WO2009144358A2 - Levaduras vínicas recombinantes - Google Patents

Levaduras vínicas recombinantes Download PDF

Info

Publication number
WO2009144358A2
WO2009144358A2 PCT/ES2009/070193 ES2009070193W WO2009144358A2 WO 2009144358 A2 WO2009144358 A2 WO 2009144358A2 ES 2009070193 W ES2009070193 W ES 2009070193W WO 2009144358 A2 WO2009144358 A2 WO 2009144358A2
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
gene
strains
strain
wine
mannoproteins
Prior art date
Application number
PCT/ES2009/070193
Other languages
English (en)
French (fr)
Other versions
WO2009144358A3 (es
Inventor
Ramón GONZÁLEZ GARCÍA
Daniel GONZÁLEZ RAMOS
Original Assignee
Consejo Superior De Investigaciones Científicas
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Consejo Superior De Investigaciones Científicas filed Critical Consejo Superior De Investigaciones Científicas
Publication of WO2009144358A2 publication Critical patent/WO2009144358A2/es
Publication of WO2009144358A3 publication Critical patent/WO2009144358A3/es

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14—Fungi; Culture media therefor
    • C12N1/16—Yeasts; Culture media therefor
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12G—WINE; PREPARATION THEREOF; ALCOHOLIC BEVERAGES; PREPARATION OF ALCOHOLIC BEVERAGES NOT PROVIDED FOR IN SUBCLASSES C12C OR C12H
    • C12G1/00—Preparation of wine or sparkling wine
    • C12G1/02—Preparation of must from grapes; Must treatment and fermentation
    • C12G1/0203—Preparation of must from grapes; Must treatment and fermentation by microbiological or enzymatic treatment
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/10—Transferases (2.)
    • C12N9/1048—Glycosyltransferases (2.4)
    • C12N9/1051—Hexosyltransferases (2.4.1)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P21/00—Preparation of peptides or proteins
    • C12P21/005—Glycopeptides, glycoproteins
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Y—ENZYMES
    • C12Y204/00—Glycosyltransferases (2.4)
    • C12Y204/01—Hexosyltransferases (2.4.1)
    • C12Y204/01034—1,3-Beta-glucan synthase (2.4.1.34)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12G—WINE; PREPARATION THEREOF; ALCOHOLIC BEVERAGES; PREPARATION OF ALCOHOLIC BEVERAGES NOT PROVIDED FOR IN SUBCLASSES C12C OR C12H
    • C12G2200/00—Special features
    • C12G2200/11—Use of genetically modified microorganisms in the preparation of wine

Definitions

  • the present invention is within the field of molecular biology applied to food, genetic engineering, and more specifically in the field of oenology. Specifically, it refers to recombinant wine yeasts that stabilize the wine against protein bankruptcy and secrete a greater amount of mannoproteins than the unmodified strains, as well as their method of production. These strains also allow improving the quality of the wine, thanks to its contribution to the increase in the concentration of mannoproteins, without resorting to the addition of exogenous preparations, allowing to reduce the consumption of bentonite, with the consequent savings in product, as well as the reduction of Negative impact of bentonite on the sensory complexity of the wine and on the volumetric recovery of wine after treatment.
  • Protein bankruptcy is the occasional cloudiness of white and rosé wines that is produced by a flocculation (rest) of the natural proteins of the grape, due to high temperatures or storage time. This turbidity can be appreciated by consumers as an alteration (Waters, E., Dupin, I. and Stockdale, V. 2000. A review of current knowledge on polysaccharides that protect against protein haze in white wine. Aust. Grapegrower Winemaker, 438a : 13-16).
  • the origin of the proteins of the wine is multiple, since they can come from the same grape, from the yeasts by autolysis and from the clarification products or from the protein adjuvants. Therefore, the protein fraction of a wine will be conditioned among others by aspects such as the wine variety, the maturity level, the vinification system, the yeast strain, the contact time with the lees, the dose and the type of clarifying agent used, and in the case of sparkling wines, by the time of aging and by the type and dose of the adjuvant used.
  • yeasts which is one of the factors that control the amount of mannoproteins released during the oenological production, is a determining factor of the protein breakdown.
  • yeasts release cellular constituents, such as proteins or polysaccharides, which also contribute to the quality of the wine (Feuillat, M. 2003. Yeast macromolecules: Origin, Composition and Enological interest. Am J. Enol. Vitic. 54: 21 1 -213 ).
  • mannoproteins Other oenological properties of mannoproteins are the protection against tartaric instability, the retention of aroma compounds, the reduction of astringency, increased sweet sensation, and increased body and roundness in the mouth, especially appreciated in red wine.
  • mannoproteins stimulate the growth of lactic bacteria, and consequently the malolactic fermentation, and improve the quality from the foam of sparkling wines.
  • yeast cell wall Some specific proteins of the yeast cell wall have been specifically shown to be able to stabilize the wine against protein bankruptcy (Waters, EJ., Wallace, W., Tate, ME and Williams, PJ. 1993. Isolation and partial charachterization of a natural haze protective factor from wine. J. Agrie. Food Chem. 41: 724-730; Waters, EJ., Pellerin, P. and Brillouet, JM 1994. A Saccharomyces mannoprotein that proteets wine from protein haze. Carbohydr. Polym .23: 185-191.). Brown et al. (Brown et al. 2007.
  • the general strategy in genetic engineering to overexpress a certain protein is to clone the gene, or genes, that encode that protein in the organism of interest.
  • Said gene or protein of interest, comprised in a polynucleotide sequence is introduced into the host organism, generally by means of a gene expression system or vector, operably linked with at least one promoter that directs the transcription of said nucleotide sequence of interest.
  • a gene expression system or vector operably linked with at least one promoter that directs the transcription of said nucleotide sequence of interest.
  • sequences necessary or appropriate for the transcription and its adequate regulation in time and place for example, start and end signals, cut-off sites, polyadenylation signal, origin of replication, transcriptional activators
  • the supernatant of the strains that lack all copies of the corresponding genes is richer in mannoproteins than that of the control strains, since the beginning of the stationary phase.
  • the polysaccharides isolated from these supernatants allow to improve the protein stability of the finished wines, in accordance with the relative content of each of the mannoproteins.
  • a method for obtaining industrial recombinant yeast strains which increase the concentration of mannoproteins secreted to the medium, and which comprises deleting or inactivating in a background Genetic of industrial yeast strains genes related to the biogenesis of the cell wall or protein release.
  • the strains belong to the genus Saccharomyces, and more preferably, to the species S. cerevisiae.
  • the deleted genes there are preferably GPI7, FKS1 and GAS1, and even more preferably the KNR4 gene.
  • yeast in this report applies to various unicellular ascomycete fungi that reproduce by budding or division, and carry out the alcoholic fermentation of carbohydrates.
  • Saccharomycetales Order all organisms that can be classified within the Saccharomycetales Order, and especially all species that are within the Saccharomyces genus, are included within this term. It also includes Hanseniaspora species (mainly H. uvarum)
  • genetic background is understood the total genetic information possessed by the reproductive members of a population of organisms or species, or strain at a certain time.
  • KNR4 (YGR229c), also called SMH, encodes a regulatory protein and is also involved in the synthesis of ⁇ -1,3-glucan.
  • KNR4 is also defined by a nucleotide or polynucleotide sequence, which constitutes the coding sequence of the YLR342w protein, with access number in the NCBI NP_011745.1, and which would comprise various variants from: a) nucleic acid molecules that encode a polypeptide comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 31, b) nucleic acid molecules whose hybrid complementary chain with the polynucleotide sequence of a), c) nucleic acid molecules whose sequence differs from a) and / or b) due to the degeneracy of the genetic code, d) nucleic acid molecules that encode a polypeptide comprising the amino acid sequence with an identity of at least 80 %, 90%, 95%, 98% or 99% with SEQ ID NO: 31. in which the polypeptide encoded by said nucleic acids has the activity and structural characteristics of the YGR229c protein.
  • GPW (YJL062w), also called LAS21, is a gene that encodes an enzyme involved in GPI anchor synthesis.
  • the GPI is a structure that intervenes in the union of some proteins to the plasma membrane or to the cell wall.
  • GPW (YJL062w) is also defined by a nucleotide or polynucleotide sequence, which constitutes the coding sequence of the YJL062w protein, with access number in the NCBI
  • NP_012473.1 and which would comprise various variants from: a) nucleic acid molecules encoding a polypeptide comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 32, b) nucleic acid molecules whose hybrid complementary chain with
  • nucleic acid molecules that encode a polypeptide comprising the amino acid sequence with an identity of at least 80%, 90%, 95%, 98% or 99% with SEQ ID NO: 32. in which the polypeptide encoded by said nucleic acids has the activity and structural characteristics of the YJL062w protein .
  • GAS1 (YMR307w), also called GGP1 or CWH52, codes for a plasma membrane glycoprotein.
  • GASIp has ⁇ -1, 3- glucanosyltransferase activity and is involved in the elongation of the branches ⁇ -1, 3-glucan
  • GAS1 (YMR307w) is also defined by a nucleotide or polynucleotide sequence, which constitutes the coding sequence of the YMR307w protein, with access number in NCBI NP_014038.1, and which would comprise various variants from of: a) nucleic acid molecules encoding a polypeptide comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 33, b) nucleic acid molecules whose complementary hybrid chain with the polynucleotide sequence of a), c) nucleic acid molecules whose sequence differs from a) and / or b) due to the degeneracy of the genetic code, d) nucleic acid molecules that encode a polypeptide comprising the amino acid sequence with an identity of at least 80%, 90%, 95%, 98% or 99% with SEQ ID NO: 33. in which the polypeptide encoded by said nucleic acids has the activity and structural characteristics of the YMR307w protein.
  • FKS1 (YLR342w), also referred to as PBR1, GSC1, ETG 1, CWH53, or CND1, codes for a subunit of ⁇ -1, 3-glucanosintase.
  • FKS1 (YLR342w) is also defined by a nucleotide or polynucleotide sequence, which constitutes the coding sequence of the YLR342w protein, and which would comprise various variants from: a) nucleic acid molecules that encode a polypeptide comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 34, b) nucleic acid molecules whose complementary chain hybrid with the polynucleotide sequence of a), c) nucleic acid molecules whose sequence differs from a) and / or b) due to The degeneracy of the genetic code, d) nucleic acid molecules that encode a polypeptide comprising the amino acid sequence with an identity of at least 80%, 90%, 95%, 98% or 99% with the SEQ ID NO: 34.
  • the deletion methods involve several cloning steps, and comprise the construction of a deletion cassette containing an expression cassette for a marker gene flanked with base pair sequences corresponding to the promoter and terminator of the gene to be deleted. Subsequently, the deletion cassettes are amplified by PCR and are used to transform selected industrial yeast strains. Next, the transformants are selected based on said marker gene.
  • a “cassette” or “caste” is a coding region of a gene from a prokaryotic or eucahota organism flanked by the regulatory elements necessary for its expression in vivo or in vitro.
  • the expression cassettes can have very varied configurations, they must contain at least one promoter (promoter), a coding region (eukaryotic cDNA or prokaryotic gene) and a transcription terminator (terminator) or a polyadenylation site, as appropriate of a gene derived from a prokaryotic organism or a cDNA from a eukaryotic organism.
  • a sequence with regulatory function for the natural expression of the gene in the chosen system eg: an operator, an enhancer, the Shine and Dalgarno sequence for binding to the rRNA of E. coli, or the sequences of a signal peptide (if the protein is exported).
  • Methods of inactivating genes by homologous recombination are also known to those skilled in the art.
  • insertion cassettes generally derived from mobile elements such as retroviruses or transposons, that interrupt the reading frame of the gene of interest, and that are transmitted stably to the offspring.
  • deletion cassettes similarly to the examples of the present invention, the cassette could carry a marker, for example an antibiotic resistance gene, such as kanamycin, preceded by a promoter sequence for the expression of the gene in yeasts, and flanked by two restriction sites.
  • the cassette is coupled into a vector and introduced into the yeast cells.
  • the recombination between the homologous segments of the vector takes place, and the chromosomal copy of the target gene that wants to be inactivated, replacing the target gene with the gene that bears the antibiotic resistance marker, leaving the reading frame of the interrupted gene.
  • Other methods of inactivating genes in yeasts by insertion or deletion are known in the state of the art.
  • nucleotide sequences specifically complementary to a particular DNA or RNA sequence could form complexes and block the transcription or translation of the KNR4, GPI7, FKS1 and / or GAS1 genes, inactivating them.
  • interference RNA interference RNA
  • antisense polynucleotides or “antisense oligonucleotides” are meant ribonucleotide or deoxyribonucleotide chains that can inhibit KNR4, GPI7, FKS1 and / or GAS1 by one of these three mechanisms:
  • antisense oligonucleotides capable of inhibiting the activity of YGR229C, YJL062W, YMR307w and / or YMR307w 2 could easily be designed.
  • it could be a sequence of ribonucleotides or RNA that belongs to the so-called siRNA (small interfering).
  • the gene that produces the antisense sequence in the yeast could be cloned, so that all the offspring have the same gene or inactivated genes.
  • Another aspect of the invention constitutes the strains obtained by the method of the invention. These strains would have a genetic background in which genes related to a greater secretion of mannoproteins to the environment would be deleted or inactivated. Preferably, the strains would have deleted or inactivated all copies present in the genome of the KNR4, GPI7, FKS1, GAS1 genes, or any combination thereof. More preferably the strains would have deleted or inactivated the KN R4 gene. Therefore, a preferred embodiment of this aspect of the invention refers to a yeast strain characterized in that it does not have, or is inactivated, the gene that is selected from the list comprising KNR4, GPI7, FKS1, GAS1 or any of its combinations, in its genetic background.
  • Another more preferred embodiment refers to a yeast strain characterized in that it does not have the GPI7 gene, or is inactivated, in its genetic background. Another more preferred embodiment refers to a yeast strain characterized in that it does not have the FKS1 gene, or is inactivated, in its genetic background. Another more preferred embodiment refers to a yeast strain characterized in that it does not have the GAS1 gene, or is inactivated, in its genetic background. An even more preferred embodiment refers to a yeast strain characterized in that it does not have the KNR4 gene, or is inactivated, in its genetic background.
  • a strain of Saccharomyces cerevisiae yeast is provided, deposited on May 14, 2008 in the Spanish Type Culture Collection (CECT), with the number CECT 13012.
  • the organisms of the species Saccharomyces cerevisiae belong to the Superuk Eukaryota, (Metazoa / Fungi group), Fungi Kingdom, Dikarya Subreino, Phylum Ascomycota, Saccharomycotina Subphylum, Saccharomycetes Class, Saccharomycetales Order, Saccharomycetaceae Family and Saccharomyces Genus.
  • the strain of Saccharomyces cerevisiae of the invention (CECT 13012), which has been obtained by the method of the invention, is capable of secreting a large amount of mannoproteins in all the culture conditions tested. Said mannoproteins stabilize the resulting wine against protein bankruptcy, so that the amount of bentonite that is necessary to add to these wines is up to 25% lower, with which the sensory and organoleptic qualities of the resulting wine are increased.
  • Another aspect refers to the use of the Saccharomyces cerevisiae strain of the invention for alcoholic fermentation. More preferably, the strain of the invention is used for the vinification of white and rosé wines, as well as red wines or sparkling wines.
  • Alcoholic fermentation is a biological fermentation process in the absence of air (oxygen), caused by the activity of some microorganisms that process carbohydrates (as a rule, sugars: such as glucose, fructose, sucrose , starch, etc.) to obtain as final products: an alcohol in the form of ethanol, carbon dioxide in the form of gas and some ATP molecules that the microorganisms themselves consume in their anaerobic energy cellular metabolism.
  • This ethanol production is characteristic of the elaboration of some alcoholic beverages, such as wine, beer, cider, cava, etc.
  • Figure 1 (Fig. 1). Concentration of polysaccharides released in GCY medium by strains deleted in the KNR4, FKS1, GPI7 or GAS1 genes. A- Deleted strains in KNR4. B- Deleted strains in GPI7. C- Deleted strains in FKS1. D- Deleted strains in GAS1.
  • FIG. 2 Kinetics of CO2 production by wild (T73-4 and EC1 1 18) or recombinant strains (EKD-13 and TKD-123) in Sauvignon Blanc musts from 2006 and 2007 harvests.
  • A- Harvest 2006 strains T73-4 and TKD -123.
  • Figure 3 Comparison of mannoproteins present in fermented Sauvignon Blanc wines with EC1 1 18 and EKD-13. A: 2007 wine; B: 2006 wine; 1: EC1 1 18; 2: EKD-13.
  • FIG. 4 Induced turbidity of Sauvignon blanc wines fermented with the different wild or recombinant strains obtained on musts from 2006 and 2007 harvests.
  • A- Harvest 2006 strains T73-4, TKD-123 and TGD-13.
  • B- Harvest 2006 strains EC11 18, EKD- 13 and EFD-31.
  • FIG. 5 Bentonite stabilization of Sauvignon Blanc wines obtained with EC1 1 18 and the recombinant strains EKD-13, EGD-13 and EFD-13.
  • Figure 6 Manoproteins remaining after each treatment with bentonite of wines obtained with EC1 118 or EKD-13.
  • the phenotype of greater release of mannoproteins linked to the deletion of the KNR4, GPI7, FKS1 and GAS1 genes is recessive, so it was necessary to delete all copies thereof in the two selected genetic backgrounds.
  • Each copy was deleted using a different selection marker, ARO4-OFP and KanMX4 were used, and in the case of one of the strains, URA3 was also used due to the presence of a third copy of the KNR4 gene.
  • Deletion cassettes were constructed flanking the marker gene with sequences of about 500 base pairs corresponding to the promoter and terminator of the gene to be deleted.
  • ARO4-OFP marker was cloned in the bacterial plasmid pUC19.
  • ARO4-OFP was isolated from plasmid pEA2 (Cebollero, E. and González, R. 2004. Comparison of two alternative dominant selectable marker for wine yeast transformation. Appl. Environ. Microbio !. 70: 7018-7023) by digestion with restriction enzymes Sacl and BamHI and was inserted by ligation in pUC19 digested with the same enzymes. The resulting plasmid was called pUCARO.
  • KNR4 The promoter and terminator region of KNR4 were amplified by PCR with primer pairs PKARO-f / PKARO-r and TKARO-f / TKARO-r respectively (table 1). These two inserts were sequentially cloned in pUCARO by the "first extension" technique (Geiser, M., R. Cebe, D. Drewello, and R. Schmitz. 2001. Integration of
  • the URA3 marker gene was amplified by PCR with the pair of primers RURA-f / RURA-r (table 1) using genomic DNA of strain EC1 1 18 as a template and cloned into pDKNR4-1 by the "first extension" technique replacing the ARO4-OFP gene.
  • the resulting plasmid was named pDKNR4-2.
  • KanMX4 marker gene was amplified by PCR with the pair of primers RKAN3-f / RKAN-r (table 1) using plasmid plTGPCR3 as a template (Tabera, L, Mu ⁇ oz, R. and González, R. 2006. Deletion of BCY1 from the Saccharomyces cerevisiae genome is semidominant and induces autolytic phenotypes suitable for improvement of sparkling wines.
  • the promoter and terminator region of GPW were amplified by PCR with primer pairs PGARO-f / PGARO-r and TGARO-f /
  • TGARO-r respectively (table 1). They were cloned sequentially in pUCARO to give rise to plasmid pDGPI7-1.
  • FKS1 The promoter and terminator region of FKS1 were amplified by PCR with primer pairs PFKS-f / PFKS-r and TFKS-f / TFKS-r respectively (table 1). They were cloned sequentially in pUCARO to give rise to plasmid pDFKSI -1.
  • the promoter and terminator region of FKS1 were amplified by PCR with primer pairs PGAS-f / PGAS-r and TGAS-f / TGAS-r respectively (table 1). They were cloned sequentially in pUCARO to give rise to plasmid pDGASI -1.
  • the different deletion cassettes were amplified by PCR as described in Table 2.
  • cells were diluted 10 times in YPD and incubated for 17 hours at 30 Q C and 200 rpm to allow the expression of the resistance before applying the selective pressure .
  • Transformants were selected after 5 days of incubation at 30 Q C in SD plates containing 2 g / l PFP (glucose 20 g / l, Yeast Nitrogen Base 6.7 g / l, Agar 20 g / l, Phenylalanine 0.9 g / l , Parafluorophenylalanine 2 g / l).
  • Cassettes for the selectable marker KanMX4 the cells were diluted 2 times in YPD and incubated at 30 Q C and 200 rpm to allow the expression of the resistance allele.
  • the transformants were selected after two days of incubation at 30 Q C in YPD plates with 40 ⁇ g / ml of G418 (glucose 20 g / l, peptone 20 g / l, yeast extract 10 g / l, agar 20 g / l ).
  • the phenotypes of the transformants were confirmed by plate replication on the same selection means used for the transformation.
  • KNR4 The DKNR4-1 cassette integration was analyzed by ABI Phsm 7500 Fast Real-Time PCR (Applied Biosystems) real-time PCR.
  • the primers used for this were PromAR04Q and TermKNR4Q (table 3).
  • the correct insertion of the cassette was further confirmed by the amplification by PCR of the entire locus using primers CDKNR-f and CDKNR-r (table 3), and verification of the size of the amplicon by agarose gel electrophoresis.
  • GPI7 In all cases, the GPI7 locus was amplified with primers CDGPI-f and CDGPI-r (table 3), and amplicon sizes were analyzed by agarose gel electrophoresis.
  • FKS1 The FKS1 locus was amplified with primers CDFKS-f and CDFKS-r (table 3), and amplicon sizes were analyzed by agarose gel electrophoresis.
  • GAS1 The GAS1 locus was amplified with primers CDGAS-f and CDGAS-r (table 3), and amplicon sizes were analyzed by agarose gel electrophoresis.
  • Table 2 PCR amplification of deletion cassettes.
  • GCY medium was inoculated with each strain, at an OD 600 of 0.1 from a preculture in the same medium, and the growth curve was monitored at 30 Q C and 150 rpm, until stationary phase.
  • the tests were carried out with the parental strains, EC1 1 18 and T73-4, and the different strains derived therefrom, which appear in Table 4. Deletion resulted in slower growth in some of the strains, especially in those that carried all copies of the corresponding deleted gene. A certain effect of the genetic modification on the stationary phase OD was also observed.
  • the amount of polysaccharides released during growth in GCY medium (2% glucose, 2% Bacto Casaminoacids, 0.67% Difco Yeast Nitrogen Base) was measured. For this, the supernatant was recovered by centrifugation and the macromolecules present therein were separated by molecular exclusion in Econo-Pac (Bio-Rad) columns. The concentration of mannoproteins and Polysaccharides in the eluted fraction was determined against a commercial morning calibration curve using the sulfuric phenol method (Segarra, I., Lao, C, López-Tamames, E. and de la Torre-Boronat, MC 1995. Spectrophotometric methods for the analysis of polysaccharide levéis in winemaking products. Am J. EnI. Vitic. 46: 564-570). Five replicates of each determination were made and the results of the different strains were compared by ANOVA.
  • mannoproteins were also carried out by the method of Concanavalin A conjugated with peroxidase. For this, 10 ⁇ l of the supernatant from each culture was loaded on SDS-PAGE gels (Laemmli, U. K. 1970. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. 227: 680-685). The material was transferred to nitrocellulose membranes using the Bio-Rad Mini Protean system. Detection was carried out by the method described by KNs et al. (KNs, FM, Ram, AFJ, Montijn, RC, Kapteyn, J. C, Caro, LH. P., Vossen, JH, Van Berkel, MAA, Brekelmans, SSC and Van den Ende, H. 1998. Posttranslational modifications of secretory proteins, p 223-238, In Methods in Microbiology; Academic Press: New York).
  • Figure 3 shows the results of the analysis by the method of Concanavalin A conjugated with peroxidase, of the culture supernatants obtained at the end of the fermentation, of the fermentations of natural musts described above. Greater release is observed in the case of strain EKD-13.

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Método de obtención de cepas que secretan una mayor concentración de manoproteínas al medio, cepa de la levadura Saccharomyces cerevisiae depositada en la Colección Española de Cultivos Tipo (CECT), con el número CECT 13012, y usos de dichas cepas.

Description

LEVADURAS VÍNICAS RECOMBINANTES
La presente invención se encuentra dentro del campo de Ia biología molecular aplicada a Ia alimentación, de Ia ingeniería genética, y más específicamente en el campo de Ia enología. En concreto se refiere a levaduras vínicas recombinantes que estabilizan el vino frente a Ia quiebra proteica y secretan mayor cantidad de manoproteínas que las cepas no modificadas, así como su modo de obtención. Estas cepas permiten además mejorar Ia calidad del vino, gracias a su contribución al aumento en Ia concentración de manoproteínas, sin recurrir a Ia adición de preparados exógenos, permitiendo reducir el consumo de bentonita, con el consiguiente ahorro en producto, así como Ia reducción del impacto negativo de Ia bentonita en Ia complejidad sensorial del vino y en Ia recuperación volumétrica de vino tras el tratamiento.
ESTADO DE LA TÉCNICA ANTERIOR
La industria del vino tiene una gran importancia económica y social, ya no exclusivamente en las regiones de clima mediterráneo, sino que el sector vitivinícola ha alcanzado importancia mundial. Por tanto, el control de los procesos que tienen lugar en Ia viticultura, es fundamental para el desarrollo y expansión de esta industria.
Uno de los problemas que suele afectar a los vinos blancos y rosados, en Ia fase de fermentación, es Ia quiebra proteica. Se conoce como quiebra proteica el enturbiamiento ocasional de los vinos blancos y rosados que se produce por una floculación (reposo) de las proteínas naturales de Ia uva, debido a las altas temperaturas o el tiempo de almacenamiento. Esta turbidez puede ser apreciada por los consumidores como una alteración (Waters, E., Dupin, I. and Stockdale, V. 2000. A review of current knowledge on polysaccharides that protect against protein haze in white wine. Aust. Grapegrower Winemaker, 438a: 13-16).
Actualmente, el único sistema realmente eficaz para evitar Ia quiebra proteica es Ia eliminación de las proteínas inestables, Io que únicamente se puede conseguir con el tratamiento con bentonita o mediante ultrafiltración. No obstante, la clarificación con bentonita es un proceso que afecta Ia calidad sensorial del vino. Al eliminar gran parte de las proteínas, el vino pierde estructura y untuosidad. Además Ia bentonita afecta seriamente el aroma del vino, ya que absorbe directamente aromas, o indirectamente ya que las proteínas son fijadores de aromas y al ser eliminadas del vino arrastran con ellas parte de estos aromas. Además, las proteínas son moléculas tensoactivas y se ha comprobado que son factores muy positivos para Ia espumabilidad y Ia persistencia de Ia espuma de los vinos espumosos. La alternativa de Ia ultrafiltración también afecta significativamente el aroma y Ia untuosidad del vino, además de que su implantación requiere llevar a cabo una inversión cuantiosa por parte de las bodegas.
El origen de las proteínas del vino es múltiple, ya que pueden proceder de Ia misma uva, de las levaduras por autolisis y de los productos de clarificación o de los coadyuvantes de tiraje de naturaleza proteica. Por ello, Ia fracción proteica de un vino estará condicionada entre otros por aspectos tales como Ia variedad vinífera, el grado de madurez, el sistema de vinificación, Ia cepa de levadura, el tiempo de contacto con las lías, Ia dosis y el tipo de clarificante empleado, y el en el caso de los vinos espumosos, por el tiempo de crianza y por el tipo y Ia dosis del coadyuvante de tiraje empleado.
Las proteínas fundamentalmente implicadas en Ia quiebra proteica son las procedentes de Ia uva, mientras que parece que las manoproteínas liberadas por las levaduras en Ia vinificación ejercen un efecto estabilizador frente a Ia misma, ya que actúan como coloides protectores e incrementan Ia estabilidad del vino. Por tanto, Ia cepa de levadura, que es uno de los factores que controlan Ia cantidad de manoproteínas liberadas durante Ia producción enológica, es un factor determinante de Ia quiebra proteica. Además las levaduras liberan constituyentes celulares, como proteínas o polisacáridos, que también contribuyen a Ia calidad del vino (Feuillat, M. 2003. Yeast macromolecules: Origin, Composition and Enological interest. Am J. Enol. Vitic. 54: 21 1 -213). Otras propiedades enológicas de las manoproteínas son Ia protección frente a Ia inestabilidad tartárica, Ia retención de compuestos del aroma, Ia reducción de Ia astringencia, aumento de Ia sensación dulce, y aumento del cuerpo y redondez en boca, especialmente apreciados en vino tinto. Además, las manoproteínas estimulan el crecimiento de bacterias lácticas, y consecuentemente Ia fermentación maloláctica, y mejoran Ia calidad de la espuma de vinos espumosos.
Algunas proteínas concretas de Ia pared celular de Ia levadura se ha demostrado específicamente que son capaces de estabilizar el vino frente a quiebra proteica (Waters, EJ. , Wallace, W., Tate, M. E. and Williams, PJ. 1993. Isolation and partial charachterization of a natural haze protective factor from wine. J. Agrie. Food Chem. 41 :724-730; Waters, EJ., Pellerin, P. and Brillouet, J. M. 1994. A Saccharomyces mannoprotein that proteets wine from protein haze. Carbohydr. Polym. 23:185-191.). Brown y colaboradores (Brown et al. 2007. Reducing haziness in white wine by overexpression of Saccharomyces cerevisiae genes YOL155c and YDR055w. Appl. Microbio!. Biotechnol. 73:1363-1376) clonaron y sobreexpresaron en cepas de laboratorio de S. cerevisiae los genes YOL155c and YDR055w, que codifican respectivamente las proteínas Hpf 1 p y Hpf2p, y demostraron que Ia proteína Hpf2 así producida reducía Ia turbidez hasta un 40% cuando se añadía al vino. Sin embargo no existe ninguna cepa vínica recombinante que secrete más manoproteínas durante Ia fermentación alcohólica.
La estrategia general en ingeniería genética para sobreexpresar una determinada proteína es clonar el gen, o los genes, que codifican dicha proteína en el organismo de interés. Dicho gen o proteína de interés, comprendido en una secuencia polinucleotídica, es introducido en el organismo hospedador, generalmente mediante un sistema o vector de expresión génica, operativamente enlazada con, al menos, un promotor que dirija Ia transcripción de dicha secuencia de nucleótidos de interés, y con otras secuencias necesarias o apropiadas para Ia transcripción y su regulación adecuada en tiempo y lugar, por ejemplo, señales de inicio y terminación, sitios de corte, señal de poliadenilación, origen de replicación, activadores transcripcionales
(enhancers), silenciadores transcripcionales (silencers), etc.. Existen numerosos ejemplos, como Ia solicitud de patente WO/2003/04037, o Ia patente estadounidense US 6,274,31 1.
En resultados previos con cepas de laboratorio, se ha demostrado que, no Ia inserción, sino Ia deleción de los genes FKS1, GPI7, GAS1 ó KNR4 (aunque en este contexto no es muy importante sería más correcto poner en itálica los nombres de los genes, pero no de las proteínas, a Io largo de todo el texto, los he señalado en azul), daba lugar a un incremento en Ia liberación de manoproteínas en medios de cultivo (González-Ramos, D. and González, R. 2006. Genetic determinants of the reléase of mannoproteins of enological interest by Saccharomyces cerevisiae. J. Agrie. Food Chem. 54:941 1 -9416). Este fenotipo es recesivo y depende del fondo genético. El sobrenadante de las cepas que carecen de todas las copias de los genes correspondientes es más rico en manoproteínas que el de las cepas control, ya desde el inicio de Ia fase estacionaria. Cuando se añaden exógenamente a un vino, los polisacáridos aislados de estos sobrenadantes permiten mejorar Ia estabilidad proteica de los vinos acabados, de acuerdo con el contenido relativo en manoproteínas de cada uno.
DESCRIPCIÓN DE LA INVENCIÓN
Existe Ia necesidad de obtener vinos de elevada estabilidad frente a Ia quiebra proteica y que conserve las cualidades organolépticas óptimas, no mermando Ia calidad de los mismos mediante Ia adición en elevadas cantidades de otros componentes, como Ia bentonita. Las manoproteínas liberadas por las levaduras en Ia vinificación actúan como coloides protectores e incrementan Ia estabilidad del vino, ejerciendo un efecto estabilizador frente a Ia quiebra proteica, además de mejorar algunas cualidades organolépticas del vino resultante.
A pesar de los resultados previos obtenidos en cepas de laboratorio, Ia mejora genética de cepas industriales implica Ia superación de dos problemas técnicos:
1 - El efecto impredecible del fondo genético de las cepas industriales sobre el fenotipo de los mutantes, ya que los estudios de laboratorio habían revelado una importante influencia del fondo genético.
2- En cepas de laboratorio, el incremento en Ia secreción de manoproteínas siempre ha estado aparejado a problemas de crecimiento, de modo que cabría esperar dificultades para Ia fermentación del mosto de uva, al realizar Ia modificación de cepas industriales. Los autores de Ia presente invención, mediante ingeniería genética, han desarrollado un método que permite obtener cepas que incrementan Ia secreción de manoproteínas. Además, han obtenido una cepa, que tiene delecionado el gen KNR4, y que incrementa Ia secreción de dichas manoproteínas sin disminuir Ia tasa de crecimiento, manteniendo los niveles de fermentación adecuados. Estas manoproteínas de Ia pared celular aportan características beneficiosas al vino resultante, como estabilidad proteica y tartárica, estabilidad en el aroma y color, o astringencia.
De acuerdo con un aspecto de Ia invención, se proporciona un método para obtener cepas de levadura recombinantes industriales (de aquí en adelante método de Ia invención), que aumentan Ia concentración de manoproteínas secretadas al medio, y que comprende delecionar o inactivar en un fondo genético de cepas de levadura industriales genes relacionados con Ia biogénesis de Ia pared celular o Ia liberación de proteínas. Preferiblemente, las cepas pertenecen al género Saccharomyces, y más preferiblemente, a Ia especie S. cerevisiae. Entre los genes delecionados, preferiblemente se encuentran GPI7, FKS1 y GAS1, y aún más preferiblemente el gen KNR4.
El término "levadura" en esta memoria, se aplica a diversos hongos ascomicetos unicelulares que se reproducen por gemación o división, y llevan a cabo Ia fermentación alcohólica de los hidratos de carbono. Así, se encuentran incluidos dentro de este término todos los organismos que pueden ser clasificados dentro del Orden Saccharomycetales, y especialmente todas las especies que se encuentran dentro del género Saccharomyces. También incluye las especies de Hanseniaspora (principalmente H. uvarum)
Por "fondo genético" se entiende Ia información genética total que poseen los miembros reproductores de una población de organismos o especie, o cepa en cierto momento.
KNR4 (YGR229c), también denominado SMH , codifica una proteína reguladora y está también involucrado en Ia síntesis de β-1 ,3-glucano.
En el contexto de Ia presente invención, KNR4 (YGR229c) se define también por una secuencia de nucleótidos o polinucleótido, que constituye Ia secuencia codificante de Ia proteína YLR342w, con número de acceso en el NCBI NP_011745.1 , y que comprendería diversas variantes procedentes de: a) moléculas de ácido nucleico que codifican un polipéptido que comprende Ia secuencia aminoacídica de Ia SEQ ID NO: 31 , b) moléculas de ácido nucleico cuya cadena complementaria híbrida con Ia secuencia polinucleotídica de a), c) moléculas de ácido nucleico cuya secuencia difiere de a) y/o b) debido a Ia degeneración del código genético, d) moléculas de ácido nucleico que codifican un polipétptido que comprende Ia secuencia aminoacídica con una identidad de al menos un 80%, un 90%, un 95%, un 98% o un 99% con Ia SEQ ID NO: 31. en las que el polipéptido codificado por dichos ácidos nucleicos posee Ia actividad y las características estructurales de Ia proteína YGR229c.
GPW (YJL062w), también denominado LAS21 , es un gen que codifica una enzima involucrada en las síntesis del anclaje GPI. El GPI es una estructura que interviene en Ia unión de algunas proteínas a Ia membrana plasmática o a Ia pared celular.
En el contexto de Ia presente invención, GPW (YJL062w) se define también por una secuencia de nucleótidos o polinucleótido, que constituye Ia secuencia codificante de Ia proteína YJL062w, con número de acceso en el NCBI
NP_012473.1 , y que comprendería diversas variantes procedentes de: a) moléculas de ácido nucleico que codifican un polipéptido que comprende Ia secuencia aminoacídica de Ia SEQ ID NO: 32, b) moléculas de ácido nucleico cuya cadena complementaria híbrida con
Ia secuencia polinucleotídica de a), c) moléculas de ácido nucleico cuya secuencia difiere de a) y/o b) debido a Ia degeneración del código genético, d) moléculas de ácido nucleico que codifican un polipétptido que comprende Ia secuencia aminoacídica con una identidad de al menos un 80%, un 90%, un 95%, un 98% o un 99% con Ia SEQ ID NO: 32. en las que el polipéptido codificado por dichos ácidos nucleicos posee Ia actividad y las características estructurales de Ia proteína YJL062w.
GAS1 (YMR307w), también denominado GGP1 ó CWH52, codifica para una glicoproteína de Ia membrana plasmática. GASIp posee actividad β-1 ,3- glucanosiltransferasa y está involucrada en Ia elongación de las ramificaciones β-1 ,3-glucano
En el contexto de Ia presente invención, GAS1 (YMR307w) se define también por una secuencia de nucleótidos o polinucleótido, que constituye Ia secuencia codificante de Ia proteína YMR307w, con número de acceso en el NCBI NP_014038.1 , y que comprendería diversas variantes procedentes de: a) moléculas de ácido nucleico que codifican un polipéptido que comprende Ia secuencia aminoacídica de Ia SEQ ID NO: 33, b) moléculas de ácido nucleico cuya cadena complementaria híbrida con Ia secuencia polinucleotídica de a), c) moléculas de ácido nucleico cuya secuencia difiere de a) y/o b) debido a Ia degeneración del código genético, d) moléculas de ácido nucleico que codifican un polipétptido que comprende Ia secuencia aminoacídica con una identidad de al menos un 80%, un 90%, un 95%, un 98% o un 99% con Ia SEQ ID NO: 33. en las que el polipéptido codificado por dichos ácidos nucleicos posee Ia actividad y las características estructurales de Ia proteína YMR307w.
FKS1 (YLR342w), también denominado como PBR1 , GSC1 , ETG 1 , CWH53, o CND1 , codifica para una subunidad de Ia β-1 ,3-glucanosintasa.
En el contexto de Ia presente invención, FKS1 (YLR342w) se define también por una secuencia de nucleótidos o polinucleótido, que constituye Ia secuencia codificante de Ia proteína YLR342w, y que comprendería diversas variantes procedentes de: a) moléculas de ácido nucleico que codifican un polipéptido que comprende Ia secuencia aminoacídica de Ia SEQ ID NO: 34, b) moléculas de ácido nucleico cuya cadena complementaria híbrida con Ia secuencia polinucleotídica de a), c) moléculas de ácido nucleico cuya secuencia difiere de a) y/o b) debido a Ia degeneración del código genético, d) moléculas de ácido nucleico que codifican un polipétptido que comprende Ia secuencia aminoacídica con una identidad de al menos un 80%, un 90%, un 95%, un 98% o un 99% con Ia SEQ ID NO: 34. en las que el polipéptido codificado por dichos ácidos nucleicos posee Ia actividad y las características estructurales de Ia proteína YLR342w. Generalmente, los métodos de deleción implican varios pasos de clonación, y comprenden Ia construcción de un cassette de deleción que contiene un cassette de expresión para un gen marcador flanqueado con secuencias de pares de bases correspondientes al promotor y terminador del gen a delecionar. Posteriormente, los casetes de deleción se amplifican por PCR y se utilizan para transformar las cepas de levaduras industriales seleccionadas. A continuación, los transformantes se seleccionan en función de dicho gen marcador. En el caso de los genes KNR4, GPI7, FKS1 y GAS1 el fenotipo de mayor liberación de manoproteínas ligado a los mismos es recesivo, por Io que es necesario delecionar todas las copias de los mismos en los dos fondos genéticos que se seleccionen, utilizando diversos cassettes de deleción con diferentes genes marcadores.
Un "cassette" o "cásete" es una región codificante de un gen procedente de un organismo procariota o eucahota flanqueada por los elementos reguladores necesarios para su expresión in vivo o in vitro. Aunque los casetes de expresión pueden tener configuraciones muy variadas, deben contener por Io menos un promotor (promoter), una región codificante (ADNc eucariota o gen procariota) y un terminador de Ia transcripción (terminator) o un sitio de poliadenilación, según se trate de un gen derivado de un organismo procariota o de un ADNc procedente de un organismo eucariota. A esta configuración básica se Ie añade, si fuera necesario, una secuencia con función reguladora para Ia expresión natural del gen en el sistema elegido, p.ej.: un operador, un potenciador, Ia secuencia de Shine y Dalgarno para Ia unión al ARNr de E. coli, o las secuencias de un péptido señal (si Ia proteína se exporta).
También son conocidos por los expertos en Ia materia los procedimientos de inactivación de genes mediante recombinación homologa. Por ejemplo, pero sin limitarse, mediante el empleo de cassettes de inserción, generalmente derivados de elementos móviles como retrovirus o transposones, que interrumpan el marco de lectura del gen de interés, y que se transmitan de forma estable a Ia descendencia. También, mediante el empleo de cassettes de deleción. Por ejemplo, de manera similar los ejemplos de Ia presente invención, el cassette podría llevar un marcador, por ejemplo un gen de resistencia a antibióticos, como Ia kanamicina, precedido por una secuencia promotora para Ia expresión del gen en levaduras, y flanqueado por dos sitios de restricción. Se añaden dos segmentos de ADN en las terminaciones del cassette, segmentos cuya secuencia es idéntica (homólogos) a Ia parte inicial y a Ia parte final del gen que se quiere inactivar. Se acopla el cassette en un vector y se introduce en las células de levadura. Tiene lugar Ia recombinación entre los segmentos homólogos del vector, y Ia copia cromosomal del gen diana que quiere inactivarse, remplazando el gen diana por el gen que lleva el marcador de resistencia a antibióticos, quedando el marco de lectura del gen interrumpido. Otros métodos de inactivación de genes en levaduras mediante inserción o deleción son conocidos en el estado de Ia técnica.
Recientemente, con el desarrollo de Ia tecnología antisentido, secuencias de nucleótidos específicamente complementarios a una determinada secuencia de ADN o ARN, podrían formar complejos y bloquear Ia transcripción o traducción de los genes KNR4, GPI7, FKS1 y/o GAS1, inactivándolos.
Así, con el progreso del silenciamiento génico post-transcripcional, y en particular del ARN de interferencia (RNA interferente o RNAi), se han desarrollado herramientas que permiten Ia inhibición específica de Ia expresión de un gen. La inhibición de Ia expresión de las proteínas YGR229C, YJL062W, YMR307w y/o YMR307w constituiría por ende Ia inhibición de su actividad biológica.
Por "polinucleótidos antisentido" u "oligonucleótidos antisentido" se entienden cadenas de ribonucleótidos o desoxirribonucleóitidos que pueden inhibir KNR4, GPI7, FKS1 y/o GAS1 por uno de estos tres mecanismos:
1 - Interfiriendo Ia transcripción, al hibridar en el gen estructural o en una región regulatoria del gen que codifica para YGR229C, YJL062W, YMR307w y/o YMR307w. Puesto que Ia transcripción o expresión es bloqueada de manera efectiva por Ia hibridación del oligonucleótido antisentido con el ADN, disminuye Ia producción de YGR229C, YJL062W, YMR307w y/o YMR307w.
2- La unión del oligonucleótido antisentido en el citoplasma con el mRNA, interfiriendo con Ia formación de Ia construcción de traducción propiamente dicha, inhibiendo Ia traducción de mRNA a Ia proteína. 3- La formación de un mRNA - antisentido dúplex que permite una rápida degradación del mRNA dúplex por ARNasas (como ARNasa H). Esto da lugar a una menor producción de YGR229C, YJL062W, YMR307w y/o YMR307w. Conociendo la secuencia de los genes KNR4, GP 17, FKS1 y/o GAS1, oligonucleótidos antisentido capaces de inhibir Ia actividad de YGR229C, YJL062W, YMR307w y/o YMR307w 2 podrían ser fácilmente dise. Por ejemplo, y sin limitarnos, podría ser una secuencia de ribonucleótidos o ARN que pertenece al denominado siRNA (small interfering).
Para que Ia inhibición sea estable y se transmita a Ia descendencia, se podría clonar el gen que produce Ia secuencia antisentido en Ia levadura, de manera que todos los descendientes tengan el mismo gen o genes inactivados.
Otro aspecto de Ia invención Io constituyen las cepas obtenidas por el método de Ia invención. Dichas cepas tendrían un fondo genético en el que estarían delecionados o inactivados genes relacionados con una mayor secreción de manoproteínas al medio. Preferiblemente, las cepas tendrían delecionados o inactivados todas las copias presentes en el genoma de los genes KNR4, GPI7, FKS1, GAS1, o cualquiera de sus combinaciones. Más preferiblemente las cepas tendrían delecionado o inacticvado el gen KN R4. Por tanto, una realización preferida de este aspecto de Ia invención se refiere a una cepa de levadura caracterizada porque no presenta, o se encuentra inactivado, el gen que se selecciona de Ia lista que comprende KNR4, GPI7, FKS1, GAS1 o cualquiera de sus combinaciones, en su fondo genético. Otra realización más preferida se refiere a una cepa de levadura caracterizada porque no presentan el gen GPI7, o se encuentra inactivado, en su fondo genético. Otra realización más preferida se refiere a una cepa de levadura caracterizada porque no presentan el gen FKS1, o se encuentra inactivado, en su fondo genético. Otra realización más preferida se refiere a una cepa de levadura caracterizada porque no presentan el gen GAS1, o se encuentra inactivado, en su fondo genético. Una realización aún más preferida se refiere a una cepa de levadura caracterizada porque no presentan el gen KNR4, o se encuentra inactivado, en su fondo genético.
En otro aspecto de Ia invención se proporciona una cepa de Ia levadura Saccharomyces cerevisiae, depositada el 14 de mayo de 2008 en Ia Colección Española de Cultivos Tipo (CECT), con el número CECT 13012.
Los organismos de Ia especie Saccharomyces cerevisiae pertenecen al Superreino Eukaryota, (grupo Metazoa/Fungi), Reino Fungí, Subreino Dikarya, Phylum Ascomycota, Subphylum Saccharomycotina, Clase Saccharomycetes, Orden Saccharomycetales, Familia Saccharomycetaceae y Género Saccharomyces.
La cepa de Saccharomyces cerevisiae de Ia invención (CECT 13012), que se ha obtenido mediante el método de Ia invención, es capaz de secretar una gran cantidad de manoproteínas en todas las condiciones de cultivo ensayadas. Dichas manoproteínas estabilizan el vino resultante frente a Ia quiebra proteica, por Io que Ia cantidad de bentonita que es necesario añadir a estos vinos es hasta un 25% menor, con Io que se incrementan las cualidades sensoriales y organolépticas del vino resultante.
Otro aspecto se refiere al uso de Ia cepa de Saccharomyces cerevisiae de Ia invención para Ia fermentación alcohólica. Más preferiblemente, Ia cepa de Ia invención se usa para Ia vinificación de vinos blancos y rosados, así como vinos tintos o vinos espumosos.
La fermentación alcohólica es un proceso biológico de fermentación en plena ausencia de aire (oxígeno), originado por Ia actividad de algunos microorganismos que procesan los hidratos de carbono (por regla general azúcares: como pueden ser por ejemplo Ia glucosa, Ia fructosa, Ia sacarosa, el almidón, etc.) para obtener como productos finales: un alcohol en forma de etanol, dióxido de carbono en forma de gas y unas moléculas de ATP que consumen los propios microorganismos en su metabolismo celular energético anaeróbico. Esta producción de etanol es característica de Ia elaboración de algunas bebidas alcohólicas, tales como el vino, Ia cerveza, Ia sidra, el cava, etc
Por "vinificación" se entiende Ia fermentación del mosto de Ia uva, y Ia consecuente transformación del zumo de ésta en vino.
A Io largo de Ia descripción y las reivindicaciones Ia palabra "comprende" y sus variantes no pretenden excluir otras características técnicas, aditivos, componentes o pasos. Para los expertos en Ia materia, otros objetos, ventajas y características de Ia invención se desprenderán en parte de Ia descripción y en parte de Ia práctica de Ia invención. Los siguientes ejemplos y dibujos se proporcionan a modo de ilustración, y no se pretende que sean limitativos de Ia presente invención.
BREVE DESCRIPCIÓN DE LAS FIGURAS
Figura 1 (Fig. 1). Concentración de polisacáridos liberados en medio GCY por cepas delecionadas en los genes KNR4, FKS1 , GPI7 o GAS1. A- Cepas delecionadas en KNR4. B- Cepas delecionadas en GPI7. C- Cepas delecionadas en FKS1. D- Cepas delecionadas en GAS1.
Figura 2 (Fig. 2). Cinética de producción de CO2 por cepas salvajes (T73-4 y EC1 1 18) or recombinantes (EKD-13 y TKD-123) en mostos Sauvignon Blanc de las cosechas 2006 y 2007. A- Cosecha 2006, cepas T73-4 y TKD-123. B- Cosecha 2007, cepas T73-4 y TKD-123. C- Cosecha 2006, cepas EC1 118 y EKD-13. D- Cosecha 2007, cepas EC1 1 18 y EKD-13.
Figura 3 (Fig. 3). Comparación de las manoproteínas presentes en vinos Sauvignon Blanc fermentados con EC1 1 18 y EKD-13. A: vino del 2007; B: vino del 2006; 1 : EC1 1 18; 2: EKD-13.
Figura 4 (Fig. 4). Turbidez inducida de vinos Sauvignon blanc fermentados con las diferentes cepas salvajes o recombinantes obtenidos sobre mostos de las cosechas 2006 y 2007. A- Cosecha 2006, cepas T73-4, TKD-123 y TGD-13. B- Cosecha 2006, cepas EC11 18, EKD- 13 y EFD-31. C- Cosecha 2007, cepas T73-4, TKD- 123, TGD-13 y TGASD-31. D- Cosecha 2007, cepas EC1 1 18, EKD-13, EGD-13 y EFD-31.
Figura 5 (Fig. 5). Estabilización por bentonita de vinos Sauvignon Blanc obtenidos con EC1 1 18 y las cepas recombinantes EKD- 13, EGD-13 y EFD- 13.
Figura 6 (Fig. 6): Manoproteínas que quedan tras cada tratamiento con bentonita de los vinos obtenidos con EC1 118 o EKD-13.
EXPOSICIÓN DETALLADA DE MODOS DE REALIZACIÓN A continuación se ilustrará Ia invención mediante unos ensayos realizados por los inventores, que pone de manifiesto Ia utilidad del método desarrollado, y de Ia cepa de Ia invención, para disminuir Ia quiebra proteica en los vinos obtenidos utilizando las cepas recombinantes. Se ensayó Ia deleción de los genes KNR4, GPI7, FKS1 y GAS1 en dos fondos genéticos industriales de Saccharomyces cerevisiae (EC1 1 18 y T73-4).
Preparación de construcciones para Ia deleción
El fenotipo de mayor liberación de manoproteínas ligado a Ia deleción de los genes KNR4, GPI7, FKS1 y GAS1 es recesivo, de modo que fue necesario delecionar todas las copias de los mismos en los dos fondos genéticos seleccionados. Cada copia se delecionó usando un marcador de selección diferente, se utilizaron ARO4-OFP y KanMX4, y en el caso de una de las cepas, se utilizó también URA3 debido a Ia presencia de una tercera copia del gen KNR4.
Los cassettes de deleción se construyeron flanqueando el gen marcador con secuencias de alrededor de 500 pares de bases correspondientes al promotor y terminador del gen a delecionar.
En primer lugar se clonó el marcador ARO4-OFP en el plásmido bacteriano pUC19. ARO4-OFP se aisló del plásmido pEA2 (Cebollero, E. and González, R. 2004. Comparison of two alternative dominant selectable marker for wine yeast transformation. Appl. Environ. Microbio!. 70:7018-7023) mediante su digestión con las enzimas de restricción Sacl y BamHI y se insertó por ligación en pUC19 digerido con las mismas enzimas. El plásmido resultante se denominó pUCARO.
Los cassettes de deleción de los diferentes genes se construyeron como se describe a continuación.
• KNR4. La región promotora y terminadora de KNR4 se amplificaron por PCR con los pares de cebadores PKARO-f/ PKARO-r y TKARO-f/ TKARO-r respectivamente (tabla 1 ). Estos dos insertos se clonaron secuencialmente en pUCARO mediante Ia técnica de "primer extensión" (Geiser, M., R. Cebe, D. Drewello, and R. Schmitz. 2001 . Integration of
PCR fragments at any specific site within cloning vectors without the use of restriction enzymes and DNA ligase. BioTechniques 31 :88-92) y el plásmido resultante se denominó pDNKR4-1. El gen marcador URA3 se amplificó por PCR con el par de cebadores RURA-f/RURA-r (tabla 1 ) usando DNA genómico de Ia cepa EC1 1 18 como molde y se clonó en pDKNR4-1 por Ia técnica de "primer extensión" reemplazando el gen ARO4-OFP. El plásmido resultante se denominó pDKNR4-2. Finalmente el gen marcador KanMX4 se amplificó por PCR con el par de cebadores RKAN3-f/RKAN-r (tabla 1 ) usando el plásmido plTGPCR3 como molde (Tabera, L, Muñoz, R. and González, R. 2006. Deletion of BCY1 from the Saccharomyces cerevisiae genome is semidominant and induces autolytic phenotypes suitable for improvement of sparklling wines. Appl.
Environ. Microbio\. 72:2351 -2358) y se clonó sobre pDKNR4-1 de igual manera que URA3, reemplazando el gen marcador. El plásmido resultante se denominó pDKNR4-3.
• GPI7. La región promotora y terminadora de GPW se amplificaron por PCR con los pares de cebadores PGARO-f/ PGARO-r y TGARO-f/
TGARO-r respectivamente (tabla 1 ). Se clonaron secuencialmente en pUCARO para dar lugar al plásmido pDGPI7-1.
• FKSV. La región promotora y terminadora de FKS1 se amplificaron por PCR con los pares de cebadores PFKS-f/ PFKS-r y TFKS-f/ TFKS-r respectivamente (tabla 1 ). Se clonaron secuencialmente en pUCARO para dar lugar al plásmido pDFKSI -1.
• GAS1. La región promotora y terminadora de FKS1 se amplificaron por PCR con los pares de cebadores PGAS-f/ PGAS-r y TGAS-f/ TGAS-r respectivamente (tabla 1 ). Se clonaron secuencialmente en pUCARO para dar lugar al plásmido pDGASI -1.
Transformación de cepas industriales de levadura
Los diferentes cassettes de deleción se amplificaron por PCR tal y como se describe en Ia tabla 2.
Para Ia deleción de los genes GPW, FKS1 y GAS1 con el marcador de selección KanMX4, no se construyó un cassette de deleción. En su lugar, se utilizó como molde el DNA genómico de cepas ya delecionadas en esos genes usando el marcador KanMX4, y procedentes de Ia colección de cepas de deleción Euroscarf (tabla 2).
Para Ia construcción de cepas vínicas de Saccharomyces cerevisiae delecionadas en los genes ya mencionados, se utilizaron dos cepas diferentes: EC1 1 18 y T73-4 (auxótrofa para uridina). La transformación de las cepas con los cassettes de deleción se llevó a cabo mediante el método de acetato de litio descrito por (Ito, H., Fukada, Y., Murata, K. and Kimura, A. 1983. Transformation of intact yeast cells treated with alkali cations. J. Bacteriol. 153:163-168), y modificado por (Agatep, R., Kirkpatrick, R.D., Parchaliuk, D. L, Woods, R. A. and Gietz, R. D. 1998. Transformation of Saccharomyces cerevisae by the lithium acetate/single-stranded carrier DNA/polyethylene glycol (LiAc/ss-DNA/PEG) protocol. Technical Tips Online 1 :51 :P01525 (http://tto.trends.com )). Brevemente, las cepas de levadura fueron transformadas con 20 μl de Ia reacción de amplificación por PCR del cassette de deleción correspondiente.
Para los cassettes con el marcador de selección ARO4-OFP, tras Ia transformación, las células se diluyeron 10 veces en YPD y se incubaron durante 17 horas a 30QC y 200 rpm para permitir Ia expresión de Ia resistencia antes de aplicar Ia presión selectiva. Los transformantes se seleccionaron tras 5 días de incubación a 30QC en placas de SD conteniendo 2 g/l de PFP (glucosa 20 g/l, Yeast Nitrogen Base 6.7 g/l, Agar 20 g/l, Fenilalanina 0.9 g/l, Parafluorofenilalanina 2 g/l).
Para los cassettes con el marcador de selección KanMX4, las células se diluyeron 2 veces en YPD y se incubaron a 30QC y 200 rpm para permitir Ia expresión del alelo de resistencia. Los transformantes se seleccionaron tras dos días de incubación a 30QC en placas de YPD con 40 μg/ml de G418 (glucosa 20 g/l, peptona 20 g/l, extracto de levadura 10 g/l, agar 20 g/l).
Finalmente, para el marcador URA3 los transformantes se seleccionaron tras dos días de incubación a 30QC en placas de SD sin uridina.
Los fenotipos de los transformantes se confirmaron por réplica en placa sobre los mismos medios de selección utilizados para Ia transformación.
Análisis de los transformantes Los diferentes transformantes se crecieron en YPD líquido a 30QC y 200 rpm. Se extrajo su DNA genómico siguiendo el método descrito por Querol et al. (Querol, A., Barrio, E. and Ramón, D. 1992. A comparative study of different methods of yeast strain characterization. Syst. Appl. Microbio!. 15:439-446).
• KNR4: La integración del cassette DKNR4-1 se analizó por PCR en tiempo real ABI Phsm 7500 Fast Real-Time PCR (Applied Biosystems). Los cebadores usados para ello fueron PromAR04Q y TermKNR4Q (tabla 3). La correcta inserción del cassette fue adicionalemente confirmada por Ia amplificación por PCR de todo el locus usando los cebadores CDKNR-f y CDKNR-r (tabla 3), y verificación del tamaño del amplicón por electroforesis en gel de agarosa. La inserción del resto de marcadores de selección fue analizada directamente de esta última forma.
• GPI7: En todos los casos, el locus GPI7 se amplificó con los cebadores CDGPI-f y CDGPI-r (tabla 3), y los tamaños de los amplicones fueron analizados por electroforesis en gel de agarosa.
• FKS1: El locus FKS1 se amplificó con los cebadores CDFKS-f y CDFKS-r (tabla 3), y los tamaños de los amplicones fueron analizados por electroforesis en gel de agarosa.
• GAS1: El locus GAS1 se amplificó con los cebadores CDGAS-f y CDGAS-r (tabla 3), y los tamaños de los amplicones fueron analizados por electroforesis en gel de agarosa.
Las cepas construidas se muestran en Ia tabla 4.
Cebador Secuencia (5', 3')
TKARO-f SEQ ID NO: 1
TKARO-r SEQ ID NO: 2
PKARO-f SEQ ID NO: 3
PKARO-r SEQ ID NO: 4
RURA3-Í SEQ ID NO: 5
RURA3-r SEQ ID NO: 6 RKAN3-Í SEQ ID NO: 7
RKAN3-r SEQ ID NO: 8
TGARO-f SEQ ID NO: 9
TGARO-r SEQ ID NO: 10
PGARO-f SEQ ID NO: 11
PGARO-r SEQ ID NO: 12
PFKS-f SEQ ID NO: 13
PFKS-r SEQ ID NO: 14
TFKS-f SEQ ID NO: 15
TFKS-r SEQ ID NO: 16
PGAS-f SEQ ID NO: 17
PGAS-r SEQ ID NO: 18
TGAS-f SEQ ID NO: 19
TGAS-r SEQ ID NO: 20
Tabla 1 : Cebadores empleados en Ia construcción de los cassettes de deleción.
Figure imgf000018_0001
Tabla 2: Amplificación por PCR de los cassettes de deleción.
Cebador Secuencia (5', 3') PromAR04Q SEQ ID NO: 21
TermKNR4 SEQ ID NO: 22
CDKNR-f SEQ ID NO: 23
CDKNR-r SEQ ID NO: 24
CDGPI-f SEQ ID NO: 25
CDGPI-r SEQ ID NO: 26
CDFKS-f SEQ ID NO: 27
CDFKS-r SEQ ID NO: 28
CDGAS-f SEQ ID NO: 29
CDGAS-r SEQ ID NO: 30
Tabla 3: Cebadores empleados en el análisis de los transformantes.
Figure imgf000019_0001
Figure imgf000020_0001
Tabla 4: Resumen de las cepas construidas.
Ejemplos
Liberación de manoproteínas por las cepas delecionadas y utilizando medios de laboratorio (GCY)
Se inoculó medio GCY con cada cepa, a una DO600 de 0,1 a partir de un precultivo en el mismo medio, y se hizo un seguimiento de Ia curva de crecimiento a 30QC y 150 rpm, hasta fase estacionaria. Los ensayos se llevaron a cabo con las cepas parentales, EC1 1 18 y T73-4, y las diferentes cepas derivadas de las mismas, que aparecen en Ia tabla 4. Las deleción daba lugar a un crecimiento más lento en algunas de las cepas, sobre todo en las que llevaban todas las copias del gen correspondiente delecionadas. También se observaba cierto efecto de Ia modificación genética sobre Ia OD en fase estacionaria.
Se midió Ia cantidad de polisacáridos liberada durante el crecimiento en medio GCY (2% glucose, 2 % Bacto Casaminoacids, 0.67% Difco Yeast Nitrogen Base). Para ello se recuperó el sobrenadante por centrifugación y se separaron las macromoléculas presentes en el mismo mediante exclusión molecular en columnas Econo-Pac (Bio-Rad). La concentración de manoproteínas y polisacáridos en Ia fracción eluida se determinó frente a una curva de calibrado de mañano comercial mediante el método de fenol sulfúrico (Segarra, I., Lao, C, López-Tamames, E. and de Ia Torre-Boronat, M. C. 1995. Spectrophotometric methods for the analysis of polysaccharide levéis in winemaking products. Am J. EnI. Vitic. 46:564-570). Se realizaron cinco replicas de cada determinación y se compararon mediante ANOVA los resultados de las diferentes cepas.
También se llevó a cabo Ia detección de las manoproteínas mediante el método de Ia Concanavalina A conjugada con peroxidasa. Para ello se cargaron 10 μl del sobrenadante de cada cultivo en geles de SDS-PAGE (Laemmli, U. K. 1970. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. 227:680-685). El material se transfirió a membranas de nitrocelulosa usando el sistema Mini Protean de Bio-Rad. La detección se llevó a cabo mediante el método descrito por KNs et al. (KNs, F.M., Ram, A.F.J., Montijn, R C, Kapteyn, J. C, Caro, LH. P., Vossen, J. H., Van Berkel, M.A.A., Brekelmans, S. S. C. and Van den Ende, H. 1998. Posttranslational modifications of secretory proteins. p 223-238. In Methods in Microbiology; Academic Press: New York).
Algunos de los resultados obtenidos se muestran en Ia figura 1. Se observa dependencia del fondo genético y del gen concreto que se ha modificado. El mayor efecto se observó siempre en el caso de las cepas delecionadas en todas las copias del gen correspondiente, especialmente para KNR4 y GPI7. A raíz de estos resultados se decidió completar Ia caracterización fundamentalmente con las cepas delecionadas en todas las copias de cada gen.
Poder fermentativo de las cepas delecionadas
Se llevaron a cabo ensayos de fermentación utilizando diferentes lotes de mosto Sauvignon Blanc natural. El contenido en azúcar del mosto de Ia cosecha 2006 fue alto (32% p/v), mientras que el de Ia cosecha 2007 fue normal (25% p/v). Estos ensayos se llevaron a cabo sólo con las cepas parentales y los derivados con todas las copias del gen correspondiente eliminadas. En Ia figura 2 se muestran algunos perfiles de fermentación según Ia liberación de CO2, representativos de las cepa más interesantes. Las determinaciones de azúcar residual y etanol producido se llevaron a cabo mediante HPLC. Para ello se utilizó un cromatógrafo Thermo (Thermo Electron Corporation), equipado con una bomba SpectraSystem P400, detector SpectraSystem RM 50, e inyector AS3000. Se utilizó una columna de Bio-Rad HPX-87H en las siguientes condiciones de elución: fase móvil H2SO4 1.5 mM, flujo 0.6 ml/min, temperatura del horno 50QC. Las muestran se diluyeron entre 2 y diez veces y se filtraron por un filtro de PVDF de 0.45 μm. En conjunto se aprecia que el fondo T73-4 es poco apropiado en el caso de Ia deleción de KNR4, ya que da lugar a problemas de fermentación, sobre todo con el mosto de 2006. Con el fondo EC1 1 118 también se observa un ligero efecto negativo con el mosto de 2006, que parece el más problemático, pero este efecto parece compatible con Ia aplicación industrial de Ia cepa.
Liberación de manoproteínas en mostos naturales
En Ia figura 3 se muestran los resultados del análisis mediante el método de Ia Concanavalina A conjugada con peroxidasa, de los sobrenadantes de cultivo obtenidos al final de Ia fermentación, de las fermentaciones de mostos naturales descritas más arriba. Se observa mayor liberación en el caso de Ia cepa EKD-13.
Estabilización frente a quiebra proteica de vinos sin tratar obtenidos a partir de mostos naturales
La estabilidad proteica de los vinos obtenidos de Ia fermentación de mostos naturales se examinó mediante incubación de alícuotas de 5 mi a 85QC durante 30 minutos y enfriamiento en hielo. Posteriormente se midió Ia turbidez en un nefelómetro (Hach). Se analizaron los datos de 9 réplicas mediante ANOVA. En Ia figura 4 se muestran los valores de turbidez de los vinos de las diferentes cepas tras el tratamiento. Destaca Ia reducción de turbidez en Ia cepa EKD-13 y Ia falta de reducción en TKD-123.
Reducción de Ia demanda de bentonita para Ia estabilización de vinos obtenidos a partir de mostos naturales
Se llevaron a cabo fermentaciones de mostos naturales y se trataron diversas alícuotas con cantidades crecientes de bentonita, analizándose posteriormente Ia estabilidad de los vinos obtenidos, en función del tratamiento con bentonita, mediante el método descrito en el apartado anterior. Se determinó Ia cantidad de bentonita mínima para alcanzar el mayor grado de estabilización. Los resultados se presentan en Ia figura 5. En función de los resultados previos, este análisis se llevó a cabo únicamente con las cepas en fondo EC1 1 18 en las que se habían eliminado las dos copias del gen correspondiente. El resultado principal es que en todos los casos se observa una estabilización mejor en las cepas delecionadas que en Ia cepa control, con una reducción aproximada de un 25% en Ia demanda de bentonita.
Paralelamente se analizaron las manoproteínas restantes en el vino después de cada tratamiento, observándose que las muestras derivadas de las cepas modificadas conservaban, después del tratamiento, cantidades apreciablemente superiores de manoproteínas que Ia cepa control. Estos resultados se muestran en Ia figura 6.
Todos estos ejemplos muestran que las cepas recombinantes desarrolladas en esta invención dan lugar a vinos más ricos en manoproteínas, incluso después de un tratamiento con bentonita, más estables frente a quiebra proteica, y que requieren menos bentonita para su estabilización. Al ser más ricos en manoproteínas estos vinos tienen potencialmente mejoradas otros rasgos de calidad asociados a un alto contenido en manoproteínas.

Claims

REIVINDICACIONES
1. Método para obtener cepas de levadura recombinantes industriales, que aumentan Ia concentración de manoproteínas secretadas al medio, que comprende delecionar o inactivar en un fondo genético de cepas de levadura genes relacionados con Ia biogénesis de Ia pared celular o Ia liberación de proteínas.
2. Método según Ia reivindicación anterior, en el que las cepas pertenecen al género Saccharomyces.
3. Método según Ia reivindicación anterior, en el que las cepas pertenecen a Ia especie Saccharomyces cerevisiae.
4. Método según cualquiera de las reivindicaciones 1 -3, en el que el gen delecionado o inactivado se selecciona de una lista que comprende: a. el gen KNR4, b. el gen GPI7, c. el gen FKS1, d. el gen GAS1, o cualquiera de sus combinaciones.
5. Método según Ia reivindicación 4, en el que el gen delecionado o inactivado es el KN R4.
6. Método según cualquiera de las reivindicaciones 1 -5, en el que además se ha eliminado el gen marcador.
7. Cepas de levadura obtenidas por el método según cualquiera de las reivindicaciones 1 -6.
8. Cepa de Ia levadura Saccharomyces cerevisiae depositada en Ia Colección Española de Cultivos Tipo (CECT), con el número CECT 13012.
9. Uso de Ia cepa de Saccharomycetales obtenida según cualquiera de las reivindicaciones 1 -6, o de Ia cepa de Saccharomyces cerevisiae según Ia reivindicación 8, para Ia fermentación alcohólica.
10. Uso de Ia cepa de Saccharomycetales según Ia reivindicación anterior, donde Ia fermentación alcohólica da lugar a vinos.
PCT/ES2009/070193 2008-05-29 2009-05-29 Levaduras vínicas recombinantes WO2009144358A2 (es)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ESP200801612 2008-05-29
ES200801612A ES2334421B1 (es) 2008-05-29 2008-05-29 Levaduras vinicas recombinantes.

Publications (2)

Publication Number Publication Date
WO2009144358A2 true WO2009144358A2 (es) 2009-12-03
WO2009144358A3 WO2009144358A3 (es) 2010-02-18

Family

ID=41377653

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/ES2009/070193 WO2009144358A2 (es) 2008-05-29 2009-05-29 Levaduras vínicas recombinantes

Country Status (2)

Country Link
ES (1) ES2334421B1 (es)
WO (1) WO2009144358A2 (es)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP2875119B1 (en) * 2012-07-19 2017-12-20 DSM IP Assets B.V. Agse-deficient strain

Non-Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
GONZALEZ-RAMOS DANIEL ET AL.: 'A recombinant Saccharomyces cerevisiae strain overproducing mannoproteins stabilizes wine against protein haze' APPLIED AND ENVIRONMENTAL MICROBIOLOGY. vol. 74, no. 17, September 2008, ISSN 1098-5336 pages 5533 - 5540 *
GONZALEZ-RAMOS DANIEL ET AL.: 'Genetic determinants of the release of mannoproteins of enological interest by Saccharomyces cerevisiae' JOURNAL OF AGRICULTURAL AND FOOD CHEMISTRY vol. 54, no. 25, 13 December 2006, ISSN 0021- 856 pages 9411 - 9416 *
HONG Z. ET AL.: 'Cloning and characterization of KNR4, a yeast gene involved in (1,3)-beta-glucan synthesis' MOLECULAR AND CELLULAR BIOLOGY. vol. 14, no. 2, 01 February 1994, ISSN 0270-7306 pages 1017 - 1025 *
KAPTEYN J. C. ET AL.: 'Altered extent of cross- linking of beta1,6-glucosylated mannoproteins to chitin in Saccharomyces cerevisiae mutants with reduced cell wall betal,3-glucan content' JOURNAL OF BACTERIOLOGY. vol. 179, no. 20, October 1997, ISSN 0021-9193 pages 6279 - 6284 *
LAGORCE ARNAUD ET AL.: 'Genome-wide analysis of the response to cell wall mutations in the yeast Saccharomyces cerevisiae' THE JOURNAL OF BIOLOGICAL CHEMISTRY. vol. 278, no. 22, 30 May 2003, ISSN 0021-9258 pages 20345 - 20357 *
PARK S-M. ET AL.: 'ENHANCED EXTRACTION EFFICIENCY OF RECOMBINANT PROTEINS BY USE OF THE KNR4- DISRUPTED STRAINS OF SACCHAROMYCES CEREVISIAE' BIOTECHNOLOGY LETTERS. vol. 20, no. 5, 01 May 1998, ISSN 0141-5492 pages 511 - 514 *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP2875119B1 (en) * 2012-07-19 2017-12-20 DSM IP Assets B.V. Agse-deficient strain
EP3327112A1 (en) * 2012-07-19 2018-05-30 DSM IP Assets B.V. Agse-deficient strain

Also Published As

Publication number Publication date
ES2334421A1 (es) 2010-03-09
ES2334421B1 (es) 2011-02-28
WO2009144358A3 (es) 2010-02-18

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Gonzalez-Ramos et al. A recombinant Saccharomyces cerevisiae strain overproducing mannoproteins stabilizes wine against protein haze
Bisson The biotechnology of wine yeast
Fleet Growth of yeasts during wine fermentations
US20110129566A1 (en) Functional Enhancement of Yeast to Minimize Production of Ethyl Carbamate Via Modified Transporter Expression
Dequin et al. How to adapt winemaking practices to modified grape composition under climate change conditions
US20230220317A1 (en) Production of an alcohol-free beverage
EP2837698B1 (en) Saccharomyces cerevisiae strain
Vontrobová et al. Autochthonous yeasts as one of the tools to produce wines by original technologies
ES2334421B1 (es) Levaduras vinicas recombinantes.
Benıtez et al. Yeasts used in biologically aged wines
Volschenk et al. Genetic engineering of an industrial strain of Saccharomyces cerevisiae for L-malic acid degradation via an efficient malo-ethanolic pathway
Cebollero et al. Construction of a recombinant autolytic wine yeast strain overexpressing the csc1‐1 allele
Ramon et al. Improvement of wine yeasts by genetic engineering
Stewart et al. Stress Effects on Yeast During Brewing and Distilling Fermentations: High-Gravity Effects
US20230407272A1 (en) Genetically engineered yeast cells and methods of use thereof
Beltran Molecular analysis of the interactions between starter cultures during wine fermentation
Vicente Sánchez et al. An Integrative View of the Role of Lachancea thermotolerans in Wine Technology
Vicente et al. An Integrative View of the Role of Lachancea thermotolerans in Wine Technology. Foods 2021, 10, 2878
Dey Genetic Engineering of Microorganisms in Winemaking
WO2023227820A1 (es) Cepas de levadura con propiedades vinícolas optimizadas y su método de obtención
JP2016077160A (ja) 高速発酵酵母細胞
Husnik Metabolic engineering and characterisation of the malolactice wine yeast ML01
Jiang et al. Improvement in the anti-staling capability of beer by genetically modifying industrial brewing yeast with high glutathione content
Duong An integrative approach to identify novel target genes for reduction of diacetyl production in lager yeast
Dey 14 Genetic Engineering of

Legal Events

Date Code Title Description
NENP Non-entry into the national phase in:

Ref country code: DE

122 Ep: pct application non-entry in european phase

Ref document number: 09754012

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A2