアリール基を示し、Ｒ１は１１ＣＨ３、ＣＨ２ １８Ｆ及びＣＦ２ １８Ｆのいずれかであり、Ｒ２は水素又は分枝を有することがあるアルキル基を示す。ただし、Ａｒがベンゼン環でありＲ１が１１ＣＨ３でありＲ２が水素である化合物は除く。）又はその薬学上許容される塩、水和物、溶媒和物若しくはプロドラッグからなる。

Description

アイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類及びその製造方法、並びに陽電子放射断層画像撮像用分子プローブ及びそれを用いたシクロオキシゲナーゼ等のイメージング方法
　本発明はアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類及びその製造方法並びに陽電子放射断層画像撮像（以下「ＰＥＴ」という）用プローブ及びそれを用いたシクロオキシゲナーゼのイメージング方法に関する。本発明のアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類及びその製造方法は、陽電子放射断層撮像法（以下「ＰＥＴ法」という）に用いる分子プローブ及びその製造方法として、好適に用いることができる。また、本発明分子プローブを用いることにより、シクロオキシゲナーゼのイメージングを行なうことができる。
　解熱・鎮痛や抗炎症剤として広く利用されている非ステロイド性抗炎症薬（以下「ＮＳＡＩＤｓ」という）の多くは、主にシクロオキシゲナーゼと呼ばれる酵素を阻害することにより薬理作用を示す。シクロオキシゲナーゼは、痛み、発熱、慢性および急性炎症、関節炎、大腸がん、血管新生、喘息、動脈硬化、アルツハイマー病、パーキンソン病など、非常に多くの病態と関与している。このため、ＮＳＡＩＤｓの生体内での挙動を調査することで、多くの病態の解明や診断が可能になると考えられている。
　以上の理由によりＮＳＡＩＤｓの体内での挙動をＰＥＴ法によって調べようという試みが、近年、活発になされている。ＰＥＴ法とは、１１Ｃや１８Ｆなどのポジトロンを放出する短寿命放射性核種で標識されたトレーサーを生体内に投与し、トレーサーにより発生するγ線をＰＥＴカメラ（ガンマ線シンチレーターと光電子増倍管からなる検出器）によって計測して、その体内分布をコンピューターにより画像化する方法である。ＰＥＴ法は、小動物からヒトまで含めた生体での薬剤の薬物挙動や標的部位への到達度を、非侵襲的かつ定量的に追跡することができる。イブプロフェンやナプロキセンなどのＮＳＡＩＤｓは、体内でシクロオキシゲナーゼという酵素の働きを阻害して抗炎症作用を示すが、シクロオキシゲナーゼは炎症のみならず、腫瘍やアルツハイマー病などに関与していることが分かっている。このため、ＮＳＡＩＤｓをＰＥＴ法へ適用すべく、数々のＮＳＡＩＤｓが１１Ｃや１８Ｆにより標識化されている（非特許文献１～１５）。ＮＳＡＩＤｓについてのＰＥＴ画像を解析することにより、シクロオキシゲナーゼの非侵襲的イメージングが可能となり、ひいては生物学、医薬品開発、医療などの各分野において極めて有用な情報を得ることができるからである。
ＷＯ２００６／１１６６２９
Phillip W. Miller, Nicholas J. Long, Ramon Vilar, Antony D. Gee, Synthesis of 11C, 18F, 15O, and 13N Radiolabels for Positron Emission Tomography.  Angew. Chem. Int. Ed. 2008, 47, 8998-9033. Toru Sasaki, Koji Ogawa, Shin-Ichi Ishii, Michio Senda, Synthesis of [11C]salicylic acid and related compounds and their biodistribution in mice.  Applied Radiation and Isotopes, 1999, 50, 905-909. Elder, Stewart Todd, Synthesis and in vivo distribution of a nonsteroidal anti-inflammatory drug:  fluorine-18-labeled flurbiprofen.  Univ. Kentucky, Lexington, KY, USA.  Avail. Univ. Microfilms Int., Order No. DA9129898.  (1991), 176 pp.  From: Diss. Abstr. Int. B 1991, 52(5), 2566. Jaya Prabhakaran, Vattoy J. Majo, Norman R. Simpson, Ronald L. Van Heertum, J. John Mann, J. S. Dileep Kumar, Synthesis of [11C]celecoxib: a potential PET probe for imaging COX-2 expression, J. Label. Compd. Radiopharm. 2005, 48, 887-895. Jaya Prabhakaran, Mark D. Underwood, Ramin V. Parsey, Victoria Arango, Vattoly J. Majo, Norman R. Simpson, Ronald Van Heertum, J. John Mann, J. S. Dileep Kumar, Synthesis and in vivo evaluation of [18F]-4-[5-(4-methylphenyl)-3-(trifluoromethyl)-1H-pyrazol-1-yl]benzenesulfonamide as a PET imaging probe for COX-2 expression, Bioorg. Med. Chem. 2007, 15, 1802-1807. Erik F.J. Vries, Janine Doorduin, Rudi A. Dierckx, Aren van Waard, Evaluation of [11C]Rofecoxib as PET tracer for cyclooxygenase 2 overexpression in rat models of inflammation, Nucl. Med. Biol. 2008, 35, 35-42. Vattoly J. Majo, Jaya Prabhakaran, Norman R. Simpson, Ronald L. Van Heertum, J. John Mann, J. S. Dileep Kumar, A general method for the synthesis of aryl[11C]methylsulfones:  Potential PET probes for imaging cyclooxygenase-2 expression, Bioorg. Med. Chem. Lett. 2005, 15, 4268-4271. Yoshihiko Fujisaki, Kazunori Kawamura, Wei-Fang Wang, Kiichi Ishiwata, Fumihiko Yamamoto, Takashi Kuwano, Mayumi Ono, Minoru Maeda, Radiosynthesis and in vivo evaluation of 11C-labeled 1,5-diarylpyrazole derivatives for mapping cyclooxygenase, Annal. Nucl. Med. 2005, 19, 617-625. Mariko Tanaka, Yoshihiko Fujisaki, Kazunori Kawamura, Kiichi Ishiwata, Qinggeletu, Fumihiko Yamamoto, Takahiro Mukai, Minoru Maeda, Radiosynthesis and Evaluation of 11C-Labeled Diaryl-Substituted Imidazole and Indole Derivatives for Mapping Cyclooxygenase-2, Biol. Pharm. Bull. 2006, 29, 2087-2094. Timothy J. McCarthy, Ahmed U. Sheriff, Matthew J. Graneto, John J. Talley, Michael J. Welch, Radiosynthesis, in vitro validation, and in vivo evaluation of 18F-Laveled COX-1 and COX-2 inhibitors, J. Nucl. Med. 2002, 43, 117-124. Erik F.J. Vries, Aren van Waarde, Anne Rixt Buursma, Willem Vaalburg, Synthesis and in vivo evaluation of 18F-Desbromo-Dup-697 as a PET tracer for cyclooxygenase-2 Expression, J. Nucl. Med. 2003, 44, 1700-1706. Frank Wuest, Torsten Kniess, Ralf Bergmann, Jens Pietzsch, Synthesis and evaluation in vitro and in vivo of a 11C -labeled cyclooxygenase-2 (COX-2) inhibitor, Bioorg. Med. Chem. 2008, 16, 7662-7670. Frank R. Wust, aileen Hohne, Peter Metz, Synthesis of 18F-labelled cyclooxygenase-2 (COX-2) inhibitors via Stille reaction with 4-[18F]fluoroiodobenzene as radiotracers for positron emission tomography (PET), Org. Biomol. Chem. 2005, 3, 503-507. Koji Ogawa, Motoji Sasaki, Tadashi Nozaki, Applied Radiation and Isotopes,1997,48,623-630. MingzhangGao, Min Wang, Kathy D. Miller, Gary D. Hutchins and Qi-Huang Zheng, Synthesisof carbon-11 labeled celecoxib derivatives as new candidate PET radioligandsfor imaging of inflammation, Appl. Radiat. Isot. 2009, 67, 2019-2024.
　上述のように、ＮＳＡＩＤｓの体内での挙動をＰＥＴ法によって調べようという試みが世界中でなされている。しかしながら、これまでのところ、いくつかの化合物が炎症部位や腫瘍部位に集積することは確認されているものの、シクロオキシゲナーゼに対する特異的な結合であることを実証できていない。
　このように、これまでＮＳＡＩＤｓの体内での挙動についての満足のいくＰＥＴ画像が得られていない原因として、時間的な制約が挙げられる。すなわち、ＰＥＴ法で使用される短寿命放射性核種としては１１Ｃや１８Ｆなどが用いられ、これらの放射性核種で標識された化合物がトレーサーとして用いられる。１１Ｃは有機化合物中に存在している炭素原子を利用しているため適用範囲が極めて広く、理想的な放射性核種ともいえるが、半減期が２０分と短く、合成からＰＥＴ法での測定までを極めて短時間で行なわなければならない。また、１８Ｆの半減期は１１０分であり、１１Ｃよりも長いとはいうものの、やはり合成からＰＥＴ法での測定までを短時間で行なわなければならない。こうした時間的な制約という困難さから、合成方法や、合成される標識化合物の数や種類に制限が加わり、現在に至るまで、世界中で多くの試みが行なわれたにもかかわらず、ＮＳＡＩＤｓについての満足できるＰＥＴ画像が得られていないのである。
　本発明は、上記従来の実情に鑑みてなされたものであり、短時間で製造することができ、ＰＥＴ法に好適に用いることができ、シクロオキシゲナーゼのイメージングが可能な、標識ＮＳＡＩＤｓ化合物及びその製造方法を提供することを目的とする。
　本発明者らは、上記従来の問題点を解決すべく、標識ＮＳＡＩＤｓ化合物の中でも2-アリールプロピオン酸系に分類されているイブプロフェン、ナプロキセンなどの2-アリールプロピオン酸およびその誘導体に注目し、その前駆体としてベンジル位に水素を有するアリール酢酸を用い、[１１Ｃ]メチル基を極めて短時間で導入し、精製することに成功した。そして、さらには、このアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類をトレーサーとしてＰＥＴ法を行ったところ、標識された薬剤がシクロオキシゲナーゼの発現部位に集積し、特異的な結合を示すことについて、世界で初めて成功した。
　すなわち、本発明のアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類は、下記一般式（１）（式中Ａｒは置換基を有することがあるアリール基を示し、Ｒ１は１１ＣＨ３、ＣＨ２ １８Ｆ及びＣＦ２ １８Ｆのいずれかであり、Ｒ２は水素又は分枝を有することがあるアルキル基を示す。ただし、Ａｒがベンゼン環でありＲ１が１１ＣＨ３でありＲ２が水素である化合物は除く。）又はその薬学上許容される塩、水和物、溶媒和物若しくはプロドラッグからなることを特徴とする。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000003
　本発明のアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類は、共に電子吸引基となるカルボニル基とアリール基に挟まれた炭素にアイソトープ標識されたＲ１が導入されている。このため上記一般式（１）におけるＲ１が水素とされた前駆体から、カルボアニオンを経由して容易にアイソトープ標識されたＲ１を導入することができる。この反応は、瞬時に進行する上、エステル加水分解は１分以内に終了するため、二段階合成であるものの短時間に合成を完了することができる。このため、合成されるまでの時間によってアイソトープの放射能が減衰される率が少なく、ＰＥＴ法に有効な分子プローブとして用いることができる。
　なお、Ｒ２としては、炭素数が１～６のアルキル基が好ましい。
　本発明のアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類には、カルボン酸の他、塩、水和物、溶媒和物及びプロドラッグが含まれる。ここで、プロドラッグとは、生体内で加水分解されて本発明のアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸を生成する化合物をいう。本発明のプロドラッグには、当業者に知られたプロドラッグ化のすべての手法で製造される化合物が含まれる。例えば、カルボキシル基またはアミノ基等を有する場合、それらの基を生体内で容易に加水分解されうるエステル基またはアミド基等に誘導した化合物が、プロドラッグに相当する。具体的にはアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸に存在するカルボキシル基を、メチル、エチル等のアルキル、メチルオキシメチル、エチルオキシメチル、２－メチルオキシエチル、２－メチルオキシエチルオキシメチル等のアルキルオキシアルキル、ピバロイルオキシメチル、アセチルオキシメチル、シクロヘキシルアセチルオキシメチル、1-メチルシクロヘキシルカルボニルオキシメチル等のアシルオキシメチル、エチルオキシカルボニルオキシ-1-エチル等のアルコキシカルボニルアルキル、シクロヘキシルオキシカルボニルオキシ-1-エチル等のシクロアルキルオキシカルボニルアルキル等に誘導した化合物が挙げられる。また、アリール基がアミノ基を有している場合は、そのアミノ基をアセトアミド等に誘導した化合物が挙げられる。
　また、薬学上許容される塩としては、塩基付加塩および酸付加塩が挙げられる。塩基付加塩としては、ナトリウム塩、カルシウム塩等の無機塩基塩、メグルミン塩、トリスヒドロキシメチルアミノメタン塩等の有機塩基塩が挙げられる。酸付加塩としては、例えば塩酸塩、臭化水素酸塩、リン酸塩、硫酸塩、硝酸塩等の無機酸塩、ギ酸塩、酢酸塩、プロピオン酸塩、マレイン酸塩、フマル酸塩、コハク酸塩、乳酸塩、リンゴ酸塩、酒石酸塩、クエン酸塩、アスコルビン酸塩、マロン酸塩、シュウ酸塩、グリコール酸塩、フタル酸塩、ベンゼンスルホン酸塩等の有機酸塩が挙げられ、また、上記の塩を組み合わせて用いることもできる。
　Ｒ１は１１ＣＨ３とすることができる。
　本発明のアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類は、次の方法により、迅速かつ簡単に合成することができる。すなわち、本発明のアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類の製造方法は、下記一般式（２）で示される２－アリール酢酸エステル（式中Ａｒは置換基を有することがあるアリール基を示し、Ｒ２は水素又は分枝を有することがあるアルキル基を示し、Ｒ３は水素、置換基を有することがあるアルキル基、又は置換基を有することがあるアリール基を示す）に塩基を加えて混合するカルボアニオン生成工程と、当該カルボアニオン生成工程後の反応液に１１ＣＨ３Ｘ、ＣＨ２ １８ＦＸ及びＣＦ２ １８ＦＸのいずれか（ここでＸはＩ、Ｂｒ及びトリフレート基のいずれかを示す）を添加するアイソトープ標識導入工程と、を備えることを特徴とする。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000004
　本発明のアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類の製造方法では、カルボアニオン生成工程において、上記一般式（２）で示される２－アリール酢酸エステルに塩基が加えられ、混合される。Ｒ３の置換基としてはハロゲン原子、カルボキシル基、エステル基、水酸基、チオール基及びアルコキシ基等が挙げられる。また、Ｒ３がアルキル基の場合、好ましいのは炭素数が６～１０のアルキル基である。さらに、Ｒ３がアリール基の場合、好ましいのは炭素数が６～１０のアリール基である。また、溶媒としては、無水Ｎ，Ｎ－ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）、無水テトラヒドロフランなどを用いることができる。塩基としては、水素化ナトリウム、水素化カリウム、リチウム　ジイソプロピルアミド、ナトリウム　ビス（トリメチルシリル）アミド、リチウム　ビス（トリメチルシリル）アミドなどを用いることができる。これにより、アリール基及びカルボニル基に挟まれた炭素に結合している活性な水素が脱離し、カルボアニオンが生成する。そして、さらにアイソトープ標識導入工程において、１１ＣＨ３Ｘ、ＣＨ２ １８ＦＸ及びＣＦ２ １８ＦＸのいずれかが添加される。これらの標識化合物は、サイクロトロンで発生させた核種から化学変換することにより容易に合成することができる。これにより、ベンジル位の水素に代わって１１ＣＨ３、ＣＨ２ １８Ｆ及びＣＦ２ １８Ｆのいずれかが導入される。
　なお、さらに加水分解反応を行えば対応するカルボン酸を得ることができる。
　なお、非特許文献１３中の図２には、アセト酢酸エステル合成の手法を用いた１１ＣＨ３の導入のアイデアが示されているが、脱炭酸の工程を必要とするなど工程数が多く、この方法によって本発明のアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類を製造するのは、操作が煩雑なだけでなく時間を要するため、ＰＥＴ法に適用するのは困難である。
　さらに、非特許文献３中に、[１８Ｆ]フルルビプロフェンが合成されているが、本発明法は数多くある２－アリールプロピオン酸類の共通部分を同一の方法で標識できるため、適応範囲の広い方法と言える。
　本発明のアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類は、ＰＥＴ用分子プローブとして好適に用いることができる。本発明者らは、本発明のアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類をＰＥＴ法に適用することにより、シクロオキシゲナーゼのイメージングや、アルツハイマー病において神経変性に関与する脳内炎症のイメージングが可能であることを確認している。
　本発明のアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類と類似の構造を有するＮＳＡＩＤｓとして、例えば下記構造式及び名称の化合物が挙げられる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000005
　これらの化合物のベンジル位のメチル基を１１ＣＨ３、ＣＨ２ １８Ｆ及びＣＦ２ １８Ｆのいずれかで置換した化合物は、本発明のアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類に含まれる。こうしたＮＳＡＩＤｓを模した本発明のアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類のＰＥＴ画像を撮影することにより、上記ＮＳＡＩＤｓの生体内での経時的な挙動を調べることができる。
　また、アイソトープ標識２－アリールプロピオン酸のプロドラッグとしてエステル体を用いることもできる。エステル体にすることで、実施例において後述するように、カルボン酸の形で投与するよりも脳内移行性を向上させることができ、脳の炎症箇所のイメージングを行なうことができる。
　本発明のアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類は、下記反応によって得ることができる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000006
　すなわち、ベンジル位に水素を有する２－アリール酢酸エステルを前駆体とし、ベンジル位の水素を塩基で引き抜いてカルボアニオンとする。そして、さらにＲ１Ｘ（ここでＲ１は１１ＣＨ３、ＣＨ２ １８Ｆ及びＣＦ２ １８Ｆのいずれかであり、ＸはＩ、Ｂｒ及びトリフレート基のいずれかを示す）と反応させてベンジル位にＲ１を導入し、さらにこれをアルカリ等で加水分解することによって本発明のアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸が得られる。アリール基にアミノ基や水酸基などの活性水素をもつ官能基がある場合は、Ｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ　Ｇｒｏｕｐｓ　ｉｎ　Ｏｒｇａｎｉｃ　Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ（Ｔ．Ｗ．Ｇｒｅｅｎら著）に記された保護・脱保護の工程を利用することができる。所望のアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類としてエステル型の場合には、最終段階の加水分解を行なわなければよい。最終的に得られたアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類の投与液は、生理食塩水にエチレングリコール、エタノール、Ｔｗｅｅｎ８０、アスコルビン酸、シクロデキストリンなどを加えた溶媒に溶解させることにより調製できる。
　以下、本発明を具体化した実施例について詳細に説明する。
［試薬・溶媒］
すべての化学試薬およびＮＳＡＩＤｓは特に記さない限り、市販品をそのまま用いた。ＮＭＲスペクトルの測定溶媒としては、重クロロホルム、重ジメチルスルホキシドを使用した。抽出およびクロマトグラフィーの溶出用溶媒としては、酢酸エチル、ヘキサン、ジクロロメタン、メタノールの市販品をそのまま用いた。
［標識化反応］
　１１Ｃは、住友重機械工業社製ＣＹＰＲＩＳ　ＨＭ－１２Ｓ　Ｃｙｃｌｏｔｒｏｎを使用し、１４Ｎ（ｐ，α）１１Ｃの核反応により製造した。[１１Ｃ]ヨウ化メチル（[１１Ｃ]ＣＨ３Ｉ）の調製、反応溶液の加熱、希釈、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）装置への注入、分取、濃縮、殺菌の一連の操作は、独自に開発した自動合成装置により行った。分取用ＨＰＬＣは日本分光社製ＬＣ－２０００を使用した。分析用ＨＰＬＣは、島津社製Ｐｒｏｍｉｎｅｎｃｅを使用した。放出される放射能はＡｌｏｋａ社製ＲＬＣ-７００放射線測定装置を用いて測定した。ＨＰＬＣ用カラムには、ナカライテスク社製ＣＯＳＭＯＳＩＬ、またキラルカラムには、ダイセル社製のものを使用した。
[分光計]
１Ｈ　ＮＭＲスペクトルは、内部標準物質としてテトラメチルシラン（ＴＭＳ）を用い、日本電子株式会社製ＪＥＯＬ　ＪＮＭ－ＡＬ－４００（４００ＭＨｚ）ＦＴ－ＮＭＲを用いて測定した。化学シフトδ値は、ｐｐｍで表示した。化学結合定数（Ｊ）は、Ｈｚで示し、シグナルの分裂様式は、一重線をｓ、二重線をｄ、三重線をｔ、四重線をｑ、多重線をｍ、幅広線をｂｒと略記した。
(実施例１）
[11C]イブプロフェン（３）の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000007
　アルゴン雰囲気下、メチル　２－（４－イソブチルフェニル)アセテート(EP347939)(1 mg)の無水DMF (200 μL)溶液に、水素化ナトリウム(1 mg)を添加し攪拌した。そして、[11C]CH3Iを室温で捕獲後すぐに、2 Mの水酸化ナトリウム(300 μL）を加えた。得られた反応溶液を50℃で1分間加熱し、10%ギ酸のアセトニトリル溶液(300 μL)で反応を停止した後、混合液をアセトニトリル(150 μL)、水(150 μL)、および25%アスコルビン酸(50 μL)からなる溶液で希釈した。こうして得られた反応混合物を分取用HPLC (移動相; アセトニトリル:10 mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH7.4) = 34:66, カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 20 ｍｍ×長さ 250 mm, 粒径 5 μm, 流速; 10 mL/min, UV検出器; 195 nm)で分離した。その結果、図１に示すように、[11C]イブプロフェン（３）が保持時間19-20分で流出した。目的のフラクションをエバポレーターを用いて減圧下濃縮し、生理食塩水(4.0 mL)、プロピレングリコール(0.3 mL)、Tween80 (0.05 mL)、25%アスコルビン酸(0.2 mL)からなる希釈溶液を添加して投与用溶液とした。
　放射能は反応終了時に4.95 GBqであり、比放射能は34 GBq/μmolであった。[11C]CH3Iに基づく崩壊補正後の単離収率は69%であった。また、[11C]イブプロフェン（３）の合成、分離、及び静脈注射液調製の合計時間は約37分であった。[11C]イブプロフェン（３）の同定は、イブプロフェンの標品を混合して、分析用HPLCの結果が単一ピークであることにより決定した(移動相; アセトニトリル:1%リン酸水溶液 = 60:40, カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 4.6 mm×長さ 150 mm, 粒径 5 μm, 流速; 1 mL/min, UV検出器; 210 nm）。その結果、保持時間は約6分で、純度は99%以上であった。
(実施例２）
[11C]イブプロフェン　メチルエステル（４）の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000008
　アルゴン雰囲気下、メチル　２－（４－イソブチルフェニル）アセテート(1 mg)を無水DMF (200 μL)に溶解し、水素化ナトリウム(1 mg)を添加し攪拌した。そして、[11C]CH3Iを室温で捕獲後すぐに、25％アスコルビン酸(50 μL)、アセトニトリル(400 μL)、水(400 μL)からなる溶液で希釈した。こうして得られた反応混合物を分取用HPLC (移動相; アセトニトリル:水 = 75:25, カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 20 ｍｍ×長さ 250 mm, 粒径 5 μm, 流速; 10 mL/min, UV検出器; 195 nm)で分離したところ、図２に示すように、[11C]イブプロフェン　メチルエステル（４）が保持時間15-16分で流出した。
　放射能は反応終了時に4.00 GBqであり、比放射能は23 GBq/μmolであった。また、[11C]イブプロフェン　メチルエステル（４）の合成、分離、及び静脈注射液調製の合計時間は約30分であった。[11C]イブプロフェン　メチルエステル（４）の同定は、イブプロフェン　メチルエステルの標品を混合して、分析用HPLCの結果が単一ピークであることにより決定した(移動相; アセトニトリル:水 = 60:40, カラム; COSMOSIL, 5C18-AR-II, 内径 4.6 mm×長さ 100 mm, 粒径5 μm, 流速; 1 mL/min, UV検出器; 210 nm）。その結果、保持時間は約6分で、純度は99%以上であった。
（実施例３）
[11C]ナプロキセン（５）の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000009
　実施例１と同様の手順によりメチル２－（６－メトキシナフタレン－２－イル）アセテート(USP3896157)から、[11C]ナプロキセン（５）の合成反応を行った。こうして得られた反応混合物を分取用HPLC(移動相; アセトニトリル:10 mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH7.4) =  22:78, カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 20 mm×長さ 250 mm, 粒径 5 μm, 流速; 10 mL/min, UV検出器; 200 nm）で分離したところ、図３に示すように[11C]ナプロキセン（５）が保持時間19-20分で流出した。
　放射能は反応終了時に3.30 GBqであり、比放射能は29 GBq/μmolであった。[11C]ナプロキセン（５）の合成、分離、及び静脈注射液調製の合計時間は、約29分であった。[11C]ナプロキセン（５）の同定は、ナプロキセンの標品を混合して、分析用HPLCの結果が単一ピークであることにより決定した(移動相; アセトニトリル:1%リン酸水溶液 = 50:50, カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 4.6 mm×長さ 150 mm, 粒径 5 μm, 流速; 1 mL/min, UV検出器; 254 nm）。その結果、保持時間は5.2分で、純度は99%以上であった。
（実施例４）
[11C]ナプロキセン　メチルエステル（６）の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000010
　実施例２と同様の手順により、メチル－２－（６－メトキシナフタレン－２－イル）アセテートから、[11C]ナプロキセン　メチルエステル（６）を合成した。こうして得られた反応混合物をHPLC (移動相; アセトニトリル:水 = 65:35, カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 20 mm×長さ 250 mm, 粒径 5 μm, 流速; 10 mL/min, UV検出器; 230 nm)で分離したところ、図４に示すように[11C]ナプロキセン　メチルエステル（６）が保持時間16.2分で流出した。
　放射能は反応終了時に3.30 GBqであり、比放射能は29 GBq/μmolであった。[11C]ナプロキセンメチルエステル（６）の合成、分離、及び静脈注射液調製の合計時間は、約32分であった。[11C]ナプロキセン　メチルエステル（６）の同定は、ナプロキセンメチルエステルの標品を混合して、分析用HPLCの結果が単一ピークであることにより決定した(移動相; アセトニトリル:水 = 65:35, カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 4.6 mm×長さ 150 mm, 粒径 5 μm, 流速; 1 mL/min, UV検出器; 230 nm）。その結果、保持時間は5.5分で、純度は99％以上であった。
（実施例５）
[11C]ケトプロフェン（７）の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000011
　実施例１と同様の手順により、メチル　２－（３－ベンゾイルフェニル）アセテート(Org. Lett. 2002, 4, 3083-3085)から、[11C]ケトプロフェン（７）を合成した。こうして得られた反応混合物をHPLC (移動相; アセトニトリル:10 mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH7.4) = 30:70, カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 20 mm×長さ 250 mm, 粒径 5 μm, 流速; 10 mL/min, UV検出器; 254 nm）で分離したところ、図５に示すように[11C]ケトプロフェン（７）が保持時間14分で流出した。
　放射能は反応終了時に3.40 GBqであり、比放射能は40 GBq/μmolであった。[11C]ケトプロフェン（７）の合成、分離、及び静脈注射液調製の合計時間は、約28分であった。[11C]ケトプロフェン（７）の同定は、ケトプロフェンの標品を混合して、分析用HPLCの結果が単一ピークであることにより決定した(移動相; アセトニトリル:1%リン酸水溶液 = 40:60, カラム; COSMOSIL, 5C18-AR-II, 内径 4.6 mm×長さ 100 mm, 粒径 5 μm, 流速; 1 mL/min, UV検出器; 254 nm）。その結果、保持時間は6.8分で、純度は99％以上であった。
（実施例６）
[11C]ケトプロフェン　メチルエステル（８）の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000012
　実施例２と同様の手順により、メチル　２－（３－ベンゾイルフェニル）アセテートから、[11C]ケトプロフェン　メチルエステル（８）を合成した。こうして得られた反応混合物をHPLC (移動相; アセトニトリル:水 = 70:30, カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 20 mm×長さ 250 mm, 粒径 5 μm, 流速; 10 mL/min, UV検出器; 254 nm）で分離したところ、図６に示すように[11C]ケトプロフェン　メチルエステル（８）が保持時間12分で流出した。
　放射能は反応終了時に5.4 GBqであり、比放射能は46 GBq/μmolであった。[11C]ケトプロフェンメチルエステル（８）の合成、分離、及び静脈注射液調製の合計時間は、約27分であった。[11C]ケトプロフェン　メチルエステル（８）の同定は、ケトプロフェン　メチルエステルの標品を混合して、分析用HPLCの結果が単一ピークであることにより決定した(移動相; アセトニトリル:水 = 55:45, カラム; COSMOSIL, 5C18-AR-II, 内径 4.6 mm×長さ 100 mm, 粒径 5 μm, 流速; 1 mL/min, UV検出器; 254 nm）。その結果、保持時間は6.0分で、純度は99％以上であった。
（実施例７）
[11C]フェノプロフェン（９）の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000013
　実施例１と同様の手順により、エチル　２－（３－フェノキシフェニル）アセテート(J. Med. Chem. 2005, 48, 995-1018)から、[11C]フェノプロフェン（９）を合成した。こうして得られた反応混合物をHPLC (移動相; アセトニトリル:10 mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH7.4) = 20:80, カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 20 mm×長さ 250 mm, 粒径 5 μm, 流速; 10 mL/min, UV検出器; 206 nm）で分離したところ、図７に示すように[11C]フェノプロフェン（９）が保持時間16分で流出した。
　放射能は反応終了時に5.99 GBqであり、比放射能25 GBq/μmolであった。[11C]フェノプロフェン（９）の合成、分離、及び静脈注射液調製の合計時間は、約40分であった。[11C]フェノプロフェン（９）の同定は、フェノプロフェンの標品を混合して、分析用HPLCの結果が単一ピークであることにより決定した(移動相; アセトニトリル:1%リン酸水溶液 = 45:55, カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 4.6 mm×長さ 100 mm, 粒径 5 μm, 流速; 1 mL/min, UV検出器; 220 nm）。その結果、保持時間は8.4分で、純度は99％以上であった。
（実施例８）
[11C]フェノプロフェン　メチルエステル（１０）の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000014
実施例２と同様の手順により、メチル　２－（３－フェノキシフェニル）アセテートから、[11C]フェノプロフェン　メチルエステル（１０）を合成した。こうして得られた反応混合物をHPLC (移動相; アセトニトリル:水 = 70:30, カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 20 mm×長さ 250 mm, 粒径 5 μm, 流速; 10 mL/min, UV検出器; 206 nm）で分離したところ、図８に示すように[11C]フェノプロフェン　メチルエステル（１０）が保持時間17分で流出した。
　放射能は反応終了時に4.8 GBqであり、比放射能は43 GBq/μmolであった。[11C]フェノプロフェン　メチルエステル（１０）の合成、分離、及び静脈注射液調製の合計時間は、約32分であった。[11C]フェノプロフェン　メチルエステル（１０）の同定は、フェノプロフェン　メチルエステル(Bioorg. Med. Chem. Lett. 2006, 16, 2219-222)の標品を混合して、分析用HPLCの結果が単一ピークであることにより決定した(移動相; アセトニトリル:水 = 60:40, カラム; COSMOSIL, 5C18-AR-II, 内径 4.6 mm×長さ 100 mm, 粒径 5 μm, 流速; 1 mL/min, UV検出器; 220 nm）。その結果、保持時間は5.8分で、純度は99％以上であった。
（実施例９）
[11C]ロキソプロフェン（１１）の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000015
　メチル　２－｛４－（２－オキソシクロペンチル）フェニル｝アセテート(GB2078732)から、実施例１と同様の手順により、[11C]ロキソプロフェン（１１）を合成した。得られた反応混合物をHPLC (移動相; アセトニトリル:10 mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH7.4) = 20:80,カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 20 mm×長さ 250 mm, 粒径5 μm, 流速; 10 mL/min, UV検出器; 220 nm）で分離したところ、図９に示すように、[11C]ロキソプロフェン（１１）が保持時間15.9分で流出した。
　放射能は反応終了時に1.9 GBqであり、比放射能は28 GBq/μmolであった。[11C]ロキソプロフェン（１１）の合成、分離、及び静脈注射液調製の合計時間は、約36分であった。[11C]ロキソプロフェン（１１）の同定は、ロキソプロフェンの標品を混合して、分析用HPLCの結果が単一ピークであることにより決定した(移動相; アセトニトリル:1%リン酸水溶液 = 60: 40, カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 4.6 mm×長さ 150 mm, 粒径  5 μm, 流速; 1 mL/min, UV検出器; 220 nm）。その結果、保持時間は6.6分で、純度は99％以上であった。
（実施例１０）
[11C]ロキソプロフェン　メチルエステル（１２）の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000016
　メチル　２－｛４－（２－オキソシクロペンチル）フェニル｝アセテートから、実施例２と同様の手順により、メチル　２－｛４－（２－オキソシクロペンチル）フェニル｝アセテートから、[11C]ロキソプロフェン　メチルエステル（１２）を合成した。こうして得られた反応混合物をHPLC (移動相; アセトニトリル:10 mMギ酸アンモニウム水溶液 = 50:50, カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 10 mm×長さ 250 mm, 粒径 5μm, 流速; 6 mL/min, UV検出器; 220 nm）で分離したところ、図１０に示すように[11C]ロキソプロフェン　メチルエステル（１２）が保持時間13分で流出した。
　放射能は反応終了時に2.1 GBqであり、比放射能は33 GBq/μmolであった。[11C]ロキソプロフェン　メチルエステル（１２）の合成、分離、及び静脈注射液調製の合計時間は、約27分であった。[11C]ロキソプロフェン　メチルエステル（１２）の同定は、ロキソプロフェン　メチルエステル(FR2483918 A1)の標品を混合して、分析用HPLCの結果が単一ピークであることにより決定した(移動相; アセトニトリル:水 = 45:55, カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 4.6 mm×長さ 150 mm, 粒径 5 μm, 流速; 1 mL/min, UV検出器; 220 nm）。その結果、保持時間は11.5分で、純度は98％以上であった。
(実施例１１）
[11C]フルルビプロフェン（１３）の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000017
　メチル　２－（２－フルオロビフェニル－４－イル）アセテート(USP3755427)を出発原料とし、実施例１の方法と同様の方法により、[11C]フルルビプロフェン（１３）を合成した。得られた反応混合物を分取用HPLC (移動相; アセトニトリル:10 mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH7.4) = 33:67, カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 20 mm×長さ 250 mm, 粒径 5 μm, 流速; 10 mL/min, UV検出器; 254 nm)で分離したところ、図１１に示すように、[11C]フルルビプロフェン（１３）が保持時間14-16分で流出した。
　放射能は反応終了時に3.1 GBqであり、比放射能は76 GBq/μmolであった。
　また、[11C]フルルビプロフェン（１３）の合成、分離、及び静脈注射液調製の合計時間は、約40分であった。[11C]フルルビプロフェン（１３）の同定は、フルルビプロフェンの標品を混合して、分析用HPLCの結果が単一ピークであることにより決定した(移動相; アセトニトリル:1%リン酸水溶液 = 50:50, カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 4.6 mm×長さ 100 mm, 粒径 5 μm, 流速; 1 mL/min, UV検出器; 254 nm）。その結果、保持時間は約6分で、純度は99％以上であった。
(実施例１２）
[11C]フルルビプロフェン　メチルエステル（１４）の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000018
　メチル　２－（２－フルオロビフェニルー４－イル）アセテートを出発原料とし、実施例２の方法と同様の方法により、[11C]フルルビプロフェン　メチルエステル（１４）を合成した。こうして得られた反応混合物を分取HPLC (移動相; アセトニトリル:水 = 75:25, カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 20 mm×長さ 250 mm, 粒径 5 μm, 流速; 10 mL/min, UV検出器; 254 nm）で分離したところ、図１２に示すように、[11C]フルルビプロフェン　メチルエステル（１４）が保持時間15-16分で流出した。
　放射能は反応終了時に5.8 GBqであり、比放射能は41 GBq/μmolであった。また、[11C]フルルビプロフェン　メチルエステル（１４）の合成、分離、及び静脈注射液調製の合計時間は、約30分であった。[11C]フルルビプロフェン　メチルエステル（１４）の同定は、フルルビプロフェン　メチルエステルの標品を混合して、分析用HPLCの結果が単一ピークであることにより決定した(移動相; アセトニトリル:水 = 60:40, カラム; COSMOSIL, 5C18-AR-II, 内径 4.6 mm×長さ 100 mm, 粒径 5 μm, 流速; 1 mL/min, UV検出器; 254 nm）。その結果、保持時間は5.9-6.2分で、純度は99％以上であった。
（実施例１３）
(R)- [11C]フルルビプロフェン（１３R）及び、(S)-[11C]フルルビプロフェン（１３S）の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000019
　メチル　２－（２－フルオロビフェニル－４－イル）アセテートを出発原料とし、実施例１の方法と同様の方法により、(R)-[11C]フルルビプロフェン（１３R）及び(S)-[11C]フルルビプロフェン（１３S）を合成した。
(R)- [１１Ｃ]フルルビプロフェン（１３R）の同定
　上記合成反応で得られた反応混合物を分取用HPLC (移動相; 0.05% TFA ヘキサン:0.05% TFA エタノール = 95 : 5,カラム; CHIRALPAK AD-H, 内径 10 ｍｍ×長さ 250 mm, 粒径 5 μm, 流速; 3 mL/min, UV検出器; 254 nm）で分離したところ、図１３に示すように、(R)- [１１Ｃ]フルルビプロフェン（１３R）が保持時間10分で流出した。(R)- [１１Ｃ]フルルビプロフェン（１３R）の同定は、(R)-フルルビプロフェンの標品を混合して、分析用HPLCの結果が単一ピークであることにより決定した。
(S)-[11C]フルルビプロフェン（１３S）の同定
　一方、上記合成反応で得られた反応混合物を分取用HPLC (移動相; 0.05% TFA ヘキサン:0.05% TFA エタノール = 95 : 5,カラム; CHIRALPAK AD-H, 内径 10 ｍｍ×長さ 250 mm, 粒径 5 μm, 流速; 3 mL/min, UV検出器; 254 nm）で分離したところ、図１３に示すように、(S)-[11C]フルルビプロフェン（１３S）が保持時間13分で流出した。(S)- [１１Ｃ]フルルビプロフェン（１３S）の同定は、(S)-フルルビプロフェンの標品を混合して、分析用HPLCの結果が単一ピークであることにより決定した。
（実施例１４）
[11C]フルルビプロフェンエチルエステル（１６）の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000020
　エチル　２－（２－フルオロビフェニルー４－イル）アセテート(US3755427)を出発原料とし、実施例２の方法と同様の方法により、[11C]フルルビプロフェン　エチルエステル（１６）を合成した。こうして得られた反応混合物を分取用HPLC (移動相; アセトニトリル:水 =  80:20, カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 20 mm×長さ 250 mm, 粒径 5 μm, 流速; 10 mL/min, UV検出器; 254 nm）で分離したところ、図１４に示すように、[11C]フルルビプロフェンエチルエステル（１６）が保持時間16分で流出した。
　放射能は反応終了時に4.65 GBqであり、比放射能は42 GBq/μmolであった。また、[11C]フルルビプロフェン　エチルエステル（１６）の合成、分離、及び静脈注射液調製の合計時間は、約37分であった。[11C]フルルビプロフェン　エチルエステル（１６）の同定は、フルルビプロフェン　エチルエステル(Chem. Pharm. Bull. 1984, 32, 99-105)の標品を混合して、分析用HPLCの結果が単一ピークであることにより決定した(移動相; アセトニトリル:水 = 65:35, カラム; COSMOSIL, 5C18-AR-II, 内径 4.6 mm×長さ 100 mm, 粒径 5 μm, 流速; 1 mL/min, UV検出器; 254 nm）。その結果、保持時間は7.1分で、純度は99％以上であった。
（実施例１５）
[11C]フルルビプロフェン　n－プロピルエステル（１７）の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000021
（ステップ１）
n－プロピル　２－（２－フルオロビフェニルー４－イル）アセテート（１８）の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000022
　n－プロピル　２－（２－フルオロビフェニルー４－イル）酢酸（150 mg, 0.65 mmol）をジクロロメタン(3 mL)に溶解し、撹拌しながら、塩化オキサリル（67 μＬ, 99 mg, 0.78 mmol）と、DMF (10 μL)を、室温で加えた。5分間撹拌した後、プロパノール（97 mL, 78 mg, 1.3 mmol）を加えた。更に5分間撹拌した後、水（0.2 mL）で反応を停止し、得られた反応混合物を、シリカゲルカラムクロマトグラフィー（ヘキサン:酢酸エチル＝20:1）によって分離したところ、目的のn－プロピル　２－（２－フルオロビフェニルー４－イル）アセテート（１８）が透明の油状物として得られた（収率84％）。このものの1H NMRスペクトルを以下に示す。
1H NMR (400 MHz, CDCl3)
δ： 7.55-7.53 (m, 2H), 7.46-7.34 (m, 4H), 7.15-7.10 (m, 2H), 4.09 (t, J = 6.8 Hz, 2H),  3.65 (s, 2H), 1.68 (quintet, J = 6.8 Hz, 2H), 0.94 (t, J = 7.3 Hz , 3H).
（ステップ２）
[11C]フルルビプロフェン　n－プロピルエステル（１７）の合成
　実施例１５のステップ１より合成したn－プロピル　２－（２－フルオロビフェニルー４－イル）アセテート（１８）から、実施例２と同様の手順により、[11C]フルルビプロフェン　n－プロピルエステル（１７）を合成した。こうして得られた反応混合物を分取用HPLC(移動相; アセトニトリル:水 = 75:25, カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 20 mm×長さ 250 mm, 粒径 5 μm, 流速; 10 mL/min, UV検出器; 254 nm）で分離したところ、図１５に示すように、[11C]フルルビプロフェン　n－プロピルエステル（１７）が保持時間13分で流出した。
　放射能は反応終了時に1.4 GBqであり、比放射能は26 GBq/μmolであった。また[11C]フルルビプロフェンn－プロピルエステル（１７）の合成、分離、及び静脈注射液調製の合計時間は、約34分であった。[11C]フルルビプロフェン　n－プロピルエステル（１７）の同定は、フルルビプロフェン　n－プロピルエステル(J. Org. Chem. 1994, 59, 4410-4417)の標品を混合して、分析用HPLCの結果が単一ピークであることにより決定した (移動相; アセトニトリル:水 = 70:30, カラム; COSMOSIL, 5C18-AR-II, 内径 4.6 mm×長さ 100 mm, 粒径 5 μm, 流速; 1 mL/min, UV検出器; 254 nm）。その結果、保持時間は5.7分で、純度は99％以上であった。
（実施例１６）
[11C]フルルビプロフェン　２－プロピルエステル（１９）の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000023
（ステップ１）
２－プロピル（２－フルオロビフェニル－４－イル）アセテート（２０）の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000024
実施例１５のステップ１と同様の手順により、２－（２－フルオロビフェニルー４－イル）酢酸と２―プロパノールから、２－プロピル（２－フルオロビフェニル－４－イル）アセテート（２０）を合成した。このものの1H NMRスペクトルを以下に示す。
1H NMR (400 MHz, CDCl3)
δ： 7.55-7.53 (m, 2H), 7.46-7.36 (m, 4H), 7.14-7.10 (m, 2H), 3.91 (t, J = 6.8 Hz, 1H), 3.66 (s, 2H), 0.92 (t, J = 6.8 Hz , 6H). 
（ステップ２）
[11C]フルルビプロフェン　２－プロピルエステル（１９）の合成
　実施例１６のステップ１より合成した２－プロピル（２－フルオロビフェニル－４－イル）アセテート（２０）から、実施例２と同様の手順により、[11C]フルルビプロフェン　２－プロピルエステル（１９）を合成した。こうして得られた反応混合物を分取用HPLC (移動相; アセトニトリル:水 = 75:25, カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 20 mm×長さ 250 mm, 粒径 5 μm, 流速; 10 mL/min, UV検出器; 254 nm）で分離したところ、図１６に示すように、[11C]フルビロプロフェン　２－プロピルエステル（１９）が保持時間11.4分で流出した。
　放射能は反応終了時に2.1 GBqであり、比放射能は19 GBq/μmolであった。[11C]フルビロプロフェン２－プロピルエステル（１９）の合成、分離、及び静脈注射液調製の合計時間は、約36分であった。[11C]フルビロプロフェン　２－プロピルエステル（１９）の同定は、フルビロプロフェン　２－プロピルエステル(J. Controlled Rellease. 1999, 62, 223-229)の標品を混合して、分析用HPLCの結果が単一ピークであることにより決定した (移動相; アセトニトリル:水 = 70:30, カラム; COSMOSIL, 5C18-AR-II, 内径 4.6 mm×長さ 100 mm, 粒径 5 μm, 流速; 1 mL/min, UV検出器; 254 nm）。その結果、保持時間は5.7分で、純度は99％以上であった。
（実施例１７）
[11C]フルルビプロフェンn－ブチルエステル（２１）の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000025
（ステップ１）
n－ブチル２－（２－フルオロビフェニル－４－イル）アセテート（２２）の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000026
実施例１５のステップ１と同様の手順により、２－（２－フルオロビフェニル－４－イル）酢酸とn－ブタノールから、n－ブチル　２－（２－フルオロビフェニル－４－イル）アセテート（２２）を合成した。このものの1H NMRスペクトルを以下に示す。
1H NMR (400 MHz, CDCl3)
δ： 7.55-7.54 (m, 2H), 7.46-7.35 (m, 4H), 7.14-7.09 (m, 2H), 4.13 (t, J = 6.8 Hz, 1H), 3.68 (s, 2H),  1.66-1.58 (m, 2H), 1.42-1.33 (m, 2H), 0.93 (t, J = 7.3 Hz , 3H).
（ステップ２）
[11C]フルルビプロフェンn－ブチルエステル（２１）の合成
　実施例１７のステップ１より合成したn－ブチル　２－（２－フルオロビフェニル－４－イル）アセテート（２２）から、実施例２と同様の手順により、[11C]フルルビプロフェン　n－ブチルエステル（２１）を合成した。こうして得られた反応混合物を分取用HPLC (移動相; アセトニトリル:水 = 75:25, カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 20 mm×長さ 250 mm, 粒径 5 μm, 流速; 10 mL/min, UV検出器; 254 nm）で分離したところ、図１７に示すように、[11C]フルルビプロフェン　n－ブチルエステル（２１）が保持時間15.5分で流出した。
　放射能は反応終了時に1.5 GBqであり、比放射能は16 GBq/μmolであった。[11C]フルルビプロフェンn－ブチルエステル（２１）の合成、分離、及び静脈注射液調製の合計時間は、約39分であった。[11C]フルルビプロフェン　n－ブチルエステル（２１）の同定は、フルルビプロフェン　n－ブチルエステル(JP57091913 A)の標品を混合して、分析用HPLCの結果が単一ピークであることにより決定した (移動相; アセトニトリル:水 = 70:30, カラム;  COSMOSIL, 5C18-AR-II, 内径 4.6 mm×長さ 100 mm, 粒径 5 μm, 流速; 1 mL/min, UV検出器; 254 nm）。その結果、保持時間は5.4分で、純度は99％以上であった。
（実施例１８）
[11C]フルルビプロフェン　２－メチルプロピルエステル（２３）の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000027
（ステップ１）
２－メチルプロピル　２－（２－フルオロビフェニル－４－イル）アセテート（２４）の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000028
　実施例１５のステップ１と同様の手順により、２－（２－フルオロビフェニルー４－イル）酢酸と２－メチルプロパノールから２－メチルプロピル　２－（２－フルオロビフェニル－４－イル）アセテート（２４）を合成した。このものの1H NMRスペクトルを以下に示す。
1H NMR (400 MHz, CDCl3)
δ： 7.55-7.54 (m, 2H), 7.46-7.35 (m, 4H), 7.14-7.09 (m, 2H), 4.13 (t, J = 6.8 Hz, 1H), 3.68 (s, 2H), 0.93 (t, J = 7.3 Hz , 3H).
（ステップ２）
[11C]フルルビプロフェン　２－メチルプロピルエステル（２３）の合成
　実施例１８のステップ１より合成した２－メチルプロピル　２－（２－フルオロビフェニル－４－イル）アセテート（２４）から、実施例２と同様の手順により、[11C]フルルビプロフェン　２－メチルプロピルエステル（２３）を合成した。こうして得られた反応混合物を分取用HPLC(移動相; アセトニトリル:水 = 75:25, カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 20 mm×長さ 250 mm, 粒径 5 μm, 流速; 10 mL/min, UV検出器; 254 nm）で分離したところ、図１８に示すように、[11C]フルルビプロフェン　２－メチルプロピルエステル（２３）が保持時間15.5分で流出した。
　放射能は反応終了時に1.5 GBqであり、比放射能は26 GBq/μｍolであった。[11C]フルルビプロフェン２－メチルプロピルエステル（２３）の合成、分離、及び静脈注射液調製の合計時間は、約39分であった。[11C]フルルビプロフェン　２－メチルプロピルエステル（２３）の同定は、フルルビプロフェン　２－メチルプロピルエステル(Ind. J. Chem. Section B: Organic Chemistry Including Medicinal Chemistry, 2007, 46B, 1164-1168)の標品を混合して、分析用HPLCの結果が単一ピークであることにより決定した (移動相; アセトニトリル:水 = 70:30, カラム; COSMOSIL, 5C18-AR-II, 内径 4.6 mm×長さ 100 mm, 粒径 5  μm, 流速; 1 mL/min, UV検出器; 254 nm）。その結果、保持時間は5.4分で、純度は99％以上であった。
（実施例１９）
[11C]メチルフルルビプロフェン（２５）の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000029
　フルルビプロフェン　メチルエステルを出発原料とし、実施例１の方法と同様の方法により、[11C]メチルフルルビプロフェン（２５）を合成した。こうして得られた反応混合物を分取用HPLC (移動相; アセトニトリル:10 mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH7.4) = 80:20, カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 20 mm×長さ 250 mm, 粒径 5 μm, 流速; 10 mL/min, UV検出器; 254 nm）で分離したところ、図１９に示すように、[11C]メチルフルルビプロフェン（２５）が保持時間14分で流出した。
　放射能は反応終了時に3.68 GBqであり、比放射能は42 GBq/μmolであった。また、[11C]メチルフルルビプロフェン（２５）の合成、分離、及び静脈注射液調製の合計時間は、約32分であった。[11C]メチルフルルビプロフェン（２５）の同定は、メチルフルルビプロフェン(Bioorg. Med. Chem. Lett. 2006, 16, 2219-222)の標品を混合して、分析用HPLCの結果が単一ピークであることにより決定した (移動相; アセトニトリル:0.1%リン酸 = 50:50, カラム; COSMOSIL, 5C18-AR-II, 内径 4.6 mm×長さ 100 mm, 粒径 5 μm, 流速; 1 mL/min, UV検出器; 254 nm）。その結果、保持時間は7.6分で、純度は99％以上であった。
（実施例２０）
[11C]メチルフルルビプロフェン　メチルエステル（２６）の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000030
　フルルビプロフェン　メチルエステルを出発原料とし、実施例２の方法と同様の方法により、[11C]メチルフルルビプロフェン　メチルエステル（２６）を合成した。こうして得られた反応混合物を分取用HPLC (移動相; アセトニトリル:水 = 80:20, カラム; COSMOSIL, 5C18-MS-II, 内径 20 mm×長さ 250 mm, 粒径 5 μm, 流速; 10 mL/min, UV検出器; 254 nm）で分離したところ、図２０に示すように、[11C]メチルフルルビプロフェン　メチルエステル（２６）が保持時間17分で流出した。
　放射能は反応終了時に2.32 GBqであり、比放射能は37 GBq/μmolであった。また、[11C]メチルフルルビプロフェン　メチルエステル（２６）の合成、分離、及び静脈注射液調製の合計時間は、約32分であった。[11C]メチルフルルビプロフェン　メチルエステル（２６）の同定は、メチルフルルビプロフェン　メチルエステル(Bioorg. Med. Chem. Lett. 2006, 16, 2219-222)の標品を混合して、分析用HPLCの結果が単一ピークであることにより決定した(移動相; アセトニトリル:水 = 65:35, カラム; COSMOSIL, 5C18-AR-II, 内径 4.6 mm×長さ 100 mm, 粒径 5 μm, 流速; 1 mL/min, UV検出器; 254 nm）。その結果、保持時間は6.9分で、純度は99％以上であった。
（実施例２１）
(R)- [11C]フルルビプロフェン　メチルエステル（２７Ｒ）及び、(S)-[11C]フルルビプロフェン　メチルエステル（２７Ｓ）の合成
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000031
　メチル　２－（２－フルオロビフェニル－４－イル）アセテートを出発原料とし、実施例２の方法と同様の方法により、(R)- [11C]フルルビプロフェン　メチルエステル（２７Ｒ）及び、(S)-[11C]フルルビプロフェン　メチルエステル（２７Ｓ）を合成した。
(R)- [11C]フルルビプロフェン　メチルエステル（２７Ｒ）の同定
　上記合成反応で得られた反応混合物を分取用HPLC (移動相; メタノール:水 = 90 : 10,カラム; CHIRALCEL OJ-RH, 内径 20 ｍｍ×長さ 150 mm, 粒径 5 μm, 流速; 10 mL/min, UV検出器; 254 nm）で分離したところ、図２１に示すように、(R)- [11C]フルルビプロフェン　メチルエステル（２７Ｒ）が保持時間17分で流出した。(R)- [11C]フルルビプロフェン　メチルエステル（２７Ｒ）の同定は、(R)-フルルビプロフェン　メチルエステルの標品を混合して、分析用HPLCの結果が単一ピークであることにより決定した。
(S)-[11C]フルルビプロフェン　メチルエステル（２７Ｓ）の同定
　一方、上記合成反応で得られた反応混合物を分取用HPLC (移動相; メタノール:水 = 90 : 10,カラム; CHIRALCEL OJ-RH, 内径 20 ｍｍ×長さ 150 mm, 粒径 5 μm, 流速; 10 mL/min, UV検出器; 254 nm）で分離したところ、図２１に示すように、(S)- [11C]フルルビプロフェン　メチルエステル（２７Ｓ）が保持時間22分で流出した。(S)- [11C]フルルビプロフェン　メチルエステル（２７Ｓ）の同定は、(S)-フルルビプロフェン　メチルエステルの標品を混合して、分析用HPLCの結果が単一ピークであることにより決定した。
＜脳内炎症モデルラットを用いたＰＥＴ撮影＞
　実施例６で合成した[11C]ケトプロフェンメチルエステル（８）について、脳内炎症モデルラットを用いたＰＥＴ撮影を行った。実験では、ラットの左側線条体にグラム陰性菌細胞壁外膜の構成成分であるリポポリサッカライド（LPS） 0.5μgを微量注入することにより、脳内炎症を誘発させた（Hunter RL, Dragicevic N, Seifert K, Choi DY, Liu M, Kim HC, Cass WA, Sullivan PG, Bing G. Inflammation induces mitochondrial dysfunction and dopaminergic neurodegeneration in the nigrostriatal system. J Neurochem. 2007 100:5:1375-86.）。LPS注入から1日後のラットに、 [11C]ケトプロフェンメチルエステル（８）を尾静脈より投与し、小動物用PET装置（microPET、SIMENS社製）を用いて45分間の撮像を行った。[11C]ケトプロフェンメチルエステル（放射能量72-74  MBq）注射液は、生理食塩水で1.0 CCの容積に希釈して調製した。さらに、非RI標識体による結合阻害効果を検討するために、ケトプロフェンメチルエステル 10mg/kg を加えた注射液（溶媒の最終濃度は5 % DMSO, 5% tween20）を調製した。また、ＰＥＴ撮像終了後、脳切片を作製し、Ex vivoオートラジオグラム（ARG）実験を実施した。これは、ラットを生理食塩水で灌流し、取り出した脳から2 mmの厚さで作製した切片をイメージングプレートBAS SR-2040（富士フィルム社製）の上に１時間露光させ、フルオロイメージアナライザー（FLA7000）を用いて読み取ることで行った。さらに、シクロオキシゲナーゼ2の発現部位を同定するために、特異的抗体を用いて脳切片の免疫組織化学染色を行った。すなわち、前述のオートラジオグラムに使用した脳切片から20μmの凍結切片を作製し、スライドグラスの上に貼り付けたものを、一次抗体として200倍の濃度でPBS-Tに希釈した抗シクロオキシゲナーゼ２(ウサギIgG、ポリクローナル抗体、Cayman社製) で、4℃下にオーバーナイトでインキュベーションする。次に、二次抗体として200倍の濃度でPBS-Tに希釈したビオチン標識抗ウサギＩgG抗体（VECTOR社製）と室温で１時間の反応を行い、アビジン－ビオチン標識ペルオキシダーゼ複合体(VECTASTAIN Elite ABC Kit、VECTOR社製)と結合させる。発色方法には、ジアミノベンジンと反応させるDAB法を用いた。
＜結　果＞
　[11C]ケトプロフェンメチルエステル投与後４５分間におけるPET加算平均画像、および放射能量を図２２aに、また、その際の各脳部位における放射能の時間経過を図２２ｂに示す。図２２ａは、[11C]ケトプロフェンメチルエステル（８）が、血液脳関門を透過し、脳の左側のＬＰＳ注入部位周辺の炎症領域に集積することを示している。この集積は、非ＲＩ標識ケトプロフェンメチルエステル10 mg/kgの投与により、有意に低下することから、[11C]ケトプロフェンメチルエステルの炎症領域における集積は特異的であることが示された。また、図２３に示すように、ラット脳切片を用いたオートラジオグラム(ARG)実験においても、PET撮像時同様、[11C]ケトプロフェンメチルエステルは、炎症部位に対して特異的に集積することが分かった。さらに、免疫組織化学染色を行った結果、図２４に示すように、[11C]ケトプロフェンメチルエステルの集積部位はシクロオキシゲナーゼ２の免疫染色の陽性部位と一致していた。これらの事実から、実施例６の[11C]ケトプロフェンメチルエステル（８）を用いることで、脳におけるシクロオキシゲナーゼ２のイメージングが可能であることが世界で初めて立証された。
＜アルツハイマー病モデル動物のＰＥＴ撮影＞
　実施例６で合成した[11C]ケトプロフェンメチルエステル（２１）について、アルツハイマー病モデルマウスを用いたＰＥＴ撮像を行った。アルツハイマー病モデルマウスは、家族性アルツハイマー病におけるアミロイド前駆体タンパク質（APP）を過剰発現させたトランスジェニックマウス（APP-Tg）を米国タコニック社より購入して用いた。アルツハイマー病の病理変化としてアミロイドβ蛋白の蓄積が確認された24ヶ月齢において、[11C]ケトプロフェンメチルエステル（２１）を尾静脈より投与し、小動物用PET装置（microPET、SIMENS社製）を用いて30分間の撮像を行った。[11C]ケトプロフェンメチルエステル（２１）（放射能量45-60 MBq）注射液は、生理食塩水で1.0 CCの容積に希釈して調製した。集積程度の指標として、SUV (Standard Uptake Value)= 関心領域における組織放射能（MBq/g）÷〔投与量（MBq）/体重（g）〕を用い、APP Tgマウス脳への集積量について正常マウスであるWild Typeマウス脳との比較を行った。
＜結　果＞
　[11C]ケトプロフェンメチルエステル（２１）投与5分後から25分間のPET加算平均画像および、集積量の定量値（SUV）を図２５に示す。[11C]ケトプロフェンメチルエステル（２１）はWild Typeマウス脳と比較して、APP-Tgマウス脳に高く集積することが示された。また、定量値から、[11C]ケトプロフェンメチルエステルが高い集積を示す部位は、APP-Tgマウス脳において老人斑の主要構成成分であるアミロイドβの蓄積が報告されている部位 (Am J Pathol. 1998;152 (1):307-17.）と一致することが示された。この事実から、[11C]ケトプロフェンメチルエステル（２１）を用いることで、アルツハイマー病において神経変性に関与する脳内炎症のイメージングが可能であることが立証された。
　この発明は上記発明の実施の態様及び実施例の説明に何ら限定されるものではない。特許請求の範囲を逸脱せず、当業者が容易に想到できる範囲で種々の変形態様もこの発明に含まれる。
実施例１における反応混合液のＨＰＬＣのチャートであり、矢印は[11C]イブプロフェンのピークである。 実施例２における反応混合液のＨＰＬＣのチャートであり、矢印は[11C]イブプロフェン　メチルエステルのピークである。 実施例３における反応混合液のＨＰＬＣのチャートであり、矢印は[11C]ナプロキセンのピークである。 実施例４における反応混合液のＨＰＬＣのチャートであり、矢印は[11C]ナプロキセン　メチルエステルのピークである。 実施例５における反応混合液のＨＰＬＣのチャートであり、矢印は[11C]ケトプロフェンのピークである。 実施例６における反応混合液のＨＰＬＣのチャートであり、矢印は[11C]ケトプロフェン　メチルエステルのピークである。 実施例７における反応混合液のＨＰＬＣのチャートであり、矢印は[11C]フェノプロフェンのピークである。 実施例８における反応混合液のＨＰＬＣのチャートであり、矢印は[11C]フェノプロフェン　メチルエステルのピークである。 実施例９における反応混合液のＨＰＬＣのチャートであり、矢印は[11C]ロキソプロフェン（１１）のピークである。 実施例１０における反応混合液のＨＰＬＣのチャートであり、矢印は[11C]ロキソプロフェン　メチルエステル（１２）のピークである。 実施例１１における反応混合液のＨＰＬＣのチャートであり、矢印は[11C]フルルビプロフェンのピークである。 実施例１２における反応混合液のＨＰＬＣのチャートであり、矢印は[11C]フルルビプロフェン　メチルエステルのピークである。 実施例１３における反応混合液のＨＰＬＣのチャートであり、矢印は(R)- [11C]フルルビプロフェンと(S)- [11C]フルルビプロフェンのピークである。 実施例１４における反応混合液のＨＰＬＣのチャートであり、矢印は[11C]フルルビプロフェン　エチルエステルのピークである。 実施例１５における反応混合液のＨＰＬＣのチャートであり、矢印は[11C]フルルビプロフェン　n－プロピルエステルのピークである。 実施例１６における反応混合液のＨＰＬＣのチャートであり、矢印は[11C]フルルビプロフェン　２－プロピルエステルのピークである。 実施例１７における反応混合液のＨＰＬＣのチャートであり、矢印は[11C]フルルビプロフェン　n－ブチルエステルのピークである。 実施例１８における反応混合液のＨＰＬＣのチャートであり、矢印は[11C]フルルビプロフェン　２－メチルプロピルエステルのピークである。 実施例１９における反応混合液のＨＰＬＣのチャートであり、矢印は[11C]メチルフルルビプロフェンのピークである。 実施例２０における反応混合液のＨＰＬＣのチャートであり、矢印は[11C]メチルフルルビプロフェン　メチルエステルのピークである。 実施例２１における反応混合液のＨＰＬＣのチャートであり、矢印は(R)- [11C]フルルビプロフェン　メチルエステルと(S)- [11C]フルルビプロフェン　メチルエステルのピークである。 実施例６で合成した[11C]ケトプロフェンメチルエステル(11C-KTP-Meと記載)（８）を投与後45分間のPET加算平均画像、および小脳を参照領域とした各脳部位における放射能量の比を図２２（ａ）に示す。尚、PET画像は標準のＭＲＩ脳画像に重ね合わせたものである。また、放射能の時間経過を図２２（ｂ）に示す。（SUV: 関心領域における組織放射能　MBq/g ÷ [投与量　MBq／体重g]）。 実施例６で合成した[11C]ケトプロフェンメチルエステル(11C-KTP-Meと記載)（８）の オートラジオグラムとその定量解析結果である。オートラジオグラムは脳切片との重ね合わせ画像とし、定量値はPSL/mm2 (輝尽性蛍光 PSL/ 定量面積 mm2)で示す。 ラットの脳切片を用いたシクロオキシゲナーゼ２の免疫組織化学染色結果を示す。 [11C]ケトプロフェンメチルエステル (11C-KTP-Meと記載)（21）を投与5分後から25分間のPET加算平均画像、および脳組織への集積量の定量値（SUV: 関心領域における組織放射能　MBq/g ÷ [投与量MBq /体重g〕）。
　本発明は、ＰＥＴ用分子プローブとして、医薬産業などにおいて利用することができる。

Claims (8)

  1. 　下記一般式（１）（式中Ａｒは置換基を有することがあるアリール基を示し、Ｒ１は１１ＣＨ３、ＣＨ２ １８Ｆ及びＣＦ２ １８Ｆのいずれかであり、Ｒ２は水素又は分枝を有することがあるアルキル基を示す。ただし、Ａｒがベンゼン環でありＲ１が１１ＣＨ３でありＲ２が水素である化合物は除く。）又はその薬学上許容される塩、水和物、溶媒和物若しくはプロドラッグからなるアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類。
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
  2. 　Ｒ１は１１ＣＨ３であることを特徴とする請求項１記載のアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類。
  3. 　下記一般式で示される２－アリール酢酸エステル（式中Ａｒは置換基を有することがあるアリール基を示し、Ｒ２は水素又は分枝を有することがあるアルキル基を示し、Ｒ３は水素、置換基を有することがあるアルキル基、又は置換基を有することがあるアリール基を示す）に塩基を加えて混合するカルボアニオン生成工程と、該カルボアニオン生成工程後の反応液に１１ＣＨ３Ｘ、ＣＨ２ １８ＦＸ及びＣＦ２ １８ＦＸのいずれか（ここでＸはＩ、Ｂｒ及びトリフレート基のいずれかを示す）を添加するアイソトープ標識導入工程を備えることを特徴とする請求項１記載のアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類の製造方法。
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
  4. 　請求項１又は請求項２に記載のアイソトープ標識２－アリールプロピオン酸類を含有することを特徴とするＰＥＴ用分子プローブ。
  5. 　シクロオキシゲナーゼをＰＥＴイメージングするための請求項４に記載のＰＥＴ用分子プローブ。
  6. 　アルツハイマー病を診断するための請求項４に記載のＰＥＴ用分子プローブ。
  7. 　請求項４記載の分子プローブを生体に投与してＰＥＴ画像を撮影することを特徴とするシクロオキシゲナーゼのイメージング方法。
  8. 　請求項４記載の分子プローブを生体に投与してＰＥＴ画像を撮影することを特徴とするアルツハイマー病のイメージング方法。
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