WO2009150374A2 - Fibres a conductivite electrique pour systemes bioelectrochimiques, electrodes realisees avec de telles fibres et systemes comportant une ou plusieurs de telles electrodes - Google Patents

Fibres a conductivite electrique pour systemes bioelectrochimiques, electrodes realisees avec de telles fibres et systemes comportant une ou plusieurs de telles electrodes Download PDF

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biopolymer
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Philippe Poulin
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    • B82Y10/00—Nanotechnology for information processing, storage or transmission, e.g. quantum computing or single electron logic
    • H—ELECTRICITY
    • H01—ELECTRIC ELEMENTS
    • H01B—CABLES; CONDUCTORS; INSULATORS; SELECTION OF MATERIALS FOR THEIR CONDUCTIVE, INSULATING OR DIELECTRIC PROPERTIES
    • H01B1/00—Conductors or conductive bodies characterised by the conductive materials; Selection of materials as conductors
    • H01B1/04—Conductors or conductive bodies characterised by the conductive materials; Selection of materials as conductors mainly consisting of carbon-silicon compounds, carbon or silicon
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    • Y10T428/2918—Rod, strand, filament or fiber including free carbon or carbide or therewith [not as steel]

Definitions

  • the invention relates to electrically conductive fibers for bioelectrochemical systems.
  • the invention also relates to electrodes made of such fibers and systems comprising one or more such electrodes.
  • the invention applies to the production of bioelectrochemical systems, in particular biomedical systems such as, for example, enzymatic, immunological, DNA, RNA and biopile biosensors. State of the prior art.
  • Carbon is a material of choice for the realization of electrodes. Its chemical inertia makes it possible to explore large ranges of potentials in electrochemistry. This is why carbon is very widely used in various forms for the realization of electrochemical devices: sensors, actuators, batteries and storage batteries. In addition, carbon has the particularity of being a material on which organic molecules and molecules are effectively adsorbed. It is therefore possible to absorb redox polymers, enzymes or conductive polymers for the production of advanced electrochemical devices, more efficient and selective. It is also biocompatible and ideally suited for producing devices for biological applications.
  • Carbon has other interests that are mechanical strength, thermal stability and the possibility of use in the form of "fibers"("fiber” being defined as a system of indefinite length and diameter between 10 nanometers and 1 millimeter ). This possibility is extremely valuable for the miniaturization of devices, the realization of microelectrodes or implantable systems in living organisms. Fiber shaping is also useful because it is a means of increasing the accessible surface area for a given volume of material. In all electrochemical devices, the specific surface is critical because it conditions the amplitude of the responses of the devices. Given these various advantages, traditional carbon fibers have been widely studied for the realization of microelectrodes, sensors and electrochemical biopiles. They are still today the most used material for miniaturized biopiles and the production of microelectrodes.
  • Increasing the current density of a biosensor or a biopile is an essential step in order to achieve sufficient detection limits or powers of the order of 2 ⁇ W respectively. To do this, it is necessary to increase the specific surface area of the electrodes.
  • Carbon nanotubes are materials that have a priori very interesting characteristics for bio-electrochemistry. They are made of carbon and have a very large surface area due to their nanoscale size. However mass produced nanotubes are not structured. They are in the form of a powder that can not be used in the state for bioelectrochemical applications.
  • enzymes are mixed in dispersion CNTs and the redox polymer is then added to form a sample which is placed on the surface of the glassy carbon bar to form an electrode.
  • the electrodes formed according to the two techniques described are not made of an NTC fiber.
  • the electrochemical processes on such electrodes are confined to the surface of the electrodes which limits the currents obtained.
  • it results from the present invention an organization and orientation of CNTs at the nanoscale.
  • the assembly in the form of fibers makes it possible to obtain a three-dimensional electrode which consequently increases the surface area compared with those of the state of the art.
  • the biological compounds are provided on the nanotubes after they have been assembled in the form of fibers.
  • the initial assembly of nanotubes in the form of a fiber makes it possible to maximize the effectiveness of the contacts between nanotubes and hence the conductivity of the electrode.
  • This document relates to a functional nanoparticle comprising a conductive nanoparticle (metal) or semiconducting or in CNT, and a bi-functional protein.
  • the described proteins have two activity domains, one of these domains is used to attach the protein to the nanotube.
  • Applications are described for metallic or semiconducting nanoparticles.
  • Such nanoparticles make it possible to nanoscale for electronic circuits, or assemblies forming networks with high integration of metal nanoparticles.
  • no description concerning the realization of an electrically conductive fiber and the use of such a fiber to make an electrode is made or even suggested.
  • the present invention aims to solve the problem of producing electrically conductive fibers for applications such as bioelectrochemical systems such as biosensors and biopiles used in particular in biomedical applications.
  • bioactive fibers which have a high specific surface and a conductivity which makes it possible to obtain the detection limits or the powers required in bioelectrochemical systems such as biosensors or biopiles.
  • the present invention more particularly relates to electrically conductive fibers mainly characterized in that they consist of assembled carbon nanotubes covered with a deposit comprising at least one biopolymer.
  • the biopolymer may be chosen from natural or synthetic proteins such as, for example, enzymes.
  • the deposit may further comprise one or more redox polymer (s) to improve the conductive properties of the fibers.
  • the biopolymer may be chosen from nucleic acids, for example DNA or RNA.
  • Another object of the invention relates to the method of manufacturing said fibers.
  • This method comprises the steps of making fibers consisting of carbon nanotubes, and performing one or more deposition (s) on the fibers, one of which comprises at least one biopolymer.
  • Deposition can be carried out by dipping or immersing the fibers in a solution containing at least one biopolymer or by deposition of the solution containing at least one biopolymer on the fibers or else by electrodeposition.
  • the deposition for example by brushing or spraying, is particularly suitable in the case where one seeks to cover selected sections of fibers.
  • the deposition on the fibers further comprises one or more redox polymer (s). This deposit is made at the same time as the deposition of the biopolymer (s) by the same technique as that used for the biopolymer.
  • the deposition of the polymer (s) redox (s) can also be performed before the deposition of the biopolymer (s) by immersion technique or electroplating or deposition.
  • the process for producing carbon nanotube fibers comprises spinning fibers obtained by coagulating the nanotubes from a dispersion of nanotubes in an aqueous or organic solvent.
  • the process also comprises a step of removal of the binder before making the deposit.
  • Removal of the binder involves heating the fibers to the binder decomposition temperature.
  • the binder used is binder having a decomposition temperature does not exceed 700 0 C is chosen for example polyvinyl alcohol (PVA) and the heating of the fibers is preferably carried out under inert atmosphere and at a temperature which may be between 300 ° C. and 1100 ° C. and which is preferably chosen at 600 ° C.
  • PVA polyvinyl alcohol
  • the invention also relates to the production of fiber electrodes of carbon nanotubes as described above.
  • Such electrodes consist of a section of fiber made of assembled carbon nanotubes covered with a deposit comprising at least one biopolymer according to the invention.
  • the electrodes may consist of a fiber section of which only one end comprises the biopolymer deposit and optionally a redox polymer.
  • the electrodes as defined above are particularly suitable for use in bioelectrochemical systems such as biopiles or biosensors.
  • microelectrodes namely electrodes consisting of a fiber section with a length of less than 5 cm, for example 1 to 3 cm and 1 to 100 cm. micrometers in diameter.
  • the improvement of these properties further allows the use of microelectrodes in biomedical systems that can be implanted in the human body.
  • FIG. 1 represents the current density curves in the case of an electro-reduction of oxygen, for a conventional carbon fiber electrode and for an electrode according to the invention
  • FIG. 2 represents the evolution curves over time of the electro-reduction of oxygen for a conventional carbon fiber and for a fiber according to the present invention
  • FIG. 3 represents the diagram of a biopile equipped with electrodes according to the present invention
  • FIG. 4 represents the diagram of a biosensor equipped with electrodes according to the present invention
  • FIG. 5 shows the diagram of the steps of the fiber manufacturing process according to the invention.
  • the electrically conductive fibers according to the present invention are fibers which have a very high specific surface area relative to the fibers of the state of the art, this specific surface is greater than 50 m 2 / g.
  • Such fibers are obtained by manufacturing fibers consisting only of assembled carbon nanotubes: step bearing the reference 1 in FIG. 5 and then treating these fibers to render them bioelectroactive: step 3 in FIG.
  • This treatment consists in covering them with a biopolymer chosen according to the different applications.
  • the fibers obtained thus consist of assembled carbon nanotubes and a deposit comprising at least one biopolymer.
  • the deposit may also comprise a polymer also called redox polymer.
  • the biopolymer can be chosen from:
  • Nucleic acids such as DNA, RNA.
  • the fibers are for example obtained from the manufacturing method described in the patent application WO0163028.
  • This method makes it possible to obtain fibers which consist solely of carbon nanotubes assembled and oriented at the macroscopic scale by coagulation of the nanotubes from a dispersion of nanotubes in an aqueous or organic solvent.
  • the fibers obtained by this process comprise a binder which it is necessary to remove for the envisaged applications, that is to say bioelectrochemical applications.
  • An advantage of this method is that it allows the manufacture of fibers from nanotubes mono, double or multi wall mass produced.
  • nanotube fibers in the presence of polymeric binder developed according to the method described in this patent application WO0163028 are flexible enough to be folded and knotted without breaking, unlike traditional carbon fibers.
  • binders which facilitate spinning during manufacture limits the specific surface area and the conductivity of the fibers, which is why it is necessary for the present invention to remove the binder in order to release the surface of the carbon nanotubes.
  • the process for manufacturing the fibers according to the present invention thus comprises in this mode of embodiment, an additional step, step bearing the reference 2 in Figure 5, of removing the binder used and that by a high temperature treatment.
  • the binder used in the manufacture of such fibers will be chosen so that it is easy to eliminate without the properties of the carbon nanotubes are degraded.
  • polyvinyl alcohol (PVA) can be chosen.
  • PVA polyvinyl alcohol
  • This binder is a polymer that ensures good coagulation of the nanotubes in the spinning process. It can be degraded by a heat treatment from 300 ° C. This binder is degraded to more than 95% by a heat treatment at 600 ° C. in a non-oxidizing atmosphere. At this temperature the nanotubes are not degraded at all.
  • the fibers consist exclusively of carbon nanotubes.
  • the orientation of the nanotubes will be controlled by stretching carried out before the thermal annealing of the fibers. Stretches before annealing allow modulating and controlling their electrical conductivity as well as their diameter, density and capacitance.
  • the fibers consisting solely of nanotubes have a very high specific surface area greater than 50 m 2 / g. they have a diameter of 1 to 100 microns and have a density of up to 1.8 g / cm3.
  • the fiber manufacturing method according to the invention further comprises a treatment carried out in one or more steps, depending on the type of fibers, to adapt them to the bioelectrochemical properties.
  • This treatment consists in covering the fibers with bioelectroactive (or biospecific) species, and more particularly, with one or more selected biopolymers. This step bears the reference 3 in FIG.
  • the treatment for rendering the bioelectroactive fibers may, for example, consist in soaking the fibers in solutions containing the required species or species, that is to say the selected polymer (s), or immersing those with these solutions or by deposition of the solution on the fibers (for example by brushing or spraying them) or even by electroplating the solution on the fibers by applying a potential in the solution.
  • the very strong interaction of the nanotubes with the polymers ensures an increased absorption stability.
  • Absorption stability is critical for the stability of sensor or biopile systems.
  • the fibers according to the invention thus guarantee a much longer operating time than that accessible by traditional carbonaceous materials.
  • a second treatment is provided consisting in covering the fibers of the redox polymer adapted to the selected biopolymer.
  • the deposition of the redox polymer (s) can be carried out at the same time as the deposition of the biopolymer or may have been done before and by the same techniques, immersion, electroplating, deposition.
  • the method of Gao et al can be used: "Electrodeposition of Redox Polymers and Co-Electrodeposition of Enzymes" CoordinativeCrosslinking ", Zhiqiang Gao, Gary Binyamin, Kim Hyug-Han, Scott Calabrese Barton, Yongchao Zhang, and Adam Heller, Angew. Chem. Int. Ed. 2002, 41, No. 5, 810-813.
  • the process for obtaining carbon nanotube fibers may, in an alternative embodiment, be carried out by coagulation without a polymeric binder according to the process described, for example, in the article by J. Steinmetz, M. Glerup, M. Paillet, P.
  • This second embodiment may, for example be reserved for non-continuous production of fibers. Indeed, the spinning without polymeric binder is much more delicate and unsuitable for continuous production of homogeneous fibers and sufficient mechanical strength.
  • the fibers according to the invention are biospecific and have a large specific surface, a high electrical conductivity, and an increased stability compared to the electrodes of the state of the art, they meet the needs encountered for the production of electrodes in systems bioelectrochemicals.
  • FIGS. 1 and 2 The comparative results are illustrated in FIGS. 1 and 2, the results relating to the carbon fiber are shown in fine lines and those of the fiber according to the invention are represented in thick lines.
  • an enzyme such as bilirubin oxidase and its polymer-redox PAA-PVI- [Os (4,4'-dichloro-2,2'-bipyridine) 2Cl] + / 2.
  • the comparative measurements were carried out by carrying out an electro-reduction of 02 on a carbon fiber electrode (thin line) and on a nanotube fiber electrode according to the invention (thick line) under the following conditions: 20 mM phosphate buffer, 0.14 M NaCl, pH 7.2, 37.5 C, 1 mV.s-1.
  • the composition of the bioelectrocatalyst used to cover the electrodes subject of the comparison 32% by weight of Bilirubin Oxidase, 60.5% by weight of PAA-PVI- [Os (4,4'-dichloro-2,2'-bipyridine) 2Cl] + / 2 +, 7.5% by weight of crosslinking agent (poly-ethylene glycol (400) diglycidyl ether).
  • FIG. 2 illustrates the evolution over time of the electro-reduction of O 2 on the carbon fiber electrode (white circles) and on the carbon nanotube fiber electrode according to the invention (black circles) under the following conditions: a 20 mM phosphate buffer solution, 0.14 M NaCl, pH 7.2, 37.5 C, 1 mV.s-1. Composition of the bioelectrocatalyst: 32% by weight of Bilirubin Oxidase, 60.5% by weight of PAA-PVI-
  • the anode and the cathode are electrodes obtained from carbon nanotube fibers as previously described. These electrodes consist of carbon nanotube fibers coated with their respective bioelectrocatalysts and reside in the same solution.
  • the electrodes are connected to a component R and allow to supply a power supply to this component thanks to the following reactions:
  • Equation 3 represents the overall reaction of the stack. ⁇ -D-glucose -> ⁇ -gluconolactone + 2H + + 2e- (1)
  • a biopile as described can produce a few microwatts and can feed a biodevector-autonomous transmitter R, which records, for example , local glucose concentration, appropriate for diabetes management or local temperature, evidence of infection of an internal injury after surgery or microsurgery.
  • the diagram of FIG. 4 illustrates the application of the invention to the production of a biosensor.
  • the biosensor includes three electrodes, an anode El, E2 against an electrode and a reference electrode E ref.
  • the anode El consists of carbon nanotube fibers comprising a deposit of bioelectrocatalyst ie biopolymer and the selected redox polymer. This anode resides in a solution of chemical species suitable for the measurement carried out.
  • the cathode is the reference electrode E re f, that is to say the electrode brought to a fixed potential immersed in a buffer solution. If the same bioelectrocatalyst is used as in the example given for the reactions in FIG.
  • the measurement of the potential of the anode relative to that of the cathode gives information on the presence and the quantity of glucose.
  • the electrodes E1, E2 and E ref are connected to a component C of the sensor or detector type (potentiostat), which makes it possible to measure the current or voltage resulting from the bioelectrocatalysis.
  • the fibers according to the invention find applications in all bioelectrochemical systems.
  • the fibers according to the invention can be manufactured continuously. Their section may be circular or not, and the largest dimension of the section may be between 10 nm and 1 mm. Any type of nanotube is usable for their manufacture.
  • Deposition of the biopolymer can be performed by dipping or soaking in a solution comprising the desired biopolymer (enzyme or DNA or RNA), or by electrodeposition, the electroplating being done in a known manner by applying an electrical potential to the solution.
  • this redox polymer may be in the same solution as the biopolymer, the redox polymer is then deposited at the same time as the polymer or co-electrodeposited.
  • concentrations of polymer and biopolymers can range from 0.1 mg / ml to 10 mg / ml and the thickness of the biopolymer deposition can range from a few angstroms to a few micrometers.
  • the polymer concentrations are chosen so as to have a control of the thickness of the deposit and more precisely of the amount of deposited biopolymer.
  • the production of electrodes from such fibers consists in cutting sections of fibers, to the length desired. Thus, any length can be arranged.
  • Electrodes In most applications, and this is the case for the use of electrodes in the production of biopiles or biosensors, a very short length will be chosen, the lengths of said electrodes do not exceed, for example, 5 cm, 1 to 3 cm. preferably. They are microelectrodes from 1 to 30 micrometers in diameter and 1 to 3cm in length that can be implanted under the skin or in any living organism.
  • Electrodes from these fibers consists in cutting sections of fiber so as to have the deposit (biopolymer and optionally redox polymer) only at one end of the section.
  • Such electrodes can be used in the realization of neurobiological probes for example.
  • the fibers described in the present invention can be used in the form of multifilament yarns and ribbons, mats, woven or nonwoven structures.

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Abstract

L' invention concerne des fibres à conductivité électrique constituées de nanotubes de carbone assemblés et recouvertes d' au moins un dépôt comportant un biopolymère. L'invention s'applique à la fabrication d'électrodes et à l'utilisation de ces électrodes dans des systèmes bioélectrochimiques tels que par exemple des biocapteurs enzymatiques, immunologiques, ADN, ARN et des biopiles.

Description

FIBRES A CONDUCTIVITE ELECTRIQUE POUR SYSTEMES BIOELECTROCHIMIQUES, ELECTRODES REALISEES AVEC DE TELLES FIBRES ET SYSTEMES COMPORTANT UNE OU PLUSIEURS DE TELLES
ELECTRODES .
L'invention concerne des fibres à conductivité électrique pour systèmes bioélectrochimiques . L'invention concerne également des électrodes réalisées avec de telles fibres et des systèmes comportant une ou plusieurs de telles électrodes.
L'invention s'applique à la réalisation de systèmes bioélectrochimiques, en particulier des systèmes biomédicaux tels que par exemple des biocapteurs enzymatiques, immunologiques, ADN, ARN et des biopiles. Etat de la technique antérieure .
Le carbone est un matériau de choix pour la réalisation d'électrodes. Son inertie chimique permet en effet d'explorer de grandes gammes de potentiels en électrochimie. C'est pourquoi le carbone est très largement utilisé sous diverses formes pour la réalisation de dispositifs électrochimiques : capteurs, actionneurs, piles et batteries de stockage. De plus le carbone a la particularité d'être un matériau sur lequel s'adsorbent efficacement les molécules et polymères organiques. Il est donc possible d'y absorber des polymères redox, des enzymes ou encore des polymères conducteurs pour la réalisation de dispositifs électrochimiques évolués, plus performants et sélectifs. Il est de plus biocompatible et se prête de façon idéale à la réalisation de dispositifs pour des applications biologiques .
Le carbone présente d'autres intérêts qui sont la tenue mécanique, la stabilité thermique et la possibilité d'utilisation sous forme de « fibres » (« fibre » étant définie comme un système de longueur indéfinie et de diamètre compris entre 10 nanomètre et 1 millimètre) . Cette possibilité est extrêmement précieuse pour la miniaturisation de dispositifs, la réalisation de microélectrodes ou de systèmes implantables dans des organismes vivants. La mise en forme de fibres est aussi utile car c'est un moyen d'augmenter la surface accessible pour un volume donné de matériau. Dans tous dispositifs électrochimiques, la surface spécifique est critique car elle conditionne l'amplitude des réponses des dispositifs. Compte tenu de ces différents avantages, les fibres de carbone traditionnelles ont été largement étudiées pour la réalisation de microélectrodes, de capteurs et de biopiles électrochimiques. Elles sont encore aujourd'hui le matériau le plus utilisé pour les biopiles miniaturisées et la réalisation de microélectrodes.
Cependant les performances des matériaux actuels sont encore limitées par des courants trop faibles, des absorptions peu stables ou pas assez efficaces. Par exemple dans le cas des biopiles décrites par exemple dans la publication de Heller, A., Anal. Bioabal. Chem. 2006, 385, 469-473 et dans la publication de Heller, A., Curr Opin Biotechnol 2006, 10, 664-672 ; les puissances générées sont insuffisantes pour des systèmes biomédicaux tels que l'alimentation électrique de biocapteurs implantés notamment.
L'augmentation de la densité de courant d'un biocapteur ou d'une biopile est une étape impérative pour pouvoir atteindre respectivement des limites de détection suffisantes ou des puissances de l'ordre de 2 μW. Pour ce faire, il est nécessaire d'augmenter la surface spécifique des électrodes.
Une façon de le faire est de réaliser des matériaux avec de plus grandes surfaces spécifiques tout en conservant, voire en améliorant, les propriétés qu'apporte le carbone dans le domaine des applications bio-électrochimiques .
Les nanotubes de carbone (monoparois, double ou multiparois) sont des matériaux qui présentent des caractéristiques à priori très intéressantes pour la bio- électrochimie. Ils sont en effet constitués de carbone et présentent du fait de leur taille nanométrique une très grande surface spécifique. Cependant les nanotubes produits en masse ne sont pas structurés. Ils se présentent sous forme d'une poudre qui ne peut être utilisée en l'état pour des applications bio- électrochimiques .
Diverses approches cependant, ont été proposées pour la modification d'électrodes avec des nanotubes de carbone.
On peut citer à titre d'exemple la publication de Wang, y; Li, Q.; Hu, S., Bioelectrochemistry 2005, 65, 135-142. Les nanotubes sont déposés aléatoirement en surface de matériaux conducteurs ou noyés dans une matrice conductrice. Il est ainsi difficile d'exploiter efficacement leurs propriétés à savoir leur surface spécifique et conductivité électrique.
D'autres approchent consistent à faire croître les nanotubes sur des surfaces conductrices. On peut citer par exemple l'article de Huang, X. -J.; Im, H.-S.; Yarimaga, 0.; Kim, J. -H.; Jang, D. -Y.; Lee, D. -H.; Kim, H.-S.; Choi, Y. -K., J. Electroanal. Chem. 2006, 594, 27- 34 et l'article de Wang, K.; Fishman, H. A.; Dai, H.; Harris, J. S., Nano . Lett. 2006, 6, 2043-2048. On peut citer également la réalisation de microélectrodes simples à base de fibres de nanotubes de carbone réalisées pour la détection de la nicotine adénine dinucléotide (NADH) . Une description de cette application particulière est faite dans l'article de Wang, J.; Deo, R. P.; Poulin, P.; Mangey, M., J. Am. Chem. Soc. 2003, 125, (48), 14706-14707. Il s'agit d'électrodes réservées à une application non bio électrochimique et dont la réponse est limitée à la réponse intrinsèque des nanotubes de carbone. Enfin, une autre approche a consisté à sertir des fibres de nanotubes dans une résine de façon à exploiter la section de la fibre comme élément électro-actif. Cette approche est décrite dans l'article de Viry, L.; Derré, A.; Garrigues, P.; Sojic, N.; Poulin, P.; Kuhn, A., Anal. Bioanal. Chem. 2007, 389, 499-505. Ce type d'électrode en nanotubes reste limité pour la génération de grands courants en valeur absolue compte tenu de la petite section des fibres.
On pourra en outre se reporter à l'état de la technique constitué par le document Dl de JOSHI,
MERCHANT, WANG, SCHMIDTKE, intitulé «Amperometric
Biosensors based on Redox Polymer-Carbon Nanotube-Enzyme
Composites ». Ce document décrit la réalisation d'une électrode constituée d'une barre en carbone vitreux (GCE) dont la surface est recouverte d'une dispersion de nanotubes de carbone (NTC) . Avec la technique de dépôt employée, les NTC s'orientent de manière aléatoire, et forment une surface à deux dimensions. Après séchage du dépôt de NTC, des enzymes sont apportés et se fixent sur les NTC, un polymère redox étant utilisé à cette fin.
Dans une deuxième expérience décrite, on mélange dans des NTC en dispersion, des enzymes, puis on rajoute le polymère redox de manière à former un échantillon que l'on place sur la surface de la barre en carbone vitreux, pour former une électrode.
Les électrodes formées selon les deux techniques décrites ne sont pas constituées d'une fibre en NTC. Les processus électrochimiques sur de telles électrodes sont confinés en surface des électrodes ce qui limite les courants obtenus. Contrairement à cette technologie, il résulte de la présente invention une organisation et une orientation des NTC à l'échelle nanométrique . L'assemblage sous forme de fibres permet d'obtenir une électrode à trois dimensions qui présente de ce fait augmentation de la surface spécifique par rapport à celles de l'état de la technique .
On pourra aussi se reporter au document D2, WO 2005/075663. Ce document décrit un procédé similaire à celui décrit dans Dl. En effet, le procédé décrit consiste à mélanger un composé biologique comme un biopolymère (enzyme, ADN) , à un matériau nanostructuré, comme par exemple des NTC dans une solution, à mélanger la solution pour former une dispersion, et à retirer le matériau composite nanostructuré ainsi obtenu. Les nanotubes sont assemblés alors qu' ils sont recouverts de composés biologiques. Ces composés peuvent constituer des barrières isolantes pour le passage du courant entre nanotubes, ce qui est préjudiciable à une utilisation comme électrode.
Selon la présente invention, les composés biologiques sont apportés sur les nanotubes après que ceux-ci aient été assemblés sous forme de fibres. L'assemblage initial des nanotubes sous forme d'une fibre permet de maximiser l'efficacité des contacts entre nanotubes et par là la conductivité de l'électrode.
Enfin, on pourra également se reporter à l'état de la technique que constitue le document D3, WO 2004/020453. Ce document concerne une nanoparticule fonctionnelle comprenant une nanoparticule conductrice (métal) ou semi- conductrice ou en NTC, et une protéine bi fonctionnelle. Les protéines décrites ont deux domaines d'activité, l'un de ces domaines est utilisé pour fixer la protéine sur le nanotube. Des applications sont décrites pour des nanoparticules métalliques ou semi conductrices. De telles nanoparticules permettent de réaliser des liaisons nanométriques pour des circuits électroniques, ou des assemblages formant des réseaux à haute intégration de nanoparticules métalliques. Cependant aucune description concernant la réalisation d'une fibre à conductivité électrique et l'utilisation d'une telle fibre pour réaliser une électrode n'est faite ni même suggérée.
En conclusion, les solutions existantes procurent des résultats non satisfaisants pour le fonctionnement de systèmes bioélectrochimiques . Avec les fibres de carbone, la surface spécifique est trop faible pour permettre d'obtenir une densité de courant suffisante et par conséquent une conductivité adaptée à des applications telles que des systèmes bioélectrochimiques tels que des biopiles ou biocapteurs. Invention
La présente invention a pour but de résoudre le problème de la réalisation de fibres à conductivité électrique pour des applications telles que des systèmes bioélectrochimiques comme par exemple des biocapteurs et des biopiles utilisés notamment dans des applications biomédicales .
Ce problème est résolu au moyen de fibres bioactives qui présentent une surface spécifique élevée et une conductivité permettant d'obtenir les limites de détection ou les puissances requises dans des systèmes bioélectrochimiques tels que les biocapteurs ou les biopiles .
La présente invention a plus particulièrement pour objet des fibres à conductivité électrique principalement caractérisées en ce qu'elles sont constituées de nanotubes de carbone assemblés recouverts d'un dépôt comprenant au moins un biopolymère.
Le biopolymère peut être choisi parmi les protéines naturelles ou de synthèse telles que par exemple des enzymes. Le dépôt peut comporter en outre un ou plusieurs polymère (s) redox pour améliorer les propriétés conductrices des fibres.
Le biopolymère peut être choisi parmi les acides nucléiques par exemple l'ADN ou l'ARN.
Un autre objet de l'invention concerne le procédé de fabrication desdites fibres. Ce procédé comprend les étapes consistant à réaliser des fibres constituées de nanotubes de carbone, et à effectuer un ou plusieurs dépôt (s) sur les fibres dont un comprend au moins un biopolymère .
Le dépôt peut être effectué par trempage ou immersion des fibres dans une solution contenant au moins un biopolymère ou bien par déposition de la solution contenant au moins un biopolymère sur les fibres ou encore par électrodéposition. La déposition par exemple par badigeonnage ou pulvérisation, est particulièrement adaptée au cas où on cherche à couvrir des tronçons sélectionnés de fibres. Le dépôt sur les fibres comprend en outre un ou plusieurs polymère (s) redox. Ce dépôt est effectué en même temps que le dépôt du ou des biopolymère (s) par la même technique que celle utilisée pour le biopolymère.
Le dépôt du ou des polymère (s) redox peut également être effectué avant le dépôt du ou des biopolymère (s) par la technique d'immersion ou d' électrodéposition ou de déposition .
Dans un exemple de réalisation, le procédé de réalisation des fibres constituées de nanotubes de carbone comprend le filage de fibres obtenues par coagulation des nanotubes à partir d'une dispersion de nanotubes dans un solvant aqueux ou organique. Dans le cas où la coagulation des nanotubes comporte l'utilisation d'un liant, le procédé comprend également une étape de retrait du liant avant d'effectuer le dépôt.
Le retrait du liant consiste à chauffer les fibres à la température de décomposition du liant.
Pour ne pas dégrader les propriétés des nanotubes de carbone, le liant utilisé est liant dont la température de décomposition ne dépasse pas 7000C. On choisit par exemple de l'alcool polyvinylique (APV) et le chauffage des fibres est réalisé de préférence sous atmosphère inerte et à une température qui peut être comprise entre 300° C et 11000C et qui est choisi de préférence à 6000C.
L' invention concerne également la réalisation d'électrodes en fibre de nanotubes de carbone telles que décrites précédemment. De telles électrodes sont constituées d'un tronçon de fibre en nanotubes de carbone assemblés recouverts d'un dépôt comportant au moins un biopolymère selon l'invention.
Les électrodes peuvent être constituées d'un tronçon de fibre dont une extrémité seulement comporte le dépôt de biopolymère et éventuellement d'un polymère redox.
Les électrodes telles que définies précédemment sont particulièrement adaptées à l'utilisation dans des systèmes bioélectrochimiques tels que des biopiles ou des biocapteurs.
L'amélioration des propriétés de conductivité des fibres selon la présente invention, permet la réalisation de microélectrodes, à savoir, d'électrodes constituées d'un tronçon de fibre de longueur inférieure à 5 centimètres, 1 à 3 cm par exemple et 1 à 100 micromètres de diamètre. L'amélioration de ces propriétés permet en outre l'utilisation des microélectrodes dans des systèmes biomédicaux pouvant être implantés dans le corps humain. D'autres particularités et avantages de l'invention apparaîtront clairement à la lecture de la description qui est faite ci-après et qui est donnée à titre d'exemple illustratif et non limitatif et en regard des figures sur lesquelles :
- la figure 1 représente les courbes de densité de courant dans le cas d'une électro-réduction d'oxygène, pour une électrode en fibre de carbone classique et pour une électrode selon l'invention; - la figure 2 représente les courbes d'évolution dans le temps de l' électro-réduction de l'oxygène pour une fibre de carbone classique et pour une fibre selon la présente invention, la figure 3 représente le schéma d'une biopile équipée d'électrodes selon la présente invention,
- la figure 4 représente le schéma d'un biocapteur équipé d'électrodes selon la présente invention,
- La figure 5 représente le schéma des étapes du procédé de fabrication des fibres selon l'invention.
Les fibres à conductivité électrique selon la présente invention sont des fibres qui présentent une surface spécifique très élevée par rapport aux fibres de l'état de la technique, cette surface spécifique est supérieure à 50m2/g.
De telles fibres sont obtenues en fabriquant des fibres uniquement constituées de nanotubes de carbone assemblés : étape portant la référence 1 sur la figure 5 puis, en traitant ces fibres pour les rendre bioélectroactives : étape 3 sur la figure 5.
Ce traitement consiste à les recouvrir d'un biopolymère choisi selon les différentes applications. Les fibres obtenues sont ainsi constituées de nanotubes de carbone assemblés et un dépôt comportant au moins un biopolymère. Le dépôt peut également comporter un polymère encore dénommé polymère redox.
Le biopolymère peut être choisi parmi :
- Les protéines naturelles ou de synthèse et plus particulièrement parmi les enzymes ;
Les acides nucléiques comme par exemple l'ADN, 1 ' ARN .
Selon un mode de réalisation, les fibres sont par exemple obtenues à partir du procédé de fabrication décrit dans la demande de brevet WO0163028. Ce procédé permet d'obtenir des fibres qui sont uniquement constituées de nanotubes de carbone assemblés et orientés à l'échelle macroscopique par coagulation des nanotubes à partir d'une dispersion de nanotubes dans un solvant aqueux ou organique. Toutefois, les fibres obtenues par ce procédé comportent un liant qu' il est nécessaire de retirer pour les applications envisagées c'est-à-dire des applications bioélectrochimiques .
Un avantage de ce procédé est qu'il permet la fabrication de fibres à partir de nanotubes mono, double ou multi parois produits en masse.
Un autre avantage est que les fibres de nanotubes en présence de liant polymérique développées selon le procédé décrit dans cette demande de brevet WO0163028, sont suffisamment flexibles pour être pliées et nouées sans se casser, contrairement aux fibres de carbone traditionnelles .
La présence de liants qui facilitent le filage à la fabrication, limite la surface spécifique et la conductivité des fibres, c'est pourquoi, il est nécessaire pour la présente invention d'éliminer le liant afin de libérer la surface des nanotubes de carbone.
Le procédé de fabrication des fibres selon la présente invention comporte donc dans ce mode de réalisation, une étape supplémentaire, étape portant la référence 2 sur la figure 5, consistant à éliminer le liant utilisé et cela, par un traitement à haute température . Le liant utilisé dans la fabrication de telles fibres sera choisi de sorte qu'il soit aisé de l'éliminer sans que les propriétés des nanotubes de carbone ne soient dégradées. On peut par exemple, choisir l'alcool polyvinylique (APV) . Ce liant est un polymère qui assure une bonne coagulation des nanotubes dans le procédé de filage. Il peut être dégradé par un traitement thermique à partir de 3000C. Ce liant est dégradé à plus de 95% par un traitement thermique à 6000C en atmosphère non oxydante. A cette température les nanotubes ne sont aucunement dégradés.
Après ce traitement thermique, les fibres sont constituées exclusivement de nanotubes de carbone.
De préférence, l'orientation des nanotubes sera contrôlée via des étirements effectués avant le recuit thermique des fibres. Les étirements avant recuit permettent de moduler et de contrôler leur conductivité électrique ainsi que leur diamètre, leur densité et capacitance .
Ainsi, les fibres uniquement constituées de nanotubes présentent une surface spécifique très élevée, supérieure à 50m2/g. elles présentent un diamètre de 1 à 100 microns et possèdent une densité pouvant aller jusqu' à 1,8 g/cm3.
La structure de telles fibres permet une utilisation efficace des nanotubes de carbone pour des applications électrochimiques .
Le procédé de fabrication des fibres selon l'invention comporte en outre un traitement effectué en une étape ou plus, selon le type de fibres, pour les adapter aux propriétés bioélectrochimiques . Ce traitement consiste à recouvrir les fibres d'espèces bioélectroactives (ou biospécifiques), et plus particulièrement, d'un biopolymère ou de plusieurs choisi (s) . Cette étape porte la référence 3 sur la figure 5.
Le choix des biopolymères est effectué selon les applications .
Le traitement permettant de rendre les fibres bioélectroactives peut, par exemple, consister à tremper les fibres dans des solutions contenant la ou les espèce (s) requise (s) c'est-à-dire le ou les polymères choisis, ou en immergeant celles-ci avec ces solutions ou encore en procédant à une déposition de la solution sur les fibres (par exemple en les badigeonnant ou en les pulvérisant) ou bien encore en effectuant une électrodéposition de la solution sur les fibres par application d'un potentiel dans la solution.
La très forte interaction des nanotubes avec les polymères assure une stabilité d'absorption accrue. La stabilité d'absorption est critique pour la stabilité des systèmes capteurs ou biopiles. Les fibres selon l'invention garantissent ainsi une durée de fonctionnement bien supérieure à celle accessible par des matériaux carbonés traditionnels. Pour accélérer les bio-réactions, on prévoit un deuxième traitement consistant à recouvrir les fibres du polymère redox adapté au biopolymère choisi.
De façon pratique, le dépôt du ou des polymères redox peut être effectué en même temps que le dépôt du biopolymère ou avoir été fait avant et cela par les mêmes techniques, immersion, électrodéposition, déposition.
Dans le cas d'une électrodéposition ou co- électrodéposition on pourra utiliser la méthode de Gao et al : « Electrodeposition of Redox Polymers and Co- Electrodeposition of Enzymes by CoordinativeCrosslinking », Zhiqiang Gao, Gary Binyamin, Hyug-Han Kim, Scott Calabrese Barton, Yongchao Zhang, and Adam Heller, Angew. Chem. Int. Ed. 2002, 41, No. 5, 810- 813. Le procédé pour obtenir des fibres de nanotubes de carbone peut, dans une variante de réalisation, être réalisé par coagulation sans liant polymérique selon le procédé décrit par exemple dans l'article de J. Steinmetz, M. Glerup, M. Paillet, P. Bernier, and M. Holzinger intitulée « Production of pure nanotubes fibers using a modified wet-spinning method », paru dans la publication Carbon, 43 (11) : 2397-2400, 2005. La ou les étape (s) de traitement ultérieures des fibres de nanotubes de carbone ainsi obtenues, sont les mêmes que précédemment décrites. Cette solution présente l'avantage de ne pas nécessiter d'étape de traitement thermique pour l'élimination du liant.
Ce second mode de réalisation pourra, par exemple être réservé pour une production non continue des fibres. En effet, le filage sans liant polymérique est beaucoup plus délicat et inadapté à une production continue de fibres homogènes et de tenue mécanique suffisante.
D' autres procédés de fabrication de fibres constituées de nanotubes de carbone peuvent également être utilisés comme par exemple :
Le procédé de coagulation utilisant un bain statique tel que décrit par L. M. Ericson, H. Fan, H. Q. Peng, V. A. Davis, W. Zhou, J. Sulpizio, Y. H ;Wang, R. Booker, J. Vavro, C. Guthy, A. N. G. Parra-Vasquez, M. J. Kim, S. Ramesh, R. K. Saini, C. Kittrell, G. Lavin, H. Schmidt, W. W. Adams,W. E. Billups, M. Pasquali, W. F. Hwang, R. H. Hauge, J. E. Fischer, and R. E. Smalley « Macroscopic, neat, single-walled carbon nanotube fibers », et publié dans Science, 305 (5689) : 1447-1450, 2004. - Les procédés de synthèse directs. Ils permettent la production de fibres 100% de nanotubes tels que décrits par :
- H. W. Zhu, C. L. Xu, D. H. Wu, B. Q. Wei, R. Vajtai, and P. M. Ajayan « Direct synthesis of long single-walled carbon nanotube strands » et publié dans Science, 296 (5569) : 884-886, 2002.
M. Zhang, K. R. Atkinson, and R. H. Baughman « Multifunctional carbon nanotube yarns by downsizing an ancient technology » et publié dans Science, 306 (5700) .1358-1361, 2004.
- Y. L. Li, I. A. Kinloch, and A. H.Windle « Direct spinning of carbon nanotube fibers from chemical vapor déposition synthesis » et publié dans Science, 304 (5668) :276-278, 2004.
Les fibres selon l'invention sont biospécificiques et présentent une grande surface spécifique, une haute conductivité électrique, et une stabilité accrue par rapport aux électrodes de l'état de la technique, elles répondent aux besoins rencontrés pour la réalisation d'électrodes dans des systèmes bioélectrochimiques .
Les caractéristiques des fibres selon l'invention sont clairement mises en évidence à partir de l'exemple de mise en œuvre décrit ci-dessous.
Dans cet exemple, une bioélectrocatalyse a été mise en œuvre avec une fibre de carbone de l'état de la technique, puis avec une fibre selon l'invention. Les résultats comparatifs sont illustrés par les figures 1 et 2, les résultats relatifs à la fibre de carbone sont représentés en trait fin et ceux de la fibre conforme à l'invention sont représentés en trait épais.
Exemple : Dans cet exemple, une fibre de carbone traditionnelle et une fibre de nanotubes de carbone obtenue comme décrit précédemment, ont fait l'objet d'un dépôt de manière à être recouvertes d'une enzyme telle que la bilirubine oxydase et de son polymère- redox PAA-PVI- [Os (4, 4 '- dichloro-2 , 2 ' -bipyridine) 2Cl] +/2.
Les mesures comparatives ont été effectuées en procédant à une électro-réduction de 02 sur une électrode en fibre de carbone (trait fin) et sur une électrode en fibre de nanotubes conforme à l'invention (trait épais) dans les conditions suivantes : solution avec un tampon phosphate 20 mM, 0.14 M NaCl, pH 7.2, 37.5 C, 1 mV.s-1. La composition du bioélectrocatalyseur utilisé pour recouvrir les électrodes objet de la comparaison: 32 % en poids de Bilirubine Oxydase, 60.5 % en poids de PAA-PVI- [Os (4, 4 '-dichloro-2, 2 '-bipyridine) 2Cl] +/2+ , 7.5 % en poids de réticulant (poly-ethylene glycol (400) diglycidyl ether) .
Comme le montre la figure 1, à +0.3 V/AgAgCl, il est possible de réduire l'O2 en H2O à une densité de courant de 880 μA.cm-2 sur l'électrode en fibre de nanotubes de carbone et seulement 215 μA.cm-2 sur une électrode en fibre de carbone. Cette valeur représente d'ailleurs la plus importante valeur reportée jusqu'ici pour la réduction d' 02 sur une fibre. Cela démontre clairement l'avantage d'utiliser des fibres de nanotubes de carbone au lieu de fibres de carbone.
En augmentant la surface spécifique de l'électrode, on augmente non seulement la densité de courant limite, mais cela permet aussi d'améliorer la cinétique enzymatique à l'électrode et de diminuer son potentiel et dans ce cas précis, de diminuer le surpotentiel de réduction de l'oxygène.
En outre, l'utilisation de fibres de nanotubes de carbone au lieu de fibre de carbone permet aussi d'augmenter la stabilité du système. Ces résultats ont été démontrés en réalisant des tests de stabilité, en milieu physiologique, en utilisant les électrodes telles que décrites précédemment.
La figure 2 illustre l'évolution dans le temps de l' électro-réduction de 02 sur l'électrode en fibre de carbone (cercles blancs) et sur l'électrode en fibre de nanotubes de carbone conforme à l'invention (cercles noirs) dans les conditions suivantes : une solution tampon phosphate 20 mM, 0.14 M NaCl, pH 7.2, 37.5 C, 1 mV.s-1. Composition du bioélectrocatalyseur : 32 % en poids de Bilirubine Oxydase, 60.5 % en poids de PAA-PVI-
[Os (4,4'-dichloro-2,2'-bipyridine) 2Cl] +/2+, 7.5 % en poids de réticulant (poly-ethylene glycol (400) diglycidyl ether) .
Comme l'illustre la Figure 2, après 4 heures d'opération en continue, la densité de courant a diminué de 50 % avec l'électrode en fibre de carbone, mais de seulement de 15 % avec l'électrode en fibre de nanotubes de carbone conforme à l'invention.
Avec de telles électrodes en fibre de nanotubes de carbone, il est possible de réaliser des biopiles selon des concepts classiques comme cela est illustré par le schéma de la figure 3.
Sur le schéma de la figure 3, l'anode et la cathode sont des électrodes obtenues à partir de fibres de nanotubes de carbone comme décrit précédemment. Ces électrodes sont constituées de fibres de nanotubes de carbone recouvertes de leurs bioélectrocatalyseurs respectifs et résident dans la même solution. Les électrodes sont connectées à un composant R et permettent de fournir une alimentation électrique à ce composant grâce aux réactions suivantes :
A l'anode, les électrons sont transférés du glucose vers la glucose oxydase (GOx) , de la GOx vers le polymère redox I et du polymère redox I, vers l'électrode. A la cathode, les électrons sont transférés de la cathode vers le polymère redox II, du polymère redox II vers la bilirubine oxydase (BOD) et de BOD vers 1 ' 02.
Dans le système illustré sur ce schéma, après oxydation du glucose en δ-gluconolactone par la glucose oxydase (GOx) , les électrons sont transportés vers l'anode par le polymère rédox I. (Equation 1) Les électrons sont ensuite transportés de la cathode vers la bilirubine oxydase (BOD) par le polymère redox II, qui catalyse alors la réduction de l'O2 en eau (Equation 2) .
L'équation 3 représente la réaction globale de la pile. β-D-glucose —> δ-gluconolactone + 2H+ + 2e- (1)
02 + 4H+ + 4e- → 2 H20 (2)
2 β-D-glucose + 02 → 2 δ-gluconolactone + H20 (3) Une fois implantée dans le corps humain, une biopile telle que décrite peut produire quelques microwatts et peut alimenter un biodétecteur-émetteur autonome R, qui enregistre, par exemple, la concentration locale en glucose, appropriée pour la gestion du diabète ou la température locale, témoin de l'infection d'une blessure interne après chirurgie ou microchirurgie.
A titre d'exemple une expérience réalisée avec une telle biopile en présence d'air et de 15 mM de glucose a permis d'obtenir une puissance de 600 μW.cm"2. Dans les mêmes conditions expérimentales, une biopile faite avec des fibres de carbone a permis d obtenir une puissance de seulement 180 μW.cm"2.
Le schéma de la figure 4 illustre l'application de l'invention à la réalisation d'un biocapteur. Le biocapteur comporte trois électrodes, une anode El, une contre électrode E2 et une électrode de référence Eref. L'anode El est constituée de fibres de nanotubes de carbone comportant un dépôt de bioélectrocatalyseur c'est à dire du biopolymère et du polymère redox choisi. Cette anode réside dans une solution d'espèces chimiques adaptées pour la mesure effectuée. La cathode est l'électrode de référence Eref, c'est-à-dire l'électrode portée à un potentiel fixe plongée dans une solution tampon. Si on utilise le même bioélectrocatalyseur que dans l'exemple donné pour les réactions figure 3, la mesure du potentiel de l'anode par rapport à celui de la cathode donne une information sur la présence et la quantité de glucose. Les électrodes El, E2 et Eref sont connectées à un composant C de type capteur ou détecteur (potentiostat) , qui permet d'effectuer une mesure de courant ou de tension résultant de la bioélectrocatalyse .
Les fibres selon l'invention trouvent des applications dans tous systèmes bioélectrochimiques .
La liste ci-dessous est donnée à titre d'exemple non limitatif pour illustrer des enzymes pouvant être choisis selon l'application désirée. On a également associé à chaque enzyme, un substrat pour la réalisation d'une biopile ou d'un biocapteur:
1— Glucose Oxydase /glucose (ou tous sucres étant oxydés par cette enzyme)
2— Lactate oxydase / lactate 3— Pyruvate oxydase / Pyruvate
4— Alcool Oxydase /Alcool
5— Cholestérol oxydase / cholestérol
6— glutamate oxydase/ glutamate
7— Pyranose oxydase/ pyranose 8— choline oxydase/ choline
9— Cellobiose déshydrogénase / cellobiose 10 —glucose déshydrogénase /glucose 11— Pyranose déshydrogénase /pyranose 12— Fructose déshydrogénase /fructose
13— Aldéhyde oxydas e / aldéhyde 14—gluconolactone oxydas e / glucunolactone 15— Alcool déshydrogénase /alcool 16— Bilirubine oxydase / oxygène
17- Laccase / oxygène 18— ceruloplasmine / oxygène
19- ascorbate oxydase / oxygène ou ascorbate,
20- horseradish peroxidase/H2Û2
Les fibres selon l'invention peuvent être fabriquées en continue. Leur section peut être circulaire ou non, et la plus grande dimension de la section peut être comprise entre lOnm et lmm. Tout type de nanotubes est utilisable pour leur fabrication .
Le dépôt du biopolymère peut être effectué par immersion ou trempage dans une solution comprenant le biopolymère désiré (enzyme ou ADN ou ARN) , ou par électrodéposition, l' électrodéposition se faisant de manière connue par application d'un potentiel électrique à la solution.
Dans les cas où un polymère redox est utilisé pour accélérer le processus de conduction, ce polymère redox peut être dans la même solution que le biopolymère, le polymère redox est alors déposé en même temps que le polymère ou co-électrodéposé . A titre d'exemple les concentrations de polymère et biopolymères peuvent aller de 0,lmg/ml à 10 mg/ml et l'épaisseur du dépôt de biopolymère peut aller de quelque angstrôm à quelques micromètres .
Les concentrations de polymère sont choisies de manière à avoir un contrôle de l'épaisseur du dépôt et plus précisément de la quantité de biopolymère déposé. La réalisation d'électrodes à partir de telles fibres consiste à découper des tronçons de fibres, à la longueur désirée. On peut disposer ainsi de n'importe quelle longueur .
Dans la plus part des applications, et c'est le cas pour l'utilisation d'électrodes dans la réalisation de biopiles ou de biocapteurs, on choisira une longueur très courte, les longueurs desdites électrodes ne dépassent pas par exemple 5cm, 1 à 3cm de préférence. Il s'agit de microélectrodes de 1 à 30 micromètres de diamètre et de 1 à 3cm de longueur qui peuvent être implantées sous la peau ou dans tout organisme vivant.
Un dépôt sélectif peut être fait sur les fibres. Chaque fibre ne sera alors recouverte que sur des tronçons de longueur prédéterminée. La réalisation d'électrodes à partir de ces fibres consiste à découper des tronçons de fibre de manière à avoir le dépôt (biopolymère et éventuellement polymère redox) uniquement à une extrémité du tronçon. De telles électrodes peuvent être utilisées dans la réalisation de sondes neurobiologiques par exemple. Les fibres décrites dans la présente invention peuvent être utilisées sous formes de fils et rubans multifilamentaires, de mats, de structures tissées ou non tissées .

Claims

REVENDICATIONS
1. Fibres à conductivité électrique caractérisées en ce qu'elles sont constituées de nanotubes de carbone assemblés recouverts d'un dépôt comprenant au moins un biopolymère .
2. Fibres à conductivité électrique selon la revendication 1, caractérisées en ce que le biopolymère est choisi parmi les protéines naturelles ou de synthèse.
3. Fibres à conductivité électrique selon la revendication 2, caractérisées en ce que les protéines naturelles ou de synthèse, sont des enzymes.
4. Fibres à conductivité électrique selon la revendication 3, caractérisées en ce que le dépôt comprend en outre un ou plusieurs polymère (s) redox.
5. Fibres à conductivité électrique selon la revendication 1, caractérisées en ce que le biopolymère est choisi parmi les acides nucléiques par exemple l'ADN ou l'ARN.
6. Procédé de fabrication de fibres selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, caractérisé en ce qu' il comprend les étapes suivantes :
- réalisation de fibres constituées de nanotubes de carbone, - effectuer au moins un dépôt sur ces fibres comprenant au moins un biopolymère.
7. Procédé de fabrication de fibres selon la revendication 6, caractérisé en ce que la réalisation de fibres constituées de nanotubes de carbone comprend le filage de fibres obtenues par coagulation des nanotubes de carbone à partir d'une dispersion de nanotubes de carbones dans un solvant aqueux ou organique.
8. Procédé de fabrication de fibres selon la revendication 6, caractérisé en ce qu'il consiste à effectuer un dépôt sur les fibres comprenant en outre un ou plusieurs polymère (s) redox.
9. Procédé de fabrication de fibres selon la revendication 6, caractérisé en ce que le dépôt est effectué par trempage ou immersion des fibres dans une solution contenant au moins un biopolymère, ou par électrodéposition ou encore par déposition (badigeonnage ou pulvérisation) .
10. Procédé de fabrication de fibres selon les revendications 8 et 9, caractérisé en ce que le dépôt du ou des polymère (s) redox est effectué en même temps que le dépôt du ou des biopolymère (s) .
11. Procédé de fabrication de fibres selon la revendication 8, caractérisé en ce que le dépôt du ou des polymère (s) redox est effectué avant le dépôt du ou des biopolymère (s) .
12. Procédé de fabrication de fibres selon la revendication 6, caractérisé en ce que le dépôt est effectué sur des tronçons sélectionnés de fibres par déposition (badigeonnage ou pulvérisation) .
13. Procédé de fabrication de fibres selon la revendication 7, selon lequel la coagulation des nanotubes comporte l'utilisation d'un liant, caractérisé en ce qu' il comprend également une étape de retrait du liant avant la ou les étapes de dépôt.
14. Procédé de fabrication des fibres selon la revendication 13, caractérisé en ce que le retrait du liant consiste à chauffer les fibres à la température de fusion du liant.
15. Procédé de fabrication des fibres selon la revendication 13 ou 14, caractérisé en ce que le liant utilisé est de l'alcool polyvinylique (APV) et le chauffage des fibres est réalisé entre 3000C et 1100 0C et de préférence à 6000C sous atmosphère inerte.
16. Utilisation de fibres selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, sous forme de fils et rubans multifilamentaires, de mats, de structures tissées ou non tissées .
17. Electrodes, caractérisées en ce qu'elles sont réalisées en fibre de nanotubes de carbone, selon l'une quelconque des revendications 1 à 5 et 16.
18. Electrodes selon la revendication 17, caractérisées en ce qu'elles sont constituées d'un tronçon de fibre de longueur inférieure ou égale à 5, de préférence compris entre 1 et 3cm et dont le diamètre peut aller de 1 à 30 micromètres.
19. Electrodes selon la revendication 10 et 17, caractérisées en ce qu'elles sont constituées d'un tronçon de fibre dont une extrémité seulement comporte un dépôt .
20. Utilisation des électrodes telles que définies selon l'une des revendications 17 à 19, dans la réalisation de systèmes bioélectrochimiques .
21. Utilisation des électrodes telles que définies selon l'une des revendications 17 à 20 dans la réalisation de biopiles ou de biocapteurs.
22 Utilisation des électrodes telles que définies selon l'une des revendications 17 à 20, dans la réalisation de biopiles ou de biocapteurs à usage biomédicaux.
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